"Procédé pour stabiliser un Facteur de Nécrose Tumorale
et solution aqueuse ou poudre stables contenant ce facteur" La présente invention concerne un procédé pour stabiliser un Facteur de Nécrose Tumorale et une solution aqueuse ou une poudre stables contenant ce facteur.
Plus particulièrement, l'invention concerne un procédé pour stabiliser un Facteur de Nécrose Tumorale, dans lequel on ajoute une protéine spécifique à une solution aqueuse ou à une poudre contenant un Facteur de Nécrose Tumorale ainsi qu'une solution aqueuse ou une poudre contenant un Facteur de Nécrose Tumorale et une quantité efficace d'une telle protéine spécifique.
Carswell et coll. ont découvert un Facteur de
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plifier par l'abréviation "TNF"). Ils ont indiqué que le TNF est une substance présente dans le sérum des souris, des rats ou des lapins traités par une endotoxine, qui ont été sensibilisés avec
un immunopotentiateur tel q ue le bacille de Calmette et Guérin
(BCG), des corynébactéries ou du Zymosan, et que le TNF provoque une nécrose de diverses tumeurs transplantées à la souris sans effet toxique surle receveur portant la tumeur [voir Proc. Nat. Sci. Etats-Unis d'Amérique, 72 (9), 3666-3670 (1975)].
Ensuite, de nombreux articles ont été publiés relativement aux propriétés biochimiques et physiologiques du TNF de souris et du TNF de lapin [voir par exemple Proc. Nat. Acad. Sci.
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47, 53-60 (1979); Br. J. Cancer, 38, 302-309 (1978) et ibid., 42,
416-422 (1980)]. Il convient de noter qu'un facteur cytotoxique
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également mentionné par certains chercheurs [voir par exemple
Infect. Immun., 28(1), 204-211 (1980)].
La production in vitro de TNF a également été mentionnée. Par exemple, Matthews a déterminé et indiqué les conditions optimales dans lesquelles le TNF est produit in vitro par les phagocytes mononucléaires à partir de divers tissus de lapins normaux et de lapins ayant reçu une injection de BCG (voir Br. J. Cancer,
44, 418-424 (1981)]. Selon cette publication, les quantité optimales de TNF sont produites par les phagocytes mononucléaires en présence d'une endotoxine et les macrophages alvéolaires et péritonéaux sont les producteurs les plus puissants de TNF. De plus, selon cette publication, les macrophages de lapins ayant reçu une injection de BCG produisent nettement plus de TNF que ceux des animaux
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d'exsudat péritonéal enrichi en macrophages de souris ayant reçu une injection de BCG libèrent un facteur cytotoxique lorsqu'on les stimule in vitro avec un lipopolysaccharide (endotoxine)
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156-164 (1981)].
En ce qui concerne les propriétés caractéristiques du TNF, on sait que le TNF, en plus de son activité d'induction de. la nécrose de diverses tumeurs, exerce une activité non spécifique de l'espèce des animaux. Par exemple, le TNF de lapin peut provoquer la nécrose des tumeurs de la souris. De plus, on sait que le TNF in vitro n'exerce aucun effet cytotoxique notable sur les cellules normales et a un effet cytotoxique sur certains types de lignées cellulaires néoplasiques (par exemple les cellules L-M et Meth-A). Comme indiqué ci-dessus, le TNF a une activité antitumorale, exerce une activité non spécifique de l'espèce des animaux et n'exerce aucun effet nuisible notable sur les cellules normales. Donc, les espérances des applications cliniques du TNF comme médicament antitumoral ont été grandes dans l'art.
On sait également que seule une très petite quantité de TNF est induit chez un mammifère ou un système de culture tissulaire. Par conséquent, pour assurer une application clinique étendue et sans danger du TNF comme médicament antitumoral, il est absolument nécessaire d'isoler et de purifier fortement le TNF brut produit chez un mammifère ou dans un système de culture tissulaire.
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destiné à l'emploi comme médicament antitumoral, il est généralement nécessaire de stocker le TNF fortement purifié sous forme d'une solution ou d'une masse congelée pendant une période prolongée et de lyophiliser la solution de TNF. Cependant, les demanderesses
ont découvert que l'activité du TNF fortement purifié diminue nettement lors de son stockage, de sa congélation, de sa décongélation et de sa lyophilisation.
Pour autant que les présents inventeurs le sachent,
il n'existe pas de publication dans lequelle la stabilité du TNF fortement purifié ait été étudiée. Dans ces circonstances, une fourniture efficace et régulière de TNF fortement purifié, en particulier à l'échelle industrielle, ne peut pas être assurée, bien que l'on sache que le TNF est un médicament antitumoral efficace.
