CN102482341A

CN102482341A - 纯化vwf以增加非-脂质包封的病毒的去除

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Publication number: CN102482341A
Application number: CN2010800395824A
Authority: CN
Inventors: A·米特雷尔; M·哈斯拉赫尔; C·迈尔
Original assignee: Baxter Healthcare SA; Baxter International Inc
Current assignee: Baxter Healthcare SA; Baxter International Inc
Priority date: 2009-08-20
Filing date: 2010-08-20
Publication date: 2012-05-30
Also published as: KR101894600B1; AU2010284116B9; JP5838159B2; HUE026907T2; ES2562256T5; MX2012002129A; CN106008697B; AU2010284116A1; PT2467399E; KR20120065342A; DK2467399T3; BR112012003802B1; IN2012DN01849A; BR112012003802A2; CN106008697A; EP2467399A1; WO2011022657A1; EP2467399B2; US20110092681A1; ES2562256T3

Abstract

本发明提供纯化Von Willebrand因子(VWF)以增加非-脂质包封的病毒的去除的方法。

Description

纯化vwf以增加非-脂质包封的病毒的去除

相关申请的交叉引用

本申请根据35 U.S.C.§119(e)要求2009年8月20日提交的美国临时申请No.61/235,570的优先权权益，其公开内容通过引用的方式全部并入本文。

技术领域

通常，本发明涉及纯化VWF以增加非-脂质包封的病毒的去除的方法。

背景技术

Von Willebrand因子(VWF)以大小为约500至20,000kD的范围的一系列多聚体在血浆中循环的糖蛋白。VWF的多聚体形式由通过二硫键连接在一起的250kD的多肽子单元构成。VWF介导初始血小板粘附损坏的血管壁的内皮下。只有较大的多聚体表现出止血活性。假设内皮细胞分泌加大的聚合物形式的VWF，并且具有低分子量的那些形式(低分子量VWF)源自蛋白水解分裂。具有较大分子量的多聚体储存在内皮细胞的Weibel-Pallade体中，并且在刺激时释放。

VWF由作为前原-VWF的内皮细胞和巨核细胞合成，所述前原-VWF由较高程度的重复结构域构成。在信号肽分裂时，原-VWF通过其C-末端区域的二硫键连接而形成二聚体。所述二聚体起到多聚化的原体的作用，其由游离末端之间的二硫键连接控制。装配成多聚体后进行蛋白水解以除去前肽序列(Leyte et al.，Biochem.J.274(1991)，257-261)。

从VWF的克隆cDNA预测的初级翻译产物是2813-残基前体多肽(前原-VWF)。前原-VWF由22个氨基酸信号肽和741个氨基酸前肽构成，其中成熟VWF包含2050个氨基酸(RuggeriZ.A.，and Ware，J.，FASEB J.，308-316(1993))。

VWF中的缺陷引起Von Willebrand病(VWD)，其特征在于或多或少显著的出血显型。3型VWD是最严重的形式，其中VWF完全缺失，并且1型VWD涉及VWF的定量损失，其显型可以是非常温和的。2型VWD涉及VWF的定性缺陷并且可以和3型VWD一样严重。2型VWD具有多种亚型形式，一些相关于高分子量多聚体的损失或减少。2a型Von Willebrand综合征(VWS-2A)的特征在于中间体和较大多聚体的损失。VWS-2B的特征在于最高分子量多聚体的损失。涉及VWF的其他疾病和病患是本领域已知的。

来自治疗蛋白溶液的非-脂质包封的病毒的去除或失活传统上通过使用物理方法处理来完成，例如高温(例如，干燥加热、蒸汽加热、巴氏消毒法)、高能量射线的辐射(例如，紫外线(UV)射线或β辐射)、低pH、纳米过滤、或色谱法特别是亲和色谱法。然而，当纯化高分子量蛋白例如VWF时，这些方法通常是无效的，其不通过纳米过滤器和/或在使用加热或辐射处理时失去其效力或分子完整性。

当前管理规范要求生产商提出减少和/或失活脂质包封的和非-脂质包封的病毒以用于重复药物产品的问题。ICH″Guideline on Viral Safety Evaluations of BiotechnologyProducts″(Federal Register，1998，63(185)：51074-51084)提供生产商灵活性：如何将病毒问题考虑到产品类型中、生产方法和潜在污染性病毒的风险。这些规范指出病毒污染的风险是源自细胞系的所有生物产品共有的特征。这种污染可具有严重的临床后果，并且可源自源细胞系本身的污染(细胞底物)或源自生产中病毒的偶然引入。

而脂质-包封的病毒的失活可以通过溶剂/去污剂(S/D)处理方案非常有效地进行，因为它们较小尺寸和物理稳定性，非-脂质-包封的模型病毒(NLEV’s)的失活或去除可能是挑战性的。

因此，本领域存在需要开发方法以在VWF纯化的过程中有效地失活或去除非-脂质包封的病毒。

发明概述

本发明提供纯化VWF以增加非-脂质包封的病毒的去除的有效方法。本发明提供通过下列步骤纯化VWF以增加NLEV′s的去除的新型方法：进行产物负载步骤；以及在较高pH下纯化方法的洗涤步骤。

本领域已知的从NLEV′s纯化多肽的一种方法涉及使用纳米过滤。使用纳米过滤有效地分离蛋白和病毒中的原理利用了多肽和病毒之间的尺寸差异；有效的分离要求多肽的有效尺寸小于病毒，这允许多肽通过纳米过滤器的孔，而病毒得以保留。然而，如果多肽和病毒相对于彼此具有相当的尺寸，因为多肽和病毒都通过纳米过滤器的孔或都通不过，因此分离是有问题的。本文公开的方法通过下列方式克服了该问题：使用阳离子交换树脂而不是纳米过滤，并且在足够高的pH下负载和/或洗涤树脂以从病毒中分离多肽。

不受到理论的束缚，本文公开的方法可用于从多肽溶液中改善地去除NLEV，其中多肽具有某种尺寸和/或形态。足够大的多肽在多肽的等电点或更高点处可能具有局部带电特性，即，多肽的区域可以保持局部正电荷或负电荷，从而允许多肽吸附至柱树脂，而病毒则通过树脂。尽管在该pH下进行树脂的负载和/或洗涤，但是在多肽长度上该不均匀的电荷分布允许多肽保持附接至树脂。

本发明提供从含蛋白的溶液在去除非-脂质包封的病毒的方法，包括：使溶液中的蛋白负载到阳离子交换树脂上；以及在高于蛋白的等电点的pH下使用缓冲液洗涤树脂，以洗脱病毒。在一个方面中，在高于蛋白的等电点的pH下，缓冲液中的蛋白负载到树脂上以洗脱病毒。在另一方面中，缓冲液(不是洗涤步骤中使用的缓冲液)中的蛋白负载到树脂上，随后在高于蛋白的等电点的pH下使用缓冲液洗涤树脂。

