CN101123974A - 银离子化的植物提取液及其用途 - Google Patents

Abstract

本发明涉及银离子化的植物提取液及其用途。具体而言，本文提供一种以植物提取液作为电解液使其中的银离子化而制得的银离子化的植物提取液，和含有该提取液的抗微生物组合物。

Description

银离子化的植物提取液及其用途

技术领域

本发明公开一种银离子化的植物提取液及其用途。具体而言，本文提供一种以植物提取液作为电解液而使其中的银离子化而制得的银离子化的植物提取液，及其抗微生物组合物。

背景技术

银是长期以来就已知的具有宽范围抗微生物活性的金属，如很多旧文献所提及的。因此，银已用于制备实际生活中的餐具，例如羹匙。

银的微生物活性实际上来自银离子(Ag⁺)，为此原因，人们已进行很多尝试来更容易和有效地制备银离子化的水。例如，韩国专利申请号10-2003-0090466和10-2005-0001240，这两者的题目为“用于制备银离子化的水的装置”，都公开了制备银离子化的水的技术。

同时，还已知植物提取液通常具有抗微生物的活性，一定程度上与植物种类和提取方法无关[Hori Y，Sato S，Hatai A.Antibacterial activity of plant exracts from azukibeans(Vigna angularis)in vitro.PhytotherRes.2006 Jan 27；20(2)：162-164；Ravikumar S，Nazar S，Nuralshiefa A，Abideen S.Antibacterial activity of traditional therapeuticcoastal medicinal plants against some pathogens.J Environ Biol.2005 Jun；26(2Suppl)：383-6；Bandyopadhyay D，Chatterjee TK，Dasgupta A，Lourduraja J，Dastidar SG.in vitro and in vivo antimicrobial action of tea：the commonest beverage of Asia.BiolPharm Bull.2005 Nov；28(11)：2125-7]。

本发明人考虑到银和植物提取液两者都有一般性抗微生物活性，便以植物提取液作为电解液离解其中的银，结果认识到，所得的银离子化的植物提取液表现出明显更优异的抗微生物活性。由此完成了本发明。

发明内容

技术问题

因此，本发明的目的是，提供一种通过电解法使植物提取液中的银离子化而制得的银离子化的植物提取液。

本发明的目的还在于，提供含有上述银离子化的植物提取液的抗微生物组合物。

以下提出本发明的其它目的和实施方案。

技术方案

根据本发明的一个方面，提供一种银离子化的植物提取液。该银离子化的植物提取液是通过电解法使得用作电解液(在电解中电流可以通过的液体)的植物提取液中的银离子化而制得的。

本发明人进行了大量实验，其中，植物提取液作为电解液(其从植物，例如竹子、橡树、松树、崖柏属(oreintal arbor vitae)(金钟柏)和海藻制得)被置于电解浴中，通过将电压施加到浸在该植物提取液中的两个银电极上而诱导银离子化，并认识到所得的物质与用作电解液的该植物提取液或银离子化的水相比表现出抗微生物活性的协同增效，所述银离子化的水通过使用三次蒸馏水代替植物提取液作为电解液而制得，如本文的实施例和实验例所示。

因此，银离子化的植物提取液可以理解为通过电解法使得用作电解液的植物提取液中的银离子化而制得的具有抗微生物活性的植物提取液。

本文使用的术语″抗微生物活性″和″微生物″和微生物的范畴，如下所述，与以下的本发明抗微生物组合物有关。

同时，虽然因为根据本发明的银离子化的植物提取液是通过将电压施加到浸在植物提取液中的两个银电极上进行电解，从而使得用作电解液的植物提取液中的银离子化而制得的，但就以植物提取液作为电解液而使其中的银离子化而言，该电解法可以以任何方式进行。

因此，尽管阴极(由其制得银离子)应该是含有银的导体，但阳极不一定是含有银的导体，而只需是导体，例如金属或石墨即可。

此外，含有银的导体中银的纯度(即，导体含银度)无关紧要，因为本领域已知，即使在较低纯度情况下，通过施加较高电压也会使银离子化。虽然如此，考虑到所得的银离子化的植物提取液较高的抗微生物活性，优选较高纯度的银用作阴极。

而且，电解的时间和电压无关紧要，只要它们足以诱导银离子化。不过，优选采用较长的时间和较高的电压，因为银离子化的植物提取液的抗微生物活性随着电解时间增长和电压提高而增加，如实验例1(4)和2(4)以及表5和8所示。

同时，用作本文电解液的植物提取液仅需是液相。因此，如果所述植物提取液最初以液相获得，则可立即使用。固相的植物提取物可以溶解于可以用作电解液的合适溶剂，例如水、蒸馏水和醇中。甚至可以优选将所述液相的植物提取液稀释于被用作电解液的合适溶剂中。

同时，任何植物提取液应该被理解为与植物的种类无关而都将用作本发明中的电解液，因为本发明人在以下实验例中，作为电解液所选的所有种类植物提取液，当它们被银离子化时都毫无例外地表现出协同增效的抗微生物活性。因此，任何植物都可用于获得要在本发明中用作电解液的植物提取液，只要该植物按照分类学的标准可以被归类为植物。

分类学上，植物是指细胞膜外有细胞壁并且能够进行光合作用并因此能够自养的活的生物体。植物的实例非限定性地包括藻类(例如蓝藻(Cyonophyta)、隐藻(Cryptophyta)、金藻(Chrysophyta)、硅藻(Bacillariophyta)、褐藻(Phaeophyta)、红藻(Rholophyta)、绿藻(Chlorophyta)、轮藻(Charophyta))、苔藓类植物、蕨类植物和种子植物(例如被子植物(Angiospermae)和裸子植物(Gymnospermae))。同时，松树提取液对本发明人随机选择的任何微生物都没有显示出抗微生物活性，不过，如实验例3和表9所示，银离子化的松树提取液对本发明人所选择的所有微生物都表现出高的抗微生物活性。同样，崖柏属(或金钟柏)提取液或者海藻提取液只对本发明人随机选择的一些微生物显示出弱的抗微生物活性。不过，如实验例4&5和表10&11所示，银离子化的松树提取液和银离子化的海藻提取液对本发明人所选择的所有微生物都表现出很高的抗微生物活性。

因此，应该注意的是，即使没有任何抗微生物活性的植物提取液也可以作为电解液用于制备本发明的银离子化的植物提取液。

还应该注意的是，任何植物提取液都可以作为电解液用于制备本发明的银离子化的植物提取液，而与提取方法无关。

一般有四种制备植物提取液的方法，如下所述：(i)直接或间接加热目标植物，并获得含树脂的植物提取液，(ii)切割植物的上部，并收集流出的植物提取液，(iii)将植物浸在合适的提取溶剂(例如甲醇、蒸馏水、乙醇、丙酮、乙酸乙酯、饱和的正丁醇、氯仿、二氯甲烷、水或它们的混合物)中，并获得提取液，和(iv)干燥和燃烧植物，收集并冷却燃烧气体。

