CN101293914A - 一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法 - Google Patents

一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN101293914A
CN101293914A CNA2008100535434A CN200810053543A CN101293914A CN 101293914 A CN101293914 A CN 101293914A CN A2008100535434 A CNA2008100535434 A CN A2008100535434A CN 200810053543 A CN200810053543 A CN 200810053543A CN 101293914 A CN101293914 A CN 101293914A
Authority
CN
China
Prior art keywords
virus
bursa
ibdv
antigen
preparation
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CNA2008100535434A
Other languages
English (en)
Inventor
田杏芳
王连民
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tianjin Shengji Group Co Ltd
Original Assignee
Tianjin Shengji Group Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tianjin Shengji Group Co Ltd filed Critical Tianjin Shengji Group Co Ltd
Priority to CNA2008100535434A priority Critical patent/CN101293914A/zh
Publication of CN101293914A publication Critical patent/CN101293914A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

本发明公开了一种天然高效纯生物活性物质抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法。本发明按照以下步骤进行:将鸡传染性法氏囊病毒接种于10天龄鸡胚尿囊液制备病毒抗原;提取病毒抗原;用上述提取的病毒抗原免疫猪;从免疫猪中提取抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子。因此使用本发明的转移因子可以起到预防鸡传染性法氏囊病毒感染、能够保护正常机体细胞免受鸡传染性法氏囊病毒侵害的作用,从而降低发病率。

