CN102338801A - 一种高灵敏度免疫芯片检测系统及其使用方法 - Google Patents
一种高灵敏度免疫芯片检测系统及其使用方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102338801A CN102338801A CN2011102240631A CN201110224063A CN102338801A CN 102338801 A CN102338801 A CN 102338801A CN 2011102240631 A CN2011102240631 A CN 2011102240631A CN 201110224063 A CN201110224063 A CN 201110224063A CN 102338801 A CN102338801 A CN 102338801A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- solution
- liquid
- concentration
- liter
- mole
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
本发明涉及一种高灵敏度蛋白芯片检测系统及其使用方法，属于生物芯片技术领域。它包括芯片反应系统和显色系统；芯片反应系统包括载体、反应液和洗涤液；显色系统包括检测液和终止液；所述载体上包被有能与生物学指标特异性结合的探针点阵或质控点；反应液包括两种，一种为能与生物学指标结合的生物素标记物，另一种为过氧化物辣根酶与链霉亲和素的复合物；或者反应液为过氧化物辣根酶标记的能与生物学指标相结合的物质；终止液为0.01～10.0（w/v）%的叠氮钠溶液。本发明具有检测速度快、灵敏度高的优点。
Description
技术领域
本发明涉及一种高灵敏度蛋白芯片检测系统及其使用方法，属于生物芯片技术领域。
背景技术
在现代血清学检测技术中，除了ELISA法之外，还经常采用放免法以及化学发光法等。ELISA法在临床实验室已得到普遍的应用，特别是用于各型肝炎标志物的检测。但ELISA法由于操作程序复杂，时间较长，且需要价格昂贵的酶标仪等实验室非通用设备。ELISA法需时较长的主要原因，是由于液相中的抗原（或抗体）需经扩散才能与固相上的抗原或抗体反应不适当地缩短反应时间，将使灵敏度降至临床要求以下。一步法快速检测试剂盒，虽可提高检测速度，但有出现假阴性结果的弊端。放免法只能进行单一指标的检测，单个指标检测也需要2～4h，也需要价格昂贵的R-计数器等专用设备，且存在着放射性衰减和污染。化学发光检测时间短且灵敏度高，但仍是标记方法的间接判读结果，未引入分子量等更为客观的结果判读体系，检测正确度易受影响，对每种指标的检测需专供设计，如多种抗体的检测存在检测时间长、成本较高的问题，不利于基层临床检验活动的开展。
发明内容
本发明的目的是为解决现有技术中存在的问题，提供一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，该系统用于检测时具有检测速度快、灵敏度高的优点，它不需要荧光扫描仪等昂贵的设备，不需复杂的操作，不受实验条件的限制，在操作完成后即可直接或间接观察结果，大大缩短检测时间和劳动强度。
本发明的上述技术目的是通过以下技术方案得以实现的：
一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，它包括芯片反应系统和显色系统；芯片反应系统包括载体、反应液和洗涤液；显色系统包括检测液和终止液；
所述载体上包被有能与生物学指标特异性结合的探针点阵或质控点；
反应液包括两种，一种为能与生物学指标结合的生物素标记物，另一种为过氧化物辣根酶与链霉亲和素的复合物；或者
反应液为过氧化物辣根酶标记的能与生物学指标相结合的物质；
终止液为0.01～10.0（w/v）%的叠氮钠溶液。
本发明上述技术方案中，与生物学指标可特异性结合的物质可以是抗原、抗体、SPA蛋白、羊抗检测样本来源种属IgG、鼠抗检测样本来源种属IgG、其他动物免疫的抗检测样本来源种属IgG、生物学指标的多克隆抗体等。
本发明上述技术方案中，所述载体可以是羧基化等修饰后的载体，一般未修饰的载体其连接方式是物理吸附，修饰后的载体其连接方式是共价键结合；但无论是物理吸附和共价键结合均不会对本发明的检测产生本质影响。
作为上述技术方案的优选，所述洗涤液的配方如下：0.1～10（v/v）%的TWEEN-20、0.01～0.2摩尔每升pH6～8的 PB缓冲液、0.1～20（v/v）%的proclin300。
作为上述技术方案的优选，所述检测液包括pH4～7的A液和pH2～7的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.005～0.5（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.01～0.2摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.01～0.1摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.01～1.0毫克每毫升。
作为上述技术方案的优选，所述载体为孔径在0.1～12微米的多孔性微孔滤膜。
作为上述技术方案的优选，所述多孔性微孔滤膜为纤维素类微孔滤膜、尼龙类微孔滤膜或聚氟乙烯类微孔滤膜。
所述纤维素类微孔滤膜是指硝酸纤维素膜、醋酸纤维素膜、醋酸纤维素与硝酸纤维素的混合物制成的膜、纤维素膜、玻璃纤维素膜等。
所述聚氟乙烯类微孔滤膜是指具偏氟乙烯膜和具四氟乙烯膜等。
作为上述技术方案的另一种优选，所述载体还可以是聚乙烯、聚苯乙烯、硅橡胶或玻璃材料制成的各种可用于生物学检测的承载体。
本发明的另一个目的是提供一种高灵敏度蛋白芯片检测系统的使用方法，它包括以下步骤：
1）蛋白反应芯片的制作
用点样仪将一种或多种能与生物学指标结合的探针溶液或质控点以点阵的形式固化于载体上，室温干燥，2～8℃密封保存；
2）点样稀释液的配制
配制浓度为0.01～0.5摩尔每升的PB缓冲液，其中含有浓度为0.01～20%的水溶性色素；
3）封闭液的配制
封闭液的配方如下：浓度为1～10（w/v）%的BSA溶液、浓度为1～10（w/v）%的蔗糖溶液、浓度为0.1～10（v/v）%的TWEEN-20、0.1～20（v/v）的proclin300、浓度为0.01～0.2摩尔每升 pH为6～8的 PB缓冲液；
4）洗涤液的配制
洗涤液的配方如下：0.1～10%（v/v）的TWEEN-20、0.01～0.2摩尔每升pH6～8的 PB缓冲液、0.1～20（v/v）%的proclin300；
5）能与生物学探针结合物质的生物素标记
①用无水DMSO配置1～20毫克每毫升的生物素Ｎ－羟基琥珀酰亚胺酯溶液；
②用浓度为0.01～0.2摩尔每升pH6～9的硼酸盐缓冲液为溶剂配制浓度至少为0.5～5毫克每升的能与生物学探针结合物质溶液；
③按10～200微克每毫克的比率将生物素酯加入上述能与生物学探针结合物质溶液中，混合均匀后并在室温下孵育1 h～6h；
④按每100～500微克生物素酯内加入1～100微升的浓度为0.5～2.0摩尔每升的氯化铵，室温孵育5～60min；
⑤将经过步骤③的能与生物学探针结合物质溶液用0.01～0.2 摩尔每升的 PBS、CBS、醋酸盐缓冲液、碳酸盐缓冲液或柠檬酸盐缓冲液透析2～48h进行纯化，或再用蛋白A或蛋白G层析柱再次纯化能与生物学探针结合物质；
6）链霉亲和素能可与生物学探针结合物质与过氧化物辣根酶的复合物标记
①新鲜配制1.0～10.0毫克每毫升的HRP溶液；
②向HRP溶液中加入0.1～1.0ml新鲜配制的0.01～2.0摩尔每升的过碘酸钠，室温下避光静置或搅拌；
③将步骤②制得的溶液装入透析袋中，用1～10 毫摩每升的pH为4～7的醋酸钠缓冲液进行透析，2～6℃静置或搅拌；
④向步骤③制得的溶液中加入10～100微升0.1～1.0摩尔每升的 pH为7～10碳酸盐缓冲液；
⑤向步骤④制得的溶液中加入0.1～10毫克的链霉亲和素或能与生物学探针结合物质，室温避光轻轻搅拌1～6小时；
⑥向步骤⑤制得的溶液中加0.1～1.0毫升新鲜配制的浓度为1～10毫克每毫升的NaBH４溶液混匀，2～6℃静置1～6小时；
⑦将步骤⑥制得的溶液装入透析袋中，用0.01～0.2摩尔每升pH为6～8的PBS溶液进行透析，2～6℃，过夜。
⑧将步骤⑦制得的透析液，在1000～10000 rpm条件下离心去沉淀，上清液为含HRP-链霉亲和素或HRP-能与生物学探针结合物质的复合物；
7）检测液的配制
