具体实施方式
对本领域中所存在的上述问题,本发明提出了一套新的解决方案。
首先,本发明选择细胞周期蛋白B2作为区分肿瘤患者和正常人的血清分子标志,从而提供了能够适用于所有肿瘤的检测技术。
在本发明中,发现细胞周期蛋白B2在部分肺癌、胃癌、肝癌、乳腺癌、食道癌、胰腺癌、结肠癌、前列腺癌、宫颈癌、卵巢癌、膀胱癌和肾细胞癌等实体肿瘤患者的血清中均呈高表达。而在340例正常人中没有表达。
肿瘤细胞的一个基本特征是无限制增殖,该特征与细胞周期蛋白B2的mRNA异常表达有关。恶性肿瘤细胞通过启动细胞周期蛋白B2基因的表达促进恶性增殖。由于成年人体内绝大部分细胞,除了原始的干细胞、生殖细胞和活化的淋巴细胞外,均不表达细胞周期蛋白B2,而在部分肿瘤中均可以检测到细胞周期蛋白B2的mRNA,这一特性使得细胞周期蛋白B2成为肿瘤细胞的一种理想标志。因此,细胞周期蛋白B2可以鉴别正常细胞和癌细胞,正常细胞的表型为细胞周期蛋白B2“-”,而癌细胞为细胞周期蛋白B2“+”。第二,在血液中正常白细胞与癌细胞的鉴别也是一个十分棘手的问题。由于血液中癌细胞含量甚少,采用病理形态观察无法找到癌细胞。目前普遍采用RT-PCR等高度敏感的分子检测技术进行分析,但由于正常白细胞存在肿瘤标志基因的非法表达现象,假阳性问题很难排除。通过分离血清可以排除检测过程中正常白细胞的干扰、消除假阳性和提高诊断率。
实时定量PCR是根据Taqman技术发展起来的一项新颖的基因检测方法,其原理是将靶基因特异性的一组引物和荧光标记探针与模板cDNA进行杂交,然后在聚合酶链反应过程中利用Taq酶的3’-核酸外切酶活性水解探针3’-端的荧光淬灭基团,获得荧光激发信号,后者与模板量呈正相关。应用这一技术可以从1-10pg RNA中检测到靶基因mRNA的表达,由于1个细胞中至少含有10pg RNA,因而实时定量PCR的检测极限可以达到1-10个细胞。
本发明提供了一种相对实时定量PCR(Quantitative Real-time PCR)技术,用于检测细胞周期蛋白B2基因表达。该方法主要采用目前国际上通用的2-ΔΔCt法进行相对定量分析(16),通过分析靶基因与内参基因(β-肌动蛋白基因)的比值与标准品中靶基因与内参基因(β-肌动蛋白基因)的比值,得到相对于标准品而言,靶基因相对于内参基因的表达状况,由此来达到定量分析。
本发明另一方面还提供了几套PCR引物及探针,能够特异性地扩增细胞周期蛋白B2和内参照基因(β-肌动蛋白基因)的mRNA。具体而言,发明人根据Genbank数据库中公开发表的细胞周期蛋白B2(NM_004701.2)和作为内参基因的β-肌动蛋白(NM_001101.2)基因序列,采用internet上公开的引物设计软件(例如ABI公司的引物设计 软件primer express 2.0),根据细胞周期蛋白B2基因第1144-1243位核苷酸区间和第1078-1316位核苷酸区间分别设计了引物和探针,建立了细胞周期蛋白B2和作为内参基因的β-肌动蛋白基因的实时定量PCR检测方法。
本发明另一方面还提供了利用标准品来定量检测细胞周期蛋白B2基因在生物样本中的相对表达量的方法。本发明中所涉及到的标准品包括但不限于:从人的血清、全血、或人细胞系中提取的RNA样本。
然而,本领域技术人员应当能够理解,本文列举的引物和探针仅仅是为了描述本发明。本领域技术人员在阅读了本说明书后,能够采用常规的手段在细胞周期蛋白B2基因第1078-1316位核苷酸区间内通过适当选择其他引物来合成DNA标准品,也能够在细胞周期蛋白B2基因第1144-1243位核苷酸区间内选择其它合适的引物和探针,通过相对定量的2-ΔΔCt法,来达到本发明的目的。
实时定量PCR通常分为相对定量和绝对定量二类。相对定量分析以靶基因阳性表达的细胞作为标准,通过分析靶基因与内参照基因(如β-肌动蛋白等)的比值,获得待测样本中靶基因表达的相对值。这种方法的优点是容易开发,但所得的数值受阳性标准细胞的影响,不同的实验室若采用不同的阳性细胞作为标准,则结果难以相互比较。
单细胞实时定量PCR(Single Cell Quantitative Real-time PCR)。将该方法与常规PCR进行了比较,证明单细胞实时定量PCR检测的敏感性可以提高100倍。此外,发明人应用相对定量的方法对10例正常肺组织和55例肺癌组织中细胞周期蛋白B2 mRNA含量进行了分析,确定了正常肺组织中细胞周期蛋白B2基因表达的标准值。按此标准,肺癌组织中细胞周期蛋白B2阳性表达率为69.1%。
表2:各种肿瘤患者血清中细胞周期蛋白B2的相对表达量
070308XC01 |
肺癌 |
163956.8
|
0.12 |
070308XC03 |
肺癌 |
27632.1
|
0.02 |
070508XC07 |
肺癌 |
10340.4
|
0.01 |