一般而言，方法(i)、(ii)和(iv)适合于具有木质部分(木质部)的植物，而方法(iii)可以用于任何种类的植物。

因此，应该注意的是，方法(iii)也可以用于本发明中，尽管以下参考实施例仅采用方法(i)、(ii)和(iv)。此外，本发明人还证实了如下制得的植物提取液情况下的高抗微生物活性：用70％乙醇提取锯屑状的竹子，将冻干的提取粉末溶解于三次蒸馏水中，并使用所得的溶液作为电解液而使银离子化，尽管这没有表示在以下实验例中。

因此，还应该注意的是，任何植物提取液都可以用于制备本发明的银离子化的植物提取液，而与提取方法无关。

如上所述，尽管在本发明中可以使用任何种类的植物和提取方法，但优选采用在以下参考实施例中使用的植物，例如竹子、橡树、松树、崖柏属(金钟柏)和海藻，与上述提取方法，更优选(i)、(ii)或(iv)的方法的组合。

本文使用的术语“海藻”是指海生藻类，包括褐藻、绿藻和红藻，术语“竹子”、“橡树”′、“松树”和“金钟柏”应该理解为包括按照分类学标准可由此被归类的任何植物。

根据本发明另一方面，提供一种制备银离子化的植物提取液的方法。该方法在此包括通过电解使植物提取液的电解液中的银离子化的步骤。

根据本发明又一方面，提供一种增加抗微生物的植物提取液的抗微生物活性的方法。该方法在此包括通过电解使得用作电解液的抗微生物的植物提取液中的银离子化的步骤。

根据本发明再一方面，提供一种将抗微生物活性引入到非抗微生物的植物提取液中的方法。该方法在此包括通过电解使得用作电解液的非抗微生物的植物提取液中的银离子化的步骤。

如在有关′制备银离子化的植物提取液的方法′、′增加抗微生物的植物提取液的抗微生物活性的方法′和′将抗微生物活性引入到非抗微生物的植物提取液的方法′中使用的，术语′银离子化的植物提取液′、′抗微生物活性′、′微生物′和′植物提取液′的意思连同微生物的范畴以及对电解时间和电压以及银纯度的描述与本文提出的相同。

根据本发明又一方面，提供一种含有上述银离子化的植物提取液作为活性成分的抗微生物组合物。

本文使用的′抗微生物活性′是指抑制微生物的生长或繁殖或者杀死微生物的活性。

本文使用的′微生物′包括细菌、真菌、酵母和藻类，文中所述银离子化的植物提取液对它们可以具有抗微生物的活性。

如以下实验例所证实的，所述银离子化的植物提取液，其作为活性成分包含在本发明的抗微生物组合物中，对本发明人所选择的所有微生物都表现出抗微生物活性，而与从其制得植物提取物的植物的种类无关。

基于以下实验例的公开内容，认为本领域技术人员利用其常识技术能易于验证和选择其它微生物，文中所述抗微生物组合物中的银离子化的植物提取液对该微生物可以具有抗微生物的活性。

因此，本文的术语′微生物′除了包括以下实施例中所示的、所述银离子化的植物提取液对它们有抗微生物活性的微生物之外，还包括被认为本文的所述抗微生物组合物中的银离子化的植物提取液对其具有抗微生物活性的所有其它微生物。

本文的术语′微生物′包括所述植物提取液和银离子化的水分别对它们具有抗微生物活性的至少两类微生物。之所以这样说，显然是因为，本文的银离子化的植物提取液，会对银离子化溶液或植物提取液对其具有抗微生物活性的那些微生物表现出抗微生物活性，还在于所述银离子化的植物提取液对银离子化的溶液或植物提取液对其具有抗微生物活性的所有微生物都表现出协同增效作用，正如以下实验例所示。本文使用的′银离子化的溶液′包括含有银离子的任何溶液，其通过电解使得用作电解液的溶剂例如水、蒸馏水和醇中的银离子化而制得。

不过，本文的术语′微生物′优选理解为是指细菌、真菌、酵母和藻类，在以下实施例中证明所述银离子化的植物提取液对它们具有抗微生物活性，特别是指细菌中的埃希氏菌属(Escherichia sp.)、沙门氏菌属(Salmonella sp.)、杆菌属(Bacillussp.)，葡萄球菌属(Staphylococcus sp.)、弧菌属(Vibrio sp.)、气单胞菌属(Aeromonas sp.)、色素杆菌属(Chromobacteria sp.)、链球菌属(Streptococcus sp.)、乳杆菌属(Lactobacillus sp.)，真菌中的曲霉属(Aspergillus sp.)、镰刀菌属(Fusarium sp.)、木霉属(Trichoderma sp.)、毛癣菌属(Trichophyton sp.)、小孢子菌属(Microsporum sp.)和酵母中的念珠菌属(Candida sp.)。最优选本文的术语′微生物′是指在以下实施例中被直接证明本文的银离子化的植物提取液对其具有抗微生物活性的每种微生物。

本文中的上述抗微生物组合物可以单独或与其它抗微生物试剂组合，用于改善或防止由微生物直接或间接引起的有害现象。

本文使用的″有害现象″是指改善或防止该现象将有利于人类的现象。所述现象的实例非限定性包括人、动物或植物遭受的疾病，食物腐败，水或土壤污染和纤维恶化。

本文使用的“由微生物直接引起的有害现象”(以下简称为“直接引起的现象”)是指那些通过抑制微生物生长或繁殖或者杀灭微生物可以改善或防止的现象。这种现象的实例非限定性包括由沙门氏菌引起的斑疹伤寒症或食物中毒[参考后面的文献30]；由葡萄球菌引起的蜂窝织炎、淋巴管炎或中耳炎[参考20-25]；由杆菌引起的炭疽病或炭疽热[参考34-35]；由镰刀菌引起的作物流行病[参考37-40]；由念珠菌或乳杆菌引起的阴道炎；与气单胞菌或色素杆菌有关的皮肤外伤；由链球菌引起的牙齿损伤，由毛癣菌或小孢子菌引起的毛癣。即使单独使用本发明的抗微生物组合物，上述现象也可以得到改善或防止。

同样，术语″由微生物间接引起的有害现象″(以下简称为″间接引起的现象″)是指这样的现象，最好采取抑制微生物生长或繁殖或者杀灭微生物的措施(即属于进一步需要的)以改善或防止该现象。所述现象的实例非限定性包括由弧菌引起的败血病[参考32-33]和由大肠杆菌0157(E，coli 0157)引起的肾组织病变[参考26-29]。

当本发明的抗微生物组合物与其它抗微生物试剂，或者与用于改善或防止该现象的任何其它试剂组合使用时，间接引起的现象可以被进一步改善或防止。例如，为了改善或防止败血病，本文的抗微生物组合物可以与在治疗或防止败血病中有效的任何药物，例如Xigris(Lilly Co.)一起使用。