检测液包括 pH4～7的A液和pH2～7的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.005～0.5（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.01～0.2摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.01～0.1摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.01～1.0毫克每毫升；
8）终止液的配制
配制浓度为0.01～10.0（w/v）%的叠氮钠溶液;
具体操作如下：
首先将检测样本加到蛋白芯片上，通过摇床温育的方式，使样本溶液中多种生物学指标与芯片载体上包被的对应探针进行特异性的反应结合，然后将反应完成的载体用洗涤液进行洗涤，以减少其它干扰物质的非特性结合；接下来加入步骤5）制备的生物素标记好的能与生物学探针结合物质和步骤6）制备好的过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物或HRP-能与生物学探针结合物质的复合物，进行摇床温育，这样就形成了载体-探针-生物学指标-步骤5）制备的生物素标记的能与生物学探针结合物质-链霉亲和素-过氧化物辣根酶的复合物或载体-探针-生物学指标-能与生物学探针结合物质-过氧化物辣根酶的复合物，再将反应完成的载体表面用洗涤液进行洗涤，再加入检测液A液与B液的混合液以及终止液，完成整个芯片的反应过程，最后弃去载体上所有液体；如果待测样本中含有目标检测的生物学功能指标，在显色完成后通过肉眼颜色识别完成样本的检测，或通过检测系统完成对颜色点阵的信号读取后与检测仪中设置的色卡进行自动比对完成样本的检测；
或
首先将封闭液滴加蛋白芯片中，再将检测样本加入蛋白芯片中，使样本溶液中的生物学指标与芯片载体上包被的对应探针进行特异性的反应结合，然后将反应完成的膜面滴加洗涤液进行洗涤，以减少其它干扰物质的非特性结合，接下来加入步骤5）制备的生物素标记好的能与生物学探针结合物质和步骤6）制备好的过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物或HRP-能与生物学探针结合物质的复合物，进行摇床温育，这样就形成了载体-探针-生物学指标-步骤5）制备的生物素标记的能与生物学探针结合物质-链霉亲和素-过氧化物辣根酶的复合物或载体-探针-生物学指标-能与生物学探针结合物质-过氧化物辣根酶的复合物，再将反应完成的载体表面用洗涤液进行洗涤，再加入检测液A液与B液的混合液以及终止液，完成整个芯片的反应过程，最后弃去载体上所有液体；如果待测样本中含有目标检测的生物学功能指标，在显色完成后通过肉眼颜色识别完成样本的检测，或通过检测系统完成对颜色点阵的信号读取后与检测仪中设置的色卡进行自动比对完成样本的检测。
综上所述，本发明具有以下有益效果：
1、本发明参照胶体金免疫渗滤法和生物芯片的主要技术优势和实现方式，最大限度的发挥检测快速、操作简单、检测时间短和劳动强度低等等优势；
2、选用合适的载体以及修饰后的载体，载体上可同时包被一种、两种或多种与生物学指标可特异性结合的探针，以实现检测多元化，最大程度发挥此平台并行检测的优势，为临床检测提供更为丰富的数据用于医院、基层卫生服务站等医疗机构的大规模筛查、监测或辅助判断；
3、目前蛋白芯片无法在探针包被阶段使每个点阵有颜色显示，因为这样最终的显色会受到点阵颜色的直接的干扰，降低了产品的灵敏度和准确度；而本发明采用水溶性的色素对包被阶段的探针点阵进行着色，而在封闭操作后颜色彻底消失，这样不仅有利于在探针包被和产品装配阶段对产品质量进行方便、有效的控制，而且还不会对最终的检测结果进行任何干扰；
4、本发明引入生物素-亲和素信号放大系统，进一步提高免疫芯片检测方法的检测灵敏度，进一步拓宽蛋白芯片系统的检测范围，以适应目前临床检测不断发展的要求；
5、本发明将胶体金蛋白芯片检测方法和化学发光检测方法相结合，摒弃了胶体金作为蛋白芯片方法的显色系统，采用了化学发光检测中的HRP-TMB显色系统，同时TMB溶液采用优化后的方法进行自行配制，进一步提高的免疫芯片检测方法的检测灵敏度；
6、本发明采用的终止液为自制配方，本法可长时间保存免疫渗滤芯片显色后的点阵，避免了胶体金显色点阵时间久置后颜色消失而导致不利于检测结果的保存、复核和追溯的问题；
7、本发明在反应显色后，既可采用肉眼直接比对的方式，也可采用自制的检测仪器，对显色后的各显色点信号进行自动读取，进一步丰富了判读方式，增加了判读方式的可选择性和灵活性，提高了检测的准确性。
具体实施方式
本具体实施例仅仅是对本发明的解释，其并不是对本发明的限制，本领域技术人员在阅读完本说明书后可以根据需要对本实施例做出没有创造性贡献的修改，但只要在本发明的权利要求范围内都受到专利法的保护。
实施例一
一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，它包括芯片反应系统和显色系统；芯片反应系统包括载体、反应液和洗涤液；显色系统包括检测液和终止液；
所述载体上包被有能与生物学指标特异性结合的探针点阵或质控点；
反应液包括两种，一种为能与生物学指标结合的生物素标记物，另一种为过氧化物辣根酶与链霉亲和素的复合物；
所述检测液包括pH4的A液和pH2的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.005（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.01摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.01摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.01毫克每升；
所述洗涤液的配方如下：0.1（v/v）%的TWEEN-20、0.01摩尔每升pH6的 PB缓冲液、0.1（v/v）%的proclin300；
终止液为0.01（w/v）%的叠氮钠溶液；
所述载体为孔径在0.1微米的多孔性硝酸纤维素微孔滤膜。
下面通过一种高灵敏度I型糖尿病多种抗体试剂盒（免疫渗滤法）的设计来阐述本发明。
包括以下步骤：
1）免疫渗滤反应芯片的制作
用点样仪将确定浓度的谷氨酸脱羧酶-65、ICA、胰岛素、酪氨酸磷酸酶、ZnT8A、羧基肽酶-H、HSP65、抗胰岛受体共8种或其中的几种抗原溶液和质控点以点阵的形式固化于硝酸纤维素膜上，室温干燥2小时，2～8℃密封保存；
2）点样稀释液的配制
配制浓度为0.01摩尔每升的PB缓冲液，其中含有浓度为0.01的水溶性色素苋菜红；
3）封闭液的配制
封闭液的配方如下：浓度为1（w/v）%的BSA溶液、浓度为1%的蔗糖溶液、浓度为0.1%的TWEEN-20、0.1的proclin300、浓度为0.01摩尔每升 pH为6的 PB缓冲液；
4）洗涤液的配制
洗涤液的配方如下：0.1（v/v）的TWEEN-20、0.01摩尔每升pH6的 PB缓冲液、0.1（v/v）%的proclin300；
5）抗体标记
①用无水DMSO配置1～20毫克每毫升的生物素Ｎ－羟基琥珀酰亚胺酯溶液；
②用浓度为0.01摩尔每升pH6的硼酸盐缓冲液为溶剂配制浓度至少为0.5毫克每升的抗体溶液；
③按10微克每毫克的比率将生物素酯加入上述抗体溶液中，混合均匀后并在室温下孵育1 h；
④按每100微克生物素酯内加入1微升的浓度为0.5摩尔每升的氯化铵，室温孵育5min；
⑤将经过步骤③的抗体溶液用0.01 摩尔每升的 PBS、CBS、醋酸盐缓冲液、碳酸盐缓冲液或柠檬酸盐缓冲液透析2h进行纯化，或再用蛋白A或蛋白G层析柱再次纯化抗体；
6）过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物标记
①新鲜配制1.0毫克每毫升的HRP溶液；
②向HRP溶液中加入0.1ml新鲜配制的0.01摩尔每升的过碘酸钠，室温下避光静置或搅拌；
③将步骤②制得的溶液装入透析袋中，用1 毫摩每升的pH为4的醋酸钠缓冲液进行透析，2℃静置或搅拌；
④向步骤③制得的溶液中加入10微升0.1摩尔每升的 pH为7碳酸盐缓冲液；
⑤向步骤④制得的溶液中加入0.1毫克的链霉亲和素，室温避光轻轻搅拌1小时；
⑥向步骤⑤制得的溶液中加0.1毫升新鲜配制的浓度为1毫克每毫升的NaBH４溶液混匀，2℃静置1小时；
⑦将步骤⑥制得的溶液装入透析袋中，用0.01摩尔每升pH为6的PBS溶液进行透析，2℃，过夜。
⑧将步骤⑦制得的透析液，在1000 rpm条件下离心去沉淀，上清液为含HRP-链霉亲和素的结合物；
7）检测液的配制
