CN102702360A - 新型结核分枝杆菌特异性融合蛋白及其制备和应用 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一种新型结核分枝杆菌特异性融合蛋白及其制备和应用,属结核病医学免疫学诊断技术领域。本发明的融合蛋白由Rv0057和Rv1352两种蛋白的抗原表位依次连接构成,Rv0057蛋白抗原表位的核苷酸序列如序列表中序列1所示;Rv1352蛋白抗原表位的核苷酸序列如序列表中序列2所示。与目前商品化的抗体检测试剂盒相比,本发明所制备的结核分枝杆菌特异性融合蛋白,在结核病血清学诊断方面均具有敏度高、特异性强、并与其它抗原具有互补性的优点,可用于检测血清、胸水等体液标本中特异的抗结核抗体。

Description

新型结核分枝杆菌特异性融合蛋白及其制备和应用
技术领域
本发明涉及一种新型结核分枝杆菌特异性融合蛋白及其制备和应用,具体涉及应用基因工程技术制备的一种新型结核分枝杆菌特异性的多抗原表位的融合蛋白Rv0057-Rv1352及其制备方法,属于结核病医学免疫学检测技术领域。 
背景技术
在全世界结核病依然是危害人类健康的主要传染病之一,1985年以来艾滋病的流行、结核感染的移民和部分人群生活贫困等原因使美国等欧美发达国家结核病发病率呈回升趋势,尤其是结核菌耐药问题、与人免疫缺陷病毒(HIV)合并感染使结核病治疗更是雪上加霜。目前全世界有结核病人约2000万,每年新增结核病人800~1000万,每年死亡人数约200万。 
中国的结核病疫情相当严重,是全球22个结核病高负担国家之一,结核病人数位居世界第二,仅次于印度。2010年全国第五次结核病流行病学抽样调查初步结果表明,15岁及以上人群肺结核的患病率为459/10万,其中传染性肺结核患病率为66/10万。结核病死亡在传染病中居第一位。结核病也是AIDS感染者死亡的主要原因,根据1996年WHO统计每3个死亡的AIDS患者中就有一例死于合并结核,45-85%HIV死亡者是由于结核病诊断延误所致。 
早期诊断、发现病人、选择敏感的抗结核药物进行有效治疗是控制结核病的关键。虽然结核病细菌学检查是目前发现传染源的主要途径和手段,是结核病诊断的“金标准”,但临床标本涂片、镜检的灵敏度低,需104-105个菌/ml痰才能检出,阳性率只有20-30%;传统的分枝杆菌培养阳性率低(只有30%左右),需4-8周时间。显然目前临床上常规应用的诊断方法不能满足结核病早期诊断、鉴别诊断的需要。因此,结核病的快速诊断、鉴别诊断是目前亟待解决的重要课题之一。尤其是菌阴肺结核、肺外结核和儿童结核的诊断十分困难,而免疫学检查标本来源方便、简便、快速、灵敏、特异,成为结核病重要的辅助检查手段。 
结核病患者大都处于免疫紊乱状态,机体未能诱导有效的免疫应答而导致发病。在疾病的早、中期,机体的免疫功能亢进,Th1型免疫应答逐渐减弱,Th2型免疫应答增强,使Th1型免疫向Th2型免疫转移,表现为Th1型细胞因子和血清抗体逐渐增高,皮肤变态反应增强。而在疾病的中后期,细胞免疫功能低下,机体产生各种抗病因子的功能下降,体液免疫功能增强,结核病病情恶化,表现为血清 抗体增高。因此,抗结核抗体检测成为临床上应用较广泛的一种简便、快速、价廉的结核病辅助诊断手段,尤其是对于那些诊断困难的菌阴肺结核、儿童结核病或肺外结核病具有实用价值。但目前尚不完全清楚结核分枝杆菌哪些抗原主要引起细胞免疫反应,而哪些抗原主要引起体液免疫反应;结核潜伏感染者、结核病患者对结核菌的不同抗原是如何反应的。目前已发现不同结核病患者对不同结核分枝杆菌抗原产生不同水平的抗体,而同一个患者在疾病的不同阶段对不同抗原的免疫反应也不同,使得每一位患者血清识别抗原的种类、数目和水平都有很大的差异,抗原识别的个体差异是人类结核病体液免疫的主要特性。此外,其他细菌感染也可能产生假阳性反应,导致目前商业化的结核抗体检测试剂盒存在灵敏度和特异性不高的问题,目前任何一种单一的抗原进行结核病血清学诊断时的灵敏度均未超过70%,尚无确切的抗原或成套的抗原可被所有的或大多数的患者所识别。抗原的筛选、评价对抗结核抗体的检测至关重要,筛选灵敏度高、特异性强、具有互补性的抗原构建融合蛋白,不仅可提高检测的灵敏度和特异性,还可降低成本,从而弥补目前诊断方法的不足。 
发明内容
本发明的目的是克服已有技术的不足,提供一种新型结核分枝杆菌特异性多抗原表位的融合蛋白Rv0057-Rv1352及其制备方法,作为结核病抗体检测抗原,可提高结核抗体检测的灵敏度和特异性,应用于结核病的快速诊断。 
一种结核分枝杆菌特异性融合蛋白,其由Rv0057和Rv1352两种蛋白抗原的关键表位依次连接构成,称为Rv0057-Rv1352;Rv0057蛋白抗原表位的核苷酸序列(DNA序列)如序列表中序列1所示;Rv1352蛋白抗原表位的核苷酸序列如序列表中序列2所示。 
所述的Rv0057蛋白的抗原表位位于融合蛋白的氨基端,Rv1352蛋白的抗原表位位于融合蛋白的梭基端。 
Rv0577抗原是一种功能未知的醛酮变位酶,仅在结核分枝杆菌复合群中分泌表达,而环境中的分枝杆菌不存在。该蛋白可在结核病患者的肺部表达,存在于多数活动性结核患者的痰液中,并可刺激机体产生体液免疫反应,是已知的可与结核患者血清反应的抗原之一。 
