WO2020256526A1 - 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측을 위한 소변 엑소좀 바이오마커 - Google Patents

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Definitions

  • the present invention relates to a biomarker related to antibody-mediated rejection (ABMR) after kidney transplantation, a composition, a kit for diagnosing antibody-mediated rejection, or predicting the prognosis for rejection after kidney transplantation, and antibody-mediated using the same It relates to a method of providing information for the diagnosis of sexual rejection or predicting the prognosis of rejection after kidney transplantation.
  • ABMR antibody-mediated rejection
  • urine biomarkers for diagnosing acute rejection after kidney transplantation are known (Suthanthiran et al., Urinary-Cell mRNA Profile and Acute Cellular Rejection in Kidney Allografts. The New England Journal of Medicine (2013) 369;1).
  • a biomarker that can distinguish between T cell mediated rejection and antibody mediated rejection and furthermore, a biomarker that can be diagnosed by distinguishing between BK virus nephropathy and transplant rejection, which is a complication after kidney transplantation, was discovered and renalized.
  • BK virus nephropathy and transplant rejection which is a complication after kidney transplantation
  • kidney transplant rejection diagnostic markers As a result of the inventors' diligent efforts to discover non-invasive and accurate kidney transplant rejection diagnostic markers, the present inventors identified new biomarkers that can predict the presence or absence of kidney transplant rejection and the type of rejection through a proteomic approach. The invention was completed.
  • the purpose of this study is to determine the progress of treatment after kidney transplantation and to select an appropriate treatment method by discovering markers for diagnosing kidney transplant rejection or predicting prognosis.
  • the present invention is a biologic for diagnosing antibody-mediated rejection after kidney transplantation or predicting the prognosis of patients after kidney transplantation, including any one or more proteins selected from the group consisting of LBP, and CST3 or a gene encoding the same.
  • a marker composition is provided.
  • the present invention is a diagnosis of antibody-mediated rejection after kidney transplantation comprising a substance for measuring the expression level of mRNA of any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 or a gene encoding the protein, or It provides a composition for predicting the prognosis of patients after kidney transplantation.
  • the substance measuring the expression level of the mRNA may be a primer or probe that specifically binds to the gene.
  • the substance for measuring the expression level of the protein is an antibody, an interacting protein, a ligand, an oligopeptide, a peptide nucleic acid, which specifically binds to the protein or fragment thereof.
  • PNA PNA
  • nanoparticles or aptamers PNA
  • the present invention provides a kit for diagnosing antibody-mediated rejection after kidney transplantation or predicting the prognosis of patients after kidney transplantation, comprising the above-described composition.
  • the present invention comprises measuring the expression level of the mRNA of any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 or a gene encoding the same in a sample isolated from an individual.
  • the sample may be urine or urine-derived exosomes.
  • the method compares the measured protein or mRNA expression level with a sample of a normal control group that did not receive a kidney transplant or a sample of a patient group that did not show rejection or BK virus infectious nephropathy after a kidney transplant. If the result corresponds to any one or more selected from the group consisting of the following a) and b), the step of determining as antibody mediated rejection may be further included:
  • the present invention comprises the step of measuring the mRNA expression level of any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 or a gene encoding the same in a sample isolated from an individual, rejection after kidney transplantation Provides a way to provide the information needed to make a treatment decision.
  • the sample may be urine or urine-derived exosomes.
  • the method compares the measured protein or mRNA expression level with a sample of a normal control group that did not receive a kidney transplant or a sample of a patient group that did not show rejection or BK virus infectious nephropathy after a kidney transplant. If the result corresponds to any one or more selected from the group consisting of the following a) and b), it may further include the step of determining as antibody-mediated rejection, and determining to apply a treatment for antibody-mediated rejection.
  • a) and b the method may further include the step of determining as antibody-mediated rejection, and determining to apply a treatment for antibody-mediated rejection.
  • the present invention comprises the steps of: a) measuring the mRNA expression level of any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 or a gene encoding the same in a sample isolated from an individual; b) comparing the expression level measured in step a) with a sample of a normal control group that did not receive a kidney transplant or a patient group that did not show rejection or BK virus nephropathy after a kidney transplant; c) As a result of the comparison of step b), the expression level in the sample isolated from the subject in step a) was in the sample of the normal control group who did not receive a kidney transplant or the patient group who did not show rejection or BK virus nephropathy after a kidney transplant. If it is higher than the expression level, determining as antibody-mediated rejection after kidney transplantation; And d) applying an antibody-mediated rejection therapy to the individual in step a). It provides a method for diagnosing and treating antibody-mediated rejection after kidney transplantation.
  • the sample may be urine or urine-derived exosomes.
  • the treatment of antibody-mediated rejection in step d) includes steroids, plasmapheresis (PP), intravenous immunoglobulin (IVIG), and anti-CD20 antibody (rituximab). ), anti-lymphocyte-depleting antibody, proteasome inhibitor, Cl-inhibitor, and monoclonal antibody against complement factor 5 (monoclonal antibody against complement factor 5). .
  • the present invention provides a method comprising: a) treating a sample isolated from an individual having an antibody-mediated rejection reaction after kidney transplantation with a candidate material for an antibody-mediated rejection treatment after kidney transplantation; And b) measuring the mRNA expression level of any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 or a gene encoding the same; comprising, a screening method for an antibody-mediated rejection treatment agent after kidney transplantation .
  • the sample may be urine or urine-derived exosomes.
  • the screening method is c) the expression level of the mRNA of any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 measured in step b) or the gene encoding the candidate material. If it is down-regulated than before treatment, the step a) may further include determining the candidate material of step a) as a therapeutic agent for antibody-mediated rejection reaction after kidney transplantation.
  • the biomarker provided by the present invention specifically and remarkably increases in expression in patients exhibiting antibody-mediated rejection after kidney transplantation
  • the biomarker protein of the present invention or a substance for measuring the expression level of the gene encoding the same is included. Through the composition, kit, or detection method, it is possible to accurately and quickly diagnose whether or not kidney transplant rejection and the type of rejection reaction.
  • the biomarker of the present invention is specifically expressed in antibody-mediated rejection patients, differentially from other types of transplant rejection or BK virus nephropathy, which is common after transplantation, the antibody-mediated rejection is accurately determined. It can be quickly identified, and can provide the information necessary to decide on a treatment plan later.
  • 1 is a diagram showing the selection process of biomarkers representing TCMR, ABMR and BKVN groups.
  • FIG. 2 is a diagram showing the results of confirming the protein of the ABMR group in which the expression level differs by more than 2 times when compared with the NOMOA group using a volcano plot.
  • FIG. 3 is a diagram showing the results of selecting a total of 46 proteins present at the intersection site of a t-test result and a volcano plot result as a biomarker candidate material for ABMR.
  • TCMR T-cell mediated rejection group
  • ABMR antibody mediated rejection group
  • NOMOA group without major abnormalities
  • DONOR donor group
  • FIG. 5 is a diagram showing the results of final selection of eight proteins whose expression patterns are significantly different from those of the TCMR group and the BKVN group among the ABMR biomarker candidate substances.
  • Example 6 is a result of performing ROC curve analysis by analyzing the expression levels of 8 kinds of antibody-mediated rejection biomarkers selected in Example 4-4 of the present invention.
  • 7A and 7B show the results of performing verification by Western blot analysis for 2 types selected through an additional step among the 8 antibody-mediated rejection biomarkers selected in Example 4-4 of the present invention (7a: LBP and 7b: CST3 (Cystatin C)).
  • Example 8 is a result of performing ROC curve analysis for the two biomarkers LBP and CST3 finally selected in Example 4-5 of the present invention.
  • candidate proteins were selected based on proteomic analysis.
  • a total of 1820 proteins were detected, of which 46 proteins having a markedly different expression profile between the "NOMOA and DONOR group” and the "ABMR group” were selected.
  • 46 proteins having a markedly different expression profile between the "NOMOA and DONOR group” and the "ABMR group” were selected.
  • eight proteins showing significantly different expression patterns from the TCMR group or the BKVN group were identified among 46 proteins.
  • the identified proteins are LBP (Lipopolysaccharide-binding protein, UniProt Accession No.P18428), CSRP1 (Cysteine and glycine-rich protein 1, UniProt Accession No.P21291), SERPINF2 (Alpha-2 -antiplasmin, UniProt Accession No.P08697), RBP4 (Retinol-binding protein 4, UniProt Accession No.P02753), CST3 (Cystatin-C, UniProt Accession No.P01034), CFD (Complement factor D, UniProt Accession No.P00746) , SERPINA4 (Kallistatin, UniProt Accession No. P29622), PON1 (Serum paraoxonase/arylesterase 1, UniProt Accession No. P27169).
  • LBP Lipopolysaccharide-binding protein, UniProt Accession No.P18428
  • CSRP1 Cysteine and glycine
  • LBP Lipopolysaccharide-binding protein
  • CST3 Cystatin C
  • selected biomarkers involved in poor prognosis after kidney transplantation that is, any one or more proteins selected from the group consisting of LBP (Lipopolysaccharide-binding protein) and CST3 (Cystatin-C), or a gene encoding the same
  • LBP Lipopolysaccharide-binding protein
  • CST3 Cystatin-C
  • Renal allograft rejection refers to a series of immune reactions that occur when the recipient's immune system to which the donor's kidney is transplanted recognizes the transplanted kidney as an external antigen, and is antibody-mediated according to the mechanism of development and the findings of a new biopsy. It can be classified into antibody mediated rejection (ABMR), T cell mediated rejection (TCMR), and mixed rejection in which all of them appear in combination.
  • ABMR antibody mediated rejection
  • TCMR T cell mediated rejection
  • mixed rejection in which all of them appear in combination.
  • the biomarker discovered in the present invention is a protein that is specifically highly expressed in antibody-mediated rejection, acute antibody-mediated rejection (CAMR) or chronic active antibody-mediated rejection (chronic It is useful for diagnosing antibody-mediated rejection, including active antibody mediated rejection.
  • ACR acute antibody-mediated rejection
  • chronic chronic active antibody-mediated rejection
  • biomarker refers to a molecule that is quantitatively or qualitatively associated with the presence of a biological phenomenon
  • the biomarker of the present invention is a protein capable of confirming whether there is an antibody-mediated rejection reaction after kidney transplantation or a gene encoding the same Or, it refers to a protein that is a criterion for predicting a patient with a good or poor prognosis, or a gene encoding it.
  • Biomarkers can be derived from genomic nucleotide sequences or from expressed nucleotide sequences (eg, from RNA, nRNA, mRNA, cDNA, etc.), or from encoded polypeptides.
  • the term includes nucleic acid sequences that are complementary to or flanked by a marker sequence, such as nucleic acids used as probes or primer pairs capable of amplifying the marker sequence.
  • the biomarker in the urine of a patient exhibiting antibody-mediated rejection compared to a group without major abnormality (NOMOA) on a biopsy among kidney transplant patients.
  • ABMR antibody-mediated rejection
  • NOMOA major abnormality
  • the'expression' means that a protein or nucleic acid is produced in a cell.
  • 'Protein' is used interchangeably with'polypeptide' or'peptide', for example, refers to a polymer of amino acid residues as commonly found in proteins in nature.
  • 'Polynucleotide' or'nucleic acid' refers to deoxyribonucleotides (DNA) or ribonucleotides (RNA) in the form of single- or double-stranded. Unless otherwise limited, also include known analogs of natural nucleotides that hybridize to nucleic acids in a manner similar to those of naturally occurring nucleotides.
  • 'mRNA' refers to RNA that transfers genetic information (gene-specific nucleotide sequence) to ribosomes that specify amino acid sequences from specific genes during protein synthesis.
  • diagnosis in the present invention is to determine the presence or occurrence of a pathology of antibody-mediated rejection after kidney transplantation by measuring the level of any one or more proteins or mRNAs selected from the group consisting of LBP and CST3.
