WO2020130148A1 - 老化抑制剤 - Google Patents

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WO2020130148A1
WO2020130148A1 PCT/JP2019/050203 JP2019050203W WO2020130148A1 WO 2020130148 A1 WO2020130148 A1 WO 2020130148A1 JP 2019050203 W JP2019050203 W JP 2019050203W WO 2020130148 A1 WO2020130148 A1 WO 2020130148A1
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endothelial
tgf
lymphatic
mesenchymal transition
inhibitor
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PCT/JP2019/050203
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健太朗 加治屋
知輝 高垣
徹郎 渡部
康裕 吉松
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株式会社 資生堂
国立大学法人 東京医科歯科大学
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    • A61Q19/08—Anti-ageing preparations

Definitions

  • the present invention suppresses senescence of lymphatic vessels by suppressing senescence, particularly endothelial mesenchymal transition inhibitor containing mulberry bark and/or guava leaves as an active ingredient, and inhibiting endothelial mesenchymal transition of lymphatic vessels
  • the present invention relates to a lymphatic aging inhibitor.
  • Lymphocytes play the role of drainage pipes that collect waste products such as inflammatory cells, proteins, and water from cell gaps.
  • waste products such as inflammatory cells, proteins, and water from cell gaps.
  • lymphatic vessels it is known that when the function of lymphatic vessels is impaired due to aging, the discharge of waste products is delayed and various problems such as swelling occur. Therefore, a substance that prevents/improves lymphatic aging is desired.
  • Non-Patent Document 1 it has been reported that in the eyeball, endothelial cells of Schlemm's canal like blood vessels transdifferentiate into mesenchymal cells and impair the aqueous humor drainage function, resulting in glaucoma associated with aging (Non-Patent Document 1). .. In addition, it has been reported that the endothelial-mesenchymal transition of vascular endothelial cells is involved in tumor progression.
  • endothelial-mesenchymal transition of endothelial cells is involved in the aging of lymphatic vessels in organs such as the skin. It is also necessary to search for substances that suppress the transdifferentiation of lymphatic vessels into mesenchymal cells.
  • An object of the present invention is to provide an agent for inhibiting endothelial mesenchymal transition of lymph vessels and an agent for inhibiting senescence of lymph vessels by inhibiting endothelial mesenchymal transition of lymph vessels.
  • the present inventors have confirmed that transdifferentiation of lymphatic endothelial cells into mesenchymal cells in organs such as skin is involved in senescence of lymphatic vessels. Therefore, if it is possible to suppress the transdifferentiation of lymphatic vessels into mesenchymal cells of endothelial cells, it is expected that the aging of lymphatic vessels in each organ of the body will be suppressed, and thus contribute to the suppression of aging of the organs. Therefore, as a result of earnest research on the effect of various components as an endothelial mesenchymal transition inhibitor of lymphatic vessels, the present inventors have found that mulberry bark and guava leaves have particularly high effects, and completed the following inventions.
  • TGF- ⁇ transforming growth factor- ⁇
  • a TGF- ⁇ inhibitor containing guava leaf as an active ingredient containing guava leaf as an active ingredient.
  • the endothelial mesenchymal transition inhibitor according to (1) or (2), the lymphatic vessel aging inhibitor according to (3) or (4), and/or the TGF- ⁇ inhibitor according to (5) A composition comprising: (7) A cosmetic method for preventing lymphatic senescence in a subject, comprising administering the composition according to (6) to the subject.
  • a beauty counseling method for supporting a cosmetic action of a target which comprises proposing the composition according to (6) to the target.
  • an endothelial mesenchymal transition inhibitor containing mulberry bark and/or guava leaf as an active ingredient.
  • Administration of the endothelial-mesenchymal transition inhibitor of the present invention can inhibit endothelial-mesenchymal transition. It is also possible to suppress the aging of lymphatic vessels by suppressing the migration of lymphatic vessels to the mesenchyme.
  • FIG. 1 shows the expression of LYVE1 and SM22 ⁇ in young and old groups.
  • the above figure is a representative diagram showing the expression of LYVE1 and SM22 ⁇ in endothelial cells of cutaneous lymphatic vessels of young and old groups.
  • FIG. 2 is a graph showing the expression levels of Prox1 (upper figure) and VEGFR3 (lower figure) in human skin-derived lymphatic endothelial cells (HDLEC) for each culture generation.