在一个实施方案中，提供一种从含蛋白的溶液中去除非-脂质包封的病毒的方法，包括：在高于所述蛋白的等电点的pH下将所述溶液施加至阳离子交换树脂；以及使用第一洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂以形成洗脱液，所述第一洗涤缓冲液的pH等于或小于施加至所述阳离子交换树脂的溶液的pH。

在一个方面中，溶液的pH比蛋白的等电点高约1个pH单位。在其他方面中，溶液的pH比蛋白的等电点高约1.1，或约1.2，或约1.3，或约1.4，或约1.5，或约1.6，或约1.7，或约1.8，或约1.9，或约2.0，或约2.1，或约2.2，或约2.3，或约2.4，或约2.5，或约2.6，或约2.7，或约2.8，或约2.9，或约3.0，或约3.1，或约3.2，或约3.3，或约3.4，或约3.5，或约3.6，或约3.7，或约3.8，或约3.9，或约4.0，或约4.1，或约4.2，或约4.3，或约4.4，或约4.5，或约4.6，或约4.7，或约4.8，或约4.9，或约5.0，或约5.1，或约5.2，或约5.3，或约5.4，或约5.5，或约5.6，或约5.7，或约5.8，或约5.9，或约6.0或更多个pH单位、或更高。在这些实施方案中，pH大于约7。在相关的方面中，含蛋白的溶液的pH为约7.0。在其他方面中，含蛋白的溶液的pH为约7.1，或约7.2，或约7.3，或约7.4，或约7.5，或约7.6，或约7.7，或约7.8，或约7.9，或约8.0，或约8.1，或约8.2，或约8.3，或约8.4，或约8.5，或约8.6，或约8.7，或约8.8，或约8.9，或约9.0，或约9.1，或约9.2，或约9.3，或约9.4，或约9.5，或约9.6，或约9.7，或约9.8，或约9.9，或约10.0，或约10.1，或约10.2，或约10.3，或约10.4，或约10.5，或约10.6，或约10.7，或约10.8，或约10.9，或约11.0，或约11.1，或约11.2，或约11.3，或约11.4，或约11.5，或约11.6，或约11.7，或约11.8，或约11.9，或约12.0，或约12.1，或约12.2，或约12.3，或约12.4，或约12.5，或约12.6，或约12.7，或约12.8，或约12.9，或约13.0或更高。

在另一实施方案中，提供一种从含蛋白的溶液中去除非-脂质包封的病毒的方法，包括：将所述溶液施加至阳离子交换树脂；在高于施加至所述阳离子交换树脂的溶液的pH的pH下使用第一洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂；以及使用第二洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂以形成洗脱液，所述第一洗脱液的pH等于或小于所述第一洗涤缓冲液的pH。在一个方面中，第一洗涤缓冲液的pH比施加至阳离子交换树脂的溶液的pH高约1个pH单位。在其他方面中，第一洗涤缓冲液的pH比蛋白的等电点高约0.1，或约0.2，或约0.3，或约0.4，或约0.5，或约0.6，或约0.7，或约0.8，或约0.9，或约1.1，或约1.2，或约1.3，或约1.4，或约1.5，或约1.6，或约1.7，或约1.8，或约1.9，或约2.0，或约2.1，或约2.2，或约2.3，或约2.4，或约2.5，或约2.6，或约2.7，或约2.8，或约2.9，或约3.0，或约3.1，或约3.2，或约3.3，或约3.4，或约3.5，或约3.6，或约3.7，或约3.8，或约3.9，或约4.0，或约4.1，或约4.2，或约4.3，或约4.4，或约4.5，或约4.6，或约4.7，或约4.8，或约4.9，或约5.0，或约5.1，或约5.2，或约5.3，或约5.4，或约5.5，或约5.6，或约5.7，或约5.8，或约5.9，或约6.0，或约6.1，或约6.2，或约6.3，或约6.4，或约6.5，或约6.6，或约6.7，或约6.8.或约6.9，或约7.0，或约7.1，或约7.2，或约7.3，或约7.4，或约7.5，或约7.6，或约7.7，或约7.8，或约7.9，或约8或约8.1，或约8.2，或约8.3，或约8.4，或约8.5，或约8.6，或约8.7，或约8.8，或约8.9，或约9，或约9.1，或约9.2，或约9.3，或约9.4，或约9.5，或约9.6，或约9.7，或约9.8，或约9.9，或约10或更大pH单位、或更高。在这些实施方案中，第一洗涤缓冲液的pH大于约7。在其他方面中，第一洗涤缓冲液的pH为约7.1，或约7.2，或约7.3，或约7.4，或约7.5，或约7.6，或约7.7，或约7.8，或约7.9，或约8.0，或约8.1，或约8.2，或约8.3，或约8.4，或约8.5，或约8.6，或约8.7，或约8.8，或约8.9，或约9.0，或约9.1，或约9.2，或约9.3，或约9.4，或约9.5，或约9.6，或约9.7，或约9.8，或约9.9，或约10.0，或约10.1，或约10.2，或约10.3，或约10.4，或约10.5，或约10.6，或约10.7，或约10.8，或约10.9，或约11.0或更高.

