WO2022210752A1 - 変性タンパク質素材 - Google Patents

変性タンパク質素材 Download PDF

Info

Publication number
WO2022210752A1
WO2022210752A1 PCT/JP2022/015616 JP2022015616W WO2022210752A1 WO 2022210752 A1 WO2022210752 A1 WO 2022210752A1 JP 2022015616 W JP2022015616 W JP 2022015616W WO 2022210752 A1 WO2022210752 A1 WO 2022210752A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
protein
protein material
denatured protein
less
denatured
Prior art date
Application number
PCT/JP2022/015616
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
弘志 狩野
知樹 上山
量太 井上
Original Assignee
不二製油グループ本社株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 不二製油グループ本社株式会社 filed Critical 不二製油グループ本社株式会社
Priority to JP2022549679A priority Critical patent/JP7211570B1/ja
Priority to CA3203850A priority patent/CA3203850A1/en
Priority to AU2022248475A priority patent/AU2022248475A1/en
Priority to CN202280022256.5A priority patent/CN117098459A/zh
Priority to EP22780963.9A priority patent/EP4285734A4/en
Priority to US18/267,895 priority patent/US20240041083A1/en
Publication of WO2022210752A1 publication Critical patent/WO2022210752A1/ja

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L29/00Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof
    • A23L29/10Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof containing emulsifiers
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23JPROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
    • A23J3/00Working-up of proteins for foodstuffs
    • A23J3/14Vegetable proteins
    • A23J3/16Vegetable proteins from soybean
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23JPROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
    • A23J1/00Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites
    • A23J1/14Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites from leguminous or other vegetable seeds; from press-cake or oil-bearing seeds
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23JPROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
    • A23J3/00Working-up of proteins for foodstuffs
    • A23J3/14Vegetable proteins
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23CDAIRY PRODUCTS, e.g. MILK, BUTTER OR CHEESE; MILK OR CHEESE SUBSTITUTES; MAKING THEREOF
    • A23C11/00Milk substitutes, e.g. coffee whitener compositions
    • A23C11/02Milk substitutes, e.g. coffee whitener compositions containing at least one non-milk component as source of fats or proteins
    • A23C11/10Milk substitutes, e.g. coffee whitener compositions containing at least one non-milk component as source of fats or proteins containing or not lactose but no other milk components as source of fats, carbohydrates or proteins
    • A23C11/103Milk substitutes, e.g. coffee whitener compositions containing at least one non-milk component as source of fats or proteins containing or not lactose but no other milk components as source of fats, carbohydrates or proteins containing only proteins from pulses, oilseeds or nuts, e.g. nut milk
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23VINDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
    • A23V2200/00Function of food ingredients
    • A23V2200/20Ingredients acting on or related to the structure
    • A23V2200/222Emulsifier