  • predicting prognosis means preliminarily counting and guessing the medical outcome, and for the purposes of the present invention, the course of the disease of a patient receiving a kidney transplant (pathology, improvement, transplant rejection, drug resistance) It means to guess in advance.
  • the prognosis includes a positive prognosis (positive prognosis) or a negative prognosis (negative or poor prognosis), and in the present invention, a positive prognosis means that rejection or related symptoms or diseases do not occur after a kidney transplant, A negative prognosis indicates that a rejection reaction or related symptoms occurred after kidney transplantation, and the type of rejection reaction was antibody-mediated rejection.
  • the present invention also provides a composition for diagnosing antibody-mediated rejection after kidney transplantation or predicting the prognosis of patients after kidney transplant, comprising a substance for measuring the expression level of mRNA or protein thereof of the two biomarkers of the present invention do.
  • the composition for diagnosing or predicting prognosis of the present invention is for measuring the expression level of mRNA
  • the substance for measuring the mRNA expression level is specific for a gene encoding any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 or its mRNA. It may be a probe or a set of primers that bind to each other.
  • primer is a nucleic acid sequence having a short free 3'hydroxyl group, which can form a complementary template and a base pair, and serves as a starting point for copying the template. It refers to a short functional nucleic acid sequence.
  • PCR amplification is performed using the sense and antisense primers of the genes encoding the two biomarker proteins described above, and the rejection reaction of kidney transplantation can be diagnosed or the prognosis can be predicted through whether the desired product is generated.
  • the PCR conditions, the length of the sense and antisense primers can be modified based on those known in the art.
  • the term "probe” refers to a nucleic acid fragment such as RNA or DNA corresponding to a short number of bases to several hundred bases capable of specific binding to mRNA, and is labeled You can check the presence or absence of a specific mRNA.
  • the probe may be prepared in the form of an oligonucleotide probe, a single stranded DNA probe, a double stranded DNA probe, an RNA probe, or the like.
  • hybridization is performed using a probe complementary to the mRNA of the gene encoding the biomarker protein of the present invention, and the antibody-mediated rejection reaction after kidney transplantation can be diagnosed or the prognosis can be predicted through hybridization. Selection of suitable probes and conditions for hybridization can be modified based on those known in the art.
  • the primer or probe of the present invention can be chemically synthesized using a phosphoramidite solid support method or other well known method.
  • Such nucleic acid sequences can also be modified using a number of means known in the art. Non-limiting examples of such modifications include methylation, encapsulation, substitution of one or more homologs of natural nucleotides, and modifications between nucleotides, such as uncharged linkers (e.g., methyl phosphonate, phosphotriester, phosphoro Amidates, carbamates, etc.) or to charged linkers (eg phosphorothioate, phosphorodithioate, etc.).
  • uncharged linkers e.g., methyl phosphonate, phosphotriester, phosphoro Amidates, carbamates, etc.
  • charged linkers eg phosphorothioate, phosphorodithioate, etc.
  • the substance for measuring the expression level of the biomarker protein may be an antibody that specifically binds to one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3.
  • an antibody is a term known in the art and refers to a specific protein molecule directed against an antigenic site.
  • an antibody refers to an antibody that specifically binds to the biomarker protein of the present invention, and such an antibody is encoded by the biomarker gene by cloning each gene into an expression vector according to a conventional method.
  • Proteins can be obtained and produced from the obtained proteins by conventional methods. This includes partial peptides that can be made from the protein, and the partial peptides of the present invention include at least 7 amino acids, preferably 9 amino acids, more preferably 12 or more amino acids.
  • the form of the antibody of the present invention is not particularly limited, and any polyclonal antibody, monoclonal antibody, or any one having antigen-binding properties is also included in the antibody of the present invention, and all immunoglobulin antibodies are included. Furthermore, the antibody of the present invention also includes special antibodies such as humanized antibodies.
  • the antibody against the protein encoded by the biomarker gene of the present invention may be any antibody that can be prepared by a method known in the art.
  • the antibody used for diagnosis of antibody-mediated rejection after kidney transplantation of the present invention or detection of a predictive prognostic marker is a complete form having two full-length light chains and two full-length heavy chains, as well as of the antibody molecule. It may contain functional fragments.
  • the functional fragment of the antibody molecule refers to a fragment having at least an antigen-binding function, and may be Fab, F(ab'), F(ab')2, Fv, etc., but is not particularly limited thereto.
  • the present invention comprises the above-described composition for diagnosing antibody-mediated rejection after kidney transplantation or predicting prognosis of patients after kidney transplantation, diagnosis of antibody-mediated rejection after kidney transplantation, or predicting prognosis of patients after kidney transplantation Kits are provided.
  • the kit may be an RT-PCR kit, a competitive RT-PCR kit, a real-time RT-PCR kit, a DNA chip kit, or a protein chip kit.
  • a composition comprising an antibody that recognizes the two biomarker proteins or a primer, a probe that recognizes the mRNA of the gene encoding the biomarker protein, as well as one or more other components suitable for an analysis method Or a device may be included.
  • the kit may be a diagnostic kit, characterized in that it contains essential elements necessary to perform a reverse transcription polymerase reaction.
  • the reverse transcription polymerase reaction kit includes each primer pair specific for the gene encoding the biomarker protein.
  • the primer is a nucleotide having a sequence specific to the nucleic acid sequence of each gene, and is about 7 bp to 50 bp in length, more preferably about 10 bp to 30 bp in length.
  • a primer specific to the nucleic acid sequence of the control gene may be included.
  • reverse transcription polymerase reaction kits include test tubes or other suitable containers, reaction buffers (various pH and magnesium concentrations), deoxynucleotides (dNTPs), enzymes such as Taq-polymerase and reverse transcriptase, DNAse, RNAse inhibitors DEPC. - May include DEPC-water, sterilized water, etc.
  • the DNA chip kit may include a substrate to which cDNA or oligonucleotide corresponding to a gene or fragment thereof is attached, and reagents, agents, enzymes, etc. for preparing a fluorescently labeled probe.
  • the substrate may include a cDNA or oligonucleotide corresponding to a control gene or a fragment thereof.
  • the kit for measuring the expression level of a protein in the present invention may include a substrate, an appropriate buffer solution, a secondary antibody labeled with a color developing enzyme or a fluorescent substance, and a color developing substrate for immunological detection of the antibody.
  • the substrate may be a nitrocellulose membrane, a 96-well plate synthesized with polyvinyl resin, a 96-well plate synthesized with polystyrene resin, and a slide glass made of glass, and the coloring enzyme is peroxidase, alkaline force. Fatase (alkaline phosphatase) can be used, FITC, RITC, etc.
  • ABTS 2,2'-azino-bis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)
  • OPD o-phenylenediamine
  • TMB tetramethyl benzidine
  • the present invention comprises the step of measuring the mRNA expression level of any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 or a gene encoding the same in a sample isolated from an individual Provides a method of providing information necessary for diagnosis of sexual rejection or predicting the prognosis of patients after kidney transplantation.
  • the "individual” is an individual who has undergone a kidney transplant, and has a possibility of a rejection reaction after a kidney transplant or a human, a primate including a chimpanzee, a pet such as a dog, a cat, a cow, a horse, a sheep , Livestock animals such as goats, mammals such as rodents such as mice and rats, and farmed fish may be included without limitation.
  • the "sample” used for analysis refers to antibody-mediated rejection after kidney transplantation that can be distinguished from normal conditions such as blood, plasma, serum, saliva, nasal fluid, sputum, ascites, vaginal discharge, urine, and feces. It includes a biological sample capable of identifying a specific protein. Preferably, it may be a biological liquid sample, for example blood, serum, plasma or urine, most preferably urine or urine-derived exosomes. The sample may be prepared to increase the detection sensitivity of the protein marker.
  • the sample obtained from the patient is anion exchange chromatography, affinity chromatography, size exclusion chromatography, liquid chromatography, continuous It can be pretreated using methods such as sequential extraction or gel electrophoresis.
  • the "measurement of the expression level of a protein” means the presence and expression of a biomarker protein expressed in a biological sample in order to diagnose antibody-mediated rejection after kidney transplantation or predict the prognosis of a patient who has undergone a kidney transplant.
  • the presence or absence of the protein may be detected or the amount of the protein may be measured using an antibody that specifically binds to the protein.
  • Antibodies specific for protein are as described in the composition for diagnosis or prognosis of the present invention.
  • the method of measuring the expression level of a protein can be used without limitation, methods known in the art, such as western blotting, dot blotting, enzyme-linked immunosorbent assay.
  • the "measurement of the expression level of mRNA” refers to the presence of mRNA of a gene encoding a biomarker protein in a biological sample in order to diagnose antibody-mediated rejection after kidney transplantation or to predict the prognosis of a patient who has undergone a kidney transplant. This is a process of confirming the level of expression, which can be determined by measuring the amount of mRNA. Analysis methods for this include RT-PCR, competitive RT-PCR, Real-time RTPCR (RT-PCR), RNase protection method, northern blotting, or DNA. There is a chip (DNA chip technology) and the like, but is not limited thereto.
  • the method of providing information necessary for diagnosing antibody-mediated rejection after kidney transplantation or predicting the prognosis of a patient after kidney transplantation of the present invention is to reject the measured protein or mRNA expression level as a normal control group without a kidney transplant or after a kidney transplant. If the result of comparison with the sample of the patient group that did not show the reaction or BK virus nephropathy corresponds to any one or more selected from the group consisting of the following a) and b), it may further include the step of determining as antibody-mediated rejection. have.
  • the normal control group means a normal person who has not received a kidney transplant and can be interpreted as including a kidney donor (donor).
  • the patient group who did not show rejection or BK virus infectious nephropathy after kidney transplantation received a kidney transplant but exhibited stable kidney function and showed antibody-mediated rejection, T cell-mediated rejection, mixed rejection, or BK virus infectious nephropathy. It refers to patients who have not had a kidney transplant.
  • the prognosis is known by obtaining and comparing the expression level or expression pattern of the protein or the gene encoding the protein from the samples collected from these normal controls and patients and the samples collected from patients who want to know the presence or prognosis of kidney transplant rejection. The prognosis of the desired patient can be accurately predicted.
  • the method of providing information necessary for diagnosing antibody-mediated rejection after kidney transplantation or predicting the prognosis of patients after kidney transplantation of the present invention is to differentiate from T cell-mediated rejection and BK virus nephropathy, and antibody-mediated rejection reaction.
  • the cause and type of rejection reaction can be clearly identified by obtaining and comparing the expression level or expression pattern of the protein or the gene encoding the same.
  • the present invention it is possible to accurately diagnose or predict the type of rejection reaction and its prognosis after kidney transplantation, and to obtain an advantage of being able to establish an appropriate treatment plan according to the diagnosis or predicted prognosis.
  • the present invention also includes the step of measuring the mRNA expression level of any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 or a gene encoding the same in a sample isolated from an individual, to rejection after kidney transplantation. Provides a way to provide the information needed to make a treatment decision.
  • the method of providing the information necessary for determining the treatment for rejection after kidney transplantation of the present invention is to determine the measured protein or mRNA expression level as a normal control group that did not receive a kidney transplant, or that did not show rejection or BK virus nephropathy after kidney transplantation. If the result of comparison with the patient group sample corresponds to any one or more selected from the group consisting of the following a) and b), it is determined as antibody-mediated rejection, and determining to apply a therapy for antibody-mediated rejection. May additionally include:
  • ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇ ⁇
  • the present invention provides a method for diagnosing and treating antibody mediated rejection after kidney transplantation.
  • the method for diagnosing and treating antibody-mediated rejection according to the present invention includes the following steps:
  • step b) comparing the expression level measured in step a) with a sample of a normal control group that did not receive a kidney transplant or a patient group that did not show rejection or BK virus nephropathy after a kidney transplant;
  • step c) As a result of the comparison of step b), the expression level in the sample isolated from the subject in step a) was in the sample of the normal control group who did not receive a kidney transplant or the patient group who did not show rejection or BK virus nephropathy after a kidney transplant. If it is higher than the expression level, determining as antibody-mediated rejection after kidney transplantation; And
  • step d) applying antibody-mediated rejection therapy to the subject of step a).