在实施方案中，溶液中的蛋白是分子量为至少约150千道尔顿的多肽。在各种方面中，溶液中的蛋白是下列分子量的多肽：至少约175千道尔顿，或约180千道尔顿，或约190千道尔顿，或约200千道尔顿，或约210千道尔顿，或约220千道尔顿，或约230千道尔顿，或约240千道尔顿，或约250千道尔顿，或约260千道尔顿，或约270千道尔顿，或约280千道尔顿，或约290千道尔顿，或约300千道尔顿，或约310千道尔顿，或约320千道尔顿，或约330千道尔顿，或约340千道尔顿，或约350千道尔顿，或约360千道尔顿，或约370千道尔顿，或约380千道尔顿，或约390千道尔顿，或约400千道尔顿，或约410千道尔顿，或约420千道尔顿，或约430千道尔顿，或约440千道尔顿，或约450千道尔顿，或约460千道尔顿，或约470千道尔顿，或约480千道尔顿，或约490千道尔顿，或约500千道尔顿或更高。如本文所述，多肽还包含多聚体结构，在各种方面中，这种多聚体结构的分子量为至少约500千道尔顿。在相关方面中，多聚体结构的分子量为至少约510，或约520，或约530，或约540，或约550，或约560，或约570，或约580，或约590，或约600，或约610，或约620，或约630，或约640，或约650，或约660，或约670，或约680，或约690，或约700，或约710，或约720，或约730，或约740，或约750，或约760，或约770，或约780，或约790，或约800，或约810，或约820，或约830，或约840，或约850，或约860，或约870，或约880，或约890，或约900，或约910，或约920，或约930，或约940，或约950，或约960，或约970，或约980，或约990千道尔顿，或约1兆道尔顿，或约1.1兆道尔顿，或约1.2兆道尔顿，或约1.3兆道尔顿，或约1.4兆道尔顿，或约1.5兆道尔顿，或约1.6兆道尔顿，或约1.7兆道尔顿，或约1.8兆道尔顿，或约1.9兆道尔顿，或约2.0兆道尔顿，或约2.1兆道尔顿，或约2.2兆道尔顿，或约2.3兆道尔顿，或约2.4兆道尔顿，或约2.5兆道尔顿，或约2.6兆道尔顿，或约2.7兆道尔顿，或约2.8兆道尔顿，或约2.9兆道尔顿，或约3.0兆道尔顿，或约3.1兆道尔顿，或约3.2兆道尔顿，或约3.3兆道尔顿，或约3.4兆道尔顿，或约3.5兆道尔顿，或约3.6兆道尔顿，或约3.7兆道尔顿，或约3.8兆道尔顿，或约3.9兆道尔顿，或约4.0兆道尔顿，或约4.1兆道尔顿，或约4.2兆道尔顿，或约4.3兆道尔顿，或约4.4兆道尔顿，或约4.5兆道尔顿，或约4.6兆道尔顿，或约4.7兆道尔顿，或约4.8兆道尔顿，或约4.9兆道尔顿，或约5.0兆道尔顿或更高。

在一些实施方案中，阳离子交换树脂具有选自羧甲基(CM)、磺基烷基(SP，SE)、硫酸酯和甲基磺酸根(S)以及任何其他带负电荷的配体的带负电荷基团。

在进一步实施方案中，蛋白是凝血蛋白。在各种方面中，凝血蛋白选自：因子VIII，VonWillebrand因子，FI(血纤蛋白原)，FV(促凝血球蛋白原)，FXI(血浆-凝血激酶前质)和FXIII(血纤蛋白稳定因子)。

在实施方案中，提供一种从含von Willebrand(VWF)的溶液中去除非-脂质包封的病毒的方法，包括：在高于所述蛋白的等电点的pH下将所述溶液施加至阳离子交换树脂；以及使用第一洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂以形成洗脱液，所述第一洗涤缓冲液的pH等于或小于施加至所述阳离子交换树脂的溶液的pH。

在另一实施方案中，提供一种从含VWF的溶液中去除非-脂质包封的病毒的方法，包括：将所述溶液施加至阳离子交换树脂；在高于施加至所述阳离子交换树脂的溶液的pH的pH下使用第一洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂；以及使用第二洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂以形成洗脱液，所述第一洗脱液的pH等于或小于所述第一洗涤缓冲液的pH。

在进一步实施方案中，提供一种从含VWF的溶液中去除非-脂质包封的病毒的方法，包括：在高于所述蛋白的等电点的pH下将所述溶液施加至阳离子交换树脂；和在高于施加至所述阳离子交换树脂的蛋白的等电点的pH下使用第一洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂；以及使用第二洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂以形成洗脱液，所述第一洗脱液的pH等于或小于所述第一洗涤缓冲液的pH。

附图简述

图1示出SDS-PAGE分离、然后进行银染色法(A)和剩余rFVIII的蛋白质印迹法(B)分析的结果。

图2示出使用MMV和REO病毒掺加的样品进行UNO S实验的染色的凝胶。

图3示出使用MMV和REO病毒掺加的样品进行UNO S实验的染色的凝胶。

图4示出下列结果：使通过方法变化形式获得的rVWF的纯化制剂在天然状态下通过V8蛋白酶经历蛋白水解消化，然后通过RP-HPLC分离所得肽。

图5示出下列结果：使通过方法变化形式获得的rVWF的纯化制剂在变性状态下经历胰蛋白酶，然后通过RP-HPLC分离所得肽。

发明详述

本发明涉及在非-脂质包封的病毒的去除增加的条件下纯化VWF的方法。本发明的方法适用于柱(即，色谱法)以及成批(即，没有柱硬件)方式。

本发明的方法使用在阳离子交换树脂上纯化的方法以增加非-脂质包封的病毒的去除。使用阳离子交换色谱法纯化VWF的之前方法在中性pH下进行。这些方法允许制备良好收率和纯度的纯化的VWF，但吃惊地，所述方法没有去除非-脂质包封的病毒的能力。

术语定义

除非另有定义，否则本文使用的所有技术和科学术语具有和本发明所属技术领域的技术人员通常理解相同的意思。下列参考文献赋予熟练技术人员本发明中使用的多种术语的通常定义：Singleton，et al.，DICTIONARY OF MICROBIOLOGY AND MOLECULARBIOLOGY(2d ed.1994)；THE CAMBRIDGE DICTIONARY OF SCIENCE ANDTECHNOLOGY(Walker ed.，1988)；THE GLOSSARY OF GENETICS，5TH ED.，R.Rieger，etal.(eds.)，Springer Verlag(1991)；和Hale and Marham，THE HARPER COLLINSDICTIONARY OF BIOLOGY(1991)。

本文引用的各公开文献、专利申请、专利和其他参考文献在和本公开一致的程度上通过引用的方式全部并入。

如本申请和所附权利要求书中使用的，除非上下文明确地指示，否则此处注意单数形式″a，″″an″和″the″包括复数形式。

如本文使用的，除非明确地说明，下列术语具有归于它们的意思。

如本文使用的，术语表达(″express，″″expressing″和″expression″)是指允许或引起基因或DNA序列中的信息变得明显，例如，通过激活涉及对应的基因或DNA序列的转录和翻译的细胞功能来产生蛋白。DNA序列在细胞中或通过细胞表达以形成″表达产物″，例如蛋白。表达产物本身(例如所得蛋白)也可以称为是″表达的″。表达产物可以表征为细胞内、细胞外或分泌的。术语″细胞内″是指在细胞内部。术语″细胞外″是指在细胞外部，例如，某些类型的跨膜蛋白。如果其以显著量度在细胞外部、来自细胞上的某处或在细胞内部，则该物质是被细胞″分泌的″。