Pour résoudre la difficulté exposée ci-dessus relative à la stabilité du TNF, les demanderesses ont effectué des
études importantes et poussées. Elles ont débouché sur la découverte très surprenante que l'addition d'une quantité efficace d'une protéine spécifique comme agent stabilisant à une solution aqueuse ou
à une poudre contenant du TNF permet de conserver le TNF pendant
une période prolongée sans qu'il perde son activité et rend le TNF stable à la congélation, la décongélation, la lyophilisation et similaires. L'invention repose sur cette découverte.
L'invention a donc pour objets :
- de fournir un procédé pour stabiliser le TNF; et
- de fournir une solution ou une poudre stables de TNF conservant leur activité pendant une période prolongée et stables à la congélation, la décongélation, la lyophilisation et similaires.
D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront à la lecture de la description détaillée qui suit, faite en regard des dessins annexés, dans lesquels :
- la figure 1 est un graphique montrant l'effet de la concentration de la sérum-albumine humaine sur l'activité résiduelle <EMI ID=7.1>
- la figure 2 est un graphique montrant l'effet de la concentration de la gélatine partiellement hydrolysée sur l'activité résiduelle du TNF après 7 jours de conservation à 4[deg.]C;
- la figure 3 est un graphique montrant l'effet de la concentration de la y-globuline humaine sur l'activité résiduelle du TNF après 7 jours de conservation à 4[deg.]C; et
- la figure 4 est un graphique montrant l'effet de la concentration du sulfate de protamine de saumon sur l'activité résiduelle du TNF après 7 jours de conservation à 4[deg.]C.
Une explication détaillée complémentaire des figures est exposée ci-après relativement à l'exemple 2.
Selon un de ses aspects, l'invention fournit un procédé pour stabiliser un TNF qui comprend l'addition à une solution aqueuse ou à une poudre contenant du TNF d'une quantité efficace d'au moins un agent stabilisant choisi parmi le groupe constitué par une albumine, une gélatine, une globuline, une protamine
et un sel de protamine. Selon un autre de ses aspects, l'invention fournit une solution aqueuse ou une poudre stables contenant du TNF et une quantité efficace d'au moins un agent stabilisant choisi
parmi le groupe constitué par une albumine, une gélatine, une globuline, une protamine et un sel de protamine.
Le terme "TNF" tel qu'on l'emploie ici désigne une. substance à activité physiologique qui est produite par l'administration d'au moins une substance capable de stimuler le système réticulo-endothélial d'un mammifère, puis injection d'une endotoxine d'une bactérie à gram négatif au mammifère ou par addition d'une endotoxine d'une bactérie à gram négatif à un système de culture tissulaire contenant des macrophages activés d'un mammifère, cette substance provoquant la nécrose de certaines tumeurs lorsqu'elle est transférée de façon passive à des mammifères porteurs
de tumeur, ou une substance produite selon un procédé quelconque et ayant des propriétés semblables à celles de la substance à activité physiologique ci-dessus.
Le TNF que l'on emploie dans l'invention est produit selon plusieurs procédés connus dans l'art, y compris les procédés
de Matthews et coll. [voir Br. J. Cancer, 42, 416-422 (1980)] et le procédé de Green et coll. [voir J. Natl. Cancer Inst., 59(5),
1519-1522 (1977)].
Des procédés typiques pour préparer le TNF que l'on emploie dans la présente invention sont les suivants.
Tout d'abord, on injecte par voie intraveineuse ou intrapéritonéale à un mammifère (par exemple souris, lapin, cobaye, etc.) au moins une substance ayant la capacité de stimuler le système réticulo-endothélial. Comme substances ayant la capacité de stimuler le système réticulo-endothélial, on emploie généralement des bactéries à gram positif, des protozoaires ou des levures, que l'on administre au mammifère à l'état soit de micro-organismes vivants, soit de microorganismes morts (par exemple, après.traitement par la chaleur ou traitement avec la formaline), soit un extrait de cellules de micro-organismes.
Des exemples des bactéries à gram positif comprennent les propionibactéries telles que Propionibacterium acnes (Corynebacterium parvum) et Propionibacterium granulosum (Corynebacterium granulosum), des mycobactéries telles que le bacille de Calmette et Guérin (BCG) et Mycobacterium smegmatis, et des nocardias telles que Nocardia erythropolis et Nocardia gardneri. Comme protozoaires appropriés, on peut par exemple employer des plasmodiums ou des toxoplasmes. Comme levure appropriée, on emploie généralement le Zymosan extrait de Saccharomyces cerevisiae ou autres. On peut aussi employer des composés synthétiques de poids moléculaire élevé tels qu'un copolymère de pyranne. Ensuite, 7 à 8 jours après l'administration de la substance précitée ayant la capacité de stimuler le système réticulo-endothélial, on injecte par voie intraveineuse audit mammifère une endotoxine
d'une bactérie à gram négatif, par exemple un lipopolysaccharide dérivé d'Escherichia coli, de Pseudomonas aeruginosa ou de Salmonella typhosa. Enfin, 1,5 à 2 h après l'injection, on prélève des liquides de l'organisme (par exemple le liquide d'ascite, la lymphe, etc.) et/ou du sérum ou du plasma desdits mammifères ou on homogénéise des viscères tels que le fois, la rate, etc. et on les extrait avec une solution salée physiologique. On peut employer ces liquides de l'organisme, sérum, plasma et/ou extrait de viscères comme solution brute
de TNF. Cependant, on emploie généralement parmi eux le sérum ou
le plasma.
