CN101921312A - 一种人hnrpf多肽及其抗体制备方法 - Google Patents
一种人hnrpf多肽及其抗体制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101921312A CN101921312A CN2009101365628A CN200910136562A CN101921312A CN 101921312 A CN101921312 A CN 101921312A CN 2009101365628 A CN2009101365628 A CN 2009101365628A CN 200910136562 A CN200910136562 A CN 200910136562A CN 101921312 A CN101921312 A CN 101921312A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- hnrpf
- antibody
- polypeptide
- human
- peptide
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
本发明公开了一种C端特异的人HNRPF多肽以及抗体的制备方法,属于以抗体为特征的体外实验用的生物制品。C端特异的人HNRPF多肽的氨基酸序列为:SAAQATYSGLESQS。抗人HNRPF多肽抗体按以下方法制备:(1)人HNRPF抗原表位分析;(2)人HNRPF C端多肽合成;(3)合成多肽与载体蛋白交联;(4)制备兔抗人HNRPF多肽抗体;(5)收集、分离得到含有抗体的血清,纯化抗体,即得到抗人HNRPF多肽抗体。本发明制备的C端特异的抗人HNRPF合成多肽抗体效价高、亲和力强、特异性好,可与天然人HNRPF发生特异性结合反应;制备成本低;纯化后的抗体可以用于免疫印迹和免疫组化。该抗体为HNRPF蛋白的基础研究,比如对HNRPF的特性、功能、表达谱和含量的分析,及其相关疾病的研究提供了一个重要的工具。
Description
1.技术领域
本发明涉及一种多肽及其抗体制备方法,这种抗体主要用于天然蛋白抗原的检测。
2.背景技术
1)HNRPF功能:HNRPF是核不均一核糖核蛋白家族的成员(J Biol Chem.1995 Dec1;270(48):28780-9)。核不均一核糖核蛋白是和核不均一核RNA结合的RNA结合蛋白。这些蛋白和核内Pre-mRNA相关,他们调节Pre-mRNA的选择性剪切,多聚腺苷酸化以及mRNA代谢和转运中的其他方面。核不均一核糖核蛋白有独特的核酸结合特性。HNRPF有三个重复的类RRM结构域,他们与RNA的富鸟苷酸区域结合。(Nucleic Acids Res.2006Aug 2;34(13):3634-45)
2)HNRPF抗体产品信息:经检索,市场上有抗HNRPF的多克隆抗体,但这些多克隆抗体均不能用于免疫组化。
3)HNRPF抗体的应用:在结肠癌的癌前病变和癌变阶段,HNRPF呈现出高水平的表达,这反应出HNRPF在结肠癌的早期发生中扮演着一定的角色(Cancer Res.2006Jan 15;66(2):763-9)。这提示我们,HNRPF可以作为结肠癌发展中的标志物。
3.发明内容
本发明提供了一种HNRPF多肽,其序列为:SAAQATYSGLESQS。用此多肽制备的抗HNRPF抗体可以在免疫印迹(Western blot)及免疫组化(IHC)分析中特异识别组织或细胞中的天然HNRPF蛋白。抗HNRPF抗体是通过以下步骤获得的:
步骤一:多肽序列的分析和设计:利用DNAstar软件对HNRPF蛋白的氨基酸序列进行抗原表位分析,主要评估亲水性,抗原性,表面可能性,柔性区等指数,再结合过去制备抗体的实际经验,最终确定HNRPF蛋白383-396位14个氨基酸作为合成多肽氨基酸序列,序列为SAAQATYSGLESQS。
步骤二:多肽合成和交联:采用ACT396全自动多通道多肽合成仪合成目的多肽,并采用质谱进行鉴定;
为增强多肽的抗原性,将HNRPF多肽与载体蛋白KLH采用Sulfo-SMCC交联法进行交联。
步骤三:多肽免疫和抗血清制备:将交联后的HNRPF-KLH与弗氏佐剂混合乳化,在新西兰兔背部进行皮内注射免疫,并反复加强免疫,至取血检测抗体效价达到标准时停止免疫。
