无细胞生产化学品的方法
技术领域
本发明描述用于从碳源生产化学品的酶促法。根据一个方面,具体公开了通过无细胞的酶系统从碳源生产目标有机化合物的方法。
背景技术
本发明涉及通过酶促法,优选在没有生产性活细胞的条件下,将碳源,优选为碳水化合物或另一种含碳化合物生物转化成目标有机化合物的方法。所述目标有机化合物优选为疏水性的、亲水性的或中间的化合物。
根据本发明的疏水性化学物包括但不限于C4醇类,如正丁醇、2-丁醇和异丁醇,以及其它具有有限的水混溶性的化学品。有限的混溶性指在室温下不超过20%(w/w)可与水混合没有相分离。根据本发明的亲水性的和中间的化学品包括但不限于乙醇和其它化学品。
正丁醇是无色、具有中等挥发性和在水中有限混溶性(室温下约7-8%)的中性液体。正丁醇在化学品生产中用作中间体,在配方产品如化妆品中用作溶剂和用作原料。正丁醇用于丙烯酸酯/甲基丙烯酸酯、乙二醇醚、乙酸正丁酯、氨基树脂和正丁胺的合成。正丁醇因低蒸气压、高能量含量以及能与汽油高浓度混合,还可用作内燃机的燃料。
2-丁醇是无色、具有中等挥发性和在水中有限混溶性(室温下约12%)的中性液体。2-丁醇用作油漆和涂料以及食品配料的溶剂或用于1-丁烯生产。
异丁醇是无色、具有中等挥发性和在水中有限混溶性(室温下约9-10%)的中性液体。异丁醇用作溶剂或增塑剂。它还用于生产MTBE或ETBE生产用的前体异丁烯。
正丁醇可用产溶剂性梭菌(solventogenic Clostridia),如丙酮丁醇梭菌(C.acetobuylicum)或拜氏梭菌(C.beijerinckii)生产,通常产出正丁醇、丙酮和乙醇的混合物。用产溶剂性梭菌生产丁醇有几个缺点:(i)从稀水溶液中分离产物非常昂贵,因其要么复杂(如采用膜法)要么耗能(如采用蒸馏)。(ii)产量低,因为大部分的底物参与副产物如丙酮、乙醇、氢气和生物量的形成。(iii)因有限的细胞滴度,丁醇生产的产率低。(iv)复杂的代谢限制了更高产率和产量的代谢工程。(v)有限的方法稳定性常常导致生产损失且难以维持无菌。(vi)梭菌生长的两相性质限制了方法的灵活性和产率。
有多种方法来克服传统的丁醇发酵生产的局限性。例如,WO2008/052596描述了梭菌的重组改良以提高产量。例如,WO2008/006038描述了筛选或设计较高的丁醇抗性的突变体。
早在1897年,Eduard Buchner采用酵母细胞的裂解液将葡萄糖转化为乙醇时,已呈现无细胞生产化学品。之后Welch和Scopes于1985年证实乙醇的无细胞生产,但该方法在技术上无用。该系统缺乏特异性(酶的副反应、裂解液中不需要的活性),且最高获得9%的乙醇。
已描述了许多用分离的酶来生产化学品的技术方法。例如,将醇脱氢酶用于从酮生产手性醇。这些方法需要辅因子(NAD)再生,其可通过例如添加葡萄糖和葡萄糖脱氢酶实现。已设计这些方法来生产高价值的化学品,但不提供含有多个酶反应的酶系统,该酶反应以高能量和碳效率将碳水化合物转化为化学品。
张等人于2008年描述了将葡萄糖无细胞转化为正丁醇的构想。该构思包括最少18种酶,几种不同的辅因子和辅酶(如ATP、ADP、NADH、NAD、铁氧还蛋白和辅酶A)。此外,该假定的方法引起ATP的净产生(net-production)从而另外需要三磷酸腺苷酶(ATPase)除去ATP。在实际条件下控制三磷酸腺苷酶添加的同时维持平衡的ATP水平很难实现。总而言之,所述的方法昂贵、技术上不稳定且仅提供低丁醇产量。
概言之,需要有成本效益的方法用于从可再生资源生产化学品,特别是乙醇和C4醇类如正丁醇和它的异构体。
根据一个方面,本发明通过无细胞的酶系统,仅用有限数量的酶和有限组的辅因子应对这个需求。具体地,根据一个优选方面,发明的方法不会引起ATP净产生,并/或不使用磷酸化酶反应,并/或仅使用耐受所生产的化学品的失活性存在的酶。
定义
疏水性化学品是仅部分溶于水且在大气压和温度下以固体或液体状态存在的化学品。疏水性化学品具有不高于20%(w/w)的有限的水混溶性,且无相分离。根据本发明的疏水性化学品的具体实例包括正丁醇、2-丁二醇和异丁醇。
碳源可以是能为微生物生长或生产化学品所利用的任意物质。这些包括碳水化合物及其衍生物:聚糖如纤维素、半纤维素、淀粉;二糖如蔗糖、麦芽糖、乳糖;己糖如葡萄糖、甘露糖、半乳糖;戊糖如木糖、阿拉伯糖;糖醛酸、葡糖胺等;多元醇如山梨糖醇、甘油;脂类及其衍生物、木质素及其衍生物。特别优选的碳源为葡萄糖、含葡萄糖的低聚物或聚合物、非葡萄糖的单体己糖、或聚合的糖衍生物、或其混合物。
发明内容
本发明涉及用于从碳源生物技术生产化学品的无细胞方法,该化学品具体为疏水性化学品如C4醇类,包括正丁醇、异丁醇或2-丁醇,以及亲水性和中间的化学品如乙醇。
根据一个优选的方面,本发明公开并要求保护通过无细胞的酶系统从碳源生产目标有机化合物的方法,其包括葡萄糖到作为中间产物的丙酮酸的转化,其中不发生ATP净产生。优选在葡萄糖到作为中间产物的丙酮酸的转化中没有ATP净产生发生。更优选在碳源到目标有机化合物的总体转化中没有ATP净产生发生。
根据一个优选的方面,所述碳源化合物为葡萄糖、含葡萄糖的低聚物或聚合物、非葡萄糖的单体己糖或聚合的糖衍生物。
根据又一个优选的方面,所述目标有机化合物为乙醇、四碳单醇,特别是正丁醇、异丁醇、2-丁醇,或别的可从丙酮酸,优选通过酶催化途径衍生的有机化合物。
根据本发明的一个优选的实施方式,葡萄糖到作为中间产物的丙酮酸的转化在完全没有ATP和/或ADP作为辅因子的条件下进行。更优选从碳源到目标有机化合物的总体转化(反应途径)在完全没有ATP和/或ADP作为辅因子的条件下进行。
根据本发明的另一个优选的实施方式以及如文中进一步说明,所述生产方法在包括两分离相的液态系统中进行,且所述目标有机化合物主要存在于或形成分离相之一,且所述目标有机化合物从分离相中收集。
根据本发明的另一个优选的实施方式以及如文中进一步说明,添加有机溶剂以建立两个分离的相。
根据本发明的另一个优选的实施方式以及如文中进一步说明,工艺中连续添加所述碳源化合物并不断移出目标有机化合物。
根据本发明的另一个优选的实施方式以及如文中进一步说明,所述酶系统包括以下的酶或酶活性,优选用于葡萄糖到丙酮酸的转化:
·葡萄糖脱氢酶(EC 1.1.1.47),
·葡糖酸内酯酶(EC 3.1.1.17),
·葡糖酸脱水酶(EC 4.2.1.39),
·2-酮-3-脱氧葡糖酸醛缩酶(EC 4.1.2.14),
·醛脱氢酶(EC 1.2.1.3),
·甘油酸脱氢酶(EC 1.1.1.29)或羟基丙酮酸还原酶(EC 1.1.1.81),
·丝氨酸-丙酮酸转氨酶(EC 2.6.1.51),
·L-丝氨酸解氨酶(EC 4.3.1.17)和
·丙氨酸脱氢酶(EC 1.4.1.1)。
根据本发明的另一个优选的实施方式以及如文中进一步说明,所述酶系统包括以下的酶或酶活性,优选用于葡萄糖到丙酮酸的转化:
·葡萄糖脱氢酶(EC 1.1.1.47),
·葡糖酸内酯酶(EC 3.1.1.17),
·葡糖酸脱水酶(EC 4.2.1.39),
·2-酮-3-脱氧葡糖酸醛缩酶(EC 4.1.2.14),
·醛脱氢酶(EC 1.2.1.3)和
·甘油酸脱水酶(EC 4.2.1.)。
根据本发明的另一个优选的实施方式以及如文中进一步说明,通过含有11、10、9、8、7或更少的酶的酶系统从葡萄糖生产乙醇。
根据本发明的另一个优选的实施方式以及如文中进一步说明,通过含有17、16、15或更少的酶的酶系统从葡萄糖生产正丁醇。
根据本发明的另一个优选的实施方式以及如文中进一步说明,通过含有14、13或更少的酶的酶系统生产异丁醇。
根据本发明的另一个优选的实施方式以及如文中进一步说明,通过含有13或更少的酶的酶系统生产2-丁醇。
根据一个优选的方面,发明的生产方法包括以下4步:
I.用微生物细胞生产用于将碳源转化为化学品(文中也称为“目标化学品”或“目标有机化合物”)的酶(“目标酶”);
II.从步骤I所用的微生物细胞释放目标酶,优选与辅因子的释放和另外的非目标酶活性的失活相结合;
III.在适合将碳源转化为目标化学品的条件下使步骤II的目标酶与碳源接触。
IV.从反应混合物中分离目标化学品。
附图说明
图1进一步图示了根据一个优选实施方式的发明构思的可能实施。
具体实施方式
步骤I:
步骤I中用微生物细胞生产目标酶。
在本发明的一个实施方式中,酶生产在两个或更多的不同微生物细胞系中完成,以使整个生产路线或它的主要部分不在一种微生物中重组。这样避免了不需要的底物向化学品转化的起始并导致更有效的酶生产。酶生产可以是细胞内或细胞外的,重组体或非重组体。如果酶生产是重组体,其可以是同源或异源的。
在本发明的另一个实施方式中,目标酶对于某一底物和某一反应是选择性的。优选目标酶具有至少10倍于任意其它天然存在的物质的底物选择性(kcat/kM)和至少90%的反应选择性。更优选目标酶具有至少20倍的底物选择性和至少95%的反应选择性。甚至更优选目标酶具有至少100倍的底物选择性和至少99%的反应选择性。