Definitions

  • the present invention relates to a denatured protein material and a method for producing the same.
  • sodium caseinate and the like are used as proteins with emulsifying power.
  • Synthetic emulsifiers such as glycerin fatty acid esters are used when further emulsifying power is required.
  • sodium caseinate which is widely used as a protein having emulsifying power, is a milk protein, that is, an animal protein. At present, due to concerns about food supply due to population growth, attempts are being made to reduce the amount of animal protein and to replace foods using animal protein with foods using vegetable protein.
  • milk protein if the amount of milk protein is reduced, the effect may not be sufficiently obtained.
  • vegetable proteins such as soybean protein and pea protein are generally inferior to milk proteins in terms of high viscosity when made into a solution, solubility, mineral resistance, and heat resistance such as retort heating. Problems such as thickening and generation of agglomerates tend to occur, and the amount to be blended is limited. Therefore, at present, it is not used as a substitute for milk protein.
  • Patent Literature 1 provides a technique of enzymatic decomposition while adding reducing sugar to isolated soy protein and heat-treating it to promote the Maillard reaction.
  • Patent Document 2 provides a technique of heat-treating proteins at 140° C. for about 30 seconds, enzymatically decomposing them, and then adding fats and oils.
  • Patent Document 3 discloses an emulsified composition in which a specific vegetable protein material, fat and oil, and optionally carbohydrate are mixed in a specific ratio. These are intended to improve the viscosity and emulsifying power while maintaining the solubility of the protein by improving the vegetable protein material.
  • An object of the present invention is to provide a protein material with improved emulsifying power.
  • the denatured protein material of (1) wherein the area ratio of less than 2,000 Da is 45% or less as a result of measuring the molecular weight distribution; (3) The denatured protein material of (1), wherein the area ratio of 10,000 Da or more is less than 50% as a result of measuring the molecular weight distribution; (4) The denatured protein material of (1), whose molecular weight distribution measurement results show that the area ratio of less than 2,000 Da is 45% or less and the area ratio of 10,000 Da or more is less than 50%; (5) The denatured protein material of (1), wherein the denatured protein material has an OD660nm of 0.5 or less in an aqueous solution prepared to have a protein content of 10% by mass and a pH of 7; (6) The denatured protein material of (4), wherein the denatured protein material has an aqueous solution prepared to have a protein content of 10% by mass and a pH of 7, and an OD660nm of 0.5
  • a protein material with improved emulsifying power can be provided.
  • Emulsified foods with improved emulsion stability can be produced by using the denatured protein material of the present invention.
  • an emulsified food having emulsification stability can be produced without using a synthetic emulsifier or the like.
  • an emulsified food having emulsification stability can be produced without using an animal protein material.
  • by preparing a denatured protein material using milk protein as a raw material it is possible to reduce the amount of milk protein while maintaining emulsifying power.
  • FIG. 1 is a chart showing molecular weight distributions of Arg, isolated soybean protein, soybean peptide, enzyme-treated isolated soybean protein described in Test Examples 1 and 2, and the protein material of Patent Document 3.
  • the vertical axis indicates intensity ( ⁇ V), and the horizontal axis indicates retention time (minutes). Vertical lines in the figure indicate positions of 20,000 Da, 10,000 Da, and 2,000 Da from the left.
  • FIG. 2 is a chart showing the molecular weight distribution of denatured protein materials A to E described in Example 1.
  • FIG. The vertical axis indicates intensity ( ⁇ V), and the horizontal axis indicates retention time (minutes). Vertical lines in the figure indicate positions of 20,000 Da, 10,000 Da, and 2,000 Da from the left.
  • a denatured protein material which is one aspect of the present invention, is characterized by the following. a) The area ratio of 2,000 Da or more and less than 20,000 Da is 45 to 90% in the results of molecular weight distribution measurement, and b) No cloudiness when 250 mM guanidine hydrochloride is added to an aqueous solution of denatured protein material with a crude protein concentration of 0.1%. , turns cloudy when 2M ammonium sulfate is added.
  • the present invention provides a denatured protein material.
  • a method for producing a denatured protein material is provided.
  • a food product comprising the denatured protein material is provided.
  • a composition comprising a denatured protein material is provided.
  • protein material is a food material that has protein as its main component and is used as a raw material in various processed foods and beverages.
  • denatured protein material refers to a food material containing denatured protein as a main component.
  • the protein from which the denatured protein material of the present disclosure is derived may be animal protein, vegetable protein, or a mixture thereof.
  • animal proteins include proteins derived from cows, pigs, chickens, eggs and milk.
  • vegetable proteins include legumes such as soybeans, peas, mung beans, fava beans, lupine beans, chickpeas, kidney beans, lentils, and cowpeas; seeds such as sesame seeds, canola seeds, coconut seeds and almond seeds; corn and buckwheat. , grains such as wheat and rice, vegetables, and fruits.
  • the denatured protein material of this aspect 50% by mass or more of the protein is derived from vegetable protein, for example, 55% by mass or more, 60% by mass or more, 65% by mass or more, 70% by mass or more, 75% by mass. % or more, 80% or more, 85% or more, 90% or more, 95% or more, or 97% or more by weight can be derived from vegetable proteins, most preferably 100% by weight or more is.
  • the denatured protein material does not include protein material derived from milk proteins.
  • the denatured protein material is prepared from legume protein.
  • the denatured protein material is prepared from soy protein, pea protein, mung bean protein or fava bean protein.
  • soybean-derived protein material it is prepared by further concentrating protein from soybean raw materials such as defatted soybeans and whole soybeans.
  • Various processed products are conceptually included.
  • the area ratio of the molecular weight distribution is 45 to 90%, for example, 50 to 85%, 55 to 2,000 Da or more and less than 20,000 Da. ⁇ 80%, 55-75%, 60-70%.
  • the protein material described in Patent Document 3 has an area ratio of 20,000 Da or more exceeding 55%, and is different from the denatured protein material of the present disclosure in this respect.
  • the area percentage of less than 2,000 Da is 45% or less, such as 40% or less, 35% or less, 30% or less, 25% or less.
  • the lower limit is not particularly limited, examples thereof include 0% or more, 1% or more, 2% or more, 5% or more, 10% or more, and 15% or more.
  • the area percentage of 10,000 Da or more is less than 50%, such as 5-45%, 10-40%, 15-35%.
  • the area percentage of 20,000 Da or greater is less than 55%, such as 50% or less, 40% or less, 30% or less, 25% or less, 20% or less, 15% or less.
  • the molecular weight distribution of the denatured protein material is in such a range indicates that the main component is moderately low molecular weight, while the undegraded protein that has not been subjected to any decomposition treatment It shows that there are few degraded small peptides.
  • the measurement of molecular weight distribution shall be based on the method mentioned later.
  • the addition of guanidine hydrochloride to prevent clouding means that an aqueous solution with a crude protein concentration of 0.1% and a 250 mM guanidine hydrochloride does not have clouding visually, or the OD660nm of the aqueous solution is less than 0.3, for example, 0.2 or less, 0.1 or less, It can be confirmed by being 0.
  • the denatured protein material of the present disclosure becomes cloudy when ammonium sulfate is added to the aqueous solution. This is an index indicating that the protein has a certain degree of polymerization and is not an excessively degraded peptide such as dipeptide or tripeptide.
  • adding ammonium sulfate to make it cloudy means visually observing cloudiness in an aqueous solution of 2M ammonium sulfate with a crude protein concentration of 0.1%, or the OD660nm of the aqueous solution is 0.3 or more, for example, 0.4 or more, 0.5 or more.
  • the procedures for adding guanidine hydrochloride and ammonium sulfate are based on the method described later.
  • the denatured protein material of the present disclosure satisfies the above a) to b). Although not particularly limited, the characteristics of the denatured protein material in more specific embodiments will be described below.
  • the denatured protein material of the present disclosure preferably has a protein content of 40% by mass or more in solid content, for example, 50% by mass or more, 60% by mass or more, 70% by mass or more. % or more, 80 mass % or more, 85 mass % or more, or 90 mass % or more.
  • a raw material for the denatured protein material within the above range isolated protein is preferable.
  • soymilk-level protein content is low, it becomes necessary to add a large amount of denatured protein material in order to produce an emulsified food with a high protein content, which may impair its versatility as a material.