检测液包括 pH4的A液和pH2的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.005（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.01摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.01摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.01毫克每毫升；
8）终止液的配制
配制浓度为0.01（w/v）%的叠氮钠溶液;
首先将封闭液滴加免疫渗滤芯片中，再将检测样本加入免疫渗滤芯片中，通过渗滤的方式，使样本溶液中的抗体与芯片载体上包被的对应抗原进行特异性的反应结合，然后将反应完成的膜面滴加洗涤液进行洗涤，以减少其它干扰物质的非特性结合，接下来加入步骤5）制备的生物素标记好的抗体和步骤6）制备好的过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物，进行摇床温育，这样就形成了载体-抗原-抗体-步骤5）制备的标记好的抗体IgG-链霉亲和素-过氧化物辣根酶的复合物，再将反应完成的载体表面用洗涤液进行洗涤，再加入TMB A液与B液的混合液以及终止液，完成整个芯片的反应过程，最后弃去载体上所有液体；如果待测样本中含有目标检测的生物学功能指标，在显色完成后通过肉眼颜色识别完成样本的检测，或通过检测系统完成对颜色点阵的信号读取后与检测仪中设置的色卡进行自动比对完成样本的检测。
实施例二
一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，它包括芯片反应系统和显色系统；芯片反应系统包括载体、反应液和洗涤液；显色系统包括检测液和终止液；
所述载体上包被有能与生物学指标特异性结合的探针点阵或质控点；
反应液包括两种，一种为能与生物学指标结合的生物素标记物，另一种为过氧化物辣根酶与链霉亲和素的复合物；
所述检测液包括pH5的A液和pH3的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.01（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.04摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.02摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.02毫克每毫升；
所述洗涤液的配方如下：0.5（v/v）%的TWEEN-20、0.04摩尔每升pH6的 PB缓冲液、1（v/v）%的proclin300；
终止液为0.05（w/v）%的叠氮钠溶液；
所述载体为孔径在0.1～1微米的多孔性醋酸纤维素膜微孔滤膜。
下面通过一种高灵敏度I型糖尿病多种抗体检测试剂盒（免疫渗滤法）的设计来阐述本发明。
包括以下步骤：
1）免疫渗滤反应芯片的制作
用点样仪将将确定浓度的谷氨酸脱羧酶-65、ICA、胰岛素、酪氨酸磷酸酶、ZnT8A、羧基肽酶-H、HSP65、抗胰岛受体共8种或其中的几种抗原溶液和质控点以点阵的形式固化于载体上，室温干燥，2～8℃密封保存；
2）点样稀释液的配制
配制浓度为0.05摩尔每升的PB缓冲液，其中含有浓度为1%的水溶性色素胭脂红；
3）封闭液的配制
封闭液的配方如下：浓度为2（w/v）%的BSA溶液、浓度为2（w/v）%的蔗糖溶液、浓度为0.5（v/v）%的TWEEN-20、1（v/v）的proclin300、浓度为0.04摩尔每升 pH为6的 PB缓冲液；
4）洗涤液的配制
洗涤液的配方如下：0.5%（v/v）的TWEEN-20、0.04摩尔每升pH6的 PB缓冲液、1（v/v）%的proclin300；
5）抗体标记
①用无水DMSO配置2毫克每毫升的生物素Ｎ－羟基琥珀酰亚胺酯溶液；
②用浓度为0.04摩尔每升pH7的硼酸盐缓冲液为溶剂配制浓度至少为1毫克每升的抗体溶液；
③按40微克每毫克的比率将生物素酯加入上述抗体溶液中，混合均匀后并在室温下孵育2h；
④按每200微克生物素酯内加入10微升的浓度为0.8摩尔每升的氯化铵，室温孵育10min；
⑤将经过步骤③的抗体溶液用0.04 摩尔每升的 PBS、CBS、醋酸盐缓冲液、碳酸盐缓冲液或柠檬酸盐缓冲液透析10h进行纯化，或再用蛋白A或蛋白G层析柱再次纯化抗体；
6）过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物标记
①新鲜配制2毫克每毫升的HRP溶液；
②向HRP溶液中加入0.2ml新鲜配制的0.05摩尔每升的过碘酸钠，室温下避光静置或搅拌；
③将步骤②制得的溶液装入透析袋中，用2 毫摩每升的pH为5的醋酸钠缓冲液进行透析，3℃静置或搅拌；
④向步骤③制得的溶液中加入20微升0.2摩尔每升的 pH为7碳酸盐缓冲液；
⑤向步骤④制得的溶液中加入0.5毫克的链霉亲和素，室温避光轻轻搅拌2小时；
⑥向步骤⑤制得的溶液中加0.2毫升新鲜配制的浓度为2毫克每毫升的NaBH４溶液混匀，3℃静置2小时；
⑦将步骤⑥制得的溶液装入透析袋中，用0.04摩尔每升pH为6的PBS溶液进行透析，3℃，过夜。
⑧将步骤⑦制得的透析液，在2000 rpm条件下离心去沉淀，上清液为含HRP-链霉亲和素的结合物；
7）检测液的配制
检测液包括 pH5的A液和pH3的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.01（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.04摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.02摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.02毫克每毫升；
8）终止液的配制
配制浓度为0.5（w/v）%的叠氮钠溶液;
首先将封闭液滴加免疫渗滤芯片中，再将检测样本加入免疫渗滤芯片中，通过渗滤的方式，使样本溶液中的抗体与芯片载体上包被的对应抗原进行特异性的反应结合，然后将反应完成的膜面滴加洗涤液进行洗涤，以减少其它干扰物质的非特性结合，接下来加入步骤5）制备的标记好的抗体和步骤6）制备好的过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物，进行摇床温育，这样就形成了载体-抗原-抗体-步骤5）制备的标记好的抗体IgG-链霉亲和素-过氧化物辣根酶的复合物，再将反应完成的载体表面用洗涤液进行洗涤，再加入TMB A液与B液的混合液以及终止液，完成整个芯片的反应过程，最后弃去载体上所有液体；如果待测样本中含有目标检测的生物学功能指标，在显色完成后通过肉眼颜色识别完成样本的检测，或通过检测系统完成对颜色点阵的信号读取后与检测仪中设置的色卡进行自动比对完成样本的检测。
实施例三
一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，它包括芯片反应系统和显色系统；芯片反应系统包括载体、反应液和洗涤液；显色系统包括检测液和终止液；
所述载体上包被有能与生物学指标特异性结合的探针点阵或质控点；
反应液包括两种，一种为能与生物学指标结合的生物素标记物，另一种为过氧化物辣根酶与链霉亲和素的复合物；
所述检测液包括pH5的A液和pH4的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.05（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.08摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.04摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.05毫克每毫升；
所述洗涤液的配方如下：1（v/v）%的TWEEN-20、0.08摩尔每升pH7的 PB缓冲液、2（v/v）%的proclin300。
终止液为1（w/v）%的叠氮钠溶液。
所述载体为孔径在0.1～12微米的多孔性聚偏氟乙烯微孔滤膜。
下面通过一种高灵敏度I型糖尿病多种抗体检测试剂盒（免疫渗滤法）的设计来阐述本发明。
包括以下步骤：
1）免疫渗滤反应芯片的制作
用点样仪将确定浓度的谷氨酸脱羧酶-65、ICA、胰岛素、酪氨酸磷酸酶、ZnT8A、羧基肽酶-H、HSP65、抗胰岛素共8种或其中的几种抗原溶液和质控点以点阵的形式固化于多孔性聚偏氟乙烯微孔滤膜上，室温干燥，2～8℃密封保存；
2）点样稀释液的配制
配制浓度为0.1摩尔每升的PB缓冲液，其中含有浓度为2%的水溶性色素亮蓝；
3）封闭液的配制
