CN101871004A - 成熟miRNA定量检测方法及试剂盒 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种生物标本中成熟miRNA的定量检测方法及试剂盒。其主要步骤为:提取总RNA(含miRNA),以发卡结构式引物在逆转录酶的催化下合成cDNA,以miRNA特异性正向引物及通用反向引物进行实时荧光PCR定量检测成标本中成熟miRNA的含量。本发明具有适用范围广、高特异性、高灵敏度及超宽的线性检测范围等优点。该方法简便快速,可广泛用于成熟miRNA的表达量分析及临床检验。
Description
技术领域
本发明涉及生物领域中一种标本中成熟miRNA的定量检测方法及试剂盒,可用于标本中成熟miRNA的表达量分析及临床检测。
背景技术
miRNA(microRNA)是一类非编码、内源性的小RNA,长约21~25核苷酸(nucleotides,nt)。目前已经被发现并被miRBase数据库收录的人类miRNA有695种,绝大多数miRNA可以通过与靶基因的3-UTR区互补结合,抑制靶基因翻译成蛋白质,进而在细胞及组织水平影响生物体的发育,并参与多种疾病的发生发展过程。一系列的研究表明miRNA在细胞成长、细胞分化及凋亡、同源异性盒基因调节、神经元极性、胰岛素分泌、胚胎发育中的大脑形成及心脏发生、代谢等过程中都发挥着重要作用。成熟miRNA作为体液中客观存在的标志物,其表达量的检测也将有很重要的临床意义。
自1993年首次发现miRNA以来,检测其表达水平的技术方法也发展了许多种,目前已有的检测方法主要有:(1)Northern杂交法:从1993年始,Northern杂交法就被应用于miRNA表达谱研究,也是首个用于半定量检测miRNA的实验技术,通过将已知浓度梯度的寡核苷酸参照物与待测样品进行平行杂交,实现对miRNA的半定量检测。而后,Northern杂交法成为检测细胞中miRNA表达的常规研究方法之一。但Northern杂交法最大的缺点是对样品的需求量较高,需要微克级样品才能避免假阴性,有时样品量需要达到40μg才会出现明显杂交信号;(2)原位杂交法:原位杂交分为细胞和组织内原位杂交,该技术检测miRNA表达,可更直观的展示出miRNA的时空表达模式。该技术可以检测同一细胞系中单个细胞中的miRNA表达,也可在不经分类和分离的情况下,比较不同细胞系中miRNA的表达水平,是分析miRNA表达的组织和时序特异性的有力工具。但其同样存在跟Northern杂交的缺点,那就是对样品的需求量高,很难在一般的检测实验中推广;(3)基因芯片:最初的miRNA基因芯片,是将反义DNA探针点在尼龙膜上,然后以5′端放射性标记的miRNA样品杂交,再经放射自显影获得信号。经过发展,基因芯片技术敏感度有了很大提高,且可用于多个miRNA同时检测,但仍有很多不足之处:基因芯片的制作和检测需要昂贵的仪器设备、结果是半定量的、重复性较差、不能同时优化所有待测miRNA的杂交环境、不能区分高度类似的miRNA等;(4)半定量RT-PCR:RT-PCR作为半定量检测miRNA表达的常用实验方法,在研究miRNA表达的过程中不断得到改进。半定量RT-PCR是常用的一种简洁、快速、特异的相对定量的RNA检测技术,有研究用该技术成功对比了待测和对照样本之间特异miRNA的表达差异,但只能测定miRNA的相对含量。该技术有以下优点:可在较短时间内获得结果;高通量,可同时检测多种miRNA的表达;与Northern杂交相比,仅需少量RNA,且不用放射性同位素标记;操作过程简单。但该技术检测miRNA表达时也有以下缺点:有的miRNA和其他miRNA具有同源区域,它们的引物序列就是miRNA基因序列5′端的一部分,检测的特异性不容易控制,不能很好的区分标本中的成熟miRNA和前体miRNA。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的缺点,提供一种可以特异性定量检测标本中成熟miRNA的简便、实用的方法及成套的试剂盒,可用于多种类型标本中成熟miRNA的表达量分析及临床检测。
本发明所涉及的miRNA检测方法,其特征在于:提取总RNA(含miRNA),以发卡结构引物在逆转录酶的催化下合成cDNA,以miRNA特异性正向引物及通用反向引物进行实时荧光PCR定量检测成标本中成熟miRNA的含量。该检测方法通过以下技术方案实现:(1)总RNA提取:A、样品处理;B、RNA分离;C、RNA沉淀;D、RNA洗涤;E、RNA溶解;F、RNA浓度测定;G、RNA电泳检测。(2)RNA的逆转录:以一个包含20-230nt长度的发卡序列和6-30nt特异性序列的引物进行逆转录反应,扩增相应的成熟miRNA的第一链cDNA。(3)荧光定量PCR检测:以miRNA特异性正向引物及通用反向引物进行实时荧光PCR定量检测标本中成熟miRNA的含量。检测的基本原理示意图见附图1,下面将通过一个具体实施方式详细描述该技术方案。
该技术有以下优点:高度特异性,特异的发卡反转录引物确保反应不受其前体及基因组DNA污染等因素的干扰,对序列高度同源的miRNA也可精确区分;超宽的定量线性范围和高度的检测灵敏度,从几个拷贝到几万个拷贝,定量线性范围跨越7个数量级;样品消耗少,仅需1~10ng的总RNA;适用范围广,总RNA、细胞裂解物以及纯化的RNA都可作为标本用于miRNA的定量检测,也可用于其他小分子RNA的检测,如siRNA。
附图说明
图1是检测的基本原理示意图;
图2是RNA的电泳结果图。
具体实施方式
实施例一
人血液中hsa-miR-29a miRNA的定量检测
1、总RNA提取
(1)样品处理:取100μL~500μL血液标本,加imL TRIzol试剂,反复混匀;
(2)RNA分离:室温放置上述样品液10分钟,加入氯仿200μL,剧烈振荡约1分钟,室温静置5分钟,4℃12000g离心15分钟,小心取出样品,通过观察可以发现样品分三层,其中最上层含有RNA组份;
(3)RNA沉淀:小心吸取上清液约450μL至含有600μL冰冷异丙醇的新离心管中,混匀,4℃12000g离心10分钟;
(4)RNA洗涤:去上清,加入500μL冷冻的75%乙醇,弹起沉淀,4℃12000g离心5分钟,去上清,4℃12000g再离心5分钟,吸去上清液;
(5)RNA溶解:风干约5~10分钟,加入DEPC处理水约30μL,溶解RNA;
(6)RNA浓度测定:吸取1μL RNA用DEPC水稀释10倍后,在微量分光光度计上测定RNA浓度,以DEPC水做空白对照,同时记录RNA浓度及其OD260/OD280,按照公式计算RNA浓度,RNA浓度=40ng/μL×OD260×稀释倍数;
(7)RNA电泳检测:A、变性胶制备:取1.2g琼脂糖加75mL去离子水煮沸,冷却至70℃左右加入10mL 10×Mops和15mL甲醛及适量溴化乙锭,倒胶至插有梳子的胶板上;B、电泳缓冲液配制(1×Mops):取50mL 10×Mops,用去离子水稀释至500mL,倒入电泳槽中;C、RNA样品处理:取RNA样品约9μL,65℃变性10min后立即冷却,加入1μL10×RNA上样缓冲液;D、RNA电泳:把RNA胶放入电泳槽中,100V作用电泳约5min,再在点样孔中点入处理过的RNA样品,100V左右电泳至溴酚蓝至胶的1/3处,取胶观察或拍照;
(8)RNA抽提结果:RNA电泳图见附图2;
(9)所得总RNA可立即使用或放-80℃保存;
2、检测用相关引物设计
根据hsa-miR-29a的序列ACUGAUUUCUUUUGGUGUUCAG设计实验所需的引物如下:
(1)发卡结构逆转录引物为:
5’GACCGACATCACGTACACTCCGAGGTACTTACGTGATGTC GGTCCTGAAC 3’,前面55nt的序列是发卡结构区,后面6nt的序列是针对miRNAhsa-miR-29am的特异性序列;
(2)正向引物为:5’ACTGATTTCTTTTGGTGTTCAG 3’;
(3)反向引物为:5’GACCGACATCACGTACACTCC 3’;
3、RNA的逆转录
(1)在冰上按如下比例配制RNA及引物混合液:上述所得总RNA2μL,10μM逆转录引物1μL,去RNA酶超纯水7μL,总体积为10μL;
(2)混匀上述RNA及引物混合液,短暂离心,放65℃变性10分钟,置冰上2分钟;
(3)按如下比例配制反转录反应液:RNA及引物混合液10μL,5×逆转录反应缓冲液5μL,10mM dNTPs 4μL,25U/μL RNA酶抑制剂1μL,200U/μL M-MLV逆转录酶1μL,去RNA酶超纯水4μL,总体积为25μL;
(4)混匀上述反应混合物,短暂离心,置42℃反应60分钟,95℃5分钟灭活处理;
(5)所得产物是单链cDNA,可立即使用或放置于-20℃保存。
4、荧光定量PCR检测反应
(1)在冰上按如下比例配制荧光定量PCR的反应液:10×荧光定量PCR缓冲液2μL,5U/μL DNA聚合酶0.5μL,40×荧光定量染料0.5μL,10mM dNTPs 2μL,2μM正向引物2μL,2μM反向引物2μL,单链cDNA 2μL,去RNA酶超纯水9μL,总体积为20μL;
(2)混匀上述荧光定量PCR的反应液,移至PCR反应管,短暂离心使所有试剂到反应管底部;
(3)荧光定量PCR反应:使用标准的三步法进行检测,反应循环设定如下:95℃预变性10分钟;95℃变性10秒钟,57℃退火20秒钟,72℃延伸10秒钟;40个循环;
(4)扩增分析:按照所用仪器的软件分析扩增曲线及溶解曲线,确定标本中的has-miR-29a的量。
Claims (8)
1.一种生物标本中成熟miRNA的定量检测方法,其特征在于:提取总RNA(含miRNA),以发卡结构引物在逆转录酶的催化下合成cDNA,以miRNA特异性正向引物及通用反向引物进行实时荧光PCR定量检测标本中成熟miRNA的含量。
2.根据权利要求1所述的方法,所采用的检测标本包含提纯的总RNA、提纯的小RNA及未纯化的全血、血清、血浆、唾液、尿液、组织液原液。
3.根据权利要求1所述的方法,反转录引物采用的是发卡式结构设计,包含发卡互补区、发卡环状区和特异性序列区。发卡序列的总长度为20-230nt,其中发卡互补区序列长度为10-100nt,发卡环状区序列长度为10-100nt,成熟miRNA特异性序列区的序列长度为6-30nt。
4.一种生物标本中成熟miRNA的定量检测试剂盒,其特征是包含以下组份:(1)发卡结构逆转录引物;(2)逆转录反应混合物;(3)荧光定量PCR反应混合物;(4)无RNA酶超纯水。
5.如权利要求4所述的逆转录反应混合物,其特征在于含有以下任何一种或多种组份的组合:(1)逆转录反应缓冲液,(2)dNTPs,(3)RNA酶抑制剂,(4)逆转录酶,(5)超纯水。
6.如权利要求4所述的荧光定量PCR反应混合物,其特征在于含有以下任何一种或多种组份的组合:(1)荧光定量PCR缓冲液,(2)DNA聚合酶,(3)荧光染料,(4)dNTPs,(5)正向引物,(6)反向引物,(7)超纯水。
7.上述任一项权利要求所述的内容,用于任一种成熟miRNA的检测试剂盒。
8.上述任一项权利要求所述的内容,用于任一种成熟miRNA表达水平的分析及临床检测。
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Cited By (6)
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---|---|---|---|---|
CN102168132A (zh) * | 2010-12-15 | 2011-08-31 | 陈必成 | 检测t细胞微小rna155相对含量反映个体免疫状态的技术 |
CN103131756A (zh) * | 2011-11-24 | 2013-06-05 | 百奥迈科生物技术有限公司 | 一种小核酸的检测方法及其应用 |
CN103383355A (zh) * | 2013-07-12 | 2013-11-06 | 华南师范大学 | 基于非酶扩增及电化学发光原理的microRNA检测方法 |
CN105950711A (zh) * | 2016-04-20 | 2016-09-21 | 中南大学 | 二茂铁标记的磁性纳米复合物的制备及相关应用 |
CN107326092A (zh) * | 2017-08-25 | 2017-11-07 | 深圳市恩普电子技术有限公司 | 大肠癌相关的miRNA作为生物标志物的应用及大肠癌检测试剂盒 |
CN113557300A (zh) * | 2019-03-22 | 2021-10-26 | 深圳华大智造科技股份有限公司 | 核酸序列、rna目标区域测序文库的构建方法及应用 |
-
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Cited By (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102168132A (zh) * | 2010-12-15 | 2011-08-31 | 陈必成 | 检测t细胞微小rna155相对含量反映个体免疫状态的技术 |
CN103131756A (zh) * | 2011-11-24 | 2013-06-05 | 百奥迈科生物技术有限公司 | 一种小核酸的检测方法及其应用 |
CN103131756B (zh) * | 2011-11-24 | 2014-08-27 | 百奥迈科生物技术有限公司 | 一种小核酸的检测方法及其应用 |
CN103383355A (zh) * | 2013-07-12 | 2013-11-06 | 华南师范大学 | 基于非酶扩增及电化学发光原理的microRNA检测方法 |
CN103383355B (zh) * | 2013-07-12 | 2015-09-30 | 华南师范大学 | 基于非酶扩增及电化学发光原理的microRNA检测方法 |
CN105950711A (zh) * | 2016-04-20 | 2016-09-21 | 中南大学 | 二茂铁标记的磁性纳米复合物的制备及相关应用 |
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CN107326092B (zh) * | 2017-08-25 | 2021-07-20 | 深圳市恩普电子技术有限公司 | 大肠癌相关的miRNA作为生物标志物的应用及大肠癌检测试剂盒 |
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PB01 | Publication | ||
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