  • HDLEC human skin-derived lymphatic endothelial cells
  • the vertical axis shows the expression level in the fifth passage cell (kk2p5) as 100, and shows the ratio of the expression level in each subsequent culture generation (%).
  • the horizontal axis shows the culture generation from the fifth passage cell.
  • FIG. 3 shows the expression levels of LYVE1 and SM22 ⁇ in HDLEC. In each graph, the results of adding SB431542 (SB), 0.1% BSA/4mMHCl (Ctrl), and TGF- ⁇ (TGF- ⁇ ) as controls are shown from the left (T test, ***p ⁇ 0.001). ..
  • FIG. 4 shows the inhibitory effect of TGF- ⁇ by various samples.
  • FIG. 5 shows the results of measuring the expression levels of LYVE1 and Prox1 in HDLEC by RT-PCR.
  • the left figure shows the expression level of LYVE1
  • the right figure shows the expression level of Prox1.
  • PBS only, TGF- ⁇ only, SB431542 only, SB431542+TGF- ⁇ , mulberry bark extract only, and TGF- ⁇ + mulberry bark extract are added in order from the left is shown in each figure.
  • FIG. 6 shows the results of measuring the expression level of SM22 ⁇ in HDLEC by RT-PCR. From the left, the case of adding PBS only, TGF- ⁇ only, SB431542 only, SB431542+TGF- ⁇ , mulberry bark extract only, and TGF- ⁇ + mulberry bark extract is shown in order from the left.
  • FIG. 7 shows changes in the morphology of HDLEC by the addition of mulberry bark and TGF- ⁇ .
  • FIG. 8 shows the results of an assay measuring the permeability of HDLEC. From the left, the results of adding no additive (con) and TGF- ⁇ only (TGF- ⁇ 2), TGF- ⁇ + SB431542 (TGF- ⁇ 2 + SB), TGF- ⁇ + mulberry bark extract (TGF- ⁇ 2 + 15) are shown ( Dunnett's multiple test, *p ⁇ 0.01).
  • FIG. 9 shows the results of measuring the expression level of SM22 ⁇ by RT-PCR. From the left, the results of adding PBS only (control), TGF- ⁇ only (TGF- ⁇ ), TGF- ⁇ + SB431542 (TGF- ⁇ + SB), TGF- ⁇ + guava leaf extract (TGF- ⁇ + guava leaf) are shown as control. It is shown as a relative value with 100 added when added (Dunnett's multiple test, **p ⁇ 0.001).
  • the endothelial mesenchymal transition inhibitor of the present invention can inhibit the endothelial mesenchymal transition of lymphatic vessels. By suppressing the migration of lymphatic vessels to the endothelium, it is possible to suppress the aging of lymphatic vessels.
  • the endothelial mesenchymal transition inhibitor and aging inhibitor of the present invention are useful for excretion of waste products, prevention or improvement of swelling, promotion of metabolism, and prevention or treatment of lymphatic dysfunction. For example, by keeping the function of the skin lymphatic vessels in good condition, the removal of waste products, the circulation of lymph, etc. are normally performed, and as a result, the prevention of skin aging such as spots, wrinkles, and sagging is expected.
  • the endothelium-mesenchymal transition of the lymphatic vessel means that the endothelial cells of the lymphatic vessel undergo transdifferentiation into mesenchymal cells (hereinafter referred to as “endothelial-mesenchymal transition”). Endothelial-mesenchymal transition of lymphatic vessels is caused by decreased expression of endothelial cell markers in lymphatic endothelial cells, increased expression of mesenchymal cell markers, and ratio of expression of mesenchymal cell markers to endothelial cell markers (EndMT ratio: calculated by the method of Expression 1 below) can be measured.
  • Endothelial cell markers include LYVE1, Prox1, and VEGFR3; mesenchymal cell markers include, but are not limited to, SM22 ⁇ , and any endothelial cell marker or mesenchymal cell marker can be used, depending on their ratio. The EndMT ratio is also arbitrary depending on the above marker.
  • endothelial cells are transdifferentiated into mesenchymal cells, morphological changes such as fibrosis are observed (FIG. 7 ), so it is also possible to measure by morphologically observing the cells.
  • lymphatic endothelial cells when endothelial cells are transdifferentiated into mesenchymal cells, the number of lymphatic endothelial cells decreases, or the properties as lymphatic endothelial cells cannot be maintained, so that the function of lymphatic vessels is impaired and they flow in lymphatic vessels. Liquid leaks out.
