CN101886071A - 一种从血块中快速提取基因组dna的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种从血块中快速提取基因组DNA的方法。本发明的方法包括如下步骤:(1)将血块在2-20牛顿压力下进行过滤,过滤孔径为40-130目,收集滤出液;(2)将滤出液与红细胞裂解液混匀后静置4-6分钟,9,000-13,000g离心0.5-1.5分钟,取沉淀;(3)将沉淀与细胞裂解液混匀后63-67℃水浴8-12分钟,9,000-13,000g离心0.5-1.5分钟,取上清;(4)将上清与异丙醇混匀,用DNA结合柱进行纯化,得到基因组DNA。本发明的方法具有以下优点:DNA提取量和纯度都显著提高;纯化步骤大大简化,节省大量时间;不使用任何有毒溶剂,保证工作人员的健康安全;使用廉价一次性物品,在降低成本的同时,避免潜在的交叉污染。本发明适于推广应用。
Description
技术领域
本发明涉及一种从血块中快速提取基因组DNA的方法。
背景技术
人类疾病诊断及遗传学分析研究中能否获得高质量基因组DNA非常重要。在检验科室中人基因组DNA一般是从抗凝血中提取的,而血清学检测后遗留的大量血块却没有被利用。
从抗凝血中提取DNA的主要的原因如下:目前从抗凝血中提取DNA的技术非常成熟;抗凝血不需要前期处理,并可以在1小时内完成提取。
相应的,从血块中提取DNA存在如下问题:方法繁琐、费时且效率低;需要繁琐的前期处理(如用镊子或手术刀搅碎血块,不仅操作过程危险,还使操作人员直接接触血块;用研磨器研磨血块需要认真清洗研磨物品,很容易造成交叉污染;用蛋白酶K消化血块一般需要16小时以上);从血块中提取DNA需要使用酚和氯仿等有机溶剂,不仅降低提取效率,还危害操作人员的健康。
发明内容
本发明的目的是提供一种从血块中快速提取基因组DNA的方法。
本发明提供的从血块中提取基因组DNA的方法,包括如下步骤:
(1)将血块在2-20牛顿压力下进行过滤,过滤孔径为40-130目,收集滤出液;
(2)将滤出液与红细胞裂解液混匀后静置4-6分钟,然后9,000-13,000g离心0.5-1.5分钟,取沉淀;
(3)将沉淀与细胞裂解液混匀后63-67℃水浴8-12分钟,然后9,000-13,000g离心0.5-1.5分钟,取上清;
(4)将上清与异丙醇混匀后,用DNA结合柱进行纯化,得到基因组DNA。
所述步骤(1)可为:将血块在8-12牛顿压力下进行第一次过滤,过滤孔径为40-60目,收集滤出液;然后将滤出液在8-12牛顿压力下进行第二次过滤,过滤孔径为110-130目,收集滤出液。所述步骤(1)中,第一次过滤的过滤孔径具体可为50目,第二次过滤的过滤孔径具体可为120目。
所述步骤(2)中,具体可静置5分钟,然后10,000g离心1分钟;所述步骤(3)中,具体可65℃水浴10分钟,然后10,000g离心1分钟。
所述步骤(4)具体可为:将步骤(3)得到的上清与异丙醇混匀后转移到DNA结合柱,12,000g离心1分钟,弃流出液;然后在DNA结合柱中加入75%(体积百分含量)乙醇水溶液,12,000g离心1分钟,弃流出液;然后在DNA结合柱中加入75%(体积百分含量)乙醇水溶液,12000g离心1分钟,弃流出液;然后将DNA结合柱12,000g离心2分钟,弃流出液;然后将DNA结合柱加入DNA溶解液,室温放置2分钟;然后将DNA结合柱12,000g离心1分钟,收集流出液即为含有基因组DNA的溶液。
所述血块、所述红细胞裂解液、所述细胞裂解液、所述异丙醇的配比具体可为:2mL血块:6mL红细胞裂解液:1mL细胞裂解液:250μL异丙醇。