Comme indiqué ci-dessus, le procédé pour préparer
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dessus. On peut également employer de façon efficace le procédé reposant sur le génie génétique et le procédé de culture tissulaire où on emploie des cellules capables de produire du TNF. Il convient de noter que ces procédés peuvent également être appliqués à la produc� tion de TNF humain.
Le TNF brut produit selon l'un quelconque des procédés indiqués ci-dessus peut être purifié selon les techniques biochimiques classiques indiquées ci-dessous isolément ou en combinaison, pour fournir une solution aqueuse purifiée de TNF que l'on lyophilise pour obtenir une poudre purifiée de TNF. Comme techniques <EMI ID=9.1>
par exemple une technique de relargage dans laquelle on emploie
du sulfate d'ammonium, une chromatographie par échange d'ions,
dans laquelle on emploie une résine échangeuse d'ions, une technique de filtration sur gel et une technique d'électrophorèse. Lorsque la
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dessus de purification, on constate que le TNF devient progressivement instable. Par exemple, un échantillon de TNF purifié pour qu'il ait une activité spécifique de 500 000 unités/mg (l'activité spécifique est exprimée en unités d'activité de TNF par mg de protéine; l'unité d'activité du TNF est définie ci-après) est très instable comme le montrent les valeurs indiquées dans les exemples. Même les échantillons de TNF ayant une activité spécifique inférieure à
500 000 unités/mg présentent également un certain degré de baisse
de l'activité lorsqu'on les stocke ou les soumet à une congélation, une décongélation, une lyophilisation ou d'autres opérations.
Par conséquent, l'invention concerne la stabilisation du TNF que l'on a purifié à un degré élevé et que l'on a rendu instable. Le TNF à stabiliser selon l'invention peut être soit sous forme d'une solution, soit sous forme d'une poudre. Cependant, on préfère que le TNF stabilisé soit sous forme d'une solution.
On préfère que la solution de TNF à stabiliser selon l'invention ait constamment un pH de 5 à 10 et, de plus, on préfère que le solvant de la solution de TNF soit stabilisé par
un tampon approprié. Comme tampon approprié, on peut mentionner
par exemple un tampon phosphate et un tampon tris(hydroxyméthyl)aminométhane-HCl. A la demande, on ajoute à la solution de TNF un sel tel que le chlorure de sodium et le chlorure de potassium. Par exemple, on ajoute un sel à la solution de TNF pour préparer une solution isotonique lorsque la solution de TNF est utilisée pour l'injection. Ce n'est pas le seul but de l'addition d'un sel. La concentration d'un tel sel dans la solution de TNF peut être déterminée selon le but de l'addition du sel. Par exemple, lorsque la finale de TNF est utilisée pour l'injection, on prépare une solution isotonique à partir de la solution de TNF par addition de chlorure de sodium jusqu'à une concentration de 0,15 M.
Selon le procédé de l'invention, on ajoute une quantité efficace d'au moins un agent stabilisant choisi parmi le groupe constitué par une albumine, une gélatine, une globuline, une protamine et un sel de protamine à une solution aqueuse ou à une poudre contenant du TNF.
Comme albumine appropriée, on peut mentionner les albumines de divers animaux, tels que les bovins, les chevaux,
les moutons, les chèvres, les poulets et l'homme. Comme exemples spécifiques d'albumine appropriée, on peut mentionner la sérumalbumine bovine, la sérum-albumine humaine, l'albumine d'oeuf de poule, la lactalbumine bovine et la lactalbumine humaine. On n'observe pas de différence significative en ce qui concerne la capacité de stabiliser le TNF entre les albumines précitées. Cependant, comme agent de stabilisation des préparations injectables, on préfère tout particulièrement la sérum-albumine humaine.
Comme gélatine appropriée, on peut mentionner une gélatine ordinaire produite selon des procédés courants et une gélatine partiellement hydrolysée. Le poids moléculaire de la gélatine n'a pas d'importance stricte. Cependant, comme agent stabilisant pour les préparations injectables, on préfère particulièrement une gélatine partiellement hydrolysée soluble dans l'eau. La gélatine partiellement hydrolysée est obtenue par hydrolyse enzymatique d'une gélatine au moyen d'une enzyme protéolytique, telle que la papaïne ou par hydrolyse catalysée par un acide ou un alcali d'une gélatine.