  • Such deterioration of the function of the lymph vessel can be confirmed by measuring the permeability of the insert in which the lymphatic endothelial cells are formed, for example, by the permeability assay as shown in the examples.
  • the migration of lymphatic vessels to the mesenchyme of the endothelium can be confirmed by the increased permeability by the permeability assay.
  • ⁇ Inhibition of endothelial mesenchymal transition of lymphatic vessels means inhibiting transdifferentiation of lymphatic endothelial cells into mesenchymal cells.
  • Inhibition of endothelium-mesenchymal transition of lymphatic vessels is, for example, an increase in mesenchymal cell marker expression level or EndMT ratio in lymphatic endothelial cells, decrease in endothelial cell marker expression level, When added, it may mean that it is suppressed compared to the case where it is not added. Suppression may be, for example, a decrease with a statistically significant difference (eg Student's t test) with a significance level of 5%, and/or for example 10% or more, 20% or more, 30% or more, It may be 40% or more, 50% or more, 60% or more, 70% or more, 80% or more, 90% or more, 100%.
  • a statistically significant difference eg Student's t test
  • TGF- ⁇ has an action of inducing endothelial-mesenchymal transition. Therefore, when measuring the inhibitory effect on the endothelial mesenchymal transition of lymphatic vessels of various drugs, for example, the endothelial mesenchymal transition of lymphatic vessels can be promoted by adding a substance that promotes the endothelial mesenchymal transition such as TGF- ⁇ . Good.
  • TGF- ⁇ may promote an increase in the expression level of the mesenchymal cell marker or EndMT ratio, and a decrease in the expression level of the endothelial cell marker.
  • TGF- ⁇ is a homodimeric (approximately 25 kDa) multifunctional cytokine identified as a factor that promotes fibroblast transformation. In mammals such as humans, TGF- ⁇ has three types with similar structures. Subtypes (TGF- ⁇ 1 to 3) exist. TGF- ⁇ exerts various actions such as cell proliferation, differentiation and regulation of development by binding to receptors on the cell membrane. TGF- ⁇ is also known to inhibit proliferation of various cells such as epithelial cells, vascular endothelial cells, and lymphocytes, and is considered to be involved in various pathological conditions such as cancer and renal fibrosis. There is.
  • the present inventors decrease the expression level of endothelial cell markers in lymphatic endothelial cells with aging, increase the expression levels of mesenchymal cell markers and EndMT ratio, and decrease the number of lymphatic endothelial cells. It was confirmed that the morphology of endothelial cells changed.
  • aging of lymphatic vessels means that the expression level of endothelial cell markers such as LYVE1, Prox1, and VEGFR3 in lymphatic endothelial cells decreases with aging, and/or the expression level of mesenchymal cell markers such as SM22 ⁇ and EndMT ratio may be increased, lymphatic endothelial cells may be decreased or stiffened, and changes in the morphology of lymphatic endothelial cells (eg, fibroblast-like changes) may be indicated. It may also mean that lymphatic vessel function is impaired by the reduction and/or hardening of lymphatic endothelial cells.
  • the endothelial cell marker, mesenchymal cell marker, and End MT ratio are not limited as described above.
  • Lymphatic vessel aging suppression refers to the suppression of lymphatic vessel aging as described above, and may be through suppression of lymphatic vessel endothelium-mesenchymal transition.
  • Suppression of lymphatic vessel aging refers to, for example, the increase of mesenchymal cell marker expression level and EndMT ratio in vascular endothelial cells accompanying aging, decrease of endothelial cell marker expression level, and addition of lymphatic vessel aging inhibitor. Then, it may mean that it is suppressed as compared with the case of not adding.
  • the suppression may be, for example, a reduction in the expression level of the above-mentioned marker having a statistically significant difference (eg Student's t-test) with a significance level of 5%, and/or, for example, 10% or more, 20% or more. , 30% or more, 40% or more, 50% or more, 60% or more, 70% or more, 80% or more, 90% or more, 100% may be suppressed.
  • TGF- ⁇ may promote the migration of lymphatic vessels to the endothelium-mesenchyma to promote aging.
  • TGF- ⁇ may promote the increase of mesenchymal cell marker expression level and EndMT ratio and the decrease of endothelial cell marker expression level due to the aging.
  • Mulberry bark refers to the root bark of plants belonging to the mulberry genus of the mulberry family, such as mulberry (Morus alba Linne).