如本文使用的，″多肽″是指这样的聚合物，其由氨基酸残基、结构变体、相关天然存在的结构变体、及其通过肽键连接的合成非-天然存在的类似物构成。合成多肽可以例如使用自动的多肽合成器来制备。术语″蛋白″典型地是指较大多肽。术语″肽″典型地是指较短多肽。术语″多肽″还包括聚合物结构。因此，″多肽″可以是单体、二聚体、三聚体或较大多聚体结构。这些多聚体结构可以为至多5兆道尔顿或更高。

如本文使用的，″等电点″是pH值，在该pH值下水溶液中的多肽的净电荷为零。

如本文使用的，多肽的″片段″是指比全长多肽或蛋白表达产物小的多肽或蛋白的任何部分。

如本文使用的，“类似物”是指两种或多种多肽中的任一种，其和整个分子或其片段具有基本上类似的结构和相同的生物活性，但是可以具有改变的活性程度。基于涉及一个或多个氨基酸被其他氨基酸取代的一个或多个突变，类似物的它们氨基酸序列组成不同。基于被取代的和氨基酸取代的氨基酸的物理-化学或官能团关系，取代可以是保守的或非保守的。

如本文使用的，″变体″是指被修饰以包含通常不是分子的一部分的另外化学部分的多肽、蛋白或它们的类似物。这些部分可以调节分子的溶解度、吸收性、生物半衰期等。或者所述部分可以降低分子的毒性并且消除或减弱分子的任何不期望的副作用等。能够介导这些效果的部分公开于Remington′s Pharmaceutical Sciences(1980)。使这些部分偶联分子的方法是本领域熟知的。例如，变体可以是具有赋予蛋白更长体内半衰期的化学修饰的凝血因子。在各种方面中，多肽通过糖基化、聚乙二醇化和/或聚唾液酸化。

重组VWF

前原-VWF的多核苷酸和氨基酸序列分别阐述在SEQ ID NO：1和SEQ ID NO：2中，并且可分别以GenBank登陆No.NM_000552和NP_000543得到。对应于成熟VWF蛋白的氨基酸序列阐述在SEQ ID NO：3(对应于全长前原-VWF氨基酸序列的氨基酸764-2813)。

一种形式的有用rVWF具有至少体内稳定性的性质，例如结合至少一种因子VIII(FVIII)分子并且任选地具有药理学上可接受的糖基化图案。其特定例子包括不具有A2结构域的VWF，因此耐受蛋白水解(Lankhof et al.，Thromb.Haemost.77：1008-1013，1997)，并且来自Val 449至Asn 730的VWF片段包括用于胶原和肝素的糖蛋白lb-结合结构域和结合位点(Pietu et al.，Biochem.Biophys.Res.Commun.164：1339-1347，1989)。VWF稳定至少一种FVIII分子的能力的确定可以根据本领域现有技术中已知的方法在VWF-缺陷哺乳动物中进行。

本发明的rVWF可以通过本领域任何已知的方法来制备。一种具体例子公开于1986年10月23日公开的WO86/06096和1990年7月23日提交的美国专利申请No.07/559,509，涉及制备重组VWF的方法通过引用并入本文。因此，下列方法是本领域已知的：(i)通过基因工程化来产生重组DNA，例如通过RNA的反向转录和/或DNA的扩增；(ii)通过转染将重复DNA引入原核细胞或真核细胞，例如通过电穿孔或微注射；(iii)例如以连续或分批的方式来培养所述转染的细胞；(iv)例如构成地或在诱导时表达VWF；以及(v)例如从培养基或通过收获转化的细胞来分离所述VWF，以(vi)例如通过阴离子交换色谱法或亲和色谱法来获得纯化的rVWF。重组VWF可以使用本领域熟知的重组DNA技术在转化的宿主细胞中制备。例如，编码多肽的序列可以使用合适的限制性内切酶从DNA中切除。

或者，DNA分子可以使用化学合成技术来合成，例如氨基磷酸酯法。此外，可以使用这些技术的组合。

本发明还提供在合适宿主中编码本发明的多肽的载体。所述载体包含多核苷酸，所述多核苷酸编码操作性地连接合适的表达控制序列的多肽。在多核苷酸插入载体之前或之后，实现该操作性的连接的方法是熟知的。表达控制序列包括启动子、活化剂、增强子、操作子、核糖体结合位点、起始信号、停止信号、封盖信号、多腺苷酸化信号、和涉及转录或翻译的控制的其他信号。其中具有多核苷酸的所得载体用于转化合适的宿主。该转化可以使用本领域熟知的方法来进行。

多数可得和熟知的宿主细胞中的任一种可以用于实施本发明。特定宿主的选择取决于本领域识别的多种因素，包括例如和选择的表达载体的相容性、DNA分子编码的肽的毒性、转化率、回收肽的难易程度、表达特性、生物安全性和成本。必须在理解并非所有宿主细胞相等地有效表达特定DNA序列的条件下触发这些因素的平衡。在这些通常规范内，有用的微生物宿主细胞包括细菌、酵母菌和其他真菌、昆虫、植物、培养基中的哺乳动物(包括人)细胞、或本领域已知的其他宿主。

然后，将转化的宿主培养和纯化。宿主细胞可以在常规发酵条件下培养，使得期望化合物得以表达。这些发酵条件是本领域熟知的。最后，多肽通过本领域熟知的方法从培养物中纯化。

取决于用于表达本发明的化合物的宿主细胞，碳水化合物(寡糖)基团可以便捷地附接在蛋白中已知是糖基化位点的位点。通常当它们是序列Asn-X-Ser/Thr的部分时，O-连接的寡糖附接丝氨酸(Ser)或苏氨酸(Thr)残基，而N-连接的寡糖附接天冬酰胺(Asn)残基，其中X可以是除了脯氨酸的任何氨基酸。X优选是不包括脯氨酸的19种天然存在的氨基酸中的一种。各种类型中发现的N-连接的和O-连接的寡糖与糖残基的结构是不同的。通常在两者上发现的一种类型的糖是N-乙酰基神经氨糖酸(称为唾液酸)。唾液酸通常是N-连接的和O-连接的寡糖的末端残基，并且通过其负电荷可以赋予糖基化的化合物酸性属性。这些位点可以引入本发明的化合物的接头中，并且在多肽化合物(例如，在哺乳动物细胞例如CHO，BHK，COS中)的重组制备的过程中优选被细胞糖基化。然而，这些位点可以进一步通过本领域已知的合成或半合成方法来糖基化。