在本发明的另一个实施方式中,目标酶表现出不受多步反应的底物或产物或其它中间体的抑制作用或抑制作用低(无或低反馈抑制)。优选多步反应的任意底物、产物或中间体的抑制常数(Ki)为至少10倍高于各酶和底物的KM值。更优选该抑制常数100倍高于各KM。在另一个特别优选的实施方式中,目标酶在多步反应的任意底物、中间体或产物的浓度为100mM或更高的条件下仍具有其最大活性的50%。
优选目标酶具有适应于酶促路线的多步性质的Kcat和KM值。
根据本发明的方法的一个实施方式,所述目标酶耐受水平提高的目标化学品,并任选地耐受任选添加以促进目标化学品分离到分离相中的其它有机溶剂。优选所述目标酶耐受目标化学品的浓度高于2wt%,更优选高于6wt%,且最优选高于12wt%。在一个特别优选的实施方式中,所述目标酶耐受目标化学品的浓度高达其在水中的最大溶解度。
在本发明的一个优选实施方式中,所述目标酶耐受水平提高的离液序列高的(chaotropic)物质和增高的温度。目标酶优选耐受盐酸胍的浓度高于1M,更优选高于3M,且最优选高于6M。可选择地或者结合地,所述目标酶优选耐受高于50℃的温度,更优选高于70℃,且最优选高于90℃。在这个优选实施方式中,目标酶生产在宿主生物体中完成,所述宿主生物体的内源酶活性在提高水平的离液序列高的物质和/或增高的温度条件下大部分失活。目标酶生产优选使用以下微生物种类进行:大肠杆菌(Escherichia coli);荧光假单胞菌(Pseudomonasfluorescence);枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis);酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae);巴斯德毕赤酵母(Pichia pastoris);多形汉逊酵母(Hansenula polymorpha)乳酸克鲁维斯酵母(Klyuveromyceslactis);里氏木霉(Trichoderma reesei);黑曲霉(Aspergillus niger)。更优选使用大肠杆菌作为宿主生物体进行目标酶生产。
在本发明的另一个优选的实施方式中,所述目标酶耐受提高水平的氧。目标酶优选耐受氧气浓度高于1ppm,更优选高于7ppm。最优选目标酶在需氧条件下有活性并且稳定。优选多步反应不需要氧且不受氧气抑制。从而不需要采取特殊预防措施排除氧气,以对生产环境和/或设备的更少精力使工艺更稳定。
优选将酶生产和细胞生长分成不同的阶段。由此,没有底物用于总代谢活动。
步骤II:
在步骤二中从细胞中释放出目标酶。
在一个优选的实施方式中,目标酶耐受高温和离液序列高的条件,而来源于生产微生物的背景酶不耐受这些条件。根据此实施方式,目标酶在微生物细胞的胞内生产,用高温和/或离液序列高的条件裂解细胞,从而释放出活性状态的目标酶,任选地与辅因子一起,而不需要的背景酶活性则失活。
在另一个优选的实施方式中,酶生产是胞外的,目标酶耐受高温和离液序列高的条件,且背景酶活性(非目标酶)不耐受这些条件。根据此实施方式,在例如高温和/或离液序列高的条件下处理来源于胞外生产的上清。此处理导致不需要的背景酶活性(非目标酶)失活而目标酶保持活性。
在本发明的一个实施方式中,多个酶促转化步骤中的一个或多个需要辅因子。在本发明的一个方面,将这些辅因子添加到酶混合物中。在该实施方式的另一个特别优选的方面,微生物细胞在胞内也产生这些辅因子并经过与释放目标酶相同的处理而释放。在本发明的另一个优选的实施方式中,设计微生物细胞以优化生产的辅因子水平。
优选微生物细胞在步骤II中失活。由此,工艺中将细胞生长和酶活性分开,且没有碳源被不需要的细胞生长消耗。
步骤III:
步骤III中碳源在多步酶促反应中被酶的混合物转化成目标化学品。
根据本发明的方法,所述酶在目标化学品的变性作用下具有活性。优选步骤I所用的微生物细胞是失活的并/或在步骤III的反应条件下失活。
优选在工艺条件下将目标酶混合物中各酶的浓度调整至最适水平。在一个特别优选的实施方式中,将一种或多种酶的浓度提高到通常的细胞内浓度以上,以提高该方法的产量(不为传统方法中微生物的最大密度所限)。在另一个特别优选的实施方式中,设计一种或多种酶以达最大催化效率(相比传统方法,导致更低的反应器规模和运行成本)。
在另一个优选的实施方式中,在步骤III中将目标化学品加到反应混合物中至略高于能在工艺条件下与水混合成单一相的最大水平的浓度。根据此实施方式,工艺中将目标化学品不断分离到第二相中。在此实施方式的一个具体变型中,将水溶性物质加到反应混合物中,引起目标化学品在与没有该添加物质时的相分离浓度相比更低的相分离浓度下相分离。这些物质的实例为盐并为本领域的技术人员公知。在该实施方式的一个特别优选的变型中,加入氯化钠以降低目标化学品在水相中的溶解度。
在另一个优选的实施方式中,向工艺中加入额外的有机溶剂形成其自身的相并从水相中提取出生产的疏水性化学品。此额外的溶剂的优选实例包括:正己烷、环己烷、辛醇、乙酸乙酯、甲基丁基酮或其组合。
在另一个优选的实施方式中,由于通过采用对所需反应特异的目标酶,副产物的形成降低,产量提高。在另一个优选的实施方式中,可催化副反应的宿主酶在步骤II中失活并/或在步骤III的反应条件下失活。
在本发明的又一优选的实施方式中,通过调节步骤III中对典型的微生物污染物有毒的反应条件避免工艺被微生物污染。这些条件包括升高的温度、极端pH、添加有机化学品。在本发明的特别优选的实施方式中,目标化学品自身在工艺中达到的浓度条件下是有毒的(更稳定的工艺,对生产环境和/或设备用更少的精力)。
根据本发明的另一个优选的实施方式,除步骤I所用的微生物所生产的以及步骤II所产生的细胞裂解物中所含的辅因子外,无额外的辅因子添加到反应混合物中。此辅因子的实例为NAD/NADH、NADP/NADPH、ATP/ADP。根据此实施方式,所需的辅因子为步骤I中的微生物细胞所生产,并在工艺中再生(NADH到NAD及反之;NADPH到NADP及反之;ADP到ATP及反之)。在本发明的一个实施方式中,过量的还原当量(NADH、NADPH)或能量当量(ATP)通过额外的酶再生(NADH氧化酶对NADH;NADPH氧化酶对NADPH;三磷酸腺苷酶对ATP)。
在本发明的一个特别优选的实施方式中,在多步反应方法的至少大部分中,均不含有ATP和ADP作辅因子。多步反应途径的大部分优选包括至少20%的酶活性,并更优选至少50%的酶活性。最优选目标酶混合物(步骤I产生的酶混合物)中的酶活性均不含有磷酸化步骤(非磷酸化的反应途径)。在本发明的一个特别优选的实施方式中,反应途径包括从葡萄糖到丙酮酸的转化且此转化中包含的目标酶均不包括磷酸化步骤(无磷酸化的丙酮酸生产)。
步骤IV:
步骤IV中,从反应混合物中分离出一种或多种目标化学品。
在本发明的一个优选实施方式中,一种或多种目标化学品是疏水性的并形成分离相,其优选包含所生产的化学品的至少大部分。在一个特别优选的实施方式中,一种或多种目标化学品连续不断地从反应混合物中移出。
在本发明的另一个优选的实施方式中,向待转化成目标化学品的反应混合物中连续添加碳源。同样地,目标化学品优选以分离相连续不断地排出并通过本领域已知的方法进一步纯化。由此,由于产物在可进一步纯化的分离相中收集,产物分离简化。由此,产量提高且产物纯化简化。
所述的无细胞酶促方法(张等人,2008,Welch和Scopes,1985)的主要问题是ATP积累。在所述的方法中,通过添加三磷酸腺苷酶防止此问题。但难于找到合适的三磷酸腺苷酶浓度,因为其取决于底物和不同的中间体的浓度以及酶的活性。过多或过少的三磷酸腺苷酶均使该转化完全终止(Welch和Scopes,1985)。相反,根据一个特别优选的方面,本发明的无细胞方法将碳源如葡萄糖及其聚合物转化为目标化学品例如乙醇、丁醇和/或异丁醇而无ATP净产生且不使用三磷酸腺苷酶。
在另一个优选的实施方式中,本发明的方法不需要ADP或ATP作为辅因子。其它方法(Welch和Scopes,1985;Algar和Scopes,1985)需要辅因子如ADP/ATP和NAD+/NADH。假定的葡萄糖到丁醇的转化(张等人,2008)需要辅因子ADP/ATP、NAD+/NADH、铁氧还蛋白和辅酶A。
本文所用的术语“酶”还包括术语“酶活性”并可互换使用。
以下描述关于正丁醇、异丁醇、乙醇和2-丁二醇生产的一些优选实施方式。
生产正丁醇
在本发明的一个实施方式中,目标化学品是正丁醇且生产正丁醇的目标酶混合物包括少于19种不同的酶活性。优选目标酶混合物包括17种或更少的不同的酶活性,更优选16种或更少的酶活性,甚至更优选15种或更少的酶活性,且最优选仅12种不同的酶活性。因为酶生产是方法中的主要成本因素,其提供相对于其它方法的主要优势。