同时，本发明抗微生物组合物中的银离子化的植物提取液的含有量可以考虑其应用领域、所需要的抗微生物活性程度(有害现象的有害程度)等来决定。对于足够的抗微生物活性而言，银离子化的植物提取液的用量可以为0.1wt％以上，优选3wt％以上，以本文组合物的总重量计，与应用领域和所需要的抗微生物活性程度无关。

本文的抗微生物组合物还可以含有分散剂、载体和其它抗微生物试剂，只要所述成分没有妨碍本文组合物的活性。

可以单独或与其它试剂组合而包含于本发明抗微生物组合物中的分散剂的实例非限定性包括水、醇(例如甲醇、乙醇、乙二醇、丙二醇、二甘醇和甘油)、酮(例如丙酮、甲乙酮)、醚(例如二氧六环、四氢呋喃、纤维素溶剂、二甘醇二甲醚)、脂肪烃(例如己烷、煤油)、芳香烃(例如苯、甲苯、二甲苯、萘、甲基萘)、卤代烃(例如氯仿、四氯化碳)、酰胺(例如二甲基甲酰胺)、酯(例如乙酸甲酯、乙酸乙酯、乙酸丁酯、脂肪酸甘油酯)、腈(例如乙腈)、表面活性剂(高级醇硫酸酯、烷基磺酸、烷基芳基磺酸、叔铵盐、氧代烷基胺、脂肪酸酯，和聚环氧烷化合物，无水山梨糖醇化合物)。

载体的实例非限定性包括粘土(例如高岭土、膨润土、酸性粘土)、滑石(例如滑石末、寿山石)、硅土(例如硅藻土、硅土酐、云母粉)、矾土、硫磺粉和活性炭。这些载体也可以单独或与其它试剂组合地包含在所述抗微生物组合物中。

抗微生物试剂的实例非限定性包括香芹酚、麝香草酚、柠檬醛(韩国专利号438209)、异丁子香酚、甲基丁子香酚(韩国专利号427584)、竹子提取液(WO2003/105878)、灵芝属(Ganoderma)sinense提取液(韩国专利号445405)、异噻唑酮化合物、和氨基酸(WO 2000/13510)以及它们的混合物，并且也可以单独或与其它试剂组合地包含在所述抗微生物组合物中。

同时，本文的抗微生物组合物可以制成液体，固体或气体制剂，并且可以口服或肠胃外给药，优选局部给药。口服制剂的实例非限定性包括片剂、丸剂、粉剂、液体和食物。肠胃外制剂的实例非限定性包括注射剂、局部给药制剂(例如霜剂、膏剂)、栓剂和喷雾剂(尤其是对植物而言)。具体而言，局部给药制剂包括其中本文的组合物浸在例如天然或合成纤维的载体中的制剂，和其中本文的组合物包含在化妆品或皂中的制剂。

如果所述抗微生物组合物可以改善或防止上述有害现象，则该抗微生物组合物可以服用/喷给动物如宠物、家畜和饲养的鱼或植物，也可以包含在食物中作为防腐剂，可以包含在纤维产品中或涂敷于纤维产品上用以在制备纤维产品时提高它们的保存性。

以下，作为所述微生物组合物的一个方面，将详细描述药物组合物，因为预期本发明所述微生物组合物将主要用作药物组合物。

在所述抗微生物组合物用作药物组合物的情况下，可以认为该药物活性在于改善或防止由微生物引起的疾病，作为有效试剂包含在抗微生物组合物中的银离子化的植物提取液对所述微生物具有抗微生物活性。

优选地，所述药物活性可以理解成改善或防止由细菌、真菌、酵母和藻类引起的疾病的活性，在以下实验例中直接证明所述银离子化的植物提取液对它们具有抗微生物活性，更优选埃希氏菌属(Escherichia sp.)、沙门氏菌属(Salmonella sp.)、杆菌属(Bacillus sp.)、葡萄球菌属(Staphylococcus sp.)、弧菌属(Vibrio sp.)、曲霉属(Aspergillus sp.)、镰刀菌属(Fusarium sp.)、木霉属(Trichoderma sp.)、念珠菌属(Candida sp.)、乳杆菌属(Lactobacillus sp.)、气单胞菌属(Aeromonas sp.)、色素杆菌属(Chromobacterium sp.)、链球菌属(Streptococcus sp.)、毛癣菌属(Trichophyton sp.)、小孢子菌属(Microsporum sp.)。

具体而言，所述抗微生物组合物具有改善或防止以下病症的活性：由大肠杆菌(E，coli)，尤其是大肠杆菌0157引起的肾组织的损伤[参考26-29]，由沙门氏菌引起的斑疹伤寒症或食物中毒[参考以下30]，由弧菌引起的霍乱、败血病或肠炎[参考31-32]，由葡萄球菌引起的疔疮、蜂窝织炎、淋巴管炎、瘭疽、中耳炎、肺炎、食物中毒或败血病[参考20-25]，由念珠菌引起的淋病、结核、梅毒、白喉、伤寒、麻疹或者口腔或阴道黏膜发炎(包括阴道炎)、口腔或阴道黏膜瘙痒、口腔或阴道黏膜疼痛[参考1-18]，由曲霉引起的败血病[参考36和37]，和由乳杆菌引起的阴道炎，与气单胞菌或色素杆菌有关的皮肤外伤，由链球菌引起的牙齿腐蚀或牙周炎，和由毛癣菌或小孢子菌引起的毛癣。

上述疾病应理解为只是示例性的，因为所述药物组合物对于由上述微生物引起的疾病之所以显然具有治疗或预防活性，在于所述银离子化的植物提取液对上述微生物具有抗微生物活性，正如以下实验例所示。因此，不应理解为所述药物组合物仅对以上示例性的疾病具有治疗或预防活性。

至少，该药物组合物应理解为在防止或治疗已知由后面提到的参考文献中所述微生物引起的疾病是有效的。

同时，该药物组合物还可以含有药学上可接受的载体，例如乳糖、右旋糖、蔗糖、山梨糖醇、甘露糖醇、淀粉、阿拉伯树胶、磷酸钙、藻酸盐、白明胶、硅酸钙、微晶纤维素、聚(乙烯基吡咯烷酮)、纤维素、水、糖浆、甲基纤维素、羟基苯甲酸甲酯、羟基苯甲酸丙酯、滑石、硬脂酸镁和矿物油。

所述药物组合物还可以含有润滑剂、润湿剂、甜味剂、香料、乳化剂、悬浮剂和稳定剂作为添加剂。

所述载体在药物组合物中的含量可以为约0.1-99.9wt％，优选约0.1-97wt％，所述添加剂的含量约0.1-20wt％，以组合物的总重量计。

尽管所述药物组合物可以口服或肠胃外给药，但优选对目标区域直接局部给药。

药物组合物可以以单位剂型制备，或者根据常规方法通过使用药学上可接受的载体或填料注入多剂量容器中来制备。制剂类型的代表性实例包括溶液、悬浮液、乳液、提取液、粉末、粒状物、片剂和膏剂。