  • Viscosity when the viscosity of the denatured protein material solution of the present disclosure is measured under constant conditions, it is preferably low viscosity. It preferably has a viscosity of 50 mPa ⁇ s or less at 60° C., for example, 40 mPa ⁇ s or less, 35 mPa ⁇ s or less, 30 mPa ⁇ s or less, 20 mPa ⁇ s or less, 15 mPa ⁇ s or less, 10 mPa ⁇ s or less, or 5 mPa ⁇ s or less.
  • the lower limit of the viscosity is not particularly limited, but examples thereof include 0.1 mPa ⁇ s or more, 0.5 mPa ⁇ s or more, and 1 mPa ⁇ s or more.
  • the viscosity is measured by the method described later.
  • the denatured protein material of the present disclosure has a solubility in water at room temperature of 20 wt% or greater, such as 25 wt% or greater.
  • the upper limit of the solubility is not particularly limited, examples thereof include 55% by mass or less, 50% by mass or less, 45% by mass or less, 40% by mass or less, and 35% by mass or less.
  • the aqueous solution of the denatured protein material of the present disclosure is preferably less turbid, more preferably clear. More specifically, a 10% aqueous solution (pH 7) of the denatured protein material of the present disclosure is prepared, and the value of OD660 nm at room temperature after standing overnight is preferably 0.5 or less, for example, 0.3 or less, 0.2 or less, or 0.1. 0 below.
  • the denatured protein material of the present disclosure meets the numerical values specified by e) solubility and/or f) turbidity above, and is therefore also referred to as a "water-soluble denatured protein material.” be.
  • the median diameter of the emulsion containing the denatured protein material of the present disclosure is 4 ⁇ m or less, such as 3 ⁇ m or less, 2 ⁇ m or less, 1 ⁇ m or less. More specifically, an emulsion containing the denatured protein material of the present disclosure with a crude protein content of 1% or more, for example, 0.5% or more, 0.1% or more, or 0.05% or more exhibits the above median diameter. Preparation of the emulsion and measurement of the median diameter shall be based on the method described later.
  • the denatured protein material of the present disclosure can be obtained by combining protein denaturation and molecular weight distribution adjustment.
  • protein denaturation treatment include pH adjustment treatment (e.g., acid treatment, alkali treatment), denaturant treatment, heat treatment, cooling treatment, high pressure treatment, organic solvent treatment, mineral addition treatment, supercritical treatment, and ultrasonic treatment. , electrolysis, and combinations thereof.
  • treatments for adjusting the molecular weight distribution include enzymatic treatment, filtration, gel filtration, chromatography, centrifugation, electrophoresis, dialysis, combinations thereof, and the like.
  • the order and number of times of the treatment for denaturing the protein and the treatment for adjusting the molecular weight distribution are not particularly limited, and the treatment for denaturing the protein may be followed by the treatment for adjusting the molecular weight distribution, or the molecular weight distribution may be adjusted.
  • a treatment for denaturing the protein may be performed after the treatment, or both treatments may be performed at the same time. Further, for example, a treatment for denaturing the protein is performed between two or more treatments for adjusting the molecular weight distribution, a treatment for adjusting the molecular weight distribution is performed between two or more treatments for denaturing the protein, and each treatment is performed multiple times. can be performed in any order.
  • the treatment for adjusting the molecular weight distribution may not be performed.
  • all the treatments starting from the raw material may be carried out continuously, or may be carried out after an interval of time.
  • a commercial product that has undergone a certain treatment may be used as a raw material and subjected to another treatment.
  • such treatment is referred to as "denaturation/molecular weight distribution adjustment treatment" for convenience.
  • a specific denatured protein material may be obtained by mixing a denatured protein material that has undergone denaturation/molecular weight distribution adjustment treatment and a protein that has not undergone denaturation/molecular weight distribution adjustment treatment.
  • the ratio of the two protein material that has undergone denaturation/molecular weight distribution adjustment treatment: protein that has not undergone denaturation/molecular weight distribution adjustment treatment
  • the denatured protein material of the present disclosure consists of a vegetable protein material that has undergone denaturation and molecular weight distribution control treatment.
  • a person skilled in the art can appropriately set the conditions of the protein denaturation treatment, such as the concentrations of acids, alkalis, organic solvents, minerals, etc., temperature, pressure, output intensity, current, time, etc.
  • pH adjustment treatment any of pH 2, 2.5, 3, 3.5, 4, 4.5, 5, 5.5, 6, 6.5, 7, 7.5, 8, 8.5, 9, 9.5, 10, 10.5, 11, 11.5, 12 can be treated in a pH range with upper and lower limits, eg, pH 2-12.
  • acid treatment it may be a method of adding acid or a method of carrying out fermentation treatment such as lactic acid fermentation.
  • acids to be added include inorganic acids such as hydrochloric acid and phosphoric acid; Organic acids are mentioned.
  • acid may be added using acid-containing foods and drinks such as fruit juice such as lemon, concentrated fruit juice, fermented milk, yogurt, and brewed vinegar.
  • alkali treatment an alkali such as sodium hydroxide or potassium hydroxide can be added.
  • denaturants such as guanidine hydrochloride, urea, arginine, PEG, etc. may be added.
  • heating or cooling treatment examples of heating temperatures are 60°C, 70°C, 80°C, 90°C, 100°C, 110°C, 120°C, 125°C, 130°C, 135°C, 140°C, 145°C, and 150°C.
  • °C the upper limit and the lower limit of which are, for example, 60°C to 150°C.
  • cooling temperatures are -10°C, -15°C, -20°C, -25°C, -30°C, -35°C, -40°C, -45°C, -50°C, -55°C, -60°C, Ranges with upper and lower limits of -65°C, -70°C, and -75°C, such as -10°C to -75°C.
  • heating or cooling times are 5 seconds, 10 seconds, 30 seconds, 1 minute, 5 minutes, 10 minutes, 20 minutes, 30 minutes, 40 minutes, 50 minutes, 60 minutes, 70 minutes, 80 minutes, 90 minutes, Ranges with upper and lower limits of 100 minutes, 120 minutes, 150 minutes, 180 minutes, and 200 minutes, such as 5 seconds to 200 minutes.
  • examples of pressure conditions are 100 MPa, 200 MPa, 300 MPa, 400 MPa, 500 MPa, 600 MPa, 700 MPa, 800 MPa, 900 MPa, and 1,000 MPa. mentioned.
  • examples of solvents used include alcohols and ketones such as ethanol and acetone.
  • examples of minerals used include divalent metal ions such as calcium and magnesium.
  • for example, carbon dioxide in a supercritical state at a temperature of about 30° C. or higher and about 7 MPa or higher can be used.
  • ultrasonic treatment for example, treatment can be performed by irradiating with a frequency of 100 KHz to 2 MHz and an output of 100 to 1,000 W.
  • electrolysis treatment for example, a protein aqueous solution can be treated by applying a voltage of 100 mV to 1,000 mV.
  • the treatment that denatures the protein is selected from denaturant treatment, heat treatment, and combinations thereof.
  • a person skilled in the art can appropriately set the processing conditions for adjusting the molecular weight distribution, such as enzymes, types of filter media, number of revolutions, electric current, and time.
  • enzymes that may be used include proteases classified as “metalloproteases,” “acid proteases,” “thiol proteases,” and “serine proteases.”
  • the reaction temperature is 20 to 80°C, preferably 40 to 60°C.
  • filter media include filter paper, filter cloth, diatomaceous earth, ceramics, glass, membranes, and the like.
  • carriers for gel filtration include dextran and agarose.
  • centrifugation conditions include 1,000 to 3,000 G for 5 to 20 minutes.
  • ingredients may or may not be added to the denatured protein material of the present disclosure as long as it does not impair its function.
  • examples of other raw materials include seasonings, acidulants, sweeteners, spices, colorants, flavors, salts, sugars, antioxidants, vitamins, stabilizers, thickeners, carriers, excipients, lubricants, and interfaces. Active agents, propellants, preservatives, chelating agents, pH adjusters, and the like. It should be noted that, in specific embodiments, the denatured protein material of the present disclosure does not contain animal-derived components.
  • the form of the denatured protein material of the present disclosure is not particularly limited, and examples include solids such as powders, granules, and pellets, semisolids such as pastes, and liquids such as solutions, suspensions, and emulsions.
  • the denatured protein is a powder, prepared through a drying process such as spray drying, freeze drying, and the like.
  • the denatured protein material of the present disclosure can be blended into foods or used as a raw material for compositions. Since the denatured protein material of the present disclosure has improved emulsifying power, it can be suitably used for emulsified foods and emulsified compositions. A person skilled in the art can appropriately select and determine the intended use and amount of addition of the denatured protein material of the present disclosure. In certain embodiments, examples of the added amount of the denatured protein material of the present disclosure are 0.1 to 70% by mass, 0.5 to 60% by mass, 1 to 50% by mass, 5 to 45% by mass, 10 to 40% by mass per food or composition. % by mass.
  • the nitrogen conversion factor is 6.25. Basically, it is obtained by rounding off the second decimal place.
  • the protein material is adjusted to a concentration of 0.1% by mass with an eluent, and filtered through a 0.2 ⁇ m filter to obtain a sample solution.