Rv0057抗原是结核分枝杆菌一个功能未知的蛋白,而Rv1352抗原是结核分枝杆菌复合群保守的一个外膜蛋白,与Rv1351在一个操纵子。它们均可刺激T细胞反应产生IFN-γ,虽然目前国内外尚未见该蛋白在结核病血清学诊断方面的研究报道,但本发明人发现这两种抗原的融合蛋白具有很好的抗原性,可与血清中抗结核 抗体反应,具有较高的灵敏度和特异性(分别为66.7%和91.8%)。 
将上述Rv0057和Rv1352两种结核分枝杆菌蛋白关键的抗原表位依次连接,并删除无抗原表位区域,从而提高结核抗体检测的灵敏度和特异性,实现结核病患者的早期发现。 
本发明提出的结核分枝杆菌特异性多抗原表位的融合蛋白Rv0057-Rv1352,是选择结核分枝杆菌两种蛋白Rv0057和Rv1352关键的抗原表位,并将其依次连接,通过基因工程技术将其克隆、表达、纯化。 
本发明提出上述融合蛋白Rv0057-Rv1352的制备(构建)方法,包括如下步骤: 
(1)两个蛋白抗原表位融合的设计:分析结核分枝杆菌Rv0057、Rv1352的基因序列和蛋白质结构,确定两个蛋白抗原表位融合的区域、组合和顺序;依次将Rv0057和Rv1352蛋白抗原表位连接、形成融合蛋白;Rv0057蛋白的抗原表位位于融合蛋白的氨基端,Rv1352蛋白的抗原表位位于融合蛋白的梭基端。 
(2)两个蛋白融合的克隆:通过基因工程技术进行克隆。 
①在Rv0057上游引物添加Nhe I酶切位点,在Rv0057下游引物添加编码3个疏水性氨基酸的DNA序列和Spe I、Xho I酶切位点,将PCR扩增产物用Nhe I和Xho I双酶切后,插入用Nhe I和Xho I双酶切后的pET30aSETB质粒载体中。转化到大肠杆菌DH5α受体菌中。经过质粒提取,经T7正向测序验证,获得核苷酸序列与设计完全一致的重组质粒Rv0057/pET30aSETB,其核苷酸序列如序列表中序列3所示。 
②在Rv1352上游引物添加Nhe I酶切位点和编码1个疏水性氨基酸的DNA序列,在Rv1352下游引物添加Spe I、Xho I酶切位点,将PCR扩增产物用Nhe I和Xho I双酶切后,插入用Nhe I和Xho I双酶切后的pET30aSETB质粒载体中。转化到大肠杆菌DH5α受体菌中。经过质粒提取,经T7正向测序验证,获得核苷酸序列与设计完全一致的重组质粒Rv1352/pET30aSETB,其核苷酸序列如序列表中序列4所示。 
③用Spe I和Xho I双酶切Rv0057/pET30aSETB质粒作为载体;用Nhe I和XhoI双酶切Rv1352/pET30aSETB质粒,获得的Rv1352片段插入Rv0057/pET30aSETB质粒载体中。转化到大肠杆菌BL21(DE3)受体菌中。经过质粒提取,经T7和T7t双向测序验证,获得核苷酸序列与设计完全一致的重组质粒Rv0057-Rv1352/pET30aSETB,其核苷酸序列如序列表中序列5所示,并使Rv0057蛋白抗原表位与Rv1352蛋白抗原表位之间通过连接臂相联接,表明已成功构建了具有多抗原表位的融合蛋白重组表达质粒。 
(3)多抗原表位融合蛋白的鉴定:Rv0057-Rv1352大肠杆菌基因工程株经过诱导、表达、纯化,SDS-PAGE电泳、鉴定,及Westhern免疫印迹反应和ELISA分析,表明获得的纯化的融合蛋白与实际设计的大小相符,并具有很好的抗原性。 
本发明的新型结核分枝杆菌特异性融合蛋白Rv0057-Rv1352可应用于制备结核抗体诊断试剂盒,对结核病具有较高的抗原检测灵敏度和特异性。本发明将Rv0057和Rv1352蛋白的抗原表位依次通过连接臂连接而构建了多抗原表位的融合蛋白Rv0057-Rv1352。研究结果表明,与目前商品化的抗体检测试剂盒相比,本发明所制备的结核分枝杆菌特异性融合蛋白,在结核病血清学诊断方面均具有敏度高、特异性强、并与其它抗原具有互补性的优点,可用于检测血清、胸水等体液标本中特异的抗结核抗体。 
本发明的特点及技术效果: 
本发明通过基因工程技术克隆、表达、纯化结核分枝杆菌Rv0057-Rv1352重组融合蛋白,通过多种不同的联合作为结核病抗体检测的抗原,该种融合蛋白能用于检测结核病患者的抗体水平。 
本发明人研究证明应用结核分枝杆菌Rv0057-Rv1352重组融合蛋白抗原检测结核病人的灵敏度和特异性分别为66.7%、91.8%。 
本发明结核分枝杆菌重组Rv0057-Rv1352融合蛋白抗原可大规模生产,且成本相对较低。 
本发明的融合蛋白可作为新型结核抗体检测的联合抗原之一,用于检测血清、胸水等体液样品中特异的抗结核抗体,可用于结核病临床血清学诊断。 
附图说明
图1为基因合成的Rv0057DNA片段的琼脂糖电泳图。 
图2为基因合成的Rv1352DNA片段的琼脂糖电泳图。 
图3为Rv0057-Rv1352/pET30aSETB大肠杆菌工程菌IPTG诱导前后SDS-PAGE结果。 
图4为Rv0057-Rv1352/pET30aSETB大肠杆菌工程菌的表达形式和纯化的SDS-PAGE结果。 
具体实施方式
本发明提出的结核分枝杆菌特异性多抗原表位融合蛋白及其制备方法和应用结合实施例及附图详细说明如下: 
本发明提出的结核分枝杆菌特异性多抗原表位的融合蛋白Rv0057-Rv1352,是选择结核分枝杆菌两种蛋白Rv0057和Rv1352关键的抗原表位,并将其依次连接, 通过基因工程技术将其克隆、表达、纯化。 