或者，化合物可以通过合成方法来制备。例如，可以使用固相合成技术。合适的技术是本领域熟知的，并且包括Merrifield(1973)，Chem.Polypeptides，pp.335-61(Katsoyannisand Panayotis eds.)；Merrifield(1963)，J.Am.Chem.Soc.85：2149；Davis et al.(1985)，Biochem.Intl.10：394-414；Stewart and Young(1969)，Solid Phase Peptide Synthesis；美国专利No.3,941,763；Finn et al.(1976)，The Proteins(3rd ed.)2：105-253；和Erickson et al.(1976)，The Proteins(3rd ed.)2：257-527中所述。固相合成是制备各种肽的优选技术，因为其是制备小肽的最成本有效的方法。

VWF的片段、变体和类似物

制备多肽的片段、变体或类似物的方法是本领域熟知的。

多肽片段使用但不限于酶切除(例如胰蛋白酶、胰凝乳蛋白酶)来制备，还使用重组方式来产生具有特定氨基酸序列的多肽片段。可以产生多肽片段，包含具有特定活性的蛋白的区域，例如多聚化结构域或本领域已知的任何其他可鉴别的VWF结构域。

多肽变体涵盖包括人和非人形式的VWF(例如，鼠源VWF)。本文方法还涵盖包含例如鼠/人融合多肽的嵌合多肽。

制备多肽类类似物的方法也是熟知的。多肽的氨基酸序列类似物可以是取代的、插入的、增加的或缺失的类似物。缺失类似物(包括多肽片段)缺乏对于官能或免疫原活性非必需的天然蛋白的一种或多种残基。插入类似物涉及在多肽的非-末端点处增加例如氨基酸。该类似物可包括插入免疫反应性抗原决定基或简单地插入单一参加。增加类似物(包括多肽片段)包括在蛋白(例如融合蛋白)的两个末端的任一个处增加一个或多个氨基酸。

取代类似物典型地在蛋白的一个或多个位点处交换野生型的一个氨基酸和另一个，并且可设计以调节多肽的一种或多种性能，而不损失其他官能或性能。在一个方面中，取代是保守取代。″保守氨基酸取代″是指氨基酸被具有类型化学特性的侧链的氨基酸取代。制备保守取代的类似氨基酸包括具有下列的那些：酸性侧链(谷氨酸，天冬氨酸)；碱性侧链(精氨酸，赖氨酸，组氨酸)；极性酰胺侧链(谷氨酸，天冬酰胺)；疏水性脂肪族侧链(亮氨酸，异亮氨酸，缬氨酸，丙氨酸，甘氨酸)；芳族侧链(苯丙氨酸，色氨酸，酪氨酸)；小侧链(甘氨酸，丙氨酸，丝氨酸，苏氨酸，蛋氨酸)；或脂肪族羟基侧链(丝氨酸，苏氨酸)。

类似物可以和它们衍生的重组VWF基本上同源或基本上相同的。优选的类似物是保留至少一些野生型多肽的生物活性(例如凝血活性)的那些。

多肽变体涵盖包括通过这样的技术化学修饰的多肽，所述技术例如为遍在蛋白化、糖基化包括聚唾液酸化、缀合治疗剂或诊断剂、标记、共价聚合物附接例如聚乙二醇化(使用聚乙二醇衍生化)、引入不可水解的键、和通过通常不存在于人蛋白中的氨基酸例如鸟氨酸的化学合成来插入或取代。变体保留本发明的非修饰的分子的相同或基本上相同的结合性能。这些化学修饰可包括直接或间接(例如通过接头)附接试剂至VWF多肽。在间接附接的情况下，涵盖接头可以是可水解的或不可水解的。

制备聚乙二醇化多肽类似物通常包括下列步骤：(a)在条件下使多肽和聚乙二醇(例如PEG的反应性酯或醛衍生物)反应，从而结合构建体多肽附接一个或多个PEG基团；以及(b)获得反应产物。通常，醛化反应的最优反应条件基于已知的参数和期望结果来确定。例如，PEG∶蛋白的比越高，聚-聚乙二醇化产物的百分率越高。在一些实施方案中，结合构建体在N-末端处具有单一PEG部分。聚乙二醇(PEG)可以附接凝血因子以提供体内更长半衰期。PEG基团可以具有任何便捷的分子量，并且可以是直链或支链的。PEG的平均分子量为约2千道尔顿(″kD″)至约100kDa、约5kDa至约50kDa、或约5kDa至约10kDa。PEG基团通过醛化或还原性烷基化经过PEG部分上的中性或工程化反应性基团(例如，醛、氨基、硫醇或酯基)至凝血因子上的反应性基团(例如，醛、氨基或酯基)而附接凝血因子，或通过本领域已知的任何其他技术。

制备聚唾液酸化的多肽的方法在美国专利公开20060160948，Femandes et Gregoriadis；Biochim.Biophys.Acta 1341：26-34，1997和Saenko et al.，Haemophilia 12：42-51，2006中有所描述。简言之，将含有0.1M NaIO4的多聚乙酰神经氨糖酸溶液在室温下在暗处搅拌以氧化CA。将激活的CA溶液针对例如0.05M磷酸钠缓冲液(pH 7.2)在暗处透析，并且将该溶液加入rVWF溶液，并且在室温下在暗处在温和振荡的条件下孵育18h。然后可以通过超滤/渗滤从rVWF-聚唾液酸缀合物分离游离试剂。rVWF和聚唾液酸的缀合还可以使用戊二醛作为交联剂来完成(Migneault et al.，Biotechniques 37：790-796，2004)。

还涵盖的是本发明的多肽可以是和第二试剂(其是多肽)的融合蛋白。在一个实施方案中，第二试剂(其是多肽)不限于酶、生长因子、抗体、细胞因子、趋化因子、细胞-表面受体、细胞表面受体的细胞外结构域、细胞粘附分子、或上述蛋白的片段或活性结构域。在相关的实施方案中，第二试剂是凝血因子，例如因子VIII、因子VII、因子IX。涵盖的融合蛋白通过本领域熟知的化学或重组技术来制备。

还涵盖，前原-VWF和原-VWF多肽可以在本发明的制剂中提供治疗益处。例如，美国专利No.7,005,502描述药物制剂，包含体外在存在血小板的条件下诱导凝血产生的实质量的原-VWF。除了天然存在的成熟VWF的重组生物活性片段、变体或类似物，本发明涵盖前原-VWF的重组生物活性片段、变体或类似物(阐述于SEQ ID NO：2)或原-VWF多肽的重组生物活性片段、变体或类似物(SEQ ID NO：2的氨基酸残基23至764)在本文所述制剂中的应用。

