CA2584470A1 - Atp-metrie a partir de nucleotides adenyliques intracellulaires pour detecter et denombrer des cellules, utilisation et procede de mise en oeuvre pour la determination de bacteries notamment depourvues d'atp - Google Patents

Abstract

La présente invention a trait à l'utilisation de la bioluminescence selon la réaction (1) : (1) luciférine + ATP + O2 + Mg2+ + luciférase -> oxylucifé rine + photons pour détecter et dénombrer les cellules vivantes d'une espèce donn ée pouvant être présentes dans un échantillon liquide, ladite utilisation étant caractérisée en ce qu'elle met en AEuvre la mesure de la teneur en nucléotid es adényliques (AN) intracellulaires libres totaux, exprimée sous forme d'ATP, de cellules vivantes d'une espèce non virale donnée, en tenant compte du fait q ue la somme des ATP, ADP et AMP intracellulaires libres de ladite famille est constante selon la relation (2) : (2) [AN] = [ATP] + [ADP] + [AMP] = Cte apr ès avoir transformé les ADP et AMP intracellulaires libres en ATP au moyen de myokinase et de pyruvate kinase, ladite mesure étant réalisée (i) sans ajout d'ATP et (ii) après ajout d'une quantité connue d'ATP. Elle concerne égaleme nt un procédé pour détecter et dénombrer les cellules par ATP-métrie.

Description

ATP-métrie à paj=tir de raucléotides adényliques intracellulaires pouj=
détecter et dénombrer des cellules, utilisatiofl et ps=océdé de mise en ceuvre pour la détermination de bactéries notamment dépourvues d ATP
Donzaine de l'invefation La présente invention a trait à une nouvelle technique d'ATP-métrie à partir de nucléotides adényliques (AN) intracellulaires libres pour détecter et dénombrer des cellules. Elle concerne également l'utilisation de cette nouvelle technique et un procédé de mise en oeuvre pour la détermination de bactéries notamment celles qui sont dépourvues d'ATP.
Art antérieur On sait l'ATP-métrie, qui est fondée sur la réaction :
(1) luciférine + ATP + 02 + Mgz++ luciférase -> oxyluciférine + photons, permet de mesurer efficacement la teneur en ATP d'un milieu. Cette réaction est spécifique de l'ATP, quel que soit le système utilisé luciférine (substrat)/luciférase (enzyme). Elle permet de distinguer les cellules mortes (dépourvues d'ATP) des cellules vivantes quand celles-ci contiennent de l'ATP.
Dans le passé, on a cru (en vain) que la connaissance de la teneur en ATP intracellulaire provenant de la lyse de bactéries d'une même espèce pourrait permettre de détecter et dénombrer la population (i. e. nombre de souches par unité de volume) desdites bactéries. Voir à cet effet les

2 5 publications US 6200767 B, EP 1333097 A, US 6465201 B, Stender H. et al., Journal of Microbilogical Methods, 2001; 46: 69-75, et Lee J-Y. et al., Luminescence 2004;19: 31-36.
Les méthodes décrites dans ces publications sont efficaces pour l'étude de bactéries provenant d'une même culture de collection et se trouvant toutes à un même état de développement (i.e. des bactéries qui ne sont pas au repos et contiennent toute la même teneur en ATP). En revanche, elles sont inefficaces vis-à-vis de pratiquement toutes les autres bactéries que l'on rencontre en particulier dans la nature, à savoir notamment (i) les bactéries qui ne contiennent pas d'ATP (c'est le cas bactéries qui sont sous forme de spores, c'est à dire au repos), et (ii) des bactéries qui se trouvent à des états de développements différents et qui de ce fait n'ont pas chacune la même teneur en ATP.
Or on sait que, à l'intérieur d'une même espèce ou variété de cellules, la teneur en AN intracellulaires libres totaux est constante, eu égard à la relation (2) :