上述的融合蛋白Rv0057-Rv1352的制备方法,包括: 
(1)两个蛋白抗原表位融合的设计:分析结核分枝杆菌Rv0057、Rv1352的基因序列和蛋白质结构后,确定两个蛋白抗原表位融合的区域、组合和顺序;依次将Rv0057和Rv1352蛋白抗原表位连接、形成融合蛋白;Rv0057蛋白的抗原表位位于融合蛋白的氨基端,Rv1352蛋白的抗原表位位于融合蛋白的梭基端。由Rv0057和Rv1352两种蛋白抗原的关键表位依次连接构成,称为Rv0057-Rv1352; 
(2)两个蛋白融合的克隆:通过基因工程技术进行克隆。 
①在Rv0057上游引物添加Nhe I酶切位点,在Rv0057下游引物添加编码3个疏水性氨基酸的DNA序列和Spe I、Xho I酶切位点,将基因合成的Rv0057PCR产物片段用Nhe I和Xho I双酶切后,插入用Nhe I和Xho I双酶切后的pET30aSETB质粒载体中。转化到大肠杆菌DH5α受体菌中。经过质粒提取,经T7正向测序验证,获得核苷酸序列与设计完全一致的重组质粒Rv0057/pET30aSETB。 
②在Rv1352上游引物添加Nhe I酶切位点和编码1个疏水性氨基酸的DNA序列,在Rv1352下游引物添加Spe I、Xho I酶切位点,将基因合成的Rv1352PCR产物片段用Nhe I和Xho I双酶切后,插入用Nhe I和Xho I双酶切后的pET30aSETB质粒载体中。转化到大肠杆菌DH5α受体菌中。经过质粒提取,经T7正向测序验证,获得核苷酸序列与设计完全一致的重组质粒Rv1352/pET30aSETB。 
③用Spe I和Xho I双酶切Rv0057/pET30aSETB质粒作为载体;用Nhe I和XhoI双酶切Rv1352/pET30aSETB质粒,获得的Rv1352片段插入Rv0057/pET30aSETB质粒载体中。转化到大肠杆菌BL21(DE3)受体菌中。经过质粒提取,经T7和T7t双向测序验证,获得核苷酸序列与设计完全一致的重组质粒Rv0057-Rv1352/pET30aSETB,并使Rv0057抗原与Rv1352抗原之间通过连接臂相联接,表明已成功构建了具有多抗原表位的融合蛋白重组表达质粒。 
实施例1 
一、通过基因工程技术克隆Rv0057抗原表位编码基因: 
1、依据序列表中的序列1设计与合成扩增Rv0057抗原表位的一对引物 
上游引物(5’端含限制性内切酶Nhe I) 
5’-CTAGCTAGCGTGGTGACCGCGGTCGG-3' 
下游引物(5’端含限制性内切酶Xho I和Spe I) 
5'- 
CCGCTCGAGTTATTATTAACTAGTACCGCCACCGGTCATCAACGACCGCCA-3' 
扩增片段:555bp 
2、Rv0057基因合成 
根据上面的设计,通过基因合成Rv0057555bp的PCR产物,于1.2%琼脂糖凝胶电泳鉴定合成的基因片段。图1为基因合成的Rv0057DNA片段的琼脂糖电泳图,测序结果证明,图中箭头所指的DNA条带就是Rv0057基因合成PCR产物在1.2%琼脂糖电泳胶上的位置;左侧第一个泳道为TaKaRa公司的DL2000分子量标准(从上到下的6个条带依次为2000bp、1000bp、750bp、500bp、250bp、100bp)。 
3、回收目的基因片段: 
琼脂糖凝胶电泳结束后,在长波紫外线照射下,用干净的手术刀片在胶上切下要回收DNA的琼脂块,放入无菌的离心管中。参照琼脂糖DNA回收试剂盒中的说明书回收目的基因片段,定量后,贮存于-20℃备用。 
4.重组质粒的构建: 
用限制性内切酶Nhe I和Xho I双酶切纯化后的Rv0057基因合成PCR产物和表达载体pET30aSETB质粒DNA,于1%琼脂糖凝胶电泳,切取Rv0057基因片段和pET30aSETB质粒DNA片段,用琼脂糖凝胶电泳回收试剂盒纯化。定量后,Rv0057基因片段与pET30aSETB质粒DNA片段按2:1的摩尔比混合,10μl反应体系如下: 
Figure BDA00001854053900061
混匀后置于16℃连接过夜,75℃灭活10min,冰浴后直接进行转化。 
5.连接产物的转化: 
次日取目的基因片段与载体pET30aSETB连接产物5μl加入含有100μl大肠杆菌DH5α感受态细胞的离心管中,冰浴0.5h;放入42℃水浴箱热休克90s,迅速取出冰浴2min;加入LB培养液400μl,37℃恒温摇床培养1h;加入X-Gal60μl,IPTG4μl,混匀,取出200-400μl涂布于含有50μg/ml硫酸卡那霉素的LB平板上。倒置平板,放37℃恒温培养箱培育14h。 
6.质粒的提取: 
根据蓝白斑筛选,随机挑取白色菌落6个,分别接种于5ml含有60μg/ml氨苄青霉素的LB培养基中,37℃振荡培养过夜;根据《分子克隆》碱裂解方法,小量提取质粒,定量后,置-20℃储存备用。 
7.鉴定重组质粒: 
(1)PCR扩增鉴定:以挑选的菌落质粒DNA为模板,以上游和下游引物进行PCR扩增鉴定。扩增产物在1%琼脂糖凝胶中电泳,阳性重组质粒命名为Rv0057/pET30aSETB。 
(2)序列测定:直接挑选一个克隆送公司进行T7通用引物正向测序验证测序。测序结果与设计的基因组序列一致,其核苷酸序列如下,在序列表中如序列3所示,其中,GCTAGC为Nhe I酶切位点,GGTGGCGGT作为连接臂,ACTAGT为Spe I,CTCGAG为Xho I。 
