CN102520167A - 液相芯片检测大肠杆菌o157的方法 - Google Patents
液相芯片检测大肠杆菌o157的方法 Download PDFInfo
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Abstract
一种液相芯片检测大肠杆菌O157的方法,属于免疫技术及食品卫生检测技术领域。本发明的目的是提供一种采用液相芯片技术用于检测大肠杆菌O157的方法,以便实现对大肠杆菌O157的快速检测。本发明首先制备液相芯片,捕获抗体与微球偶联形成偶联体,然后应用液相芯片检测大肠杆菌O157。本发明运用液相芯片技术,提供一种用于检测大肠杆菌O157(EscherichiacoliO157)的方法,以便实现对大肠杆菌O157的快速检测,为食品安全做出贡献。液相芯片是集合流式细胞技术、激光技术、数字信号处理技术及传统化学技术为一体的新型生物分子检测技术,其最大的特点是高通量,灵活性好,灵敏度高。
Description
技术领域
本发明属于免疫技术及食品卫生检测技术领域。
背景技术
大肠杆菌 O157:H7是肠出血性大肠埃希氏菌的主要血清型,是重要的人类致病菌,可引起出血性肠炎(HC) 、溶血性尿毒综合症( HUS) 、血栓性血小板减少性紫癜( TTP) 及死亡等。由于肠出血性大肠埃希菌( enterohemorrhagic E.coli, EHEC)O157:H7对人的致病力强,近年来世界范围内由该菌引起的不同规模、不同区域的爆发流行不断发生,发病呈明显上升趋势,已引起世界各国的高度重视。该菌主要通过食物、水以及直接接触感染,动物是其主要的宿主,因此今年来加强对进口冷冻肉类、禽类及其制品的检验力度。
发明内容
本发明的目的是提供一种采用液相芯片技术用于检测大肠杆菌O157的方法,以便实现对大肠杆菌O157的快速检测。
本发明由微球、捕获抗体、检测抗体、生物素标记的抗抗体、链霉亲和素-藻红蛋白组成,其中微球是羧基化的21号微球、捕获抗体是大肠杆菌O157单克隆抗体、检测抗体是大肠杆菌O157的多克隆抗体、生物素标记的抗抗体是经活化的生物素标记的羊抗兔IgG,捕获抗体和检测抗体均能特异与大肠杆菌O157结合,以红色激光激发其球型基质上的红色分类荧光,以绿色激光激发与生物素标记的抗抗体相结合的藻红蛋白,测定球型基质上结合的报告荧光分子的数量,用于间接确定球型基质上结合大肠杆菌O157的数量;
液相芯片的制备:捕获抗体与微球偶联形成偶联体
取微球原液室温恢复30min,用超声波清洗机进行超声10min,漩涡震荡30s,使微球均匀分布,用无菌水分别配制50mg/ml的EDC和NHS,然后取200ul 的微球原液置于1.5ml的离心管中,14000 rpm,离心5min,取出后弃上清,加入NHS和EDC各10ul,再加入80ul的活化缓冲液,混匀后,用铝箔纸包好,置于37℃摇床120 rpm,20min,然后14000 rpm,离心5min,小心移去上清,加入500ul稀释至250ug/ml的捕获抗体,重悬混匀,置于37℃摇床120 rpm,孵育2h,取出后离心弃上清,用500ul的PBS进行洗涤,洗涤后加入500ul 1%BSA的 PBS溶液,重悬微球,37℃水浴摇床孵育两个小时进行封闭,封闭后4℃保存;
液相芯片检测大肠杆菌O157的方法:
将已偶联的微球混合液室温恢复10min,漩涡振荡器震荡约3min,取约5000个微球,加入108 CFU/ml 的大肠杆菌O15710ul,用PBS-TBN补足体积到100ul,置于37℃摇床120rpm,1h,取出后离心弃上清,用200ul PBS-TBN洗两次,加入已稀释的检测抗体10ul,用PBS-TBN补足体积到100ul,置于37℃摇床120rpm,1h,取出后离心,弃上清,用PBS-TBN洗两次,然后加入已稀释的生物素标记的羊抗兔IgG 10ul,用PBS-TBN补足体积到100ul, 置于37℃摇床反应1h,取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗两次,再加入SA-PE,用PBS-TBN补足体积到100ul,置于37℃摇床反应,取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗涤两次,重悬于100ul PBS-TBN中,上机进行检测。
本发明运用液相芯片技术,提供一种用于检测大肠杆菌O157(Escherichia coli O157)的方法,以便实现对大肠杆菌O157的快速检测,为食品安全做出贡献。液相芯片是集合流式细胞技术、激光技术、数字信号处理技术及传统化学技术为一体的新型生物分子检测技术,其最大的特点是高通量,灵活性好,灵敏度高。
附图说明
图1是本法明捕获抗体最佳工作浓度;
图2是本发明灵敏度检测结果;
图3是本发明特异性的检测结果;
图4是本发明重复性检测。
具体实施方式