Description

一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法
技术领域
本发明涉及药物及其制剂领域,更具体地说,是涉及一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法。
背景技术
鸡传染性法氏囊病又称鸡传染性腔上囊病,是由传染性法氏羹病毒引起的一种急性、接触传染性疾病。以法氏囊发炎、坏死、萎缩和法氏囊内淋巴细胞严重受损为特征。从而引起鸡的免疫机能障碍,干扰各种疫苗的免疫效果。发病率高,几乎达100%,死亡率低,一般为5%~15%,是目前养禽业最重要的疾病之一。自然条件下,本病只感染鸡,所有品种的鸡均可感染,但不同品种的鸡中,白来航鸡比重型品种的鸡敏感,肉鸡较蛋鸡敏感。本病仅发生于2周至开产前的小鸡,3~7周龄为发病高峰期。雏鸡群突然大批发病,2~3天内可波及60%~70%的鸡,发病后3~4天死亡达到高峰,7~8天后死亡停止。病初精神沉郁,采食量减少,饮水增多,有些自啄肛门,排白色水样稀粪,重者脱水,卧地不起,极度虚弱、最后死亡。耐过雏鸡贫血消瘦,生长缓慢。
尽管目前已经有一些抗鸡传染性法氏囊病毒的药品或制剂:但是由于现有药品制剂的针对性不强,疗效有限,而且,治疗性制剂多是在发病后才应用的,不能起预防作用。对于鸡传染性法氏囊病的易感鸡群,每年定期对鸡接种鸡传染性法氏囊疫苗是预防鸡传染性法氏囊的有效方法。其次应增强营养或药物干预,提高自身免疲力。通过药物提高机体抵杭力或调节免疫力也是一种预防鸡传染性法氏囊的有效方法,转移因子可起到此作用。
转移因子(TF,Transfer Factor)是T淋巴细胞释放的一种能够转移致敏信息的低分子量多肽-核苷酸复合物,它能将供体的某种特定的细胞免疫功能特异地转移给受体正常的淋巴细胞,参与机体的免疫反应,提高受体机体的细胞免疫功能,抵抗真菌、病毒等非细菌性感染;同时促进B淋巴细胞的抗体分泌作用,能够诱导细胞释放干扰素和白介素,从而增强受体的免疫功能。
目前已报道的转移因子的提取方法都是关于非特异性转移因子的制备方法。例如,中国发明专利申请“制备转移因子的工艺方法——全滤法”(专利申请号:200310118439.6)则公开了采用压滤、超滤、纳滤几种方法连续过滤的制备工艺。另一份中国发明专利申请“制备转移因子的工艺方法——加热法”(专利申请号:200410039444.2)是由同一申请人在前一份申请的基础上加上加热处理的步骤,仍然是连续采用多种过滤法的制备工艺。上述专利申请的内容是对破碎后的组织经冷冻离心后直接进行过滤提取,同样存在细胞破碎不完全的缺陷,而且其工艺烦琐,时间较长,对产物的活性损失也较大,因此得率很难提高。
猪脾脏和胸腺是免疫活性细胞聚集的场所,而且材料来源非常广泛,因此从这类细胞中提取特异性转移因子,有重要的理论意义和现实意义,但目前尚未见报道。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是,克服现有技术中存在的不足,提供一种天然高效纯生物活性物质抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法。
本发明抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法,按照以下步骤进行:
(1)制备病毒抗原:将鸡传染性法氏囊病毒接种于10天龄鸡胚尿囊液,33℃下48-72小时,取鸡胚尿囊液,装厚壁小瓶子内,超声打碎,5000rpm离心20分钟,弃去沉渣留上清;
(2)提取病毒抗原:取离心上清,然后不连续梯度密度离心纯化提取病毒抗原;将病毒抗原离心后,取上清液装入以15%、30%、45%及60%的蔗糖制备的不连续梯度密度离心管,超速离心,165000转/分3小时,根据鸡传染性法氏囊病毒的分子量确定鸡传染性法氏囊病毒所在离心管位置,吸出备用;
(3)用上述提取的病毒抗原免疫猪:挑选健康免疫猪,取制备的病毒抗原,用上述提取病毒抗原皮下多点注射免疫猪,共免疫3-4次,前两次分别以完全佛氏佐剂及不完全佛氏佐剂混合抗原,以高速组织匀浆机打匀,在动物皮内或皮下多点注射免疫,第3次和第4次后在动物的肌肉或静脉注射,每次免疫间隔一周,最后一次免疫7-10天后取动物静脉血,以免疫荧光方法或ELISA方法检测上述病毒的特异性抗体效价,出现病毒特异性免疫效价后,宰杀动物,取脾脏和胸腺于冰上,转移至-20℃保存,备用;
(4)从免疫猪中提取抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子:
①原材料的制备及预处理:将上述接种病毒免疫猪的脾及淋巴结组织,用冷三蒸水洗净猪脾,去其表面的筋膜、脂肪等组织,再灭菌生理盐水反复冲洗;
②破碎:将洗干净的猪脾脏剪碎,加入2倍体积的冷生理盐水,在冰冻的条件下用高速组织捣碎机以1000r/min捣碎3次,每次3min,制得匀浆液;
③冻融:将匀浆液置于-80℃快速冷冻,水浴30℃中融化,交替冻融4-6次,每次融化后均以组织匀浆机高速匀浆粉碎;
④提取:加入3倍体积的冷生理盐水,置于冰冻离心机于5℃以4000r/min离心30分钟,取上层血红色液体,再用G2砂心漏斗过滤,取滤液;
⑤超滤:将上述滤液用截流值为6000道尔顿的中空纤维超滤膜加压超滤,滤液为分子量小于6000道尔顿的转移因子;
⑥除菌:将超滤得到的滤液用孔径为0.22um的滤膜加压过滤除菌;
⑦分装:4℃密封保存,即得所述的抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子提取液。
本发明一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法,具有以下忧点:
(1)原材料来源容易,无污染,价廉。猪脾脏和胸腺属于屠宰后猪的下脚料。
(2)破碎组织后,加入低温冻融处理的步骤,特别是在30℃下溶解,不使小分子物质活性丧失,并能够使鸡传染性法氏囊病毒转移因子得以充分地提取。
(3)工艺采用了比较先进的中空纤维超滤膜超过滤法,从而缩短了制备时间,保证物质分离过程中活性不被破坏。
(4)提取物经生化测定和若干成分分析,是一种低分子量多肽-核苷酸复合物,是一种不含蛋自质、可溶的小分子物质,分子量在6000道尔顿以下。经体内外生物活性试验以及药理、毒性试验等证明,具有纯度高、免疫活性强、起效快而维持时间长、易吸收、无任何不良反应等特点,其疗效确切,安全可靠,既可治疗又可增强抗病能力。该提取物可做成口服液等剂型,便于应用。