GGGGGCGGTAATTCCCTCTAGAATAATTTTGTTTAACTTTAAGAAGGAGATATA 
CATATGCGGGGTTCTCATCATCATCATCATCATGGTATGGCTAGCGTGGTGAC 
CGCGGTCGGCCGCCGCCGGGGTTTCGCCATGCCCTGGGTGTCCACCGCACGG 
TCCGGTGCGGTGATGCTGGCGAACTATTCGGCCGGCGTTTGCGGGCGGGTGTC 
TTCACCGGGCCTTAACGTCAGGAAAATGTGTCTGAAAGCCAACACGCCCGGC 
GCGGTAACCTGGCTCGACACGCCGAAGAGATTCTTGTCCACACAAACGGCGT 
CGCGTTGTATGGCCGTTAACAGCAGTGATGTCGTAACGGGCCGTATTGATCCAC 
AGGTTCTCCACACCCCGCTCAACACAGACGTCGACGGATATGCACATGCGATG 
CACAGCTCCATAAACAGTGGCCCCTTGGAGTACTTGCCAGCAACGTTTAGCGT 
CTTCCCGGCGCTAGGCGATGTGGGTGACTTGGGCGGTGGTGTCGGTGCGGCG 
ACTTACGCTCTGGATAGGTTGTCGAATATGCGTTCGGGTGCTTGTGTCGGAGG 
AGGTGAGAGCCCATGGCGGTCGTTGATGACCGGTGGCGGTACTAGTTAATAAT 
AACTCGAGCACCACCACCACCACCACTGAGATCCGGCTGCTAACAAAGCCCG 
AAAGGAAGCTGAGTTGGCTGCTGCCACCGCTGAGCAATAACTAGCATAACCC 
CTTGGGGCCTCTAAACGGGTCTTGAGGGGTTTTTTGCTGAAAGGAGGAACTAT 
ATCCGGATTGGCGAATGGGACGCGCCCTGTAGCGGCGCATTAAGCGCGGCGG 
GTGTGGTGGTTACGCGCAGCGTGACCGCTACACTTGCCAGCGCCCTAGCGCCC 
GCTCCTTTCGCTTTCTTCCCTTCCTTTCTCGCCACGTTCGCCGGCTTTCCCCGT 
CAAGCTCTAAATCGGGGGCTCCCTTTAGGGTTCCGATTTAGTGCTTTACGGCAC 
CTCGACCCCAAAAACTTGATTAGGTGATGGTTCACGTAGTGGCATCGCCCTGA 
TAGACGTTTTCGCCCTTTGACGTGGAGTCCACGTTCTTATAGTGGACTCTGTCA 
AACTGGAACAACACTCACCCTATCTCGTCTATTCTTTGATTTATAGCATTTGCGA 
ATCGCTATGGTTAAATGACCTGATACAAACTACGGCGAATTAAAAAATTAACGC 
CCTTACAA 
二、通过基因工程技术克隆Rv1352抗原表位编码基因: 
1、依据序列表中的序列2设计与合成扩增Rv1352抗原表位的一对引物 
上游引物(5’端含限制性内切酶Nhe I) 
5’-CTAGCTAGCGGTGCACGCGCCGAAACC-3' 
下游引物(5’端含限制性内切酶Xho I和Spe I) 
5'- 
CCGCTCGAGTTATTATTAACTAGTACCGCCACCAGAGATACGCATCCAAAGCT-3'
扩增片段:333bp 
2、Rv1352基因合成 
根据上面的设计,通过基因合成Rv1352333bp的PCR产物,于1.2%琼脂糖凝胶电泳鉴定合成的基因片段。图2为基因合成的Rv1352DNA片段的琼脂糖电泳图,测序结果证明,图中箭头所指的DNA条带就是Rv1352基因合成PCR产物在1.2%琼脂糖电泳胶上的位置;左侧第一个泳道为TaKaRa公司的DL2000分子量标准(从上到下的6个条带依次为2000bp、1000bp、750bp、500bp、250bp、100bp)。 
3、回收目的基因片段: 
琼脂糖凝胶电泳结束后,在长波紫外线照射下,用干净的手术刀片在胶上切下要回收DNA的琼脂块,放入无菌的离心管中。参照琼脂糖DNA回收试剂盒中的说明书回收目的基因片段,定量后,贮存于-20℃备用。 
4.重组质粒的构建: 
用限制性内切酶Nhe I和Xho I双酶切纯化后的Rv1352基因合成PCR产物和表达载体pET30aSETB质粒DNA,于1%琼脂糖凝胶电泳,切取Rv1352基因片段和pET30aSETB质粒DNA片段,用琼脂糖凝胶电泳回收试剂盒纯化。定量后,Rv1352基因片段与pET30aSETB质粒DNA片段按2:1的摩尔比混合,10μl反应体系如下: 
Figure BDA00001854053900081
混匀后置于16℃连接过夜,75℃灭活10min,冰浴后直接进行转化。 
5.连接产物的转化: 
次日取目的基因片段与载体pET30aSETB连接产物5μl加入含有100μl大肠杆 菌DH5α感受态细胞的离心管中,冰浴0.5h;放入42℃水浴箱热休克90s,迅速取出冰浴2min;加入LB培养液400μl,37℃恒温摇床培养1h;加入X-Gal60μl,IPTG4μl,混匀,取出200-400μl涂布于含有50μg/ml硫酸卡那霉素的LB平板上。倒置平板,放37℃恒温培养箱培育14h。 