Comme globuline appropriée, on peut mentionner les globulines sériques de divers mammifères, tels que les bovins, les chevaux, les moutons, les chèvres et l'homme et leurs dérivés. On n'observe pas de différence notable en ce qui concerne la capacité
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parmi elles, on préfère tout particulièrement une y-globuline et
un dérivé correspondant obtenu par traitement enzymatique ou modification chimique de la globuline de départ. Comme agent stabilisant pour les préparations injectables, on préfère tout particulièrement une y-globuline humaine et ses dérivés tels qu'une y-globuline humaine traitée par la fibrinolysine ou traitée par la pepsine et une y-globuline humaine sulfonée.
Comme protamine appropriée, on peut mentionner les protamines provenant d'espèces de poissons appropriées, telles que le saumon, le hareng et le maquereau. Comme sel de protamine approprié, on peut mentionner les chlorhydrates, sulfates et phosphates de protamines. On n'observe pas de différence notable en ce qui concerne la capacité de stabiliser le TNF entre les protamines et leurs sels précités.
Les agents stabilisants que l'on emploie dans l'invention peuvent être utilisés isolément ou en mélange.
L'agent stabilisant que l'on emploie dans l'inven-
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(l'unité d'activité est définie plus loin). La limite supérieure
de la quantité d'agent stabilisant est généralement déterminée du point de vue de la solubilité de l'agent stabilisant et de la viscosité de la solution obtenue et du point de vue économique. La limite supérieure de la quantité d'agent stabilisant est généralement de
50 mg, de préférence de 10 mg par ml de la solution de TNF. Lorsque le TNF est stabilisé sous forme d'une poudre, on ajoute l'agent stabilisant en une quantité telle que la solution aqueuse obtenue par dissolution du TNF en poudre, présentant une activité de 102 à
109 unités/ml, présente les concentrations précitées de l'agent stabilisant.
La façon dont on ajoute l'agent stabilisant n'a pas d'importance stricte. Par exemple, l'agent stabilisant sous forme d'une poudre peut être ajouté directement à la solution de TNF. Sinon, la poudre de l'agent stabilisant peut être préalablement dissoute dans de l'eau ou un tampon approprié et ajoutée à la solution de TNF. De plus, on peut également mélanger la poudre de l'agent stabilisant avec la poudre de TNF. L'addition de l'agent stabilisant peut être effectuée en un moment quelconque du stade de purification ou du stade de fabrication des préparations pharmaceutiques.
Lorsqu'on emploie deux ou plusieurs types différents d'agets stabilisants, on les ajoute en une quantité telle que leur quantité totale soit comprise dans la gamme des quantités définie ci-dessus.
On préfère que la conservation, la purification et la fabrication de préparations pharmaceutiques à partir de la
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Lorsque la solution de TNF est conservée à l'état congelé, on préfère que la température de conservation soit maintenue en dessous de 0[deg.]C et mieux en dessous de -20[deg.]C.
La solution de TNF à laquelle est incorporée une quantité efficace d'au moins un agent stabilisant_selon l'invention conserve son activité de TNF pendant la conservation, qu'elle soit sous forme d'une solution ou sous une forme congelée et également pendant les stades de purification et de fabrication des préparations pharmaceutiques.
De plus, le procédé pour stabiliser le TNF selon l'invention s'applique également à la lyophilisation. Généralement, lorsqu'on lyophilise des solutions de TNF (en particulier dans le cas de TNF très purifié), leur activité diminue nettement. Cependant, les solutions de TNF contenant une quantité efficace d'au moins un agent stabilisant selon l'invention peuvent être lyophilisées sans perte de l'activité pour fournir une poudre de TNF. La poudre de TNF peut être dissoute pour former une solution aqueuse stable de TNF
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sont comprises dans les gammes définies ci-dessus. L'agent stabilisant comme défini dans l'invention peut sinon être incorporé aux préparations lyophilisées de TNF. Lorsque le TNF est conservé sous forme d'une poudre, on préfère que la température de conservation soit maintenue à 25[deg.]C ou moins.
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ralement deux procédés, le procédé in vivo dans lequel on mesure in vivo l'effet de nécrose tumorale et le procédé in vitro dans lequel on mesure in vitro l'effet cytotoxique sur des cellules néoplasiques.