本发明所采用的技术方案是:通过大肠杆菌O157的特异抗体,与微球进行偶联后,制备出可以对大肠杆菌O157进行检测的液相芯片,在应用时,加入样品增菌液,使增菌液中的大肠杆菌O157被微球上的捕获抗体所捕获,检测抗体也与大肠杆菌O157结合后,再与生物素标记的抗抗体共同孵育,然后通过生物素与链霉亲和素-藻红蛋白反应,应用Luminex100检测系统实现对大肠杆菌O157的特异检测。
本发明涉及的检测大肠杆菌O157液相芯片主要由微球、捕获抗体、检测抗体、生物素标记的抗抗体、链霉亲和素-藻红蛋白(SA-PE)组成。其特征是,所述微球为羧基化的21号微球;所述捕获抗体是大肠杆菌O157的单克隆抗体(EcoliO157 mAb),所述检测抗体是大肠杆菌O157的多克隆抗体(EcoliO157 pAb),生物素标记的抗抗体是经活化的生物素标记的羊抗兔IgG(biotin-羊抗兔IgG);所述捕获抗体和检测抗体均能特异与大肠杆菌O157结合。以红色激光激发其球型基质上的红色分类荧光,以绿色激光激发与生物素标记的抗抗体相结合的藻红蛋白,测定球型基质上结合的报告荧光分子的数量,用于间接确定球型基质上结合大肠杆菌O157的数量。
上述的检测抗体是用于识别大肠杆菌O157的另一类抗体,其作用是将与液相芯片上捕获抗体结合的大肠杆菌O157与抗抗体结合,而抗抗体能与检测荧光偶联,间接将结合的大肠杆菌O157浓度与检测荧光的强度结合起来,从而实现对大肠杆菌O157的浓度进行定量测定。生物素标记的抗抗体通过生物素与链霉亲和素-藻红蛋白结合,最后通过Luminex100检测系统对大肠杆菌O157进行定性定量检测。
本发明所述的大肠杆菌O157液相检测芯片的制备方法,其步骤是:
(1)捕获抗体与微球偶联形成偶联体
取微球原液室温恢复30min,用超声波清洗机进行超声10min,漩涡震荡30s,使微球均匀分布。用无菌水分别配制50mg/ml的EDC和NHS。然后取200ul 的微球原液置于1.5ml的离心管中,14000 rpm,离心5min。取出后弃上清,加入NHS和EDC各10ul,再加入80ul的活化缓冲液。混匀后,用铝箔纸包好,置于37℃摇床120 rpm,20min,然后14000 rpm,离心5min,小心移去上清。加入500ul稀释至250ug/ml的捕获抗体,重悬混匀,置于37℃摇床120 rpm,孵育2h。取出后离心弃上清,用500ul的PBS进行洗涤,洗涤后加入500ul 1%BSA的 PBS溶液,重悬微球,37℃水浴摇床孵育两个小时进行封闭。封闭后4℃保存。
(2)应用液相芯片检测大肠杆菌O157的方法
将已偶联的微球混合液室温恢复10min,漩涡振荡器震荡约3min。取约5000个微球,加入108 CFU/ml 的大肠杆菌O15710ul,用PBS-TBN补足体积到100ul。置于37℃摇床120rpm,1h。取出后离心弃上清,用200ul PBS-TBN洗两次。加入已稀释的检测抗体10ul,用PBS-TBN补足体积到100ul。 置于37℃摇床120rpm,1h。取出后离心,弃上清,用PBS-TBN洗两次。然后加入已稀释的生物素标记的羊抗兔IgG 10ul,用PBS-TBN补足体积到100ul。 置于37℃摇床反应1h。取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗两次。再加入SA-PE,用PBS-TBN补足体积到100ul,置于37℃摇床反应,取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗涤两次。重悬于100ul PBS-TBN中,上机进行检测。
1.捕获抗体最佳工作浓度的确定
图1所示当单抗浓度为250ug/ml时,其MFI值达到最大,故单抗最佳的工作浓度为250ug/ml。
2.偶联是否成功的检测
生物素标记羊抗鼠IgG | 生物素标记羊抗兔IgG | |
MFI | 5678.5 | 213 |
MFI背景值 | 25 | 10 |
由上述结果可知单抗与微球偶联效果很好,且封闭效果也良好。
3. 正交实验结果—确定反应较优条件
根据上述结果可知实验条件A1B1C1D1为较优实验条件,即多抗工作浓度为1:100,生物素标记的羊抗兔IgG工作浓度为1:500,SA-PE的工作浓度为1ug/ml,生物素标记的抗体与SA-PE反应时间为30min。
4. 灵敏度检测结果
由图2可以看出,在菌的浓度达到103CFU/ml时仍可被检出。因此本方法的灵敏度较高,可达到103CFU/ml。
5.特异性的检测结果
用已建立的方法检测从图3中可看出此方法特异性良好,与其它的菌无交叉反应。
6. 重复性试验
在1d,5,d,7d用此方法分别检测阳性菌和阴性菌,由图4可见阳性菌,阴性菌MFI值上下浮动都不大,可证明本方法重复性较好。
7. 实际样品添加的检测结果
样品 | 细菌 | MFI |
绿豆 | 大肠杆菌O157 | 1643 |
绿豆 | 沙门氏菌 | 235 |
绿豆 | 空白 | 98 |
绿豆 | 空白 | 12(背景值) |