本发明的抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子可以全面或部分抑制鸡传染性法氏囊病毒,能保护正常机体细胞免受病毒感染。因此使用本发明的转移因子可以起到预防鸡传染性法氏囊病毒感染、能够保护正常机体细胞免受鸡传染性法氏囊病毒侵害的作用,从而降低发病率。同时对于遭到鸡传染性法氏囊病毒感染的鸡使用转移因子进行治疗,可有效的改善临床症状,提高治愈率、降低死亡率。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明做进一步描述。
实施例1:
抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备
1.制备病毒抗原:将鸡传染性法氏囊病毒接种于10天龄鸡胚尿囊液,33℃下48-72小时,取鸡胚尿囊液,装厚壁小瓶子内,超声打碎,5000rpm离心20分钟,弃去沉渣留上清;
2.取离心上清,然后不连续梯度密度离心纯化提取病毒抗原;将病毒抗原离心后,取上清液装入以15%、30%、45%及60%的蔗糖制备的不连续梯度密度离心管,超速离心,165000转/分3小时,根据不同病毒的分子量确定该病毒所在离心管位置,吸出备用;
3.用上述提取的病毒抗原免疫猪:用上述提取病毒抗原皮下多点注射免疫猪,共免疫4次,前两次分别以完全佛氏佐剂及不完全佛氏佐剂混合抗原,以高速组织匀浆机打匀,在动物皮内或皮下多点注射免疫,第3次和第4次后在动物的肌肉或静脉注射,每次免疫间隔一周,最后一次免疫7-10天后取动物静脉血,以免疫荧光方法或ELISA方法检测上述病毒的特异性抗体效价,出现病毒特异性免疫效价后,宰杀动物,取脾脏和胸腺于冰上,转移至-20℃保存,备用;
4.从免疫猪中提取抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子:
(1)原材料的制备及预处理:将病毒免疫猪的脾及淋巴结组织,用冷三蒸水洗净猪脾,去其表面的筋膜、脂肪等组织,再灭菌生理盐水反复冲洗;
(2)破碎:将洗干净的猪脾脏剪碎,加入2倍体积的冷生理盐水,在冰冻的条件下用高速组织捣碎机以1000r/min捣碎3次,每次3min,制得匀浆液;
(3)冻融:将匀浆液置于-80℃快速冷冻,水浴30℃中融化,交替冻融4-6次,每次融化后均以组织匀浆机高速匀浆粉碎;
(4)提取:加入3倍体积的冷生理盐水,置于冰冻离心机于5℃以4000r/min离心30分钟,取上层血红色液体,再用G2砂心漏斗过滤,取滤液;
(5)超滤:将上述滤液用截流值为6000道尔顿的中空纤维超滤膜加压超滤,滤液为分子量小于6000道尔顿的转移因子;
(6)除菌:将超滤得到的滤液用孔径为0.22um的滤膜加压过滤除菌;
(7)包装:按口服液的要求,加15%的糖浆,加标准防腐剂(笨甲酸钠0.25%)后分装,10ml/瓶;
(8)分装,4℃密封保存,即得所述的抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子提取液。
实施例2:
抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备
(1)原材料的制备:选健康无病史的6月龄猪10头,用鸡传染性法氏囊病毒疫苗皮下注射免疫,15天后,再免疫一次,方法剂同上。二次免疫后15-20天宰杀,取脾脏和胸腺于冰上,转移置-20℃保存,备用;
(2)预处理:称量猪脾后,用冷三蒸水洗净猪脾,用剪刀剪去其筋膜及脂肪组织,再用冷三蒸水洗涤干净;
(3)破碎:将以上洗干净的猪脾脏剪碎,加入2倍体积的冷生理盐水,在冰冻的条件下用高速组织捣碎机(1000r/min)捣碎3次,每次3min,制得匀浆液;
(4)冻融:将匀浆液(用器皿装)至于超低温冰箱(-80℃)里快速冷冻,水浴30℃中融化,交替冻融10次;
(5)提取:加入3倍体积的冷生理盐水,置于冰冻离心机离心30min(4000r/min,5℃),取上层液体(血红色),再用G2砂心漏斗过滤,取滤液;
(6)超滤:将上述滤液用截流值为6000道尔顿的中空纤维超滤膜加压超滤,滤液为分子量小于6000道尔顿的转移因子;
(7)除菌:分别用无菌滤器(滤膜孔径为0.22um)加压过滤;
(8)包装:按注射剂液的要求,加标准防腐剂(苯甲酸钠0.25%)后分装,2ml/瓶;
(9)保存:4℃密封贮存。
实施例3:
对本发明所述工艺制备的抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的检测
对实施例1所述工艺制备的抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子(下称“本品”)进行以下检测:
(1)紫外线分光光度测定:本品在250.0-252.0nm处有一高吸收峰,且ABS260/ABS280>2.0。
(2)标准液为淡黄色,pH值在6.0-6.5之间。
(3)20%磺基水杨酸检测:本品无浑浊及沉淀现象,说明蛋白反应均为阴性,其不含大分子蛋白质。
(4)多肽含量测定:本品经双缩脲法测定多肽含量为1.460mg/ml。
(5)核酸含量测定:本品经地衣酚法测定核酸含量为581.56ug/ml。
(6)细菌学检测:本品中无需氧、厌氧、腐生菌和真菌存在。
(7)E-玫瑰花结形成率比较:鸡外周血淋巴细胞表面有鼠红细胞受体,并能与之结合形成E-玫瑰花结。而转移因子对淋巴细胞和大鼠红细胞的结合有一定的促进作用。本品的E-玫瑰花结形成率平均为29.4%,比对照组的增加28.7%(P≤0.01)。
(8)取健康小白鼠5只,口服本品浓缩液,相当于正常口服液剂量的50倍,观察小白鼠的生存能力变化,结果:无任何毒性反应,也无死亡现象出现,说明本品是安全的,无任何毒性和副作用。
(9)用PPD做家兔皮试实验,发现本品具有转移免疫活性的功能。
(10)用鸡传染性法氏囊病毒抗原做皮试检测,有微弱的阳性反应,说明本品具有良好的转移活性和特异性。
除上述糖浆剂型外,本发明所述的抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子还可制成其他口服液。
此外,通过常规冻干工艺进一步可得到抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的粉末,结合常规辅料,可制成胶囊、片剂等剂型。