  • the treatment for antibody-mediated rejection in step d) includes steroids, plasmapheresis (PP), intravenous immunoglobulin (IVIG), and anti- -It may be any one or more selected from the group consisting of CD20 antibody and anti-lymphocyte antibody, but is not limited thereto, and as described above, an appropriate treatment may be selected under the judgment of a person skilled in the art or clinician.
  • PP plasmapheresis
  • IVIG intravenous immunoglobulin
  • anti- -It may be any one or more selected from the group consisting of CD20 antibody and anti-lymphocyte antibody, but is not limited thereto, and as described above, an appropriate treatment may be selected under the judgment of a person skilled in the art or clinician.
  • the present invention provides a method comprising: a) treating a sample isolated from an individual having an antibody-mediated rejection reaction after kidney transplantation with a candidate material for an antibody-mediated rejection treatment after kidney transplantation; And b) measuring the mRNA expression level of any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 or a gene encoding the same; comprising, a screening method for an antibody-mediated rejection treatment agent after kidney transplantation .
  • the expression level of the mRNA of any one or more proteins selected from the group consisting of LBP and CST3 measured in step b) above or the mRNA expression level thereof is a candidate. If the substance is down-regulated than before treatment, the step of determining the candidate substance of step a) as a therapeutic agent for antibody-mediated rejection reaction after kidney transplantation may be further included.
  • it is a method of comparing the increase or decrease of mRNA or protein expression of a marker in the presence and absence of candidates for antibody-mediated rejection treatment after kidney transplantation, useful for screening therapeutic agents for antibody-mediated rejection after kidney transplantation. Can be used.
  • the two biomarker proteins of the present invention or genes encoding the same in a biological sample isolated from a patient who showed antibody-mediated rejection after kidney transplantation in the absence of a therapeutic candidate for antibody-mediated rejection after kidney transplantation After measuring the expression level of the two biomarker proteins of the present invention or the gene encoding the two kinds of biomarker proteins of the present invention in the presence of a therapeutic candidate, and comparing both, the expression level in the presence of the therapeutic candidate Substances that decrease the level of expression in the absence can be selected as a therapeutic agent for antibody-mediated rejection after kidney transplantation.
  • the method of providing information necessary for diagnosing antibody-mediated rejection after kidney transplantation or predicting the prognosis of patients after kidney transplantation of the present invention method of providing information necessary for determining treatment for rejection after kidney transplantation, and antibody after kidney transplantation Screening methods for therapeutic agents for mediated rejection may include in vitro methods performed on samples isolated from individuals.
  • the screening method for a therapeutic agent for antibody-mediated rejection is performed in vivo, it is intended for mammals other than humans, and not for humans or human bodies.
  • the method of providing information necessary for determining treatment for rejection after kidney transplantation, diagnosis and treatment of antibody-mediated rejection after kidney transplantation, and/or screening method for antibody-mediated rejection therapy after kidney transplantation according to the present invention
  • Other specific details of the renal transplant are the same as the method of providing information necessary for diagnosing antibody-mediated rejection after kidney transplantation or predicting a patient's prognosis after kidney transplantation, and thus the description thereof is omitted.
  • urine samples were centrifuged at 4,000 rpm and 4° C. for 15 minutes, and exo Stored at -80°C until extracting moth was used in the experiment.
  • the frozen urine samples were thawed by 15 mL each, vortexed for 1 minute, and then centrifuged at 17,000xg for 15 minutes at room temperature, and the supernatant (SN1) was collected.
  • SN1 was ultracentrifuged at 200,000xg for 70 min at room temperature using a Beckman Coulter Optima L-80xp ultracentrifuge, rotor SW40Ti (Beckman Coulter, Brea, CA, USA). The supernatant was discarded and the pellet was washed by dissolving in 11 mL of DPBS, followed by ultracentrifugation again at 200,000xg for 70 minutes at room temperature. The supernatant was discarded and the exosome pellet was used for protein separation or exosome particle quantification.
  • Sample preparation for proteomic analysis was subjected to freeze drying, protein solubilization and digestion.
  • the resulting peptide mixture was desalted, dried using C18 reverse phase chromatography, and then analyzed by high resolution mass spectrometry combined with nano-flow liquid chromatography.
  • LFQ label free quantitation
  • a protein as a biomarker candidate is summarized in [Fig. 1].
  • a t-test was used to select proteins with significantly different mean abundances compared to the NOMOA and DONOR groups.
  • a volcano plot was used to select proteins showing a difference of at least 2 times compared to the NOMOA group.
  • the overlapping proteins were selected from the two analyzes and compared again with the other two pathological groups to compare the significant difference in mean abundance. All analyzes were performed with a cut off of p ⁇ 0.05.
  • the final candidate proteins were selected based on the T test analysis in order to discover the exosome proteins specific to each of the ABMR, TCMR and BKVN groups.
  • the urine exosome proteins compared to the NOMOA group or the DONOR group, among the proteins specifically expressed only in the ABMR group, compared to the NOMOR group, only proteins whose expression profiles differ by more than 2 times are selected as shown in Table 1 above. Forty-six proteins were first selected.
  • a protein having an average abundance significantly different only in the ABMR group compared to the TCMR group was selected as a candidate biomarker, and compared with the BKVN group, only in the ABMR group Proteins with significantly different mean abundances were selected as candidate biomarkers, and finally, eight overlapping proteins among the candidate biomarker proteins were used as ABMR biomarker proteins with predicted differences in the TCMR, BKVN and ABMR groups. Selected.
  • the identified proteins are LBP (Lipopolysaccharide-binding protein, UniProt Accession No.P18428), CSRP1 (Cysteine and glycine-rich protein 1, UniProt Accession No.P21291), SERPINF2 (Alpha-2 -antiplasmin, UniProt Accession No.P08697), RBP4 (Retinol-binding protein 4, UniProt Accession No.P02753), CST3 (Cystatin-C, UniProt Accession No.P01034), CFD (Complement factor D, UniProt Accession No.P00746) , SERPINA4 (Kallistatin, UniProt Accession No. P29622), PON1 (Serum paraoxonase/arylesterase 1, UniProt Accession No. P27169).
  • LBP Lipopolysaccharide-binding protein, UniProt Accession No.P18428
  • CSRP1 Cysteine and glycine
  • urine samples were collected 2 to 3 hours before biopsy of patients and donors who underwent an indication biopsy within 5 years after kidney transplantation.
  • urine samples were collected from living kidney donors immediately before kidney donation surgery.
  • Patients were classified into 5 groups according to the pathological diagnosis of biopsy: antibody mediated rejection group (ABMR), T cell mediated rejection group (ABMR), BK virus nephropathy group (BKVN), and no major abnormality group ( NOMOA) and donor (DONOR) group.
  • ABMR antibody mediated rejection group
  • ABMR T cell mediated rejection group
  • BKVN BK virus nephropathy group
  • NOMOA no major abnormality group
  • DONOR donor
  • ABMR-specific markers were finally selected as LBP and Cystatin C (CST3) proteins whose statistical significance was verified, and as a result of obtaining AUC (Area under the ROC curve; AUC) values for the two markers, LBP was 0.87 and Cystatin C (CST3) were all statistically significant values of 0.84. Therefore, through this example, LBP and Cystatin C (CST3) proteins were specifically highly expressed in ABMR patients, and thus their value as an ABMR reactive biomarker was sufficiently demonstrated.

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Abstract

본 발명은 비침습적인 신장이식 거부반응 진단용 바이오마커 및 이의 용도에 관한 것으로, 구체적으로 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 바이오마커 조성물 및 키트, 상기 마커 조성물을 이용하여 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측에 필요한 정보를 제공하는 방법, 신장이식 후 거부반응의 치료법 결정에 필요한 정보를 제공하는 방법, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 및 치료 방법, 그리고 신장이식 후 항체 매개성 거부반응에 대한 치료제 스크리닝 방법에 관한 것이다.

Description

신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측을 위한 소변 엑소좀 바이오마커
본 발명은 신장이식 후 항체 매개성 거부반응(antibody-mediated rejection, ABMR)과 관련된 바이오마커, 항체 매개성 거부반응 진단 또는 신장이식 후 거부반응에 대한 예후 예측용 조성물, 키트 및 이를 이용하여 항체 매개성 거부 반응의 진단 또는 신장이식 후 거부반응의 예후 예측을 위한 정보제공방법에 관한 것이다.
장기이식 분야는 서서히 정밀 의료의 일부가 되고 있다. 현재의 표준 면역 억제 치료를 사용할 때 여전히 신장 이식을 받은 환자의 15 ~ 20%에서 급성 거부 반응이 발생하며, 현재까지는 혈청 크레아틴의 농도 증가 또는 새로운 단백뇨의 발현 등이 생길 경우 조직 생검을 통해 진단된다. 혈청 크레아틴 농도 증가 또는 새로운 단백뇨 발현이 있는 시점에서의 신장 상태는 이미 염증이 꽤 진행된 상태이기 때문에, 무증상의 거부반응(subclinical acute rejection)을 조기 발견할 수 있는 바이오마커의 필요성이 대두된다. 선천적/후천적 면역 반응은 조직학적 수준에서 나타나기 전에 분자 수준에서 먼저 나타난다고 알려져 있다. 따라서 신장이식 후에 임상적 상태를 미리 진단하고 모니터링하기 위한 비침습적 바이오마커의 개발은 정밀 의료에 필수적인 단계이다.
과거에는 신장이식 후 거부반응을 거부반응의 발생 시기에 따라 초급성, 급성 및 만성 거부반응으로 각각을 구분하였으나 최근에는 발생기전과 신생검 소견에 따라 거부반응을 분류한 Banff 분류를 주로 사용하고 있다. Banff 분류 이전의 이식신장의 병리진단 분류는 매우 간단하였는데, 특히 급성 및 만성 거부반응은 주로 염증세포 침윤의 위치에 따라 분류하여 간질에서 관찰되면 세포성(cellular), 혈관 내에 침윤한 경우는 혈관성(vascular) 거부반응으로 분류하였다. 즉, 이는 현재의 관점에서 보자면 초급성 거부반응을 제외하고는 모두 T 세포 매개 거부반응에 대한 진단 분류이며, 당시에는 초급성의 임상상이 아닌 ABMR의 존재자체가 인식되지 못하였고 진단적 근거도 없었다. 현재 초급성 거부반응은 급성 ABMR의 가장 심한 형태로 이해되고 있다.
신장이식 후 거부반응의 진단과 관련하여 신장이식 후 급성거부반응을 진단하기 위한 소변 바이오마커가 알려져 있다(Suthanthiran et al., Urinary-Cell mRNA Profile and Acute Cellular Rejection in Kidney Allografts. The New England Journal of Medicine(2013) 369;1). 그러나, T 세포 매개성 거부반응과 항체 매개성 거부반응을 구별할 수 있는 바이오마커, 나아가 신장이식 후 합병증인 BK 바이러스 신병증과 이식거부반응을 구별하여 진단할 수 있는 바이오마커를 발굴하고 이를 신장이식 후 치료 방향의 선택 및 치료 경과 판단에 활용하고자 하는 연구는 전무한 실정이다.
본 발명자들은 비-침습적이고 정확한 신장이식 거부반응 진단 마커를 발굴하기 위해 예의 노력한 결과, 프로테오믹스 접근법을 통해 신장이식 거부반응의 유무 및 거부반응의 종류를 특정하여 예측할 수 있는 새로운 바이오마커를 규명함으로써 본 발명을 완성하게 되었다.
본 발명에서는 신장 이식 후 주요 이상이 없는 군(NOMOA), 항체 매개성 거부반응군(ABMR), T 세포 매개성 거부반응군(TCMR) 및 BK 바이러스 감염성 신병증군(BKVN)의 소변 엑소좀 내에서 신장이식 거부반응 진단 또는 예후 예측 표지자를 발굴함으로써 신장이식 후 치료 경과를 판단하고 적절한 치료 방법을 선택하는데 기여하고자 한다.