  • a gel filtration system is assembled by connecting two columns in series, and a known protein or the like (Table 1) serving as a molecular weight marker is first charged, and a calibration curve is obtained from the relationship between molecular weight and retention time.
  • the sample solution is charged, and the content ratio % of each molecular weight fraction is determined by the ratio of the area of the specific molecular weight range (time range) to the total absorbance chart area (1st column: “TSK gel G3000SW XL " (SIGMA-ALDRICH), 2nd column: “TSK gel G2000SW XL “ (SIGMA-ALDRICH), eluent: 1% SDS + 1.17% NaCl + 50 mM phosphate buffer (pH 7.0), 23°C, flow rate: 0.4 ml/ min, detection: UV220nm). Basically, it is obtained by rounding off the second decimal place.
  • guanidine hydrochloride Prepare an aqueous solution of protein material with a crude protein concentration of 0.2%. If cloudiness occurs during the preparation of an aqueous solution, centrifuge after preparing an aqueous solution of about 1 to 10%, collect the supernatant, dilute to a crude protein concentration of 0.2%, and use it as a sample solution. An equal volume of guanidine hydrochloride solution is added to this to prepare a solution with a crude protein concentration of 0.1% and a guanidine hydrochloride concentration of 250 mM, and allowed to stand overnight in a refrigerator. Check visually for cloudiness. In addition, turbidity is measured at a wavelength of 660 nm using a 10 mm glass cell.
  • ⁇ Ammonium sulfate addition> Prepare an aqueous solution of protein material with a crude protein concentration of 0.2%. If cloudiness occurs during the preparation of an aqueous solution, centrifuge after preparing an aqueous solution of about 1 to 10%, collect the supernatant, dilute to a crude protein concentration of 0.2%, and use it as a sample solution. An equal amount of ammonium sulfate solution is added to this to prepare a solution with a crude protein concentration of 0.1% and an ammonium sulfate concentration of 2M, and allowed to stand overnight in a refrigerator. Check visually for cloudiness. In addition, turbidity is measured at a wavelength of 660 nm using a 10 mm glass cell.
  • ⁇ Viscosity> For the viscosity of the protein material, prepare an aqueous solution of the protein material so that the protein content is 10% by mass, and measure at 60 ° C with a Brookfield viscometer (preferably Brookfield) using the rotor "#LV-1". and is obtained as the measured value shown after 1 minute at 100 rpm. If it is impossible to measure with "#LV-1", replace the rotor with "#LV-2", “#LV-3", “#LV-4", and "#LV-5".
  • Test Example 1 Examination of protein denaturation To an aqueous solution of isolated soy protein (Fuji Oil Co., Ltd.), arginine was added as a denaturant to 0.5M. Then, after heating this aqueous solution at 121° C. for 10 minutes, the denaturant was removed using an MW3500 dialysis tube, followed by freeze-drying to obtain a powdery protein material (referred to as Arg). Arg, MCT64 (medium chain fatty acid oil, Fuji Oil Co., Ltd.), and water were mixed to obtain an oil content of 20% and a crude protein concentration of 1%, 0.5%, 0.1%, and 0.05%, followed by sonication.
  • Arg powdery protein material
  • An emulsion was prepared by After the prepared emulsion was stored in a refrigerator, the median diameter was measured with a laser diffraction particle size distribution analyzer (Shimadzu Corporation). As a control, an emulsion was similarly prepared using isolated soybean protein as a raw material, and the median diameter was measured. Table 2 shows the results.
  • Test Example 2 Examination of molecular weight distribution Instead of isolated soy protein, soy peptide (Hinute AM, Fuji Oil Co., Ltd.), enzymatically isolated soy protein (Fuji Oil Co., Ltd.), or sample A of Patent Document 3 (hereinafter referred to as , referred to as the protein material of Patent Document 3), an emulsion was prepared in the same manner as in Test Example 1, and the median diameter was measured. Table 3 shows the results. In addition, the molecular weight distributions of the above Arg, the isolated soy protein, the enzyme-treated isolated soy protein, and the protein material of Patent Document 3 were measured according to the above method. The RT corresponding to the molecular weight of 20,000 Da was 38.4 minutes, the RT corresponding to 10,000 Da was 41.2 minutes, and the RT corresponding to 2,000 Da was 48.2 minutes. The results are shown in FIG. 1 and Table 4.
  • the enzymatically isolated soy protein exhibits better emulsifying power than the isolated soy protein. It was expected that even better emulsifying power could be obtained by modification.
  • Example 1 Preparation of denatured protein material To an aqueous solution of isolated soy protein (Fuji Oil Co., Ltd.), arginine was added as a denaturant to 0.5M. After heating this aqueous solution at 121° C. for 10 minutes, it was desalted, adjusted to pH 4.5 with hydrochloric acid, centrifuged at 10,000 G for 10 minutes, and the supernatant was recovered. The collected supernatant was desalted using an MW3500 dialysis tube, centrifuged again at 10,000 G for 10 minutes, and the supernatant was collected and freeze-dried to obtain denatured protein material A.
  • isolated soy protein Frinine was added as a denaturant to 0.5M. After heating this aqueous solution at 121° C. for 10 minutes, it was desalted, adjusted to pH 4.5 with hydrochloric acid, centrifuged at 10,000 G for 10 minutes, and the supernatant was recovered. The collected supernatant was desalted using an
  • Guanidine hydrochloride was added as a denaturing agent to an aqueous solution of soybean protein isolate (Fuji Oil Co., Ltd.) to a concentration of 4M. After heating this aqueous solution at 121° C. for 10 minutes, it was cooled, adjusted to pH 4.5 with hydrochloric acid, centrifuged at 10,000 G for 10 minutes, and the supernatant was recovered. The collected supernatant was desalted using an MW3500 dialysis tube, centrifuged again at 10,000 G for 10 minutes, and the supernatant was collected and freeze-dried to obtain denatured protein material B.
  • Arginine was added as a denaturing agent to an aqueous solution of enzymatically separated soybean protein (Fuji Oil Co., Ltd.) at a concentration of 0.5M. After heating this aqueous solution at 121° C. for 10 minutes, it was desalted, adjusted to pH 4.5 with hydrochloric acid, centrifuged at 10,000 G for 10 minutes, and the supernatant was recovered. The collected supernatant was desalted using an MW3500 dialysis tube, centrifuged again at 10,000 G for 10 minutes, and the supernatant was collected and freeze-dried to obtain denatured protein material C.
  • Urea was added as a denaturant to an aqueous solution of enzymatically separated soybean protein (Fuji Oil Co., Ltd.) at a concentration of 4M. After heating this aqueous solution at 121° C. for 10 minutes, it was desalted, adjusted to pH 4.5 with hydrochloric acid, centrifuged at 10,000 G for 10 minutes, and the supernatant was recovered. The collected supernatant was desalted using an MW3500 dialysis tube, centrifuged again at 10,000 G for 10 minutes, and the supernatant was collected and freeze-dried to obtain a denatured protein material D.
  • Guanidine hydrochloride was added as a denaturing agent to an aqueous solution of enzymatically separated soybean protein (Fuji Oil Co., Ltd.) at a concentration of 4M. After heating this aqueous solution at 121° C. for 10 minutes, it was desalted using an MW3500 dialysis tube, centrifuged at 10,000 G for 10 minutes, and the supernatant was collected and freeze-dried to obtain denatured protein material E. Using the obtained denatured protein materials A to E, emulsions were prepared in the same manner as in Test Example 1, and the median diameter was measured. Table 5 shows the results. In addition, the molecular weight distributions of the denatured protein materials A to E were measured according to the method described above. The results are shown in FIG. 2 and Table 6. In addition, the protein content of these denatured protein materials was 80% by mass or more.
  • denatured protein materials with specific molecular weight distributions exhibited improved emulsifying power.
  • the protein material of Patent Document 3 showed emulsifying power at a crude protein amount of 1% or more, but the denatured protein material of the present invention showed good emulsifying power even from a crude protein amount of 0.5%.
  • Denatured protein material A was dissolved in distilled water, and the pH was adjusted with NaOH to prepare a pH 7 10% by mass solution.
  • the OD660nm of this solution measured at room temperature after standing overnight was 0.13.
  • the viscosity of this solution at 60°C was 3.1 mPa ⁇ s.
  • Example 2 Study on proteins other than soybeans Instead of isolated soybean proteins, isolated pea proteins, mung bean proteins, and broad bean proteins were subjected to denaturation and molecular weight distribution adjustment treatment to obtain denatured protein materials F, G, and H, respectively. rice field. As in Example 1, the median diameter of the emulsion and the molecular weight distribution of the protein material were measured. The results are shown in Tables 8 and 9. In addition, the protein content of these denatured protein materials was 80% by mass or more.
  • denatured protein material with improved emulsifying power was obtained even when pea, mung bean, and fava bean proteins were used instead of soy protein.
  • denatured protein materials did not become cloudy even when guanidine hydrochloride was added, but became cloudy when ammonium sulfate was added.
  • a denatured protein material with a specific molecular weight distribution has improved emulsifying power compared to conventional protein materials.
  • This denatured protein material can be used for foods, compositions, pharmaceutical compositions, and the like.