070605XC02 |
肺癌 |
0 |
0.00 |
070605XC06 |
肺癌 |
0 |
0.00 |
070612XC01 |
肺癌 |
98.9 |
0.00 |
070616XC09 |
肺癌 |
25782.5
|
0.04 |
070616XC14 |
肺癌 |
551693.0
|
0.78 |
070620XC01 |
肺癌 |
67173.6
|
0.32 |
070620XC04 |
肺癌 |
124782.5
|
0.60 |
070328XC06 |
肺癌 |
1339.1 |
0.01 |
070529XC03 |
肺癌 |
760.6 |
0.00 |
070626XC01 |
肺癌 |
135300.4
|
0.21 |
070626XC02 |
肺癌 |
141687.8
|
0.22 |
070626XC06 |
肺癌 |
189043.2
|
0.30 |
070626XC09 |
肺癌 |
0 |
0.00 |
070627XC03 |
肺癌 |
24277.9
|
0.17 |
070627XC08 |
肺癌 |
8837.7 |
0.06 |
070622XC01 |
肺癌 |
196341.6
|
0.46 |
070627XC14 |
肺癌 |
31957.3
|
0.08 |
070522XC05 |
肺癌 |
20982.6
|
0.05 |
070710XC03 |
肺癌 |
2355.6 |
0.10 |
070602XC01 |
肝癌 |
0 |
0.00 |
070602XC03 |
肝癌 |
0 |
0.00 |
070612XC04 |
肝癌 |
0 |
0.00 |
070612XC10 |
肝癌 |
523654.7
|
0.64 |
070616XC13 |
肝癌 |
0 |
0.00 |
070328XC11 |
肝癌 |
2769.9 |
0.00 |
070426XC05 |
肝癌 |
4012.4 |
0.01 |
070612XC06 |
甲状腺癌 |
0 |
0.00 |
070710XC07 |
甲状腺癌 |
2036.4 |
0.09 |
[0037]
070429XC02 |
甲状腺癌术后 |
361843.5
|
0.10 |
070710XC02 |
甲状腺癌术后 |
0 |
0.00 |
070315XC01 |
颈下腺癌术后 |
36889.1
|
0.06 |
070428XC01 |
淋巴瘤 |
0 |
0.00 |
070627XC12 |
淋巴瘤 |
47711.7
|
0.34 |
070601XC02 |
卵巢癌 |
678719.6
|
5.28 |
070328XC08 |
卵巢癌 |
195255.8
|
1.52 |
070605XC05 |
卵巢癌 |
0 |
0.00 |
070308XC02 |
卵巢癌 |
0 |
0.00 |
070629XC05 |
卵巢癌 |
0.3 |
0.00 |
070616XC10 |
泌尿系感染 |
862.5 |
0.00 |
070302XC05 |
前列腺癌 |
177678.1
|
0.13 |
070605XC04 |
前列腺癌 |
5215.4 |
0.00 |
070630XC02 |
前列腺癌 |
0 |
0.00 |
070426XC06 |
食道癌 |
331076.8
|
2.58 |
070331XC02 |
结肠癌 |
518112.6
|
0.37 |
070612XC07 |
结肠癌 |
35044.6
|
0.04 |
070626XC08 |
结肠癌 |
101819.6
|
0.16 |
070411XC30 |
乳腺癌 |
2160758.2
|
16.80 |
070429XC05 |
乳腺癌 |
645902.2
|
0.18 |
070612XC05 |
乳腺癌 |
27864.8
|
0.03 |
070620XC03 |
乳腺癌 |
0 |
0.00 |
070323XC13 |
乳腺癌 |
2489.7 |
0.01 |
070627XC06 |
乳腺癌 |
43946.4
|
0.31 |
070627XC09 |
乳腺癌 |
8829.7 |
0.06 |
070302XC13 |
乳腺癌 |
250996.2
|
0.59 |
070522XC14 |
乳腺癌 |
0 |
0.00 |
070629XC01 |
乳腺癌 |
25.2 |
0.00 |
070704XC06 |
乳腺癌 |
61.8 |
0.00 |
070710XC06 |
乳腺癌 |
0 |
0.00 |
070109XC01 |
乳腺癌,乳腺癌 |
172550.1
|
0.09 |
[0038]
|
术后 |
|
|
070116XC01 |
乳腺癌术后 |