  • Mulberry bark has been used as a Chinese medicine for a long time, and it has been reported that it has diuretic, analgesic, anti-inflammatory and antitussive effects (Patent Documents 1 and 2).
  • mulberry bark has a TGF- ⁇ inhibitory effect and is effective in hair growth and the like (Patent Document 2).
  • the guava leaf refers to the leaf of a plant belonging to the genus Bungilow genus, such as guava (Psidium guajava).
  • guava leaves have effects such as diabetes, hypertension, obesity and diarrhea (Patent Document 3).
  • Patent Document 3 it has not been known that mulberry bark or guava leaves have an action of inhibiting the migration of lymphatic vessels into the endothelium-mesenchymal or aging of lymphatic vessels in organs such as the skin.
  • the lymphatic endothelial mesenchymal transition inhibitor or lymphatic vessel aging inhibitor of the present invention comprises mulberry bark and/or guava leaves as an active ingredient, for example, 10% by mass or more, 20% by mass or more, 30% by mass or more, May be contained in mass% or more, 40 mass% or more, 50 mass% or more, 60 mass% or more, 70 mass% or more, 80 mass% or more, 90 mass% or more, 95 mass% or more, or 99 mass% or more.
  • the lymphatic endothelial mesenchymal transition inhibitor or lymphatic vessel senescence inhibitor of the present invention may consist of mulberry bark and/or guava leaves.
  • the mulberry bark and/or guava leaf can be used as raw or dried, but may be in the form of dry powder or extract.
  • a method for obtaining a dry powder there are a method in which mulberry bark and/or guava leaves are shredded or crushed and then dried, or a plant is dried and then shredded or crushed to obtain a dry powder.
  • a method in which the plant is shredded or crushed, subjected to fermentation or enzyme treatment, dried, and further crushed so as to have a predetermined particle size can be appropriately adopted.
  • the extraction method can be carried out by solvent extraction.
  • solvent extraction mulberry bark and/or guava leaves are dried if necessary, and further shredded or crushed if necessary, and then an aqueous extractant such as cold water, hot water, or boiling point or lower temperature Hot water, or a water-containing organic solvent, an organic solvent such as methanol, ethanol, 1,3-butanediol, ether, ethyl acetate or the like at room temperature or by heating and extraction.
  • the extraction method is not limited to solvent extraction, and may be a conventional method known in the art.
  • the extract may be in the form of not only the extract itself, but also one that is appropriately diluted or concentrated by a conventional method, and is a powdery or lumpy solid obtained by drying the extract. Good.
  • the present invention provides an inhibitor of endothelial mesenchymal transition or lymphatic vessel aging inhibitor containing mulberry bark and/or guava leaf as an active ingredient or a composition containing the same to inhibit endothelial mesenchymal transition of lymphatic vessels. It also provides a method for preventing lymphatic vessel aging through The method of the present invention is a method for cosmetic purposes and may not be a treatment by a doctor or a medical staff.
  • the method of the present invention involves the administration of a mulberry bark and/or guava leaf or a composition containing the same to suppress the migration of the lymphatic vessels in the skin to the endothelial mesenchyme, and It may be a cosmetic method for preventing skin aging caused by aging of lymphatic vessels of skin such as swelling, spots, wrinkles, and sagging by preventing aging.
  • the present invention also provides a beauty counseling method for supporting a cosmetic action of a subject, which method includes proposing a mulberry bark and/or guava leaf or a composition containing the same to the subject.
  • the administration route of the endothelial mesenchymal transition inhibitor or lymphatic vessel aging inhibitor or composition of the present invention can be arbitrarily selected, and examples thereof include oral administration, transdermal administration, subcutaneous administration, transmucosal administration, and intramuscular administration.
  • the compounding amount of the mulberry bark and/or guava leaves in the inhibitor of lymphatic endothelial mesenchymal transition or the inhibitor of lymphatic vessel senescence of the present invention or composition depends on their type, purpose, form, method of use, etc. It can be decided as appropriate. For example, in the case of transdermal administration, it is about 0.0001% by mass to about 10% by mass, about 0.001% by mass to about 1% by mass, about 0.01% by mass in terms of dry mass relative to the total mass of the external preparation. It may be arbitrarily adjusted so as to be approximately from 0.1% by mass to approximately 0.1% by mass. In any case, it is preferable to include the active ingredient of the present invention in an amount such that the effect of suppressing endothelial-mesenchymal transition of lymphatic vessels is sufficiently exerted.