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Diaphragms For Electromechanical Transducers (AREA)
  • Cereal-Derived Products (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Compositions Of Macromolecular Compounds (AREA)

Abstract

下記a)~b)の全特徴を有する変性タンパク質素材: a)分子量分布の測定結果で、2,000Da以上20,000Da未満の面積比率が45~90%、及び b)粗タンパク質濃度0.1%の変性タンパク質素材の水溶液に250mM塩酸グアニジンを添加した場合に白濁せず、2M硫酸アンモニウムを添加した場合に白濁する、を提供する。

Description

変性タンパク質素材
関連出願
 この出願は、令和3年3月30日に日本国特許庁に出願された出願番号2021-056902号の優先権の利益を主張する。優先権基礎出願はその全体について、出典明示により本明細書の一部とする。
 本発明は変性タンパク質素材、及びその製造方法に関する。
 現在、脂質、及びタンパク質を含有する水中油型乳化物又は油中水型乳化物、及び当該乳化物を含む多種の乳化食品が製造されている。
 乳化物及び乳化食品には、乳化力を有するタンパク質としてカゼインナトリウムなどが使用される。さらに乳化力が必要な場合にはグリセリン脂肪酸エステル等の合成乳化剤が使用される。しかしながら、このような合成乳化剤が使用された食品を避けたいという消費者の要望がある。また、乳化力を有するタンパク質として広く用いられているカゼインナトリウムは乳タンパク質、すなわち動物性タンパク質である。現在、人口増加に伴う食糧供給不安から、動物性タンパク質の量を減らすこと、また動物性タンパク質を使用した食品から植物性タンパク質を使用した食品に代替する試みが行われている。
 しかしながら、乳タンパク質の量を減らすとその効果が十分に得られない場合がある。また、植物性タンパク質について、一般に大豆タンパク質やエンドウタンパク質などの植物性タンパク質は、溶液にしたときの粘度の高さ、溶解性、ミネラル耐性、レトルト加熱等の加熱耐性といった点で乳タンパク質に劣り、増粘や凝集物の発生などの問題が生じやすく、配合量が制限されてしまう。そのため、乳タンパク質の代替物として利用が進んでいないのが現状である。
 このため、植物性タンパク質素材自体の改良技術がいくつか提供されている。例えば特許文献1では、分離大豆タンパクに還元糖を添加し加熱処理してメイラード反応を促しつつ、酵素分解を行う技術を提供している。特許文献2では、タンパク質を140℃で30秒間程度加熱処理した後に酵素分解を行い、その後油脂を含有させる技術を提供している。また、特許文献3では、特定の植物性タンパク質素材、油脂、及び任意に炭水化物を特定の比率で混合した乳化組成物が開示されている。これらは植物性タンパク質素材の改良により、タンパク質の溶解性を保持しつつ、低粘度化、乳化力の改良を図ったものである。
国際公開第2009/84529号公報 国際公開第2017/141934号公報 国際公開第2019/189810号公報
 本発明の課題は、改良された乳化力を有するタンパク質素材を提供することである。
 本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、タンパク質素材を変性させ、特定の分子量分布とすることで、改良された乳化力を有するタンパク質素材が得られることを見出し、本発明を完成させた。
 すなわち、本発明は:
(1)下記a)~b)の全特徴を有する変性タンパク質素材:
 a)分子量分布の測定結果で、2,000Da以上20,000Da未満の面積比率が45~90%、及び
 b)粗タンパク質濃度0.1%の変性タンパク質素材の水溶液に250mM塩酸グアニジンを添加した場合に白濁せず、2M硫酸アンモニウムを添加した場合に白濁する;
(2)分子量分布の測定結果で、2,000Da未満の面積比率が45%以下である、(1)の変性タンパク質素材;
(3)分子量分布の測定結果で、10,000Da以上の面積比率が50%未満である、(1)の変性タンパク質素材;
(4)分子量分布の測定結果で、2,000Da未満の面積比率が45%以下であり、10,000Da以上の面積比率が50%未満である、(1)の変性タンパク質素材;
(5)変性タンパク質素材の、タンパク質含量が10質量%、pH7となるように調製した水溶液のOD660nmが0.5以下である、(1)の変性タンパク質素材;
(6)変性タンパク質素材の、タンパク質含量が10質量%、pH7となるように調製した水溶液のOD660nmが0.5以下である、(4)の変性タンパク質素材;
(7)動物性タンパク質を含まない、(1)の変性タンパク質素材;
(8)豆類由来のタンパク質である、(1)の変性タンパク質素材;
(9)豆類由来のタンパク質である、(4)の変性タンパク質素材;
(10)豆類由来のタンパク質である、(6)の変性タンパク質素材、
に関する。
 本発明により、改良された乳化力を有するタンパク質素材を提供できる。本発明の変性タンパク質素材を用いることにより、改良された乳化安定性を有する乳化食品を製造できる。ある例において、本発明の変性タンパク質素材を用いることにより、合成乳化剤等を使用しなくても、乳化安定性を有する乳化食品を製造できる。また、他の例において、本発明の変性タンパク質素材を植物性タンパク質素材から調製することにより、動物性タンパク質素材を使用しなくても、乳化安定性を有する乳化食品を製造できる。さらに、他の例において、乳タンパク質を原料として変性タンパク質素材を調製することにより、乳化力を維持しつつ、乳タンパク質の量を低減することも可能である。
図1は、試験例1、2に記載のArg、分離大豆タンパク質、大豆ペプチド、酵素処理分離大豆タンパク質、及び特許文献3のタンパク質素材の分子量分布を測定したチャートを示す図である。縦軸は強度(μV)、横軸はリテンションタイム(分)を示す。図中の縦線は、左から20,000Da、10,000Da、2,000Daの位置を示す。 図2は、実施例1に記載の変性タンパク質素材A~Eの分子量分布を測定したチャートを示す図である。縦軸は強度(μV)、横軸はリテンションタイム(分)を示す。図中の縦線は、左から20,000Da、10,000Da、2,000Daの位置を示す。
 本発明の一態様である変性タンパク質素材は、以下を特徴とするものである。
 a)分子量分布の測定結果で、2,000Da以上20,000Da未満の面積比率が45~90%、及び
 b)粗タンパク質濃度0.1%の変性タンパク質素材の水溶液に250mM塩酸グアニジンを添加した場合に白濁せず、2M硫酸アンモニウムを添加した場合に白濁する。
 本発明は一態様において変性タンパク質素材を提供する。また、他の態様において変性タンパク質素材の製造方法を提供する。さらに他の態様において、変性タンパク質素材を含む食品を提供する。さらに他の態様において、変性タンパク質素材を含む組成物を提供する。以下、本発明の実施形態について詳細に説明する。
 本明細書において「タンパク質素材」の概念は、タンパク質を主成分とし、各種加工食品や飲料に原料として使用されている食品素材である。また、本明細書において「変性タンパク質素材」とは、変性されたタンパク質を主成分とする食品素材である。
 本開示の変性タンパク質素材の由来となるタンパク質は、動物性タンパク質又は植物性タンパク質、又はそれらの混合物であってもよい。動物性タンパク質の例として、牛、ブタ、鶏、卵、乳由来のタンパク質が挙げられる。植物性タンパク質の例として、大豆、エンドウ、緑豆、空豆、ルピン豆、ヒヨコ豆、インゲン豆、ヒラ豆、ササゲ等の豆類、ゴマ、キャノーラ種子、ココナッツ種子、アーモンド種子等の種子類、とうもろこし、そば、麦、米などの穀物類、野菜類、果物類などが挙げられる。ある実施形態において、本態様の変性タンパク質素材は、タンパク質の50質量%以上が植物性タンパク質由来であり、例えば55質量%以上、60質量%以上、65質量%以上、70質量%以上、75質量%以上、80質量%以上、85質量%以上、90質量%以上、95質量%以上、又は97質量%以上が植物性タンパク質由来であることができ、最も好ましくは100質量%が植物性タンパク質由来である。他の実施形態において、変性タンパク質素材は、乳タンパク質由来のタンパク質素材を含まない。好ましい実施形態において、変性タンパク質素材は、豆類のタンパク質から調製される。さらに好ましい実施形態において、変性タンパク質素材は、大豆タンパク質、エンドウ豆タンパク質、緑豆タンパク質又は空豆タンパク質から調製される。一例として大豆由来のタンパク質素材の場合、脱脂大豆や丸大豆等の大豆原料からさらにタンパク質を濃縮加工して調製されるものであり、一般には分離大豆タンパク質、濃縮大豆タンパク質や粉末豆乳、あるいはそれらを種々加工したものなどが概念的に包含される。
a)分子量分布
 本開示の変性タンパク質素材は、ゲルろ過によって分子量を測定した場合に、その分子量分布の面積比率は、2,000Da以上20,000Da未満が45~90%、例えば、50~85%、55~80%、55~75%、60~70%である。特許文献3に記載のタンパク質素材は、20,000Da以上の面積比率が55%を超えるものであり、この点で本開示の変性タンパク質素材と異なるものである。また、ある実施形態において、2,000Da未満の面積比率は45%以下、例えば、40%以下、35%以下、30%以下、25%以下である。下限は特に限定されないが、例えば0%以上、1%以上、2%以上、5%以上、10%以上、15%以上が挙げられる。また、他の実施形態において、10,000Da以上の面積比率は50%未満、例えば、5~45%、10~40%、15~35%である。さらに、他の実施形態において、20,000Da以上の面積比率は55%未満、例えば50%以下、40%以下、30%以下、25%以下、20%以下、15%以下である。
 変性タンパク質素材の分子量分布がこのような範囲にあることは、中程度に低分子化されたものが主成分であることを示す一方、何ら分解処理等がされていない未分解のタンパク質及び高度に分解された低分子のペプチドは少ないことを示している。なお、分子量分布の測定は、後述する方法に基づくものとする。
b)塩酸グアニジン添加及び硫酸アンモニウム添加
