CN103266167A - 一种快速检测CK19 mRNA表达量的方法及其试剂盒 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种用于检测CK19mRNA表达量的引物、探针以及检测方法和试剂盒，其中所述引物包括碱基序列如SEQ ID NO:1所示的正向引物和碱基序列如SEQ ID NO:2所示的反向引物，所述探针的碱基序列如SEQ ID NO:3所示，其5’端标记有报告荧光基团，3’端标记有淬灭荧光基团。本发明方法检测速度快、操作简单、特异性好、灵敏度高、重复性强，其能够对检测样本中的CK19mRNA表达量进行快速特异性检测，可应用于以CK19作为标记物的相关检测中，具有广泛的应用范围和良好的应用前景。
Description
技术领域
本发明涉及CK19 mRNA表达量的检测，特别是涉及用于快速检测CK19 mRNA表达量的引物、探针、检测方法及其试剂盒。
背景技术
细胞角蛋白（cytokeratin，CK）是角质细胞中的主要骨架蛋白，这种结构蛋白的主要功能是维持上皮组织的完整性及连续性。研究发现细胞角蛋白具有极高的保守性和组织分化特异性，其与上皮细胞的增殖分化密切相关，目前已得到证实的细胞角蛋白有20种，即CK1-20。细胞角蛋白作为一种常用的肿瘤免疫组织化学标记物，其阳性表达多见于上皮细胞、间皮细胞、癌、间皮瘤等。
细胞角蛋白19（CK19）是分布于上皮细胞中的细胞角蛋白成分之一，其是由KERATIN19（KRT19）基因编码的分子量为40000的可溶性酸性多肽分子，主要表达于单层腺上皮及间皮细胞。CK19在正常状态下含量极低，但在癌组织中具有更为丰富的表达，目前在包括黑色素瘤、乳腺癌、结肠癌、食管癌、头颈癌、胃癌、前列腺癌和肺癌在内的多种癌症中均可以发现CK19的异常表达，特别是其在乳腺癌中具有较高的表达量、敏感性和特异性。
此外，在恶性肿瘤发展过程中，常常并存着肿瘤细胞扩散于淋巴系统、血液循环、骨髓、肝、肾等组织或器官中，形成微小转移灶，其无任何临床表现，在常规检查和普通病理检查中也很难发现。CK19作为乳腺癌转移的相关标记物之一，已经被广泛应用于前哨淋巴结、外周血和骨髓中乳腺癌转移检测和癌症预后诊断中。在临床上利用其对前哨淋巴结进行微转移检测，可以提高诊断准确性，从而改变对一部分患者的治疗决策。特别是在依据传统乳腺癌手术标准对病人进行腋窝淋巴结清扫时，可以避免对尚未发生腋窝淋巴结转移的病人进行不必要的传统手术，以防过度治疗对病人造成的诸多并发症等不利影响。
目前用于检测淋巴结中的肿瘤细胞及标记物的方法主要包括免疫组织化学染色法、流式细胞术、免疫放射法、Southern blot、ELISA、Real Time-PCR(RT-PCR)等，其中RT-PCR法检测时间短、检测敏感性高，其利用肿瘤特异表达基因，可以从107 个外周血细胞或骨髓单核细胞中检测到1个癌细胞，这一技术的检测敏感性是免疫组织化学染色法的10倍以上，特别适合在手术中进行应用。随着研究的深入，越来越多的结果表明RT-PCR也可以在正常SLN中检测到假阳性乳腺癌转移。因此，利用标志基因与内参基因相结合进行检测的多重RT-PCR技术逐渐成为利用CK19检测乳腺癌转移研究的热点。
如公开号为CN101432437A的中国发明专利公开了一种诊断乳腺癌的存在或预测乳腺癌的进程的方法，包括测量包含组织特异性基因（乳腺珠蛋白）和非组织特异性基因（CK19）的标志基因的组合在源自患者的细胞或组织样品中的表达，并且采用PBGD作为对照，此外还提供了相关的试剂盒、引物及探针序列。然而，其需要同时使用MG和CK19两种目的基因进行检测才能够获得较好的灵敏度和特异性，操作和结果判断相对复杂。
又如公开号为CN101365800A的中国发明专利公开了定量确定生物样品中的CK-19 mRNA阳性细胞的方法，其在提取外周血单核细胞RNA后利用特异性引物和探针分别进行反转录和qPCR反应。然而，其采用两步法进行检测，不仅操作时间长、操作相对复杂，而且还易于产生污染。公开号为CN101054603A的中国发明专利公开了一种用于快速测定CK19 mRNA的方法及其引物和探针，使用与位于CK19基因的第一外显子上的区域杂交的第一引物和与位于第一外显子下游的CK19基因的第二外显子上的区域杂交的第二引物扩增CK19 mRNA的部分，然后使用两种类型的探针检测扩增物。此方法检测时间短，能够较好地排除人DNA或CK19假基因的干扰，然而其灵敏度和特异性还有待进一步研究。
发明内容
本发明的首要目的是针对上述现有技术存在的问题提供一种快速并且具有较高特异性、敏感性和重复性的用于检测CK19 mRNA表达量的引物、探针及检测方法和试剂盒，本发明方法及试剂盒可以用于评估癌症患者（特别是乳腺癌患者）癌症病灶转移情况，从而可以为癌症的早期诊断、转移、复发和治疗方案的确定提供重 要的参考依据。
为了达到上述目的，本发明一方面提供一种用于检测CK19 mRNA表达量的第一引物，包括第一正向引物和第一反向引物，其中所述第一正向引物的碱基序列如SEQ ID NO:1所示，所述第一反向引物的碱基序列如SEQ ID NO:2所示。
本发明另一方面提供一种用于检测CK19 mRNA表达量的第一探针，所述第一探针的碱基序列如SEQ ID NO:3所示，所述第一探针的5’端标记有报告荧光基团，3’端标记有淬灭荧光基团。
特别是，所述报告荧光基团为FAM荧光基团，所述淬灭荧光基团为BHQ1荧光基团。
本发明再一方面提供一种用于检测CK19 mRNA表达量的试剂盒，包括：
用于检测CK19 mRNA表达量的第一引物，包括第一正向引物和第一反向引物，其中所述第一正向引物的碱基序列如SEQ ID NO:1所示，所述第一反向引物的碱基序列如SEQ ID NO:2所示；以及
用于检测CK19 mRNA表达量的第一探针，所述第一探针的碱基序列如SEQ ID NO:3所示，所述第一探针的5’端标记有报告荧光基团，3’端标记有淬灭荧光基团。
其中，所述第一探针上的报告荧光基团为FAM荧光基团，淬灭荧光基团为BHQ1荧光基团。
特别是，所述试剂盒包括CK19引物探针混合液，其含有0.4μM第一正向引物，0.4μM第一反向引物和0.2μM第一探针。
其中，所述试剂盒还包括：
用于检测内参基因ACTB mRNA表达量的第二引物，其中所述第二引物包括第二正向引物和第二反向引物，所述第二正向引物的碱基序列如SEQ ID NO:4所示，所述第二反向引物的碱基序列如SEQ ID NO:5所示；以及
用于检测内参基因ACTB mRNA表达量的第二探针，其中所述第二探针的碱基序列如SEQ ID NO:6所示，所述第二探针的5’端标记有报告荧光基团，3’端标记有淬灭荧光基团。
特别是，所述第二探针上的报告荧光基团为HEX荧光基团，淬灭荧光基团为BHQ1荧光基团。
尤其是，所述试剂盒包括ACTB引物探针混合液，其含有0.4μM-10nM的第二 正向引物，0.4μM-10nM的第二反向引物和0.4μM-10nM的第二探针，优选包括20nM第二正向引物，20nM第二反向引物和10nM第二探针。
其中，所述试剂盒还包括进行实时荧光定量RT-PCR所需的试剂，这些试剂均可从商业途径得到。
本发明的试剂盒也可以与RT-PCR试剂盒进行配套使用来快速检测CK19 mRNA表达量，所述RT-PCR试剂盒优选为Rotor-Gene Multiplex RT-PCR Kit。
当与RT-PCR试剂盒配套使用时，本试剂盒可以仅包括上述用于检测CK19mRNA表达量的第一引物和第一探针，还可以包括上述用于检测内参基因ACTB mRNA表达量的第二引物和第二探针。
本发明再一方面提供一种上述试剂盒在快速检测CK19 mRNA表达量中的应用。
特别是，所述应用包括：利用所述试剂盒采用实时荧光定量RT-PCR检测样本CK19 mRNA表达量。
本发明再一方面提供一种用于检测乳腺癌患者CK19 mRNA表达量的试剂盒，包括所述第一引物和所述第一探针。
特别是，所述用于检测乳腺癌患者CK19 mRNA表达量的试剂盒进一步包括所述第二引物和所述第二探针。
本发明再一方面提供一种用于检测CK19 mRNA表达量的方法，包括如下步骤：
A）通过使用权利要求1所述第一引物来扩增样本的CK19 mRNA，形成CK19mRNA的扩增物；
B）通过使用权利要求2或3所述的第一探针检测所述CK19 mRNA的扩增物，得到CK19 mRNA的表达量。