  • the composition of the present invention may be a food composition, a cosmetic composition, or a pharmaceutical composition.
  • the food composition may be in the form of powder, beverage, or tablet, and may be in various forms such as powder, liquid, solid, granule, granule, paste and gel.
  • the cosmetic composition may be emulsion, cream, beauty essence, lotion, pack, face wash, soap, body soap, shampoo, etc., liquid, emulsion, cream, solid, sheet, spray, It may be in various forms such as gel, foam and powder.
  • the pharmaceutical composition may be tablets, capsules, powders, granules, ointments, creams, patches and the like.
  • the components used in quasi-drugs, cosmetics, pharmaceuticals, etc. can be appropriately blended as necessary.
  • Known materials such as the above can be appropriately selected and used.
  • the present invention also relates to a mulberry bark and/or guava leaf for suppressing senescence of lymphatic vessels through suppressing endothelial mesenchymal migration of lymphatic vessels; endothelial mesenchymal migration inhibitor or lymphatic vessel aging inhibitor Use of mulberry bark and/or guava leaf in the manufacture of the same; and an agent for inhibiting endothelial mesenchymal transition or lymphatic senescence using the mulberry bark and/or guava leaf as an active ingredient, or a composition containing the same.
  • a method of manufacturing is also provided.
  • the mulberry bark and/or guava used in the present production method may be in any form such as dry form, powder form, and extract form as described above.
  • Experiment 1 In vivo changes due to aging of cutaneous lymphatic endothelial cells
  • LYVE1 was used as an endothelial cell marker and SM22 ⁇ was used as a mesenchymal cell marker.
  • Fluorescent immunohistochemical staining with anti-LYVE-1 (Reliatech), anti-SM22alpha antibody (Abcam), and corresponding fluorescent-labeled secondary antibody was used to prepare endothelial cell samples in the skin lymph vessels of each group, and The expression of LYVE1 and SM22 ⁇ in endothelial cells was visualized by a focused laser microscope (Carl Zeiss). In addition, the ratio of the expression level of LYVE1 and SM22 ⁇ (EndMT ratio) was calculated according to the following formula 2. Student's t-test was used for the statistically significant difference test.
  • FIG. 1 The results are shown in Figure 1.
  • the following figure is a graph showing the results of Experiment 1, the ratio of the expression level of LYVE1 and SM22 ⁇ (End MT ratio) for each group.
  • This figure shows that the EndMT ratio in the elderly group increased with a significant difference compared to the young group (p ⁇ 0.05), that is, the SM22 ⁇ expression level for LYVE1 increased in older people.
  • LYVE1 expression was found to be high in the young group, but LYVE1 expression (red) was reduced and SM22 ⁇ expression (green) was found to be higher in the elderly group ( 1). From these results, it was confirmed that the endothelial cells in the lymphatic vessels of the skin are transdifferentiated into mesenchymal cells in older people.
  • HDLEC human dermal lymphatic endothelial cells
  • EGM TM -2MV Microvascular Endothelial Cell Growth Medium-2 BulletKit TM (Lonza Co., C-3202) for these HDLEC cells
  • SingleQuots TM supplements (CC-4147) was added to Basal Medium (CC-3156) attached to the kit.
  • the added medium (hereinafter abbreviated as EBM2(+) medium) was added and cultured.
  • EBM2(+) medium) was added and cultured.
  • the cell state was confirmed by using Prox1 and VEGFR3 as markers for endothelial cells, and the passage was repeated.
  • the expression levels of Prox1 and VEGFR3 were measured by quantitative RT-PCR described in detail below using TaqMan Gene Expression Assays from applied biosystems.
  • RNA recovery and RNA preparation After washing the wells with PBS, RLT Buffer of QIAGEN RNeasy Mini Kit was added, the cells were scraped using a cell scraper, and transferred to a 1.5 ml Eppendorf tube. RNA was extracted according to the QIAGEN RNeasy Mini Kit protocol. Elution was performed with 30 ⁇ l of RNase free water. The RNA concentration was measured with a Nano Drop 2000 ultratrace spectrophotometer, and a part was diluted to a concentration of 50 nM.
  • RNA expression was measured by real-time PCR by probe detection.
  • TaqMan RNA-to-C 1Step Kit Applied Biosystems was used, and Prox1 and VEGFR3 were used as probes.