(2) [AN] = [ATP] + [ADP] + [AMP] = Cte Voir à cet effet l'article de Champiat D. et al., Luminescence, 2001;16:193-198, où il est proposé, d'une part, de transformer l'AMP et, respectivement, l'ADP en ATP au moyen de pyruvate kinase et, respectivement, de myokinase, et d'autre part, de mesurer la lumière émise (en RLU, i.e. en unité relative de lumière) sans ajout puis après ajout de 10 L d'ATP
supplémentaire.
Par ailleurs dudit article de Champiat D., on connaît une technique d'évaluation de la présence de contaminants, tels que les microorganismes (notamment les bactéries), dans un échantillon aqueux provenant de l'eau de mer, de l'eau de boisson ou d'un aliment. Cette technique comprend la mise en contact d'un échantillon à tester avec l'ensemble luciférine + luciférase 2 0 pour mesurer la lumière émise (i. e. mesurer avec amplification les photons produits) par la réaction (1) précitée en présence de microorganismes libérant de l'ATP, de l'ADP et/ou de l'AMP, avec transformation des ADP
et AMP en ATP, d'une part, et avec et sans ajout d'ATP supplémentaire, d'autre part. Ledit article ne décrit ni ne suggère que cette technique est applicable à la détection et au dénombrement des cellules contenant au moins un des trois AN. En effet cet article ne vise que la mesure en RLU de la lumière émise sans penser pouvoir corréler les valeurs obtenues à la teneur en AN intracellulaires libres totaux puis au nombre de cellules ayant fourni lesdits AN intracellulaires libres totaux, ni suggérer cette corrélation.

3 0 But de l'invention Il existe un besoin en ce qui concerne une technique permettant de détecter et de dénombrer les cellules, notamment les bactéries, les moisissures et les algues microscopiques, rapidement, efficacement et de façon nettement moins onéreuse que les méthodes EIA, RIA, FIA et PCR
actuellement préconisées.

Ce besoin se manifeste avec acuité quand on veut entreprendre la numération de microorganismes dépourvus d'ATP ou d'AN.
On se propose donc de fournir une nouvelle solution technique mettant en oeuvre une ATP-métrie portant sur l'ensemble des AN
intracellulaires libres totaux, exprimés sous forme d'ATP, pour satisfaire ce besoin.
Objet de l'inventi n La présente invention permet de satisfaire ledit besoin pour toutes les cellules à l'exclusion des virus qui ne contiennent pas d'ATP (en fait les virus, qui n'ont pas d'AN, utilisent pour se développer l'ATP des cellules qu'ils infectent).
Selon un premier aspect de l'invention, on fournit une utilisation de la bioluminescence selon la réaction (1) :

(1) luciférine + ATP + 02 + Mg2+ + luciférase --> oxyluciférine + photons, pour détecter et dénombrer les cellules vivantes d'une espèce donnée ,pouvant être présentes dans un échantillon liquide, ladite utilisation étant caractérisée en ce qu'elle met en oeuvre la mesure de la teneur en 2 0 nucléotides adényliques (AN) intracellulaires libres totaux, exprimée sous forme d'ATP, de cellules vivantes d'une espèce non virale donnée, en tenant compte du fait que la somme des ATP, ADP et AMP intracellulaires libres de ladite famille est constante selon la relation (2) 2 5 (2) [AN] = [ATP] + [ADP] + [AMP] = Cte, après avoir transformé les ADP et AMP intracellulaires libres en ATP au moyen de myokinase et de pyruvate kinase, ladite mesure étant réalisée (i) sans ajout d'ATP et (ii) après ajout d'une quantité connue d'ATP.
3 o Selon un second aspect de l'invention, on fournit un procédé pour détecter et dénombrer les cellules d'une espèce non virale donnée susceptibles d'être présentes dans un échantillon liquide (E), notamment des bactéries, par une méthode de bioluminescence selon la réaction (1) 3 5 (1) luciférine + ATP + O2 + Mg2* + luciférase -> oxyluciférine + photons

4 ledit procédé, qui s'appuie sur le fait que pour une cellule vivante d'une espèce non virale donnée, la somme des nucléotides adényliques (AN) intracellulaires est constante selon la relation (2) (2) [AN] = [ATP] + [ADP] + [AMP] = Cte étant caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes consistant à:
(1 ) isoler et concentrer les cellules de ladite espèce donnée susceptibles d'être présentes dans l'échantillon (E), après avoir éliminer les AN extracellulaires pouvant être contenus dans ledit échantillon ;
(2 ) lyser la paroi des cellules ;
(3 ) traiter le milieu liquide résultant pour transformer les ADP et AMP intracellulaires qu'il contient et qui proviennent desdites cellules en ATP ;
(4 ) introduire dans le milieu résultant de l'étape (3 ) une luciférine et une luciférase, d'abord (i) sans ajout d'ATP, puis (ii) après ajout d'une quantité connue d'ATP ;
(5 ) mesurer le signal amplifié de la lumière émise par la réaction (1) sans ajout d'ATP, puis après ajout d'une quantité connue d'ATP ;
et (6 ) déterminer la teneur en AN totaux intracellulaires libres sous la forine d'ATP, par comparaison avec la reproduction des étapes (1 ) à(5 ) avec une population connue desdites cellules.
Selon un autre aspect de l'invention, on fournit une utilisation dudit procédé pour la numération de bactéries sous forme de spores qui de ce fait sont dépourvues d'ATP, d'une part, et un nécessaire de dosage pour mettre en uvre ledit procédé, d'autre part.
Ledit nécessaire de dosage est caractérisé en ce qu'il comprend l'ensemble luciférine/luciférase de luciole, de l'ATP pour l'ajout dosé, de la myokinase, de la pyruvate kinase, et le cas échéant de la pyruvate orthophosphate dikinase et/ou de l'adénosine phosphate déaminase.
Abréviations Par commodité, la liste des abréviations et acronymes utilisés dans la présente invention a été fournie ci-après.
ADP adénosine diphosphate, AMPadénosine monophosphate, AN nucléotide adénylique (autre nomenclature utilisable : adénosine