Comme procédé in vivo, on peut mentionner par exemple le procédé de Carswell et coll. [voir Proc. Nat. Acad. Sci. Etats-
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(2 x 10 cellules) par voie intradermique dans l'aisselle de souris
(BALB/c x C57BL/6)F. et, 7 jours plus tard, on choisit pour l'évaluation des souris porteuses de tumeurs de 7 à 8 mm de diamètre
bien vascularisées et sans nécrose centrale spontanée. On injecte dans la veine de la queue de chacune des souris un échantillon de TNF (0,5 ml) dilué avec une solution salée physiologique. On évalue l'activité de l'échantillon de TNF après 24 h selon les critères suivants.
(-) : pas de changement
(+) : légère nécrose hémorragique
(++) : nécrose hémorragique modérée (nécrose centrale atteignant
environ 50% de la surface tumorale)
(+++) : nécrose hémorragique nette (nécrose massive laissant un
petit anneau viable sur le pourtour de la tumeur).
Comme procédé in vitro de détermination de l'activité du TNF, on peut mentionner par exemple le procédé de Ruff et coll. [voir Lymphokines, vol. 2, édité par E. Pick, Académie Press. N.Y.,
245-248 (1980)] et le procédé de Kull et coll. [voir J. Immunol.,
126(4), 1279-1283 (1981)].
Le procédé in vitro que les demanderesses ont employé pour la détermination de l'activité du TNF a été mis au point par amélioration des procédés classiques précités. Dans le procédé in vitro des demanderesses où on mesure l'activité cytotoxique du TNF vis-à-vis de cellules L-M (American Type Culture Collection CCL 1.2), on opère comme suit. Comme récipient de culture, on emploie des
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Inc. (Etats-Unis d'Amérique) et on cultive les cellules L-M dans du milieu essentiel minimal de Eagle [voir Science, 130, 432-437
(1959)] contenant 10% v/v de sérum de veau foetal inactivé par chauffage. On dilue en série un échantillon de 0,1 ml de TNF et
on mélange la suspension de cellules L-M (0,1 ml; 1 x 104 cellules) dans chaque cupule des plaques et on incube les plaques à 37[deg.]C pendant 48 h dans de l'air contenant 5% de gaz carbonique. A la
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à 20% de glutaraldéhyde pour fixer les cellules. Après la fixation, on lave les plaques avec de l'eau distillée et on laisse sécher, puis on ajoute 0,1 ml de bleu de méthylène à 0,05% pour colorer
les cellules vivantes. On lave à fond les plaques avec de l'eau distillée pour éliminer l'excès de colorant et on laisse sécher. On ajoute 0,2 ml d'acide chlorhydrique à 3% dans chaque cupule pour extraire le colorant des cellules colorées. On mesure l'absorbance de chaque cupule à 665 nm avec un Titertek Multiskan produit par Flow Laboratories, Inc. L'absorbance est proportionnelle au nombre de cellules vivantes. L'activité du TNF, unité(U)/ml, est
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toxicité de 50% et on peut l'obtenir par établissement d'un graphique de la dilution en fonction de l'absorbance. Toutes les activités de TNF déterminées selon le procédé in vitro qui sont indiquées ci-après sont exprimées au moyen de l'unité déterminée ci-dessus.
Le procédé de l'invention permet la fourniture efficace et régulière à l'échelle commerciale de TNF très purifié que l'on estime être un médicament antitumoral efficace applicable en clinique, grâce au fait que l'activité du TNF est maintenue pendant la conservation, que le TNF soit sous forme d'une solution, d'une masse congelée ou d'une préparation lyophilisée, et pendant les stades de purification et de fabrication des préparations pharmaceutiques.
Les demanderesses ont également découvert que la solution ou poudre de TNF à laquelle est incorporé au moins un agent stabilisant choisi parmi la sérum-albumine humaine, une gélatine, une y-globuline humaine, un dérivé de y-globuline humaine, une protamine et un sel de protamine, peut être administrée sans danger à l'organisme humain et que, par conséquent, la nouvelle composition de l'invention est particulièrement utile lors de l'application clinique du TNF comme médicament antitumoral.
L'invention va être décrite de façon plus détaillée, par l'exemple de référence, les exemples et les exemples comparatifs suivants qui ne limitent en rien la portée de l'invention.
Dans les exemples suivants, les noms des agents stabilisants sont abrégés comme suit :
HSA : sérum-albumine humaine
BSA : sérum-albumine bovine
PHG-1 : gélatine partiellement hydrolysée obtenue par hydrolyse catalysée par un alcali de la gélatine (poids moléculaire moyen :
environ 7 000)
HGG : y-globuline humaine
SPS : sulfate de protamine de saumon
HPS : sulfate de protamine de hareng
BGG : y-globuline bovine
CEA : albumine d'oeuf de poule
BLA a-lactalbumine bovine
PHG-2 : gélatine partiellement hydrolysée obtenue par hydrolyse catalysée par un acide de la gélatine (poids moléculaire moyen :
environ 7 000)
PHG-3 : gélatine partiellement hydrolysée ayant une faible solidité
de gel
PG : gélatine purifiée
SPF : protamine de saumon (base libre)
SPP : phosphate de protamine de saumon
EDTA : acide éthylènediaminetétraacétique.