步骤四:抗体纯化:实验兔抗体效价达到标准后,采用心脏取血,分离抗血清,采用Protein A纯化全抗体后,进一步采用肽亲和纯化,得到目标抗体。
抗HNRPF抗体是通过以下步骤鉴定的:
步骤一:免疫印迹:将所获得的HNRPF抗体作为一抗,采用标准的免疫印迹方法,用于检测抗原,确认该抗体能够与变性后的天然HNRPF蛋白相互作用,可用于免疫印迹试验。
步骤二:免疫组化:将所获得的HNRPF抗体作为一抗,采用标准的免疫组化方法,用于检测组织芯片(9种胎儿组织),确认该抗体能够与具有天然结构的HNRPF蛋白相互作用,可用于免疫组化试验。
4.附图说明
图1为Western blot图,泳道B检测的约48kDa的条带即为HNRPF蛋白信号。
图2为IHC图,图中箭头所指为HNRPF蛋白阳性反应信号。
5.具体实施方式
1)多肽序列的分析和设计
利用DNAstar软件对HNRPF蛋白的氨基酸序列进行抗原表位分析,主要评估亲水性,抗原性,表面可能性,柔性区等指数,再结合过去制备抗体的实际经验,考虑氨基酸结构复杂程度,易氧化程度,合成难度,氨基酸类别和分布等,最终确定HNRPF蛋白383-396位14个氨基酸作为合成多肽氨基酸序列,序列为SAAQATYSGLESQS。同时,为保证后期多肽交联载体蛋白以及肽亲和纯化,在N末端增加一个半胱氨酸C,最终待合成多肽序列为CSAAQATYSGLESQS。
2)多肽合成和交联
采用ACT396全自动多通道多肽合成仪,按照编制好的程序自动合成目的多肽,将合成后的多肽溶于50%乙睛,采用质谱仪进行鉴定,确认所获得的多肽为目的多肽。采用Sulfo-SMCC作为交联剂将载体蛋白KLH与合成多肽进行交联:取10mg KLH溶于0.5ml超纯水中;取3mg sulfo-SMCC溶于0.5ml超纯水中,用3M NaOH调pH值7左右。在混匀情况下,把sulfo-SMCC溶液逐滴缓慢加入KLH溶液中,室温下旋转混匀反应物30min。将反应好的sulfo-SMCC/KLH混合液上样到预先用平衡缓冲液(0.05M PB,pH6.0)平衡过30min的Sephadex G25柱中,收集浅灰色洗脱液,即活化的sulfo-SMCC/KLH溶液。用200ul PBS(pH7.3)溶解2mg交联多肽,把0.2体积的sulfo-SMCC/KLH复合物溶液加入到多肽溶液中,调pH值到7.3,室温振摇4小时,-70℃冷冻后,用冻干机冻干24小时后备用。通过Ellman法检测交联前后多肽巯基确定多肽交联效率。
3)多肽免疫和抗血清制备
将交联好的KLH-多肽400μg溶于400μl磷酸缓冲液(0.01M PBS)中,加入等体积弗氏完全佐剂充分乳化(至在水中不扩散为准)。采用兔龄3个月,体重1.75-2.25Kg的健康新西兰兔进行免疫,进行背部皮内注射免疫,至少要注射20点以上。首次免疫3周后,将300μg多肽溶于300μl磷酸缓冲液(0.01M PBS)中,与等量的弗氏不完全佐剂充分乳化后进行皮内免疫,作为第一次加强免疫,要求背部皮内注射免疫,至少要注射15点以上。第二次免疫3周后,进行第二次加强免疫,方法和要求同第一次加强免疫。1周后,采用耳缘静脉微量取血,用未交联的合成多肽包被酶标板,间接ELISA法检测免疫血清效价。重复加强免疫和效价测定,直至血清效价达到1∶10000以上,采用心脏取血标准方法获得抗血清。
4)抗体亲和纯化
(1)、TIgG纯化:用移液器将50%的Protein-A Sepharose混悬液10ml加到30ml层析柱中,去掉顶盖和底帽,液体流出后的柱床体积即为5ml,然后用25ml去离子水冲洗3遍。取出对应的血清10ml,与2ml PBS混合后加入30ml层析柱中,旋转混合器上室温(20-25℃)混旋1小时,让血清样品流出。再用15ml纯化洗液洗层析柱3次,加入10ml洗脱液进行洗脱。
(2)、肽亲和纯化:在层析柱中加入1ml Sulfo-link凝胶悬液(0.5ml凝胶),待柱内液体流干,用4ml偶联缓冲液冲洗层析柱。用1ml偶联缓冲液溶解合成的HNRPF多肽,并加入层析柱,再加入1ml偶联缓冲液至层析柱中,室温颠倒混匀1小时。用6ml偶联缓冲液冲洗层析柱,然后加入3ml封闭液,室温混匀1小时。冲洗层析柱3次,然后向层析柱内加入6ml IgG及3ml PBS,室温颠倒混匀1小时。用PBS冲洗层析柱3次,然后用2ml洗脱液洗脱。将所获得的纯化抗体装入透析袋内4℃透析。透析过夜,然后4000rpm×35min离心除沉淀,收集上清。用间接ELISA法测定抗体效价 并用Bradford法测定蛋白浓度。