Claims (1)

1.一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法,其特征在于,按照以下步骤进行:
(1)制备病毒抗原:将鸡传染性法氏囊病毒接种于10天龄鸡胚尿囊液,33℃下48-72小时,取鸡胚尿囊液,装厚壁小瓶子内,超声打碎,5000rpm离心20分钟,弃去沉渣留上清;
(2)提取病毒抗原:取离心上清,然后不连续梯度密度离心纯化提取病毒抗原;将病毒抗原离心后,取上清液装入以15%、30%、45%及60%的蔗糖制备的不连续梯度密度离心管,超速离心,165000转/分3小时,根据鸡传染性法氏囊病毒的分子量确定鸡传染性法氏囊病毒所在离心管位置,吸出备用;
(3)用上述提取的病毒抗原免疫猪:挑选健康免疫猪,取制备的病毒抗原,用上述提取病毒抗原皮下多点注射免疫猪,共免疫3-4次,前两次分别以完全佛氏佐剂及不完全佛氏佐剂混合抗原,以高速组织匀浆机打匀,在动物皮内或皮下多点注射免疫,第3次和第4次后在动物的肌肉或静脉注射,每次免疫间隔一周,最后一次免疫7-10天后取动物静脉血,以免疫荧光方法或ELISA方法检测上述病毒的特异性抗体效价,出现病毒特异性免疫效价后,宰杀动物,取脾脏和胸腺于冰上,转移至-20℃保存,备用;
(4)从免疫猪中提取抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子:
①原材料的制备及预处理:将上述接种病毒免疫猪的脾及淋巴结组织,用冷三蒸水洗净猪脾,去其表面的筋膜、脂肪等组织,再灭菌生理盐水反复冲洗;
②破碎:将洗干净的猪脾脏剪碎,加入2倍体积的冷生理盐水,在冰冻的条件下用高速组织捣碎机以1000r/min捣碎3次,每次3min,制得匀浆液;
③冻融:将匀浆液置于-80℃快速冷冻,水浴30℃中融化,交替冻融4-6次,每次融化后均以组织匀浆机高速匀浆粉碎;
④提取:加入3倍体积的冷生理盐水,置于冰冻离心机于5℃以4000r/min离心30分钟,取上层血红色液体,再用G2砂心漏斗过滤,取滤液;
⑤超滤:将上述滤液用截流值为6000道尔顿的中空纤维超滤膜加压超滤,滤液为分子量小于6000道尔顿的转移因子;
⑥除菌:将超滤得到的滤液用孔径为0.22um的滤膜加压过滤除菌;
⑦分装:4℃密封保存,即得所述的抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子提取液。
CNA2008100535434A 2008-06-17 2008-06-17 一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法 Pending CN101293914A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CNA2008100535434A CN101293914A (zh) 2008-06-17 2008-06-17 一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CNA2008100535434A CN101293914A (zh) 2008-06-17 2008-06-17 一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN101293914A true CN101293914A (zh) 2008-10-29