 本開示の変性タンパク質素材は、水溶液に塩酸グアニジンを添加しても白濁しない。これは、タンパク質が十分に変性していることを示す指標であり、このことが、本開示のタンパク質素材が変性タンパク質素材と称される所以である。例えば、分離大豆タンパク質や、カゼインナトリウムなどの変性していないタンパク質に塩酸グアニジンを添加すると、白濁を生じる。本明細書において、塩酸グアニジンを添加して白濁しないことは、粗タンパク質濃度0.1%、塩酸グアニジン250mM水溶液において、目視で白濁がないこと、又は水溶液のOD660nmが0.3未満、例えば0.2以下、0.1以下、0であること、により確認できる。また、本開示の変性タンパク質素材は、水溶液に硫酸アンモニウムを添加すると白濁する。これは、タンパク質がある程度の重合度を有し、ジペプチド、トリペプチドのように過度に分解されたペプチドではないことを示す指標である。本明細書において、硫酸アンモニウムを添加して白濁することは、粗タンパク質濃度0.1%、硫酸アンモニウム2M水溶液において、目視で白濁が認められること、又は水溶液のOD660nmが0.3以上、例えば0.4以上、0.5以上であること、により確認できる。なお、塩酸グアニジン添加及び硫酸アンモニウム添加の手順は、後述する方法に基づくものとする。
 本開示の変性タンパク質素材は、上記a)~b)を満たすものである。以下、特に限定されるものではないが、より具体的な実施形態において変性タンパク質素材が有する特徴について説明する。
c)タンパク質純度
 より具体的な実施形態において、本開示の変性タンパク質素材は固形分中のタンパク質含量が40質量%以上であることが好ましく、例えば、50質量%以上、60質量%以上、70質量%以上、80質量%以上、85質量%以上、又は90質量%以上であることが好ましい。上記範囲に含まれる変性タンパク質素材の原料としては、分離タンパク質が好ましく、例えば大豆由来のタンパク質素材から調製する場合、分離大豆タンパク質などが挙げられる。豆乳レベルのタンパク質含量が低いものから調製した場合、タンパク質を高度に含有する乳化食品を製造するために多量に変性タンパク質素材を配合する必要が生じ、素材としての汎用性を損なう場合がある。
d)粘度
 より具体的な実施形態において、本開示の変性タンパク質素材溶液の粘度を一定条件で測定したときに、低粘度であることが好ましく、具体的にはタンパク質含量が10質量%の水溶液の粘度が60℃で50mPa・s以下、例えば40mPa・s以下、35mPa・s以下、30mPa・s以下、20mPa・s以下、15mPa・s以下、10mPa・s以下、5mPa・s以下、が好ましい。また、粘度の下限は特に限定されないが、例えば0.1mPa・s以上、0.5mPa・s以上、1mPa・s以上等が挙げられる。なお、粘度は後述する方法により測定する。
e)溶解度
 より具体的な実施形態において、本開示の変性タンパク質素材は、室温での水への溶解度が20質量%以上、例えば25質量%以上である。溶解度の上限は特に限定されないが、例えば55質量%以下、50質量%以下、45質量%以下、40質量%以下、35質量%以下が挙げられる。
f)濁度
 より具体的な実施形態において、本開示の変性タンパク質素材の水溶液は、好ましくは濁りが少なく、より好ましくは透明である。より具体的には、本開示の変性タンパク質素材の10%水溶液(pH7)を調製し、一晩静置後の室温でのOD660nmの値が、好ましくは0.5以下、例えば0.3以下、0.2以下、0.1以下、0である。
 特定の実施形態において、本開示の変性タンパク質素材は、上記のe)溶解度及び/又はf)濁度で規定される数値を満たすものであり、それゆえ、「水溶性変性タンパク質素材」とも称される。
g)乳化物のメディアン径
 より具体的な実施形態において、本開示の変性タンパク質素材を含む乳化物のメディアン径は、4μm以下、例えば3μm以下、2μm以下、1μm以下である。より具体的には、粗タンパク質量1%以上、例えば0.5%以上、0.1%以上、0.05%以上で本開示の変性タンパク質素材を含む乳化物で上記のメディアン径を示す。乳化物の調製及びメディアン径の測定は、後述する方法に基づくものとする。
変性・分子量分布調整処理
 本開示の変性タンパク質素材は、タンパク質の変性と、分子量分布の調整を組み合わせることにより得られ得る。タンパク質を変性させる処理の例として、pH調整処理(例えば、酸処理、アルカリ処理)、変性剤処理、加熱処理、冷却処理、高圧処理、有機溶媒処理、ミネラル添加処理、超臨界処理、超音波処理、電気分解処理及びこれらの組み合わせ等が挙げられる。分子量分布を調整する処理の例として、酵素処理、ろ過、ゲルろ過、クロマトグラフィー、遠心分離、電気泳動、透析及びこれらの組み合わせ等が挙げられる。タンパク質を変性させる処理と、分子量分布を調整する処理の順序及び回数は特に限定されず、タンパク質を変性させる処理を行ってから分子量分布を調整する処理を行ってもよいし、分子量分布を調整する処理を行ってからタンパク質を変性させる処理を行ってもよいし、両処理を同時に行ってもよい。また、例えば2回以上の分子量分布を調整する処理の間にタンパク質を変性する処理を行う、2回以上のタンパク質を変性する処理の間に分子量分布を調整する処理を行う、各々複数回の処理を任意の順に行う、等も可能である。なお、タンパク質を変性させる処理によって所望の分子量分布が得られる場合は、分子量分布の調整のための処理を行わなくてもよい。これらの処理を組み合わせて、複数回行う際、原料から全ての処理を連続で行ってもよいし、時間をおいてから行ってもよい。例えば、ある処理を経た市販品を原料として他の処理を行ってもよい。本明細書において、このような処理を便宜上「変性・分子量分布調整処理」と称する。なお、上記特性を満たす限り、変性・分子量分布調整処理を経た変性タンパク質素材と、変性・分子量分布調整処理を経ていないタンパク質を混合して、特定の変性タンパク質素材としてもよい。この場合、両者の比率(変性・分子量分布調整処理を経たタンパク質素材:変性・分子量分布調整処理を経ていないタンパク質)は上記特性を満たす範囲で適宜調整可能であるが、質量比で例えば1:99~99:1、例えば50:50~95:5、75:25~90:10等が挙げられる。ある実施形態では、本開示の変性タンパク質素材は、変性・分子量分布調整処理を経た植物性タンパク質素材からなる。
 タンパク質を変性させる処理の条件、例えば酸、アルカリ、有機溶媒、ミネラル等の濃度、温度、圧力、出力強度、電流、時間等は、当業者が適宜設定できる。pH調整処理の場合、例えばpH2、2.5、3、3.5、4、4.5、5、5.5、6、6.5、7、7.5、8、8.5、9、9.5、10、10.5、11、11.5、12の任意の値を上限、下限とするpH範囲、例えばpH2~12の範囲で処理し得る。酸処理の場合、酸を添加する方法であっても、また、乳酸発酵などの発酵処理を行う方法であってもよい。添加する酸の例として、塩酸、リン酸等の無機酸、酢酸、乳酸、クエン酸、グルコン酸、フィチン酸、ソルビン酸、アジピン酸、コハク酸、酒石酸、フマル酸、リンゴ酸、アスコルビン酸等の有機酸が挙げられる。また、レモンなどの果汁、濃縮果汁、発酵乳、ヨーグルト、醸造酢などの酸を含有する飲食品を用いて酸を添加してもよい。アルカリ処理の場合、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等のアルカリを添加し得る。変性剤処理の場合、塩酸グアニジン、尿素、アルギニン、PEG等の変性剤を添加し得る。加熱又は冷却処理の場合、加熱温度の例として、60℃、70℃、80℃、90℃、100℃、110℃、120℃、125℃、130℃、135℃、140℃、145℃、150℃の任意の温度を上限、下限とする範囲、例えば60℃~150℃が挙げられる。冷却温度の例として、-10℃、-15℃、-20℃、-25℃、-30℃、-35℃、-40℃、-45℃、-50℃、-55℃、-60℃、-65℃、-70℃、-75℃の任意の温度を上限、下限とする範囲、例えば-10℃~-75℃が挙げられる。加熱又は冷却時間の例として、5秒、10秒、30秒、1分、5分、10分、20分、30分、40分、50分、60分、70分、80分、90分、100分、120分、150分、180分、200分の任意の時間を上限、下限とする範囲、例えば5秒間~200分間が挙げられる。高圧処理の場合、圧力の条件の例として、100MPa、200MPa、300MPa、400MPa、500MPa、600MPa、700MPa、800MPa、900MPa、1,000MPaの任意の圧力を上限、下限とする範囲、例えば100MPa~1,000MPaが挙げられる。有機溶媒処理の場合、用いられる溶媒の例として、アルコールやケトン、例えばエタノールやアセトンが挙げられる。ミネラル添加処理の場合、用いられるミネラルの例として、カルシウム、マグネシウムなどの2価金属イオンが挙げられる。超臨界処理の場合、例えば、温度約30℃以上で約7MPa以上の超臨界状態の二酸化炭素を使用して処理できる。超音波処理の場合、例えば100KHz~2MHzの周波数で100~1,000Wの出力で照射して処理し得る。電気分解処理の場合、例えばタンパク質水溶液を100mV~1,000mVの電圧を印加することにより処理し得る。具体的な実施形態において、タンパク質を変性させる処理は、変性剤処理、加熱処理、及びそれらの組み合わせから選択される。
 分子量分布を調整する処理の条件、例えば酵素、ろ材の種類、回転数、電流、時間等は、当業者が適宜設定できる。使用される酵素の例として、「金属プロテアーゼ」、「酸性プロテアーゼ」、「チオールプロテアーゼ」、「セリンプロテアーゼ」に分類されるプロテアーゼが挙げられる。反応温度は20~80℃、好ましくは40~60℃で反応を行うことができる。ろ材の例として、ろ紙、ろ布、ケイ藻土、セラミック、ガラス、メンブラン等が挙げられる。ゲルろ過の担体の例として、デキストラン、アガロース等が挙げられる。遠心分離の条件の例として、1,000~3,000G、5~20分間等が挙げられる。
 本開示の変性タンパク質素材には、その機能を損なわない限度で他の原料を添加してもよいし、しなくてもよい。他の原料の例として、調味料、酸味料、甘味料、香辛料、着色料、香料、塩類、糖類、酸化防止剤、ビタミン、安定剤、増粘剤、担体、賦形剤、潤滑剤、界面活性剤、噴射剤、防腐剤、キレート剤、pH調整剤、等が挙げられる。なお、具体的な実施形態において、本開示の変性タンパク質素材は、動物由来の成分を含まない。
 本開示の変性タンパク質素材の形態は特に限定されず、例えば、粉末、顆粒、ペレット等の固体、ペースト等の半固体、及び溶液、懸濁液、エマルジョン等の液体が挙げられる。具体的な実施形態において、変性タンパク質は粉末であり、例えば、噴霧乾燥、凍結乾燥などの乾燥工程を経て調製される。
 本開示の変性タンパク質素材は、食品に配合する、又は組成物の原料として使用する、ことができる。本開示の変性タンパク質素材は改良された乳化力を有することから、乳化食品、乳化組成物に好適に使用できる。本開示の変性タンパク質素材の使用用途、添加量は当業者が適宜選択、決定できる。ある実施形態において、本開示の変性タンパク質素材の添加量の例として、食品又は組成物当たり0.1~70質量%、0.5~60質量%、1~50質量%、5~45質量%、10~40質量%が挙げられる。
(測定方法)