在一个特别优选的实施方式中,从葡萄糖通过中间体丙酮酸和乙酰CoA生产正丁醇。从葡萄糖生产正丁醇可任意细分成三步:(A)将一分子葡萄糖转化为两分子丙酮酸。(B)将两分子丙酮酸转化为两分子乙酰CoA。(C)将两分子乙酰CoA转化为一分子正丁醇。
步骤(A):葡萄糖至丙酮酸的转化。
该步骤在大多数如果不是所有的微生物中普遍,尽管存在不同的代谢途径(如Embden-Meyerhof-Parnas途径、Entner-Doudoroff-途径)。步骤(A)的一个具体变型利用Embden-Meyerhof-Parnas途径的酶,包括表1所列出的10种酶活性(酶组合A.1)。由该酶组合催化的反应途径包括磷酸化酶且导致净ATP生产(每分子葡萄糖产出2分子ATP)。
表1:酶组合A.1,包括Embden-Meyerhof-Parnas途径的酶
步骤(A)的另一个具体变型利用Entner-Doudoroff途径的酶活性。根据本发明的一个优选实施方式,将非磷酸化的Entner-Doudoroff途径中的古细菌中已知的酶用于步骤(A)。其包括8种酶活性列于表2(酶组合A.2)。该酶组合包括磷酸化酶并由此需要ATP和/或ADP作辅因子,但从葡萄糖到丙酮酸的转化不会引起ATP的净产生。
表2:酶组合A.2,包括非磷酸化的Entner-Doudoroff途径中的酶
步骤(A)的另一个特别优选的变型利用既不引起ATP净产生,也不需要ATP或ADP作辅因子的酶组合。各个酶组合包括表3所列出的9种不同的酶活性(酶组合A.3)。
表3:酶组合A.3,包括来自各种途径的酶活性
步骤(A)的另一个特别优选的变型利用另一种也既不引起ATP净产生也不需要ATP或ADP作辅因子的酶组合。各个酶组合包括表4所列出的5种不同的酶活性(酶组合A.4)。
表4:酶组合A.4,包括不同途径的酶活性
步骤(B):丙酮酸至乙酰CoA的转化
存在多种选择将丙酮酸转化为乙酰CoA。
在本发明的一个实施方式中,一种或多种以下的酶用于转化:(i)丙酮酸氧化还原酶,用铁氧还蛋白作辅因子;(ii)丙酮酸脱氢酶,用NAD(P)H作辅因子;(iii)丙酮酸甲酸裂解酶;(iv)丙酮酸脱氢酶复合物。
在一个优选的实施方式中,丙酮酸脱氢酶用作该转化的酶,用NADH作辅因子(如表5所列出)。
# |
酶 |
EC# |
底物 |
产物 |
1 |
丙酮酸脱氢酶 |
1.2.1.51 |
丙酮酸 |
乙酰CoA |
表5:酶组合B.1
丙酮酸脱氢酶通常是多酶复合物(丙酮酸脱氢酶复合物,PDC)的一部分,其由三个酶活性组成且具有ca.1 Mio Da的分子量。为用于无细胞反应系统,优选具有小而稳固的非复合酶。已发现源于纤细裸藻(Euglena gracilis)的丙酮酸脱氢酶可用于酶混合物B.1。该酶是单一和无复合物的。而且其利用比NADPH更适合作辅因子的NADH作辅因子(更大量可用;更容易再生)。可选择地,丙酮酸甲酸裂解酶能够用NADH为辅因子与甲酸脱氢酶结合。
步骤(C):乙酰CoA至正丁醇的转化
存在多种选择将乙酰CoA转化为正丁醇,因为多种微生物通过此途径生产正丁醇(如丙酮丁醇梭菌、拜氏梭菌)。
在步骤(C)的一个优选变型中,将表6所列出的酶用于转化。根据酶(生物来源)采用不同的辅因子。
表6:用于将乙酰CoA转化为正丁醇的酶组合C.1
在另一个优选的变型中,从中间体丁酰CoA到丁醇的反应途径不包含丁酸而包括丁酰磷酸。列出的途径和酶并不是唯一的。也可采用本领域内已知的可选择的酶和路线。
将上述所有的反应步骤组合时(酶组合A.1、A.2、A.3或A.4;加之酶组合B.1和C.1),可实现一分子葡萄糖到两分子CO2、一分子水和一分子正丁醇的净转化。酶组合均不引起还原当量的净产生(4分子H2被释放继而又被利用)。根据从葡萄糖到丙酮酸的路线,无(A.2、A.3或A.4)或至多2分子的ATP(A.1)从ADP和磷酸中产生。
在本发明的一个特别优选的实施方式中,将酶组合A.4、B.1和C.1组合。该目标酶混合物仅包括12种不同的酶活性,不需要ADP/ATP作辅因子,且因此不引起净ATP产生。
在本发明的另一个特别优选的实施方式中,将酶组合A.3、B.1和C.1组合。该目标酶混合物包括16种不同的酶活性,不需要ADP/ATP作辅因子,且因此不导致净ATP产生。
在本发明的另一个优选的实施方式中,将酶组合A.2、B.1和C.1组合。该目标酶混合物包括15种不同的酶活性,需要ADP/ATP作辅因子,但不会导致净ATP产生。
生产异丁醇
在本发明的另一个实施方式中目标化学品为异丁醇。
在一个特别优选的实施方式中,从葡萄糖通过中间体丙酮酸生产异丁醇。从葡萄糖生产异丁醇可任意细分为两步:(A)将一分子葡萄糖转化为两分子丙酮酸;和(D)将两分子丙酮酸转化为一分子异丁醇。
步骤(A):葡萄糖至丙酮酸的转化
此步骤相当于生产正丁醇中的步骤(A)(见上文)。
步骤(D):丙酮酸至异丁醇转化
在本发明的一个优选实施方式中,步骤(D)采用表7中所列的酶活性用于无细胞生产异丁醇。
表7:酶组合D.1,包括用于将丙酮酸转化为异丁醇的酶活性
将上述的所有反应(酶组合A.1、A.2、A.3或A.4;加上酶组合D.1)组合时,实现一分子葡萄糖到两分子CO2、一分子水和一分子异丁醇的净转化。这些酶组合均不导致还原当量的净产生(两分子丙酮酸形成过程中4分子H2形成并随后在异丁醇形成中用尽)。根据从葡萄糖到丙酮酸的路线,无(A.2、A.3或A.4)或至多2分子的ATP(A.1)从ADP和磷酸中产生。
在本发明的一个特别优选的实施方式中,将酶组合A.4和D.1组合。该目标酶混合物仅包括10种不同的酶活性,不需要ADP/ATP作辅因子,且因此不导致净ATP产生。
在本发明的另一个特别优选的实施方式中,将酶组合A.3和D.1组合。该目标酶混合物包括14种不同的酶活性,不需要ADP/ATP作辅因子,且因此不导致净ATP产生。
在本发明的另一个优选的实施方式中,将酶组合A.2和D.1组合。该目标酶混合物包括13种不同的酶活性,需要ADP/ATP作辅因子,但不会导致净ATP产生。
生产乙醇
在本发明的另一个实施方式中,目标化学品为乙醇。乙醇以任意比例完全溶于水且不能通过形成分离的有机相而简单纯化。尽管如此,用于无细胞生产的本发明方法提供从可再生碳源生产乙醇的有成本效益的途径。
在一个特别优选的实施方式中,从葡萄糖通过中间体丙酮酸生产乙醇。从葡萄糖生产乙醇可任意细分为两步:(A)将一分子葡萄糖转化为两分子丙酮酸;和(E)将两分子丙酮酸转化为两分子乙醇。
步骤(A):葡萄糖至丙酮酸的转化
该步骤相当于生产正丁醇的步骤(A)(见上文)。
步骤(E):丙酮酸至乙醇的转化
在本发明的一个优选实施方式中,将表8中列出的酶活性用于将丙酮酸转化为乙醇。
# |
酶 |
EC# |
底物 |
产物 |
1 |
丙酮酸脱羧酶 |
4.1.1.1 |
丙酮酸 |
乙醛 |
2 |
醇脱氢酶 |
1.1.1.1 |
乙醛 |
乙醇 |
表8:酶组合E.1,包括用于将丙酮酸转化为乙醇的酶活性
将上述的所有反应组合时(酶组合A.1、A.2、A.3或A.4;加上酶组合E.1),实现一分子葡萄糖到两分子CO2和两分子乙醇的净转化。该酶组合均不导致还原当量的净产生。根据从葡萄糖到丙酮酸的路线,无(A.2、A.3或A.4)或至多2分子的ATP(A.1)从ADP和磷酸中产生。
在本发明的一个特别优选的实施方式中,将酶组合A.4和E.1组合。该目标酶混合物仅包括7种不同的酶活性,不需要ADP/ATP作辅因子,且因此不导致净ATP产生。
在本发明的另一个特别优选的实施方式中,将酶组合A.3和E.1组合。该目标酶混合物包括11种不同的酶活性,不需要ADP/ATP作辅因子,且不导致净ATP产生。
在本发明的另一个优选的实施方式中,将酶组合A.2和E.1组合。该目标酶混合物包括10种不同的酶活性,需要ADP/ATP作辅因子,但不导致净ATP产生。
生产2-丁醇
在本发明的另一个实施方式中目标化学品为2-丁醇。
在一个特别优选的实施方式中,从葡萄糖通过中间体丙酮酸生产2-丁醇。从葡萄糖生产2-丁醇可任意细分为两步:(A)将一分子葡萄糖转化为两分子丙酮酸;和(F)将两分子丙酮酸转化为一分子2-丁醇。
步骤(A):葡萄糖至丙酮酸的转化
该步骤相当于生产正丁醇的步骤(A)(见上文)。
步骤(F):丙酮酸至2-丁醇的转化
在本发明的一个优选的实施方式中,步骤(F)采用表9所列出的酶活性用于无细胞生产2-丁醇。在一个优选的实施方式中,采用以乙偶姻以及2-丁酮为底物的醇脱氢酶。
# |
酶 |
EC# |
底物 |
产物 |
1 |
乙酰乳酸合成酶 |
2.2.1.6 |
丙酮酸 |
乙酰乳酸 |
2 |
乙酰乳酸脱羧酶 |
4.1.1.5 |
乙酰乳酸 |
乙偶姻 |
3 |
醇(丁二醇)脱氢酶 |
1.1.1.4 |
乙偶姻 |
2,3-丁二醇 |
4 |
二醇脱水酶 |