  • Light Cycler 480II was used as a measuring instrument. The PCR program and composition are shown in the table below.
  • Fig. 2 is a graph showing the expression levels of Prox1 (upper diagram) and VEGFR3 (lower diagram) for each culture generation, which are the results of Experiment 2. As the number of passages increased, the expression level of these endothelial cell markers decreased. Therefore, it was confirmed that the number of lymphatic endothelial cells in the skin could not be differentiated into normal lymphatic endothelial cells or could not maintain their properties as lymphatic endothelial cells due to aging, and the number thereof decreased. ..
  • Experiments 1 and 2 suggest that the migration of cutaneous lymphatic vessels into the endothelium-mesenchyma is associated with aging, and that if the endothelial-mesenchymal transition can be suppressed, lymphatic vessel aging can be suppressed. Therefore, we searched for substances that suppress endothelial-mesenchymal transition.
  • Experiment 3 Preparation of sample "Sohakuhi", which is the root bark of mulberry (Morus alba Linne), was extracted with 70% by volume of ethanol, and the obtained extract was further extracted with ethyl acetate, and then ethyl acetate was distilled off.
  • a mulberry bark extract was prepared by dissolving the residue with 70% by volume of ethanol.
  • a guava leaf extract was prepared by extracting leaves of "Banjiro", which is a leaf of guava (Psidium guajava), with 70% by volume of ethanol, and purifying the obtained extract with 70% by volume of ethanol.
  • a total of 34 types of samples were prepared using 32 types of plants such as Aloe vera juice.
  • Experiment 4 Effect of TGF- ⁇ signal on expression of endothelial cell marker and mesenchymal cell marker in human dermal lymphatic endothelial cells (HDLEC) 4-1: Culture of human dermal lymphatic endothelial cells and addition of sample to HDLC cells HDLEC cells (Lonza, cc-2810) were used to inoculate a collagen-coated 6-well plate at 8 ⁇ 10 4 cells/well and cultured at 37° C. in the same EBM2(+) medium as in Experiment 2.
  • TGF- ⁇ receptor kinase inhibitor SB431542 (Wako, 198-16543) (hereinafter abbreviated as SB) was added to TGF- ⁇ 2 (hereinafter abbreviated as TGF- ⁇ ) so that the final concentration was 5 ⁇ M.
  • SB TGF- ⁇ receptor kinase inhibitor
  • Results The results of measuring the expression levels of LYVE1 and SM22 ⁇ by the above-mentioned quantitative RT-PCR are shown in FIG.
  • the expression of LYVE1 was significantly decreased when TGF- ⁇ was added, and was significantly increased when TGF- ⁇ inhibitor was added.
  • the expression of SM22 ⁇ was significantly increased when TGF- ⁇ was added, and was significantly decreased when the TGF- ⁇ inhibitor was added.
  • Experiment 5 Inhibitory effect of TGF- ⁇ by various samples As a pre-screening before using in the endothelial mesenchymal transition evaluation system of Experiment 4, the inhibitory effect of TGF- ⁇ of various samples prepared in Experiment 3 was measured by HEK-Blue TGF. It was examined by measuring the absorbance (640 nm) using - ⁇ cells (InvivoGen). Specifically, among the 34 types of samples prepared in Experiment 3, samples Nos. 1 to 18 were used and added together with TGF- ⁇ . As controls, PBS only, TGF- ⁇ only, and TGF- ⁇ +SB were used. HEK-Blue TGF- ⁇ cells were seeded on a 24-well plate at 12 ⁇ 10 4 cells/well.
  • sample number 15 shows a mulberry bark extract (final concentration 0.01% by mass)
  • sample number 13 shows a guava leaf extract (final concentration 0.1% by mass). Except for cont containing no TGF- ⁇ , the lower the absorbance, the higher the inhibitory effect of TGF- ⁇ . From FIG. 4, it can be seen that the inhibitory effect of TGF- ⁇ was observed for the mulberry bark extract (15) and guava leaf extract (13).
  • Experiment 6 Analysis of expression level of endothelial cell markers by addition of mulberry bark extract Using the mulberry bark extract pre-screened in Experiment 5, the endothelial cell mesenchymal transition evaluation system of Experiment 4 was used to detect the endothelial cell markers LYVE1 and Prox1. The expression level was analyzed. Specifically, as in Experiment 4, HDLC cells were seeded on a collagen-coated 6-well plate at 8 ⁇ 10 4 cells/well, and cultured at 37° C. in the same EBM2(+) medium as Experiment 2. The next day, cell adhesion was confirmed, and the test sections as shown in the table below were set and each sample was added.