5 nucléotide), l'ensemble des AN comprend ici les ATP, ADP et AMP, ATP adénosine triphosphate, cAMP adénosine monophosphate cyclique, GDP guanosine diphosphate, GTP guanosine triphosphate, RLU unité relative de lumière.
Description détaillée de l'invention L'échantillon (E), qui est une composition liquide aqueuse ou organique, est avantageusement une composition aqueuse, et les cellules à
tester sont avantageusement des bactéries. Cet échantillon (E) provient d'un prélèvement gazeux [notamment par barbotage], solide [notamment par contact, dissolution ou dispersion] ou liquide [notamment par extraction, dissolution ou émulsion] au moyen d'un liquide qui est avantageusement aqueux.
2 o La réaction (1) précitée fournit de l'oxyluciférine, des photons, de l'AMP et un ou plusieurs phosphates, principalement le pyrophosphate. Elle.
est caractéristique du vivant, dès lors que l'ATP intracellulaire libéré dans le milieu réactionnel n'a pas une longue durée de vie. Elle est spécifique de l'ATP, la luciférine et la luciférase étant à une concentration optimale, le nombre de photons émis dès que ces trois substances sont en présence, est directement proportionnel à la quantité d'ATP. Dans l'organisme et ledit milieu réactionnel, l'ATP extracellulaire disparaît relativement rapidement, soit par réutilisation, soit principalement par dégradation.
Par AN intracellulaires libres, on entend ici les AN présents à l'état 3 0 libre dans la cellule, plus précisément dans le cytoplasme. L'invention ne s'intéresse donc pas aux AN non libres que l'on trouve dans la cellule et qui sont liés au niveau du DNA ou RNA.
L'ATP intervient dans la cellule en tant que source d'énergie (énergie mécanique, énergie osmotique, énergie chimique, énergie calorique, énergie lumineuse) donneur de phosphate, donneur de pyrophosphate, donneur

6 d'AMP et donneur d'adénosine.
La teneur en ATP dans les cellules d'une même espèce varie fortement selon l'état physiologique; le seuil de détection se limite en général à 103 bactéries. Selon l'invention, on va atteindre une meilleure sensibilité qui va de 1 attomole d'ATP (sans stabilisation du signal lumineux émis) jusqu'à
0,5 attomole d'ATP (avec stabilisation dudit signal), ce qui correspond approximativement au contenu moyen en AN intracellulaires libres totaux d'une bactérie.
Quand on considère la relation (2), on néglige ici la teneur intracellulaire d'adénosine monophosphate cyclique (cAMP) libre, qui est le précurseur intervenant dans la synthèse de l'AMP, car (i) la concentration intracellulaire de ce produit est relativement faible et surtout (ii) la technique telle que proposée plus loin implique la transformation de l'ADP
en AMP puis de l'AMP en ATP, ce qui diminue ladite teneur en cAMP.
On utilise selon l'invention le principe bien connu de la luciole (Pliotinus pyralis), qui fonctionne avec un enzyme (luciférase), un substrat luminophore (luciférine) et un coenzyme (en l'occurrence l'ATP). Le résultat est souvent affiché au photomètre (ou luminomètre) en RLU, qui bien que proportionnel à la quantité d'ATP, ne permet pas de déterminer 2 0 d'un.échantillon à l'autre la concentration réelle en ATP.
Pour remédier à cette difficulté, on préconise l'apport d'une quantité
connue (par exemple 102 à 10 pmol d'ATP), après la première lecture (entreprise sans apport d'ATP). Cependant, la technique de l'apport dit dosé
ne permet pas une détermination quantitative de la numération car la teneur en ATP dans lesdites cellules ne reste pas constante : il y a un "turnover"
rapide en fonction de l'état physiologique.
En revanche, les cellules d'une espèce donnée présentent toutes la même teneur en AN. Selon l'invention, en déterminant la teneur en AN, exprimée sous forme d'ATP, on va pouvoir réaliser des déterminations 3 0 quantitatives pour la numération des cellules différentes des virus.
De façon avantageuse, l'étape (1 ) du procédé de l'invention, qui est relative à l'isolation et concentration, est effectuée par = filtration sur membrane, = évaporation-centrifugation, notamment sous vide et à température ambiante (15-25 C), et/ou

