(五)具体实施方式:
下面结合具体实施例,进一步阐述本发明,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,按照方中达《植病研究方法》和Sambrook等著《分子克隆》中所述的方法和条件。
实施例1、解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)YHN的获得
该菌株(YHN)分离自菏泽毛豆根际土壤。从毛豆根际取土样10g,加入到盛有100mL无菌水的三角瓶中,制成土壤悬液。将三角瓶置摇床上,振荡20分钟,静置5分钟后取上清液。采用10倍系列稀释法,每个浓度吸取200μL于肉汤蛋白胨琼脂培养基(牛肉膏3g,蛋白胨10g,NaCl 5g,琼脂20g,蒸馏水补充至1000mL,pH 7.2-7.4)平板上涂布均匀,每个浓度三次重复。然后将肉汤蛋白胨琼脂培养基平板于28℃生化培养箱中倒置培养24小时。待出现菌落时,喷施指示菌白地霉(Geotrichum candidum)孢子悬液,以喷布均匀为宜。12小时后观察,挑取产生抑菌圈的菌落,抑菌效果最好的一个代号定为YHN。通过三次划线进行纯化,利用对峙纯培养法测定抑菌谱(图1)。
YHN菌落圆形,灰白色,无光泽,初期边缘整齐,不透明,较粘,菌落初期扁平后期凹陷皱缩。革兰染色为阳性杆菌,周生多鞭毛。该菌好氧,分解D-葡萄糖、D-木糖、甘露醇和果糖。苯丙氨酸脱氢酶反应为阴性。水解酪素,水解明胶,水解淀粉,还原硝酸盐,不能产生H2S,甲基红试验阴性,V.P.试验阳性,吲哚试验阴性;4℃不能生长,最适生长温度28-30℃;适宜pH为7,pH为5.7不能够生长。YHN的菌落特征和生理生化特性与解淀粉芽孢杆菌一致。
提取YHN基因组DNA。利用引物16S-8-F(5′-CAC GGA TCC AGA GTT TGA TYM TGG CTC AG-3′)和ITS-R(5′-CCG GGT TTC CCC ATT CGG-3′),通过PCR扩增16S rDNA(图2)。PCR反应程序是94℃3min;94℃30s;54℃45s;72℃2min;30个循环;72℃延伸10min;4℃保存。扩增产物连接到pMD18-T。连接反应体系为10×T4DNA连接酶缓冲液1μL,pMD18-T(50ng/μL)0.3μL,目的DNA7.7μL,T4DNA连接酶(350U/μL)1μL,16℃水浴中连接过夜。连接产物转化大肠杆菌DH5α。提取质粒DNA,通过电泳和PCR筛选阳性克隆。鉴定好的含有重组质粒的菌株,以菌液形式送北京博尚公司测序。利用Mega软件构建系统进化树(图3)。
YHN与解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)菌株5359(序列号:GU250449)16S rRNA基因的一致率为99%,在根据16S rRNA基因构建的系统进化树中,YHN与解淀粉芽孢杆菌的菌株聚类到一起,证实YHN是解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)的一个菌株。
SEQ ID NO 1的信息:
(a)序列特征:*长度:1861碱基对;*类型:DNA;*链型:双链;*拓扑结构:线性
(b)分子类型:基因组DNA
(c)假设:否
(d)反义:否
(e)最初来源:解淀粉芽孢杆菌YHN是从菏泽采集的毛豆根际土壤中分离的。
(f)序列描述:
1 TTGCATGCCT GCAGGTCGAC GATTCCGGGT TTCCCCATTC GGAAATCTCC GGATCAAAGC
61 TTGCTTACAG CTCCCCGAAG CATATCGGTG TTCGTCCCGT CCTTCATCGG CTCCTAGTGC
121 CAAGGCATCC ACCGTGCGCC CTTTCTAACT TAACCGTTAA AAAGAATCAC TACGTGATAT
181 CTTGCATTAC TAATTGAATG TGAATTACTT CTGTTATCTA GTTTTCAAAG AACAACATCT
241 CGAAGAATCA AATGATCCTT CAAAACTAAA CAAGACAGGG AACGTTCTGT TTATAAGACC
301 CAAGGTCTTA TATTCCGTTA AAATCCTTAG AAAGGAGGTG ATCCAGCCGC ACCTTCCGAT
361 ACGGCTACCT TGTTACGACT TCACCCCAAT CATCTGTCCC ACCTTCGGCG GCTGGCTCCT
421 AAAAGGTTAC CTCACCGACT TCGGGTGTTA CAAACTCTCG TGGTGTGACG GGCGGTGTGT
481 ACAAGGCCCG GGAACGTATT CACCGCGGCA TGCTGATCCG CGATTACTAG CGATTCCAGC
541 TTCACGCAGT CGAGTTGCAG ACTGCGATCC GAACTGAGAA CAGATTTGTG GGATTGGCTT
601 AACCTCGCGG TTTCGCTGCC CTTTGTTCTG TCCATTGTAG CACGTGTGTA GCCCAGGTCA
661 TAAGGGGCAT GATGATTTGA CGTCATCCCC ACCTTCCTCC GGTTTGTCAC CGGCAGTCAC
721 CTTAGAGTGC CCAACTGAAT GCTGGCAACT AAGATCAAGG GTTGCGCTCG TTGCGGGACT
781 TAACCCAACA TCTCACGACA CGAGCTGACG ACAACCATGC ACCACCTGTC ACTCTGCCCC
