发明内容
本发明的目的在于提供丁基苯酞及其衍生物在制备预防和治疗ALS的药物中的应用。
所述丁基苯酞包括消旋丁基苯酞或左旋丁基苯酞。
所述衍生物在体内代谢为消旋丁基苯酞或左旋丁基苯酞。
发明专利CN101337891A公开了根据前药原理,结构式如式I的化合物在体内能释放NO和丁基苯酞,所述化合物结构式如下:
其中A为C2-C8烷基、C2-C8烯烃基、C2-C8烯烃基、苯基或取代苯基、芳杂环或取代芳杂环;所述取代苯基被1个或多个选自于羟基、C1-C6烷基、C1-C6烷氧基、-CH=CHCOO(CH2)n,n=2-6取代的苯基,各取代基可以相同或不同;所述芳杂环为1至4个杂原子的5至7元芳香环,所述杂原子独立的选自O、S或N;所述取代芳杂环可任选被1个或多个选自于C1-C6烷基、C1-C6烷氧基或卤素取代,各取代基可以相同或不同;
R为二甲胺、二乙胺、吡咯、哌啶、吗啉、哌嗪、N-甲基哌嗪、N-乙基哌嗪、N-异丙基哌嗪、N-苯基哌嗪、N-苄基哌嗪或N-叔丁氧羰基哌嗪。
因此,所述化合物在体内代谢为丁基苯酞,也必然具有防治ALS的效果。
作为优选,R为吗啉基;A为
n=3,所述衍生物为[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-{2-甲氧基-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]}苯酯。
作为优选,R为哌啶基;A为n=3,所述衍生物为[2-(1-哌啶基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-{2-甲氧基-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]}苯酯。
作为优选,R为二乙胺基;A为
n=3,所述衍生物为[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-{2-甲氧基-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]}苯酯。
作为优选,R为二乙胺基;A为
n=3,所述衍生物为[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]苯酯。
作为优选,R为吗啉基;A为
n=3,所述衍生物为[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]苯酯。
作为优选,R为二乙胺基;A为C4烷基,所述衍生物为[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-(4-硝氧)丁酯。
作为优选,R为吗啉基;A为C4烷基,所述衍生物为[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-(4-硝氧)丁酯。
作为优选,R为哌啶基;A为C4烷基时,所述衍生物为[2-(1-哌啶基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-(4-硝氧)丁酯。
作为优选,R为二乙胺基;A为苯环上间位取代基为C2烷基时,所述衍生物为[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-[4-(2-硝氧乙基)]苯酯。
作为优选,R为哌啶基;A为苯环上间位取代基为C2烷基时,所述衍生物即为[2-(1-哌啶基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-[4-(2-硝氧乙基)]苯酯。
作为优选,R为吗啉基;A为苯环上间位取代基为C2烷基,所述衍生物即为[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-[4-(2-硝氧乙基)]苯酯。