4.2.1.28 |
2,3-丁二醇 |
2-丁酮 |
3 |
醇脱氢酶 |
1.1.1.1 |
2-丁酮 |
2-丁醇 |
表9:酶组合F.1,包括用于将丙酮酸转化为2-丁醇的酶活性
将上述的所有反应组合时(酶组合A.1、A.2、A.3或A.4;加上酶组合F.1),实现一分子葡萄糖到两分子CO2、一分子水和一分子2-丁醇的净转化。这些酶组合均不导致还原当量的净产生(两分子丙酮酸形成过程中4分子H2形成并随后在2-丁醇形成中用尽)。根据从葡萄糖到丙酮酸的路径,无(A.2、A.3或A.4)或至多2分子的ATP(A.1)从ADP和磷酸中产生。
在本发明的一个特别优选的实施方式中,将酶组合A.4和F.1组合。该目标酶混合物仅包括9种不同的酶,不需要ADP/ATP作辅因子,且因此不引起净ATP产生。
在本发明的另一个特别优选的实施方式中,将酶组合A.3和F.1组合。该目标酶混合物包括14种不同的酶活性,不需要ADP/ATP作辅因子,且因此不导致净ATP产生。
在本发明的另一个优选的实施方式中,将酶组合A.2和F.1组合。该目标酶混合物包括13种不同的酶活性,需要ADP/ATP作辅因子,但不会导致净ATP产生。
葡萄糖以外的其它底物
本发明用于生产乙醇、正丁醇、异丁醇、2-丁醇或其它化学品的已述路径不限于使用葡萄糖为底物。根据方法中所用的葡萄糖脱氢酶的选择性,例如,也可用其它C6-糖类作底物。此外,淀粉也可结合淀粉酶/葡糖淀粉酶活性用作底物。纤维素材料可与内纤维素酶/外纤维素酶/葡糖苷酶活性一起用作底物。乳糖、蔗糖和其它低聚的或聚合的糖衍生物也可与对应的将其转换为单体己糖的酶一起使用。
对于本发明的一个实施方式,总共仅用10种酶(酶组合A.4和E.1、内纤维素酶、外纤维素酶、β-葡糖苷酶)将木质纤维的材料转化为乙醇。
实施例
以下实施例中进一步解释本发明。应理解给出的这些实施例仅用于举例说明且并不限定本发明的范围。从以上的讨论和这些实施例中,本领域的技术人员可确定本发明的基本特征,并可在不背离其精神和范围的条件下做出本发明的各种变动和修改以使其适用于各种用途和条件。
实施例1:用源于糖丁酸梭菌(C.saccharobutvlicum)、酿酒酵母(S.
cerevisae)和运动发酵单胞菌(Z.mobilis)的细胞溶菌产物的酶混合物
将葡萄糖转化为正丁醇
在30℃在含有12%的葡萄糖的YPD-培养基上厌氧培养酿酒酵母。通过每小时取样和气相色谱分析监测乙醇的形成。在最高乙醇产率的阶段,收获细胞并用4x体积的反应缓冲液(20mM磷酸钾,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μM ZnSO4、500μMCoCl2、200μM MnCl2)悬浮。然后通过在法式压滤壶中破碎来溶解细胞,通过离心使细胞上清澄清并过滤消毒以去除任何残留的细胞。
在35℃在含有12%的葡萄糖的LB培养基上培养运动发酵单胞菌(ATCC10998)。通过每小时取样和气相色谱分析监测乙醇的形成。在最高乙醇产率的阶段,收获细胞并用4x体积的反应缓冲液(20mM磷酸钾,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μMZnSO4、500μM CoCl2、200μM MnCl2)悬浮。然后通过在法式压滤壶中破碎来溶解细胞,通过离心使细胞上清澄清并过滤消毒以去除任何残留的细胞。
在35℃下具有6%葡萄糖浓度的TYA培养基(6g/l胰蛋白胨、2g/l酵母提取物、3g/l NH4CH3COO、0.3g/l MgSO4、0.5g/l KH2PO4、1mg/l刃天青、10mg/l MnSO4、1mg/l对氨基苯甲酸、1mg/l盐酸氯化硫胺、0.2mg/l生物素)上培养糖丁酸梭菌DSMZ 13864。丁醇形成后每2h取样并GC分析。40h后细胞处于生产溶剂阶段。收集、溶解细胞并对溶菌产物过滤除菌。
将一毫升的糖丁酸梭菌的细胞溶菌产物与100mM的葡萄糖在有或无等量的酿酒酵母或运动发酵单胞菌的溶菌产物的情况下一起培育。所有反应中添加10mM酮丙二酸(71740,Fluka),其作为丙酮酸脱羧酶的抑制剂。在30℃下2h的厌氧培养后,量化所有反应中生产的正丁醇。
实施例2:用分离的酶和源于糖丁酸梭菌的细胞溶菌产物的酶将葡萄糖
转化为正丁醇
将实施例1中糖丁酸梭菌的溶菌产物与以下酶一起培育:己糖激酶(20u/ml)、磷酸己糖异构酶(15u/ml)、磷酸果糖激酶(4u/ml)、醛缩酶(16u/ml)、磷酸丙糖异构酶(300u/ml)、甘油醛-3-磷酸脱氢酶(60u/ml)、磷酸甘油酸激酶(120u/ml)、磷酸甘油酸变位酶(60u/ml)、烯醇酶(11u/ml)、丙酮酸激酶(15u/ml)、丙酮酸脱氢酶(20u/ml)、磷酸转乙酰酶(15u/ml)(所有酶从Sigma获得,见下表,仅磷酸甘油酸变位酶从USB,26111Miles Road,Cleveland Ohio获得,产品号26118100UG,大肠杆菌中重组表达的人酶)。培育在20mM的磷酸钾,pH6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μM ZnSO4、500μMCoCl2、200μM MnCl2、4mM ATP、1mM ADP、1mM NADH、1mMNAD、1mM辅酶A和200mM的葡萄糖中30℃的厌氧条件下完成。使用的所有试剂通过标准方法脱氧。10min后加入三磷酸腺苷酶(0.5u/ml)以防止早期积累ATP。3小时后量化生产的正丁醇。
表10:用于将葡萄糖转化为乙酰CoA的酶(Sigma-Aldrich)。
实施例3:用分离的酶将葡萄糖转化为正丁醇
如所述,合成硫解酶(EC 2.3.1.16,丙酮丁醇梭菌,NCBI-GenIDNP_349476.1)、3-羟基丁酰-CoA脱氢酶(EC 1.1.1.157,NP_349314.1)、巴豆酸酶(EC 4.2.1.55,丙酮丁醇梭菌,NP_349318.1)、丁酰-CoA脱氢酶(EC 1.3.99.2,丙酮丁醇梭菌,NCBI-GenID NP_349317.1)、辅酶A酰化醛脱氢酶(EC 1.2.1.57,拜氏梭菌,NCBI-GenID AF1327541)、NADH依赖的丁醇脱氢酶B(BDH II)(EC 1.1.1.-,丙酮丁醇梭菌,NCBI-GenID NP_349891.1)和电子转移黄素蛋白(etfA和B,丙酮丁醇梭菌,NCBI-GenID NP_349315.1和NP_349316.1),并在大肠杆菌中重组表达。在5ml的反应溶液(20mM磷酸钾,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μM ZnSO4、500μM CoCl2、200μM MnCl2、4mM ATP、1mM ADP、1mM NADH、1mM NAD、1mM辅酶A)中混合所有酶(各1mg)。加入等体积的上表9所列出的酶混合物(将葡萄糖转化为乙酰CoA):己糖激酶(200u/ml)、磷酸己糖异构酶(150u/ml)、磷酸果糖激酶(40u/ml)、醛缩酶(160u/ml)、磷酸丙糖异构酶(3000u/ml)、甘油醛-3-磷酸-脱氢酶(600u/ml)、磷酸甘油酸激酶(1200u/ml)、磷酸甘油酸变位酶(600u/ml)、烯醇酶(110u/ml)、丙酮酸激酶(150u/ml)、丙酮酸脱氢酶(200u/ml)、磷酸转乙酰酶(150u/ml)、三磷酸腺苷酶(4,5u/ml)混合于含有500mM葡萄糖的20mM磷酸钾缓冲液(pH 6.5)中。在30℃厌氧条件下搅拌该反应。3小时后量化生产的正丁醇。
或者该反应在以120mg/h的速率连续添加葡萄糖的条件下进行(间隔30分钟人工添加60mg,从反应起始后2h开始)。20hrs的总反应时间后量化生产的正丁醇。
实施例4:用分离的酶和源于海栖热袍菌(T.maritima)的细胞溶菌产
物将葡萄糖转化为异丁醇
在80℃5%的葡萄糖上培养海栖热袍菌。在葡萄糖被完全利用之前收获细胞,在4x体积的反应缓冲液(20mM磷酸钾,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μM ZnSO4、500μM CoCl2、200μM MnCl2)中重悬并在法式压滤壶中破碎而溶解。通过离心使细胞上清澄清并过滤除菌。从海栖热袍菌中克隆并在大肠杆菌中通过标准方法重组表达用于缬氨酸生物合成的基因ilvlCD(乙酰乳酸合成酶,EC:2.2.1.6,NCBI-GeneID:NP_228358.1;酮醇-酸还原异构酶,EC.1.1.1.86,NCBI-GeneID:NP_228360.1和二羟基-酸脱水酶,EC:4.2.1.9,NCBI-GeneID:NP_228361.1)。从乳酸乳球菌(Lactococcuslactis)(EC 4.1.1.-,NCBI-GeneID:CAG34226.1)中克隆α-酮异戊酸脱羧酶并用标准方法在大肠杆菌中重组表达。源于酿酒酵母的醇脱氢酶(EC:1.1.1.1)购自Sigma-Aldrich(A3263)。
在5ml的反应溶液(20mM磷酸钾,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μM ZnSO4、500μM CoCl2、200μMMnCl2、4mM ATP、1mM ADP、1mM NADH、1mM NAD)中混合所有酶,浓度为100μ/ml。加入等体积的海栖热袍菌的细胞溶菌产物,并将该混合样品与250mM葡萄糖在50℃下培育。1h后量化生产的异丁醇。
实施例5:用分离的酶将葡萄糖转化为乙醇
合成以下酶的基因:葡萄糖脱氢酶(EC 1.1.1.47,嗜热古菌(S.solfataricus),NCBI Gen ID:NP_344316.1)、葡糖酸内酯酶(EC 3.1.1.17,嗜苦古菌(Picrophilus torridus),NCBI Gen ID YP_023685.1)、葡糖酸脱水酶(EC 4.2.1.39,嗜热古菌,NCBI-Gene ID:NP_344505,突变I9L)、2-酮-3-脱氧葡糖酸醛缩酶(EC 4.1.2.14,嗜热古菌,NCBI Gen IDNP_344504.1)、醛脱氢酶(EC 1.2.1.3,低温菌(Flavobacteriumfrigidimaris),NCBI Gen ID:BAB96577.1)、甘油酸激酶(EC 2.7.1.-,嗜热古菌,NCBI Gen ID:NP_342180.1)、烯醇酶(EC 4.2.1.11,嗜热古菌,NCBI Gen ID:NP_342405.1)和丙酮酸激酶(EC 2.7.1.40,嗜热古菌,NCBI Gen ID:NP_342465.1),并用NdeI和BamHI来克隆,通过标准方法克隆到表达载体pET3b中。如Lamble等人(2003)所述,完成细胞生长、蛋白表达和部分纯化,但另外对所有缓冲液提供5mM巯基乙醇并用80℃作热沉淀的通用温度(对醛脱氢酶用60℃)。蛋白质产量通常在5和50mg/l之间。源于酿酒酵母的丙酮酸脱羧酶和醛脱氢酶从Sigma-Aldrich获得(P#29163和82884)。
在5ml含有250mM葡萄糖的反应溶液(20mM磷酸钾,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μM ZnSO4、500μMCoCl2、200μM MnCl2、4mM ATP、1mM ADP、1mM NADH、1mMNAD)中混合所有酶(重组生产的酶各1mg,购买的酶各2u),并在47℃培育。每30min向溶液中加入两种酵母酶以补偿热失活。6hrs后量化生产的乙醇。仅用10种酶从葡萄糖生产乙醇。而且没有净ATP产生。
实施例6:用分离的酶将葡萄糖转化为乙醇
从葡萄糖生产乙醇或化学品和燃料而无ATP或任何其它辅因子的净产生是有益的,而方法中完全除去作辅因子的ATP或ADP则是更有益的。因此,采用实施例5中所述的酶,但不用甘油酸激酶(EC 2.7.1.-)、烯醇酶(EC 4.2.1.11)和丙酮酸激酶(EC 2.7.1.40)。用甘油酸脱氢酶(又称羟基丙酮酸还原酶(EC 1.1.1.29/1.1.1.81))、丝氨酸-丙酮酸转氨酶(EC 2.6.1.51)、L-丝氨酸解氨酶(EC 4.3.1.17)和丙氨酸脱氢酶(EC1.4.1.1)实现从甘油酸到丙酮酸的转化。合成以下酶的基因:甘油酸脱氢酶/羟基丙酮酸还原酶(EC 1.1.1.29/1.1.1.81,嗜苦古菌,NCBI Gen ID:YP_023894.1)、丝氨酸-丙酮酸转氨酶(EC 2.6.1.51,嗜热古菌,NCBIGen ID:NP_343929.1)、L-丝氨酸解氨酶(EC 4.3.1.17,极端嗜热菌(Thermus thermophilus),YP_144295.1和YP_144005.1)和丙氨酸脱氢酶(EC 1.4.1.1,极端嗜热菌,NCBI-Gen ID:YP_005739.1)(优化密码子以在大肠杆菌中生产),并用NdeI和BamHI克隆到表达载体pET3b中。蛋白表达在大肠杆菌中完成。
在5ml含有250mM葡萄糖的反应溶液(20mM磷酸钾、10mM硫酸铵,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μMZnSO4、500μM CoCl2、200μM MnCl2、1mM NADH、1mM NAD、1mM丝氨酸、1mM丙氨酸)中混合所有酶(重组生产的酶各1mg,购买的酶各2u),并在47℃培育。每30min向溶液中再加入两种酵母酶以补偿热失活。6hrs培育后量化生产的乙醇。在不涉及磷酸化和不需要ATP或ADP作辅因子的条件下从葡萄糖生产乙醇。
实施例7:用分离的酶将葡萄糖转化为乙醇
从甘油酸形成丙酮酸是生产乙醇或其它丙酮酸的衍生物的关键步骤。已证明源于嗜热古菌的二羟酸脱水酶(EC 4.2.1.9)可接受不同的底物(Kim和Lee,2006)。如Kim和Lee(2006)所述,表达二羟酸脱水酶的基因(EC 4.2.1.9,嗜热古菌,NP_344419.1)。该酶能将甘油酸转化为丙酮酸(尽管与天然底物相比的活性较低)。该酶也对葡糖酸有活性(尽管与天然底物相比的活性较低)。
在5ml含有250mM葡萄糖的反应溶液(20mM磷酸钾、10mM硫酸铵,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μMZnSO4、500μM CoCl2、200μM MnCl2、1mM NADH、1mM NAD)中将实施例9中的葡萄糖脱氢酶、葡糖酸内酯酶、2-酮-3-脱氧葡糖酸醛缩酶和醛脱氢酶与二羟酸脱水酶(如上所述)以及Sigma的丙酮酸脱羧酶和醛脱氢酶(见实施例5)(重组生产的酶各1mg,购买的酶各2μ)混合,并在47℃下培育。每30min向溶液中再补加两种酵母酶以补偿热失活。6hrs培育后量化生产的乙醇。
实施例8:用分离的酶无ATP净产生地将葡萄糖转化为正丁醇
合成丙酮酸合成酶的4个亚基的基因(EC 1.2.7.1,嗜热古菌,NCBI-GenID:NP_342664.1、NP_342663.1、NP_342666.1、NP_343517.1)和NADH铁氧还蛋白还原酶的基因(EC 1.18.1.3,NCBI-GenIDNP_342682.1),并用NdeI和BamHI位点克隆到pET3b中。如所述,这些基因在大肠杆菌中厌氧表达并部分纯化。如实施例5所述获得葡萄糖脱氢酶、葡糖酸内酯酶、葡糖酸脱水酶、2-酮-3-脱氧葡糖酸醛缩酶、醛脱氢酶、甘油酸激酶、烯醇酶和丙酮酸激酶。如实施例3所述获得硫解酶、β-羟基丁酰CoA脱氢酶、丁酰CoA脱氢酶、CoA酰化丁醛脱氢酶和丁醇脱氢酶及etfA和etfB。
在10ml含有250mM葡萄糖的反应溶液(20mM磷酸钾,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μM ZnSO4、500μMCoCl2、200μM MnCl2、4mM ATP、1mM ADP、1mM NADH、1mMNAD、1mM辅酶A、1mM FAD、1mM FADH2)中混合所有酶(各1mg)。在45℃下培育溶液。1h后量化生产的丁醇。
实施例9:用分离的酶无ATP净产生地将葡萄糖转化为正丁醇
如实施例5所述,获得葡萄糖脱氢酶、葡糖酸内酯酶、2-酮-3-脱氧葡糖酸醛缩酶和醛脱氢酶。如实施例9所述获得二羟酸脱水酶。如实施例10所述获得NADH铁氧还蛋白还原酶和丙酮酸合成酶。如实施例3所述获得硫解酶、β-羟基丁酰CoA脱氢酶、丁酰CoA脱氢酶、CoA酰化丁醛脱氢酶和丁醇脱氢酶及etfA和etfB。
在10ml含有250mM葡萄糖的反应溶液(20mM磷酸钾,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μM ZnSO4、500μMCoCl2、200μM MnCl2、1mM NADH、1mM NAD、1mM辅酶A、1mMFAD、1mM FADH2)中混合所有酶(各1mg)。在45℃下培育溶液。1h后量化生产的正丁醇。
实施例10:用分离的酶无ATP净产生地将葡萄糖转化为异丁醇
用NdeI和BamHI位点将乙酰乳酸合成酶的催化亚基(EC 2.2.1.6,嗜热古菌,NCBI-GenID:NP_342102.1)、酮醇-酸还原异构酶(EC1.1.1.86,嗜热古菌,NCBI-GenID:NP_342100.1)、支链-2-含氧酸脱羧酶(EC 4.1.1.72,乳酸乳球菌,NCBI-GenID:)和醇脱氢酶(EC 1.1.1.1,低温菌,NCBI-GenID:BAB91411.1)克隆到pET3b中。这些基因在大肠杆菌中表达。这些酶与二羟酸脱水酶(见实施例7)共同组成从丙酮酸到异丁醇的途径。如实施例5所述获得葡萄糖脱氢酶、葡糖酸内酯酶、葡糖酸脱水酶、2-酮-3-脱氧葡糖酸醛缩酶、醛脱氢酶、甘油酸激酶、烯醇酶和丙酮酸激酶。如实施5所述获得二羟酸脱水酶。