일 양태로, 본 발명은 LBP, 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 바이오마커 조성물을 제공한다.
다른 양태로서, 본 발명은 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 상기 단백질을 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 물질을 포함하는 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 조성물을 제공한다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 mRNA의 발현 수준을 측정하는 물질은 상기 유전자에 특이적으로 결합하는 프라이머 또는 프로브일 수 있다.
본 발명의 바람직한 다른 일실시예에 따르면, 상기 단백질의 발현 수준을 측정하는 물질은 상기 단백질 또는 그의 단편에 특이적으로 결합하는 항체, 상호작용 단백질, 리간드, 올리고펩타이드, 펩타이드 핵산(peptide nucleic acid, PNA), 나노입자 또는 앱타머일 수 있다.
또 다른 양태로서, 본 발명은 전술한 조성물을 포함하는 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 키트를 제공한다.
또 다른 양태로서, 본 발명은 개체로부터 분리한 시료에서 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측에 필요한 정보를 제공하는 방법을 제공한다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 시료는 소변 또는 소변 유래 엑소좀일 수 있다.
본 발명의 바람직한 다른 일실시예에 따르면, 상기 방법은 측정된 단백질 또는 mRNA의 발현 수준을 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 감염성 신병증을 나타내지 않은 환자군 시료와 비교한 결과가 하기 a) 및 b)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상에 해당하는 경우 항체 매개성 거부반응으로 판정하는 단계를 추가로 포함할 수 있다:
a) LBP의 상향 조절; 및 b) CST3의 상향 조절.
또 다른 양태로서, 본 발명은 개체로부터 분리한 시료에서 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계를 포함하는, 신장이식 후 거부반응에 대한 치료법 결정에 필요한 정보를 제공하는 방법을 제공한다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 시료는 소변 또는 소변 유래 엑소좀일 수 있다.
본 발명의 바람직한 다른 일실시예에 따르면, 상기 방법은 측정된 단백질 또는 mRNA의 발현 수준을 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 감염성 신병증을 나타내지 않은 환자군 시료와 비교한 결과가 하기 a) 및 b)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상에 해당하는 경우 항체 매개성 거부반응으로 판정하고, 항체 매개성 거부반응에 대한 치료법을 적용하는 것으로 결정하는 단계를 추가로 포함할 수 있다:
a) LBP의 상향 조절; 및 b) CST3의 상향 조절
또 다른 양태로서, 본 발명은 a) 개체로부터 분리한 시료에서 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계; b) 상기 a) 단계에서 측정된 발현 수준을 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 신병증을 나타내지 않은 환자군의 시료와 비교하는 단계; c) 상기 b) 단계의 비교 결과, a) 단계의 개체로부터 분리한 시료에서의 발현 수준이 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 신병증을 나타내지 않은 환자군의 시료에서의 발현 수준보다 높은 경우, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응으로 판정하는 단계; 및 d) 상기 a) 단계의 개체에게 항체 매개성 거부반응 치료법을 적용하는 단계;를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 및 치료방법을 제공한다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 시료는 소변 또는 소변 유래 엑소좀일 수 있다.
본 발명의 바람직한 다른 일실시예에 따르면, 상기 d) 단계의 항체 매개성 거부반응 치료법은 스테로이드, 혈장교환술(plasmapheresis, PP), 정맥면역글로불린(intravenous immunoglobulin, IVIG), 항-CD20 항체(rituximab), 항-림프구 항체(lymphocyte-depleting antibody), 프로테아좀 억제제, Cl-억제제 및 보체 인자 5에 대한 모노클로날 항체 (monoclonal antibody against complement factor 5)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상일 수 있다.
또 다른 양태로서, 본 발명은 a) 신장이식 후 항체 매개성 거부반응을 나타낸 개체로부터 분리한 시료에 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제의 후보물질을 처리하는 단계; 및 b) LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계;를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제의 스크리닝 방법을 제공한다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 시료는 소변 또는 소변 유래 엑소좀일 수 있다.
본 발명의 바람직한 다른 일실시예에 따르면, 상기 스크리닝 방법은 c) 상기 b) 단계에서 측정된 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준이 후보물질을 처리하기 전보다 하향 조절되는 경우, 상기 a) 단계의 후보물질을 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제로 판단하는 단계를 추가로 포함할 수 있다.
본 발명에서 제공하는 바이오마커는 신장이식 후 항체 매개성 거부반응을 나타내는 환자에서 특이적으로 현저하게 발현이 증가하므로, 본 발명의 바이오마커 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 발현 수준을 측정하는 물질을 포함하는 조성물, 키트 또는 검출 방법을 통해 신장이식 거부반응 여부 및 거부반응의 종류를 정확하고 신속하게 진단할 수 있다.
또한, 본 발명의 바이오마커는 다른 종류의 이식거부반응 또는 이식 후 흔히 나타나는 BK 바이러스 신병증 환자와 차별적으로 항체-매개성 거부반응 환자에서 특이적으로 발현하므로, 항체-매개성 거부반응 여부를 정확하고 신속하게 파악할 수 있으며, 이후 치료방침을 결정하는 데 필요한 정보를 제공할 수 있다.
도 1은 TCMR, ABMR 및 BKVN 군을 대표하는 바이오마커의 선발 과정을 나타낸 도면이다.
도 2는 볼케이노 플롯(volcano plot)을 사용하여 NOMOA 군과 비교할 때 발현 수준이 2배 이상 차이가 나는 ABMR군의 단백질을 확인한 결과를 나타낸 도면이다.
도 3은 t-테스트 결과와 볼케이노 플롯 결과 교차 부위에 존재하는 총 46개 단백질을 ABMR의 바이오마커 후보 물질로 선발한 결과를 나타낸 도면이다.
도 4는 t-테스트를 사용하여 신장 이식 후 주요 이상이 없는 군(NOMOA) 및 공여자군(DONOR)과 비교하여 T 세포 매개성 거부반응군(TCMR), 항체 매개성 거부반응군(ABMR) 및 BK 바이러스 감염성 신병증군(BKVN)에서 각각 63개, 108개 및 53개의 소변 엑소좀 단백질이 다른 군과 유의적으로 상이하게 발현되는 것을 확인한 결과를 벤다이어그램으로 나타낸 것이다.
도 5는 ABMR 바이오마커 후보 물질 중 TCMR군 및 BKVN군 단백질과 비교하여 현저하게 발현 양상이 차이가 나는 단백질 8종을 최종 선정한 결과를 나타낸 도면이다.
도 6은 본 발명의 실시예 4-4에서 선정한 항체 매개성 거부반응 바이오마커 8종의 발현량을 분석하여 ROC 곡선 분석을 수행한 결과이다.
도 7a 및 7b는 본 발명의 실시예 4-4에서 선정한 항체 매개성 거부반응 바이오마커 8종 중 추가 단계를 통해 선별된 2종에 대해 웨스턴 블롯 분석으로 검증을 수행한 결과를 나타낸 것이다 (7a: LBP 및 7b: CST3 (Cystatin C)).
도 8은 본 발명의 실시예 4-5에서 최종적으로 선정된 2종의 바이오마커 LBP 및 CST3에 대해 ROC 곡선 분석을 수행한 결과이다.
이하, 본 발명을 보다 상세하게 설명한다.
본 발명의 일 실시예에서는, 신장이식 환자 및 기증자의 소변 샘플에서 특정 엑소좀 단백질의 발견을 위해, 프로테오믹스 분석을 기반으로 후보 단백질을 선택했다. 소변 엑소좀 단백질 정량 분석에서 총 1820개의 단백질이 검출되었고, 이중 "NOMOA 및 DONOR군"과 "ABMR군" 간에 발현 프로파일이 현저하게 차이가 나는 단백질 46종을 선택했다. 마지막으로, 46종 단백질 중 TCMR군 또는 BKVN 군과 유의적으로 서로 다른 발현 양상을 나타내는 8개의 단백질을 확인하였다. 확인된 단백질은 하기 [표 2]에 나타낸 바와 같이, LBP(Lipopolysaccharide-binding protein, UniProt Accession No.P18428), CSRP1(Cysteine and glycine-rich protein 1, UniProt Accession No.P21291), SERPINF2(Alpha-2-antiplasmin, UniProt Accession No.P08697), RBP4(Retinol-binding protein 4, UniProt Accession No.P02753), CST3(Cystatin-C, UniProt Accession No.P01034), CFD(Complement factor D, UniProt Accession No.P00746), SERPINA4(Kallistatin, UniProt Accession No.P29622), PON1(Serum paraoxonase/arylesterase 1, UniProt Accession No.P27169)였다.
본 발명의 추가의 일실시예에서는 상기 8종의 바이오마커 중 추가 단계를 통해 선별된 LBP (Lipopolysaccharide-binding protein) 및 CST3 (Cystatin C)에 대해 웨스턴 블롯 분석으로 검증을 수행하였으며, 그 결과 LBP와 CST3가 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 및/또는 신장이식을 받은 후 주요 이상이 없는 군 (NOMOA) 대비 항체 매개 거부반응군 (ABMR)에서 현저하게 높게 발현되는 것을 확인하였고, 이의 통계적으로 유의성 또한 확인하였다.
이에, 본 발명에서는 신장이식 후 불량한 예후에 관여하는 선별된 바이오마커, 즉, LBP (Lipopolysaccharide-binding protein) 및 CST3 (Cystatin-C)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 바이오마커 조성물을 제공한다. 이를 이용하여 신장이식 후 환자의 예후를 예측하고, 예측된 예후에 따라 적절한 치료방향을 결정할 수 있어 환자 맞춤형 치료방법의 제공이 가능하고, 불량한 예후의 신장이식 환자의 사망률을 감소시킬 수 있다.
신장이식의 거부반응(renal allograft rejection)은 공여자의 신장을 이식받은 수여자의 면역 체계가 이식신장을 외부 항원으로 인식하여 일어나는 일련의 면역 반응을 의미하며, 발생기전과 신생검 소견에 따라 항체-매개성 거부반응(Antibody mediated rejection, ABMR), T 세포 매개성 거부반응(T cell mediated rejection, TCMR), 및 이들 모두가 복합적으로 나타나는 혼합 거부반응(mixed rejection)으로 분류될 수 있다.
본 발명에서는 발굴된 바이오마커는 항체 매개성 거부반응에 특이적으로 높게 발현되는 단백질이므로, 급성 항체-매개성 거부반응(acute antibody mediated rejection, CAMR) 또는 만성 활성형 항체-매개성 거부반응(chronic active antibody mediated rejection)을 포함하는 항체 매개성 거부반응을 진단하는데 유용하다.
본 발명의 용어 "바이오마커"는 생물학적 현상의 존재와 정량적 또는 정성적으로 연관된 분자를 의미하며, 본 발명의 바이오마커는 신장이식 후 항체 매개성 거부반응이 있는지 확인할 수 있는 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자, 혹은 예후가 양호하거나 불량한 환자를 예측해내는 기준이 되는 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자를 지칭한다. 바이오마커는 게놈 뉴클레오티드 서열로부터 또는 발현된 뉴클레오티드 서열로부터(예를 들어, RNA, nRNA, mRNA, cDNA 등으로부터), 또는 코딩된 폴리펩티드로부터 유래될 수 있다. 이 용어는 마커 서열에 상보적이거나 이에 플랭킹된 핵산 서열, 예컨대 마커 서열을 증폭시킬 수 있는 프로브 또는 프라이머 쌍으로 사용된 핵산을 포함한다.
본 발명의 일실시예에 따르면, 신장이식 환자들 중에서 조직검사 상 주요한 이상소견이 없는 군(no major abnormality, NOMOA)과 비교하여 항체 매개성 거부반응(ABMR)을 나타내는 환자의 소변에서 상기 바이오마커들이 특이적으로 높게 발현하였음을 확인함으로써 상기 바이오마커들이 항체 매개성 거부반응의 진단마커로서 활용될 수 있음을 알 수 있었다.
본 발명에서 상기 '발현(expression)'은 세포에서 단백질 또는 핵산이 생성되는 것을 의미한다. '단백질'은 '폴리펩타이드(polypeptide)' 또는 '펩타이드(peptide)'와 호환성 있게 사용되며, 예컨대, 자연 상태의 단백질에서 일반적으로 발견되는 바와 같이 아미노산 잔기의 중합체를 말한다. '폴리뉴클레오티드(polynucleotide)' 또는 '핵산'은 단일-또는 이중-가닥의 형태로 된 데옥시리보뉴클레오티드(DNA) 또는 리보뉴클레오티드(RNA)를 말한다. 다른 제한이 없는 한, 자연적으로 생성되는 뉴클레오티드와 비슷한 방법으로 핵산에 혼성화되는 자연적 뉴클레오티드의 공지된 아날로그도 포함된다. 'mRNA'는 단백질 합성 과정에서 특정 유전자로부터 아미노산 서열을 특정하게 되는 리보솜으로 유전 정보(유전자 특이적 염기 서열)를 전달하는 RNA를 의미한다.
본 발명에 있어서, '진단'은 병리 상태의 존재 또는 특징을 확인하는 것을 의미한다. 본 발명에서의 진단은 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 mRNA의 수준을 측정하여 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 병리 존재 또는 발생 여부를 확인하는 것이다.
본 발명에 있어서, "예후 예측"은 의학적 귀추에 대하여 미리 헤아려 짐작하는 것을 의미하며, 본 발명의 목적상 신장을 이식받은 환자의 병의 경과(병의 진행, 개선, 이식거부반응, 약 저항성)를 미리 짐작하는 것을 의미한다. 또한, 상기 예후는 양성적 예후(긍정적 예후) 또는 음성적 예후(부정적 또는 불량한 예후)를 포함하며, 본 발명에서 양성적 예후는 신장이식 후 거부반응 또는 관련 증상 또는 질환이 발생하지 않는 것을 의미하고, 음성적 예후는 신장이식 후 거부반응 또는 관련 증상이 발생하였고, 거부반응의 종류가 항체 매개성 거부반응이라는 것을 의미한다.
본 발명은 또한, 본 발명의 2종의 바이오마커의 mRNA 또는 이의 단백질의 발현 수준을 측정하는 물질을 포함하는 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 조성물을 제공한다.
본 발명의 진단 또는 예후 예측용 조성물이 mRNA의 발현 수준을 측정하기 위한 것일 때에는 mRNA 발현 수준을 측정하는 물질은 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질을 코딩하는 유전자 또는 이의 mRNA에 특이적으로 결합하는 프로브 또는 프라이머 세트일 수 있다.
본 발명에서 "프라이머"는 짧은 자유 3' 말단 수산화기(free 3` hydroxyl group)을 가지는 핵산 서열로 상보적인 주형(template)과 염기쌍(base pair)을 형성할 수 있고 주형의 복사를 위한 시작지점으로 기능을 하는 짧은 핵산 서열을 의미한다. 본 발명에서는 전술한 2종의 바이오마커 단백질을 코딩하는 유전자의 센스 및 안티센스 프라이머를 이용하여 PCR 증폭을 실시하여 원하는 생성물의 생성 여부를 통해 신장이식의 거부반응을 진단하거나 예후를 예측할 수 있다. PCR 조건, 센스 및 안티센스 프라이머의 길이는 당업계에 공지된 것을 기초로 변형할 수 있다.
본 발명에서 용어, "프로브(probe)" 란 mRNA와 특이적 결합을 이룰 수 있는 짧게는 수 염기 내지 길게는 수백 염기에 해당하는 RNA 또는 DNA 등의 핵산 단편을 의미하며, 표지(labeling)되어 있어서 특정 mRNA의 존재 유무를 확인할 수 있다. 프로브는 올리고 뉴클레오티드 프로브, 단일 사슬 DNA(single stranded DNA) 프로브, 이중사슬 DNA(double stranded DNA) 프로브, RNA 프로브 등의 형태로 제작될 수 있다. 본 발명에서는 본 발명의 바이오마커 단백질을 코딩하는 유전자의 mRNA와 상보적인 프로브를 이용하여 혼성화를 실시하여, 혼성화 여부를 통해 신장이식 후 항체 매개성 거부반응을 진단하거나 예후를 예측할 수 있다. 적당한 프로브의 선택 및 혼성화 조건은 당업계에 공지된 것을 기초로 변형할 수 있다.
본 발명의 프라이머 또는 프로브는 포스포르아미다이트 고체 지지체 방법 또는 기타 널리 공지된 방법을 사용하여 화학적으로 합성할 수 있다. 이러한 핵산 서열은 또한 당해 분야에 공지된 많은 수단을 이용하여 변형시킬 수 있다. 이러한 변형의 비-제한적인 예로는 메틸화, 캡화, 천연 뉴클레오티드 하나 이상의 동족체로의 치환, 및 뉴클레오티드 간의 변형, 예를 들면, 하전되지 않은 연결체(예: 메틸 포스포네이트, 포스포트리에스테르, 포스포로아미데이트, 카바메이트 등) 또는 하전된 연결체(예: 포스포로티오에이트, 포스포로디티오에이트 등)로의 변형이 있다.
한편, 본 발명에서 상기 바이오마커 단백질의 발현 수준을 측정하는 물질은 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질에 특이적으로 결합하는 항체일 수 있다.
상기 "항체"는 당해 분야에서 공지된 용어로서 항원성 부위에 대해서 지시되는 특이적인 단백질 분자를 의미한다. 본 발명의 목적상, 항체는 본 발명의 바이오마커 단백질에 대해 특이적으로 결합하는 항체를 의미하며, 이러한 항체는 각 유전자를 통상적인 방법에 따라 발현벡터에 클로닝하여 상기 바이오마커 유전자에 의해 코딩되는 단백질을 얻고, 얻어진 단백질로부터 통상적인 방법에 의해 제조될 수 있다. 여기에는 상기 단백질에서 만들어질 수 있는 부분 펩티드도 포함되며, 본 발명의 부분 펩티드로는, 최소한 7개의 아미노산, 바람직하게는 9개 아미노산, 더욱 바람직하게는 12개 이상의 아미노산을 포함한다. 본 발명의 항체의 형태는 특별히 제한되지 않으며 폴리클로날 항체, 모노클로날 항체 또는 항원 결합성을 갖는 것이면 그의 일부도 본 발명의 항체에 포함되고 모든 면역 글로불린 항체가 포함된다. 나아가, 본 발명의 항체에는 인간화 항체 등의 특수 항체도 포함된다. 이러한 본 발명의 바이오마커 유전자에 의해 코딩되는 단백질에 대한 항체는 당업계의 공지된 방법으로 제조될 수 있는 모든 항체가 될 수 있다. 예를 들어, 본 발명의 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 예후 예측 마커의 검출에 사용되는 항체는 2개의 전체 길이의 경쇄 및 2개의 전체 길이의 중쇄를 가지는 완전한 형태뿐만 아니라 항체 분자의 기능적인 단편을 포함할 수 있다. 상기 항체 분자의 기능적인 단편이란 적어도 항원 결합 기능을 보유하고 있는 단편을 뜻하며, Fab, F(ab'), F(ab')2, Fv 등이 될 수 있으나, 특별히 이에 제한되지는 않는다.
다른 측면에서, 본 발명은 상술한 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 조성물을 포함하는 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 키트를 제공한다.
본 발명의 바람직한 일실시예에 따르면, 상기 키트는 RT-PCR 키트, 경쟁적 RT-PCR 키트, 실시간 RT-PCR 키트, DNA 칩 키트 또는 단백질 칩 키트일 수 있다.
본 발명의 키트에는 상기 2종의 바이오마커 단백질을 인식하는 항체 또는 상기 바이오마커 단백질을 코딩하는 유전자의 mRNA를 인식하는 프라이머, 프로브 뿐만 아니라 분석 방법에 적합한 하나 이상의 다른 구성 성분을 포함하는 조성물, 용액 또는 장치가 포함될 수 있다.
구체적인 양태로서 상기 키트는 역전사 중합효소반응을 수행하기 위해 필요한 필수 요소를 포함하는 것을 특징으로 하는 진단용 키트일 수 있다. 역전사 중합효소반응 키트는 바이오마커 단백질을 코딩하는 유전자에 대해 특이적인 각각의 프라이머 쌍을 포함한다. 프라이머는 각 유전자의 핵산서열에 특이적인 서열을 가지는 뉴클레오타이드로서, 약7bp 내지 50bp의 길이, 보다 바람직하게는 약 10bp 내지 30bp의 길이이다. 또한 대조군 유전자의 핵산 서열에 특이적인 프라이머를 포함할 수 있다. 그 외 역전사 중합효소반응 키트는 테스트 튜브 또는 다른 적절한 컨테이너, 반응 완충액(pH 및 마그네슘 농도는 다양), 데옥시뉴클레오타이드(dNTPs), Taq-폴리머라아제 및 역전사효소와 같은 효소, DNAse, RNAse 억제제 DEPC-수(DEPC-water), 멸균수 등을 포함할 수 있다.
또 다른 양태로는 DNA 칩을 수행하기 위해 필요한 필수 요소를 포함하는 것을 특징으로 하는 진단 키트일 수 있다. DNA 칩 키트는 유전자 또는 그의 단편에 해당하는 cDNA 또는 올리고뉴클레오티드(oligonucleotide)가 부착되어 있는 기판, 및 형광표식 프로브를 제작하기 위한 시약, 제제, 효소 등을 포함할 수 있다. 또한 기판은 대조군 유전자 또는 그의 단편에 해당하는 cDNA 또는 올리고뉴클레오티드를 포함할 수 있다.
또 다른 양태로, 본 발명에서 단백질의 발현수준을 측정하기 위한 키트는 항체의 면역학적 검출을 위하여 기질, 적당한 완충용액, 발색 효소 또는 형광물질로 표지된 2차 항체 및 발색 기질 등을 포함할 수 있다. 상기에서 기질은 니트로셀룰로오스 막, 폴리비닐 수지로 합성된 96 웰 플레이트, 폴리스틸렌 수지로 합성된 96 웰 플레이트 및 유리로 된 슬라이드 글라스 등이 이용될 수 있고, 발색효소는 퍼옥시다아제(peroxidase), 알칼라인 포스파타아제(alkaline phosphatase)가 사용될 수 있고, 형광물질은 FITC, RITC 등이 사용될 수 있으며, 발색기질액은 ABTS(2,2'-아지노-비스-(3-에틸벤조티아졸린-6-설폰산)) 또는 OPD(o-페닐렌디아민), TMB(테트라메틸 벤지딘) 등이 사용될 수 있다.
또 다른 측면에서, 본 발명은 개체로부터 분리한 시료에서 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측에 필요한 정보를 제공하는 방법을 제공한다.
본 발명에서, "개체"는 신장이식을 받은 개체로서, 신장이식 후 거부반응이 나타날 가능성이 있거나 또는 거부반응이 나타난 인간, 침팬지를 포함한 영장류, 개, 고양이 등의 애완동물, 소, 말, 양, 염소 등의 가축 동물, 마우스, 래트 등의 설치류 등의 포유동물, 양식어류 등을 제한 없이 포함할 수 있다.