所述步骤(2)和步骤(3)之间还可包括如下步骤:将步骤(2)得到的沉淀与红细胞裂解液混匀后静置4-6分钟,然后9,000-13,000g离心0.5-1.5分钟,取沉淀。所述步骤(2)和步骤(3)之间优选包括如下步骤:将步骤(2)得到的沉淀与红细胞裂解液混匀后静置5分钟,然后10,000g离心1分钟,取沉淀,所述红细胞裂解液的加入量与步骤(2)中红细胞裂解液的加入量相同。
所述红细胞裂解液可采用如下方法配制:由NH4Cl、KHCO3、Na2EDTA和水组成,pH7.4;NH4Cl的浓度为155mM,KHCO3的浓度为10mM,Na2EDTA的浓度为0.1mM。红细胞裂解液为常规配方,采用市售红细胞裂解液也可。
所述细胞裂解液可采用如下方法配制:由Tris-HCl、NaCl、Na2EDTA、SDS、蛋白酶K和水组成,pH 8.2;Tris-HCl的浓度为10mM,NaCl的浓度为400mM,Na2EDTA的浓度为2mM,SDS的浓度为1%(质量百分含量),蛋白酶K的浓度为0.5mg/mL。细胞裂解液为常规配方,采用市售细胞裂解液也可。
所述DNA溶解液具体可为pH7.510mM的Tris-HCl水溶液(DNA溶解液为常规配方,采用市售细胞裂解液也可)。
所述DNA结合柱具体可为购自Generay公司,型号为GK0501的DNA结合柱。
本发明还保护一种从血块中获得血液的方法,包括如下步骤:将血块在8-12牛顿压力下进行第一次过滤,过滤孔径为40-60目,收集滤出液;然后将滤出液在8-12牛顿压力下进行第二次过滤,过滤孔径为110-130目,收集滤出液(血液)。第一次过滤的过滤孔径具体可为50目,第二次过滤的过滤孔径具体可为120目。
本发明的方法与传统方法相比具有以下优点(见表1):首先,DNA提取量和纯度都有显著提高(P<0.05);第二、大大简化纯化步骤,节省大量时间;第三、不使用任何有毒有机溶剂,保证工作人员的健康安全;第四、均使用廉价一次性物品,在降低成本的同时,避免潜在的交叉污染。
表1本发明的方法与传统方法的比较
传统方法 | 本文方法 | |
DNA产率 | 7.53±2.30μg/mL血液 | 20.1±4.1μg/mL血液 |
DNA纯度(A260/A280比值) | 1.66±0.13 | 1.77±0.11 |
所需时间 | >16小时 | 1小时 |
安全性 | 使用酚、氯仿等有毒溶剂 | 不使用任何有毒溶剂 |
交叉污染 | 组织研磨器反复使用,可能出现交叉污染 | 使用一次性物品,没有交叉污染可能性 |
本发明提供的从血块中提取基因组DNA的方法通过微孔挤压过滤,在一分钟内有效打散血块,并在不使用酚或氯仿等有毒有机溶剂的情况下,通过DNA纯化柱在一小时内完成基因组DNA提取,具有快速、安全且高效的优点,适于推广应用。
附图说明
图1为实施例1中部分DNA样本的琼脂糖凝胶电泳鉴定结果;M:DNA marker;1-4依次为样本1至4。
图2为实施例1中部分DNA样本的PCR分析结果(TLR2基因,1.3kb);M:DNAmarker;1-4依次为样本1至4。
图3为实施例1中部分DNA样本的SNP分析结果。
图4为实施例1中部分DNA样本的酶切分析结果;M1,M2:DNA marker;1,3,5,7依次为样本1至4未酶切对照;2,4,6,8依次为样本1至4EcoRI酶切过夜。
图5为实施例3中部分DNA样本的琼脂糖凝胶电泳鉴定结果;M:DNA marker;5-8依次为样本1至4。
具体实施方式
以下的实施例便于更好地理解本发明,但并不限定本发明。下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料,如无特殊说明,均为自常规生化试剂商店购买得到的。下述实施例中的%,如无特殊说明,均为质量百分含量。以下实施例中的定量试验,均设置三次重复实验,结果取平均值。