7 immunocapture.
La technique d'immunocapture est préférée. Elle permet la concentration et la purification des cellules par fixation de celles-ci au moyen d'anticorps immobilisés. De façon pratique, ces anticorps peuvent être dirigés contre des antigènes de surface des cellules sans détruire lesdites cellules. De façon également pratique, ces anticorps sont immobilisé sur des billes de latex magnétique en vue de la concentration et de la purification des produits de conjugaison du type cellule-anticorps-bille dans un champ magnétique et du recueil desdits produits de conjugaison.
En variante, des billes non magnétiques ou non magnétisables, liées aux anticorps qui fixent les cellules, permettent également, par décantation, la concentration et la purification des cellules. En variante également, le stade de concentration/purification peut être réalisé sur colonne d'affinité.
Lesdits produits de conjugaison sont ensuite séparés, si nécessaire, notamment par élution, pour disposer d'une composition liquide concentrée de cellules qui ne sont plus liées aux anticorps. Le cas échéant, pour limiter les dilutions qui diminuent la sensibilité, il peut être judicieux de concentrer ladite coinposition liquide au moyen d'un dispositif d'évaporation-centrifugation (opérant de 2000-10000 tours/15 minutes à 2000-10000 2 0 tours/1 minute), qui permet de sécher un grand nombre d'échantillons en quelques minutes, sans perte de produits. L'évaporation-centrifugation à
température ambiante offre l'avantage de pouvoir éliminer la majeur partie de l'eau du milieu contenant les cellules.
De façon également avantageuse, l'étape (2 ) relative à la lyse de la 2 5 paroi cellulaire est réalisée dans le milieu résultant de l'étape (1 ) par addition d'un tampon aqueux contenant (i) Tris plus EDTA, et/ou (ii) DMSO, puis (a) traitement au micro-onde (pendant environ 1 minute) pour ouvrir 3 0 les cellules, (b) refroidissement rapide (notamment au réfrigérateur) et, si nécessaire, (c) centrifugation pour recueillir le milieu liquide résultant.
La lyse est requise afin de pouvoir accéder aux AN intracellulaires libres, transformer les ADP et AMP en ATP et mettre en contact l'ATP
résultant de ladite lyse et/ou de ladite transformation avec le substrat 35 (luciférine) et l'enzyme (luciférase).

8 PCT/FR2005/002595 Comme indiqué plus haut, l'étape (3 ) relative à la transformation des ADP et AMP en ATP est réalisée au moyen de myokinase et de pyruvate kinase. Les mécanismes réactionnels sont les suivants myokinase (3) AMP + ATP 2ADP
myokinase (3a) AMP + GTP --~ ADP + GDP
coo O pyruvate kinase I00 (4) i -O-P-O - i =0 CH2 O ~ CH3 ADP ATP
phosphoénolpyruvate pyruvate Pour gagner du temps, l'étape (3 ) du procédé de l'invention relative à
la transformation des ADP et AMP en ATP peut être mise en ceuvre en même temps que l'étape (2 ).
De façon avantageuse, l'étape (4 ) du procédé de l'invention est mise en uvre avec la luciférine et là luciférase de luciole (Photinus pyralis). Le substrat et l'enzyme sont susceptibles d'être extraits ensemble de la luciole.
De façon pratique, il-est recommandé de réaliser l'étape (5 ) relative à
la mesure de la lumière émise par la réaction (1) en présence d'une substance stabilisant l'émission de photons à une valeur sensiblement constante pendant au moins 10 minutes. Parmi les substances qui conviennent à cet effet, on peut mentionner :
= la pyruvate orthophosphate dikinase (PPDK) qui transforme l'AMP et le pyrophosphate, produits au cours de la réaction (1) précitée, en ATP, et = l'adénosine phosphate déaminase, qui dégrade l'ADP et/ou l'AMP résiduels pouvant être présents dans le milieu réactionnel.
Le premier enzyme fournit un signal stable en régénérant l'ATP de façon sensiblement continue. Le second enzyme permet de diminuer le bruit de fond dû à la présence résiduelle d'ADP et/ou d'AMP, sans que le processus d'utilisation de l'ATP comme source d'énergie lumineuse soit perturbé.