6.质粒的提取: 
根据蓝白斑筛选,随机挑取白色菌落6个,分别接种于5ml含有60μg/ml氨苄青霉素的LB培养基中,37℃振荡培养过夜;根据《分子克隆》碱裂解方法,小量提取质粒,定量后,置-20℃储存备用。 
7.鉴定重组质粒: 
(1)PCR扩增鉴定:以挑选的菌落质粒DNA为模板,以上游和下游引物进行PCR扩增鉴定。扩增产物在1%琼脂糖凝胶中电泳,阳性重组质粒命名为Rv1352/pET30aSETB。 
(2)序列测定:直接挑选一个克隆送公司进行T7通用引物正向测序验证测序。测序结果与设计的基因组序列一致,其核苷酸序列如下,在序列表中如序列4所示,其中,GCTAGC为Nhe I酶切位点,GGTGGCGGT为连接臂,ACTAGT为Spe I,CTCGAG为Xho I。 
TTGGAGGGTAATTACCTCTAGAATAATTTTGTTTAACTTTAAGAAGGAGATATA 
CATATGCGGGGTTCTCATCATCATCATCATCATGGTATGGCTAGCGGTGCACG 
CGCCGAAACCGGTGAGCAATTCCCCGGGGATGGGGTGTTTCTCGTGGGAACT 
GACATTGCGCCAGGCACCTACCGCACGGAGGGGCCGTCGAATCCCCTTATTTT 
GGTGTTCGGCAGGGTGTCCGAGCTCTCAACCTGCTCATGGTCGACACACAGC 
GCACCCGAGGTGAGCAATGAGAACATTGTCGACACCAACACCTCATGGGCC 
CGATGTCAGTGGTGATCCCGCCGACCGTGGCAGCCTTCCAGACGCATAACTGC 
AAGCTTTGGATGCGTATCTCTGGTGGCGGTACTAGTTAATAATAACTCGAGCAC 
CACCACCACCACCACTGAGATCCGGCTGCTAACAAAGCCCGAAAGGAAGCTG 
AGTTGGCTGCTGCCACCGCTGAGCAATAACTAGCATAACCCCTTGGGGCCTCT 
AAACGGGTCTTGAGGGGTTTTTTGCTGAAAGGAGGAACTATTATCCGGATTGGC 
GAATGGGACGCGCCCTGTAGCGGCGCATTAAGCGCGGCGGGTGTGGTGGTTA 
CGCGCAGCGTGACCGCTACACTTGCCAGCGCCCTAGCGCCCGCTCCTTTCGCT 
TTCTTCCCTTCCTTTCTCGCCACGTTCGCCGGCTTTCCCCGTCAAGCTCTAAAT 
CGGGGGCTCCCTTTAGGGTTCCGATTTAGTGCTTTACGGCACCTCGACCCCAA 
AAAACTTGATTAGGGTGATGGTTCACGTAGTGGGCCATCGCCCTGATAGACGG 
TTTTTCGCCCTTTGACGTTGGAGTCCACGTTCTTTAATAGTGGACTCTTGTTCC 
AAACTGGAACAACACTCAACCCTATCTCGGTCTATTCTTTTGATTTATAAAGGA 
TTTTGCCGATTTCGGCCTATTGGTTAAAAATGAGCTGATTTAACAAAATTTAAC 
GCGAATTTACAAATATTAACGCTTACAATTTAGTGGCACTTTTCCGGGAAATGG 
GCCGCGGAACCCCTATTTTGTTATTTTTTCTAAATACATTCCAAATATGTATCC 
GCCTCATGAATAATTCTTAGAAAACTCCATTCGAGGCATCGATGAAACTGCATT 
TATTTCTTATCCGGATTATTCATACCTATTTTTGAAAGGCGTTCCTGGATGAAGG 
AAACTCCCTAGCGAGCTTCTAGGATGGCGAGATTCCTGGGTAATCCGGATTTC 
GCGGATTCCGCAATCATGGTTA 
三、通过基因工程技术克隆Rv0057-Rv1352融合编码基因: 
1.重组质粒的构建: 
用限制性内切酶Spe I和Xho I双酶切Rv0057/pET30aSETB质粒DNA,用NheI和Xho I双酶切Rv1352/pET30aSETB质粒DNA,于1%琼脂糖凝胶电泳,切取Rv0057/pET30aSETB质粒片段和Rv1352基因片段,用琼脂糖凝胶电泳回收试剂盒纯化。定量后,Rv1352基因片段与Rv0057/pET30aSETB质粒DNA片段按2:1的摩尔比混合,10μl反应体系如下: 
Figure BDA00001854053900101
混匀后置于16℃连接过夜,75℃灭活10min,冰浴后直接进行转化。 
2.连接产物的转化: 
次日取Rv1352基因片段与Rv0057/pET30aSETB DNA片段连接产物5μl加入含有100μl大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞的离心管中,冰浴0.5h;放入42℃水浴箱热休克90s,迅速取出冰浴2min;加入LB培养液400μl,37℃恒温摇床培养1h;加入X-Gal60μl,IPTG4μl,混匀,取出200-400μl涂布于含有50μg/ml硫酸卡那霉素的LB平板上。倒置平板,放37℃恒温培养箱培育14h。 