  • Experiment 7 Analysis of expression level of mesenchymal cell marker by addition of mulberry bark extract The same sample/method as in Experiment 6 was performed except that the expression level of mesenchymal cell marker SM22 ⁇ was measured instead of the endothelial cell marker. ..
  • Experiment 8 Morphological change of HDLEC by addition of mulberry skin and TGF- ⁇ HDLEC cells similar to those in Experiment 4 were seeded at 8 ⁇ 10 4 cells/well on collagen-coated 6-well plate and experimented at 37°C 2 The cells were cultured in the same EBM2(+) medium as the above. The next day, cell adhesion was confirmed, and the test sections as shown in the table below were set and each sample was added. In other words, SB was adjusted to a final concentration of 5 ⁇ M, 0.1% BSA/4 mM HCl was added to 1 ⁇ l as a control, TGF- ⁇ was adjusted to a final concentration of 1 ng/mL, and mulberry bark extracted in Experiment 3 was extracted. After adding 2 ⁇ l of each product (so that the final concentration was 0.1% by mass) and culturing for 72 hours, the cell morphology was observed using a fluorescence microscope BZ-X710 (Keyence).
  • Fig. 7 shows the result. From FIG. 7, it can be seen that when TGF- ⁇ was added, the number of cells was remarkably reduced and the morphology was also changed. Therefore, it is suggested that TGF- ⁇ affects endothelial cells of cutaneous lymphatic vessels and impairs their function as lymphatic vessels. However, even when TGF- ⁇ was added, it was found that the addition of SB and mulberry bark extract also suppressed the decrease in cell number and morphological changes.
  • Experiment 9 Human Lymphatic Endothelial Cell (HDLEC) Permeability (Leakage) Assay Fibronectin (Corning) diluted to 5 ⁇ g/ml with PBS was added to HTS transwell-24well 0.4um (corning) inserts in 100 ⁇ l increments. After incubating at 37 degrees for 15 minutes, it was aspirated (fibronectin coating). Similar to Experiment 2, HDLEC cultured in EBM2(+) medium was inoculated into fibronectin coated insert at 4 ⁇ 10 4 cells/well and cultured at 37° C.
  • HDLEC Human Lymphatic Endothelial Cell
  • the cells were divided into 4 groups (control, TGF- ⁇ , TGF- ⁇ +SB, TGF- ⁇ +Mulberry bark extract (15)).
  • the SB addition group had SB final concentration of 1 ⁇ M in EBM2(+) medium, or the mulberry bark extract added group had EBM2(+) medium with mulberry bark extract final concentration.
  • the medium was prepared by adding 0.1% to the medium, and in the other groups, the medium was replaced with EBM2(+) medium without addition, and the medium was cultured at 37°C.
  • EBM2(+) medium After 3 hours, the medium was replaced with non-supplemented EBM2(+) medium for all wells and cultured at 37°C. 24 hours later, TGF- ⁇ was added to an EBM2(+) medium prepared by adding TGF- ⁇ to a final concentration of 1 ng/ml, and other groups were added with no added EBM2(+). The medium was replaced with another medium and the cells were cultured at 37°C. After 24 hours, 50 ⁇ l of FITC-Dextran adjusted to 10 mg/ml was added and incubated at 37°C for 15 minutes, and then FITC-Dextran leaked from the insert was measured by a plate reader.
  • Experiment 10 Analysis of expression level of mesenchymal cell markers by addition of guava leaf extract 10-1: Culture of lymphatic endothelial cells Using guava leaf extract prescreened in Experiment 5, endothelium-mesenchymal transition in Experiment 4 The expression level of the mesenchymal cell marker SM22 ⁇ was analyzed by the evaluation system. Specifically, human skin microlymphatic endothelial cells (HDLEC) obtained from LONZA were added to the same EBM2(+) as in Experiment 2 and seeded in a 6-well plate at 6 ⁇ 10 4 cells/well, and overnight at 37°C. Cultured. The next day, cell adhesion was confirmed, SB was stimulated at 5 ⁇ M, and TGF- ⁇ was stimulated at 1 ng/mL, and then cultured for 72 hours.