封闭液的配方如下：浓度为4（w/v）%的BSA溶液、浓度为4（w/v）%的蔗糖溶液、浓度为1（v/v）%的TWEEN-20、2（v/v）的proclin300、浓度为0.08摩尔每升 pH为7的 PB缓冲液；
4）洗涤液的配制
洗涤液的配方如下：1%（v/v）的TWEEN-20、0.08摩尔每升pH7的 PB缓冲液、2（v/v）%的proclin300；
5）抗体标记
①用无水DMSO配置5毫克每毫升的生物素Ｎ－羟基琥珀酰亚胺酯溶液；
②用浓度为0.08摩尔每升pH7的硼酸盐缓冲液为溶剂配制浓度至少为2毫克每升的抗体溶液；
③按80微克每毫克的比率将生物素酯加入上述抗体溶液中，混合均匀后并在室温下孵育3h；
④按每300微克生物素酯内加入20微升的浓度为1.2摩尔每升的氯化铵，室温孵育20min；
⑤将经过步骤③的抗体溶液用0.08摩尔每升的 PBS、CBS、醋酸盐缓冲液、碳酸盐缓冲液或柠檬酸盐缓冲液透析20h进行纯化，或再用蛋白A或蛋白G层析柱再次纯化抗体；
6）过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物标记
①新鲜配制4.0毫克每毫升的HRP溶液；
②向HRP溶液中加入0.4ml新鲜配制的0.1摩尔每升的过碘酸钠，室温下避光静置或搅拌；
③将步骤②制得的溶液装入透析袋中，用4 毫摩每升的pH为5的醋酸钠缓冲液进行透析，4℃静置或搅拌；
④向步骤③制得的溶液中加入40微升0.4摩尔每升的 pH为8的碳酸盐缓冲液；
⑤向步骤④制得的溶液中加入1毫克的链霉亲和素，室温避光轻轻搅拌3小时；
⑥向步骤⑤制得的溶液中加0.4毫升新鲜配制的浓度为4毫克每毫升的NaBH４溶液混匀，4℃静置3小时；
⑦将步骤⑥制得的溶液装入透析袋中，用0.08摩尔每升pH为7的PBS溶液进行透析，4℃，过夜。
⑧将步骤⑦制得的透析液，在4000 rpm条件下离心去沉淀，上清液为含HRP-链霉亲和素的结合物；
7）检测液的配制
检测液包括 pH5的A液和pH4的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.05（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.08摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.04摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.05毫克每毫升；
8）终止液的配制
配制浓度为1（w/v）%的叠氮钠溶液;
首先将封闭液滴加免疫渗滤芯片中，再将检测样本加入免疫渗滤芯片中，通过渗滤的方式，使样本溶液中的抗体与芯片载体上包被的对应抗原进行特异性的反应结合，然后将反应完成的膜面滴加洗涤液进行洗涤，以减少其它干扰物质的非特性结合，接下来加入步骤5）制备的标记好的抗体和步骤6）制备好的过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物，进行摇床温育，这样就形成了载体-抗原-抗体-步骤5）制备的标记好的抗体IgG-链霉亲和素-过氧化物辣根酶的复合物，再将反应完成的载体表面用洗涤液进行洗涤，再加入TMB A液与B液的混合液以及终止液，完成整个芯片的反应过程，最后弃去载体上所有液体；如果待测样本中含有目标检测的生物学功能指标，在显色完成后通过肉眼颜色识别完成样本的检测，或通过检测系统完成对颜色点阵的信号读取后与检测仪中设置的色卡进行自动比对完成样本的检测。
实施例四
一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，它包括芯片反应系统和显色系统；芯片反应系统包括载体、反应液和洗涤液；显色系统包括检测液和终止液；
所述载体上包被有能与生物学指标特异性结合的探针点阵或质控点；
反应液包括两种，一种为能与生物学指标结合的生物素标记物，另一种为过氧化物辣根酶与链霉亲和素的复合物；
所述检测液包括pH6的A液和pH5的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.1（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.12摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.06摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.1毫克每毫升；
所述洗涤液的配方如下：2（v/v）%的TWEEN-20、0.12摩尔每升pH7的 PB缓冲液、5（v/v）%的proclin300。
终止液为2（w/v）%的叠氮钠溶液。
所述载体为玻片。
下面通过一种高灵敏度结核分枝杆菌多种抗体蛋白芯片检测系统的设计来进一步阐述本发明。
包括以下步骤：
1）免疫反应芯片的制作
用点样仪将确定浓度的LAM、ESAT-6、Ag85A、Ag85B、16kDa、38kDa、CFP10、MPT63、MPT64、MPT70、MPT53、MPT81、MPT84、CFP32、Mtb8、Mtb8.4、Mtb16.3、CFP10-ESAT6融合蛋白、MPT63-MPT70融合蛋白、16kDa-38kDa融合蛋白共20种或其中的几种抗原溶液和质控点以点阵的形式固化于活化后的羧基化玻片上，进行多人份装配和封闭操作，再室温干燥，2～8℃密封保存；
2）点样稀释液的配制
配制浓度为0.2摩尔每升的PB缓冲液，其中含有浓度为5%的水溶性色素果绿；
3）封闭液的配制
封闭液的配方如下：浓度为6（w/v）%的BSA溶液、浓度为6（w/v）%的蔗糖溶液、浓度为2（v/v）%的TWEEN-20、5（v/v）的proclin300、浓度为0.12摩尔每升 pH为7的 PB缓冲液；
4）洗涤液的配制
洗涤液的配方如下：2%（v/v）的TWEEN-20、0.12摩尔每升pH7的 PB缓冲液、5（v/v）%的proclin300；
5）抗体标记
①用无水DMSO配置10毫克每毫升的生物素Ｎ－羟基琥珀酰亚胺酯溶液；
②用浓度为0.12摩尔每升pH8的硼酸盐缓冲液为溶剂配制浓度至少为3毫克每升的抗体溶液；
③按120微克每毫克的比率将生物素酯加入上述抗体溶液中，混合均匀后并在室温下孵育4h；
④按每300微克生物素酯内加入40微升的浓度为1.4摩尔每升的氯化铵，室温孵育30min；
⑤将经过步骤③的抗体溶液用0.12 摩尔每升的 PBS、CBS、醋酸盐缓冲液、碳酸盐缓冲液或柠檬酸盐缓冲液透析28h进行纯化，或再用蛋白A或蛋白G层析柱再次纯化抗体；
6）过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物标记
①新鲜配制6.0毫克每毫升的HRP溶液；
②向HRP溶液中加入0.6ml新鲜配制的0.5摩尔每升的过碘酸钠，室温下避光静置或搅拌；
③将步骤②制得的溶液装入透析袋中，用6毫摩每升的pH为6的醋酸钠缓冲液进行透析，4℃静置或搅拌；
④向步骤③制得的溶液中加入60微升0.6摩尔每升的 pH为8碳酸盐缓冲液；
⑤向步骤④制得的溶液中加入2毫克的链霉亲和素，室温避光轻轻搅拌4小时；
⑥向步骤⑤制得的溶液中加0.6毫升新鲜配制的浓度为6毫克每毫升的NaBH４溶液混匀，4℃静置4小时；
⑦将步骤⑥制得的溶液装入透析袋中，用0.12摩尔每升pH为7的PBS溶液进行透析，4℃，过夜。
⑧将步骤⑦制得的透析液，在6000rpm条件下离心去沉淀，上清液为含HRP-链霉亲和素的结合物；
7）检测液的配制
检测液包括 pH6的A液和pH5的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.1（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.12摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.06摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.1毫克每毫升；
8）终止液的配制
配制浓度为2（w/v）%的叠氮钠溶液;
首先将检测样本加到蛋白芯片上，通过摇床温育的方式，使样本溶液中多种抗体与芯片载体上包被的对应抗原探针进行特异性共价的反应结合，然后将反应完成的载体用洗涤液进行洗涤，以减少其它干扰物质的非特性结合；接下来加入步骤5）制备的标记好的抗体和步骤6）制备好的过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物，进行摇床温育，这样就形成了载体-抗原-抗体-步骤5）制备的标记好的抗体IgG-链霉亲和素-过氧化物辣根酶的复合物，再将反应完成的载体表面用洗涤液进行洗涤，再加入TMB A液与B液的混合液以及终止液，完成整个芯片的反应过程，最后弃去载体上所有液体；如果待测样本中含有目标检测的生物学功能指标，在显色完成后通过肉眼颜色识别完成样本的检测，或通过检测系统完成对颜色点阵的信号读取后与检测仪中设置的色卡进行自动比对完成样本的检测。