兔肉 | 大肠杆菌O157 | 1258 |
兔肉 | 沙门 | 273 |
兔肉 | 空白 | 212 |
兔肉 | 空白 | 14(背景值) |
分别在绿豆和兔肉中添加大肠杆菌O157,沙门氏菌,并做空白对照,由上表可见在添加了实际样品后应用本方法仍可将大肠杆菌O157检出。
Claims (1)
1.一种液相芯片检测大肠杆菌O157的方法,其特征在于:由微球、捕获抗体、检测抗体、生物素标记的抗抗体、链霉亲和素-藻红蛋白组成,其中微球是羧基化的21号微球、捕获抗体是大肠杆菌O157单克隆抗体、检测抗体是大肠杆菌O157的多克隆抗体、生物素标记的抗抗体是经活化的生物素标记的羊抗兔IgG,捕获抗体和检测抗体均能特异与大肠杆菌O157结合,以红色激光激发其球型基质上的红色分类荧光,以绿色激光激发与生物素标记的抗抗体相结合的藻红蛋白,测定球型基质上结合的报告荧光分子的数量,用于间接确定球型基质上结合大肠杆菌O157的数量;
液相芯片的制备:捕获抗体与微球偶联形成偶联体
取微球原液室温恢复30min,用超声波清洗机进行超声10min,漩涡震荡30s,使微球均匀分布,用无菌水分别配制50mg/ml的EDC和NHS,然后取200ul 的微球原液置于1.5ml的离心管中,14000 rpm,离心5min,取出后弃上清,加入NHS和EDC各10ul,再加入80ul的活化缓冲液,混匀后,用铝箔纸包好,置于37℃摇床120 rpm,20min,然后14000 rpm,离心5min,小心移去上清,加入500ul稀释至250ug/ml的捕获抗体,重悬混匀,置于37℃摇床120 rpm,孵育2h,取出后离心弃上清,用500ul的PBS进行洗涤,洗涤后加入500ul 1%BSA的 PBS溶液,重悬微球,37℃水浴摇床孵育两个小时进行封闭,封闭后4℃保存;
液相芯片检测大肠杆菌O157的方法:
将已偶联的微球混合液室温恢复10min,漩涡振荡器震荡约3min,取约5000个微球,加入108 CFU/ml 的大肠杆菌O15710ul,用PBS-TBN补足体积到100ul,置于37℃摇床120rpm,1h,取出后离心弃上清,用200ul PBS-TBN洗两次,加入已稀释的检测抗体10ul,用PBS-TBN补足体积到100ul,置于37℃摇床120rpm,1h,取出后离心,弃上清,用PBS-TBN洗两次,然后加入已稀释的生物素标记的羊抗兔IgG 10ul,用PBS-TBN补足体积到100ul, 置于37℃摇床反应1h,取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗两次,再加入SA-PE,用PBS-TBN补足体积到100ul,置于37℃摇床反应,取出后离心弃上清,用PBS-TBN洗涤两次,重悬于100ul PBS-TBN中,上机进行检测。
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---|---|
CN (1) | CN102520167B (zh) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103698534A (zh) * | 2013-12-11 | 2014-04-02 | 浙江中医药大学 | 兔血清免疫球蛋白液相悬浮芯片及其制备和应用 |
CN103913577A (zh) * | 2014-03-07 | 2014-07-09 | 吉林出入境检验检疫局检验检疫技术中心 | 一种基于光纤倏逝波生物传感器检测大肠杆菌o157:h7的方法 |
CN110632302A (zh) * | 2019-10-30 | 2019-12-31 | 中国农业科学院农产品加工研究所 | 一种同时检测待测样品中大肠杆菌和沙门氏菌的含量的方法 |
Citations (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1333831A (zh) * | 1998-12-08 | 2002-01-30 | 儿童医院及地区医疗中心 | 区分大肠杆菌0157∶h7和其它菌株的多态性位点 |
CN101470113A (zh) * | 2008-04-09 | 2009-07-01 | 湖南工业大学 | 一种检测大肠杆菌的新型荧光生物传感器的制备方法 |
CN101504416A (zh) * | 2008-05-20 | 2009-08-12 | 湖南工业大学 | 一种金包覆磁粒原位引发高灵敏化学发光检测大肠杆菌的新方法 |
CN101526535A (zh) * | 2009-04-14 | 2009-09-09 | 河南省豫康生物工程技术有限公司 | 多种肿瘤标志物联合检测液相芯片及其制备方法 |
CN101935703A (zh) * | 2010-08-27 | 2011-01-05 | 中国人民解放军第三军医大学第一附属医院 | 肠出血性大肠杆菌o157:h7多色量子点快速检测试剂盒及其检测方法 |