编码片段、变体和类似物的多核苷酸可以由熟练技术人员容易地产生，以编码具有和天然存在的分子相同或类似生物活性的天然存在的分子的生物活性片段、变体或类似物。这些多核苷酸可以使用PCR技术、DNA编码分子的消化/连接等来制备。因此，本领域技术人员将能够使用本领域已知的任何方法(包括但不限于位点-特异性突变)在DNA链中产生单一碱基改变，以导致改变的密码子和错义突变。如本文使用的，措词″中等严格杂交条件″例如是指在42℃下在50％甲酰胺中杂交，并且在60℃下在0.1x SSC，0.1％SDS中洗涤。本领域技术人员理解，基于待杂交的序列的长度和GC核苷酸碱基含量，这些条件发生改变。本领域中的公式标准适于确定精确的杂交条件。参见Sambrook et al.，9.47-9.51，Molecular Cloning，Cold Spring Harbor Laboratory Press，Cold Spring Harbor，New York(1989)。

VWF的制备方法

工业上，VWF、特别是人重组VWF(rVWF)合成并且在基因工程化的CHO细胞系中和rFVIII一起表达。共表达的rVWF的功能是在细胞培养过程中稳定rFVIII。rVWF在细胞中合成为原型，含有附接N-末端的较大原-肽。在内质网和Golgi设备中成熟时，通过细胞蛋白酶弗林蛋白酶的作用，原-肽切除，并且分泌为相同子单元的均聚物，由表达的蛋白的二聚体构成。

VWF的纯化

本文提供一种从含蛋白的溶液中去除非-脂质包封的病毒的方法，包括：在高于所述蛋白的等电点的pH下将所述溶液施加至阳离子交换树脂；以及使用第一洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂以形成洗脱液，所述第一洗涤缓冲液的pH等于或小于施加至所述阳离子交换树脂的溶液的pH。

在一个方面中，溶液的pH比蛋白的等电点高约1个pH单位。在其他方面中，溶液的pH比蛋白的等电点高约1.2，或约1.4，或约1.6，或约1.8，或约2.0，或约2.2，或约2.4，或约2.6，或约2.8，或约3.0，或约3.2，或约3.4，或约3.6，或约3.8，或约4.0，或约4.2，或约4.4，或约4.6，或约4.8，或约5.0，或约5.5，或约6.0个pH单位或更高。

在这些实施方案中，pH大于约7。在其他方面中，pH为约7.1，或约7.2，或约7.3，或约7.4，或约7.5，或约7.6，或约7.7，或约7.8，或约7.9，或约8.0，或约8.1，或约8.2，或约8.3，或约8.4，或约8.5，或约8.6，或约8.7，或约8.8，或约8.9，或约9.0，或约9.1，或约9.2，或约9.3，或约9.4，或约9.5，或约9.6，或约9.7，或约9.8，或约9.9，或约10.0，或约10.1，或约10.2，或约10.3，或约10.4，或约10.5，或约10.6，或约10.7，或约10.8，或约10.9，或约11.0，或约11.1，或约11.2，或约11.3，或约11.4，或约11.5，或约11.6，或约11.7，或约11.8，或约11.9，或约12.0，或约12.1，或约12.2，或约12.3，或约12.4，或约12.5，或约12.6，或约12.7，或约12.8，或约12.9，或约13.0或更高。

在另一实施方案中，提供一种从含蛋白的溶液中去除非-脂质包封的病毒的方法，包括：将所述溶液施加至阳离子交换树脂；在高于施加至所述阳离子交换树脂的溶液的pH的pH下使用第一洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂；以及使用第二洗涤缓冲液洗涤所述阳离子交换树脂以形成洗脱液，所述第二洗涤缓冲液的pH等于或小于所述第一洗涤缓冲液的pH。在一个方面中，第一洗涤缓冲液的pH比施加至阳离子交换树脂的溶液的pH高约1个pH单位。对于该阶段，涵盖的是，离子交换介质是UNOsphere^TM S(BioRad Laboratories，Inc.，Hercules，CA)，但是在实施所述方法时可以使用其他阳离子交换体系。这些阳离子交换体系是本领域技术人员已知的。

在其他方面中，第一洗涤缓冲液的pH比蛋白的等电点高约1.1，或约1.2，或约1.3，或约1.4，或约1.5，或约1.6，或约1.7，或约1.8，或约1.9，或约2.0，或约2.1，或约2.2，或约2.3，或约2.4，或约2.5，或约2.6，或约2.7，或约2.8，或约2.9，或约3.0，或约3.1，或约3.2，或约3.3，或约3.4，或约3.5，或约3.6，或约3.7，或约3.8，或约3.9，或约4.0，或约4.1，或约4.2，或约4.3，或约4.4，或约4.5，或约4.6，或约4.7，或约4.8，或约4.9，或约5.0，或约5.1，或约5.2，或约5.3，或约5.4，或约5.5，或约5.6，或约5.7，或约5.8，或约5.9，或约6.0个pH单位或更高。在这些实施方案中，第一洗涤缓冲液的pH大于约7。在其他方面中，第一洗涤缓冲液的pH为约7.1，或约7.2，或约7.3，或约7.4，或约7.5，或约7.6，或约7.7，或约7.8，或约7.9，或约8.0，或约8.1，或约8.2，或约8.3，或约8.4，或约8.5，或约8.6，或约8.7，或约8.8，或约8.9，或约9.0，或约9.1，或约9.2，或约9.3，或约9.4，或约9.5，或约9.6，或约9.7，或约9.8，或约9.9，或约10.0，或约10.1，或约10.2，或约10.3，或约10.4，或约10.5，或约10.6，或约10.7，或约10.8，或约10.9，或约11.0，或约11.1，或约11.2，或约11.3，或约11.4，或约11.5，或约11.6，或约11.7，或约11.8，或约11.9，或约12.0，或约12.1，或约12.2，或约12.3，或约12.4，或约12.5，或约12.6，或约12.7，或约12.8，或约12.9，或约13.0或更高。

下列实施例不旨在是限制性的，而仅仅是本发明的特定实施方案的例子。

实施例

实施例1

下文所述测定中使用的病毒和细胞如下：

REO-3(呼肠孤病毒科；非-包封的dsRNA病毒)，菌株Dearing(ATCC VR-824)得自ATCC。病毒在得自ECACC(84113001)的Vero细胞上繁殖和滴定。MMV(细小病毒科；非-包封的ssDNA病毒)，原型菌株(ATCC VR-1346)，得自美国典型培养物保藏中心，Rockville，Maryland。病毒在A9细胞(ATCC CCL-1.4)上繁殖和滴定。PPV(细小病毒科；非-包封的ssDNA病毒)、菌株Tennessee(BRFF#PP951024)得自Biological Research Faculty& Facility，Ijamsville，Maryland。病毒在PK-13细胞(ATCC CRL-6489)上繁殖和滴定。EMCV(小核粮核酸病毒科；非-包封的ssRNA)(ATCC #VR-129B)得自美国典型培养物保藏中心。病毒在Vero细胞(European Collection of Cell Cultures，ECACC，#84113001)上繁殖和滴定。HadV(腺病毒科；非-包封的dsDNA)，菌株Adenoid 75(ATCC VR-5)，得自美国典型培养物保藏中心。病毒在HeLa细胞(ATCC CCL-2)上繁殖和滴定。