因此,所述衍生物为[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-{2-甲氧基-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]}苯酯、[2-(1-哌啶基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-{2-甲氧基-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]}苯酯、[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-{2-甲氧基-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]}苯酯、[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]苯酯、[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]苯酯、[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-(4-硝氧)丁酯、[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-(4-硝氧)丁酯、[2-(1-哌啶基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-(4-硝氧)丁酯、[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-[4-(2-硝氧乙基)]苯酯、[2-(1-哌啶基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-[4-(2-硝氧乙基)]苯酯或[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-[4-(2-硝氧乙基)]苯酯时,其在体内代谢为丁基苯酞,具有预防和治疗ALS的效果。
李江、王晓良等公开了消旋2一(a-羟基戊基)苯甲酸钾盐在体内具有与消旋丁基苯酞一致的组织分部与代谢特征,(参见dl-PHPB的体内外转化及药代动力学研究,中国药理通讯2007年第二十四卷第三期,50-51)。CN1234541C公开了2一(a-羟基戊基)苯甲酸盐在防治心脑血管疾病方面具有与丁基苯酞相似的药理作用,根据化药药物代谢动力学,本领域人员可以合理预期,结构式如式II所示的2一(a-羟基戊基)苯甲酸盐在体内均可离解为丁基苯酞,也必然具有防治ALS的效果。
更优选地,所述衍生物为2一(a-羟基戊基)苯甲酸盐,结构式如式II所示:
其中,M为一价金属离子或是二价金属离子,n=2或n=3。
作为优选,2一(a-羟基戊基)苯甲酸盐中所述M为钾离子、钠离子、锂离子、钙离子、镁离子或锌离子。
经动物试验证实,本发明所述丁基苯酞及其衍生物可延缓SOD1-G93A转基因小鼠的发病时间,延长小鼠生存期,减少了脊髓运动神经元退行性病变,使小鼠脊髓前角运动神经元的存活的数目明显增多,还可减少转基因鼠电生理的异常,复合肌肉动作电位波幅和运动单位数目均明显改善,小鼠脊髓星形胶质细胞和小胶质细胞的激活得到了显著的抑制,明显降低了iNOS、NF-κBp65的表达水平,可用于制备预防和治疗肌萎缩侧索硬化的药物,具有良好的应用前景。
具体实施方式:
本发明公开了丁基苯酞及其衍生物在制备预防和治疗ALS病的药物中的应用,本领域技术人员可以借鉴本文内容,适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是,所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,它们都被视为包括在本发明。本发明的应用已经通过较佳实施例进行了描述,相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法和应用进行改动或适当变更与组合,来实现和应用本发明技术。
按照本发明,实施例公开消旋丁基苯酞和左旋丁基苯酞制备预防和治疗ALS病的药物中的应用,本领域技术人员根据现有技术及药理学原理,合理预期在体内代谢为消旋或左旋丁基苯酞的衍生物具有预防和治疗ALS的效果。
所述衍生物包括结构式如式I所示:
其中A为C2-C8烷基、C2-C8烯烃基、C2-C8烯烃基、苯基或取代苯基、芳杂环或取代芳杂环;所述取代苯基被1个或多个选自于羟基、C1-C6烷基、C1-C6烷氧基、-CH=CHCOO(CH2)n,n=2-6取代的苯基,各取代基可以相同或不同;所述芳杂环为1至4个杂原子的5至7元芳香环,所述杂原子独立的选自O、S或N;所述取代芳杂环可任选被1个或多个选自于C1-C6烷基、C1-C6烷氧基或卤素取代,各取代基可以相同或不同;
R为二甲胺、二乙胺、吡咯、哌啶、吗啉、哌嗪、N-甲基哌嗪、N-乙基哌嗪、N-异丙基哌嗪、N-苯基哌嗪、N-苄基哌嗪或N-叔丁氧羰基哌嗪。
以及结构式如式II所示的化合物:
其中,M为一价金属离子或是二价金属离子,n=2或n=3。