EXEMPLE DE REFERENCE
On injecte par voie intraveineuse à des lapines pesant 2 à 3 kg 75 mg de cellules tuées par la formaline de Propionibacterium acnes (Corynebacterium parvum; Welcome Research Laboratories, Angleterre). Huit jours plus tard, on injecte par voie intraveineuse à chaque lapine lOOug d'endotoxine (lipopolysaccharide d'Escherichia coli 026:B6, produit par Difco Laboratories, Etats-Unis d'Amérique). On prélève le sang de ch.aque lapine par poncticn cardiaque 2 h après l'injection d'endotoxine et on mélange le sang obtenu avec une petite quantité d'héparine. On centrifuge le sang à 3 000 tr/min pendant
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2500 U/ml.
On dilue le plasma ainsi obtenu (10 1) contenant du TNF avec 5 1 de tampon phosphate 0,03 M (pH 7,8). On applique le plasma dilué à une colonne (10 x 42 cm) de DEAE-Sepharose CL-6B (fabriqué et vendu par Pharmacia Fine Chemicals AB, Suède) équilibrée avec du tampon phosphate 0,03 M (pH 7,8) 0,13 M en NaCl. On lave la colonne avec 2,5 1 de tampon phosphate 0,03 M (pH 7,8), 0,13 M en NaCl et on élue
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est de 230 ml/h et on recueille des fractions de 45 ml. On observe l'activité de TNF dans les fractions éluées avec le NaCl 0,20-0,24 M.
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une nuit contre du tampon Tris-HCl 0,03 M (pH 7,2) 0,13 M en NaCl.
On rechromatographie la solution dialysée de TNF sur une colonne de DEAE-Sepharose CL-6B (3,0 x 30 cm) équilibrée avec du tampon Tris-HCl 0,03 M (pH 7,2) 0,15 M en NaCl. On élue le TNF adsorbé
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du tampon d'équilibrage et 500 ml de tampon Tris-HCl 0,03 M (pH 7,8) 0,3 M en NaCl. Le débit est de 40 ml/h et on recueille des fractions de 10 ml. On regroupe et concentre les fractions ayant une activité
de TNF.
On soumet le concentré à une filtration sur gel avec une colonne (5 x 100 cm) de Sephacryl S-200 (fabriqué et vendu par Pharmacia) équilibrée avec du tampon phosphate 5 mM (pH 7,0) 0,15 M
en NaCl. On effectue l'élution avec le tampon d'équilibrage. Le débit est de 80 ml/h et on recueille des fractions de 13 ml. On regroupe
les fractions ayant une activité de TNF et on concentre par ultrafiltration.
La solution de TNF ainsi obtenue se révèle avoir une activité spécifique de 5,0 x 10 U/mg de protéines et une pureté
10 000 fois supérieure à celle observée dans le plasma.
On soumet la solution de TNF ainsi obtenue à une nouvelle chromatographie sur la même colonne (Sephacryl S-200) en utilisant le même tampon pour obtenir une solution de TNF ayant une activité spécifique de 1,0 x 10 U/mg de protéines.
EXEMPLE 1
On dilue avec du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0)
0,15 M en chlorure de sodium du TNF de lapin ayant une activité spécifique de 5,0 x 105 U/mg obtenu selon le mode opératoire décrit dans l'exemple de référence pour obtenir une solution de TNF ayant une activité de TNF de 1 200 U/ml. A des portions de la solution de TNF ainsi obtenue, on ajoute séparément comme agents stabilisants de la HSA (sérum-albumine humaine), de la BSA (sérum-albumine bovine), de la PHG-1 (gélatine partiellement hydrolysée, de la HGG (y-globuline humaine) et du SPS (sulfate de protamine de saumon) pour former dans chaque cas deux solutions différentes ayant une concentration de
0,1 mg/ml ou de 1,0 mg/ml.
Pour chacune des solutions obtenues, on détermine l'activité résiduelle relativement à 1) les échantillone obtenus par conservation respectivement pendant 2 jours, 7 jours et 30 jours à
40[deg.]C, 2) les échantillons soumis respectivement à 1 cycle et 3 cycles de congélation (-70[deg.]C) et de décongélation et 3) l'échantillon soumis
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pendant 7 jours à 25[deg.]C. Pour effectuer l'essai ci-dessus, on emploie comme témoin la solution de TNF à laquelle on n'a pas incorporé d'agent stabilisant. En ce qui concerne la préparation lyophilysée [voir 3)], on la dissout dans de l'eau distillée stérile puis on la
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Pour déterminer l'activité résiduelle, on mesure l'activité de chaque échantillon in vitro ou in vivo selon les procédés décrits précédemment. Dans le procédé in vitro, on calcule l'activité résiduelle (%) à partir de la valeur de dosage selon l'équation suivante :
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où A est l'activité de TNF de l'échantillon après conservation ou traitement physique et B est l'activité de TNF de l'échantillon avant conservation ou traitement physique.