3.质粒的提取: 
根据蓝白斑筛选,随机挑取白色菌落6个,分别接种于5ml含有60μg/ml氨苄青霉素的LB培养基中,37℃振荡培养过夜;根据《分子克隆》碱裂解方法,小量提取质粒。 
4.鉴定重组质粒: 
(1)PCR扩增鉴定:以挑选的菌落质粒DNA为模板,分别以Rv0057和Rv1352上游和下游引物进行PCR扩增鉴定。扩增产物在1%琼脂糖凝胶中电泳,阳性重组质粒命名为Rv0057-Rv1352/pET30aSETB。 
(2)序列测定:直接挑选一个克隆送公司进行T7和T7t双向测序验证测序。测序结果与设计的基因组序列一致,其核苷酸序列如下,在序列表中如序列5所示,其中,GCTAGC为Nhe I酶切位点,GGTGGCGGT为连接臂,ACTAGC为Nhe I和Spe I产生的位点,编码Thr和Ser,ACTAGT为Spe I。 
TAAGTTACGGTACAATTCCCTCTAGAATAATTTTGTTTAACTTTAAGAAGGAGA 
TATACATATGCGGGGTTCTCATCATCATCATCATCATGGTATGGCTAGCGTGGTG 
ACCGCGGTCGGCCGCCGCCGGGGTTTCGCCATGCCCTGGGTGTCCACCGCAC 
GGTCCGGTGCGGTGATGCTGGCGAACTATTCGGCCGGCGTTTGCGGGCGGGTG 
TCTTCACCGGGCCTTAACGTCAGGAAAATGTGTCTGAAAGCCAACACGCCCG 
GCGCGGTAACCTGGCTCGACACGCCGAAGAGATTCTTGTCCACACAAACGGC 
GTCGCGTTGTATGGCCGTTAACAGCAGTGATGTCGTAACGGGCCGTATTGATCC 
ACAGGTTCTCCACACCCCGCTCAACACAGACGTCGACGGATATGCACATGCGA 
TGCACAGCTCCATAAACAGTGGCCCCTTGGAGTACTTGCCAGCAACGTTTAGC 
GTCTTCCCGGCGCTAGGCGATGTGGGTGACTTGGGCGGTGGTGTCGGTGCGGC 
GACTTACGCTCTGGATAGGTTGTCGAATTATGCGTTCGGGTGCTTGTGTCGGAG 
GAGGTGAGAGCCCATGGCGGTCGTTGATGACCGGTGGCGGTACTA GCGGTGC 
ACGCGCCGAAACCGGTGAGCAATTCCCCGGGGATGGGGTGTTTCTCGTGGGA 
ACTGACATTGCGCCAGGCACCTACCGCACGGAGGGGCCGTCGAATCCCCTTAT 
TTTGGTGTTCGGCAGGGTGTCCGAGCTCTCAACCTGCTCATGGTCGACACACA 
GCGCACCCGAGGTGAGCAATGAGAACATTGTCGACACCAACACCTCTATGGG 
CCCGATGTCAGTGGTGATCCCGCCGACCGTGGCAGCCTTCCAGACGCATAACT 
GCAAGCTTTGGATGCGTATCTCTGGTGGCGGTACTA GTTAATAATAACTCGAGC 
ACCACCACCACCACCACTGAGATCCGGCTGCTAACAAAGCCCGAAAGAGCGA 
GTCAC 
四、Rv0057-Rv1352工程菌的诱导表达及鉴定 
将Rv0057-Rv1352大肠杆菌工程菌接种于5ml含50ug/ml硫酸卡那霉素的LB培养液中,置37℃恒温振荡器培养过夜,然后按1%转种到10ml含50μg/ml硫酸卡那霉素的LB培养液中,置37℃恒温振荡器培养至OD600为0.6-0.8时,加入IPTG, 诱导3-4hr。 
将1×载样缓冲液150μl加入来自1ml菌液的沉淀样本,混悬后,置100℃沸水浴5min,于12000rpm离心10min,取上清液40μl进行SDS-PAGE,电泳条件为:积层胶恒流10mA,分离胶恒压15mA,待溴酚蓝电泳至凝胶底部,停止电泳。用考马斯亮蓝R250染色液染色6h;用脱色液脱色至条带清晰。
Rv0057-Rv1352/pET30aSETB菌体在相对分子质量30.5kDa位置附近有浓重的表达条带出现,诱导3-4小时表达量最多,结果见图3。 
图3为Rv0057-Rv1352/pET30aSETB大肠杆菌工程菌IPTG诱导前后SDS-PAGE结果,其中: 
1:蛋白质分子量标准(北京天根生化科技有限公司预染蛋白Marker III:94,60,45,27,18kD); 
2:基因工程菌诱导前; 
3:基因工程菌诱导后1小时; 
4:基因工程菌诱导后2小时; 
5:基因工程菌诱导后3小时; 
6:基因工程菌诱导后4小时。 
七、Rv0057-Rv1352重组蛋白的纯化 
将诱导菌超声破碎后,采用Novagen公司生产的His.Bind蛋白纯化试剂盒按试剂盒说明书纯化Rv0057-Rv1352融合蛋白,SDS-PAGE电泳可见纯化的30.5kDa蛋白呈一条带,结果见图4。 