在10ml含有250mM葡萄糖的反应溶液(20mM磷酸钾,pH 6.5;5mM巯基乙醇、10mM NaCl、10mM MgSO4、500μM ZnSO4、500μMCoCl2、200μM MnCl2、4mM ATP、1mM ADP、1mM NADH、1mMNAD)中混合所有酶(各1mg)。在53℃下培育溶液1h。每10min加入新的支链-2-含氧酸脱羧酶以补偿热失活。1h后量化生产的异丁醇。
参考文献:
·Algar,E.M.and Scopes,R.K.(1985)Journal of Biotechnology 2(5)275-287.
·Lamble,H.J.;Heyer,N.I.;Bull,S.D.;Hough,D.W.and Danson M.J.(2003)J.Biol.Chem.36(5)34066-72.
·Welch,P and Scopes R.K.:(1985)Journal of Biotechnology 2(5)257-273.
·Zhang Y.-H.P.,Evans B.R.,Mielenz J.R.,Hopkins R.C.,Adams M.W.W.(2007)PLoS ONE 2(5):e456.
·Zhang Y.H.P.,Ye,X.and Wang,Y.(2008)Biotechnology:Research,Technology and Applications
以下为可用于本发明的各个实施方式的示例性的但非限制性的序列:
乙酰-CoA乙酰转移酶(硫解酶)(2.3.1.16)
>gi|15896127|ref|NP_349476.1|乙酰-CoA乙酰转移酶[丙酮丁醇梭菌ATCC 824]
MKEVVIASAVRTAIGSYGKSLKDVPAVDLGATAIKEAVKKAGIKPEDVNEVILGNVLQAGLGQNPARQASFKAGLPVEIPAMTINKVCGSGLRTVSLAAQIIKAGDADVIIAGGMENMSRAPYLANNARWGYRMGNAKFVDEMITDGLWDAFNDYHMGITAENIAERWNISREEQDEFALASQKKAEEAIKSGQFKDEIVPVVIKGRKGETVVDTDEHPRFGSTIEGLAKLKPAFKKDGTVTAGNASGLNDCAAVLVIMSAEKAKELGVKPLAKIVSYGSAGVDPAIMGYGPFYATKAAIEKAGWTVDELDLIESNEAFAAQSLAVAKDLKFDMNKVNVNGGAIALGHPIGASGARILVTLVHAMQKRDAKKGLATLCIGGGQGTAILLEKC
3-羟基丁酰-CoA脱氢酶(1.1.1.157)
>gi|15895965|ref|NP_349314.1|3-羟基丁酰-CoA脱氢酶[丙酮丁醇梭菌ATCC 824]
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3-羟基丁酰-CoA脱水酶(巴豆酸酶)(4.2.1.55)
>gi|15895969|ref|NP_349318.1|3-羟基丁酰-CoA脱水酶[丙酮丁醇梭菌ATCC 824]
MELNNVILEKEGKVAVVTINRPKALNALNSDTLKEMDYVIGEIENDSEVLAVILTGAGEKSFVAGADISEMKEMNTIEGRKFGILGNKVFRRLELLEKPVIAAVNGFALGGGCEIAMSCDIRIASSNARFGQPEVGLGITPGFGGTQRLSRLVGMGMAKQLIFTAQNIKADEALRIGLVNKVVEPSELMNTAKEIANKIVSNAPVAVKLSKQAINRGMQCDIDTALAFESEAFGECFSTEDQKDAMTAFIEKRKIEGFKNR
丁酰-CoA脱氢酶(1.3.99.2)
>gi|15895968|ref|NP_349317.1|丁酰-CoA脱氢酶[丙酮丁醇梭菌ATCC 824]
MDFNLTREQELVRQMVREFAENEVKPIAAEIDETERFPMENVKKMGQYGMMGIPFSKEYGGAGGDVLSYIIAVEELSKVCGTTGVILSAHTSLCASLINEHGTEEQKQKYLVPLAKGEKIGAYGLTEPNAGTDSGAQQTVAVLEGDHYVINGSKIFITNGGVADTFVIFAMTDRTKGTKGISAFIIEKGFKGFSIGKVEQKLGIRASSTTELVFEDMIVPVENMIGKEGKGFPIAMKTLDGGRIGIAAQALGIAEGAFNEARAYMKERKQFGRSLDKFQGLAWMMADMDVAIESARYLVYKAAYLKQAGLPYTVDAARAKLHAANVAMDVTTKAVQLFGGYGYTKDYPVERMMRDAKITEIYEGTSEVQKLVISGKIFR
辅酶A酰化醛脱氢酶(1.2.1.57)
>gi|4884855|gb|AAD31841.1|AF132754_1辅酶A酰化醛脱氢酶[拜氏梭菌]
MNKDTLIPTTKDLKLKTNVENINLKNYKDNSSCFGVFENVENAINSAVHAQKILSLHYTKEQREKIITEIRKAALENKEVLATMILEETHMGRYEDKILKHELVAKYTPGTEDLTTTAWSGDNGLTVVEMSPYGVIGAITPSTNPTETVICNSIGMIAAGNAVVFNGHPGAKKCVAFAIEMINKAIISCGGPENLVTTIKNPTMESLDAIIKHPLIKLLCGTGGPGMVKTLLNSGKKAIGAGAGNPPVIVDDTADIEKAGKSIIEGCSFDNNLPCIAEKEVFVFENVADDLISNMLKNNAVIINEDQVSKLIDLVLQKNNETQEYFINKKWVGKDAKLFSDEIDVESPSNIKCIVCEVNANHPFVMTELMMPILPIVRVKDIDEAVKYTKIAEQNRKHSAYIYSKNIDNLNRFEREIDTTIFVKNAKSFAGVGYEAEGFTTFTIAGSTGEGITSARNFTRQRRCVLAG
NADH依赖的丁醇脱氢酶B(1.1.1.-)
>gi|15896542|ref|NP_349891.1|NADH依赖的丁醇脱氢酶B(BDH II)[丙酮丁醇梭菌ATCC 824]
MVDFEYSIPTRIFFGKDKINVLGRELKKYGSKVLIVYGGGSIKRNGIYDKAVSILEKNSIKFYELAGVEPNPRVTTVEKGVKICRENGVEVVLAIGGGSAIDCAKVIAAACEYDGNPWDIVLDGSKIKRVLPIASILTIAATGSEMDTWAVINNMDTNEKLIAAHPDMAPKFSILDPTYTYTVPTNQTAAGTADIMSHIFEVYFSNTKTAYLQDRMAEALLRTCIKYGGIALEKPDDYEARANLMWASSLAINGLLTYGKDTNWSVHLMEHELSAYYDITHGVGLAILTPNWMEYILNNDTVYKFVEYGVNVWGIDKEKNHYDIAHQAIQKTRDYFVNVLGLPSRLRDVGIEEEKLDIMAKESVKLTGGTIGNLRPVNASEVLQIFKKSV
etfB
>gi|15895967|ref|NP_349316.1|电子转移黄素蛋白β亚基[丙酮丁醇梭菌ATCC 824]
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etfA
>gi|15895966|ref|NP_349315.1|电子转移黄素蛋白α亚基[丙酮丁醇梭菌ATCC 824]
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乙酰乳酸合成酶(2.2.1.6)
>gi|15643314|ref|NP_228358.1|乙酰乳酸合成酶,大亚基[海栖热袍菌MSB8]
MVHVKMKGSKMLFEALLKEGVDTIFGIPGGAIINVYDELCNYEDKINFYLFRHEQGATHAADGYARVTGKPGVVIVTSGPGATNTVTGIATAYMDSIPIVVITGQVPTSFIGTDAFQEVDVTGITMPITKHNHLVTSIEELPYAIKEMFYVATTGRPGPVLLDFPKDIQTAEGEFNYPDTVEIPGYKPTVKGHPKQIKKAVELLKESKRPVVIVGGGANLSGAMDLVNQFIDKFKVPAVSTLMGRGVNPSDEKLYYEGIGMHGTYYGNYAVANADLIIALGVRFSDRILGNPRTFAKNARIVHVDIDPAEIGKNVRVDVPIVGDLKSVLEEFLKYEIETDFSDWIEELQEIKKKYPLTYKRDGKLIKPQYVVEKVNEVFPDDTVVVADVGQNQMWVAQFYKFKHQRSFLCSGGLGTMGYALPAGIGAKIGAPDKEVVVFAGDGGFQMNIQELMTIKRYNLPVKIIVMDNKALGMVRQWQQLFFNCRYSATILSDNPDFAKIAEAVGIKAMRIEKPDQVDEAIEKLAKSKEPMLIHAVVDPAENVLPMVPPGGDVGTPLIEAPYDETFVERVLKVIEESRRGDER