9 Ledit second enzyme, l'adénosine phosphate déaminase, est plus avantageusement utilisé pour éliminer les résidus de nucléotides dans le milieu réactionnel et plus particulièrement pour écarter en les détruisant les résidus de nucléotides extracellulaires présents le cas échéant dans l'échantillon lors de l'étape (1 ) précitée.
En pratique, pour stabiliser l'émission de photons conformément à la réaction (1), on recommande plus particulièrement l'utilisation de PPDK à
l'étape (5 ).
Le procédé de l'iizvention est particulièrement adapté à la détection et à la numération (i) des bactéries sporulées, telles que l'anthrax, et (ii) des légionelles, des salmonelles et d'autres organismes unicellulaires tels que les amibes.
D'autres avantages et caractéristiques de l'invention seront mieux compris à la lecture qui va suivre d'exemples de réalisation. Bien entendu, ces éléments ne sont pas limitatifs, mais sont fournis à titre d'illustration.
Exemple 1 Numération d'Antrax A partir d'un prélèvement de 1 L d'air contenant des souches d'anthrax, à dénombrer, on obtient un échantillon aqueux par barbotage. On procède à l'immuno-capture des souches présentes au moyen d'une colonne comportant des anticorps polyclonaux anti(anthrax) immobilisés. On recueille les souches d'anthrax ainsi purifiées et concentrées dans un volume réduit de tampon aqueux. On concentre encore par évaporation-centrifugation sous vide à température ambiante. On élimine les résidus de nucléotides tels que les AN, susceptibles d'être présents dans le milieu aqueux résultant, au moyen d' adrénosine phosphate déaminase qu' on inactive ensuite.
On procède à la lyse de la paroi des souches d'anthrax par addition de Tris et d'EDTA puis passage au micro-onde. Par centrifugation on recueille le milieu liquide qui contient les AN intracellulaires. On ajoute de la myokinase et de la pyruvate kinase pour transformer les AMP et ADP en ATP. On ajoute la luciférine de luciole et la leuciférase de luciole avec de la PPDK pour stabiliser l'émission de photons.
On mesure les photons multipliés au moyen d'un dispositif connu en unités RLU. On ajoute 2 l d'ATP et remesure les photons multipliés en unité RLU.
On reproduit le même mode opératoire à partir d'une quantité connue (50 souches) d'anthrax, et détermine que le litre d'air de départ contenait 65 souches d'anthrax.
5 Exenzple 2 Numération de Streptococcusfaecalis A partir du sol d'une bergerie présumée infectée par des Streptococcus faecalis, on procède comme indiqué à 1'exelnple 1.
On observe que le sol contient 260 CFU/L de Streptococcusfaecalis.

10 Exemple 3 Mise au point d'un protocole pour l'identification de légionnelles T- Obtention du rapport NA/Cellule pour bactéries en culture pure A - Etâ.blissement d'une relation intensité du signal/nombre de légionelles L'objectif est d'obtenir une valeur moyenne des AN par cellule de Legionella pneumophila vivante pour réaliser un dénoinbrement par culture et choisir les conditions opératoires optimales.
Paramètres étudiés :
Température ambiante Conditions de tampon Tr'is 2 0 pH 7,75 Conditions de lyse 100 1 DMSO puis 500 1 Tris pH7.75 ou 600 1 Tris bouillant (micro-onde 3mn) Volume réactionnel 200 l Échantillon avec lUI Pyruvate Kinase et 1 UT Adénylate kinase+ PEP
2 5 (temps : 10 min) Ajout de 10 l LL (complexe luciférine/luciférase de luciole) Temps d'acquisition du signal 10 secondes (RLU NA) Ajout de 10 l ATP (100 pmole) 10 secondes (RLU NA+ATPs) Après immunoséparation : le résultat final est obtenu en moins 3 0 de 15 minutes B - Essais sur bactéries immobilisées sur billes magnétiques Paramètres étudiés :
Nature de la bille magnétique.
35 Conditions de tampon de capture.

11 Conditions de lyse sur microbilles.
Etude de sensibilité.
Objectifs :
- évaluer les interférences du signal avec les billes magnétiques de différentes natures (silice, polystyrène, ferrofluide...) - nécessité ou pas de séparer les microbilles des légionelles avant la mesure (élution).

11- Obtention et optimisation du signal sur bactéries en conditions naturelles A - Evaluation du niveau de bruit de fond des échantillons Paramètres étudiés :
Nature de l'échantillon.
Conditions de capture dans l' échantillon.
Conditions de lavage des microbilles.
Etude de sensibilité.
Objectifs :
- évaluer les interférences du signal avec la nature de l' échantillon : eaux chaudes sanitaires, eaux de tours aéroréfrigérées, eaux de rivières, eaux deionisées, et 2 0 - mise au point des conditions de lavage des billes après capture afin de lever ces interférences B -Essais sur échantillons naturels et optimisation B 1 - Concentration Les échantillons d'eaux brutes sont préalablement concentrés (volume de 50 ml à 11 ramené à 1-5 ml). Cette étape, permet d'augmenter la sensibilité et d'économiser les moyens d'immunoséparation (IMS).
Les échantillons utilisés sont concentrées soit - par centrifugation, - par filtration, 3 0 - par séparation magnétique avec ApoH, et/ou - par séparation magnétique sur billes de silice Dans le cas des légionnelles, c'est cette dernière technique de concentration qui est préférée car les légionnelles peuvent être libérées de la liaison avec les billes et permet une immunocapture IMS optimisée.

12 La concentration et la récupération des complexes billes-légionnelles peuvent s'effectuer par différentes techniques connues dans l'art. Les légionnelles libérées des billes magnétiques sont remises en suspension pour subir le protocole d'IMS optimisé comme suit :
B2 - Optimisation du protocole après capture dans 1 ml Les paramètres intervenant dans la capture sont les suivants - L'anticorps de capture : anti-Lp l- l 4 ou anti-Lpl.
- Le tampon d'IMS.
- La charge en anticorps à la surface de la bille.
- Volume de billes.
- Le nombre de lavages après la capture.
- Le temps d'incubation.

B3 - Application du protocole de capture à des volumes allant de 1 à 5 ml.
Le protocole optimisé pour un volume de 1 ml sera appliqué à des volumes crôissants allant de 1 à 5 ml.
Selon les rendements de capture obtenus, il est nécessaire d'ajuster certains paramètres tels que le volume de billes ou le temps d'incubation.
B4 - Quantification - Une fois l'étape d'immunocapture terminée, on récupère les billes (par 2 0 aimantation) avec les Legionella pneumoplzila (mortes ou vivantes).
- Les billes sont mises dans la solution de lyse qui peut étre :
100 l de DMSO que l'on agite 30 secondes puis on rajoute 500 l de tampon Tris pH 7,75, 600 l de tampon Tris EDTA que l'on porte à ébullition entre 1 à 2 2 5 min au micro-onde.
- Après refroidissement si nécessaire, on rajoute 10 gl d'une solution contenant les enzymes de la transformation de l'AMP et ADP en ATP soit la PK et l'AK à raison de 1-3 UI
30 les sels du tampon Tris (Mg et K) le phosphoénol pyruvate.
- Incuber 5 à 10 mn à température ambiante (15-25 C).
- Répartir dans 3 tubes à raison de 200 l/tube.

13 - Injecter 10 l du complexe luciférine-luciférase (de la Sté
Controlife).
- Introduire le tube dans le luminomètre.
- Intégrer 10 secondes les RLU = RLU NA
- Injecter immédiatement après, 10 l de solution standard d'ATP [10 à
100 pmoles].
- Intégrer 10 secondes les RLU = RLU NA+ATPs.
- On calcul ainsi la quantité de picomoles de NA en équivalent ATP
dans l'échantillon.
- Avec la concentration de AN/légionnelle connue, on calcul la quantité
de légionnelles vivantes (le poids moléculaire de l'ATP est de 551).
La durée de la manipulation, du prélèvement au résultat final, ne dépasse pas les 60 minutes pour la détection de 101égionnelles vivantes.
III- Détermination globale d'une biomasse ramenée en équivalent Legionella ou E. coli Il s'agit là d'une méthode dérivée de la précédente qui permet de faire du screening rapidement et économiquement. Ainsi par exemple :
(a) On veut contrôler si une tour aéroréfrigérée présente plus de 10001égionnelles/1 :
2 0 o On concentre les légionnelles a.vec les billes magnétiques en silice.
o Les billes sont directement plongées dans 100 l de DMSO et le dosage est effectué comme précédemment.
o Si les valeurs obtenues sont inférieures à 1000 équivalent légionnelles, il n'est pas nécessaire de faire une énumération spécifique (gain de temps et de coût) et d' intervenir.
o On peut se fixer une valeur seuil d'intervention par exemple 1500 équivalents légionnelles.
(b) On veut contrôler si une eau de baignade a moins de 100 E.coli o Dans ce cas on préférera la concentration par les billes magnétiques avec la protéine ApoH, qui en plus de sa faculté
d'interaction avec de multiples micro-organismes est déjà
intéressante, présente une caractéristique qui la rend encore plus précieuse dans le domaine du diagnostic médical : elle

14 reconnait seulement les pathogènes à l'état infectieux, c'est-à-dire en cours de multiplication.
o Le cheminement sera le même que précédemment.
Globalement, cette démarche ne correspond pas à une énumération spécifique. Elle offre néanmoins l'avantage de réduire la durée des manipulations et le coût. Ce qui est intéressant ici c'est de ramener la détermination d'une valeur à celle d'un équivalent.
Exeinple 4 Corrélation entre AN et cellules Selon le protocole établi à l'exemple 3, on a étudié avec la souche ArtlarobacteY NS48 l'évolution du rapport AN/cellule en fonction de la durée de culture de cette souche, la population bactérienne étant au départ de 5.106 cellules/ml et de 3,5.108 cellules/ml.
Les résultats obtenus sont consignés dans la Figure 1, ci-après dans le diagramme femtogramme (1 fg = 10"15 g) de AN par cellule bactérienne (en ordonnées), en fonction de la durée de culture en heures (en abscisses), en l'absence de NaCI (courbe 1) et en présence de 7 % (p/v) de NaCI (courbe 2). On constate que la variation de AN est de 2,2 à 2,5 fg par cellule entre les courbes 1 et 2 : ces deux courbes sont pratiquement équivalentes et sensiblement horizontales.
Exenzple 5 Comparaison des rapports ATP/cellule et AN/cellule Selon ledit protocole établi à l'exemple 3, on a procédé à la corrélation entre le rapport ATP/cellule [où la teneur en ATP est variable dans le temps, seule la teneur en AN totaux pour une espèce bactérienne donnée est constante eu égard à l'équation (2) précitée].
Les résultats statistiques obtenus sont consignés dans le tableau I qui suit. Ils mettent en évidence qu'il y a une meilleure corrélation pour les valeurs du rapport AN/cellule que pour le rapport ATP/cellule. Cette corrélation est constante dans le cas des AN quel que soit l'état physiologique de la cellule et de son environnement. Il n'est pas nécessaire de faire des abaques, il suffit en première approximation de tenir compte pour les AN et le rapport AN/cellule d'une valeur moyenne obtenue après de nombreuse cultures de l'organisme souhaité.
Par exemple pour E. coli, la valeur moyenne est de 5,27 fg de Na/cellule quelle que soit la phase de croissance, alors que dans le même temps la teneur en ATP varie de 0,1 à 1,5 fg/cellule.

5 Tableau I

Souches ATP/cellule AN/cellule Staphyloccocus aureus(a) (c) y = 2,4x + 472 y = 10,5x + 2062 r = 1,5x - 473 r= 0,99 Escherichia coli (b) (c) y = 1,5x - 473 y = 6x -6375 r = 0,932 r = 0,987 Pseudomonas aeruginosa (b) (d) y = 2,4x - 251 y= 19x - 2015 r = 0,965 r = 0,995 Vibrio natriegenes (b) (d) y= 1,7x + 453 y= 8x - 508 r=0,97 r=0,99 Bacillus cereus (b) (d) y= 2,4 + 1809 y=1,3x -3,5 r=0,94 r= 1 Notes (a) souche du CHU de Clermont-Ferrand (b) souche ATCC
(c)

Claims (12)

1.Utilisation de la bioluminescence selon la réaction (1):
(1) luciférine + ATP + O2 + Mg2+ + luciférase .fwdarw. oxyluciférine + photons pour détecter et dénombrer les cellules vivantes d'une espèce donnée pouvant être présentes dans un échantillon liquide, ladite utilisation étant caractérisée en ce qu'elle met en oeuvre la mesure de la teneur en nucléotides adényliques (AN) intracellulaires libres totaux, exprimée sous forme d'ATP, de cellules vivantes d'une espèce non virale donnée, en tenant compte du fait que la somme des ATP, ADP et AMP intracellulaires libres de ladite famille est constante selon la relation (2):

(2) [AN] = [ATP] + [ADP] + [AMP] = Cte après avoir transformé les ADP et AMP intracellulaires libres en ATP au moyen de myokinase et de pyruvate kinase, ladite mesure étant réalisée (i) sans ajout d'ATP et (ii) après ajout d'une quantité connue d'ATP.

2. Procédé pour détecter et dénombrer les cellules d'une espèce non virale donnée susceptibles d'être présentes dans un échantillon liquide (E), notamment des bactéries, par une méthode de bioluminescence selon la réaction (1) (1) luciférine + ATP + O2 + Mg2+ + luciférase .fwdarw. oxyluciférine + photons ledit procédé, qui s'appuie sur le fait que pour une cellule vivante d'une espèce non virale donnée, la somme des nucléotides adényliques (AN) intracellulaires est constante selon la relation (2) :
(2) [AN] = [ATP] + [ADP] + [AMP] = Cte étant caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes consistant à:
(10) isoler et concentrer les cellules de ladite espèce donnée susceptibles d'être présentes dans l'échantillon (E), après avoir éliminer les AN extracellulaires pouvant être contenus dans ledit échantillon ;
(2~) lyser la paroi des cellules ;
(3~) traiter le milieu liquide résultant pour transformer les ADP et AMP intracellulaires contenus dans ledit milieu liquide en ATP ;
(4~) introduire dans le milieu résultant de l'étape (3 ~) une luciférine et une luciférase, d'abord (i) sans ajout d'ATP, puis (ii) après ajout d'une quantité connue d'ATP ;
(5~) mesurer le signal amplifié de la lumière émise par la réaction (1) sans ajout d'ATP, puis après ajout d'une quantité connue d'ATP ;
et (6~) déterminer la teneur en AN totaux intracellulaires libres sous la forme d'ATP, par comparaison avec la reproduction des étapes (1~) à (5~) avec une population connue desdites cellules.

3. Procédé suivant la revendication 2, notamment destiné à la détection quantitative d'une bactérie (B), ledit procédé étant caractérisé en ce que l'étape (1~) d'isolation et de concentration est effectuée par filtration sur membrane, évaporation-centrifugation, notamment sous vide, et/ou immunocapture.

4. Procédé suivant la revendication 2, notamment destiné à la détection quantitative d'une bactérie (B), ledit procédé étant caractérisé en ce que l'étape (2~) de la lyse de la paroi cellulaire est réalisée dans le milieu résultant de l'étape (1~) par addition d'un tampon aqueux contenant (i) Tris plus EDTA, et/ou (ii) DMSO, puis (a) traitement au micro-onde pour ouvrir les cellules, (b) refroidissement rapide et, si nécessaire, (c) centrifugation pour recueillir le milieu liquide résultant.

5. Procédé suivant la revendication 2, notamment destiné à la détection quantitative d'une bactérie (B), ledit procédé étant caractérisé en ce que l'étape (3~) de la transformation des ADP et AMP en ATP est réalisée au moyen de myokinase et de pyruvate kinase.

6. Procédé suivant la revendication 2, notamment destiné à la détection quantitative d'une bactérie (B), ledit procédé étant caractérisé en ce que l'étape (3°) est mise en oeuvre en même temps que l'étape (2°).

7. Procédé suivant la revendication 2, notamment destiné à la détection quantitative d'une bactérie (B), ledit procédé étant caractérisé en ce que :
l'étape (4°) est mise en oeuvre avec la luciférine et la luciférase de luciole (Photinus pyralis).

8. Procédé suivant la revendication 2, notamment destiné à la détection quantitative d'une bactérie (B), ledit procédé étant caractérisé en ce que l'étape (5°) de mesure de la lumière émise par la réaction (1) est réalisée en présence d'une substance stabilisant l'émission de photons à une valeur sensiblement constante pendant au moins 10 minutes.

9. Procédé suivant la revendication 2, notamment destiné à la détection quantitative d'une bactérie (B), ledit procédé étant caractérisé en ce que :
l'étape (6°) est mise en oeuvre par comparaison avec un système d'abaques établi à partir de plusieurs populations connues desdites cellules et de leurs teneurs en AN totaux intracellulaires libres exprimées sous forme d'ATP.

10. Procédé suivant l'une quelconque des revendications 2 à 9, caractérisé
en ce que le seuil de sensibilité est de 0,5 à 1 attomole d'ATP.

11. Utilisation du procédé selon l'une quelconque des revendications 2 à
pour la numération des bactéries sous forme de spores.

12. Nécessaire de dosage mettant en aeuvre le procédé selon l'une quelconque des revendications 2 à 10, caractérisé en ce qu'il comprend l'ensemble luciférine/luciférase de luciole, de l'ATP pour l'ajout dosé, de la myokinase, de la pyruvate kinase, et le cas échéant, de la pyruvate orthophosphate dikinase.