본 발명에서, 분석을 위해 사용되는 "시료"는 혈액, 혈장, 혈청, 타액, 비액, 객담, 복수, 질 분비물, 소변, 대변 등 정상적인 상태와 구별될 수 있는 신장이식 후 항체 매개성 거부반응에 특이적 단백질을 확인할 수 있는 생체 시료를 포함한다. 바람직하게는 생물학적 액체 시료, 예를 들어 혈액, 혈청, 혈장 또는 소변일 수 있으며, 가장 바람직하게는 소변 또는 소변 유래 엑소좀일 수 있다. 상기 시료는 단백질 마커의 탐지 감도를 증가시키도록 준비될 수 있는데 예를 들어 환자로부터 수득한 시료는 음이온 교환 크로마토그래피, 친화도 크로마토그래피, 크기별 배제 크로마토그래피(size exclusion chromatography), 액체 크로마토그래피, 연속추출(sequential extraction) 또는 젤 전기영동 등의 방법을 이용하여 전처리될 수 있다.
본 발명에서, 상기 "단백질의 발현수준 측정"은 신장이식 후 항체 매개성 거부반응을 진단하거나 신장이식을 받은 환자의 예후를 예측하기 위하여 생물학적 시료에서 발현된 바이오마커 단백질의 존재 여부와 발현 정도를 확인하는 과정으로, 상기 단백질에 특이적으로 결합하는 항체를 이용하여 단백질의 존재 여부를 검출하거나 단백질의 양을 측정할 수 있다. 단백질에 특이적인 항체는 본 발명의 진단 또는 예후 예측용 조성물에 서술한 바와 같다. 단백질의 발현 수준을 측정하는 방법은 당업계에서 공지되어 있는 방법을 제한 없이 사용할 수 있으며, 그 예로 웨스턴 블랏팅(western blotting), 닷 블랏팅(dot blotting), 효소면역분석법(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA), 방사능 면역분석법(RIA), 방사면역확산법, 오우크테로니 면역 확산법, 로케트 면역 전기영동, 면역조직화학염색, 면역침전법(immunoprecipitation), 보체 고정 분석법, 유세포 분석법(FACS) 또는 단백질 칩(chip) 방법 등이 있으나, 이들에 한정되는 것은 아니다.
본 발명에서, 상기 "mRNA의 발현수준 측정"은 신장이식 후 항체 매개성 거부반응을 진단하거나 신장이식을 받은 환자의 예후를 예측하기 위하여 생물학적 시료에서 바이오마커 단백질을 코딩하는 유전자의 mRNA 존재 여부와 발현 정도를 확인하는 과정으로, mRNA의 양을 측정함으로써 알 수 있다. 이를 위한 분석 방법으로는 RT-PCR, 경쟁적 RT-PCR(competitive RT-PCR), 실시간 RT-PCR(Real-time RTPCR), RNase 보호 분석법(RNase protection method), 노던 블랏팅(northern blotting) 또는 DNA 칩(DNA chip technology) 등이 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명의 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측에 필요한 정보를 제공하는 방법은 측정된 단백질 또는 mRNA의 발현 수준을 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 신병증을 나타내지 않은 환자군 시료와 비교한 결과가 하기 a) 및 b)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상에 해당하는 경우 항체 매개성 거부반응으로 판정하는 단계를 추가로 포함할 수 있다.
a) LBP의 상향 조절; 및
b) CST3의 상향 조절.
상기 정상 대조군이란 신장이식을 받지 않은 정상인을 의미하며 신장 기증자 (공여자)를 포함하는 것으로 해석될 수 있다. 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 감염성 신병증을 나타내지 않은 환자군은 신장이식을 받았지만 안정적인 신장 기능이 발휘되며 항체 매개성 거부반응, T 세포 매개성 거부반응, 혼합 거부반응 또는 BK 바이러스 감염성 신병증이 나타나지 않은 상태의 신장이식 환자 등을 의미한다. 이들 정상 대조군 및 환자로부터 채취한 시료와 신장이식의 거부반응의 존재 또는 예후를 알고자 하는 환자로부터 채취한 시료에서 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 발현수준 또는 발현패턴을 수득하고, 비교함으로써 예후를 알고자 하는 환자의 예후를 정확하게 예측할 수 있다.
나아가, 본 발명의 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측에 필요한 정보를 제공하는 방법은 T 세포 매개성 거부반응 및 BK 바이러스 신병증과 구별하여 항체 매개성 거부반응을 특이적으로 진단할 수 있는바, T 세포 매개성 거부반응 및/또는 BK 바이러스 신병증을 나타낸 환자군으로부터 채취한 시료와 신장이식의 거부반응의 존재 또는 예후를 알고자 하는 환자로부터 채취한 시료에서의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 발현수준 또는 발현패턴을 수득하고, 비교함으로써 거부반응의 원인 및 종류를 명확하게 규명할 수 있다.
따라서, 본 발명에 의하면 신장이식 후 거부반응의 종류 및 그 예후를 정확하게 진단 또는 예측할 수 있고, 진단 또는 예측된 예후에 따라 적절한 치료 계획을 세울 수 있는 이점을 얻을 수 있다.
이에, 본 발명은 또한, 개체로부터 분리한 시료에서 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계를 포함하는, 신장이식 후 거부반응에 대한 치료법 결정에 필요한 정보를 제공하는 방법을 제공한다.
본 발명의 신장이식 후 거부반응에 대한 치료법 결정에 필요한 정보를 제공하는 방법은 측정된 단백질 또는 mRNA의 발현 수준을 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 신병증을 나타내지 않은 환자군 시료와 비교한 결과가 하기 a) 및 b)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상에 해당하는 경우 항체 매개성 거부반응으로 판정하고, 항체 매개성 거부반응에 대한 치료법을 적용하는 것으로 결정하는 단계를 추가로 포함할 수 있다:
a) LBP의 상향 조절; 및
b) CST3의 상향 조절.
본 발명의 신장이식 후 거부반응에 대한 치료법 결정에 필요한 정보를 제공하는 방법에 있어서, 항체 매개성 거부반응에 대한 치료법을 적용하는 것으로 결정된 이후에는, 항체 매개성 거부반응에 대한 치료법을 공지된 다양한 치료법을 단독 또는 조합하여 환자에게 적절하게 적용할 수 있다.
예를 들어, Kidney Disease Improving Global Outcomes (KDIGO) 가이드라인에서 추천하는 스테로이드, 혈장교환술(plasmapheresis, PP), 정맥면역글로불린(intravenous immunoglobulin, IVIG), anti-CD20 항체, 항림프구 항체, 프로테아좀 억제제 (보르테조밉, bortezomib), Cl-억제제 및 보체 인자 5에 대한 모노클로날 항체 (에쿨리주맙, eculizumab) 등을 단독으로 또는 조합하여 사용할 수 있다. 대부분의 치료방침은 큰 두 가지 치료전략인 1) 항체를 제거하는 혈장교환술과 B 세포 및 면역기능을 조절하는 치료를 병용하는 것이나, 이에 제한되지 않고, 당해 기술분야의 통상의 기술자 또는 임상의 판단 하에 적절한 치료법을 선택할 수 있으며, 또한, 보르테조밉, 에쿨리주맙 등의 치료법을 추가적으로 고려할 수 있다.
이에 따라, 추가의 측면에서 본 발명은 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 및 치료방법을 제공한다.
구체적으로, 본 발명에 따른 항체 매개성 거부반응의 진단 및 치료방법은 다음의 단계를 포함한다:
a) 개체로부터 분리한 시료에서 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계;
b) 상기 a) 단계에서 측정된 발현 수준을 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 신병증을 나타내지 않은 환자군의 시료와 비교하는 단계;
c) 상기 b) 단계의 비교 결과, a) 단계의 개체로부터 분리한 시료에서의 발현 수준이 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 신병증을 나타내지 않은 환자군의 시료에서의 발현 수준보다 높은 경우, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응으로 판정하는 단계; 및
d) 상기 a) 단계의 개체에게 항체 매개성 거부반응 치료법을 적용하는 단계.
본 발명의 항체 매개성 거부반응의 진단 및 치료방법에 있어서, 상기 d) 단계의 항체 매개성 거부반응 치료법은 스테로이드, 혈장교환술(plasmapheresis, PP), 정맥면역글로불린(intravenous immunoglobulin, IVIG), 항-CD20 항체 및 항림프구 항체로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상일 수 있으나, 이에 제한되지 않으며, 전술한 바와 같이 당해 기술분야의 통상의 기술자 또는 임상의 판단 하에 적절한 치료법을 선택할 수 있다.
또 다른 측면에서 본 발명은 a) 신장이식 후 항체 매개성 거부반응을 나타낸 개체로부터 분리한 시료에 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제의 후보물질을 처리하는 단계; 및 b) LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계;를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제의 스크리닝 방법을 제공한다.
본 발명의 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제의 스크리닝 방법은 c) 상기 b) 단계에서 측정된 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준이 후보물질을 처리하기 전보다 하향 조절되는 경우, 상기 a) 단계의 후보물질을 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제로 판단하는 단계를 추가로 포함할 수 있다.
구체적으로, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료 후보물질의 존재 및 부존재 하에서 마커의 mRNA 또는 단백질 발현의 증가 또는 감소를 비교하는 방법으로 신장이식 후 항체 매개성 거부반응에 대한 치료제를 스크리닝 하는데 유용하게 사용할 수 있다.
즉, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응에 대한 치료 후보물질의 부존재 하에 신장이식 후 항체 매개성 거부반응을 나타내었던 환자로부터 분리된 생물학적 시료에서 본 발명의 2종의 바이오마커 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 발현 수준을 측정하고, 또한 치료 후보물질의 존재 하에서 본 발명의 2종의 바이오마커 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 발현 수준을 측정하여 양자를 비교한 후, 치료 후보물질이 존재할 때의 발현 수준을 부재 하에서의 발현 수준보다 감소시키는 물질을 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제로 선택할 수 있다.
본 발명의 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측에 필요한 정보를 제공하는 방법, 신장이식 후 거부반응에 대한 치료법 결정에 필요한 정보를 제공하는 방법 및 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 치료제의 스크리닝 방법은 모두 개체로부터 분리된 시료에서 수행되는 생체 외 (in vitro) 방법을 포함할 수 있다.
다만, 생체 내 (in vivo)에서 항체 매개성 거부반응의 치료제 스크리닝 방법이 수행되는 경우, 인간을 제외한 포유동물을 대상으로 하며, 인간 (human) 또는 인체 (human body)를 대상으로 하지 않는다.
본 발명에 따른 신장이식 후 거부반응에 대한 치료법 결정에 필요한 정보를 제공하는 방법, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 및 치료방법 및/또는 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제의 스크리닝 방법에 대한 다른 구체적인 내용은 전술한 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측에 필요한 정보를 제공하는 방법과 동일하므로, 그 기재를 생략한다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 보다 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한 해석되지 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.
[실시예 1]
환자의 선발 및 소변 시료의 준비
신장이식 환자의 항체 매개성 거부반응을 진단하기 위한 바이오마커를 발굴하기 위하여, 신장이식 후 5년 이내 징후 생검 (indication biopsy)을 시행받은 환자 및 기증자를 포함하여 전체 60명을 대상으로 생검 2~3 시간 전에 소변 시료를 수집하였다. 또한 생체 신장 기증자로부터 신장 기증수술 직전에 소변 시료를 수집하였다. 환자들은 생검의 병리학적인 진단에 따라 5 군으로 분류되었다: 항체 매개성 거부반응 (ABMR) 군 12개, T 세포 매개성 거부반응 (ABMR) 군 8개, BK 바이러스 신병증 (BKVN) 군 5개, 주요 이상이 없는 (NOMOA) 군 11개, 및 기증자 (DONOR) 군 24개. 혼합된 동종 이병성 병변을 가진 환자의 소변은 제외하였다. 이 연구는 아산 병원 의료기관 평가위원회의 승인을 받아 진행하였으며, 모든 환자에게서 서면 동의를 받았다.