酮醇-酸还原异构酶(1.1.1.86)
>gi|15643316|ref|NP_228360.1|酮醇-酸还原异构酶[海栖热袍菌MSB8]
MAVIYYDKDADLNLIKDKKIAIIGYGSQGHAHALNLKDSGLNVVVGLREGSKSWKKAEEQGLTVKTIEEAAKEADIIMILIPDEHQPEIYKKYIEKHLTEGKMLMFAHGFNIHYHQIIPPKNVDVTMIAPKSPGHIVRREYVEGRGVPALVAVYQDYTGKAKDIALAYAKGIGVTRAGVIETTFKEETETDLFGEQAVLCGGVTALIKAGFETLVDAGYQPEIAYFECLNELKLIVDLIYEGGLSFMRYSVSNTAEYGDYISQEKIVTKEVRENMKQMLKDIQTGKFAKDWILENQAGRPYFYTMRKKESEHLIEKVGKELRKMMPWLKERNVDEE
二羟酸脱水酶(4.2.1.9)
>gi|15643317|ref|NP_228361.1|二羟酸脱水酶[海栖热袍菌MSB8]
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α-酮异戊酸脱羧酶(4.1.1.72)
>gi|51870502|emb|CAG34226.1|α-酮异戊酸脱羧酶[乳酸乳球菌乳酸亚种]
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葡萄糖脱氢酶(EC 1.1.1.47)
>gi|15899711|ref|NP_344316.1|葡萄糖1-脱氢酶(dhg-1)[硫磺矿硫化叶菌P2(Sulfolobus solfataricus P2)]
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葡糖酸内酯酶(EC 3.1.1.17)
>gi|48477979|ref|YP_023685.1|葡糖酸内酯酶[嗜苦古菌DSM 9790]
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葡糖酸脱水酶(EC 4.2.1.39)
>gi|15899900|ref|NP_344505.1|黏康酸环化异构酶相关蛋白[硫磺矿硫化叶菌P2]
MRIREIEPIVLTSKEKGSATWASIMIVTRVITENGEVGYGEAVPTLRVISVYNAIKQVSKAYIGKEVEEVEKNYHEWYKQDFYLARSFESATAVSAIDIASWDIIGKELGAPIHKLLGGKTRDRVPVYANGWYQDCVTPEEFAEKAKDVVKMGYKALKFDPFGPYYDWIDERGLREAEERVKAVREAVGDNVDILIEHHGRFNANSAIMIAKRLEKYNPGFMEEPVHHEDVIGLRKYKASTHLRVALGERLISEKETAFYVEEGLVNILQPDLTNIGGVTVGRSVIKIAEANDVEVAFHNAFGSIQNAVEIQLSAVTQNLYLLENFYDWFPQWKRDLVYNETPVEGGHVKVPYKPGLGVSINEKIIEQLRAEPIPLDVIEEPVWVVKGTWKNYGV
2-酮-3-脱氧葡糖酸醛缩酶(EC 4.1.2.14)
>gi|15899899|ref|NP_344504.1|2-酮-3-脱氧葡糖酸醛缩酶(eda)[硫磺矿硫化叶菌P2]
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醛脱氢酶(EC 1.2.1.3)
>gi|21238945|dbj|BAB96577.1|醛脱氢酶[低温菌]
MSNTIQRPEFKAKYDNYINGKFTAPVKGEYFDVLS PIDGKVFTKAAHSGKEDLELAVDAAYEAFKTWGKTSVTERSILLNKIAQKIEDNLEYIATVETIDNGKPIRETLAADIPLAIDHFRYFAGVIRAEESSIAELDSQTVSIALSEPLGVVAQIIPWNFPILMAVWKIAPALAAGNTIVLKPAESTPISILVLMELIGDILPPGVLNIVNGFGAELGRPLVTNKKVAKAAFTGSTTTGRLVMQYATENIIPVTLELGGKSPNIFFPSVADHDDDFFDKAIEGAVLFALNQGEICTCPSRLLIHEDIYEKFIARVIERTEAIIAGNPLDKSTMIGAQTSLVQKEKIMSYIKLGKEEGAELLTGGDENHLGGDLEGGYYIKPTLFKGHNKMRIFQEEIFGPVLAVTTFKTTEEAIEIANDTMYGLGAGVWTRDAHEIYQVPRAIQSGRVWINQYHSYPAGAPFGGYKQSGIGRENHKMMLGQYRQTKNMLISYDKKKLGFF
甘油酸激酶(EC 2.7.1.-)
>gi|15897575|ref|NP_342180.1|甘油酸激酶,推定的[硫磺矿硫化叶菌P2]
MDIVDKILEYTDPYKALQEKVRVYNNILLFNNEKIPFKKPILISIGKASLPMARFFRERMELKAKLIVTPKGTNGKENDVIEAGHPLPDENSIKAGKRMIELLANEDYDLVIFAISGGASALVEYSEIPLDELKIINKVLVTSGLGINKINIVRKHLSKVKGGKILEYVKDKIPIVSFIVSDVPGNDISSIGSGLTSIDNSSNDDALEILKAIGLEKYSKYLTETPKSFSRIVKNYIILDNMEVLRKLANTLVNSFILTSEIRGEARDVGAIIASIYNSSESYNIPFRRPYYLLVGGEPEVTIQGKAGKGGRNGEVCLSFLKYAKKRNRFELLGFATDGIDGNSEYAGCKVSSDMEIREDEINNALETHNSYGLLESHKAVIKTGYTHTNVNNIYVLRAP
烯醇酶(EC 4.2.1.11)
>gi|15897800|ref|NP_342405.1|烯醇酶[硫磺矿硫化叶菌P2]
MINRFSIEKVKGLEIVDSRGNPTIRVFIRTSDGVESFGDAPAGASKGTREAVEVRDENGLTVKRAVDIVNYIIDPALHGIDVREQGIIDKLLKDIDSTENKSKLGGNTIIATSIAALKTASKALGLEVFKYISGPRLPKIPIPLLNIINGGLHAGNKLKIQEFIIVPIKFNTFKEALFAAIDVYRTLKGLITERYGKIYTAVGDEGGFSPPLEDTREALDLIYTSINNAGYEGKIYMGMDAAGSDFYDSKKEKYIIDGRELDPNQLLEFYLDLVKQYPIVYLEDPFEENSFDMFSQLQNKLSSTIITGDDLYTTNIKYLKIGIEKRSTKGVIVKPNQVGTISETFEFTNLARRNSMKLITSHRSGETEDNFIADFAVGIESDFIKVGAPARGERTSKYNKLLEIENKFGLEYEGKYFYL
丙酮酸激酶(EC 2.7.1.40)
>gi|15897860|ref|NP_342465.1|丙酮酸激酶(pyK)[硫磺矿硫化叶菌P2]
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甘油酸脱氢酶/羟基丙酮酸还原酶(EC 1.1.1.29 bzw.1.1.1.81)
>gi|48478188|ref|YP_023894.1|甘油酸脱氢酶[嗜苦古菌DSM 9790]
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丝氨酸-丙酮酸转氨酶(EC 2.6.1.51)
>gi|15899324|ref|NP_343929.1|丝氨酸-丙酮酸转氨酶(agxT)[硫磺矿硫化叶菌P2]