实施例五
一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，它包括芯片反应系统和显色系统；芯片反应系统包括载体、反应液和洗涤液；显色系统包括检测液和终止液；
所述载体上包被有能与生物学指标特异性结合的探针点阵或质控点；
反应液包括两种，一种为能与生物学指标结合的生物素标记物，另一种为过氧化物辣根酶与链霉亲和素的复合物；
所述检测液包括pH6的A液和pH6的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.2（w/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.16摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.08摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.5毫克每毫升；
所述洗涤液的配方如下：5（v/v）%的TWEEN-20、0.16摩尔每升pH8的 PB缓冲液、10（v/v）%的proclin300。
终止液为5（w/v）%的叠氮钠溶液。
所述载体为硅橡胶片。
下面通过一种高灵敏度结核分枝杆菌多种抗体蛋白芯片检测系统的设计来进一步阐述本发明。
包括以下步骤：
1）免疫反应芯片的制作
载体上我们选用羧基化的硅橡胶片，用点样仪将确定浓度的LAM、ESAT-6、Ag85A、Ag85B、16kDa、38kDa、CFP10、MPT63、MPT64、MPT70、MPT53、MPT81、MPT84、CFP32、Mtb8、Mtb8.4、Mtb16.3、CFP10-ESAT6融合蛋白、MPT63-MPT70融合蛋白、16kDa-38kDa融合蛋白共20种或其中的几种抗原溶液和质控点以点阵的形式固化于活化后的羧基化硅橡胶片上，进行多人份装配和封闭操作，再室温干燥，2～8℃密封保存；
2）点样稀释液的配制
配制浓度为0.3摩尔每升的PB缓冲液，其中含有浓度为10%的水溶性色素牛奶巧克力棕；
3）封闭液的配制
封闭液的配方如下：浓度为8（w/v）%的BSA溶液、浓度为8（w/v）%的蔗糖溶液、浓度为5（v/v）%的TWEEN-20、10（v/v）的proclin300、浓度为0.16摩尔每升 pH为8的 PB缓冲液；
4）洗涤液的配制
洗涤液的配方如下：5%（v/v）的TWEEN-20、0.16摩尔每升pH8的 PB缓冲液、10（v/v）%的proclin300；
5）SPA抗体标记
①用无水DMSO配置15毫克每毫升的生物素Ｎ－羟基琥珀酰亚胺酯溶液；
②用浓度为0.16摩尔每升pH8的硼酸盐缓冲液为溶剂配制浓度至少为4毫克每升的SPA抗体溶液；
③按160微克每毫克的比率将生物素酯加入上述SPA抗体溶液中，混合均匀后并在室温下孵育5h；
④按每400微克生物素酯内加入60微升的浓度为1.6摩尔每升的氯化铵，室温孵育40min；
⑤将经过步骤③的SPA抗体溶液用0.16摩尔每升的 PBS、CBS、醋酸盐缓冲液、碳酸盐缓冲液或柠檬酸盐缓冲液透析38h进行纯化，或再用蛋白A或蛋白G层析柱再次纯化SPA抗体；
6）过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物标记
①新鲜配制8毫克每毫升的HRP溶液；
②向HRP溶液中加入0.8ml新鲜配制的1.0摩尔每升的过碘酸钠，室温下避光静置或搅拌；
③将步骤②制得的溶液装入透析袋中，用8毫摩每升的pH为6的醋酸钠缓冲液进行透析，5℃静置或搅拌；
④向步骤③制得的溶液中加入80微升0.8摩尔每升的 pH为9碳酸盐缓冲液；
⑤向步骤④制得的溶液中加入5毫克的链霉亲和素，室温避光轻轻搅拌5小时；
⑥向步骤⑤制得的溶液中加0.8毫升新鲜配制的浓度为8毫克每毫升的NaBH４溶液混匀，5℃静置5小时；
⑦将步骤⑥制得的溶液装入透析袋中，用0.16摩尔每升pH为8的PBS溶液进行透析，5℃，过夜。
⑧将步骤⑦制得的透析液，在8000 rpm条件下离心去沉淀，上清液为含HRP-链霉亲和素的结合物；
7）检测液的配制
检测液包括 pH6的A液和pH6的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.2（w/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.16摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.08摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.5毫克每毫升；
8）终止液的配制
配制浓度为5（w/v）%的叠氮钠溶液;
首先将检测样本加到蛋白芯片上，通过摇床温育的方式，使样本溶液中多种抗体与芯片载体上包被的对应抗原探针进行特异性的共价反应结合，然后将反应完成的载体用洗涤液进行洗涤，以减少其它干扰物质的非特性结合；接下来加入步骤5）标记好的SPA生物素化抗体和步骤6）制备好的过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物，进行摇床温育，这样就形成了载体-抗原-抗体-SPA生物素化抗体IgG-链霉亲和素-过氧化物辣根酶的复合物，再将反应完成的载体表面用洗涤液进行洗涤，再加入TMB A液与B液的混合液以及终止液，完成整个芯片的反应过程，最后弃去载体上所有液体；如果待测样本中含有目标检测的生物学功能指标，在显色完成后通过肉眼颜色识别完成样本的检测，或通过检测系统完成对颜色点阵的信号读取后与检测仪中设置的色卡进行自动比对完成样本的检测。
实施例六
一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，它包括芯片反应系统和显色系统；芯片反应系统包括载体、反应液和洗涤液；显色系统包括检测液和终止液；
所述载体上包被有能与生物学指标特异性结合的探针点阵或质控点；
反应液为过氧化物辣根酶标记的能与生物学指标相结合的物质；
所述检测液包括pH7的A液和pH7的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.5（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.2摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.1摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为1.0毫克每毫升；
所述洗涤液的配方如下： 10（v/v）%的TWEEN-20、0.2摩尔每升pH8的 PB缓冲液、20（v/v）%的proclin300。
终止液为10.0（w/v）%的叠氮钠溶液。
所述载体为尼龙膜。
下面通过一种高灵敏度结核分枝杆菌多种抗体蛋白芯片检测系统的设计来进一步阐述本发明。
包括以下步骤：
1）免疫反应芯片的制作
载体上我们选用尼龙膜，用点样仪将确定浓度的LAM、ESAT-6、Ag85A、Ag85B、16kDa、38kDa、CFP10、MPT63、MPT64、MPT70、MPT53、MPT81、MPT84、CFP32、Mtb8、Mtb8.4、Mtb16.3、CFP10-ESAT6融合蛋白、MPT63-MPT70融合蛋白、16kDa-38kDa融合蛋白共20种或其中的几种抗原溶液和质控点以点阵的形式固化于尼龙膜片上，进行多人份装配和封闭操作，再室温干燥，2～8℃密封保存；
2）点样稀释液的配制
配制浓度为0.5摩尔每升的PB缓冲液，其中含有浓度为20%的水溶性色素（葡萄紫）；
3）封闭液的配制
封闭液的配方如下：浓度为10（w/v）%的BSA溶液、浓度为10（w/v）%的蔗糖溶液、浓度为10（v/v）%的TWEEN-20、20（v/v）的proclin300、浓度为0.2摩尔每升 pH为8的 PB缓冲液；
4）洗涤液的配制
洗涤液的配方如下： 10%（v/v）的TWEEN-20、0.2摩尔每升pH8的 PB缓冲液、20（v/v）%的proclin300；
5）过氧化物辣根酶标记羊抗人IgG
①新鲜配制10.0毫克每毫升的HRP溶液；
②向HRP溶液中加入1.0ml新鲜配制的2.0摩尔每升的过碘酸钠，室温下避光静置或搅拌；
③将步骤②制得的溶液装入透析袋中，用10 毫摩每升的pH为7的醋酸钠缓冲液进行透析， 6℃静置或搅拌；
④向步骤③制得的溶液中加入100微升1.0摩尔每升的 pH为10碳酸盐缓冲液；
⑤向步骤④制得的溶液中加入10毫克的羊抗人IgG，室温避光轻轻搅拌6小时；
⑥向步骤⑤制得的溶液中加1.0毫升新鲜配制的浓度为10毫克每毫升的NaBH４溶液混匀， 6℃静置6小时；
⑦将步骤⑥制得的溶液装入透析袋中，用0.2摩尔每升pH为8的PBS溶液进行透析， 6℃，过夜。
⑧将步骤⑦制得的透析液，在10000 rpm条件下离心去沉淀，上清液为含HRP-羊抗人IgG的结合物；
6）检测液的配制
检测液包括 pH7的A液和pH7的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.5（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.2摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.1摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为1.0毫克每毫升；
7）终止液的配制
配制浓度为10.0（w/v）%的叠氮钠溶液;
首先将检测样本加到蛋白芯片上，通过摇床温育的方式，使样本溶液中多种抗体与芯片载体上包被的对应抗原探针进行特异性的反应结合，然后将反应完成的载体用洗涤液进行洗涤，以减少其它干扰物质的非特性结合；接下来加入步骤5）制备好的HRP-羊抗人IgG复合物，进行摇床温育，这样就形成了载体-抗原-抗体-HRP-羊抗人IgG的复合物，再将反应完成的载体表面用洗涤液进行洗涤，再加入TMB A液与B液的混合液以及终止液，完成整个芯片的反应过程，最后弃去载体上所有液体；如果待测样本中含有目标检测的生物学功能指标，在显色完成后通过肉眼颜色识别完成样本的检测，或通过检测系统完成对颜色点阵的信号读取后与检测仪中设置的色卡进行自动比对完成样本的检测。
Claims (7)
1.一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，其特征在于：它包括芯片反应系统和显色系统；芯片反应系统包括载体、反应液和洗涤液；显色系统包括检测液和终止液；
所述载体上包被有能与生物学指标特异性结合的探针点阵或质控点；
反应液包括两种，一种为能与生物学指标结合的生物素标记物，另一种为过氧化物辣根酶与链霉亲和素的复合物；或者
反应液为过氧化物辣根酶标记的能与生物学指标相结合的物质；
终止液为0.01～10.0（w/v）%的叠氮钠溶液。
2.根据权利要求1所述的一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，其特征在于，所述洗涤液的配方如下：0.1～10（v/v）%的TWEEN-20、0.01～0.2摩尔每升pH6～8的 PB缓冲液、0.1～20（v/v）%的proclin300。
3.根据权利要求1或2所述的一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，其特征在于：所述检测液包括pH4～7的A液和pH2～7的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.005～0.5（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.01～0.2摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.01～0.1摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.01～1.0毫克每毫升。
4.根据权利要求1或2所述的一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，其特征在于：所述载体为孔径在0.1～12微米的多孔性微孔滤膜。
5.根据权利要求4所述的一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，其特征在于：所述多孔性微孔滤膜为纤维素类微孔滤膜、尼龙类微孔滤膜或聚氟乙烯类微孔滤膜。
6.根据权利要求1或2所述的一种高灵敏度蛋白芯片检测系统，其特征在于：所述载体为聚乙烯、聚苯乙烯、硅橡胶或玻璃材料制成的各种可用于生物学检测的承载体。
7.一种高灵敏度蛋白芯片检测系统的使用方法，包括以下步骤：
1）蛋白反应芯片的制作
用点样仪将一种或多种能与生物学指标结合的探针溶液或质控点以点阵的形式固化于载体上，室温干燥，2～8℃密封保存；
2）点样稀释液的配制
配制浓度为0.01～0.5摩尔每升的PB缓冲液，其中含有浓度为0.01～20%的水溶性色素；
3）封闭液的配制
封闭液的配方如下：浓度为1～10（w/v）%的BSA溶液、浓度为1～10（w/v）%的蔗糖溶液、浓度为0.1～10（v/v）%的TWEEN-20、0.1～20（v/v）的proclin300、浓度为0.01～0.2摩尔每升 pH为6～8的 PB缓冲液；
4）洗涤液的配制
洗涤液的配方如下：0.1～10%（v/v）的TWEEN-20、0.01～0.2摩尔每升pH6～8的 PB缓冲液、0.1～20（v/v）%的proclin300；
5）能与生物学探针结合物质的生物素标记
①用无水DMSO配置1～20毫克每毫升的生物素Ｎ－羟基琥珀酰亚胺酯溶液；
②用浓度为0.01～0.2摩尔每升pH6～9的硼酸盐缓冲液为溶剂配制浓度至少为0.5～5毫克每升的能与生物学探针结合的物质的溶液；
③按10～200微克每毫克的比率将生物素酯加入上述能与生物学探针结合的物质的溶液中，混合均匀后并在室温下孵育1 h～6h；
④按每100～500微克生物素酯内加入1～100微升的浓度为0.5～2.0摩尔每升的氯化铵，室温孵育5～60min；
⑤将经过步骤③的能与生物学探针结合的物质的溶液用0.01～0.2 摩尔每升的 PBS、CBS、醋酸盐缓冲液、碳酸盐缓冲液或柠檬酸盐缓冲液透析2～48h进行纯化，或再用蛋白A或蛋白G层析柱再次纯化能与生物学探针结合物质；
6）链霉亲和素或能与生物学探针结合的物质与过氧化物辣根酶的复合物标记
①新鲜配制1.0～10.0毫克每毫升的HRP溶液；
②向HRP溶液中加入0.1～1.0ml新鲜配制的0.01～2.0摩尔每升的过碘酸钠，室温下避光静置或搅拌；
③将步骤②制得的溶液装入透析袋中，用1～10 毫摩每升的pH为4～7的醋酸钠缓冲液进行透析，2～6℃静置或搅拌；
④向步骤③制得的溶液中加入10～100微升0.1～1.0摩尔每升的 pH为7～10碳酸盐缓冲液；
⑤向步骤④制得的溶液中加入0.1～10毫克的链霉亲和素或能与生物学探针结合的物质，室温避光轻轻搅拌1～6小时；
⑥向步骤⑤制得的溶液中加0.1～1.0毫升新鲜配制的浓度为1～10毫克每毫升的NaBH４溶液混匀，2～6℃静置1～6小时；
⑦将步骤⑥制得的溶液装入透析袋中，用0.01～0.2摩尔每升pH为6～8的PBS溶液进行透析，2～6℃，过夜；
⑧将步骤⑦制得的透析液，在1000～10000 rpm条件下离心去沉淀，上清液为含HRP-链霉亲和素或HRP-能与生物学探针结合物质的复合物；
7）检测液的配制
检测液包括 pH4～7的A液和pH2～7的B液，A液包括H2O2和柠檬酸-磷酸氢二钠溶液，B液包括TMB-HCl和柠檬酸钠-盐酸溶液；其中，H2O2浓度为0.005～0.5（v/v）%、柠檬酸-磷酸氢二钠溶液浓度为0.01～0.2摩尔每升；柠檬酸钠浓度为0.01～0.1摩尔每升，B 液中TMB-HCl的浓度为0.01～1.0毫克每毫升；
8）终止液的配制
配制浓度为0.01～10.0（w/v）%的叠氮钠溶液;
具体操作如下：
首先将检测样本加到蛋白芯片上，通过摇床温育的方式，使样本溶液中多种生物学指标与芯片载体上包被的对应探针进行特异性的反应结合，然后将反应完成的载体用洗涤液进行洗涤，以减少其它干扰物质的非特性结合；接下来加入步骤5）制备的生物素标记好的能与生物学探针结合物质和步骤6）制备好的过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物或HRP-能与生物学探针结合物质的复合物，进行摇床温育，这样就形成了载体-探针-生物学指标-步骤5）制备的生物素标记的能与生物学探针结合物质-链霉亲和素-过氧化物辣根酶的复合物或载体-探针-生物学指标-能与生物学探针结合物质-过氧化物辣根酶的复合物，再将反应完成的载体表面用洗涤液进行洗涤，再加入检测液A液与B液的混合液以及终止液，完成整个芯片的反应过程，最后弃去载体上所有液体；如果待测样本中含有目标检测的生物学功能指标，在显色完成后通过肉眼颜色识别完成样本的检测，或通过检测系统完成对颜色点阵的信号读取后与检测仪中设置的色卡进行自动比对完成样本的检测；