作为优选,所述M为钾离子、钠离子、锂离子、钙离子、镁离子或锌离子。
所述衍生物包括2一(a-羟基戊基)苯甲酸钾盐、[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-{2-甲氧基-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]}苯酯、[2-(1-哌啶基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-{2-甲氧基-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]}苯酯、[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-{2-甲氧基-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]}苯酯、[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]苯酯、[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-4-[2-(4-硝氧丁氧羰基)乙烯基]苯酯、[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-(4-硝氧)丁酯、[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-(4-硝氧)丁酯、[2-(1-哌啶基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-(4-硝氧)丁酯、[2-(1-二乙胺基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-[4-(2-硝氧乙基)]苯酯、[2-(1-哌啶基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-[4-(2-硝氧乙基)]苯酯、[2-(1-吗啉基乙酰氧)正戊基]苯甲酸-[4-(2-硝氧乙基)]苯酯。
本发明提供的丁基苯酞及其衍生物可以延缓SOD1-G93A转基因小鼠的发病时间,延长小鼠生存期,减少脊髓运动神经元退行性病变,使小鼠脊髓前角运动神经元的存活的数目明显增多,还可减少转基因鼠电生理的异常,复合肌肉动作电位波幅和运动单位数目均明显改善,小鼠脊髓星形胶质细胞和小胶质细胞的激活得到了显著的抑制,明显降低了iNOS、NF-κBp65的表达水平,可有效预防和治疗肌萎缩侧索硬化。
下面结合实施例,进一步阐述本发明:
实施例1:ALS转基因鼠的鉴定
目前广泛应用临床和基础研究的ALS转基因鼠是SOD1-G93A小鼠,它携带能表达人G93A(氨基酸链上第93位甘氨酸被丙氨酸替代)错义突变的SOD1基因,能模拟ALS慢性进展性的病程以及部分病理和生化表现。SOD1-G93A小鼠的主要特征:大约3-4个月出现后肢无力,悬尾时后肢震颤及外展无力,2周后小鼠1个或2个肢体瘫痪,逐渐出现毛发粗糙,消瘦,5个月后运动不能,最终因呼吸衰竭而死亡。
本发明所述ALS转基因小鼠(B6SJL-TgN[SOD1-G93A]1Gur,编号002726)购自美国Jackson Laboratory(Barharbor,ME,U.S.A)。
1.1子代鼠的鉴定
①DNA提取:剪取子代鼠的尾尖约2mm,置于一EP管中,加入150ul 50mM的NaOH,95℃孵育30分钟,涡漩使鼠尾尖充分消化后,加入12.5ul 1M Tris-HCL(PH=8.0),再涡旋,10,000rpm离心2分钟。基因组DNA即在上清液中。
②PCR反应:基因扩增条件为:95℃3min,然后95℃45S,60℃30s,(35个循环),72℃延伸5min。
③PCR产物分析:吸取10ul PCR产物,在2%琼脂糖凝胶上电泳,80V,45min,用全自动凝胶成像系统拍摄,上海英维俊生物公司进行产物的纯化和测序。
1.2ALS转基因鼠的表型特征:ALS鼠3个月左右逐渐出现悬尾肢体震颤,后肢无力,进行加重的爬行时步态不稳,摇摆,单侧或双侧肢体瘫痪,直至双后肢僵直不能爬行和自主进食。
1.3动物分组和给药(治疗给药)
1、消旋丁基苯酞组:分3个剂量(30mg/kg,60mg/kg,120mg/kg)SOD1-G93A阳性鼠日龄90日即开始每天灌胃给药,直至死亡;
2、溶剂对照组:SOD1-G93A阳性鼠日龄90日即开始予同体积的花生油灌胃;