15份血块样本均来自于血清学检测后遗留的血块(每2mL血块由4mL血液凝结而成),用于实施例1至实施例3的均为该15份血块样本。
实施例1、采用本发明的方法从血块中提取基因组DNA
一、从血块中提取基因组DNA
(一)血块的快速打散
1、将2mL血块放入垫有无菌纱布(50目孔径;40-60目孔径均可,可以根据血块的情况选择)的一次性5mL注射器中,用8-12牛顿(2-20牛顿的力均可,可以根据血块的情况选择施加力的大小)的力轻轻挤压。
2、挤出来的血液样品移至另一个垫有无菌纱布(120目孔径;110-130目孔径均可,可以根据血块的情况选择)的一次性5mL注射器中,用8-12牛顿(2-20牛顿的力均可,可以根据血块的情况选择施加力的大小)牛顿的力轻轻挤压。
3、收集流出血液至15mL离心管中。
(二)提取血液DNA
1、收集的血液中加入6mL红细胞裂解液,涡旋震荡混匀(约30秒),室温放置5分钟,然后10,000g离心1分钟,取沉淀,弃去红色上清。红细胞裂解液由NH4Cl、KHCO3、Na2EDTA和水组成,pH 7.4;NH4C1的浓度为155mM,KHCO3的浓度为10mM,Na2EDTA的浓度为0.1mM。
2、沉淀中加入6mL红细胞裂解液,涡旋震荡混匀(约30秒),室温放置5分钟,然后10,000g离心1分钟,取沉淀。
3、加入1mL细胞裂解液,涡旋震荡(充分打散白细胞),置于65℃水浴10分钟(期间颠倒混匀2-3次),然后10,000g离心1分钟,取上清。细胞裂解液由Tris-HCl、NaCl、Na2EDTA、SDS、蛋白酶K和水组成,pH 8.2;Tris-HCl的浓度为10mM,NaCl的浓度为400mM,Na2EDTA的浓度为2mM,SDS的浓度为1%(质量百分含量),蛋白酶K的浓度为0.5mg/mL。
4、将上清转移至新的1.5mL离心管,并加入250μL异丙醇,涡旋震荡混匀(约10秒),然后用DNA结合柱(购自Generay公司,型号为GK0501,最大结合量30μg DNA)进行纯化。
纯化步骤按照DNA结合柱的说明进行,具体如下(根据预期的DNA含量,采用三个DNA结合柱进行纯化,然后将纯和得到的DNA混合):将所有溶液平均转移到3个DNA结合柱,12,000g离心1分钟,弃流出液;每个柱子加入700μL 75%(体积百分含量)乙醇水溶液,12,000g离心1分钟,弃流出液;每个柱子加入500μL 75%(体积百分含量)乙醇水溶液,12,000g离心1分钟,弃流出液;12,000g离心2分钟,弃去残留乙醇;每个柱子加入100μL DNA溶解液(pH7.510mM的Tris-HCl水溶液),室温放置2分钟;12,000g离心1分钟,收集流出液即为DNA样本(含有基因组DNA的溶液)。
DNA样品保存于-20℃。
分别提取15份血块样品的基因组DNA。每份血块样本均在一小时内完成基因组DNA的提取,得到15份DNA样本。
二、提取效果鉴定
1、提取量鉴定
提取量=DNA样品中的DNA含量(μg)÷血块生成所用的血液的体积(4mL)。
15份样本的平均DNA提取量为20.1±4.1μg/mL血液,平均OD值为1.77±0.11。
2、琼脂糖凝胶电泳鉴定
将步骤一提取的15份DNA样本分别进行1.0%琼脂糖凝胶电泳,均显示一条尖锐的高分子量条带,表明纯度高,质量好。部分样本的电泳图见图1。
3、PCR分析
针对TLR2基因中一段1.3kb区域设计正向引物和反向引物如下:
正向引物:5’-GTAGGTTGAAGCACTGGACAATG-3’
反向引物:5’-GACAAGTTTCAGGCATAGAATGAAAAC-3’。