841 CGAAGGGGAC GTCCTATCTC TAGGATTGTC AGAGGATGTC AAGACCTGGT AAGGTTCTTC
901 GCGTTGCTTC GAATTAAACC ACATGCTCCA CCGCTTGTGC GGGCCCCCGT CAATTCCTTT
961 GAGTTTCAGT CTTGCGACCG TACTCCCCAG GCGGAGTGCT TAATGCGTTA GCTGCAGCAC
1021TAAGGGGCGG AAACCCCCTA ACACTTAGCA CTCATCGTTT ACGGCGTGGA CTACCAGGGT
1081ATCTAATCCT GTTCGCTCCC CACGCTTTCG CTCCTCAGCG TCAGTTACAG ACCAGAGAGT
1141CGCCTTCGCC ACTGGTGTTC CTCCACATCT CTACGCATTT CACCGCTACA CGTGGAATTC
1201CACTCTCCTC TTCTGCACTC AAGTTCCCCA GTTTCCAATG ACCCTCCCCG GTTGAGCCGG
1261GGGCTTTCAC ATCAGACTTA AGAAACCGCC TGCGAGCCCT TTACGCCCAA TAATTCCGGA
1321CAACGCTTGC CACCTACGTA TTACCGCGGC TGCTGGCACG TAGTTAGCCG TGGCTTTCTG
1381GTTAGGTACC GTCAAGGTGC CGCCCTATTT GAACGGCACT TGTTCTTCCC TAACAACAGA
1441GCTTTACGAT CCGAAAACCT TCATCACTCA CGCGGCGTTG CTCCGTCAGA CTTTCGTCCA
1501TTGCGGAAGA TTCCCTACTG CTGCCTCCCG TAGGAGTCTG GGCCGTGTCT CAGTCCCAGT
1561GTGGCCGATC ACCCTCTCAG GTCGGCTACG CATCGTTGCC TTGGTGAGCC GTTACCTCAC
1621CAACTAGCTA ATGCGCCGCG GGTCCATCTG TAAGTGGTAG CCGAAGCCAC CTTTTATGTC
1681TGAACCATGC GGTTCAAACA AGCATCCGGT ATTAGCCCCG GTTTCCCGGA GTTATCCCAG
1741TCTTACAGGC AGGTTACCCA CGTGTTACTC ACCCGTCCGC CGCTAACATC AAGGAGCAAG
1801CTCCCATCTG TCCGCTCGAC TTGCATGTAT TAGGCACGCC GCCAGCGTTC GTCCTGAGCC
1861ATAATCAACT CTGGATCCGT GAATCTCTAG AGGATCCCCG GGTACCGAGC TCGAA
实施例2:YHN抑菌谱的测定
采用对峙培养法(Sijam等,2005)对表1中所列8个病原菌进行抑菌效果测定。在直径为90mm的马铃薯葡萄糖琼脂平板中央分别接直径为9mm的上述病原菌菌饼,然后用封口膜封好平板,放入28℃生化培养箱中培养两天。将直径为6mm的灭菌滤纸片蘸取准备好的解淀粉芽孢杆菌YHN菌液(107cfu/mL),移到距离病原菌边缘15mm处,封口,最后放入28℃生化培养箱中培养(图1)。表1中每个病原菌按照上述步骤处理重复3次(重复)。7天后测量抑菌圈直径,计算抑制率(表1)。
表1YHN对病原菌的抑制率
实施例3:YHN对烟草花叶病毒的室内抑制作用
将YHN在肉汤蛋白胨琼脂培养基平板上划线,平板放入28℃生化培养箱中培养12h。用牙签挑单菌落放入盛有5mL液体LB培养基(胰蛋白胨10g,酵母提取物5g,NaCl 10g,加水定容1L,高压灭菌)的试管中,28℃振荡培养14-16h。
以1∶100的接种量,将上述培养液接种于盛有100mL的三角瓶中,28℃振荡培养14-16h。将菌液离心得到菌体,用适量无菌水冲洗,重悬,再次离心,重复冲洗两次;得到不含LB培养基的菌体,最后用无菌水将菌体调至终浓度为107cfu/mL。
选取5-6叶期长势一致的三生烟(普通烟的一个品种)苗(Nicotiana tabacum cv.samsun),每隔5天喷施菌悬液一次,共喷施3次,以清水处理作为对照。3次重复,每个重复10株三生烟苗。采用常规汁液摩擦接种法,在菌剂喷雾处理过的三生烟叶片上摩擦接种烟草花叶病毒,每株接第3、4、5个叶片。置于25℃光照培养箱中,3天后调查结果,记录枯斑数。
YHN处理的叶片平均枯斑数为19.4±2.0,与对照(29.8±4.5)相比,处理的枯斑减少34.8%(图4)。
YHN对其它病毒在普通烟草(Nicotiana tabacum)其它品种上的发生也有抑制作用,能够降低发病率和发生程度。见实施例4。
实施例4:YHN用于大田防治烟草病毒病
将实施例3中28℃振荡培养14-16h的YHN菌液按1%接种量接种到含LB培养基中,28℃180rpm摇床培养14-16小时,将培养好的菌液离心,弃上清,加少量水重悬。然后加清水调至终浓度约为107cfu/mL。在苗床期(4月初)将菌液均匀喷施到烟草(品种为中烟100)(Nicotiana tabacum cv Zhongyan 100)叶片上,间隔10-15天,共喷施两次。7月底调查病害发生情况。病害分级标准按烟草行业标准YC/T39-1996规定执行
与对照相比,处理的植株粗壮,明显高于对照,每株叶片数达到20-22片,普遍高于对照的17-20片。处理的病情指数为18.17,对照病情指数为48.25,防效为62.34%。与对照相比,处理田可增产烟叶10-20%。
该菌株应用在烟草中,对多种真菌具有抑制作用,尤其是能够有效降低烟草病毒病的发生,并能显著提高烟叶产量。