5)免疫印迹分析
按照标准方法配制SDS-PAGE凝胶,将5μl蛋白浓度为5mg/ml的裂解液依次加样,恒压80V约30分钟,待样品跑过浓缩胶基本呈一条直线时,改换160V电压,电泳至溴酚蓝指示剂完全跑出分离胶(约60分钟)时终止电泳,采用电转膜方法恒压100V电转80分钟转膜至PVDF膜。将所获得的HNRPF抗体作为一抗,采用浓度为1.25μg/ml与上述转膜得到的抗原在室温下杂交1小时,然后用HRP标记的羊抗兔抗体在室温下杂交1小时,采用ECL显色法进行显色,在暗室中用X片进行显色和曝光,得到免疫印迹结果。
6)免疫组织化学分析
将4%甲醛溶液固定的组织切成1.5mm×1.5mm×2.0-3.0mm的组织块,乙醇梯度脱水后二甲苯透明30分钟,62℃石蜡浸蜡2小时后,在组织包埋机上将9种组织按照3×3的排列方式用石蜡进行包埋。采用标准石蜡切片方法将切好的4-5μm厚的组织芯片蜡片贴附于APES处理过的载玻片上,在烤片机60℃烤片1小时,然后在烤箱中60℃烤片6小时。采用标准免疫组化方法,室温下用100μl 10%羊血清于湿盒中封闭切片30分钟,加入100μl浓度为4-8μg/ml的HNRPF抗体,湿盒中4℃过夜,PBS清洗后加入生物素标记羊抗兔IgG于湿盒中37℃孵育30分钟,然后PBS清洗后加入HRP标记的链霉卵白素浓缩液,湿盒中37℃孵育30分钟,洗片后1%DAB显色,苏木素复染,复蓝,脱水,透明,封片,镜检,检查结果并拍照。
序列表:
Ser Ala Ala Gln Ala Thr Tyr Ser Gly Leu Glu Ser Gln Ser
Claims (7)
1.一种人HNRPF多肽,其特征在于多肽的氨基酸序列为:SAAQATYSGLESQS
2.一种抗人HNRPF多肽的抗体制备方法,其特征在于按权力要求1所述序列合成N端修饰肽,将合成的N端修饰肽与载体蛋白交联,用交联的肽免疫动物,取免疫动物的血制备抗血清,从血清中分离纯化IgG。
3.根据权力要求2所述的抗体制备方法,其特征在于N端修饰为在序列N端增加一个半胱氨酸残基。
4.根据权力要求2所述的抗体制备方法,其特征在于载体蛋白为匙孔血蓝蛋白(KLH)或牛血清白蛋白(BSA)。
5.根据权力要求2所述的抗体制备方法,其特征在于N端修饰肽通过交联剂将其巯基与载体蛋白氨基共价交联。
6.根据权力要求2所述的抗体制备方法,其特征在于交联肽与免疫佐剂混合乳化后,在兔背部通过多点皮下注射,并经二次以上加强免疫,血清的效价大于1∶10000。
7.根据权力要求2所述的抗体制备方法,其特征在于经过硫酸铵沉淀、蛋白A亲和纯化以及肽亲和纯化可以从抗血清中获得高纯度的IgG。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2009101365628A CN101921312A (zh) | 2009-05-08 | 2009-05-08 | 一种人hnrpf多肽及其抗体制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2009101365628A CN101921312A (zh) | 2009-05-08 | 2009-05-08 | 一种人hnrpf多肽及其抗体制备方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN101921312A true CN101921312A (zh) | 2010-12-22 |
Family
ID=43336546
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2009101365628A Pending CN101921312A (zh) | 2009-05-08 | 2009-05-08 | 一种人hnrpf多肽及其抗体制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN101921312A (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN107840877A (zh) * | 2016-09-18 | 2018-03-27 | 北京奥维亚生物技术有限公司 | 一种人hnrpf多肽及其抗体制备方法 |