3、正常对照组:野生型同窝SOD1-G93A阴性鼠日龄90日即开始予同体积的花生油灌胃。
实施例2:观察消旋丁基苯酞对ALS小鼠发病时间和生存期、运动功能的影响
每天观察所有SOD1-G93A转基因鼠的精神状态、病情进展、存活情况。发病的评判:连续2天观察出现肢体震颤和(或)肢体无力即判为发病死亡时间:将鼠置为仰卧位,30秒内不能翻身为俯卧位即判断死亡。
转棒实验:转棒实验可以评价运动的协调性、力量和平衡能力。实验鼠放置于直径3.5cm的转棒仪上,转速调至16rpm,记录坠落的最长潜伏期,以180秒为分界值,超过180秒按180秒记录,不足180秒按实际时间记录。小鼠运动能力的评测从70天开始,小鼠先8rpm练习5天使之习惯运动并获得一个基础运动值。每次实验重复3次并取其最好成绩记录,每只实验鼠每周测定2次。
悬线实验:主要评价小鼠的抓握力量。将实验鼠置于传统用的鼠笼盖上,轻轻震动鼠笼盖促使实验鼠紧握鼠笼盖,随后迅速翻转鼠笼盖,记录后肢离开笼盖的最长潜伏期,以90秒为分界值,超过90秒按90秒记录,不足90秒按实际时间记录。每次实验重复3次并取其最好成绩记录,每只实验鼠每周测定2次。
悬尾实验:悬吊鼠尾,观察后肢的伸展及其弯腰情况,并予评分——2分:正常;1分:部分正常;0分:缺失。
本发明人通过检测发病晚期小鼠的翻正反射确定小鼠的临床死亡时间,经统计分析发现,60mg/kg消旋丁基苯酞组小鼠的平均生存期比溶剂对照组延长了20天,30mg/kg和120mg/kg消旋丁基苯酞组小鼠的平均生存期比溶剂对照组未见有明显改变见图1。以上结果说明,消旋丁基苯酞延缓SOD1-G93A转基因小鼠的发病时间,延长小鼠生存期。
本发明人采用了Rotarod转棒仪、悬线实验、悬尾实验来检测小鼠的运动功能。ALS小鼠发病3周体重明显下降,消旋丁基苯酞60mg/kg组小鼠体重的降低被延缓,见图2。野生型小鼠始终能在最好的水平完成转棒和悬线实验。ALS小鼠发病后转棒实验和悬线实验的潜伏期逐渐缩短,在发病5周左右不能维持实验,而消旋丁基苯酞60mg/kg组小鼠运动功能评分的减低被延缓(见图3,图4)。
实施例3:ALS转基因鼠的电生理学检测
自发电位:实验鼠经10%水合氯醛麻醉,同心针电极插入后肢腓肠肌肌腹中,观察有无纤颤电位和(或)正锐波。
复合肌肉动作电位(CMAP)的记录:实验鼠经10%水合氯醛麻醉,刺激腰段脊旁坐骨神经,记录电极插入后肢腓肠肌肌腹中。给予超强刺激,得CMAP并记录,测量峰峰值表示CMAP波幅,并记录远端运动潜伏期(DML)。
运动单位数量(MUNE)评估:参照“统计学方法技术”的原理,实验鼠经10%水合氯醛麻醉,刺激腰段脊旁坐骨神经,记录电极插入后肢腓肠肌肌腹中。调整电极位置,以最小刺激强度获得最大复合肌肉动作电位(CMAP);并获得刺激反应功能曲线,保证起始部分和终止部分所包含的2~4个反应点位于同一水平,根据刺激反应功能曲线确定采样区间。首先选择曲线中相邻2个反应点间波幅差距最大的部分,作为第1个采样区间;选择曲线中相邻2个反应点间波幅差距次大的部分,作为第2个采样区间;选择曲线上相邻2个反应点间波幅差距,第3大的部分,作为第3个采样区间;最后选择曲线中相邻2个反应点间波幅差距最小的部分;作为第4个采样区间。调整刺激强度,使所获得的反应点均落于采样区间内,然后进行采样,采样时保证同一采样区间内至少存在连续且规律出现的两种类型的反应点,否则应扩大采样区间的范围,直至满足采样条件。同一采样区间可重复采样2~10次结束某一采样区间采样的条件为:所得运动单位电位波幅的标准差小于均数的10%,采样点直方图近似正态分布或略呈负性偏态分布。结束某一采样区间的采样后,可获得该区间的采样范围和运动单位数目估计测值。重复上述采样步骤,对下一个选定的采样区间进行检测,直至完成全部4个采样区间的采样最终获得复合肌肉动作电位波幅和运动单位数目。
复合肌肉动作电位(CMAP)波幅的大小主要反应了周围神经轴索的功能。运动单位数目的估计(MUNE)反应了有功能的运动单位的多少。
结果发现与正常对照组的小鼠比较ALS转基因鼠均有正锐波和纤颤电位,CMAP波幅(24.3±0.30mv vs 12.8±7.15mv)和MUNE(135.8±8.64vs 63.2±31.87)均明显下降。60mg/kg消旋丁基苯酞组较溶剂对照组的CMAP波幅(18.2±7.27mv vs 12.8±7.15mv,p<0.05)明显改善,见表1。MUNE(110.5±9.68vs 63.2±31.87p<0.05)明显改善,见表2。*P<0.01,#P<0.05。
表1复合肌肉动作波幅