US20110166040A1 (en) * | 1997-09-05 | 2011-07-07 | Ibis Biosciences, Inc. | Compositions for use in identification of strains of e. coli o157:h7 |
CN102135538A (zh) * | 2010-09-03 | 2011-07-27 | 李克生 | 大肠杆菌o157:h7检测方法及其金标快速诊断试剂盒和制备方法 |
-
2011
- 2011-11-15 CN CN2011103605500A patent/CN102520167B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20110166040A1 (en) * | 1997-09-05 | 2011-07-07 | Ibis Biosciences, Inc. | Compositions for use in identification of strains of e. coli o157:h7 |
CN1333831A (zh) * | 1998-12-08 | 2002-01-30 | 儿童医院及地区医疗中心 | 区分大肠杆菌0157∶h7和其它菌株的多态性位点 |
CN101470113A (zh) * | 2008-04-09 | 2009-07-01 | 湖南工业大学 | 一种检测大肠杆菌的新型荧光生物传感器的制备方法 |
CN101504416A (zh) * | 2008-05-20 | 2009-08-12 | 湖南工业大学 | 一种金包覆磁粒原位引发高灵敏化学发光检测大肠杆菌的新方法 |
CN101526535A (zh) * | 2009-04-14 | 2009-09-09 | 河南省豫康生物工程技术有限公司 | 多种肿瘤标志物联合检测液相芯片及其制备方法 |
CN101935703A (zh) * | 2010-08-27 | 2011-01-05 | 中国人民解放军第三军医大学第一附属医院 | 肠出血性大肠杆菌o157:h7多色量子点快速检测试剂盒及其检测方法 |
CN102135538A (zh) * | 2010-09-03 | 2011-07-27 | 李克生 | 大肠杆菌o157:h7检测方法及其金标快速诊断试剂盒和制备方法 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
MONICA K.BORUCKI,ET AL: "Suspension microarray with Dendrimer Signal Amplification Allows Direct and High-Throughput Subtyping of Listeria monocytogenes from Genomic DNA", 《JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY》, vol. 43, no. 7, 31 July 2005 (2005-07-31), pages 3255 - 3259 * |
丁艳丽 等: "编码微球悬浮芯片与改良ELISA鼠疫杆菌检测方法的比较研究", 《中国国境卫生检疫杂志》, vol. 29, no. 1, 31 August 2006 (2006-08-31), pages 35 - 37 * |
杨永莉 等: "液相蛋白芯片与BSA-ELISA法检测病原抗体的方法比较", 《中国国境卫生检疫杂志》, vol. 32, no. 6, 31 December 2009 (2009-12-31) * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103698534A (zh) * | 2013-12-11 | 2014-04-02 | 浙江中医药大学 | 兔血清免疫球蛋白液相悬浮芯片及其制备和应用 |
CN103913577A (zh) * | 2014-03-07 | 2014-07-09 | 吉林出入境检验检疫局检验检疫技术中心 | 一种基于光纤倏逝波生物传感器检测大肠杆菌o157:h7的方法 |
CN110632302A (zh) * | 2019-10-30 | 2019-12-31 | 中国农业科学院农产品加工研究所 | 一种同时检测待测样品中大肠杆菌和沙门氏菌的含量的方法 |
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Publication number | Publication date |
---|---|
CN102520167B (zh) | 2013-12-04 |
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