涉及示例性VWF纯化方法的步骤包括：

●细胞培养基上清的免疫亲和色谱法

i.流通馏分

●阴离子交换(例如，三甲基氨基乙基阴离子交换柱)

●过滤(0.45/0.2μm)

●阴离子交换(例如，Mustang Q(Pall Corporation))

●病毒灭活(例如，使用溶剂/去污剂处理)

●过滤(0.8/0.65μm)

●阳离子交换(例如，UNO S柱)

●超滤/浓缩

●过滤(0.45/0.2μm)

●凝胶过滤(Superose 6预备级(GE Life Sciences))

UNO S步骤的优化.在UNO S步骤的过程中，rVWF结合强阳离子交换树脂，同时一些杂质穿过。在使用传导性增加的缓冲液洗涤柱后，结合的rVWF在盐步骤的条件下从柱上释放。在初始病毒去除研究中，该步骤显示对于模型REO病毒至少具有显著的去除率。应用的参数的条件和对应的结果列于下面表1中。

表1

^*TQA缓冲液：在WFI中的Tris，NaAc，mMNaCl

pH 6.3-6.7，在20-25℃下

在表1中可见，工艺参数的适度改变(传导率、pH 8.0和洗涤缓冲液的添加剂的改善)不会导致MMV去除率的明显改善。使pH进一步增加至9.0可重现地导致MMV以及REO病毒的去除率明显超过2个log值。该工艺改变技术上容易实施，并且使rVWF暴露于高pH环境可以保持相对较短(max.6小时)。结合的rVWF的洗脱在中性条件下进行。

根据CPMP指南268/95的推荐，使用式

来进行工艺的病毒灭活能力的分析：

其中

R＝病毒减少系数

V1＝初始材料的体积[ml]

T1＝初始材料中病毒的浓度[TCID50/ml]

V2＝步骤后材料的体积[ml]

T2＝步骤后病毒的浓度[TCID50/ml]

在处理之前和之后各掺加的样品的体积和滴度用于计算R。在病毒不可检测的时候，将检测限作为病毒滴度来进行计算。使用给出两个小数位的病毒滴度(log10[TCID50/ml])来进行计算，并且最终结果，即减少系数(R)，仅取至第一个小数位。

实施例2

使用30kDa截断改善的纤维素膜通过超滤将UNO S洗脱液浓缩至大约800μg rVWF抗原/ml，以促进杂质和产物变体的痕迹分析。

rVWF的测试

瑞斯托菌素活性.瑞斯托菌素辅因子活性使用von Willebrand试剂通过浊度分析器来进行，所述von Willebrand试剂含有稳定的凝血细胞和抗菌素″瑞斯托菌素″。样品中含有的Von Willebrand因子(＝瑞斯托菌素辅因子)在瑞斯托菌素存在的条件下引起稳定的凝血细胞的凝集。该凝集减低了试剂制品的浊度，并且光学密度的改变通过浊度分析器来测量。通过WHO浓缩参照标准品#00/514来进行校准。

VWF抗原.在ELISA测定-具有两种多克隆抗体的双夹心体系中测试VWF-样品它们的vWF-抗原的含量。在微量滴定板上颜色反应的测量在490nm处使用光度计来进行。使用计算机支持的ELISA分析程序(曲线算法：三次回归)针对标准曲线来计算各样品的浓度。所有读书都针对空白来进行校正。

FVIII结合活性.在静态条件下rVWF的FVIII结合通过将恒定量的rFVIII和稀释的含VWF的样品孵育经过ELISA色谱测定法(ECA)来确定。然后将形成的VWF-FVIII-络合物转移至包覆市售多克隆兔抗-人VWF抗体的微量滴定板。在孵育后，未结合的FVIII通过随后的洗涤步骤而除去。结合的FVIII通过市售FVIII色谱测定法(Technochrom FVIII：C reagent kit，Technoclone，Austria)来定量。空白校正的学密度(mOD/min，在405nm处)以对数级别针对VWF∶Ag浓度来制图。

SDS-PAGE分析.在还原条件和使用马斯亮蓝凝胶染色和银染色下，常规8％SDS-PAGE分析可以提供对于rVWF的蛋白组成的观察。在将分离的蛋白带转移至硝基纤维素膜、并且分别使用合适的抗体针对VWF，FVIII和弗林蛋白酶进行蛋白的免疫染色后，可以比较VWF相关的蛋白和全部蛋白。

多聚体分析.VWF的多聚体结构通过高密度水平SDS琼脂糖凝胶电泳法来分析。简言之，将样品稀释至0.3-1.0IU/ml VWF∶Ag范围内的相同浓度，在非还原条件下在琼脂糖凝胶上和Tris-EDTA-SDS缓冲液与分离的多聚体一起孵育。通过凝胶内免疫染色法使用多克隆兔抗-人VWF抗体、接着使用ALP显色试剂盒利用碱性磷酸盐(ALP)缀合的山羊抗-兔IgG来肉眼观察VWF多聚体。或者，将琼脂糖凝胶印迹在印迹膜上，并且通过多克隆兔抗-人VWF抗体、然后通过辣根过氧化物酶缀合的抗-兔IgG来染色。为了肉眼观察，使用电化学发光法，其使VWF的检测的敏感度增加至少两个量级。低分辨率(1％琼脂糖)和高分辨率(2.5％琼脂糖)条件用于分别分析VWF多聚体的尺寸分布和多聚体结构。

HPLC分析.重组VWF可以在天然条件下通过GluC(V8蛋白酶)切除，以得到两个主要片段(N-末端和C-末端同源二聚体片段)，其在反相HPLC C4-柱上分离。所述片段通过在280nm处监控UV吸收度来检测。

肽图.rVWF的初级结构使用肽图方案来调查。纯化的rVWF的样品被二硫苏糖醇(DTT)减少，并且游离sulfhydril基团被4-乙烯基吡啶阻断。将顺序级别胰蛋白酶加入rVWF并且允许反应18小时。使所得肽混合物通过反相色谱法来分离。洗脱肽通过在214nm处在线UV检测法和在线电子喷雾离子化质谱法来检测。

脱酰胺的rVWF的试验.检测异-天冬氨酸(一种源自天冬酰胺的脱酰胺的反应产物)的分析方法使用胰蛋白酶消化，然后使用由Promega供应的ISOQUANT IsoAspartateDetection Kit进行蛋白异天冬氨酸甲基转移酶(PIMT)酶反应。PIMT催化底物S-腺苷基-L蛋氨酸(SAM)的甲基转移至羧基位置的IsoAsp，从而产生S-腺苷基高半胱氨酸(SAH)。化学计量释放的SAH在260nm的波长处通过RP HPLC方法来检测。

通过不同方法获得的产物的分析数据概述于表2中。

表2：pH 9和对照实验的分析数据

从表2可见，通过不同方法变体纯化的rVWF的生物性能具有可比性。

通过银染色法和剩余rFVIII的蛋白质印迹法分析，rVWF蛋白的主要带在所有产物中非常类似，而杂质程度在样品#1(在图1中表示为VWF#07)中更低。rFVIII的带状图案在所有批次之间具有可比性，这表明未由于产生的pH 9.0条件而引起降解。

低和高分辨率琼脂糖凝胶电泳法揭示rVWF制剂的高类似性。通过低分辨率多聚体分析可以看到多聚体组成没有差别。图2显示使用MMV和REO病毒掺加的样品的UNO S实验的染色的凝胶。此外高分辨率多聚体分析揭示完整多聚体图案，这表明rVWF多聚体未由于pH 9.0的条件而产生损害。图3显示使用MMV和REO病毒掺加的样品的UNO S实验的染色的凝胶。

通过等量曲线测定法，由于在pH 9.0下停留时间而不能检测到增强的脱酰胺。通常，脱酰胺的rVWF的摩尔百分率非常低。在天然状态下通过V8蛋白酶(参见图4)或者在变性状态下通过胰蛋白酶(参见图5)，使通过方法变体获得的rVWF的纯化的制剂经历蛋白水解消化，通过RP-HPLC分离所得肽，从而对于所有样品导致类似的色谱。

峰图案的细微差别由于在制备中存在不同量的杂质(在图1中可见主要是剩余rVWF前肽)，这通过质谱法或N-末端序列分析来证实。

实施例3

在高pH下使用MMV掺加通过阳离子交换色谱法纯化rVWF

将填塞到柱中的UNOsphere S树脂使用1CV的2MNaCl激活，并且使用25CV的平衡缓冲液(pH＝9.0)的平衡。此后，将含有rVWF的溶液调节至传导率为15mS/cm和pH为9.0，并且在线性流速约10.0cm/h下掺加负载到柱上的小鼠小病毒(MMV)。然后将柱使用10CV的平衡缓冲液(pH＝9.0)洗涤，并且在线性流速65cm/h下将产物使用3.5CV的洗脱缓冲液(pH＝7.5)洗脱。在负载和洗涤阶段的过程中，增加的pH显著地降低病毒颗粒和树脂的结合，但是保留和产物VWF的完全结合。结果，大部分负载的病毒颗粒发现在非-结合(流通)和洗涤馏分中，该馏分从产物中分离，所述产物以高收率在洗脱液集合中回收。表3中的结果显示通过应用该方法，对于非-包封的模型病毒小鼠小病毒(MMV)，可以获得2个log的病毒去除能力。

如下所示进行TCID50测定。简言之，在合适的组织培养基中制备系类1/2log稀释的样品，并且将100μl的各稀释物加入接种指示剂细胞齿(indicator cell tine)的微量滴定板的各8个孔中。然后，使孔在36℃±2℃下孵育7天，之后在显微镜下通过肉眼检查细胞来评级致细胞病变效应。根据泊松分布来评价中值组织培养感染剂量(TCID50)，并且表示为log10[TCID50/ml]。

表3：rVWF在UNOsphere S上的纯化

使用直径15mm和床高度14cm的柱来进行纯化。所示数据为活性小鼠小病毒的病毒滴度。

实施例4

在高pH下使用Reo病毒型3掺加通过阳离子交换色谱法纯化rVWF

将填塞到柱中的UNOsphere S树脂使用1CV的2M NaCl激活，并且使用25CV的平衡缓冲液(pH＝9.0)的平衡。此后，将含有rVWF的溶液调节至传导率为15mS/cm和pH为9.0，并且在线性流速约100cm/h下掺加负载到柱上的各种非-包封的病毒。然后将柱使用10CV的平衡缓冲液(pH＝9.0)洗涤，并且在线性流速65cm/h下将产物使用3.5CV的洗脱缓冲液(pH＝7.5)洗脱。在负载和洗涤阶段的过程中，增加的pH显著地降低病毒颗粒和树脂的结合，但是保留和产物VWF的完全结合。结果，大部分负载的病毒颗粒发现在非-结合(流通)和洗涤馏分中，该馏分从产物中分离，所述产物以高收率在洗脱液集合中回收。表4中的结果显示通过应用该方法，对于非-包封的模型病毒小鼠Reo病毒类型3(REO-III)，可以获得2个log的病毒去除能力。

表4：rVWF在UNOsphere S上的纯化

使用直径15mm和床高度14cm的柱来进行纯化。所示数据为活性小鼠Reo病毒类型III(REO-III)的病毒滴度。

实施例5

根据标准方法(中性pH)在UNOsphere S上纯化rVWF

将填塞到柱中的UNOsphere S树脂使用1CV的2MNaCl激活，并且使用25CV的平衡缓冲液(pH＝6.5)的平衡。此后，将含有rVWF的溶液调节至传导率为15mS/cm和pH为6.5，并且在线性流速约100cm/h下掺加负载到柱上的各种非-包封的病毒。然后将柱使用10CV的平衡缓冲液(pH＝6.5)洗涤，并且在线性流速65cm/h下将产物使用3.5CV的洗脱缓冲液(pH＝7.5)洗脱。在不同色谱馏分(负载、柱流通、洗涤、洗脱液、后洗脱液)中计算测试的多种病毒的病毒滴度，并且计算减少系数。表5中的结果显示通过在UNOsphere S上应用标准纯化VWF的方法，非-包封的病毒的去除能力对于不同的测试模型病毒不足以要求耐用的色谱步骤以去除非-脂质包封的病毒。

表5：根据标准方法纯化VWF和非-包封的病毒的对应减小能力

	减小	评论
				Log₁₀	病毒特性
PPV(猪细小病毒)	＜1	小DNA病毒
			hAdV(人腺病毒)	1.8	大DNA病毒
EMCV(猪脑心肌炎病毒)	＜1	小RNA
			Reo病毒类型III	1.8	大RNA
MMV(小鼠小病毒)	＜1	小DNA

减小率计算为以对数值表示的负载馏分中的总病毒负载除以洗脱液馏分中的总病毒负载。