 本明細書において、変性タンパク質素材に関する成分や物性の測定は、以下の方法に準ずる。
<タンパク質含量>
 ケルダール法により測定する。具体的には、105℃で12時間乾燥したタンパク質素材質量に対して、ケルダール法により測定した窒素の質量を、乾燥物中のタンパク質含量として「質量%」で表す。なお、窒素換算係数は6.25とする。基本的に、小数点以下第2桁の数値を四捨五入して求められる。
<分子量分布>
 溶離液でタンパク質素材を0.1質量%濃度に調整し、0.2μmフィルターでろ過したものを試料液とする。2種のカラム直列接続によってゲルろ過システムを組み、はじめに分子量マーカーとなる既知のタンパク質等(表1)をチャージし、分子量と保持時間の関係において検量線を求める。次に試料液をチャージし、各分子量画分の含有量比率%を全体の吸光度のチャート面積に対する、特定の分子量範囲(時間範囲)の面積の割合によって求める(1stカラム:「TSK gel G3000SWXL」(SIGMA-ALDRICH社)、2ndカラム:「TSK gel G2000SWXL」(SIGMA-ALDRICH社)、溶離液:1%SDS+1.17%NaCl+50mMリン酸バッファー(pH7.0)、23℃、流速:0.4ml/分、検出:UV220nm)。基本的に、小数点以下第2桁の数値を四捨五入して求められる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
<塩酸グアニジン添加>
 粗タンパク質濃度が0.2%のタンパク質素材の水溶液を調製する。水溶液調製時に白濁した場合は、1ないし10%程度の水溶液を調製後遠心分離し、上清を回収し、粗タンパク質濃度0.2%となるよう希釈して試料溶液とする。これに塩酸グアニジン溶液を等量添加して粗タンパク質濃度0.1%、塩酸グアニジン濃度250mMの溶液を調製し、一晩冷蔵庫で静置する。目視で白濁の有無を確認する。あわせて、10mmガラスセルを用いて、波長660nmで濁度を測定する。
<硫酸アンモニウム添加>
 粗タンパク質濃度が0.2%のタンパク質素材の水溶液を調製する。水溶液調製時に白濁した場合は、1ないし10%程度の水溶液を調製後遠心分離し、上清を回収し、粗タンパク質濃度0.2%となるよう希釈して試料溶液とする。これに硫酸アンモニウム溶液を等量添加して粗タンパク質濃度0.1%、硫酸アンモニウム濃度2Mの溶液を調製し、一晩冷蔵庫で静置する。目視で白濁の有無を確認する。あわせて、10mmガラスセルを用いて、波長660nmで濁度を測定する。
<粘度>
 タンパク質素材の粘度は、タンパク質含量が10質量%となるように該タンパク質素材の水溶液を調製し、60℃にてB型粘度計(望ましくはBrookfield社)でローターは「#LV-1」を使用し、100rpmで1分後に示された測定値として求められる。「#LV-1」で測定不能な場合は順次ローターを「#LV-2」、「#LV-3」、「#LV-4」、「#LV-5」に代えて使用する。「#LV-1」/100rpmで低粘度により測定不能の場合は「下限」とし、「#LV-5」/100rpmで高粘度により測定不能な場合は「上限」とする。
<乳化物のメディアン径>
 メディアン径は、レーザ回折式粒度分布測定装置(望ましくは株式会社島津製作所)で測定する。変性タンパク質素材、油脂、水を混合し、粗タンパク質量1%、0.5%、0.1%、0.05%、油分20%の乳化物を調製して試料とする。基本的に、小数点以下第2桁の数値、数値が低い場合は有効数字を2桁として次の桁の数値、を四捨五入して求められる。
 以下、実施例等により本発明の実施形態をより具体的に説明する。なお、例中の「%」と「部」は特記しない限り「質量%」と「質量部」を示す。
試験例1:タンパク質変性の検討
 分離大豆タンパク質(不二製油株式会社)水溶液に、変性剤としてアルギニンを0.5Mとなるように添加した。その後、この水溶液を121℃10分間加熱した後、MW3500透析チューブを用いて変性剤を除去した後、フリーズドライして粉末状のタンパク質素材(Argと称する)を得た。Arg、MCT64(中鎖脂肪酸油脂、不二製油株式会社)、水を混合して、油分20%、粗タンパク質濃度1%、0.5%、0.1%、0.05%となるように混合し、超音波処理により乳化物を調製した。調製した乳化物を冷蔵保管した後、メディアン径をレーザ回折式粒度分布測定装置(株式会社島津製作所)で測定した。対照として、原料の分離大豆タンパク質を使用して同様に乳化物を調製し、メディアン径を測定した。結果を表2に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
 上記の結果より、変性剤の添加及び加熱により、分離大豆タンパク質に比較して改良された乳化力が得られた。
試験例2:分子量分布の検討
 分離大豆タンパク質の代わりに、大豆ペプチド(ハイニュートAM、不二製油株式会社)、酵素分解分離大豆タンパク質(不二製油株式会社)又は特許文献3のサンプルA(以下、特許文献3のタンパク質素材と称する)を用いて、試験例1と同様に乳化物を調製し、メディアン径を測定した。結果を表3に示す。また、上記Arg、分離大豆タンパク質、酵素処理分離大豆タンパク質、特許文献3のタンパク質素材の分子量分布を、上記方法に従って測定した。なお、分子量20,000Daに対応するRTは38.4分、10,000Daに対応するRTは41.2分、2,000Daに対応するRTは48.2分であった。結果を図1、表4に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
 表3に示すとおり、ほぼジ・トリペプチドまで分解された大豆ペプチドは乳化力を失っていた。これに対し、酵素分解分離大豆タンパク質は、分離大豆タンパク質よりも良好な乳化力を示しており、表4の分子量分布と合わせて検討すると、2,000Da以上、20,000Da未満の画分が乳化力に優れており、変性させることでさらに優れた乳化力を得られることが予想された。
実施例1:変性タンパク質素材の調製
 分離大豆タンパク質(不二製油株式会社)水溶液に、変性剤としてアルギニンを0.5Mとなるように添加した。この水溶液を121℃10分間加熱した後、脱塩し、塩酸でpH4.5に調整し、10,000G、10分間遠心分離し、上清を回収した。回収した上清をMW3500透析チューブを用いて脱塩し、再度10,000G、10分間遠心分離し、上清を回収して、フリーズドライに供し、変性タンパク質素材Aを得た。
 分離大豆タンパク質(不二製油株式会社)水溶液に、変性剤として塩酸グアニジンを4Mとなるように添加した。この水溶液を121℃10分間加熱した後、冷却し、塩酸でpH4.5に調整し、10,000G、10分間遠心分離し、上清を回収した。回収した上清をMW3500透析チューブを用いて脱塩し、再度10,000G、10分間遠心分離し、上清を回収して、フリーズドライに供し、変性タンパク質素材Bを得た。
 酵素分解分離大豆タンパク質(不二製油株式会社)水溶液に、変性剤としてアルギニンを0.5Mとなるように添加した。この水溶液を121℃10分間加熱した後、脱塩し、塩酸でpH4.5に調整し、10,000G、10分間遠心分離し、上清を回収した。回収した上清をMW3500透析チューブを用いて脱塩し、再度10,000G、10分間遠心分離し、上清を回収して、フリーズドライに供し、変性タンパク質素材Cを得た。
 酵素分解分離大豆タンパク質(不二製油株式会社)水溶液に、変性剤として尿素を4Mとなるように添加した。この水溶液を121℃10分間加熱した後、脱塩し、塩酸でpH4.5に調整し、10,000G、10分間遠心分離し、上清を回収した。回収した上清をMW3500透析チューブを用いて脱塩し、再度10,000G、10分間遠心分離し、上清を回収して、フリーズドライに供し、変性タンパク質素材Dを得た。
 酵素分解分離大豆タンパク質(不二製油株式会社)水溶液に、変性剤として塩酸グアニジンを4Mとなるように添加した。この水溶液を121℃10分間加熱した後、MW3500透析チューブを用いて脱塩し、10,000G、10分間遠心分離し、上清を回収して、フリーズドライに供し、変性タンパク質素材Eを得た。
 得られた変性タンパク質素材A~Eを用いて、試験例1と同様に乳化物を調製し、メディアン径を測定した。結果を表5に示す。また、変性タンパク質素材A~Eの分子量分布を、上記方法に従って測定した。結果を図2、表6に示す。また、これら変性タンパク質素材のタンパク質含量は、どれも80質量%以上であった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
 表5に示すとおり、特定の分子量分布を有する変性タンパク質素材は、改良された乳化力を示した。特許文献3のタンパク質素材は粗タンパク質量1%以上で乳化力を示していたが、本発明の変性タンパク質素材は粗タンパク質量0.5%からでも良好な乳化力を示していた。
 変性タンパク質素材Aを蒸留水に溶解し、NaOHでpHを調整して、pH7の10質量%溶液を調製した。一晩静置して、室温で測定したこの溶液のOD660nmは、0.13であった。また、この溶液の60℃での粘度は3.1mPa・sであった。
塩酸グアニジン及び硫酸アンモニウムの添加
 変性タンパク質素材A~E、大豆ペプチド、酵素分解分離大豆タンパク質、分離大豆タンパク質に対して、上記の方法に基づき塩酸グアニジン及び硫酸アンモニウムの添加を行った。結果を表7に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
 表7に示すとおり、変性タンパク質素材A~Eは、塩酸グアニジンを添加しても白濁せず、タンパク質が変性されていることが示された。また、ほぼジ・トリペプチドまで分解された大豆ペプチドは硫酸アンモニウムを添加しても透明であったが、他の試料は硫酸アンモニウム添加により白濁した。
実施例2:大豆以外のタンパク質での検討
 分離大豆タンパク質の代わりに、分離エンドウ豆タンパク質、リョクトウタンパク質、ソラマメタンパク質を変性・分子量分布調整処理に供して、それぞれ変性タンパク質素材F、G、Hを得た。実施例1と同様に、乳化物のメディアン径及びタンパク質素材の分子量分布を測定した。結果を表8、9に示す。また、これら変性タンパク質素材のタンパク質含量は、どれも80質量%以上であった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
 上記のとおり、大豆タンパク質の代わりにエンドウ豆、リョクトウ、ソラマメタンパク質を用いた場合でも、改良された乳化力を有する変性タンパク質素材が得られた。また、これらの変性タンパク質素材も、塩酸グアニジンを添加しても白濁せず、硫酸アンモニウム添加により白濁した。
 特定の分子量分布を有し、変性した変性タンパク質素材は、従来のタンパク質素材と比べて改良された乳化力を有する。本変性タンパク質素材は、食品、組成物、医薬組成物等に利用可能である。