267773.9
|
2.08 |
070116XC04 |
乳腺癌术后 |
0 |
0.00 |
070616XC12 |
乳腺癌术后 |
7.1 |
0.00 |
070123XC01 |
乳腺癌术后 |
59866.3
|
0.09 |
070323XC04 |
乳腺癌术后 |
172.4 |
0.00 |
070417XC02 |
乳腺癌术后 |
41918.7
|
0.07 |
070508XC02 |
右乳癌术后 |
464801.8
|
0.25 |
070612XC03 |
直肠癌 |
6485.9 |
0.01 |
070118XC05 |
子宫内膜癌 |
1342.4 |
0.01 |
070627XC02 |
胃癌 |
0 |
0.00 |
070627XC07 |
胃癌 |
67013.1
|
0.47 |
070627XC13 |
胃癌 |
0 |
0.00 |
070522XC13 |
胃癌 |
13078.9
|
0.03 |
070711XC01 |
胰腺癌 |
388352.2
|
16.31 |
070602XC05 |
食管癌 |
0 |
0.00 |
070411XC18 |
食管癌 |
835833.6
|
0.24 |
070508XC06 |
食管癌 |
2217812.8
|
0.62 |
070508XC01 |
食管癌 |
11573.2
|
0.01 |
070616XC15 |
食管癌 |
402.4 |
0.00 |
070626XC07 |
食管癌 |
210594.2
|
0.33 |
070627XC04 |
食管癌 |
58326.2
|
0.41 |
*:是相对定量,正常人的基准值是100。
以下借助非限制性实施例详细描述本发明。
实施例1:实时定量PCR检测技术
1.1材料与方法
正常血清样本来自北京军区总医院新兵体检,各种肿瘤患者血清主要取自承德北方医院与保定恒兴中西医结合医院。Trizol RNA抽提试剂盒购自In Vitrogen上海申能博采生物科技有限公司。RevertAidT′第一链cDNA合成试剂盒购自Promege公司。PCR引物探针由大连宝 生物生物工程公司合成。荧光定量PCR试剂盒购自大连宝生物工程公司。定量PCR仪为FB-2000(上海枫岭生物科技公司)
|
Cyc B2-8 |
SEQ ID NO:18 |
5’AGCTGCTTCCTGCTTGTCTC3’
|
SEQ ID NO:19 |
5’GCACAATGAAGCACACATCC3’ |
|
|
Cyc B2-9 |
SEQ ID NO:20 |
5’CCAGTTCCCAAATCCGAGAA3’ |
|
SEQ ID NO:21 |
5’CTGGTCTGAGAAGAGGTTTCATGAG3’
|
|
|
β-肌动蛋白基因 |
β-actin-1 |
SEQ ID NO:22 |
5’CATCCTCACCCTGAAGTA3’ |
SEQ ID NO:23 |
5’ACACGCAGCTCATTGTAG3’ |
|
|
SEQ ID NO:24 |
5’ FAM-CCCATCGAGCACGGCATCGT-TAM RA3’
|
|
|
18s rRNA |
18s rRNA-1 |
SEQ ID NO:25 |
5’ACATCCAAGGAAGGCAGCAG3’ |
SEQ ID NO:26 |
5’TTCGTCACTACCTCCCCGG3’ |
|
|
SEQ ID NO:27 |
5’FAM- CGCGCAAATTACCCACTCCCGA-TAMRA 3’
|
|
|
细胞周期素B2特异性逆 转录引物 |
RT CyclinB2-1 |
SEQ ID NO:28 |
5’CGCATGCGTCCATTTATA3’ |
RT Cyclin B2-2 |
SEQ ID NO:29 |
5’GTAGGTTTCAGTTGTTTG3’ |
|
RT CyclinB2-3 |
SEQ ID NO:30 |
5’GCAAGGTCTTTGACGGCTTT3’ |
|
β-肌动蛋白特异性逆转录引物 |
RTβ-actin-1 |
SEQ ID NO:31 |
5’GGTCATCTTCTCGCGGTT3’ |
18s rRNA特异性逆转录引物 |
RT18s rRNA-1 |
SEQ ID NO:32 |
5’GGACTCATTCCAATTACAG3’ |
根据Genbank数据库中公开发表的细胞周期蛋白B2(NM_004701.2)和β-肌动蛋白(NM_001101.2)基因序列,采用Internet公开的ABI公司出产的引物设计软件primer express 2.0,分别设计了几组引物和探针,见表3。
表3:引物和Taqman探针
抽提总RNA后采用紫外分光光度计(美国Nanodrop公司的紫外分光光度计)测定A260及A280。取2μg RNA按试剂盒要求合成cDNA, 反应体积为10μl。
(1)检测样本总RNA的制备:
用带有分离胶的管子采血,4,400rpm离心10分钟,取250μl血清分装到1.5ml eppendorf管中,加入750μl Trizol试剂,马上剧烈混匀,短暂离心,开盖加入200μl氯仿,混匀,静置10分钟,12000rpm离心10分钟,取上清(大约500μl)到另一个1.5ml的eppendorf管中,加入等体积的异丙醇,混匀沉淀1小时,12000rpm离心10分钟,收集沉淀,用1ml的70%乙醇洗涤一次,晾干沉淀,用10μl的DEPC-H2O溶解。取3μl用紫外分光光度计进行浓度纯度测定。
(2)逆转录反应,取2μg总RNA配成5.5μl反应体积,进行反转录。选取针对细胞周期蛋白B2、β-肌动蛋白特异反转录引物SEQ ID NO:16,SEQ ID NO:19,用MMLV分别对各个样本进行反转录。
(3)定量PCR反应
取反转录反应产物,稀释10倍,取5μl为模板,进行定量PCR反应,10X PCR反应缓冲液2.5μl,
表4.定量PCR反应反应体系计算和配置
实施例2
荧光定量PCR法检测血清18S rRNA和细胞周期蛋白B2转录本 在癌症检测中的应用,测定各个反应管的Ct值,应用delta Ct法进行样本中细胞周期蛋白B2相对量的计算分析(图1所显示的是表2中列出的的10种不同类型癌症检测所得到的相对表达量的平均值)。
用表3中所列的引物和探针分别对表2中的各种样品进行检测。
不同实验间误差共5%。在检测的来自10种类型癌症(见表2)的所有血清样品中,发现与正常样品相比,细胞周期蛋白B2明显过量表达。
实施例3
荧光定量PCR法检测血清18S rRNA和细胞周期蛋白B2转录本在治疗处理后的患者中的应用
为了检查细胞周期蛋白B2的血清表达水平的实时PCR检测是否能用于监测癌症治疗处理(例如手术、化疗、放疗等),以及监测治疗后癌症复发的效力。在癌症治疗处理之前和之后,如上所述比较血清细胞周期蛋白B2的表达水平(图2)。发现在治疗(例如手术)之后,上述10种癌症的患者中血清细胞周期蛋白B2水平都显著降低(图2所显示的是平均值±标准方差)。
实施例4
荧光定量PCR法检测人细胞系中18S rRNA和细胞周期蛋白B2转录本作为标准品
为了选择稳定性和一致性高的标准品作为计算细胞周期蛋白B2的血清相对表达水平,从而更准确有效地反映癌症治疗处理(例如手术、化疗、放疗等),以及监测治疗后癌症复发的情况,我们对人细胞系293T的细胞悬浊液(图3A)和从人细胞系293T中提取的总RNA(图3B)进行了梯度稀释并按照实施例1中的方法进行了细胞周期蛋白B2的荧光定量PCR法检测(图3所显示的是平均值)。发现细胞周期蛋白B2在293T细胞中的相对表达水平和细胞个数(图3A),以及RNA浓度(图3B)成很好的相关性。另外,我们在6个月内对上述实验进行了多次重复(每周一次)(样本均保存在-80℃)并发现所有实验中细胞周期蛋白B2的相对表达水平具有很好的一致性和 稳定性(标准方差<10%)(数据未显示)。这些结果表明利用荧光定量PCR法检测人细胞系中18S rRNA和细胞周期蛋白B2转录本可以作为标准品。
虽然上面结合实施例对本发明进行了具体描述,但是熟悉本领域的专业技术人员均了解,在不违背本发明的原则和精神的情况下,根据本说明书及所附权利要求书中公开的内容,可对本发明做出各种变动和改进。因此,所有这些变动和改进均应包括在所附权利要求书中所要求的保护范围之内。
参考文献
1.曾益新,肿瘤学[M],第2版,北京:人民卫生出版社,2003,151-152。
2.Hofmann H.S.,Hansen G.,Burdach S.等,通过两个靶基因从正常肺部中区分出人肺肿瘤,Am.J.Respir.Crit.Care Med.2004;170:516-519.
3.Li C.,Shridhar K.,Liu J.,表达温度敏感型p53突变体的MCF-7细胞的制癌蛋白M诱导的生长抑制的分子表征,Breast Cancer Res.Treat.2003;80:23-37。
4.Yoshitome S.,Furuno N.,Hashimoto E.等,细胞周期蛋白B2胞质滞留信号区的C末端七个氨基酸是爪蟾卵母细胞和胚胎的正常双极纺锤体形成必需的,Mol.Cancer Res.,2003,1:589-597。
5.Zhao S.,Tsuchida T.,Kawakami K.等,As2O3对p53状态不同的两种胶质母细胞瘤细胞系的细胞周期进程和细胞周期蛋白D1和B1表达的影响,Int.J.Oncol.,2002,21:49-55。
6.Wasner M.,Haugwitz U.,Reinhard W.等,三种CCAAT2盒和单一细胞周期基因同系物区(CHR)是由人类细胞周期蛋白B2启动子转录的主要调控位点,Gene,2003,17(312):225。
7.Yamazaki K.,Abe S.,Takekawa H.等,人肺腺癌中的肿瘤血管生成,Cancer,1994,74(8):2245。
8.Kurusu Y.,Yamashita J.,Ogawa W.,通过逆转录酶聚合酶链式 反应对非小细胞肺癌患者的循环肿瘤细胞进行检测,Surgery,1999,126(5):820-826。
9.董强刚,沙慧芳,外周血循环中肺癌细胞的流式细胞仪定量分析,《肿瘤》,2000/20/01P 31-34。
10.Yeh K.H.,Chen Y.C.,Yeh S.H.等,通过细胞角蛋白19(K19)巢式逆转录聚合酶链式反应检测循环癌细胞-对晚期胃癌的潜在临床意义,Anticancer Res.,1998,18(2B):1283-1286。
11.Weigelt B.,Bosma A.J.,Hart A.A.M.等,循环肿瘤细胞的标记基因预告转移乳癌患者的存活率,Br J Cancer,2003,88(7):1091-1094。
12.Guller U.,Zajac P.,Schnider A.等,用实时定量PCR检测到的散播的单一肿瘤细胞是直肠结肠癌手术患者的诊断因子,Ann.Surg.,2002,236(6):768-776。
13.Ito S.,Nakanishi H.,Kodera Y.等,胃癌患者的腹腔冲洗液的定量CEA mRNA检测的预期验证,Br.J.Cancer,2005,93(9):986-992。
14.Mou D.C.,Cai S.L.,Peng J.R.等,作为检测肝癌细胞的血液散播的肿瘤特异性标记物的MAGE-1和MAGE-3的评估,Br.J.Cancer 2002,86(1):110-6。
15.Judson P.L.,Geller M.A.,Bliss R.L.,Boente M.P.,Downs L.S.,Argenta P.A.,Carson L.F,外周循环癌细胞的术前检测及其对卵巢癌的诊断意义,Gynecologic Oncology,Volume 91,Number 2,November 2003,pp.389-394(6)。
图1显示的是对10种不同类型癌症检测所得到的细胞周期蛋白B2的相对表达量的平均值;
图2显示的是在癌症治疗处理之前和之后,血清细胞周期蛋白B2表达水平的比较;
图3显示的是对人细胞系293T的细胞悬浊液(图3A)和从人细胞系293T中提取的总RNA(图3B)进行的细胞周期蛋白B2的荧光定量PCR法检测的结果。
序列表
<110>北京雅康博生物科技有限公司
<120>实时定量PCR检测细胞周期蛋白B2基因表达的方法
<160>32
<210>1
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>1
CACAGGATACACAGAGAATG 20
<210>2
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>2
CTTGATGGCGATGAATTTAG 20
<210>3
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:探针
<400>3
ATTGGAAGTCATGCAGCACATGGC 24
<210>4
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>4
GGACATTGATAACGAAGATTG 21
<210>5
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>5
GCTGCCTGAGATACTGAT 18
<210>6
<211>23
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:探针
<400>6
AGAACCCTCAGCTCTGCAGTGAC 23
<210>7
<211>15
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>7
GGCACTCTTGCCTTC 15
<210>8
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>8
GTTCGCCTAATAGTCACA 18
<210>9
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:探针
<400>9
CTCATGGCGCTGCTCCGACG 20
<210>10
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>10
TTGCAGTCCATAAACCCACA 20
<210>11
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>11
GAAGCCAAGAGCAGAGCA 18
<210>12
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>12
TCAACCCACCAAAACAACAA 20
<210>13
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>13
AGGGTTCTCCCAATCTTCGT 20
<210>14
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>14
AGCTGCTTCCTGCTTGTCTC 20
<210>15
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>15
GGTCTTTGACGGCTTTTGAG 20
<210>16
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>16
CCTACTGCTTCTGTCAAACC 20
<210>17
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>17
TGTGGGTTTATGGACTGCAA 20
<210>18
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>18
AGCTGCTTCCTGCTTGTCTC 20
<210>19
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>19
GCACAATGAAGCACACATCC 20
<210>20
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>20
CCAGTTCCCAAATCCGAGAA 20
<210>21
<211>25
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>21
CTGGTCTGAGAAGAGGTTTCATGAG 25
<210>22
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>22
CATCCTCACCCTGAAGTA 18
<210>23
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>23
ACACGCAGCTCATTGTAG 18
<210>24
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:探针
<400>24
CCCATCGAGCACGGCATCGT 20
<210>25
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>25
ACATCCAAGGAAGGCAGCAG 20
<210>26
<211>19
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>26
TTCGTCACTACCTCCCCGG 19
<210>27
<211>22
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:探针
<400>27
CGCGCAAATTACCCACTCCCGA 22
<210>28
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>28
CGCATGCGTCCATTTATA 18
<210>29
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>29
GTAGGTTTCAGTTGTTTG 18
<210>30
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>30
GCAAGGTCTTTGACGGCTTT 20
<210>31
<211>18
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>31
GGTCATCTTCTCGCGGTT 18
<210>32
<211>19
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>人工序列的描述:引物
<400>32
GGACTCATTCCAATTACAG 19