或
首先将封闭液滴加蛋白芯片中，再将检测样本加入蛋白芯片中，使样本溶液中的生物学指标与芯片载体上包被的对应探针进行特异性的反应结合，然后将反应完成的膜面滴加洗涤液进行洗涤，以减少其它干扰物质的非特性结合，接下来加入步骤5）制备的生物素标记好的能与生物学探针结合物质和步骤6）制备好的过氧化物辣根酶和链霉亲和素的复合物或HRP-能与生物学探针结合物质的复合物，进行摇床温育，这样就形成了载体-探针-生物学指标-步骤5）制备的生物素标记的能与生物学探针结合物质-链霉亲和素-过氧化物辣根酶的复合物或载体-探针-生物学指标-能与生物学探针结合物质-过氧化物辣根酶的复合物，再将反应完成的载体表面用洗涤液进行洗涤，再加入检测液A液与B液的混合液以及终止液，完成整个芯片的反应过程，最后弃去载体上所有液体；如果待测样本中含有目标检测的生物学功能指标，在显色完成后通过肉眼颜色识别完成样本的检测，或通过检测系统完成对颜色点阵的信号读取后与检测仪中设置的色卡进行自动比对完成样本的检测。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN2011102240631A CN102338801B (zh) | 2011-08-05 | 2011-08-05 | 一种高灵敏度免疫芯片检测系统及其使用方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN2011102240631A CN102338801B (zh) | 2011-08-05 | 2011-08-05 | 一种高灵敏度免疫芯片检测系统及其使用方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN102338801A true CN102338801A (zh) | 2012-02-01 |
| CN102338801B CN102338801B (zh) | 2013-11-20 |
Family
ID=45514637
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN2011102240631A Active CN102338801B (zh) | 2011-08-05 | 2011-08-05 | 一种高灵敏度免疫芯片检测系统及其使用方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN102338801B (zh) |
Cited By (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103018443A (zh) * | 2012-12-15 | 2013-04-03 | 北京金豪制药股份有限公司 | TORCH五项IgG抗体检测试剂盒及其制备 |
| CN103033612A (zh) * | 2012-12-15 | 2013-04-10 | 北京金豪制药股份有限公司 | TORCH五项IgM抗体检测试剂盒及其制备 |
| CN103575894A (zh) * | 2013-11-07 | 2014-02-12 | 南京祥中生物科技有限公司 | 一种可视化生物芯片的检测方法 |
| CN103837676A (zh) * | 2014-03-20 | 2014-06-04 | 苏州纳达生物科技有限公司 | 一种金属纳米岛载体及其制备方法和在免疫检测中的应用 |
| CN103954763A (zh) * | 2014-05-08 | 2014-07-30 | 首都医科大学宣武医院 | 一种检测受实验者体液体外促进疾病相关蛋白磷酸化修饰能力的方法 |
| CN103983778A (zh) * | 2014-05-08 | 2014-08-13 | 首都医科大学宣武医院 | 一种检测受实验者体液体外促进疾病相关蛋白聚合能力的方法 |
| CN106198987A (zh) * | 2016-08-31 | 2016-12-07 | 辽宁迈迪生物科技股份有限公司 | 一种用于评价肿瘤免疫细胞疗法的检测标记物及其检测方法和应用 |
| CN106867698A (zh) * | 2016-12-27 | 2017-06-20 | 泰州欣康基因数码科技有限公司 | 一种生物芯片用清洗液 |
| CN110082525A (zh) * | 2019-04-30 | 2019-08-02 | 江苏美正生物科技有限公司 | 一种用于真菌毒素检测的通用型免疫亲和柱 |
| CN110231479A (zh) * | 2017-06-14 | 2019-09-13 | 杨华卫 | 一种生物芯片 |
Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1414389A (zh) * | 2002-08-19 | 2003-04-30 | 上海华冠生物芯片有限公司 | Hcv和torch蛋白芯片及其制备和应用方法 |
| CN101629957A (zh) * | 2009-07-08 | 2010-01-20 | 中国医学科学院实验动物研究所 | 一种检测动物病原微生物的方法及其专用蛋白芯片 |
| CN101696975A (zh) * | 2009-10-27 | 2010-04-21 | 南昌大学 | 检测真菌毒素的膜基质蛋白质芯片及制备方法 |
| CN102095869A (zh) * | 2009-12-11 | 2011-06-15 | 上海裕隆生物科技有限公司 | 甲状腺功能检测蛋白芯片及其试剂盒 |
| JP2011122957A (ja) * | 2009-12-11 | 2011-06-23 | Tosoh Corp | 高特異的かつ高感度なタンパク質検出方法 |
-
2011
- 2011-08-05 CN CN2011102240631A patent/CN102338801B/zh active Active
Patent Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1414389A (zh) * | 2002-08-19 | 2003-04-30 | 上海华冠生物芯片有限公司 | Hcv和torch蛋白芯片及其制备和应用方法 |
| CN101629957A (zh) * | 2009-07-08 | 2010-01-20 | 中国医学科学院实验动物研究所 | 一种检测动物病原微生物的方法及其专用蛋白芯片 |
| CN101696975A (zh) * | 2009-10-27 | 2010-04-21 | 南昌大学 | 检测真菌毒素的膜基质蛋白质芯片及制备方法 |
| CN102095869A (zh) * | 2009-12-11 | 2011-06-15 | 上海裕隆生物科技有限公司 | 甲状腺功能检测蛋白芯片及其试剂盒 |
| JP2011122957A (ja) * | 2009-12-11 | 2011-06-23 | Tosoh Corp | 高特異的かつ高感度なタンパク質検出方法 |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| 李红梅等: "ELISA测定中TMB显色体系的优化及其稳定性研究", 《生物技术通报》, no. 2, 28 February 2010 (2010-02-28), pages 126 - 130 * |
Cited By (13)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103033612A (zh) * | 2012-12-15 | 2013-04-10 | 北京金豪制药股份有限公司 | TORCH五项IgM抗体检测试剂盒及其制备 |
| CN103018443A (zh) * | 2012-12-15 | 2013-04-03 | 北京金豪制药股份有限公司 | TORCH五项IgG抗体检测试剂盒及其制备 |
| CN103575894B (zh) * | 2013-11-07 | 2015-08-05 | 南京祥中生物科技有限公司 | 一种可视化生物芯片的检测方法 |
| CN103575894A (zh) * | 2013-11-07 | 2014-02-12 | 南京祥中生物科技有限公司 | 一种可视化生物芯片的检测方法 |
| CN103837676A (zh) * | 2014-03-20 | 2014-06-04 | 苏州纳达生物科技有限公司 | 一种金属纳米岛载体及其制备方法和在免疫检测中的应用 |
| CN103837676B (zh) * | 2014-03-20 | 2016-08-17 | 苏州纳达生物科技有限公司 | 一种金属纳米岛载体及其制备方法和在免疫检测中的应用 |
