JP4634464B2 - 銀イオン化植物抽出液およびその用途 - Google Patents
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Description
本発明の他の目的は、前記銀イオン化植物抽出液を含む抗微生物性組成物を提供することにある。
本発明のその他の目的および具体的な様態などは、以下に提示される。
したがって、本発明の銀イオン化植物抽出液は、より具体的には、電解液としての植物抽出液で銀を電気分解によってイオン化させて得られたものであって、抗微生物性を持つものと説明できる。
よって、銀イオン化が発生する(+)電極は、銀を含有する導体でなければならないが、(−)電極は、必ずしも銀を含有する導体である必要はなく、金属や黒鉛などの導体であるだけでよい。
したがって、本発明の銀イオン化植物抽出液の製造において、電解液として用いる植物抽出液はそれがもともと抗微生物効果を持つかを問わないものと理解されるべきである。
一般に、植物抽出液を得る方法は4つに分類できるが、一つ目は植物に直・間接的に熱を加え、エキスタイプの植物抽出液を得る第1方法であり、二つ目は生きている植物の上部を切り、流れてくるエキスを得る第2方法であり、三つ目は植物を抽出溶媒(例えば、メタノール、蒸留水、エタノール、アセトン、酢酸エチル、飽和n−ブタノール、クロロホルム、塩化メチレン、水、またはこれらの混合溶媒)で抽出して得る第3方法であり、四つ目は植物を乾燥させた後、乾燥した植物を燃焼させ、燃焼の際に発生する気体を冷却させて得る第4方法である。
通常、前記第1方法、第2方法および第4方法は木質部(Xylem)を持つ植物への適用に適する方法であり、第3方法は全ての植物に対して適用できる方法である。
したがって、本発明の銀イオン化植物抽出液の製造において、電解液として用いられる植物抽出液は、それが得られる抽出方法を問わないものと理解されるべきである。
ここで、海藻類とは、海で棲息する藻類(褐藻類、緑藻類、紅藻類などを含む)を意味し、竹、オーク、松、コノテガシワとは、その具体的な種類を問わず、分類学上それぞれ竹、オーク、松、コノテガシワに分類される植物を意味する。
請求の範囲を含む本明細書において、前記「抗微生物性」とは、微生物の生長または増殖を抑制し、或いは微生物を死滅させる性質を意味する。
したがって、前記「微生物」の意味には、下記実施例で直接確認された微生物以外にも、当業者の通常の能力範囲内で、本明細書が開示するところに基づき、本発明の銀イオン化植物抽出液がその抗微生物活性を示すものと予想されるその他の全ての微生物が含まれると理解されるべきである。
本発明の抗微生物性組成物が薬学的組成物として利用される場合、その薬理効果は、本発明の抗微生物性組成物に有効成分として含まれる銀イオン化植物抽出液が抗微生物効果を示す微生物が引き起こす疾病に対する改善または予防効果と把握できるであろう。
本発明の薬学的組成物は、薬学的に許容される担体を用いて製剤化することにより、単位用量の形で、或いは多用量の容器内に入れて製造できる。この際、剤形は溶液、懸濁液、乳化液、エリキシル剤、エキス剤、粉末剤、顆粒剤、錠剤、軟膏などを含むことができる。
本発明の銀イオン化植物抽出液は、様々な微生物に対して抗微生物効果を示すことにより、その微生物が原因となって発生する有害な現象の改善または予防に有用に使用できる。
非導電性の電解槽に前記上澄み原液を入れた後、高純度(99.9%以上)の2本の銀棒に(+)電極と(−)電極を連結し、9Vの電圧をかけて約4分間銀イオン化を誘導して、銀イオンと前記2倍希釈された海藻類抽出液の上澄み原液とが反応するようにした。その結果、濃い褐色の沈殿物が形成されたが、前記電気分解した溶液を遠心分離した後、膜濾過(Pall Corporation;Acrodisc Syringe Filter、0.2μm)させて沈殿物を完全に除去し、最終的に銀イオン化海藻類抽出液を製造した。
<実験例1−1>カンジダ(Candida sp.)に対する抗微生物効果実験
ここで、前記銀イオン水は、前記<実施例10>と同様の方法および条件で、<参考例1>の竹抽出液の代わりに3次蒸留水を用いて製造されたものである。
ここで、前記銀イオン水は、前記<実施例10>と同様の方法と条件で、<参考例1>の竹抽出液の代わりに3次蒸留水を用いて製造されたものである。
実験方法は前記<実験例1−2>と同様であり、その結果は下記<表5>に示した。
本実験に使用されたカンジダ(Candida sp.)は、カンジダクルセイ(Candida krusei)ATCC6258、カンジダパラプシロシス(Candida parapsilosis)ATCC22019、カンジダグラブラータ(Candida glabrata)ATCC90030、カンジダアルビカンス(Candida albicans)ATCC64550およびカンジダアルビカンス(Candida albicans)ATCC90028である。
バクテリアは、LB Brothで初期培養(37℃、12時間)し、カンジダ(Candida sp.)は、SD(Sabouraud Dextrose) Brothで初期培養(30℃、12時間)した後、微生物培地(LB寒天)入りのペトリ皿に、初期培養された100μLの菌株を十分塗抹した後、<参考例2>の木草液、銀イオン水、<実施例20>の銀イオン化木草液12μLを、前記バクテリアが塗抹された微生物培地上に添加した。そして、恒温器で12時間培養した後、バクテリアの生育有無をクリアゾーンで判断して下記<表6>に示した。
ここで、前記銀イオン水は、前記<実施例20>と同様の方法および条件で、<参考例2>の木草液の代わりに3次蒸留水を用いて製造されたものである。
培地(ポテトデキストロース寒天培地、Duchefa)の中心部に菌を移植し、菌が栄養繁殖を始めて円形に確定されるとき、一定の距離をおいてペーパーディスクに25μLの試料、すなわち<参考例2>の木草液、銀イオン水、<実施例10>の銀イオン化木草液を吸収させた後、12時間後に菌が前記試料処理地域へ増殖するか否かを観察し、その結果を下記<表7>に示した。
ここで、前記銀イオン水は、前記<実施例20>と同様の方法と条件で、<参考例2>の木草液の代わりに3次蒸留水を用いて製造されたものである。
実験方法は前記<実験例2−2>と同様であり、その結果は下記<表8>に示した。
バクテリアは、MH(Mueller Hinton) Brothで初期培養(37℃、12時間)し、カンジダ(Candida sp.)はSD(Sabouraud Dextrose) Brothで初期培養(30℃、12時間)した後、微生物培地(MH寒天)入りのペトリ皿に、初期培養された100μLの菌株を十分塗抹した後、<参考例3>の松抽出液、銀イオン水、<実施例21>の銀イオン松抽出液15μLを、前記バクテリアの塗抹された微生物培地上に添加した。そして、恒温器で12時間培養した後、バクテリアの生育有無を形成されたクリアゾーンで判断して下記<表9>に示した。
ここで、前記銀イオン水は、前記<実施例21>と同様の方法と条件で、<参考例3>の松抽出液の代わりに3次蒸留水を用いて製造された。
バクテリアはMH(Mueller Hinton) Brothで初期培養(37℃、12時間)し、カンジダ(Candida sp.)はSD(Sabouraud Dextrose) Brothで初期培養(30℃、12時間)した後、微生物培地(MH寒天)入りのペトリ皿に、初期培養された100μLの菌株を十分塗抹した後、<参考例4>のコノテガシワ抽出液、銀イオン水、<実施例22>の銀イオンコノテガシワ抽出液15μLを、前記バクテリアの塗抹された微生物培地上に添加した。そして、恒温器で12時間培養した後、バクテリアの生育有無を形成されたクリアゾーンで判断して下記<表10>に示した。
ここで、前記銀イオン水は、前記<実施例22>と同様の方法と条件で、<参考例4>の松抽出液の代わりに3次蒸留水を用いて製造された。
前記<実験例1−2>と同様の方法で、細菌と酵母に対する抗微生物効果を調べた。
バクテリアはMH(Mueller Hinton) Brothで初期培養(37℃、12時間)し、カンジダ(Candida sp.)はSD(Sabouraud Dextrose) Brothで初期培養(30℃、12時間)した後、微生物培地(MH寒天)入りのペトリ皿に、初期培養された100μLの菌株を十分塗抹した後、蒸留水で2倍希釈された<参考例5>の海藻類抽出液の上澄み原液(<実施例23>参照)、銀イオン水、<実施例23>の銀イオン化海藻類抽出液15μLを、前記バクテリアの塗抹された微生物培地上に添加した。そして、恒温器で12時間培養した後、バクテリアの生育有無を形成されたクリアゾーンで判断して下記<表11>に示した。
ここで、前記銀イオン水は、前記<実施例23>と同様の方法と条件で、蒸留水で2倍希釈された<参考例5>の海藻類抽出液の上澄み原液の代わりに3次蒸留水を用いて製造された。
下記参照文献は、本明細書の一部を成す。
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Claims (3)
- 電解液としての植物抽出液で電気分解によって銀をイオン化させる段階を含む、抗微生物を有する植物抽出液の抗微生物性を高める方法において、
前記植物は竹、オーク、コノテガシワおよび海藻類よりなる群から選ばれたものであり、
前記抗微生物性はEscherichia sp.、Salmonella sp.、Bacillus sp.、Staphylococcus sp.、Vibrio sp.、Aeromonas sp.、Chromobacterium sp.、Streptococcus sp.、Lactobacillus sp.、Aspergillus sp.、Fusarium sp.、Trichoderma sp.、Trichophyton sp.、Microsporum sp.、およびCandida sp.よりなる群から選択された微生物に対する抗微生物性であることを特徴とする、抗微生物を有する植物抽出液の抗微生物性を高める方法。 - 電解液としての植物抽出液で電気分解によって銀をイオン化させる段階を含む、抗微生物のない植物抽出液に抗微生物性を付加する方法において、
前記植物は松であり、
前記抗微生物性はEscherichia sp.、Salmonella sp.、Bacillus sp.、Staphylococcus sp.、Vibrio sp.、Aeromonas sp.、Chromobacterium sp.、Streptococcus sp.、Lactobacillus sp.、Aspergillus sp.、Fusarium sp.、Trichoderma sp.、Trichophyton sp.、Microsporum sp.、およびCandida sp.よりなる群から選択された微生物に対する抗微生物性であることを特徴とする、抗微生物のない植物抽出液に抗微生物性を付加する方法。 - 電解液としての植物抽出液で電気分解によって銀をイオン化させて得られた銀イオン化植物抽出液を含む抗微生物性組成物において、
前記植物は竹、オーク、松、コノテガシワおよび海藻類よりなる群から選ばれたものであり、
前記抗微生物性はEscherichia sp.、Salmonella sp.、Bacillus sp.、Staphylococcus sp.、Vibrio sp.、Aeromonas sp.、Chromobacterium sp.、Streptococcus sp.、Lactobacillus sp.、Aspergillus sp.、Fusarium sp.、Trichoderma sp.、Trichophyton sp.、Microsporum sp.、およびCandida sp.よりなる群から選択された微生物に対する抗微生物性であることを特徴とする、抗微生物性組成物。
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