*与正常对照组比较P<0.05
表2运动单位数目
*与正常对照组比较P<0.05
实施例4:ALS鼠腰段脊髓前角的病理学检测:脊髓组织学和运动神经元计数
导致SOD1-G93A转基因小鼠发生疾病的直接因素为脊髓前角运动神经元退行性变。尼氏染色可以表示出运动神经元的胞体及其胞核的状态。本发明人采用尼氏染色方法观察了小鼠脊髓前角神经元。
实验鼠10%水合氯醛深度麻醉后,用4℃生理盐水进行心脏灌注后,一部分脊髓(L4~L5段)用于组织病理学分析和免疫组化分析。脊髓取出后,浸泡于4%的多聚甲醛中4℃过夜,随后用10%,20%,30%的蔗糖溶液4℃分别处理24小时。另一部分脊髓(C1~L3段)用于western blot检测,其取出后迅速置于液氮中,~80℃冰箱保存。脊髓L4~L5段经上述处理后,石蜡包埋,脊髓连续切片的厚度为6μm,切片贴到多聚赖氨酸处理的载玻片上。为了计数运动神经元,脊髓L4-L5段连续切片200张,每7张取1张做尼氏染色。处理好的切片用显微镜明视野拍照后,计数。
计数的标准:计数的目的神经元所在的区域为脊髓前角部分,中央管以上的部分;运动神经元的直径在20μm以上;运动神经元有明显的细胞核。
Nissl染色的具体步骤如下:
(1)二甲苯脱蜡10min×2次;
(2)依次通过无水酒精,95%酒精,80%酒精,70%酒精
(3)蒸馏水冲洗5min×1次;
(4)切片入焦油紫工作液染色30分钟;
(5)切片入蒸馏水洗去浮色;
(6)切片入70%酒精、80%酒精、95%酒精分色;1分钟;镜下观察尼氏体颗粒清晰。
(7)切片入特殊分色液中退背景;100%酒精∶乙醚∶氯仿=1∶1∶1
(8)切片入无水酒精脱水,二甲苯I、二甲苯II透明,中性树胶封片。
通过对各组转基因小鼠脊髓((L4~L5段)组织切片,尼氏染色,显微镜观察和计数,发现与正常对照组小鼠对比,发病中期SOD1-G93A转基因小鼠脊髓前角运动神经元数目明显下降(8.5±2.92vs 28.5±6.36野生型P=0.000),而60mg/kg消旋丁基苯酞组可以有效保护脊髓前角运动神经元,使小鼠脊髓前角运动神经元的存活的数目明显增多(16.8±2.64vs 8.5±2.92,P=0.002),30mg/kg组无明显的保护脊髓前角运动神经元的作用(8.6±2.92vs 8.5±2.92,P>0.05),120mg/kg组也没有观察到明显的保护脊髓前角运动神经元的作用(8.5±0.87vs 8.5±2.92,P>0.05),结果见表3。说明消旋丁基苯酞减少了脊髓运动神经元退行性病变。
表3运动神经元计数
*与正常对照组比较P<0.01
形态学、组织学观察结果显示:SOD1-G93A转基因小鼠的发病症状与ALS患者的临床表现十分相似,表现为渐进性的肌无力,肌萎缩,直至瘫痪和死亡,病理改变时脊髓前角运动神经元选择性丢失。转基因鼠发病后逐渐出现双侧后肢的无力、瘫痪以致萎缩,60mg/kg消旋丁基苯酞组小鼠病理改变一定程度改善。
实施例5:消旋丁基苯酞对ALS转基因小鼠神经保护作用的机制
炎症反应在ALS病情的发生和发展中扮演重要的角色,胶质细胞的激活是SOD1-G93A转基因小鼠体内炎症反应的检测指标之一。本发明人使用CD11b和GFAP作为标记分别观察了转基因小鼠脊髓前角小胶质细胞和星形胶质细胞的形态。
本发明分别用CD11b和GFAP来检测脊髓切片(L4~L5段)来评估小胶质细胞和星形胶质细胞活化情况,研究消旋丁基苯酞对SOD1-G93A转基因鼠胶质细胞激活的影响。
免荧光染色的具体步骤如下:
(1)二甲苯脱蜡10min×2次;
(2)依次通过无水酒精,95%酒精,80%酒精,70%酒精
(3)蒸馏水冲洗5min×1次;
(4)抗原修复:枸橼酸盐缓冲液(pH=6.0)高压修复
(5)冷却至室温,蒸馏水冲洗2min×3次,甩干;
(6)3%过氧化氢室温孵育10min,甩干;
(7)0.01mmol/LPBS冲洗5min×3次;
(8)置于湿盒中,荧光笔画圈,3%胎牛血清室温孵育10min,倾去血清,勿洗;
(9)加入一抗GFAP(1∶800),CD11b(1∶100)30μl 4℃过夜,阴性对照加入抗体稀释液;
(10)取出湿盒,室温中静置30min,使其恢复室温;0.01mmol/LPBS冲洗5min×3次;
(11)分别滴加FITC标记的山羊抗大鼠IgG(1∶100),TRITC标记的山羊抗兔IgG(1∶100)室温孵育60分钟,PBS洗涤5min×3;
(12)甘油缓冲液封片后,荧光显微镜下观察。