分别将步骤一提取的15份DNA样本进行PCR分析:以100ng DNA为模板,利用正引物和反向引物进行PCR扩增,得到PCR扩增产物。PCR扩增步骤:94℃3分钟,(94℃30秒,58℃30秒,72℃90秒)×35循环,72℃10分钟。
将PCR扩增产物进行1.2%琼脂糖凝胶电泳。电泳结果表明,均能有效扩增得到目的条带,说明本方法提取的DNA适合于PCR分析。部分样本的电泳图见图2。
4、SNP分析
为了进一步验证DNA质量,将步骤3的PCR扩增产物进行测序。15个DNA样本中,7个样本的PCR产物的部分序列如序列表的序列1所示,6个样本的PCR产物的部分序列如序列表的序列2所示,2个样本的PCR产物的部分序列如序列表的序列3所示。结果表明,扩增的片段确实为目的片段(TLR2基因),说明提取的DNA适合于测序。同时,测序结果中,可以有效检测TLR2基因中SNP位点,说明提取的DNA适合于SNP分析。部分样本的部分区域测序结果见图3。
5、酶切分析
将步骤一提取的15份DNA样本分别进行酶切分析:取2μg DNA,其中1μg用限制性内切酶HindIII37℃酶切过夜,另外1μg作为对照不加任何酶37℃放置过夜;分别将酶切后的样本和对照样本进行1.0%琼脂糖凝胶电泳。
电泳结果表明,加入HindIII的基因组消化完全,而对照组DNA没有降解,说明本方法提取的DNA可用于酶切及Southern blot分析。部分样本的电泳图见图4。
实施例2、几种打散血块方法的比较
一、采用本发明的方法打散血块
同实施例1的步骤一。
可以有效打散血块,得到均匀的血液。血液在室温放置20分钟依然稳定,不凝结。
二、直接使用120目孔径纱布过滤打散血块
将血块直接使用120目孔径纱布过滤。
很难使血块通过纱布,需要施加非常大的压力,而且滤出的血液中含有小型血块颗粒,不利于后续提取。
三、离心过滤打散血块
将血块通过离心的方法滤过无菌纱布(120目孔径)。
在8,000g离心3分钟,血块可以完全滤过纱布,但离心结束时重新凝结在离心管管底,严重影响后续提取。如果降低转速,血块无法有效滤过纱布。
对比例、采用现有方法从血块中提取基因组DNA
一、从血块中提取基因组DNA
1、将2mL血块放入组织研磨器(经过彻底清洗并灭菌处理)中,研磨至没有明显的血块组织。转移研磨后的样品至15mL离心管中。
2、加入6mL红细胞裂解液,涡旋震荡混匀(约30秒),室温放置5分钟,然后10,000g离心1分钟,取沉淀,弃去红色上清。
3、加入3mL细胞裂解液,涡旋震荡混匀,置于65℃水浴过夜处理;然后冷却至室温,加入等体积酚/氯仿溶液(酚∶氯仿=1∶1;体积比),涡旋震荡(约30秒),室温静置5分钟;12,000g离心10分钟,将上清移至新的离心管。重复3-5次上述步骤,至蛋白不再析出。
4、加入等体积氯仿,涡旋震荡(约30秒),室温静置5分钟;12,000g离心10分钟,将上清移至新的离心管。
5、加入2倍体积无水乙醇,上下颠倒混匀,室温放置10分钟,沉淀DNA;12,000g离心10分钟,弃上清;用75%乙醇清洗一次,8,000g离心5分钟,弃上清,室温晾干后用300μL DNA溶解液溶解沉淀(DNA样品)。
DNA样品保存于-20℃。
分别提取15份血块样品的基因组DNA,得到15份DNA样本。
二、提取效果鉴定
1、提取量鉴定
15份样本的平均DNA提取量为7.53±2.30μg/mL血液,平均OD值为1.66±0.13。
2、琼脂糖凝胶电泳鉴定
将步骤一提取的15份DNA样本分别进行1.0%琼脂糖凝胶电泳。电泳结果表明,对比例的提取效果显著劣于实施例1的提取效果。部分样本的电泳图见图5。
Claims (10)