Dans le procédé in vivo, on concentre chaque échantillon de solution pour que la concentration soit 20 fois supérieure à celle de départ au moyen du mini-module NM-3 (marque du commerce de l'appareil d'ultrafiltration fabriqué et vendu par Asahi Chemical Industry Co. Ltd., Japon). On injecte ensuite 0,5 ml de chacune des solutions de TNF ainsi concentrées dans la veine de la queue à un groupe de 5 souris porteuses de tumeurs. On détermine l'activité du TNF 24 h après selon le critère précédemment décrit. Les résultats obtenus figurent dans le tableau 1.
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EXEMPLE 2
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activité de TNF que celle employée dans l'exemple 1, on ajoute séparément de la HSA, de la PHG-1, de la HGG et du SPS (ces protéines sont les mêmes que celles employées dans l'exemple 1) comme agent stabilisant à diverses concentrations. On conserve chacune des solutions obtenues à 4[deg.]C pendant 7 jours, puis on les soumet à la détermination de l'activité du TNF selon le procédé in vitro. On calcule l'activité résiduelle du TNF (%) de la même façon que dans l'exemple 1. Les résultats obtenus sont illustrés par les figures 1 à 4.
EXEMPLE 3
<EMI ID=32.1> une activité de TNF de 1 000 U/ml. A des portions de la solution de TNF ainsi obtenue, on ajoute conjointement deux types différents d'agents stabilisants choisis parmi diverses albumines, globulines, protamines et gélatines, à diverses concentrations comme indiqué dans le tableau 2. On conserve chacune des solutions obtenues à 4[deg.]C pendant 7 jours et on les soumet à une détermination de l'activité de TNF selon le procédé d'essai in vitro. On calcule l'activité résiduelle du TNF (%) de la même façon que dans l'exemple 1. Les résultats obtenus figurent dans le tableau 2.
TABLEAU 2
Effet stabilisant de divers agents stabilisants
<EMI ID=33.1>
Nota : Comme BSA, HSA, PHG-1, HGG et SPS, on uti lise les mêmes
matières que celles employées dans l'exemple 1.
HPS : produit de Sigma Chemical Co.
BGG : produit de Sigma Chemical Co.
CEA : produit de Nutritional Biochemicals Corp.
EXEMPLE 4 .
A des portions de solution de TNF ayant la même activité de TNF que celle employée dans l'exemple 3, on ajoute séparément comme agent stabilisant diverses albumines indiquées dans le tableau 3 en une quantité telle que la solution obtenue ait une
<EMI ID=34.1>
nues à 4[deg.]C pendant 7 jours et on les soumet à une détermination de l'activité du TNF selon le procédé d'essai in vitro. On calcule
<EMI ID=35.1>
résultats obtenus figurent dans le tableau 3.
TABLEAU 3
Effet stabilisant de diverses albumines
<EMI ID=36.1>
<EMI ID=37.1>
employées dans les exemples 1 et 3.
Fraction de HSA : fraction de sérum-albumine humaine (fraction
V de Cohn), produit de Sigma Chemical Co.
<EMI ID=38.1>
de Cohn), produit de Sigma Chemical Co.
BLA : produit de Sigma Chemical Co.
EXEMPLE 5
A des portions de solution de TNF ayant la même activité de TNF que celle employée dans l'exemple 3, on ajoute séparément comme agent stabilisant diverses gélatines comme indiqué dans le tableau 4 en une quantité telle que la solution obtenue ait
<EMI ID=39.1>
obtenues à 4[deg.]C pendant 7 jours et on détermine l'activité de TNF selon le procédé d'essai in vitro. On calcule l'activité résiduelle du TNF (%) de la même façon que dans l'exemple 1. Les résultats obtenus figurent dans le tableau 4.
TABLEAU 4
Effet stabilisant de diverses gélatines.
<EMI ID=40.1>
Nota : Comme PHG-1, on emploie la même matière que celle utilisée
dans l'exemple 1.
PHG-2 : produit de Nippi Co., Ltd.