本文的药物组合物的日剂量为0.001-150mL/kg体重，一天一次或一天几次给药。不过，本文的药物组合物合适的剂量水平可以通过考虑多种信息，例如给药类型、患者年龄、患者体重、患者性别、患者症状和给药时间来决定。具有平均技能的医师易于决定和断定对治疗或预防目标病变或疾病有效的药物的剂量水平。有利效果

本发明公开了银离子化的植物提取液和该银离子化的植物提取液的抗微生物用途。本文的银离子化的植物提取液对多种微生物表现出抗微生物活性，可以用于改善或防止由微生物引起的疾病。

附图说明

图1表示念珠菌(Candida)krusei ATCC 6258在分别用竹子提取液和银离子化的竹子提取液处理后的繁殖程度。′CON′是指未经处理的组，′400′、′800′、′1600′和′3200′是指分别用400μL、800μL、1600μL和3200μL的竹子提取液处理的组，′800(+)′表示用800μL银离子化的竹子提取液处理的组；

图2表示念珠菌parapsilosis ATCC 22019在用竹子提取液和银离子化的竹子提取液处理后的繁殖程度。′CON′、′400′、′800′、′1600′、′3200′和′800(+)′与以上意思相同；

图3表示念珠菌glabrata ATCC 90030在用竹子提取液和银离子化的竹子提取液处理后的繁殖程度。′CON′、′400′、′800′、′1600′、′3200′和′800(+)′与以上意思相同；

图4表示念珠菌krusei ATCC 6258在用橡树提取液和银离子化的橡树提取液处理后的繁殖程度。′CON′是指未处理的组，′100′、′200′、′400′、′800′和′1600′是指用100μL、200μL、400μL、800μL和1600μL橡树提取液处理的组。′200(+)′和′400(+)′表示分别用200μL和400μL银离子化的橡树提取液处理的组；

图5表示念珠菌parapsilosis ATCC 22019在用橡树提取液和银离子化的橡树提取液处理后的繁殖程度。′CON′、′100′、′200′、′400′、′800′、′1600′、′200(+)′和′400(+)′与以上意思相同；

图6表示念珠菌glabrata ATCC 90030在用橡树提取液和银离子化的橡树提取液处理后的繁殖程度。′CON′、′100′、′200′、′400′、′800′、′1600′、′200(+)′和′400(+)′与以上意思相同；

图7表示念珠菌albicans ATCC 64550在用橡树提取液和银离子化的橡树提取液处理后的繁殖程度。′CON′、′100′、′200′、′400′、′800′、′1600′、′200(+)′和′400(+)′与以上意思相同；

图8表示念珠菌albicans ATCC 90028在用橡树提取液和银离子化的橡树提取液处理后的繁殖程度。′CON′、′100′、′200′、′400′、′800′、′1600′、′200(+)′和′400(+)′与以上意思相同。

发明的最佳实施方式

通过以下实施例更具体地描述本发明。实施例在此只在于说明本发明，而绝非对发明要求保护的范围加以任何限制。

参考实施例：植物提取液的制备

参考实施例1：竹子提取液的制备

将竹子切成约30cm的段，并且该竹段的中间部分被加热到400℃。竹子提取液是通过收集从竹段的端部流出的树脂样的植物提取液而获得的。检验竹子提取液的pH为2.67。

参考实施例2：购买橡树提取液

橡树提取液(poroligenous liquor)是从位于韩国首尔的Life-Chamsoot公司购买的。

参考实施例3：松树提取液的制备

将松树切成约30cm的段，并且该松段的中间部分被加热到300℃。松树提取液是通过收集从松段的端部流出的树脂样的植物提取液而获得的。

参考实施例4：金钟柏提取液的制备

将金钟柏树切成约30cm的段，并且该柏段的中间部分被加热到400℃。金钟柏提取液是通过收集从柏段的端部流出的树脂样的植物提取液而获得的。

参考实施例5：海藻提取液的制备

通过挤压海藻而获得的树脂样的海藻提取液是从菲律宾的Freegrow，Harveson公司商购的(液相，pH＝14)。

实施例：银离子化的植物提取液的制备

实施例1-10：通过电解制备银离子化的竹子提取液

将参考实施例1中制得的竹子提取液放入非导电的电解浴中，将两个高纯度(＞99.9％)的银电极浸入该提取液中。通过使电极连接电源并施加电压达预定的时间来诱导银离子化，如表1所示。由于银离子和竹子提取液之间的反应，形成暗褐色沉淀物，并通过进行离心分离和膜过滤法(Pall Corporation；Acrodisc Syringe Filter，0.2μm)全部除去，因而最终制得银离子化的竹子提取液。

表1

实施例	电压(V)	时间(分钟)
			实施例1	1.5	2
实施例2	1.5	4
			实施例3	1.5	6
实施例4	3	2
			实施例5	3	4
实施例6	3	6
			实施例7	6	2
实施例8	6	4
			实施例9	6	6
实施例10	9	4

实施例11-20：通过电解制备银离子化的橡树提取液

将参考实施例2中购得的橡树提取液放入非导电的电解浴中，将两个高纯度(＞99.9％)的银电极浸入该提取液中。通过使电极连接电源并施加电压达预定的时间来诱导银离子化，如表2所示。由于银离子和橡树提取液之间的反应，形成暗褐色沉淀物，并通过进行离心分离和膜过滤法(Pall Corporation；Acrodisc Syringe Filter，0.2μm)全部除去，因而最终制得银离子化的橡树提取液。

表2

实施例	电压(V)	时间(分钟)
			实施例11	1.5	2
实施例12	1.5	4
			实施例13	1.5	6

实施例14	3	2
			实施例15	3	4
实施例16	3	6
			实施例17	6	2
实施例18	6	4
			实施例19	6	6
实施例20	9	4

实施例21：通过电解制备银离子化的松树提取液

将参考实施例3中制得的松树提取液放入非导电的电解浴中，将两个高纯度(＞99.9％)的银电极浸入该提取液中。通过使电极连接电源并施加9 V电压达约4分钟来诱导银离子化。由于银离子和松树提取液之间的反应，形成暗褐色沉淀物，并通过进行离心分离和膜过滤法(Pall Corporation；Acrodisc Syringe Filter，0.2μm)全部除去，因而最终制得银离子化的松树提取液。

实施例22：通过电解制备银离子化的金钟柏提取液

将参考实施例4中制得的金钟柏提取液放入非导电的电解浴中，将两个高纯度(＞99.9％)的银电极浸入该提取液中。通过使电极连接电源并施加9V电压达4分钟来诱导银离子化。由于银离子和金钟柏提取液之间的反应，形成暗褐色沉淀物，并通过进行离心分离和膜过滤法(Pall Corporation；Acrodisc Syringe Filter，0.2μm)全部除去，因而最终制得银离子化的金钟柏提取液。