Claims (10)

  1.  下記a)~b)の全特徴を有する変性タンパク質素材:
     a)分子量分布の測定結果で、2,000Da以上20,000Da未満の面積比率が45~90%、及び
     b)粗タンパク質濃度0.1%の変性タンパク質素材の水溶液に250mM塩酸グアニジンを添加した場合に白濁せず、2M硫酸アンモニウムを添加した場合に白濁する。
  2.  分子量分布の測定結果で、2,000Da未満の面積比率が45%以下である、請求項1に記載の変性タンパク質素材。
  3.  分子量分布の測定結果で、10,000Da以上の面積比率が50%未満である、請求項1に記載の変性タンパク質素材。
  4.  分子量分布の測定結果で、2,000Da未満の面積比率が45%以下であり、10,000Da以上の面積比率が50%未満である、請求項1に記載の変性タンパク質素材。
  5.  変性タンパク質素材の、タンパク質含量が10質量%、pH7となるように調製した水溶液のOD660nmが0.5以下である、請求項1に記載の変性タンパク質素材。
  6.  変性タンパク質素材の、タンパク質含量が10質量%、pH7となるように調製した水溶液のOD660nmが0.5以下である、請求項4に記載の変性タンパク質素材。
  7.  動物性タンパク質を含まない、請求項1に記載の変性タンパク質素材。
  8.  豆類由来のタンパク質である、請求項1に記載の変性タンパク質素材。
  9.  豆類由来のタンパク質である、請求項4に記載の変性タンパク質素材。
  10.  豆類由来のタンパク質である、請求項6に記載の変性タンパク質素材。
PCT/JP2022/015616 2021-03-30 2022-03-29 変性タンパク質素材 WO2022210752A1 (ja)

Priority Applications (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2022549679A JP7211570B1 (ja) 2021-03-30 2022-03-29 変性タンパク質素材
CA3203850A CA3203850A1 (en) 2021-03-30 2022-03-29 Denatured protein material
AU2022248475A AU2022248475A1 (en) 2021-03-30 2022-03-29 Denatured protein material
CN202280022256.5A CN117098459A (zh) 2021-03-30 2022-03-29 变性蛋白质原材料
EP22780963.9A EP4285734A4 (en) 2021-03-30 2022-03-29 DENATURED PROTEIN MATERIAL
US18/267,895 US20240041083A1 (en) 2021-03-30 2022-03-29 Denatured protein material

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2021056902 2021-03-30
JP2021-056902 2021-03-30

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2022210752A1 true WO2022210752A1 (ja) 2022-10-06

Family

ID=83456357

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2022/015616 WO2022210752A1 (ja) 2021-03-30 2022-03-29 変性タンパク質素材

Country Status (7)

Country Link
US (1) US20240041083A1 (ja)
EP (1) EP4285734A4 (ja)
JP (1) JP7211570B1 (ja)
CN (1) CN117098459A (ja)
AU (1) AU2022248475A1 (ja)
CA (1) CA3203850A1 (ja)
WO (1) WO2022210752A1 (ja)

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0670691A (ja) * 1992-08-28 1994-03-15 Nisshin Oil Mills Ltd:The 蛋白質分解物ペーストおよびそれを含有する食品
WO2009084529A1 (ja) 2007-12-27 2009-07-09 Fuji Oil Company, Limited 新規大豆たん白素材及びその製造方法
WO2017141934A1 (ja) 2016-02-18 2017-08-24 不二製油グループ本社株式会社 油脂含有大豆たん白素材及びそれを用いた水中油型乳化物
WO2019189810A1 (ja) 2018-03-30 2019-10-03 不二製油グループ本社株式会社 乳化食品製造用タンパク質含有油脂乳化組成物
JP2021056902A (ja) 2019-09-30 2021-04-08 ブラザー工業株式会社 工作機械、計測方法及びコンピュータプログラム

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0670691A (ja) * 1992-08-28 1994-03-15 Nisshin Oil Mills Ltd:The 蛋白質分解物ペーストおよびそれを含有する食品
WO2009084529A1 (ja) 2007-12-27 2009-07-09 Fuji Oil Company, Limited 新規大豆たん白素材及びその製造方法
WO2017141934A1 (ja) 2016-02-18 2017-08-24 不二製油グループ本社株式会社 油脂含有大豆たん白素材及びそれを用いた水中油型乳化物
WO2019189810A1 (ja) 2018-03-30 2019-10-03 不二製油グループ本社株式会社 乳化食品製造用タンパク質含有油脂乳化組成物
JP2021056902A (ja) 2019-09-30 2021-04-08 ブラザー工業株式会社 工作機械、計測方法及びコンピュータプログラム

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SHEN WENPU, XIANG LI, MD. RAMIM TANVER RAHMAN, NABIL QAID M. AL-HAJJ, KAMALESH CHANDRA DEY, SALEH MUHAMMED RAQIB: "Review: Emulsification properties of soy bean protein", NUSANTARA BIOSCIENCE, vol. 6, no. 2, 30 November 2014 (2014-11-30), pages 196 - 202, XP055971872, ISSN: 2087-3948, DOI: 10.13057/nusbiosci/n060213 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN117098459A (zh) 2023-11-21
JPWO2022210752A1 (ja) 2022-10-06
JP7211570B1 (ja) 2023-01-24
EP4285734A1 (en) 2023-12-06
EP4285734A4 (en) 2024-07-17
AU2022248475A1 (en) 2023-07-20
CA3203850A1 (en) 2022-06-10
US20240041083A1 (en) 2024-02-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US8309159B2 (en) Process for obtaining legume protein fractions of moderate molecular weight, legume protein fractions and use thereof
EP2912952B1 (en) Production of acid soluble soy protein isolates ("s800")
TWI758235B (zh) 豆類蛋白質產品(「yp810」)的製備
Miedzianka et al. Properties of acetylated potato protein preparations
CA2886613A1 (en) Production of pulse protein product using calcium chloride extraction ("yp702")
JP6900386B2 (ja) 根または塊茎ジュースの凍結濃縮法
Ye et al. Flaxseed protein: Extraction, functionalities and applications
Hansen The optimization and scale-up of pea protein extractions and impact on structural and functional properties
Corzo‐Martínez et al. Impact of high‐intensity ultrasound on protein structure and functionality during food processing
Kempka et al. Functional properties of soy protein isolate of crude and enzymatically hydrolysed at different times.
JP7211570B1 (ja) 変性タンパク質素材
Cruz-Solis et al. Alkaline extraction–isoelectric precipitation of plant proteins
Hu et al. Potato proteins for technical applications: Nutrition, isolation, modification and functional properties-a review
EP2988619B1 (en) Soybean extraction process
Stanojević et al. Distribution of beta-amylase and lipoxygenase in soy protein products obtained during tofu production
Liu et al. Effects of high hydrostatic pressure on the solubilities and structures of Alaska pollock protein
WO2022210754A1 (ja) 乳化食品製造用タンパク質含有油脂乳化組成物
WO2024024671A1 (ja) 動物細胞増殖促進剤
WO2024075757A1 (ja) 酸性調味料
WO2023145757A1 (ja) 高油分水中油型油脂乳化組成物
JP7365534B1 (ja) 水中油型乳化物及び水中油型乳化物の製造方法
CN113677214B (zh) 含有乳清蛋白质的中性液体蛋白质饮料的制造方法
CN117770323A (zh) 含油脂食品用起泡剂
WO2023119810A1 (ja) 高度不飽和脂肪酸を含有する粉末油脂
WO2023162607A1 (ja) 親水性粉末油脂およびその製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2022549679

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 22780963

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 18267895

Country of ref document: US

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 3203850

Country of ref document: CA

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2022248475

Country of ref document: AU

Date of ref document: 20220329

Kind code of ref document: A

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2022780963

Country of ref document: EP

Ref document number: 22780963.9

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2022780963

Country of ref document: EP

Effective date: 20230829

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 202280022256.5

Country of ref document: CN

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE