CN102732503A - 一种藻类叶绿体dna的提取方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种藻类叶绿体DNA的提取方法,新鲜或冷冻藻体为原料,用组织匀浆机匀浆,加入缓冲液A以3,000-6,000×g离心力离心处理,取沉淀物,加入缓冲液B,在60-70℃下水浴裂解1-2h,裂解液去除变性蛋白质,加入CsCl和Hoechst 33258,以360,000-400,000×g离心力离心8-12h,取出含叶绿体DNA条带去除Hoechst 33258,加入2.5~3.5M醋酸钠、双蒸水和异丙醇,在-20℃下放置20~40min,离心力12,000-16,000×g离心15-30min,得到的沉淀纯化后,即得到藻类叶绿体DNA。与现有技术相比,本发明简化了提取步骤,操作简单易行,提高了藻类叶绿体DNA的提取率和纯度,提取的藻类叶绿体DNA得率在150-200μg/g(新鲜藻体),且完全能够满足基因组测序、特异性酶切、RAPD、PCR和目标基因序列的克隆等常规分子生物学操作的需要。
Description
技术领域
本发明涉及植物基因工程技术领域,具体设计一种大型藻类叶绿体DNA高效高纯度的提取方法。
背景技术
叶绿体是植物进行光合作用极为重要的细胞器,它具有独立复制的遗传物质。叶绿体DNA(cpDNA)被广泛应用于细胞质遗传、植物雄性不育、植物的系统发育、遗传多样性和亲缘关系等方面的研究。由于叶绿体及其DNA的重要功能,所以它们一直是细胞生物学、遗传学和分子生物学的重要研究对象。由于难以获得足量的完整叶绿体进而得到高纯度的叶绿体DNA(cpDNA),此项研究进展缓慢。目前,很多方法通过破碎植物体如匀浆法、超声破碎法、冻融法以及化学方法等,以获得完整叶绿体粗提液,再通过差速离心分离,密度梯度离心分离、纯化,进而提取得到叶绿体DNA。这些方法在一定程度上适用于提取高等植物叶绿体细胞器,但海藻组织通常富含的多糖、酚类化合物,很难分离得到量大纯度高的叶绿体,并且酚类化合物极易被氧化,可在核酸分离纯化时,与核酸相互作用生成物(如醌类)能与核酸稳定的结合,从而影响核酸的分离纯化。多糖会形成难溶的胶状物,与核酸共沉淀下来,并且多糖可以抑制很多酶的活性。
另有报道利用蔗糖密度梯度离心分离藻类叶绿体细胞器再用CsCl密度梯度离心分离纯化叶绿体DNA。由于藻类细胞壁比较厚不易破碎,叶绿体细胞器得率低,并且组织富含多糖多酚,分离得到叶绿体细胞器纯度不高。报道中还涉及叶绿体DNA溶液透析以去除CsCl的步骤,此步骤极易导致叶绿体DNA得率降低,并且延长提取时间。利用目前已报道的藻类叶绿体提取方法,叶绿体DNA的提取率一般在10-15μg/g(新鲜藻体),提取率低下。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种简便快速的藻类叶绿体DNA的提取方法,提取的藻类叶绿体DNA具有质量好、提取率高等优点。
本发明解决上述技术问题所采用的技术方案为:一种藻类叶绿体DNA的提取方法,其特征包括以下步骤:
1)选取新鲜或冷冻藻体如裙带菜或者孔石莼,洗净沥水后,称取20-60g藻体,加150-300ml缓冲液A,用组织匀浆机在0-4℃下,匀浆成藻液;
2)将匀浆后的藻液用尼龙布过滤,将滤液离心处理后,弃上清液,取沉淀物;
3)在沉淀物中加入10-30ml缓冲液B,在60-70℃下水浴裂解1-2h,得到裂解液;
4)将裂解液用酚-氯仿-异戊醇(体积比24~26∶23~25∶1,体积比优选25∶24∶1)和氯仿-异戊醇(体积比23~25∶1,体积比优选24∶1)处理去除变性蛋白质,再加入CsCl和Hoechst 33258,以360,000-400,000×g离心力离心6-8h,其中CsCl与Hoechst 33258的加入量的终浓度为1.35-1.65g/ml和10-30μg/ml;
5)迅速取出含叶绿体DNA的条带,用0.8-1.2M NaCl饱和异丙醇去除Hoechst33258;
6)在去除Hoechst 33258的叶绿体DNA溶液中加入浓度2.5-3.5M的醋酸钠、双蒸水和异丙醇,体积比为1.5~2.5∶1.5~2.5∶3.5~4.5∶4.5~5.5,混合均匀后混合液在-20℃下,放置20-40min;
7)将混合液以12,000-16,000×g离心力离心15-30min,得到的沉淀经过65-75%乙醇洗涤去杂后,即得纯的藻类叶绿体DNA,提取得到的DNA OD260/280为1.75-1.85,得率为150-200μg/g(新鲜藻体);
其中,所述缓冲液A的组分及配比如下:
调节pH至7-8,补充水至1L;
所述缓冲液B的组分及配比如下:
调节pH至7-8,补充水至1L。
作为改进,所述步骤2)中的离心处理是在3,000-6,000×g离心力下离心5-10min。
作为改进,所述步骤5)是采用注射器在紫外灯照射下,迅速取出含叶绿体DNA的条带。
作为优选,所述缓冲液A的组分及配比为:
调节pH至7.5,补充水至1L。
再优选,所述缓冲液B的组分及配比为:
调节pH至7.5,补充水至1L。
再优选,所述尼龙布为40-100目。
最后,所述步骤6)中的叶绿体DNA溶液与醋酸钠、双蒸水和异丙醇的体积比优选为2∶2∶4∶5。
与现有技术相比,本发明的优点在于:利用高速匀浆机在低温条件下破碎藻体组织,使得细胞器的得率很高;同时通过加入醋酸钾沉淀多糖多酚,以达到藻体细胞器和多糖多酚分离的效果。在提取过程中省去差速离心分离叶绿体的步骤,节省了操作时间,提高叶绿体DNA的得率;通过稀释含CsCl的叶绿体DNA溶液,直接沉淀DNA,省去透析去除CsCl的步骤,并且减少透析过程中DNA的损耗,提高叶绿体DNA的得率。本发明的提取方法简便快速、提取率高,提取的藻类叶绿体DNA得率在150-200μg/g(新鲜藻体),具有纯度高、产率高的优点,完全能够满足基因组测序、特异性酶切、RAPD、PCR和目标基因序列的克隆等常规分子生物学操作的需要。
具体实施方式
以下结合实施例对本发明作进一步详细描述。
实施例1
1)原料准备:选取新鲜裙带菜藻体,洗净沥水后,称取20g藻体,加150ml缓冲液A,用组织匀浆机在0-4℃下,均匀搅碎成藻液;
2)匀浆的藻液用60目尼龙布过滤,滤液以4,000×g离心力离心10min,取得沉淀物;
3)收集的离心沉淀物加15ml缓冲液B在65℃,水浴1h;
4)裂解液利用酚-氯仿-异戊醇(体积比25∶24∶1)和氯仿-异戊醇(体积比24∶1)处理去除变性蛋白质,加入CsCl(终浓度1.45g/ml)和Hoechst 33258(终浓度10μg/ml),380,000×g,离心8h;
5)利用注射器在紫外灯照射下,迅速取出含叶绿体DNA的条带,利用含1M NaCl饱和异丙醇,去除Hoechst 33258;
6)叶绿体DNA溶液中加入3M醋酸钠、双蒸水和异丙醇,体积比为2∶2∶4∶5,混合液在-20℃下,放置30min;
7)混合液在离心力15,000×g离心15min,得到的沉淀经过70%乙醇洗涤去杂后,即得裙带菜叶绿体DNA,提取得到的DNA OD260/280为1.85,得率为180μg/g(新鲜藻体)。
其中,所述缓冲液A的组分及配比为:
调节pH至7.5,补充水至1L;
所述缓冲液B的组分及配比为:
调节pH至7.5,补充水至1L。
实施例2
1)原料准备:选取新鲜孔石莼藻体,洗净沥水后,称取25g藻体,加150ml缓冲液A,用组织匀浆机在0-4℃下,均匀搅碎成藻液;
2)匀浆的藻液用60目尼龙布过滤,滤液以4,000×g离心力离心10min,取得沉淀物;
3)收集的离心沉淀物加20ml缓冲液B在65℃,水浴1.5h;
4)裂解液利用酚-氯仿-异戊醇(体积比25∶24∶1)和氯仿-异戊醇(体积比24∶1)处理去除变性蛋白质,加入CsCl(终浓度1.35g/ml)和Hoechst 33258(终浓度10μg/ml),380,000×g,离心8h;
5)利用注射器在紫外灯照射下,迅速取出含叶绿体DNA的条带,利用含1M NaCl饱和异丙醇,去除Hoechst 33258;
6)叶绿体DNA溶液中加入3M醋酸钠、双蒸水和异丙醇,体积比为2∶2∶4∶5,混合液在-20℃下,放置30min;
7)混合液在离心力14,000×g离心20min,得到的沉淀经过70%乙醇洗涤去杂后,即得孔石莼叶绿体DNA,提取得到的DNA OD260/280为1.84,得率为186μg/g(新鲜藻体)。
其中缓冲液A、B的配比同实施例1。
本发明提取的叶绿体DNA得率在150-200μg/g(新鲜藻体)。通过PCR法扩增核DNA保守基因序列(18S rDNA)和叶绿体DNA保守基因序列(rbcL)检测叶绿体DNA的纯度,结果显示提取的叶绿体DNA不含核DNA成分,说明提取的叶绿体DNA纯度很高。
Claims (7)
1.一种藻类叶绿体DNA的提取方法,其特征包括以下步骤:
1)选取新鲜或冷冻藻体,洗净沥水后,称取20-60g藻体,加150-300ml缓冲液A,用组织匀浆机在0-4℃下,匀浆成藻液;
2)将匀浆后的藻液用尼龙布过滤,将滤液离心处理后,弃上清液,取沉淀物;
3)在沉淀物中加入10-30ml缓冲液B,在60-70℃下水浴裂解1-2h,得到裂解液;
4)将裂解液用体积比24~26∶23~25∶1的酚-氯仿-异戊醇和体积比23~25∶1的氯仿-异戊醇处理去除变性蛋白质,再加入CsCl和Hoechst 33258,以360,000-400,000×g离心力离心8-12h,其中CsCl与Hoechst 33258的加入量为终浓度1.35-1.65g/ml和10-30μg/ml;
5)迅速取出含叶绿体DNA的条带,用0.8-1.2M NaCl饱和异丙醇去除Hoechst33258;
6)在去除Hoechst 33258的叶绿体DNA溶液中加入浓度2.5-3.5M的醋酸钠、双蒸水和异丙醇,体积比为1.5~2.5∶1.5~2.5∶3.5~4.5∶4.5~5.5,混合均匀后混合液在-20℃下,放置20-40min;
7)将混合液以12,000-16,000×g离心力离心15-30min,得到的沉淀经过65-75%乙醇洗涤去杂后,即得纯的藻类叶绿体DNA;
其中,所述的缓冲液A的组分及配比如下:
调节pH至7-8,补充水至1L;
所述的缓冲液B的组分及配比如下:
调节pH至7-8,补充水至1L。
2.根据权利要求1所述的提取方法,其特征在于所述步骤2)中的离心处理是在3,000-6,000×g离心力下离心5-10min。
3.根据权利要求1所述的提取方法,其特征在于所述步骤5)是采用注射器在紫外灯照射下,迅速取出含叶绿体DNA的条带。
5.根据权利要求1所述的提取方法,其特征在于所述缓冲液B的组分及配比为:
调节pH至7.5,补充水至1L。
6.根据权利要求1所述的提取方法,其特征在于所述尼龙布为40-100目。
7.根据权利要求1所述的提取方法,其特征在于所述步骤6)中的叶绿体DNA溶液与醋酸钠、双蒸水和异丙醇的体积比为2∶2∶4∶5。
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Cited By (3)
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Non-Patent Citations (6)
Title |
---|
ALDRICH AND CATTOLICO: "Isolation and Characterization of Chloroplast DNA from the Marine Chromophyte, Olisthodiscus luteus: Electron Microscopic Visualization of Isomeric Molecular Forms", 《PLANT PHYSIOL》 * |
SHIVJI: "Organization of the chloroplast genome in the red alga Porphyra yezoensis", 《CURR GENET》 * |
李世国: "大型褐藻配子体培养及海带自交系AFLP分析", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库 农业科技辑》 * |
李晋楠和汪志平: "高质量螺旋藻基因组DNA制备方法研究", 《浙江大学学报(农业与生命科学版)》 * |
秦松等: "红藻真江蓠质粒的发现", 《海洋与湖沼》 * |
邓元告等: "坛紫菜(porphyra haitanensis)叶绿体DNA的快速提取", 《厦门大学学报(自然科学版)》 * |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103215251A (zh) * | 2013-03-01 | 2013-07-24 | 生工生物工程(上海)股份有限公司 | 一种分离叶绿体dna的方法 |
CN103215251B (zh) * | 2013-03-01 | 2016-02-17 | 生工生物工程(上海)股份有限公司 | 一种分离叶绿体dna的方法 |
AU2017269608B2 (en) * | 2016-05-27 | 2020-07-16 | Norgen Biotek Corp. | Preservation of cell-free nucleic acids in biological samples |
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AU2017269608C1 (en) * | 2016-05-27 | 2023-12-07 | Norgen Biotek Corp. | Preservation of cell-free nucleic acids in biological samples |
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