特别是，在扩增样本CK19 mRNA之前，首先从样本中提取总RNA，然后以总RNA为模板来扩增样本的CK19 mRNA。
其中，所述用于检测CK19 mRNA表达量的方法还包括：
C）使用碱基序列如SEQ ID NO:4所示的第二正向引物和碱基序列如SEQ ID NO:5所示的第二反向引物扩增样本的内参基因ACTB mRNA，形成ACTB mRNA 的扩增物；
D）使用碱基序列如SEQ ID NO:6所示的第二探针检测所述ACTB mRNA的扩 增物，得到ACTB mRNA的表达量。
本发明所述方法在检测样本CK19 mRNA表达量的同时以内参基因ACTB作为参照，可以有效避免假阴性的发生，从而具有更强的适用性。
特别是，本发明方法采用Rotor-Gene Q实时荧光定量PCR仪进行。
尤其是，本发明方法采用Rotor-Gene Multiplex RT-PCR Kit试剂盒进行所述扩增，扩增反应体系为：2X Rotor-Gene Multiplex RT-PCR Master Mix：12.5μL；20XCK19引物探针混合液：1.25μL；20X ACTB引物探针混合液：1.25μL；ReverseTranscriptase Mix：0.25μL；RNA：1μL；DEPC水：8.75μL；反应总体积为25μL。
其中，所述20X CK19引物探针混合液中含有0.4μM第一正向引物，0.4μM第一反向引物和0.2μM第一探针；所述20X ACTB引物探针混合液中含有20nM第二正向引物，20nM第二反向引物和10nM第二探针；
特别是，所述扩增的反应条件为：50℃反转录5min，95℃激活HotStarTaq Plus DNA Polymerase（包含在Reverse Transcriptase Mix中）30s，40个循环：95℃变性1s，60℃延伸6s（荧光信号收集）。
采用Rotor-Gene Q实时荧光定量PCR仪的随机软件对本发明的数据结果进行Ct值分析，其中：CK19Ct≤30、ACTB Ct≤36为阳性样本；CK19Ct＞30、ACTB Ct≤36为阴性样本；ACTB Ct＞36为无效样本。
特别是，本发明所述样本包括所有生物来源的含有或者怀疑含有CK19的物质，如血液、骨髓、淋巴结、肿瘤细胞、乳腺组织等；所述样本优选为人前哨淋巴结、人肿瘤或人乳腺，进一步优选为人前哨淋巴结。
相对于现有技术，本发明具有以下优点：
1、采用本发明的CK19引物及探针进行一步法多重qRT-PCR扩增，可以特异性地检测出样本中CK19 mRNA的表达，其检测速度快，检测灵敏度高，并且操作简单，约40分钟即可完成整个操作，特别适合在手术中进行快速检测；
2、本发明方法同时采用内参基因ACTB作为参照，内参基因ACTB mRNA表达稳定，不仅可以有效避免假阴性的发生，而且还能够较好地对目的基因的表达量进行校正，从而提高该方法的灵敏度和重复性，检测结果更加准确可靠；
3、本发明方法特异性好，并且具有较高的准确性和灵敏度，可以检测到低至 100pg/μL的CK19 mRNA特异性扩增，可应用于以CK19作为标记物的相关检测中，应用范围广泛；特别是可以用于评估乳腺癌患者癌症病灶转移情况，从而可以为乳腺癌的早期诊断、转移、复发和治疗方案的确定提供重要的参考依据。
附图说明
图1是扩增特异性测试中CK19 mRNA的扩增曲线；
图2是扩增特异性测试中ACTB mRNA的扩增曲线；
图3是扩增敏感性测试中CK19 mRNA的扩增曲线；
图4是扩增敏感性测试中ACTB mRNA的扩增曲线；
图5是扩增重复性测试中CK19 mRNA的扩增曲线；
图6是扩增重复性测试中ACTB mRNA的扩增曲线；
图7是CK19 mRNA的标准曲线；
图8是ACTB mRNA的标准曲线；
图9是乳腺癌患者前哨淋巴结组织样本CK19 mRNA的扩增曲线；
图10是乳腺癌患者前哨淋巴结组织样本ACTB mRNA的扩增曲线。
具体实施方式
下面结合具体实施例来进一步描述本发明，本发明的优点和特点将会随着描述而更为清楚。但这些实施例仅是范例性的，并不对本发明的范围构成任何限制。本领域技术人员应该理解的是，在不偏离本发明的精神和范围下可以对本发明技术方案的细节和形式进行修改或替换，但这些修改和替换均落入本发明的保护范围内。
实施例
一、材料
1、实验样本：四例乳腺癌患者前哨淋巴结组织，来源于北京某医院；
2、总RNA提取试剂盒：RNeasy Mini Kit购自QIAGEN（Cat.74104）；
3、一步法多重qRT-PCR试剂盒：Rotor-Gene Multiplex RT-PCR Kit购自QIAGEN （Cat.204972）；
4、用于检测CK19 mRNA表达量的第一引物和第一探针，序列如下，由QIAGEN 公司合成及标记；
第一正向引物：5’-CCATTGAGAACTCCAGGATT-3’(SEQ ID No.1)
第一反向引物：5’-CCCTGCGCAGGCCGTTGATGT-3’(SEQ ID No.2)
第一探针：5’-FAM-ACAATGCCCGTCTGGCTGCAGA-BHQ1-3’(SEQ ID No.3)
5、用于检测内参基因ACTB mRNA表达量的第二引物和第二探针，序列如下，由QIAGEN公司合成及标记；
第二正向引物：5’-TCACCCACACTGTGCCCATCTA-3’(SEQ ID No.4)
第二反向引物：5’-GCCGCGCTCGGTGAGGATCTT-3’(SEQ ID No.5)
第二探针：5’-HEX-TCCCCCATGCCATCCTGCGTCT-BHQ1-3’(SEQ ID No.6)
6、阳性对照品：人乳腺癌细胞总RNA，Breast adenocarcinoma（MCF-7）total RNA，购自Ambion（Cat.AM7846），其浓度为50ng/μL。
7、阴性对照品：人脾总RNA，Human spleen total RNA，购自Ambion（Cat.AM7970），其浓度为50ng/μL。
二、CK19 mRNA表达量测定方法研究
1、CK19 mRNA表达量测定方法
在Rotor-Gene Q实时荧光定量PCR仪中采用Rotor-Gene Multiplex RT-PCR Kit试剂盒进行一步法多重qRT-PCR扩增，其中扩增反应体系为：
2X Rotor-Gene Multiplex RT-PCR Master Mix：12.5μL；20X CK19引物探针混合液：1.25μL；20X ACTB引物探针混合液：1.25μL；Reverse Transcriptase Mix：0.25μL；RNA：1μL；DEPC水：8.75μL；反应总体积为25μL；其中，20X CK19引物探针混合液中含有0.4μM第一正向引物，0.4μM第一反向引物和0.2μM第一探针；20X ACTB引物探针混合液中含有20nM第二正向引物，20nM第二反向引物和10nM第二探针；
扩增反应条件为：50℃反转录5min，95℃激活HotStarTaq Plus DNA Polymerase（包含在Reverse Transcriptase Mix中）30s，40个循环：95℃变性1s，60℃延伸6s（荧光信号收集）；
采用Rotor-Gene Q实时荧光定量PCR仪的随机软件对数据结果进行分析。
2、扩增特异性测试
试样1为100%MCF-7总RNA样本，试样2为70%MCF-7总RNA和30%人脾 总RNA的混合样本，试样3为30%MCF-7总RNA和70%人脾总RNA的混合样本，试样4为100%人脾总RNA样本；
将试样1-4按照上述方法进行一步法多重qRT-PCR扩增，扩增曲线如图1、图2所示，扩增结果表明：使用本发明的引物和探针，可以准确在肿瘤组织提取物中检测CK19基因的特异性扩增，而在非肿瘤组织中不会出现该基因的显著扩增，由此说明本发明的引物和探针能够对CK19基因进行特异性扩增，并且特异性好。
3、扩增敏感性测试
对阳性对照品MCF-7总RNA进行稀释，分别制得浓度为50ng/μL、10ng/μL、1000pg/μL、100pg/μL和50pg/μL的试样1-5，按照上述方法进行一步法多重qRT-PCR扩增，测试结果见表1，扩增曲线见图3、图4，结果表明：使用本发明的引物和探针可以检测到低至100pg/μL的CK19 mRNA特异性扩增，说明本发明方法敏感性好，灵敏度高。
表1扩增敏感性结果
| 试样编号 | 样品浓度 | CK19Ct值 | ACTB Ct值 |
| 1 | 50ng/μL | 17.11 | 21.04 |
| 2 | 10ng/μL | 18.01 | 21.52 |
| 3 | 1000pg/μL | 19.97 | 22.09 |
| 4 | 100pg/μL | 20.50 | 22.25 |
| 5 | 50pg/μL | 29.13 | 23.38 |
4、扩增重复性测试
将试样1（50ng/μL的MCF-7总RNA）和试样2（100pg/μL的MCF-7总RNA）按照上述方法进行一步法多重qRT-PCR扩增，每个试样重复测试三次，测试结果见表2，扩增曲线见图5、图6，结果表明：本发明方法准确性好，重复度高。
表2扩增重复性结果
三、测定人前哨淋巴结样本CK19 mRNA表达量
1、制作标准曲线
将阳性对照品（MCF-7总RNA）与阴性对照品（人脾总RNA）按表3比例进行混合，制得试样1-7，然后分别取1μL按照上述方法进行一步法qRT-PCR扩增，制作的标准曲线见图7、图8，其中横坐标表示RNA浓度，纵坐标表示Ct值。
表3标准曲线试样组成成分及含量
| 试样 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
| MCF-7总RNA（%） | 100 | 90 | 70 | 50 | 30 | 10 | 0 |
| 人脾总RNA（%） | 0 | 10 | 30 | 50 | 70 | 90 | 100 |
2、测定CK19 mRNA表达量
取四例人乳腺癌患者前哨淋巴结组织临床样本1-4各30mg，采用常规方法利用RNeasy Mini Kit试剂盒提取总RNA，分别制得人乳腺癌患者前哨淋巴结组织临床样本1-4的总RNA，采用BioPhotometer核酸蛋白测定仪检测其浓度，结果见表4；
按照上述方法以人乳腺癌患者前哨淋巴结组织临床样本1-4的总RNA为模板进行一步法多重qRT-PCR扩增，同时以阳性对照品和阴性对照品作为对照，测定结果见表4和图9、图10。
表4人乳腺癌患者前哨淋巴结组织临床样本中CK19 mRNA表达量
| 样品名称 | 总RNA浓度（ng/μl） | CK19Ct值 | ACTB Ct值 |
| 阳性对照品 | 50 | 18.13 | 12.38 |
| 样品1 | 164.7 | 22.33 | 15.14 |
| 样品2 | 148.1 | 22.87 | 15.49 |
| 样品3 | 39.6 | 21.32 | 14.76 |
| 样品4 | 24.3 | 23.13 | 15.33 |
| 阴性对照品 | 50 | 31.69 | 18.80 |
由表4结果可知：采用本发明方法对四例人乳腺癌患者的前哨淋巴结组织样本进行CK19 mRNA表达量检测，检测结果根据Ct值分析表明：四例乳腺癌患者结果 均为阳性样本，此外阳性对照品检测结果为阳性，阴性对照品检测结果为阴性，说明本发明方法能够检测出人乳腺癌患者的前哨淋巴结组织中CK19 mRNA的特异性表达，并且特异性好、准确度高，可应用于以CK19作为标记物的相关检测中，特别是应用于在术中快速地对乳腺癌患者的CK19 mRNA表达量进行检测，从而评估乳腺癌患者癌症病灶转移，为乳腺癌的早期诊断、转移、复发和治疗方案的确定提供重要的参考依据。
Claims (10)
1.一种用于检测CK19mRNA表达量的第一引物，其特征在于，包括第一正向引物和第一反向引物，其中所述第一正向引物的碱基序列如SEQ ID NO:1所示，所述第一反向引物的碱基序列如SEQ ID NO:2所示。
2.一种用于检测CK19mRNA表达量的第一探针，其特征在于，所述第一探针的碱基序列如SEQ ID NO:3所示，所述第一探针的5’端标记有报告荧光基团，3’端标记有淬灭荧光基团。
3.如权利要求2所述的第一探针，其特征在于，所述报告荧光基团为FAM荧光基团，所述淬灭荧光基团为BHQ1荧光基团。
4.一种用于检测CK19mRNA表达量的试剂盒，其特征在于，包括权利要求1所述的第一引物和权利要求2或3所述的第一探针。
5.如权利要求4所述的试剂盒，其特征在于，还包括：
用于检测内参基因ACTB mRNA表达量的第二引物，其中所述第二引物包括第二正向引物和第二反向引物，所述第二正向引物的碱基序列如SEQ ID NO:4所示，所述第二反向引物的碱基序列如SEQ ID NO:5所示；以及
用于检测内参基因ACTB mRNA表达量的第二探针，其中所述第二探针的碱基序列如SEQ ID NO:6所示，所述第二探针的5’端标记有报告荧光基团，3’端标记有淬灭荧光基团。
6.如权利要求5所述的试剂盒，其特征在于，所述报告荧光基团为HEX荧光基团，所述淬灭荧光基团为BHQ1荧光基团。
7.一种权利要求4-6中任一所述的试剂盒在快速检测CK19mRNA表达量中的应用。
8.一种用于检测样本CK19mRNA表达量的方法，其特征在于，包括如下步骤：
A）通过使用权利要求1所述第一引物来扩增样本的CK19mRNA，形成CK19mRNA的扩增物；
B）通过使用权利要求2或3所述的第一探针检测所述CK19mRNA的扩增物，得到CK19mRNA的表达量。
9.如权利要求8所述的方法，其特征在于，还包括：
C）使用碱基序列如SEQ ID NO:4所示的第二正向引物和碱基序列如SEQ IDNO:5所示的第二反向引物扩增样本的内参基因ACTB mRNA，形成ACTB mRNA的扩增物；
D）使用碱基序列如SEQ ID NO:6所示的第二探针检测所述ACTB mRNA的扩增物，得到ACTB mRNA的表达量。
10.如权利要求8或9所述的方法，其特征在于，所述样本为人前哨淋巴结、人肿瘤细胞或人乳腺组织。
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| Yang et al. | MicroRNAs in stool samples as potential screening biomarkers for pancreatic ductal adenocarcinoma cancer | |
| Tölle et al. | Identification of microRNAs in blood and urine as tumour markers for the detection of urinary bladder cancer | |
| Bellevicine et al. | Evaluation of BRAF, RAS, RET/PTC, and PAX8/PPARg alterations in different Bethesda diagnostic categories: a multicentric prospective study on the validity of the 7‐gene panel test in 1172 thyroid FNAs deriving from different hospitals in South Italy | |
| Yoon et al. | TTF-1 mRNA-positive circulating tumor cells in the peripheral blood predict poor prognosis in surgically resected non-small cell lung cancer patients | |
| Hong et al. | MicroRNA expression profiling of diagnostic needle aspirates from surgical pancreatic cancer specimens | |
| Shimizu et al. | Molecular detection of sentinel node micrometastases in patients with clinical N0 gastric carcinoma with real-time multiplex reverse transcription-polymerase chain reaction assay | |
| Kim et al. | Diagnostic use of molecular markers in the evaluation of thyroid nodules | |