实施例23：通过电解制备银离子化的海藻提取液

参考实施例4中准备的海藻提取液用三次蒸馏水稀释两倍，使用上层溶液作为电解液。

将上层溶液放入非导电的电解浴中，将两个高纯度(＞99.9％)的银电极浸入该提取液中。通过使电极连接电源并施加9 V电压达4分钟来诱导银离子化。由于银离子和该上层液体之间的反应，形成暗褐色沉淀物，并通过进行离心分离和膜过滤法(Pall Corporation；Acrodisc Syringe Filter，0.2μm)全部除去，因而最终制得银离子化的海藻提取液。

实验例：观察抗微生物活性

实验例1：银离子化的竹子提取液的抗微生物活性

(1-1)对念珠菌属的抗微生物活性

念珠菌krusei ATCC 6258、念珠菌parapsilosis ATCC 22019和念珠菌glabrata ATCC 90030在此作为念珠菌属微生物供用。

将灭菌的培养基(Sabouraud右旋糖Broth，10mL)分成6组。一组完全没有被处理，4组分别用参考实施例1中制得的400μL、800μL、1,600μL和3,200μL的竹子提取液进行处理。另一组用实施例10中制得的800μL银离子化的竹子提取液进行处理。这6组的每组都分别植入100μL充分生长的念珠菌krusei ATCC 6258、念珠菌parapsilosis ATCC 22019，念珠菌glabrata ATCC 90030，然后在30℃培养。

在培养期间，每间隔2小时测量O.D.值，并将菌株生长的结果表示在图1-3中，其分别代表念珠菌krusei ATCC 6258、念珠菌parapsilosis ATCC 22019和念珠菌glabrata ATCC 90030。

在念珠菌krusei情况下，参考实施例1中制得的竹子提取液以400μL的量使用没有影响，以800μL的量开始表现出抗微生物活性。念珠菌krusei的生长通过加入1600μL竹子提取液而完全被抑制。而通过加入800μL银离子化的竹子提取液也实现了抑制。这些结果表明，竹子提取液的MIC(最小抑制浓度)值高于800μL/mL，而银离子化的竹子提取液的MIC值低于800μL/mL。

念珠菌parapsilosis的生长通过加入800μL竹子提取液或者加入800μL银离子化的竹子提取液都能完全被抑制。念珠菌glabrata在生长抑制方面类似于念珠菌krusei的情况，其分别通过加入1600μL竹子提取液和通过加入800μL银离子化的竹子提取液而实现。

(1-2)对细菌和酵母的抗微生物活性

在细菌中，大肠杆菌(E.coli)0157 KCCM 40406、杆菌therengenesis KCTC1034、葡萄球菌warneri KACC 10785、葡萄球菌aureus KACC 10778、葡萄球菌aureus KACC 10778和弧菌属(可从韩国Chon-nam national university hospital获得)最初生长在LB Broth中(37℃，12小时)。气单胞菌亲水亚属亲水菌(Aeromonashydrophila subsp.Hydrophila)KCCM 32586和色素杆菌violaceum KCCM 11748最初生长在营养Broth培养基中(26℃，18小时)。链球菌pyogenes KCCM 11856和链球菌mutants KCCM 40105最初生长在BHI(Brain Heart Infusion)Broth培养基中(37℃，18小时)。乳杆菌crispatus KCCM 41620和念珠菌属最初分别生长在LactobacilliMRS Broth培养基中(37℃，18小时)和SD(Sabouraud右旋糖)Broth中(30℃，12小时)。

将100μL所培养的菌株植入含有LB琼脂的各Petri皿中。将12μL竹子提取液(参考实施例1)、银离子化的水和银离子化的竹子提取液(实施例10)加入到经菌株植入后的培养基中，然后在恒温浴中培养12小时。借助观察清澈区带，来确定细菌生长与否，结果表示在表3中。

通过电解，以实施例10中提出的相同条件制备银离子化的水，只是使用三次蒸馏水代替参考实施例1中的竹子提取液。

表3

菌株	竹子提取液	银离子化的水	银离子化的竹子提取液
				大肠杆菌0157KCCM 40406	**	-	***
沙门菌ChoeraesuisKCCM 41038	**	-	***
				杆菌therengenesisKCTC 1034	*	-	***
葡萄球菌warneriKACC 10785	*	-	***
				葡萄球菌aureusKACC 10778	-	-	***
弧菌属(Chon-namnational Univ.)	-	-	**
				气单胞菌亲水亚属亲水菌KCCM 32586	***	-	***

色素杆菌violaceumKCCM 11748	***	-	***
				链球菌pyogenes KCCM11856	-	-	***
链球菌mutants KCCM40105	*	-	***
				乳杆菌crispatus KCCM41620	-	-	***
念珠菌parapsilosisATCC 22019	-	-	**
				念珠菌glabrata ATCC90030	-	-	**
念珠菌krusei ATCC6258	-	-	***
				念珠菌albicans 1 ATCC64550	-	-	**
念珠菌albicans 2 ATCC90028	-	-	**
				-没有抗微生物活性*小清澈区，有少量微生物在该区中，并且24小时后观察到微生物繁殖。**小清澈区，有非常少量微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。***大清澈区，没有微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。

表3表明，与竹子提取液和银离子化的水相比，在实施例10中制得的银离子化的竹子提取液有协同增效的抗微生物活性。认为银离子化的水没有表现出抗微生物活性的原因在于电解期间的电压低并且时间短。

(1-3)对真菌的抗微生物活性

曲霉ocnraceus KACC 4007、木霉harzianum KCTC 6426、镰刀菌solaniKCTC 6328和镰刀菌oxysporum KACC 40037生长在PDA(Potato右旋糖琼脂，Duchefa)培养基中。曲霉ochraceus KACC 40077、镰刀菌solani KACC 40384和镰刀菌graminearum KACC 40532生长在MEA(MaIt提取液琼脂)培养基中。毛癣菌rubrum KCTC 6345、小孢子菌audouinii KCTC 6346和毛癣菌ferrugineum KCTC6351生长在SDA(Sabouraud右旋糖琼脂)培养基中。将微生物植入培养基的中心，使得开始环状的试管内的无性繁殖。约7天后，约300μL的每种试剂，即，竹子提取液(参考实施例1)、银离子化的水、银离子化的竹子提取液(实施例10)，以恒定距离被吸收到各个纸皿中。12小时后观察微生物是否繁殖进入到经试剂处理过的区域中，结果表示在表3中。

通过电解，以实施例10中提出的相同条件制备银离子化的水，只是使用三次蒸馏水代替参考实施例1中的竹子提取液。

表4

菌株	竹子提取液	银离子化的水	银离子化的竹子提取液
				曲霉ocnraceusKACC 4007	*	-	**
木霉harzianumKCTC 6426	*	-	**
				镰刀菌solaniKCTC 6328	*	-	**
镰刀菌oxysporumKACC 40037	**	-	***
				曲霉ochraceus(KACC 40077)	-	-	***
镰刀菌solani(KACC 40384)	*	-	***
				镰刀菌graminearum(KACC 40532)	-	-	**
毛癣菌rubrumKCTC 6345	*	-	***
				小孢子菌audouiniiKCTC 6346	-	-	***