Family

ID=40064481

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CNA2008100535434A Pending CN101293914A (zh) 2008-06-17 2008-06-17 一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN101293914A (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105497867A (zh) * 2014-09-26 2016-04-20 天津嘉瑞生物科技有限公司 抗鸡传染性喉气管炎病毒转移因子的制备方法
CN105663161A (zh) * 2014-11-19 2016-06-15 天津嘉瑞生物科技有限公司 抗鸡传染性喉气管炎病毒特异性转移因子的体外制备方法

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105497867A (zh) * 2014-09-26 2016-04-20 天津嘉瑞生物科技有限公司 抗鸡传染性喉气管炎病毒转移因子的制备方法
CN105663161A (zh) * 2014-11-19 2016-06-15 天津嘉瑞生物科技有限公司 抗鸡传染性喉气管炎病毒特异性转移因子的体外制备方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101293915A (zh) 一种抗鸭瘟转移因子的制备方法
CN103585626B (zh) 一种鸡新城疫、法氏囊病二联复合灭活疫苗的制备方法
CN102827275B (zh) 鸭病毒性肝炎二价精制卵黄抗体的制备方法
CN101953849B (zh) 一种抗鸭病毒性肝炎转移因子的制备方法
CN103495166A (zh) 一种猪繁殖与呼吸综合征复合活疫苗的制备方法
CN105949307B (zh) 一种用于防治番鸭源小鹅瘟的卵黄抗体
CN103525771A (zh) 鹅细小病毒及其应用
CN107177001A (zh) 一种防治猪流行性腹泻病的卵黄抗体及其制备方法
CN109111518B (zh) 防治猫瘟热的特异性卵黄抗体及其制备方法
CN103833848B (zh) 一种用于预防治疗番鸭细小病毒病的卵黄抗体
CN101298467A (zh) 一种抗鸡新城疫病毒转移因子的制备方法
CN101293913A (zh) 一种抗鸡传染性支气管炎病毒转移因子的制备方法
CN104258389A (zh) 一种疫苗组合物及其制备方法和应用
CN103495167A (zh) 一种鸡传染性法氏囊病复合活疫苗的制备方法
CN101293914A (zh) 一种抗鸡传染性法氏囊病毒转移因子的制备方法
CN101475627A (zh) 一种抗猪瘟转移因子的制备
CN104873978A (zh) 一种猪瘟脾淋源活疫苗用冻干保护剂
CN103865884A (zh) 鸭病毒性肝炎二价蛋黄抗体及其制备方法和应用
CN103495162B (zh) 一种猪繁殖与呼吸综合征复合灭活疫苗的制备方法
CN109762062A (zh) 一种鹅痛风病卵黄抗体的制备方法
CN105497889A (zh) 一种鸡新城疫、禽流感二联复合灭活疫苗的制备方法
CN102697811B (zh) 一种抗小鹅瘟病毒转移因子的制备方法
CN103495180A (zh) 一种猪繁殖与呼吸综合征复合活疫苗用冻干保护剂
CN106310247A (zh) 小鹅瘟灭活疫苗的制备方法及其制备的灭活疫苗
CN108409857A (zh) 虹鳟抗传染性造血器官坏死病卵黄抗体的制备及其应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C02 Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001)
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Open date: 20081029