| Freitas et al. | Genetic markers differentiating follicular thyroid carcinoma from benign lesions | |
| Benini et al. | Detection of circulating tumor cells in liquid biopsy from Ewing sarcoma patients | |
| CN110387421A (zh) | 用于肺癌检测的DNA甲基化qPCR试剂盒及使用方法 | |
| Xi et al. | The role of plasma miRNAs in the diagnosis of pulmonary nodules | |
| Hashimoto et al. | Diagnostic efficacy of liquid‐based cytology for solid pancreatic lesion samples obtained with endoscopic ultrasound‐guided fine‐needle aspiration: Propensity score‐matched analysis | |
| Braunschweig et al. | Detection of malignant effusions: comparison of a telomerase assay and cytologic examination | |
| Tölle et al. | Circulating miRNAs in blood and urine as diagnostic and prognostic biomarkers for bladder cancer: an update in 2017 | |
| Yang et al. | Independent correlation between Ki67 index and circulating tumor cells in the diagnosis of colorectal cancer | |
| TWI682034B (zh) | 用於評估子宮內膜癌的發展風險或診斷子宮內膜癌的方法 | |
| Shou et al. | Six‐gene Assay as a new biomarker in the blood of patients with colorectal cancer: establishment and clinical validation | |
| Henry et al. | MicroRNA from pancreatic duct aspirate differentiates cystic lesions of the pancreas | |
| CN104498495A (zh) | 前列腺癌标志物lncRNA MALAT-1及其应用 | |
| CN104694623A (zh) | 一种用于肺癌诊断的血浆miRNA标志物及应用 | |
| CN105463111A (zh) | 用于检测人类pik3ca基因5种突变的探针、引物及试剂盒 | |
| CN105219770A (zh) | 一组人肺鳞癌诊断用LncRNA生物标志物 | |
| Le et al. | Analysis of microRNA expression in brush cytology specimens improves the diagnosis of pancreatobiliary cancer | |
| CN103436621B (zh) | 一种快速检测CK19mRNA表达量的方法及其试剂盒 | |
| JP2011511635A (ja) | 癌標識としての結腸癌関連転写因子１（ｃｃａｔ−１） |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
| WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20130828 |