[실시예 2]
소변 시료의 가공 및 엑소좀의 분리
준비된 소변 시료로부터 이전에 보고된 Pisitkun et al. (2004) 및 Alvarez et al. (2012)의 방법을 약간 수정하여 계단식 초원심분리(step-wise ultracentrifugation) 방법으로 엑소좀을 분리하였다. 구체적으로, 각 실험 참가자로부터 30 mL 이상의 소변 시료를 수집하였으며, 각각의 소변 시료에 400 μl 프로테아제 저해제 혼합물 [50 μM 4-(2-animoethyl) benzensulfonyl fluoride hydrolchloride(AEBSF-HCl, 시그마 알드리치), 2 μM Leupeptin-hemisulfate(시그마 알드리치), 및 3.3 mM Sodium azide(시그마 알드리치)]를 첨가하였다. 전 세포(whole cell), 거대 막 입자(large membrane particles), 및 다른 잔해를 포함하는 요 침전물(urinary sediments)을 제거하기 위하여, 소변 시료를 4,000 rpm, 4℃에서 15분 간 원심분리하였고, 엑소좀을 추출할 때까지 -80℃에 보관하여 실험에 사용하였다.
그 후, 냉동된 소변 샘플을 각각 15 mL 만큼 해동시키고 1분 동안 볼텍싱 한 다음 상온에서 15분 동안 17,000xg에서 원심 분리하고 상층액 (SN1)을 수집하였다. SN1은 Beckman Coulter Optima L-80xp 초 원심 분리기, 로터 SW40Ti (Beckman Coulter, Brea, CA, USA)를 사용하여 실온에서 70 분 동안 200,000xg에서 초 원심 분리시켰다. 상청액을 버리고 펠렛을 11 mL의 DPBS에 용해시켜 세척한 다음 실온에서 70분 동안 200,000xg에서 다시 초 원심 분리시켰다. 상청액을 버리고 엑소좀 펠릿을 단백질 분리 또는 엑소좀 입자 정량화에 사용하였다.
[실시예 3]
LC-MS 분석 및 단백질 확인
프로테오믹스 분석을 위한 샘플 준비는 동결 건조, 단백질 가용화 및 소화를 거쳤다. 생성된 펩타이드 혼합물을 탈염시키고 C18 역상 크로마토그래피를 사용하여 건조시킨 다음 나노-유동 액체 크로마토그래피(nano-flow liquid chromatography)와 결합된 고분해능 질량 분석(high resolution mass spectrometry)으로 분석하였다.
Proteome Discoverer 2.2 (Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 서열 데이터베이스 분석 및 라벨 프리 정량(label free quantitation, LFQ) 분석을 적용하여 신장이식 거부반응 진단 또는 예측을 위한 바이오마커 후보 물질을 검색하였다. 이로부터, 1820 개의 소변의 엑소좀 단백질을 확인했다. DAVID 생물정보 데이터베이스를 사용하여 유전자 온톨로지 할당(Gene ontology assignments), 분자 기능 및 Kegg 경로 분석을 수행하였다.
[실시예 4]
바이오마커 후보 선발
바이오마커 후보 물질로 단백질을 선택하는 과정을 [도 1]에 요약하였다. 각각의 병리학적 그룹을 대표하는 특정 바이오마커를 선택하기 위해, t-테스트를 사용하여 NOMOA 및 DONOR 그룹과 비교하여 유의하게 다른 평균 존재비 (abundance)를 갖는 단백질을 선택했다. 또한 볼케이노 플롯(volcano plot)을 사용하여 NOMOA 군과 비교할 때 2 배 이상의 차이를 보이는 단백질을 선택했다. 두 가지 분석에서 중복된 단백질을 선택하고 나머지 두 병리학적 군과 다시 비교하여 평균 존재비의 유의한 차이를 비교 하였다. 모든 분석은 p <0.05의 컷 오프(cut off)로 수행되었다.
4-1. ABMR 환자의 단백질 바이오마커 확인 및 1차 선별
4193개의 소변 단백질로부터 각각의 병리학적 그룹을 대표하는 특정 바이오마커를 선택하고자 하였으며, Proteome Discoverer 2.2 (Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 서열 데이터베이스 분석 및 라벨 프리 정량(label free quantitation, LFQ) 분석을 적용하여 1820개의 소변 엑소좀 단백질을 확인하였다.
1820개의 소변 엑소좀 단백질 중에서 ABMR 군을 구별할 수 있는 마커를 선발하기 위하여, 먼저 T 테스트를 사용하여 NOMOA 및 Donor 그룹과 비교하여 ABMR 그룹에서 유의하게 다른 평균 존재비(abundance)를 갖는 단백질을 1차적으로 선발한 결과 108개의 단백질이 ABMR 군에서만 특이적으로 발현되는 것을 확인하였다(p<0.05).
다음으로, NOMOA 그룹과 ABMR 그룹 만을 비교하여 2배 이상의 발현량 차이를 보이는 단백질을 확인한 결과 834개 단백질이 선별되었다(p<0.05).
상기 1차 선발된 108종의 단백질과 2배 이상의 발현량 차이를 보이는 834개 단백질 중에서 중복되는 단백질 46종을 ABMR 마커 후보로 최종 선발하고, TCMR군 및 BKVN군과 존재비의 유의한 차이를 다시 비교한 결과를 하기 [표 1]에 나타내었다.
NOMOA, DONOR 군과 ABMR 군에서 차이를 보이는 단백질 목록(46종)
등록번호 Protein FDR Confidence: Combined Abundance Ratio: (ABMR)/ (NOMOA) Abundance Ratio P-Value: (ABMR)/ (NOMOA) T testNOMOAvsABMR T testABMRvs TCMR T testABMR vsBKVN T testABMR vs donor 설명
Q07000 High 4.276 0.000125 0.001 0.267 0.525 0.051 HLA class I histocompatibility antigen
O15144 High 0.423 0.018431 0.001 0.021 0.044 0.127 Actin-related protein 2/3 complex subunit 2
P01019 High 6.23 8.81E-10 0.003 0.007 0.324 0.002 Angiotensinogen
Q9NZD2 High 0.273 0.022965 0.003 0.041 0.227 0.000 Glycolipid transfer protein
P08697 High 3.009 0.000109 0.007 0.018 0.023 0.005 Alpha-2-antiplasmin
P02652 High 4.085 9.45E-07 0.007 0.975 0.328 0.005 Apolipoprotein A-II
P01008 High 2.679 0.00045 0.008 0.060 0.138 0.001 Antithrombin-III
P62244 High 0.21 0.00477 0.008 0.129 0.122 0.003 40S ribosomal protein S15a
P02647 High 3.143 6.21E-05 0.009 0.019 0.651 0.001 Apolipoprotein A-I
Q16563 High 0.378 0.009505 0.009 0.005 0.201 0.001 Synaptophysin-like protein 1
Q9UGM5 High 4.342 1.28E-08 0.010 0.580 0.053 0.085 Fetuin-B
P18428 High 3.655 7.69E-06 0.011 0.020 0.004 0.001 Lipopolysaccharide-binding protein
P21291 High 0.395 0.013813 0.012 0.013 0.045 0.047 Cysteine and glycine-rich protein
P15291 High 3.045 9.35E-05 0.014 0.034 0.157 0.010 Beta-1,4-galactosyltransferase 1
P02753 High 3.902 2.92E-06 0.014 0.037 0.047 0.008 Retinol-binding protein 4
P54709 High 0.27 0.042444 0.016 0.154 0.272 0.030 Sodium/potassium-transporting ATPase subunit beta-3
Q8WWT9 High 0.215 0.004434 0.016 0.004 0.250 0.001 Solute carrier family 13 member 3
P01034 High 4.863 1.24E-08 0.017 0.011 0.026 0.016 Cystatin-C
P00746 High 6.285 7.42E-10 0.018 0.015 0.016 0.008 Complement factor D
P29622 High 3.368 2.45E-05 0.018 0.026 0.048 0.013 Kallistatin
P0DJI8 High 0.353 0.047116 0.020 0.498 #DIV/0! #DIV/0! Serum amyloid A-1 protein
P21810 High 2.565 0.000742 0.020 0.255 0.968 0.101 Biglycan
P14174 High 0.133 6.23E-09 0.022 0.085 0.124 0.048 Macrophage migration inhibitory factor
P27169 High 4.935 6.45E-08 0.023 0.045 0.023 0.021 Serum paraoxonase/arylesterase 1
P00734 High 3.597 9.72E-06 0.023 0.078 0.041 0.013 Prothrombin
Q15485 High 2.348 0.000814 0.027 0.405 0.388 0.046 Ficolin-2
Q06033 High 2.086 0.013977 0.031 0.015 0.053 0.036 Inter-alpha-trypsin inhibitor heavy chain H3
P05546 High 3.667 7.34E-06 0.033 0.123 0.067 0.019 Heparin cofactor 2
Q86Y46 High 0.253 0.00696 0.034 0.626 #DIV/0! 0.061 Keratin, type II cytoskeletal 73
Q92520 High 2.658 0.005751 0.034 0.232 0.630 0.027 Protein FAM3C
P06681 High 3.37 2.43E-05 0.035 0.061 0.057 0.011 Complement C2
P04278 High 2.461 0.000239 0.037 0.442 0.061 0.025 Sex hormone-binding globulin
Q9BZF9 High 0.472 0.049706 0.037 0.778 0.205 0.006 Uveal autoantigen with coiled-coil domains and ankyrin repeats
Q9Y512 High 0.402 0.043272 0.038 0.006 0.618 0.003 Sorting and assembly machinery component 50 homolog
Q92845 High 0.329 0.029713 0.038 0.011 0.423 0.000 Kinesin-associated protein 3
O14657 High 2.267 0.017737 0.039 #DIV/0! 0.056 #DIV/0! Torsin-1B
Q969L2 High 0.439 0.032975 0.040 0.024 0.108 0.000 Protein MAL2
P0DOY2 High 2.562 0.000752 0.041 0.191 0.183 0.003 Immunoglobulin lambda constant 2
P11678 High 0.242 0.023956 0.042 0.343 #DIV/0! 0.166 Eosinophil peroxidase
P01860 High 4.256 7.56E-07 0.044 0.147 0.105 0.022 Immunoglobulin heavy constant gamma 3
Q99972 High 5.61 6.48E-09 0.046 0.053 0.144 0.038 Myocilin
P20062 High 4.436 0.000954 0.046 0.912 #DIV/0! #DIV/0! Transcobalamin-2
P26572 High 3.104 6.07E-06 0.046 0.035 0.198 0.229 Alpha-1,3-mannosyl-glycoprotein 2-beta-N-acetylglucosaminyltransferase
O14896 High 4.395 0.000457 0.047 0.176 0.454 0.132 Interferon regulatory factor 6
P14543 High 2.464 0.001158 0.050 0.077 0.127 0.032 Nidogen-1
P00403 High 0.167 0.00137 0.050 0.473 0.331 0.185 Cytochrome c oxidase subunit 2
4-2. ABMR 특이적 후보 바이오마커의 최종 선발
ABMR, TCMR 및 BKVN 군에서 각각 특이적인 엑소좀 단백질을 발견하기 위하여 T 테스트 분석을 기반으로 최종 후보 단백질을 선택했다. 소변 엑소좀 단백질 중에서 NOMOA 군 또는 DONOR 군과 비교하여 ABMR 군에서만 특이적으로 발현되는 단백질 중에서 NOMOR 군과 비교하여 발현 프로파일이 2배 이상 차이가 나는 단백질만 선별하는 과정을 통해 상기 [표 1]의 46종 단백질을 1차 선별하였다.
상기 [표 1]의 1차 선별된 46종 단백질 중에서, TCMR 군과 비교하여 ABMR 군에서만 유의하게 다른 평균 존재비(abundance)를 갖는 단백질을 후보 바이오마커로 선택하고, BKVN군과 비교하여 ABMR군에서만 유의하게 다른 평균 존재비(abundance)를 갖는 단백질을 후보 바이오마커로 선택하였고, 마지막으로 상기 각 후보 바이오마커 단백질 중 중복되는 8가지 단백질을 TCMR, BKVN과 ABMR 군에서 차이가 예상되는 ABMR 바이오마커 단백질로 선정하였다. 확인된 단백질은 하기 [표 2]에 나타낸 바와 같이, LBP(Lipopolysaccharide-binding protein, UniProt Accession No.P18428), CSRP1(Cysteine and glycine-rich protein 1, UniProt Accession No.P21291), SERPINF2(Alpha-2-antiplasmin, UniProt Accession No.P08697), RBP4(Retinol-binding protein 4, UniProt Accession No.P02753), CST3(Cystatin-C, UniProt Accession No.P01034), CFD(Complement factor D, UniProt Accession No.P00746), SERPINA4(Kallistatin, UniProt Accession No.P29622), PON1(Serum paraoxonase/arylesterase 1, UniProt Accession No.P27169)이었다.