结果发现,在野生型小鼠,小胶质细胞为分枝状,细胞体较小,显示为静息状态的小胶质细胞。在ALS小鼠,小胶质细胞CDllb表达增强,细胞突起增粗、缩短,并向病变神经元迁移,在运动神经元周围则呈圆形的巨噬细胞样形态,显示为充分活化的小胶质细胞。与溶剂对照组相比,消旋丁基苯酞60mg/kg能够明显减轻小胶质细胞的活化。另外,GFAP免疫荧光染色显示ALS小鼠星形胶质细胞免疫学标志GFAP上调,细胞增大。与溶剂对照组相比,消旋丁基苯酞60mg/kg能够明显减轻星形胶质细胞反应。说明消旋丁基苯酞抑制了转基因小鼠脊髓胶质细胞的激活。统计结果见图5和图6,*P<0.01。
实施例6:消旋丁基苯酞对SOD1-G93A转基因鼠iNOS、NF-κBp65蛋白表达的影响
炎症在ALS的发生和发展中起了非常重要的作用。本发明采用western blot检测了炎症相关指标iNOS、NF-κBp65蛋白的表达。
脊髓(C1~L3段)标本从~80℃冰箱中取出后,置于RIPA裂解液中,超声破碎1分钟,12000rpm,4℃离心,15分钟,取上清。分装后保存于-80℃冰箱备用。SDS-PAGE电泳,转膜,封闭液,硝酸纤维素膜室温封闭1小时。一抗(iNOS、NF-κBp65)4℃孵育过夜。二抗,室温孵育1小时。采用化学发光法显影,拍照。
结果发现,与野生型小鼠相比转基因小鼠iNOS、NF-κBp65的水平明显升高。消旋丁基苯酞60mg/kg明显降低了iNOS、NF-κBp65的水平,见图7,统计结果显示其差异具有显著性。说明消旋丁基苯酞抑制了ALS转基因小鼠脊髓炎症相关蛋白的水平,减少炎症的发生。
实施例7:消旋丁基苯酞对ALS转基因鼠发病时间的影响
参照实验例1对实验动物分组(预防给药),实验鼠分为:
1.消旋丁基苯酞组:剂量(60mg/kg)
SOD1-G93A阳性鼠日龄42天即开始每天灌胃给药,直至死亡;
2.溶剂对照组:SOD1-G93A阳性鼠日龄42天即开始予同体积的花生油灌胃;
3.正常对照组:野生型同窝SOD1-G93A阴性鼠日龄42天即开始予同体积的花生油灌胃。
ALS鼠发病和死亡的判断标准参照实施例2。
结果发现,消旋丁基苯酞60mg/kg组小鼠比溶剂对照组小鼠平均的发病时间延缓了15天(113.5±13.71vs 98±8.72)。见图8。
实施例8:左旋丁基苯酞对ALS转基因鼠生存期和发病时间的影响
参照实施例1对实验动物分组(预防给药),实验鼠分为:
左旋丁基苯酞组:剂量30mg/kg,SOD1-G93A阳性鼠日龄42目即开始每天灌胃给药,直至死亡;
溶剂对照组:SOD1-G93A阳性鼠日龄42天即开始予同体积的花生油灌胃;
正常对照组:野生型同窝SOD1-G93A阴性鼠日龄42天即开始予同体积的花生油灌胃。
ALS鼠发病和死亡的判断标准参照实施例2。
参照实施例4,采用了Rotarod转棒仪、悬线实验、悬尾实验来检测小鼠的运动功能,发现左旋丁基苯酞30mg/kg组小鼠比溶剂对照小鼠延缓发病时间17天(100.2±5.52VS 117.1±12.57)见图9,延长生存期21天(157.9±4.81VS 178.8±12.29),见图10。
以上结果说明,左旋丁基苯酞也可延缓SOD1-G93A转基因小鼠的发病时间,延长小鼠生存期,与消旋丁基苯酞具有相似的药理作用。
实施例9:左旋丁基苯酞对ALS转基因鼠电生理学检测的影响
参照实施例3的方法,对各组进行复合肌肉动作电位(CMAP)的记录以及运动单位数量(MUNE)评估,结果见表4和表5。
表4复合肌肉动作电位
*与对照组比较P<0.05
表5运动单位数目估计
*与对照组比较P<0.05
实施例10:左旋丁基苯酞对ALS鼠腰段脊髓前角运动神经元计数的影响
参照实施例4,实验鼠10%水合氯醛深度麻醉后,用4℃生理盐水进行心脏灌注后,一部分脊髓(L4~L5段)用于组织病理学分析和免疫组化分析。脊髓取出后,浸泡于4%的多聚甲醛中4℃过夜,随后用10%,20%,30%的蔗糖溶液4℃分别处理24小时。再依次入30%、50%、70%酒精处理24小时脊髓L4~L5段经上述处理后,石蜡包埋,脊髓连续切片的厚度为6μm,切片贴到多聚赖氨酸处理的载玻片上。为了计数运动神经元,脊髓L4-L5段连续切片200张,每7张取1张做尼氏染色。处理好的切片用显微镜明视野拍照后,计数。
计数的标准:计数的目的神经元所在的区域为脊髓前角部分,中央管以上的部分;运动神经元的直径在20μm以上;运动神经元有明显的细胞核,结果见表6,说明左旋丁基苯酞减少了脊髓运动神经元退行性病变。
表6运动神经元计数
*与对照组比较P<0.01
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。