| CN103983778A (zh) * | 2014-05-08 | 2014-08-13 | 首都医科大学宣武医院 | 一种检测受实验者体液体外促进疾病相关蛋白聚合能力的方法 |
| CN103954763A (zh) * | 2014-05-08 | 2014-07-30 | 首都医科大学宣武医院 | 一种检测受实验者体液体外促进疾病相关蛋白磷酸化修饰能力的方法 |
| CN103983778B (zh) * | 2014-05-08 | 2016-04-13 | 首都医科大学宣武医院 | 一种检测受实验者体液体外促进疾病相关蛋白聚合能力的方法 |
| CN106198987A (zh) * | 2016-08-31 | 2016-12-07 | 辽宁迈迪生物科技股份有限公司 | 一种用于评价肿瘤免疫细胞疗法的检测标记物及其检测方法和应用 |
| CN106867698A (zh) * | 2016-12-27 | 2017-06-20 | 泰州欣康基因数码科技有限公司 | 一种生物芯片用清洗液 |
| CN110231479A (zh) * | 2017-06-14 | 2019-09-13 | 杨华卫 | 一种生物芯片 |
| CN110082525A (zh) * | 2019-04-30 | 2019-08-02 | 江苏美正生物科技有限公司 | 一种用于真菌毒素检测的通用型免疫亲和柱 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN102338801B (zh) | 2013-11-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN102338801B (zh) | 一种高灵敏度免疫芯片检测系统及其使用方法 | |
| CN102735833B (zh) | 甲状腺过氧化物酶抗体均相发光免疫分析试剂盒及其检测方法 | |
| CN109765384A (zh) | 一种犬冠状病毒抗体荧光检测试纸条及其制备方法和应用 | |
| DE3686474T2 (de) | Diagnostische probe. | |
| US10921322B2 (en) | Methods for detecting a marker for active tuberculosis | |
| CN101571542B (zh) | 一种检测齐帕特罗的直接竞争法酶联免疫试剂盒 | |
| CN101566632B (zh) | 耐热菌的elisa快速检测方法 | |
| CN101178404B (zh) | 人类免疫缺陷病毒抗体化学发光免疫分析诊断试剂盒及其制备方法 | |
| CN101059517B (zh) | 一种检测农副产品中黄曲霉毒素b1的方法 | |
| CN102565382A (zh) | 一种检测血液样本中过敏原特异性IgE抗体的免疫层析方法 | |
| CN104374921A (zh) | 一种用于莱姆病鞭毛抗原免疫血清学诊断的蛋白质芯片及其制备方法和应用 | |
| CN104089997B (zh) | 一种电化学免疫传感器及其制备方法和应用 | |
| CN104198737B (zh) | 基于金黄色葡萄球菌的生物探针、制备方法及其应用 | |
| CN203965377U (zh) | 一种苏氨酸磷酸裂合酶双层纳米金膜电化学免疫传感器 | |
| CN105353116A (zh) | 一种基于过氧化氢试纸条进行免疫分析的方法及其应用 | |
| CN101857637A (zh) | 抗诺氟沙星多克隆抗体及其制备方法和应用 | |
| CN102183636A (zh) | 抗a族链球菌dna酶b抗体化学发光法诊断试剂盒及其使用方法 | |
| CN101706499A (zh) | Flag融合标签胶体金检测试纸条及其制备方法 | |
| CN102680621B (zh) | 一种化学发光检测技术及其用途 | |
| JP2553852B2 (ja) | サンプル中の生物学的物質の免疫学的測定法 | |
| CN102353787B (zh) | 一种半定量检测人血清中gfap浓度的胶体金试纸条的制备方法 | |
| CN101482565A (zh) | 三聚氰胺胶体金免疫层析检测试纸及制备方法 | |
| CN109738638A (zh) | 直接免疫层析检测方法、试纸条及检测大肠杆菌的应用 | |
| CN1122845C (zh) | 伤寒杆菌抗原多元检测测试条 | |
| CN106771164A (zh) | 一种检测奶牛乳房炎中金黄色葡萄球菌的胶体金试纸及其制备方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| ASS | Succession or assignment of patent right |
Owner name: SHANGHAI QIPU BIOTECHNOLOGY CO., LTD. Free format text: FORMER OWNER: ZHANG CAN Effective date: 20120530 |
|
| C41 | Transfer of patent application or patent right or utility model | ||
| COR | Change of bibliographic data |
Free format text: CORRECT: ADDRESS; FROM: 200540 JINSHAN, SHANGHAI TO: 200333 PUTUO, SHANGHAI |
|
| TA01 | Transfer of patent application right |
Effective date of registration: 20120530 Address after: 200333, room 1, building 879, Lane 256, Zhongjiang Road, Shanghai, Putuo District Applicant after: Shanghai pioneer Biotechnology Co., Ltd. Address before: 200540, room 8, No. 18, Lane 1102, Dragon Street, Jinshan District petrochemical, Shanghai Applicant before: Zhang Can |
|
| ASS | Succession or assignment of patent right |
Owner name: JIAXING AIRUI BIOTECHNOLOGY CO., LTD. Free format text: FORMER OWNER: SHANGHAI QIPU BIO-TECHNOLOGY CO., LTD. Effective date: 20130531 |
|
| C41 | Transfer of patent application or patent right or utility model | ||
| COR | Change of bibliographic data |
Free format text: CORRECT: ADDRESS; FROM: 200333 PUTUO, SHANGHAI TO: 314100 JIAXING, ZHEJIANG PROVINCE |
|
| TA01 | Transfer of patent application right |
Effective date of registration: 20130531 Address after: Jiaxing City, Zhejiang province 314100 Jiashan County Luoxing Road No. 568 Street Jinyang Building No. 3 building 3101 room hatch Applicant after: Zhang Can Address before: 200333, room 1, building 879, Lane 256, Zhongjiang Road, Shanghai, Putuo District Applicant before: Shanghai pioneer Biotechnology Co., Ltd. |
|
| C14 | Grant of patent or utility model | ||
| GR01 | Patent grant |