图4为Rv0057-Rv1352/pET30aSETB大肠杆菌工程菌的表达形式和纯化的SDS-PAGE结果,其中: 
1:蛋白质分子量标准(北京天根生化科技有限公司预染蛋白Marker III:94,60,45,27,18kD); 
2:基因工程菌诱导前; 
3:基因工程菌诱导后; 
4:基因工程菌表达菌体超声破碎后高速离心分离出的上清(可溶性部分)样品; 
5:基因工程菌表达菌体超声破碎后高速离心分离出的沉淀(不可溶性部分)样品;
6:纯化后蛋白样品。 
以下结合具体的实施例详细说明本发明的应用,各实施例中的抗原原料均可通 过上述制备方法获得,但不应构成对本发明实施范围的限定。 
实施例2 
将本发明实施例1所构建、纯化的Rv0057-Rv1352融合蛋白应用于结核病的血清学诊断。以其作为化学发光免疫实验的诊断抗原,应用于临床标本的试验,获得了较好的诊断效果,与目前商品化的三个结核抗体检测试剂盒比较,显著地提高了结核病诊断的灵敏度。ELISA检测程序如下所示: 
1.实验标本:共选择103例血清标本,分为两组: 
(1)结核病组:临床上经影像学、实验室检查及抗结核治疗而确诊的活动性结核病患者54例,其中男35例,女19例,平均年龄43.1±18.8岁。包括肺结核、结核性胸膜炎、结核性心包炎、结核性脑膜炎、泌尿系结核等。 
(2)非结核对照组:临床上经影像学、实验室检查及治疗效果而确诊的非结核呼吸疾病患者49例,其中男25例,女24例,平均年龄61.3±20.8岁。包括肺炎、慢性支气管肺炎、支气管哮喘、肺癌、支气管扩张合并感染、呼吸道感染等。 
2.实验仪器和试剂 
仪器:化学发光分析仪KPS-KM为北京科美东雅科技发展有限公司公司产品。 
试剂:Rv0057-Rv1352融合蛋白,3个商品化的结核抗体诊断试剂盒(包括韩国SD标准诊断公司、上海奥普生物医药有限公司、北京现代高达生物技术有限责任公司),包被缓冲液(0.05mo1/L碳酸钠一碳酸氢钠缓冲液,pH9.6),封闭液(PBS-2%小牛血清),洗涤液(PBST,PBS-0.05%吐温,pH7.4),样本稀释液(PBST-2%小牛血清,pH7.4),酶标第二抗体(HPR标记的羊抗人IgG),化学发光底物液(用前15分钟将A与B试剂按1:1配制)。 
3.实验方法 
(1)抗原包被:用包被缓冲液将重组蛋白抗原稀释至10μg/ml,每孔加100μl。每板留1个孔,只加包被缓冲液,作为空白对照。置4℃过夜。次日用PBST洗板3次,3分钟/次。 
(2)封闭:每孔加PBS-2%小牛血清200μl,置37℃孵育1小时。用PBST洗板3次,3分钟/次。 
(3)加待检样品:用PBST-2%小牛血清稀释待检样品,充分混匀后,每孔加100μl,做2个平行孔;同时做空白、阴性及阳性孔对照,置37℃孵育40分钟。用PBST洗板3次,3分钟/次。 
(4)加酶标二抗:用PBST-2%小牛血清新鲜稀释酶标第二抗体,充分混匀后,每孔加100μl,置37℃孵育40分钟。用PBST洗板6次,8分钟/次。 
(5)加底物液:每孔加100μl新鲜配制的化学发光底物液,立即放入化学发光分析检测仪,5分钟读取发光强度。 
4.结果 
实验结果见表1,Rv0057-Rv1352融合蛋白用作抗原检测结核抗体的特异性(为91.8%)明显高于上海奥普生物医药有限公司(为66.7%)和北京现代高达生物技术有限责任公司(为84.8%)的结核抗体诊断试剂盒,略低于韩国SD标准诊断公司的结核抗体诊断试剂盒(为97.0%)。Rv0057-Rv1352融合蛋白的灵敏度(为66.7%)明显高于韩国SD标准诊断公司(为24.1%)、北京现代高达生物技术有限责任公司(为33.3%)的结核抗体诊断试剂盒和传统的涂片和培养(为20.4%),略低于上海奥普生物医药有限公司的结核抗体诊断试剂盒(为77.8%)。本发明的融合蛋白用作抗原检测结核抗体无论是菌阳还是菌阴的活动性结核病患者均具有较高的检出率。结果表明:与现有商品化的结核抗体检测试剂盒和传统的涂片、培养相比,本发明所构建的结核分枝杆菌特异性融合蛋白,在对结核病诊断的灵敏度和特异性方面具有明显的优势。因此,本发明在结核病血清学快速诊断方面具有广泛的应用前景。 
表1应用化学发光酶免疫方法检测结核和非结核血清中抗结核抗体 
Figure BDA00001854053900141
Figure IDA00001854054600031
Figure IDA00001854054600041
Figure IDA00001854054600051
Figure IDA00001854054600061
Figure IDA00001854054600071

Claims (4)

1.一种新型结核分枝杆菌特异性融合蛋白,其由Rv0057和Rv1352两种蛋白的抗原表位依次连接构成,Rv0057蛋白抗原表位的核苷酸序列如序列表中序列1所示;Rv1352蛋白抗原表位的核苷酸序列如序列表中序列2所示。
2.根据权利要求1所述的新型结核分枝杆菌特异性融合蛋白,其特征在于:所述的Rv0057蛋白的抗原表位位于融合蛋白的氨基端,Rv1352蛋白的抗原表位位于融合蛋白的梭基端。
3.权利要求1或2所述的新型结核分枝杆菌特异性融合蛋白的制备方法,包括如下步骤:
(1)分析结核分枝杆菌Rv0057、Rv1352的基因序列和蛋白质结构,确定两个蛋白抗原表位融合的区域、组合和顺序;依次将Rv0057和Rv1352蛋白抗原表位连接,形成融合蛋白;Rv0057蛋白的抗原表位位于融合蛋白的氨基端,Rv1352蛋白的抗原表位位于融合蛋白的梭基端;
(2)两个蛋白融合的克隆:
①在Rv0057上游引物添加Nhe I酶切位点,在Rv0057下游引物添加编码3个疏水性氨基酸的DNA序列和Spe I、Xho I酶切位点,将PCR扩增产物用Nhe I和Xho I双酶切后,插入用Nhe I和Xho I双酶切后的pET30aSETB质粒载体中;转化到大肠杆菌DH5α受体菌中;经过质粒提取,经T7正向测序验证,获得核苷酸序列与设计完全一致的重组质粒Rv0057/pET30aSETB;
②在Rv1352上游引物添加Nhe I酶切位点和编码1个疏水性氨基酸的DNA序列,在Rv1352下游引物添加Spe I、Xho I酶切位点,将PCR扩增产物用Nhe I和Xho I双酶切后,插入用Nhe I和Xho I双酶切后的pET30aSETB质粒载体中;转化到大肠杆菌DH5α受体菌中;经过质粒提取,经T7正向测序验证,获得核苷酸序列与设计完全一致的重组质粒Rv1352/pET30aSETB;
③用Spe I和Xho I双酶切Rv0057/pET30aSETB质粒作为载体;用Nhe I和XhoI双酶切Rv1352/pET30aSETB质粒,获得的Rv1352片段插入Rv0057/pET30aSETB质粒载体中;转化到大肠杆菌BL21(DE3)受体菌中;经过质粒提取,经T7和T7t双向测序验证,获得核苷酸序列与设计完全一致的重组质粒Rv0057-Rv1352/pET30aSETB,并使Rv0057蛋白抗原表位与Rv1352蛋白抗原表位之间通过连接臂相联接。
4.权利要求1或2所述的新型结核分枝杆菌特异性融合蛋白在制备结核抗体诊断试剂盒中的应用。
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103675293A (zh) * 2013-11-25 2014-03-26 广东体必康生物科技有限公司 Rv3872、Rv0164和/或Rv1926c蛋白在制备诊断活动性肺结核的产品中的用途
CN104805063A (zh) * 2014-01-24 2015-07-29 中国人民解放军第三〇九医院 结核分枝杆菌潜伏感染相关蛋白及其制备和应用
CN107304231A (zh) * 2016-04-18 2017-10-31 华中农业大学 一种结核分枝杆菌融合蛋白及应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1388378A (zh) * 2002-06-17 2003-01-01 四川大学 结核分枝杆菌诊断检测试剂
CN100999550B (zh) * 2006-01-10 2010-10-06 中国人民解放军第三○九医院 结核分枝杆菌融合蛋白及其应用
CN101235090B (zh) * 2008-01-31 2012-02-22 复旦大学 一种应用于结核病快速诊断的特异性融合蛋白及其构建方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1388378A (zh) * 2002-06-17 2003-01-01 四川大学 结核分枝杆菌诊断检测试剂
CN100999550B (zh) * 2006-01-10 2010-10-06 中国人民解放军第三○九医院 结核分枝杆菌融合蛋白及其应用
CN101235090B (zh) * 2008-01-31 2012-02-22 复旦大学 一种应用于结核病快速诊断的特异性融合蛋白及其构建方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
阳幼荣等: "三种结核分枝杆菌重组蛋白抗原血清学诊断价值的研究", 《中华临床医师杂志(电子版)》, vol. 6, no. 2, 31 January 2012 (2012-01-31), pages 382 - 384 *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103675293A (zh) * 2013-11-25 2014-03-26 广东体必康生物科技有限公司 Rv3872、Rv0164和/或Rv1926c蛋白在制备诊断活动性肺结核的产品中的用途
CN103675293B (zh) * 2013-11-25 2015-10-28 广东体必康生物科技有限公司 Rv3872、Rv0164和/或Rv1926c蛋白在制备诊断活动性肺结核的产品中的用途
CN104805063A (zh) * 2014-01-24 2015-07-29 中国人民解放军第三〇九医院 结核分枝杆菌潜伏感染相关蛋白及其制备和应用
CN107304231A (zh) * 2016-04-18 2017-10-31 华中农业大学 一种结核分枝杆菌融合蛋白及应用
CN107304231B (zh) * 2016-04-18 2021-01-01 华中农业大学 一种结核分枝杆菌融合蛋白及应用

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