MDKLLLHVGPTTIKEDVLVAGLENNVGFTSKEFVEALAYSLKGLRYVMGASKNYQPLIIPGGGTSAMESVTSLLKPNDKILVVSNGVFGDRWEQIFKRYPVNVKVLRPSPGDYVKPGEVEEEVRKSEYKLVALTHVETSTGVREPVKDVINKIRKYVELIVVDGVSSVGAEEVKAEEWNVDVYLTASQKALGSAAGLGLLLLSPKALSILDSQNSIAGYYLDLRNWLPVMRGAEEGKAAYFATPPVHVILQLAEAFRLIEKEGIENRIKRHTMVASAIRAGLEALGLEIVARRPESYSNTVTGVILKVADPQKVLAGTVNEGVEFAPGVHPAFKYFRIGHMGWVTPNDAIIAISVIERTLRKLGEPIRFGEGVKAVEEVLFSAR
L-丝氨酸解氨酶(EC 4.3.1.17)
>gi|55980998|ref|YP_144295.1|L-丝氨酸脱水酶,α亚基[极端嗜热菌HB8]
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>gi|55980708|ref|YP_144005.1|L-丝氨酸脱水酶,β亚基[极端嗜热菌HB8]
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丙氨酸脱氢酶(EC 1.4.1.1)
>gi|46200072|ref|YP_005739.1|丙氨酸脱氢酶[极端嗜热菌HB27]
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二羟酸脱水酶(EC 4.2.1.9)
>gi|15899814|ref|NP_344419.1|二羟酸脱水酶[硫磺矿硫化叶菌P2]
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丙酮酸合成酶(1.2.7.1)
>gi|15898059|ref|NP_342664.1|丙酮酸合成酶α链(丙酮酸-铁氧还蛋白氧化还原酶α链)(porA-1)[硫磺矿硫化叶菌P2]
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>gi|15898058|ref|NP_342663.1|2-酮异戊酸铁氧还蛋白氧化还原酶β亚基[硫磺矿硫化叶菌P2]
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>gi|15898061|ref|NP_342666.1|丙酮酸合成酶γ链(丙酮酸-铁氧还蛋白氧化还原酶γ链)(porG-1)[硫磺矿硫化叶菌P2]
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>gi|15898912|ref|NP_343517.1|丙酮酸合成酶δ链(丙酮酸-铁氧还蛋白氧化还原酶δ链)(porD-like)[硫磺矿硫化叶菌P2]
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NADH铁氧还蛋白还原酶(1.18.1.3)
>gi|15898077|ref|NP_342682.1|甲苯1,2-双加氧酶系统铁氧还蛋白--NAD(+)还原酶组分,(todA)[硫磺矿硫化叶菌P2]
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乙酰乳酸合成酶(2.2.1.6)(大亚基)
>gi|15897497|ref|NP_342102.1|乙酰乳酸合成酶催化亚基[硫磺矿硫化叶菌P2]
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酮醇-酸还原异构酶(1.1.1.86)
>gi|15897495|ref|NP_342100.1|酮醇-酸还原异构酶[硫磺矿硫化叶菌P2]
MKCTSKIYTDNDANLDLIKGKRIAVLGYGSQGRAWAQNLRDSGLNVVVGLEDLGKSWELAKSDGITPLHTKDAVKDADIIIFLVPDMVQRTLWLESVQPYMKKGADLVFAHGFNIHYKLIDPPKDSDVYMIAPKGPGPTVREYYKAGGGVPALVAVHQDVSGTALHKALAIAKGIGATRAGVIPTTFKEETETDLFGEQVILVGGIMELMRAAFETLVEEGYQPEVAYFETINELKMLVDLVYEKGISGMLKAVSDTAKYGGMTVGKFVIDESVRKRMKEALQRIKSGKFAEEWVEEYGRGMPTVVNGLSNVQNSLEEKIGNQLRDLVQKGKPKS
醇脱氢酶(1.1.1.1)
>gi|20502556|dbj|BAB91411.1|醇脱氢酶[低温菌]
MLPKTMKAAVIREFGSLLKIEEVEVKRPGRNEILVKVIASGVCHTDLHAVEGDWPVKPKMPLIPGHEAVGYVVAVGQEVKNVKEGDAVGVPWLYSACGGCDQCITGWETLCDTQQNGGYSVDGGFAEYVIADARYVGLLPSNVNFMEMAPILCAGVTVYKGLKETEVKPGEWVAISGIGGLGHVAVQYAKAMGMHVAAIDVADDKLDLAKKLGADLVVNAKNQNPGEFLKKEVGGMHGALITAVSPIAFKQGLETLRRKGTMALNGLPPGNFDLSIFDTVLNRITIRGSIVGTRKDMKEAIEFAVEGKVKATVTPAKLENINEVFDKMKKGQIEGRVVLEIAKA
α-乙酰乳酸脱羧酶(4.1.1.5)
>gi|113592|sp|P23616.1|ALDC_BREBE RecName:Full=α-乙酰乳酸脱羧酶;Short=ALDC ;标记:前体
MKKNIITSITSLALVAGLSLTAFAATTATVPAPPAKQESKPAVAANPAPKNVLFQYSTINALMLGQFEGDLTLKDLKLRGDMGLGTINDLDGEMIQMGTKFYQIDSTGKLSELPESVKTPFAVTTHFEPKEKTTLTNVQDYNQLTKMLEEKFENKNVFYAVKLTGTFKMVKARTVPKQTRPYPQLTEVTKKQSEFEFKNVKGTLIGFYTPNYAAALNVPGFHLHFITEDKTSGGHVLNLQFDNANLEISPIHEFDVQLPHTDDFAHSDLTQVTTSQVHQAESERK
醇脱氢酶(1.1.1.1 bzw.1.1.1.4)
>gi|18978332|ref|NP_579689.1|醛糖还原酶[超嗜热菌(Pyrococcus furiosus)DSM3638]
MKRVNAFNDLKRIGDDKVTAIGMGTWGIGGRETPDYSRDKESIEAIRYGLELGMNLIDTAEFYGAGHAEEIVGEAIKEFEREDIFIVSKVWPTHFGYEEAKKAARASAKRLGTYIDLYLLHWPVDDFKKIEETLHALEDLVDEGVIRYIGVSNFNLELLQRSQEVMRKYEIVANQVKYSVKDRWPETTGLLDYMKREGIALMAYTPLEKGTLARNECLAKIGEKYGKTAAQVALNYLIWEENVVAIPKASNKEHLKENFGAMGWRLSEEDREMARRCV
二醇脱水酶(4.2.1.28)
>gi|116334194|ref|YP_795721.1|丙二醇脱水酶,小亚基[短乳杆菌(LaCtobacillusbrevis)ATCC 367]
MSEIDDLVAKIVQQIGGTEAADQTTATPTSTATQTQHAALSKQDYPLYSKHPELVHSPSGKALNDITLDNVLNDDIKANDLRITPDTLRMQGEVANDAGRDAVQRNFQRASELTSIPDDRLLEMYNALRPYRSTKAELLAISAELKDKYHAPVNAGWFAEAADYYESRKKLKGDN
>gi|116334195|ref|YP_795722.1|二醇脱水酶中亚基[短乳杆菌ATCC 367]
MAQEIDENLLRNIIRDVIAETQTGDTPISFKADAPAASSATTATAAPVNGDGPEPEKPVDWFKHVGVAKPGYSRDEVVIAVAPAFAEVMDHNLTGISHKEILRQMVAGIEEEGLKARIVKVYRTSDVSFCGAEGDHLSGSGIAIAIQSKGTTIIHQKDQEPLSNLELFPQAPVLDGDTYRAIGKNAAEYAKGMSPSPVPTVNDQMARVQYQALSALMHIKETKQVVMGKPAEQIEVNFN
>gi|116334196|ref|YP_795723.1|丙二醇脱水酶,大亚基[短乳杆菌ATCC 367]
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