-
2009
- 2009-05-08 CN CN2009101365628A patent/CN101921312A/zh active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN107840877A (zh) * | 2016-09-18 | 2018-03-27 | 北京奥维亚生物技术有限公司 | 一种人hnrpf多肽及其抗体制备方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US7670805B2 (en) | Antibodies and peptide antigens for producing antibodies having a selective binding specificity to bioactive intact parathyroid hormone (PTH) 1-84 | |
CN102633864B (zh) | 一种gpc3抗原多肽,抗gpc3的多克隆抗体及其应用 | |
CN110272502B (zh) | 免疫原、分泌抗心肌肌钙蛋白i单克隆抗体的杂交瘤细胞及制备方法、单克隆抗体及应用 | |
CN103360468B (zh) | 一种scd1多肽及抗鹅scd1多肽多克隆抗体的制备方法 | |
CN101525614A (zh) | 人卵巢癌肿瘤标志物he4酶联免疫诊断试剂盒 | |
CN105985422A (zh) | 一种人sh3bgr多肽及其抗体制备方法 | |
CN101880316B (zh) | 一种人rbpms多肽及其抗体制备方法 | |
KR101143726B1 (ko) | 생체활성의 무손상 부갑상선 호르몬 (pth) 1-84에 대한 선택적 결합 특이성을 지니는 항체 및 이를 생성하기 위한 펩티드 항원 | |
CN110317270A (zh) | 抗毒蛇pla2蛋白抗体及其应用 | |
CN108148127A (zh) | 一种人map3k7ip2多肽及其抗体制备方法 | |
CN101928332A (zh) | 一种人hnrpa0多肽及其抗体制备方法 | |
CN102336814B (zh) | 一种用于制备抗肝脏肿瘤标志物ck-19抗体的多肽序列、多克隆抗体与应用 | |
CN104861059B (zh) | 一种褐飞虱VgR多肽及其多抗制备方法 | |
CN101928334B (zh) | 一种鼠Ehf多肽及其抗体制备方法 | |
CN101928333A (zh) | 一种人eif4h多肽及其抗体制备方法 | |
CN101921312A (zh) | 一种人hnrpf多肽及其抗体制备方法 | |
CN109293762A (zh) | DRC3f抗原多肽,抗DRC3f的多克隆抗体及应用 | |
CN101392017A (zh) | 葎草花粉主要致敏蛋白的分离纯化方法 | |
CN104072586B (zh) | 人肾损伤分子1的检测试剂及试剂盒 | |
Gruber et al. | Development of an epitope‐specific analytical tool for the major peanut allergen Ara h 2 using a high‐density multiple‐antigenic peptide strategy | |
CN108148126A (zh) | 一种人c21orf13多肽及其抗体制备方法 | |
CN108148125A (zh) | 一种人eif4h多肽及其抗体制备方法 | |
CN109651497A (zh) | 一种草鱼FoxO1多肽抗原、抗体及其制备方法、应用 | |
CN104974245A (zh) | 一种褐飞虱VgR多肽及其多克隆抗体制备方法 | |
CN105985423A (zh) | 一种人c1qb多肽及其抗体制备方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20101222 |