1.从血块中提取基因组DNA的方法,包括如下步骤:
(1)将血块在2-20牛顿压力下进行过滤,过滤孔径为40-130目,收集滤出液;
(2)将滤出液与红细胞裂解液混匀后静置4-6分钟,然后9,000-13,000g离心0.5-1.5分钟,取沉淀;
(3)将沉淀与细胞裂解液混匀后63-67℃水浴8-12分钟,然后9,000-13,000g离心0.5-1.5分钟,取上清;
(4)将上清与异丙醇混匀后,用DNA结合柱进行纯化,得到基因组DNA。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(1)为:将血块在8-12牛顿压力下进行第一次过滤,过滤孔径为40-60目,收集滤出液;然后将滤出液在8-12牛顿压力下进行第二次过滤,过滤孔径为110-130目,收集滤出液。
3.如权利要求2所述的方法,其特征在于:所述步骤(1)中,第一次过滤的过滤孔径为50目,第二次过滤的过滤孔径为120目。
4.如权利要求1至3中任一所述的方法,其特征在于:所述步骤(2)中,静置5分钟,然后10,000g离心1分钟;所述步骤(3)中,65℃水浴10分钟,然后10,000g离心1分钟。
5.如权利要求1至4中任一所述的方法,其特征在于:所述步骤(4)为:将步骤(3)得到的上清与异丙醇混匀后转移到DNA结合柱,12,000g离心1分钟,弃流出液;然后在DNA结合柱中加入75%(体积百分含量)乙醇水溶液,12,000g离心1分钟,弃流出液;然后在DNA结合柱中加入75%(体积百分含量)乙醇水溶液,12000g离心1分钟,弃流出液;然后将DNA结合柱12,000g离心2分钟,弃流出液;然后将DNA结合柱加入DNA溶解液,室温放置2分钟;然后将DNA结合柱12,000g离心1分钟,收集流出液即为含有基因组DNA的溶液。
6.如权利要求1至5中任一所述的方法,其特征在于:所述血块、所述红细胞裂解液、所述细胞裂解液、所述异丙醇的配比为:2mL血块∶6mL红细胞裂解液∶1mL细胞裂解液∶250μL异丙醇。
7.如权利要求1至6中任一所述的方法,其特征在于:所述步骤(2)和步骤(3)之间还包括如下步骤:将步骤(2)得到的沉淀与红细胞裂解液混匀后静置4-6分钟,然后9,000-13,000g离心0.5-1.5分钟,取沉淀;所述步骤(2)和步骤(3)之间优选包括如下步骤:将步骤(2)得到的沉淀与红细胞裂解液混匀后静置5分钟,然后10,000g离心1分钟,取沉淀,所述红细胞裂解液的加入量与步骤(2)中红细胞裂解液的加入量相同。
8.如权利要求1至7中任一所述的方法,其特征在于:所述红细胞裂解液由NH4Cl、KHC03、Na2EDTA和水组成,pH 7.4;NH4Cl的浓度为155mM,KHCO3的浓度为10mM,Na2EDTA的浓度为0.1mM;所述细胞裂解液由Tris-HCl、NaCl、Na2EDTA、SDS、蛋白酶K和水组成,pH 8.2;Tris-HCl的浓度为10mM,NaCl的浓度为400mM,Na2EDTA的浓度为2mM,SDS的浓度为1%(质量百分含量),蛋白酶K的浓度为0.5mg/mL;所述DNA溶解液为pH7.510mM的Tris-HCl水溶液。
9.一种从血块中获得血液的方法,包括如下步骤:将血块在8-12牛顿压力下进行第一次过滤,过滤孔径为40-60目,收集滤出液;然后将滤出液在8-12牛顿压力下进行第二次过滤,过滤孔径为110-130目,收集滤出液。
10.如权利要求9所述的方法,其特征在于:所述第一次过滤的过滤孔径为50目,所述第二次过滤的过滤孔径为120目。
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