4-3. 선발된 ABMR 특이적 바이오마커의 특성 확인
최종 선발된 바이오마커의 특성을 확인하기 위하여, DAVID 생물정보 데이터베이스를 사용하여 유전자 온톨로지 할당(Gene ontology assignments), 분자 기능 및 Kegg 경로 분석을 수행하였으며, 그 결과를 [표 2]에 나타내었다.
선발된 ABMR 특이적 마커의 기능적 특성
등록번호 설명 유전자 BP direct MF direct Kegg pathway
P08697 Alpha-2-antiplasmin SERPINE2 :regulation of blood vessel size by renin-angiotensin :negative regulation of fibrinolysis :fibrinolysis:positive regulation of collagen biosynthetic process:positive regulation of stress fiber assembly:acute-phase response:platelet degranulation:negative regulation of endopeptidase activity :endopeptidase inhibitory activity:protease binding:serine-type endopeptidase inhibitor activity :Complement and coagulation cascades
P18428 Lipopolysaccharide-binding protein LBP :opsonization :acute-phase response:innate immune response 　 　
P21291 Cystein and glycine-rich protein 1 CSRP1 　 　 　
P02753 Retinol-binding protein 4 RBP4 :eye development:retinoid metabolic process 　 　
P01034 Cystatin-C CST3 :negative regulation of proteolysis:eye development:response to nutrient levels:cellular protein metabolic process :cystein-type endopeptidase inhibitor activity:beta-amyloid binding:protease binding:endopeptidase inhibitor activity 　
P00746 Complement factor D CFD :complement activation:platelet degranulation:proteolysis :serine-type endopeptidase activity :Complement and coagulation cascades
P29622 Kallistatin SEPINA4 :platelet degranulation:negative regulation of endopeptidase activity :serine-type endopeptidase inhibitor activity 　
P27169 Serum paraoxonase/arylesterase 1 PON1 :response to nutrient levels:cholesterol metabolic process :phospholipid binding 　
상기 표 2에 나타난 바와 같이, 선발된 ABMR 특이적 마커는 보체 활성화, 혈소판 탈과립 및 선천적 면역 반응(Innate immune response)과 관련이 있는 것을 알 수 있으며, 선발된 마커 중 CSRP1은 기능적 특성에 대해 아직 보고된 바 없다.
4-4. ABMR 특이적 바이오마커 정확도 확인
표 2의 8종의 단백질(LBP, CSRP1, SERPINF2, PON1, RBP4, CST3, SERPINA4 및 CFD)에 대해 ROC 분석을 수행하여, NOMOA, TCMR, BKVN 군과 ABMR군을 구별할 수 있는 바이오마커의 잠재력을 평가하여 [도 6]에 나타내었다. 그 결과, 곡선 아래 면적은 모든 바이오마커에서 0.5 이상이며, 민감도와 특이도에 있어서 매우 높은 수준을 나타냄을 확인할 수 있었다.
4-5. ABMR 특이적 바이오마커의 검증
실시예 4-4에서 선별된 8종의 바이오마커 중 추가 단계를 통해 선별된 2종 LBP 및 CST3에 대해 검증을 실시하였다.
실시예 1과 마찬가지로 신장이식 후 5년 이내 징후 생검 (indication biopsy)을 시행받은 환자 및 기증자를 대상으로 생검 2~3 시간 전에 소변 시료를 수집하였다. 또한, 생체 신장 기증자로부터 신장 기증수술 직전에 소변 시료를 수집하였다. 환자들은 생검의 병리학적인 진단에 따라 5 군으로 분류되었다: 항체 매개성 거부반응군 (ABMR), T 세포 매개성 거부반응군 (ABMR), BK 바이러스 신병증군 (BKVN), 주요 이상이 없는 군 (NOMOA) 및 기증자 (DONOR) 군. 혼합된 동종 이병성 병변을 가진 환자의 소변은 제외하였다. 이 연구는 아산 병원 의료기관 평가위원회의 승인을 받아 진행하였으며, 모든 환자에게서 서면 동의를 받았다.
11명의 신장 공여자에 해당하는 기증자 (control), 7명의 주요 이상이 없는 군 (NOMOA), 10명의 항체 매개성 거부반응군 (ABMR)의 각 소변 시료로부터 분리된 엑소좀에 대해 웨스턴 블로팅으로 2종의 ABMR 특이적 마커의 단백질 발현 수준을 측정하였다. 웨스턴 블로팅에 사용된 항체의 정보는 표 3과 같다.
항체 제조사 Cata. No
인간 LBP 항체 R&D systems AF870
인간 시스타틴 C (CST3) 항체 R&D systems AF1196
항-염소 IgG+HPR GenDepot SA007
항체 매개성 거부반응이 중증도 (severity)로 높게 발생한 환자군에서 평균을 나타내는 2명의 환자를 혼합한 단백질을 양성대조군 (Positive control; PC)으로 사용하였다. Image J 소프트웨어를 이용하여 밴드의 강도를 수치로 정량화하였고, NOMOA 군 환자의 결과 값 대비 ABMR 군 환자의 결과 값을 정량화하여 결과를 분석하였다.
도 7a 및 7b에서 확인되는 바와 같이, LBP는 NOMOA 군 대비 ABMR 군에서 6.4 배 증가하였고, 정상 대조군 대비 ABMR 군에서 10.7배 증가하였다. Cystatin C (CST3)는 NOMOA 군 대비 ABMR 군에서 4.0배, 정상 대조군 대비 ABMR 군에서 4.5배 증가하는 것을 확인하였다.
이에 따라, ABMR 특이적 마커는 통계적 유의성이 검증된 LBP와 Cystatin C (CST3) 단백질로 최종 선별되었으며, 상기 2종의 마커에 대해 AUC (Area under the ROC curve; AUC) 값을 구한 결과, LBP는 0.87, Cystatin C (CST3)는 0.84로 통계적으로 모두 유의한 값임을 확인하였다. 따라서, 본 실시예를 통해 LBP 및 Cystatin C (CST3) 단백질은 ABMR 환자에서 특이적으로 높게 발현되어 ABMR 반응성 바이오마커로서의 가치가 충분히 입증되었다.
본 발명을 지원한 국가연구개발사업은 하기와 같다.
[이 발명을 지원한 국가연구개발사업]
[과제고유번호] 1711046930/2016M3A9E8941330
[부처명] 과학기술정보통신부
[연구관리 전문기관] 한국연구재단
[연구사업명] 바이오·의료기술개발사업
[연구과제명] 신장 이식 후 섬유화에 대한 바이오마커로서의 urinary transglutaminase 2 진단 키트 개발
[주관기관] 서울아산병원
[연구기간] 2020. 02. 01 - 2020. 07. 31

Claims (17)

  1. LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 (Antibody mediated rejection, ABMR)의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 바이오마커 조성물.
  2. LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 상기 단백질을 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 물질을 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 조성물.
  3. 제2항에 있어서,
    상기 mRNA의 발현 수준을 측정하는 물질은 상기 유전자에 특이적으로 결합하는 프라이머 또는 프로브인, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 조성물.
  4. 제2항에 있어서,
    상기 단백질의 발현 수준을 측정하는 물질은 상기 단백질 또는 그의 단편에 특이적으로 결합하는 항체, 상호작용 단백질, 리간드, 올리고펩타이드, 펩타이드 핵산(peptide nucleic acid, PNA), 나노입자 또는 앱타머인, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 조성물.
  5. 제2항의 조성물을 포함하는 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측용 키트.
  6. 개체로부터 분리한 시료에서 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측에 필요한 정보를 제공하는 방법.
  7. 제6항에 있어서,
    상기 시료는 소변 또는 소변 유래 엑소좀인 것인, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측에 필요한 정보를 제공하는 방법.
  8. 제6항에 있어서,
    상기 방법은 측정된 단백질 또는 mRNA의 발현 수준을 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 신병증을 나타내지 않은 환자군 시료와 비교한 결과가 하기 a) 및 b)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상에 해당하는 경우 항체 매개성 거부반응으로 판정하는 단계를 추가로 포함하는 것인, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 진단 또는 신장이식 후 환자의 예후 예측에 필요한 정보를 제공하는 방법:
    a) LBP의 상향 조절; 및
    b) CST3의 상향 조절.
  9. 개체로부터 분리한 시료에서 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계를 포함하는, 신장이식 후 거부반응에 대한 치료법 결정에 필요한 정보를 제공하는 방법.
  10. 제9항에 있어서,
    상기 시료는 소변 또는 소변 유래 엑소좀인 것인, 신장이식 후 거부반응에 대한 치료법 결정에 필요한 정보를 제공하는 방법.
  11. 제9항에 있어서,
    상기 방법은 측정된 단백질 또는 mRNA의 발현 수준을 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 신병증을 나타내지 않은 환자군 시료와 비교한 결과가 하기 a) 및 b)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상에 해당하는 경우 항체 매개성 거부반응으로 판정하고, 항체 매개성 거부반응에 대한 치료법을 적용하는 것으로 결정하는 단계를 추가로 포함하는 것인, 신장이식 후 거부반응에 대한 치료법 결정에 필요한 정보를 제공하는 방법:
    a) LBP의 상향 조절; 및
    b) CST3의 상향 조절.
  12. a) 개체로부터 분리한 시료에서 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계;
    b) 상기 a) 단계에서 측정된 발현 수준을 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 신병증을 나타내지 않은 환자군의 시료와 비교하는 단계;
    c) 상기 b) 단계의 비교 결과, a) 단계의 개체로부터 분리한 시료에서의 발현 수준이 신장이식을 받지 않은 정상 대조군 또는 신장이식 후 거부반응 또는 BK 바이러스 신병증을 나타내지 않은 환자군의 시료에서의 발현 수준보다 높은 경우, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응으로 판정하는 단계; 및
    d) 상기 a) 단계의 개체에게 항체 매개성 거부반응 치료법을 적용하는 단계;를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 및 치료방법.
  13. 제12항에 있어서,
    상기 시료는 소변 또는 소변 유래 엑소좀인 것인, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 및 치료방법.
  14. 제12항에 있어서, 상기 d) 단계의 항체 매개성 거부반응 치료법은 스테로이드, 혈장교환술(plasmapheresis, PP), 정맥면역글로불린(intravenous immunoglobulin, IVIG), 항-CD20 항체(rituximab), 항-림프구 항체(lymphocyte-depleting antibody), 프로테아좀 억제제, Cl-억제제 및 보체 인자 5에 대한 모노클로날 항체(monoclonal antibody against complement factor 5)로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응의 진단 및 치료방법.
  15. a) 신장이식 후 항체 매개성 거부반응을 나타낸 개체로부터 분리한 시료에 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제의 후보물질을 처리하는 단계; 및
    b) LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준을 측정하는 단계;를 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제의 스크리닝 방법.
  16. 제15항에 있어서,
    상기 시료는 소변 또는 소변 유래 엑소좀인 것인, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제의 스크리닝 방법.
  17. 제15항에 있어서, c) 상기 b) 단계에서 측정된 LBP 및 CST3로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상의 단백질 또는 이를 코딩하는 유전자의 mRNA의 발현 수준이 후보물질을 처리하기 전보다 하향 조절되는 경우, 상기 a) 단계의 후보물질을 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제로 판단하는 단계를 추가로 포함하는, 신장이식 후 항체 매개성 거부반응 치료제의 스크리닝 방법.
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