PHG-3 : produit de Sigma Chemical Co., (Gélatine type IV :
environ 60 Bloom)
<EMI ID=41.1>
EXEMPLE 6
A des portions de solution de TNF ayant la même activité de TNF que celle employée dans l'exemple 3, on ajoute séparément diverses globulines comme indiqué dans le tableau 5 en une quantité telle que la solution obtenue ait une concentration de
1 0 mg/ml. On conserve chacune des solutions obtenues à 4[deg.]C pendant 7 jours et on les soumet à la détermination de l'activité du TNF selon le procédé d'essai in vitro. On calcule l'activité résiduelle du TNF (%) de la même façon que dans l'exemple 1. Les résultats obtenus figurent dans le tableau 5.
TABLEAU 5
Effet stabilisant de diverses globulines
<EMI ID=42.1>
Nota : Comme HGG et BGG, on emploie les mêmes matières que celles
utilisées dans les exemples 1 et 3.
HGG traitée par la fibrinolysine : Venoglobulin (marque de
commerce), produit de The Green Cross Corporation, Japon.
HGG traitée par la pepsine : Gamma-Venin (marque du commerce),
produit de Hoechst Japan Ltd.
HGG sulfoné : Venilon (marque du commerce), produit de Chemo-
Sero-Therapeutic Research Institute, Japon.
Fraction de HGG : fraction de y-globuline humaine (fraction II
de Cohn), produit de Sigma Chemical Co.
EXEMPLE 7
A des portions de solution de TNF ayant la même activité de TNF que celle employée dans l'exemple 3, on ajoute séparément comme agent stabilisant diverses protamines comme indiqué dans le tableau 6 en une quantité telle que la solution obtenue ait une concentration de 1,0 mg/ml. On conserve chacune des solutions obtenues à 4[deg.]C pendant 7 jours et on les soumet à la détermination de l'activité du TNF selon le procédé d'essai in vitro. On calcule l'activité résiduelle du TNF (%) de la même façon que dans l'exemple 1. Les résultats obtenus figurent dans le tableau 6.
TABLEAU 6
Effet stabilisant de diverses protamines.
<EMI ID=43.1>
Nota : Comme SPS et HPS, on emploie les mêmes matières que celles
utilisées dans les exemples 1 et 3.
SPF : produit de Sigma Chemical Co.
SPP : produit de Sigma Chemical Co.
EXEMPLE 8
On dilue avec du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0) 0,15 M en chlorure de sodium, du TNF de lapin ayant une activité spécifique de 1,0 x 106 U/mg, obtenu selon les modes opératoires décrits dans l'exemple de référence pour préparer des solutions
<EMI ID=44.1>
1 000 U/ml, 10 000 U/ml et 100 000 U/ml. A une portion de chacune des solutions de TNF ainsi préparées, on ajoute de la HSA en une quantité telle que la solution obtenue ait une concentration de 1,0 mg/ml. On conserve chacune des solutions de TNF obtenues à
4[deg.]C pendant 7 jours et on les soumet à une détermination de l'activité du TNF selon le procédé d'essai in vitro. On calcule l'activité résiduelle du TNF (%) de la même façon que dans l'exemple 1. Comme témoins, on soumet une autre portion de chacune des solutions de TNF auxquelles on n'a pas incorporé de HSA à la détermination de l'activité du TNF. Les résultats obtenus figurent dans le tableau 7.
TABLEAU 7
Effet stabilisant de la HSA
<EMI ID=45.1>
[Les valeurs représentent l'activité résiduelle du TNF (%)]. EXEMPLE COMPARATIF
A des portions de solution de TNF ayant la même activité de TNF que celle employée dans l'exemple 1, on ajoute séparément à diverses concentrations, comme indiqué dans le tableau 8, chacun de divers aminoacides, sels métalliques et agents chélatants qui sont des agents stabilisants bien connus des solutions des substances ordinaires à activité physiologique. On conserve chacune des
<EMI ID=46.1>
détermination de l'activité du TNF selon le procédé d'essai in vitro. On calcule l'activité résiduelle du TNF (%) de la même façon que dans l'exemple 1. Les résultats obtenus figurent dans le tableau 8.
TABLEAU 8
Comparaison de l'effet stabilisant de divers agents stabilisants.
<EMI ID=47.1>
Nota : Comme HSA, PHG-1, HGG et SPS, on emploie les mêmes matières
que celles utilisées dans l'exemple 1.
Bien entendu, diverses modifications peuvent être apportées par l'homme de l'art aux dispositifs ou procédés qui viennent d'être décrits uniquement à titre d'exemples non limitatifs sans sortir du cadre de l'in vention.
REVENDICATIONS S
1 - Procédé pour stabiliser un Facteur de Nécrose Tumorale, caractérisé en ce qu'il comprend l'addition à une solution aqueuse ou à une poudre contenant un Facteur de Nécrose Tumorale d'une quantité efficace d'au moins un agent stabilisant choisi parmi le groupe constitué par une albumine, une gélatine, une globuline, une protamine et un sel de protamine.