毛癣菌ferrugineumKCTC 6351	*	-	***
				-没有抗微生物活性*观察到纸皿中超出试剂处理过的界线外才有真菌繁殖区。**观察到纸皿中大于试剂处理过的区域半径0.5cm处才有同心环形状的真菌繁殖区。***观察到纸皿中大于试剂处理过的区域半径1cm处才有同心环形状的真菌繁殖区。

表4也表明，与竹子提取液和银离子化的水相比，在实施例10中制得的银离子化的竹子提取液有协同增效的抗微生物活性。认为银离子化的水没有表现出抗微生物活性的原因与表3中提出的原因相同。

(1-4)电解电压和时间对抗微生物活性的影响

通过使用在实施例1-10中各自制得的银离子化的竹子提取液来观察电解电压和时间对银离子化的竹子提取液的抗微生物活性影响的程度。实验过程与以上实验例1-2完全相同，结果表示在表5中。

表5

实施例	1	2	3	4	5	6	7	8	9	10
											实施例1	***	***	*	-	-	-	-	-	-	*
实施例2	***	***	*	-	*	*	-	-	-	**
											实施例3	***	***	*	-	***	*	-	-	-	**
实施例4	***	***	**	**	**	*	-	-	*	-
											实施例5	***	***	**	**	***	**	-	*	***	*
实施例6	***	***	***	***	***	**	-	***	***	**
											实施例7	***	***	***	***	***	**	*	***	**	***
实施例8	***	***	***	***	***	***	**	***	***	***
											实施例9	***	***	***	***	***	***	***	***	***	***

1：大肠杆菌0157KCCM 4040622：沙门菌choeraesuis KCCM 410383：杆菌therengenesis KCTC 10344：葡萄球菌warneri KACC 107855：葡萄球菌aureus KACC 107786：念珠菌parapsilosis ATCC 220197：念珠菌glabrata ATCC 900308：念珠菌krusei ATCC 62589：念珠菌albicans 1ATCC 6455010：念珠菌albicans 2ATCC 90028-没有抗微生物活性*小清澈区，少量微生物在该区中，并且观察到24小时后有微生物繁殖。**小清澈区，非常少量微生物在该区中，并且观察到48小时后有微生物繁殖。***大清澈区，没有微生物在该区中，并且观察到48小时后有微生物繁殖。

表5表明，较高的电压和较长的电解时间导致银离子化的竹子提取液较高的抗微生物活性。

实验例2：银离子化的橡树提取液的抗微生物活性

(2-1)对念珠菌属的抗微生物活性

按照与实验例1-1中类似的过程，观察对念珠菌属的抗微生物活性。

作为念珠菌属，在此使用念珠菌krusei ATCC 6258、念珠菌parapsilosis ATCC22019、念珠菌glabrata ATCC 90030、念珠菌albicans ATCC 64550和念珠菌albicans ATCC 90028。

灭菌的培养基(Sabouraud右旋糖Broth)被分成8组。一组没有被处理(CON)，5组分别用参考实施例2中制得的100μL、200μL、400μL、800μL和1600μL橡树提取液进行处理。另外2组用实施例20中制得的200μL和400μL银离子化的橡树提取液进行处理。这8组的每组都分别植入100μL充分生长的念珠菌kruseiATCC 6258、念珠菌parapsilosis ATCC 22019、念珠菌glabrata ATCC 90030、念珠菌albicans ATCC 64550(C.albicans 1)和念珠菌albicans ATCC 90028(C.albicans2)，然后在30℃下培养。

在培养期间，每间隔2小时测量O.D.值(600nm)，并将菌株生长的结果表示在图4-8中，其分别代表念珠菌念珠菌krusei ATCC 6258、念珠菌parapsilosis ATCC22019、念珠菌glabrata ATCC 90030、念珠菌albicans ATCC 64550和念珠菌albicans ATCC 90028。

在念珠菌krusei和两种念珠菌albicans情况下，参考实施例2中制得的橡树提取液以100μL的量处理没有影响，以200μL的量开始表现出抗微生物活性。生长通过加入400μL橡树提取液而完全被抑制。而通过加入200μL银离子化的橡树提取液也实现了抑制。这些结果表明，橡树提取液的MIC(最小抑制浓度)值大于200μL/mL，而银离子化的橡树提取液的MIC值低于200μL/mL。

念珠菌parapsilosis的生长通过加入200μL橡树提取液或者通过加入200μL银离子化的橡树提取液均能完全被抑制。念珠菌glabrata在生长抑制方面类似于念珠菌krusei的情况，其分别通过加入800μL橡树提取液和通过加入400μL银离子化的橡树提取液而实现。

(2-2)对细菌和酵母的抗微生物活性

按照类似于实验例1-2中的方法，观察对细菌和酵母的抗微生物活性。

细菌最初在LB Broth(37℃，12小时)中生长，念珠菌属最初在SD(Sabouraud右旋糖)Broth(30℃，12小时)中生长。

将100μL所培养的的菌株植入含有LB琼脂的各Petri皿中。将12μL橡树提取液(参考实施例2)、银离子化的水和银离子化的橡树提取液(实施例20)加入到植入有微生物的培养基中，然后在恒温浴中培养12小时。借助观察清澈区带，来确定细菌生长与否，结果表示在表6中。

通过电解，以实施例20中提出的相同条件制备银离子化的水，只是使用三次蒸馏水代替参考实施例2中的橡树提取液。

表6

菌株	橡树提取液	银离子化的水	银离子化的橡树提取液
				大肠杆菌0157KCCM 40406	**	-	***
沙门菌choeraesuisKCCM 41038	**	-	***
				杆菌therengenesisKCTC 1034	**	-	***

葡萄球菌warneriKACC 10785	**	-	***
				葡萄球菌aureusKACC 10778	-	-	***
弧菌属(Chon-namnational Univ.)	-	-	**
				念珠菌parapsilosisATCC 22019	-	-	**
念珠菌glabrataATCC 90030	-	-	**
				念珠菌kruseiATCC 6258	-	-	***
念珠菌albicans 1ATCC 64550	-	-	**
				念珠菌albicans 2ATCC 90028	-	-	**
-低的抗微生物活性*小清澈区，少量微生物在该区中，并且24小时后观察到微生物繁殖。**小清澈区，非常少量微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。***大清澈区，没有微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。

表6表明，与橡树提取液和银离子化的水相比，在实施例20中制得的银离子化的橡树提取液有协同增效的抗微生物活性。认为银离子化的水没有表现出抗微生物活性的原因与以上提出的相同。

(2-3)对真菌的抗微生物活性

按照类似于实验例1-3中的方法，观察对真菌的抗微生物活性。

将微生物植入到培养基(Potato右旋糖琼脂/Duchefa)的中心，使得开始环状的试管内无性繁殖。约7天后，约25μL的每种试剂，即，橡树提取液(参考实施例2)、银离子化的水、银离子化的橡树提取液(实施例20)，以恒定距离被吸收到纸皿中。12小时后观察微生物是否繁殖进入到试剂处理过的区域中，结果表示在表7中。

通过电解，以实施例20中提出的相同条件制备银离子化的水，只是使用三次蒸馏水代替参考实施例2中的橡树提取液。

表7

菌株	橡树提取液	银离子化的水	银离子化的橡树提取液
				曲霉ocnraceusKACC 4007	**	-	**
木霉harzianumKCTC 6426	*	-	**
				镰刀菌solaniKCTC 6328	**	-	**
镰刀菌oxysporumKACC 40037	**	-	***
				-没有抗微生物活性*观察到纸皿中超出试剂处理过的界线外才有真菌繁殖区。**观察到纸皿中大于试剂处理过的区域半径0.5cm处才有同心环形状的真菌繁殖区。***观察到纸皿中大于试剂处理过的区域半径1cm处才有同心环形状的真菌繁殖区。

表7也表明，与橡树提取液和银离子化的水相比，实施例20中制得的银离子化的橡树提取液有协同增效的抗微生物活性。认为银离子化的水没有表现出抗微生物活性的原因与表3中提出的原因相同。

(2-4)电解电压和时间对抗微生物活性的影响

通过使用在实施例11-20中各自制得的银离子化的橡树提取液来观察电解电压和时间对抗微生物活性影响的程度。实验过程与以上实验例2-2完全相同，结果表示在表8中。

表8

实施例	11	12	13	14	15	16	17	18	19	20
											实施例1	***	***	*	-	-	-	-	-	-	*
实施例2	***	***	*	-	*	*	-	-	-	**
											实施例3	***	***	*	-	***	*	-	-	-	**
实施例4	***	***	**	**	**	*	-	-	*	-
											实施例5	***	***	**	**	***	**	-	*	***	*
实施例6	***	***	***	***	***	**	-	***	***	**
											实施例7	***	***	***	***	***	**	*	***	**	***
实施例8	***	***	***	***	***	***	**	***	***	***
											实施例9	***	***	***	***	***	***	***	***	***	***
1：大肠杆菌0157KCCM 404062：沙门菌choeraesuis KCCM 410383：杆菌therengenesis KCTC 10344：葡萄球菌warneri KACC 107855：葡萄球菌aureus KACC 107786：念珠菌parapsilosis ATCC 220197：念珠菌glabrata ATCC 900308：念珠菌krusei ATCC 62589：念珠菌albicans 1ATCC 6455010：念珠菌albicans 2ATCC 90028-没有抗微生物活性*小清澈区，少量微生物在该区中，并且24小时后观察到微生物繁殖。**小清澈区，非常少量微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。***大清澈区，没有微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。

表8也表明，较高的电压和较长的电解时间导致银离子化的橡树提取液较高的抗微生物活性。

实验例3：银离子化的松树提取液的抗微生物活性

按照类似于实验例1-2中的过程，观察对细菌和酵母的抗微生物活性。

细菌最初生长在MH(Mueller Hinton)Broth(37℃，12小时)中，念珠菌属最初生长在SD(Sabouraud右旋糖)Broth(30℃，12小时)中。将100μL所培养的菌株植入到含有MH琼脂的各Petri皿中。将15μL松树提取液(参考实施例3)、银离子化的水和银离子化的松树提取液(实施例21)加入到植入有微生物的培养基中，然后在恒温浴中培养12小时。借助观察清澈区带，来确定细菌生长与否，结果表示在表9中。

通过电解，以实施例21中提出的相同条件制备银离子化的水，只是使用三次蒸馏水代替参考实施例3中的橡树提取液。

表9

菌株	松树提取液	银离子化的水	银离子化的松树提取液
				大肠杆菌0157KCCM 40406	-	-	***
沙门菌choeraesuisKCCM 41038	-	-	***
				杆菌therengenesisKCTC 1034	-	-	***
葡萄球菌epidermidis(LG Chem，Ltd.)	-	-	***
				葡萄球菌aureus(LG Chem，Ltd.)	-	-	***
粘质沙雷菌(LG Chem，Ltd.)	-	-	***
				念珠菌albicans 1ATCC 64550	-	-	*
-没有抗微生物活性*小清澈区，少量微生物在该区中，并且24小时后观察到微生物繁殖。**小清澈区，非常少量微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。***大清澈区，没有微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。

表9也表明，与松树提取液和银离子化的水相比，实施例20中制得的银离子化的松树提取液的协同增效的抗微生物活性。认为银离子化的水没有表现出抗微生物活性的原因与表3中提出的相同。

实验例4：银离子化的金钟柏提取液的抗微生物活性

按照类似于实验例1-2中的过程，观察对细菌和酵母的抗微生物活性。

细菌最初生长在MH(Mueller Hinton)Broth(37℃，12小时)中，念珠菌属最初生长在SD(Sabouraud右旋糖)Broth(30℃，12小时)中。将100μL所培养的菌株植入含有MH琼脂的各Petri皿中。将15μL金钟柏提取液(参考实施例4)、银离子化的水和银离子化的金钟柏提取液(实施例22)加入到植入有微生物的培养基中，然后在恒温浴中培养12小时。借助观察清澈区带，来确定细菌生长与否，结果表示在表10中。

通过电解，以实施例22中提出的相同条件制备银离子化的水，只是使用三次蒸馏水代替参考实施例4中的金钟柏提取液。

表10

菌株	金钟柏提取液	银离子化的水	银离子化的金钟柏提取液
				大肠杆菌0157KCCM 40406	-	-	***
沙门菌choeraesuisKCCM 41038	*	-	***
				杆菌therengenesisKCTC 1034	-	-	***
葡萄球菌epidermidis(LG Chem，Ltd.)	*	-	***
				葡萄球菌aureus(LG Chem，Ltd.)	-	-	***
粘质沙雷菌(LG Chem，Ltd.)	*	-	***
				念珠菌albicans 1ATCC64550	-	-	***
-没有抗微生物活性*小清澈区，少量微生物在该区中，并且24小时后观察到微生物繁殖。**小清澈区，非常少量微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。***大清澈区，没有微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。

表10也表明，与金钟柏提取液和银离子化的水相比，实施例22中制得的银离子化的金钟柏提取液有协同增效的抗微生物活性。认为银离子化的水没有表现出抗微生物活性的原因与表3中提出的相同。

实验例5：银离子化的海藻提取液的抗微生物活性

按照与实验例1-2中相同的过程，观察对细菌和酵母的抗微生物活性。

细菌最初生长在MH(Mueller Hinton)Broth(37℃，12小时)中，念珠菌属最初生长在SD(Sabouraud右旋糖)Broth(30℃，12小时)中。将100μL所培养的菌株植入到含有MH琼脂的各Petri皿中。将15μL海藻提取液(参考实施例5)、银离子化的水和银离子化的海藻提取液(实施例23)加入到植入有微生物的培养基中，然后在恒温浴中培养12小时。借助观察清澈区带，来确定细菌生长与否，结果表示在表11中。

通过电解，以实施例23中提出的相同条件制备银离子化的水，只是使用三次蒸馏水代替参考实施例5中的海藻提取液。

表11

菌株	海藻提取液	银离子化的水	银离子化的海藻提取液
				大肠杆菌0157KCCM 40406	**	-	***
沙门菌choeraesuisKCCM 41038	**	-	***
				杆菌therengenesisKCTC 1034	-	-	***
葡萄球菌epidermidis(LG Chem，Ltd.)	*	-	***
				葡萄球菌aureus(LG Chem，Ltd.)	-	-	**
粘质沙雷菌(LG Chem，Ltd.)	*	-	***

念珠菌albicans 1ATCC 64550	-	-	***
				-没有抗微生物活性*小清澈区，少量微生物在该区中，并且24小时后观察到微生物繁殖。**小清澈区，非常少量微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。***大清澈区，没有微生物在该区中，并且48小时后观察到微生物繁殖。

表11也表明，与海藻提取液和银离子化的水相比，实施例23中制得的银离子化的海藻提取液有协同增效的抗微生物活性。认为银离子化的水没有表现出抗微生物活性的原因与表3中提出的相同。

看起来，本文中银离子化的植物提取液的协同增效抗微生物活性，设想是由银离子与所述植物提取液进行反应后生成的未知物质而产生的。同时，尽管上文没有公开，但还检验出银离子化的竹子或橡树提取液对杆菌anthracis、E.coli DH 5α、葡萄球菌schleiferi也有抗微生物活性。

[参考]

通过参考将下述论文的全部内容并入本文中，从而更好地理解相关领域的水平和本发明的主旨。

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Claims (18)

1.一种银离子化的植物提取液，是通过电解法使得用作电解液的植物提取液中的银离子化而制得的。

2.权利要求1的银离子化的植物提取液，其具有抗微生物活性。

3.权利要求2的银离子化的植物提取液，其中，抗微生物活性是指能对抗植物提取液或银离子化的水对其具有抗微生物活性的微生物。

4.权利要求2的银离子化的植物提取液，其中，抗微生物活性是指能对抗选自细菌、真菌、酵母和藻类的微生物。

5.权利要求2的银离子化的植物提取液，其中，抗微生物活性是指能对抗选自埃希氏菌属(Ecsherichia sp.)、沙门氏菌属(Salmonella sp.)、杆菌属(Bacillus sp.)、葡萄球菌属(Staphylococcus sp.)、弧菌属(Vibrio sp.)、气单胞菌属(Aeromonas sp.)、色素杆菌属(Chromobacteria sp.)、链球菌属(Streptococcus sp.)、乳杆菌属(Lactobacillus sp.)、曲霉属(Aspergillus sp.)、镰刀菌属(Fusarium sp.)、木霉属(Trichoderma sp.)、毛癣菌属(Trichophyton sp.)、小孢子菌属(Microsporum sp.)和念珠菌属(Candida sp.)的微生物。

6.权利要求1的银离子化的植物提取液，其中，所述植物选自竹子、橡树、松树、金钟柏和海藻。

7.制备银离子化的植物提取液的方法，包括通过电解法使得用作电解液的植物提取液中的银离子化的步骤。

8.一种提高抗微生物的植物提取液的抗微生物活性的方法，包括通过电解法使得用作电解液的抗微生物的植物提取液中的银离子化的步骤。

9.一种将抗微生物活性引入到非抗微生物的植物提取液中的方法，包括通过电解法使得用作电解液的非抗微生物的植物提取液中的银离子化的步骤。

10.含有权利要求1的银离子化的植物提取液的抗微生物组合物。

11.权利要求10的抗微生物组合物，其中抗微生物活性是指能对抗植物提取液或银离子化的水对其具有抗微生物活性的微生物。

12.权利要求10的抗微生物组合物，其中抗微生物活性是指能对抗选自细菌、真菌、酵母和藻类的微生物。

13.权利要求10的抗微生物组合物，其中，抗微生物活性是指能对抗选自埃希氏菌属(Ecsherichia sp.)、沙门氏菌属(Salmonella sp.)、杆菌属(Bacillus sp.)、葡萄球菌属(Staphylococcus sp.)、弧菌属(Vibrio sp.)、气单胞菌属(Aeromonas sp.)、色素杆菌属(Chromobacteria sp.)、链球菌属(Streptococcus sp.)、乳杆菌属(Lactobacillus sp.)、曲霉属(Aspergillus sp.)、镰刀菌属(Fusarium sp.)、木霉属(Trichoderma sp.)、毛癣菌属(Trichophyton sp.)、小孢子菌属(Microsporum sp.)和念珠菌属(Candida sp.)的微生物。

14.权利要求10的抗微生物组合物，其中所述组合物是药物组合物。

15.权利要求14的抗微生物组合物，其中所述药物组合物对由选自细菌、真菌、酵母和藻类的微生物引起的疾病有改善或防止作用的活性。

16.权利要求14的抗微生物组合物，其中所述药物组合物对由选自埃希氏菌属(Ecsherichia sp.)、沙门氏菌属(Salmonella sp.)、杆菌属(Bacillus sp.)、葡萄球菌属(Staphylococcus sp.)、弧菌属(Vibrio sp.)、气单胞菌属(Aeromonas sp.)、色素杆菌属(Chromobacteria sp.)、链球菌属(Streptococcus sp.)、乳杆菌属(Lactobacillus sp.)、曲霉属(Aspergillus sp.)、镰刀菌属(Fusarium sp.)、木霉属(Trichoderma sp.)、毛癣菌属(Trichophyton sp.)、小孢子菌属(Microsporum sp.)和念珠菌属(Candida sp.)的微生物引起的疾病有改善或防止作用的活性。

17.权利要求14的抗微生物组合物，其中所述药物组合物对选自肾组织的损伤、斑疹伤寒症、食物中毒、霍乱、肠炎、疔疮、蜂窝织炎、淋巴管炎、瘭疽、中耳炎、肺炎、败血症、炭疽、淋病、结核、梅毒、白喉、伤寒、麻疹、口腔或阴道黏膜发炎、口腔或阴道黏膜瘙痒、口腔或阴道黏膜疼痛、阴道炎、皮肤外伤、牙齿腐蚀、牙周炎和毛癣的疾病有改善或防止的活性。

18.用于改善或防止由微生物引起的有害现象的组合物，该组合物包括权利要求10-13任一项的抗微生物的组合物。

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