  • HDLEC human skin microlymphatic endothelial cells
  • the present invention can suppress endothelial mesenchymal transition by administering an endothelial mesenchymal transition inhibitor containing mulberry bark and/or guava leaf as an active ingredient. Aging of the lymphatic vessels can be suppressed by suppressing the migration of the lymphatic vessels to the mesenchyme. Further, the endothelial mesenchymal transition inhibitor of the present invention is expected to inhibit endothelial mesenchymal transition of not only lymph vessels but also blood vessels and prevent aging of blood vessels.

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Abstract

内皮間葉移行抑制剤およびリンパ管の内皮間葉移行を抑制することによりリンパ管の老化を抑制するリンパ管老化抑制剤を提供する。　桑白皮及び／又はグアバ葉を有効成分として含有する内皮間葉移行抑制剤を提供する。本発明の内皮間葉移行抑制剤の投与により，リンパ管の内皮間葉移行を抑制することができる。リンパ管の内皮間葉移行の抑制により，リンパ管の老化を抑制することができる。

Description

老化抑制剤
　本発明は老化抑制剤，特に，桑白皮及び／又はグアバ葉を有効成分として含有する内皮間葉移行抑制剤，並びにリンパ管の内皮間葉移行を抑制することによりリンパ管の老化を抑制するリンパ管老化抑制剤に関する。
　リンパ管は，細胞のすき間から炎症性細胞・タンパク質・水分といった老廃物を回収するという排水管としての役割を担う。一方，老化によりリンパ管の機能が損なわれると，老廃物の排出が滞り，むくみといった各種問題が生じることが知られている。よって，リンパ管の老化を予防／改善する物質が望まれる。
　近年，眼球では，リンパ管様のシュレム管の内皮細胞が間葉系細胞に分化転換し，房水排出機能が損なわれる結果，老化に伴う緑内障を引き起こすことが報告された（非特許文献１）。また，血管内皮細胞の内皮間葉移行が腫瘍の進展に関与すること等も報告されている。
　しかしながら，皮膚等の器官におけるリンパ管の老化に内皮細胞の内皮間葉移行が関与するか否かは不明である。また，リンパ管の間葉系細胞への分化転換を抑制する物質について探索する必要もある。
特開２０１４－２１８４７９号公報 特開２００７－２２９５７号公報 国際公開第２００７／００７７３２号
The Journal of Clinical Investigation, 2017;127(10):3877-3896
　本発明の課題は，リンパ管の内皮間葉移行抑制剤およびリンパ管の内皮間葉移行を抑制することによりリンパ管の老化を抑制するリンパ管老化抑制剤の提供にある。
　本発明者らは，皮膚などの器官においてリンパ管内皮細胞の間葉系細胞への分化転換がリンパ管の老化に関与することを確認した。よって，リンパ管の内皮細胞の間葉系細胞への分化転換を抑制できれば，体の各器官のリンパ管の老化が抑制され，ひいては，当該器官の老化抑制に寄与することが期待される。そこで，本発明者らは様々な成分についてリンパ管の内皮間葉移行抑制剤としての効果について鋭意研究の結果，桑白皮及びグアバ葉が特に高い効果を有することを見出し，以下の発明を完成するに至った：
　（1）桑白皮及び／又はグアバ葉を有効成分として含有するリンパ管の内皮間葉移行抑制剤。
　（2）TGF-β（transforming growth factor-β）を阻害することによりリンパ管の内皮間葉移行を抑制する（1）に記載の内皮間葉移行抑制剤。
　（3）桑白皮及び／又はグアバ葉を有効成分として含有し，リンパ管の内皮間葉移行を抑制することによりリンパ管の老化を抑制するリンパ管老化抑制剤。
　（4）TGF-βを阻害することによりリンパ管の内皮間葉移行を抑制する（3）に記載のリンパ管老化抑制剤。
　（5）グアバ葉を有効成分として含有するTGF-β阻害剤。
　（6）（1）又は（2）に記載の内皮間葉移行抑制剤，（3）又は（4）に記載のリンパ管老化抑制剤，及び／又は（5）に記載のTGF-β阻害剤を含む組成物。
　（7）（6）に記載の組成物を対象に投与することを含む，対象のリンパ管老化を予防するための美容方法。
　（8）（6）に記載の組成物を対象に提案することを含む，対象の美容行為を支援する美容カウンセリング方法。
　本発明によれば，桑白皮及び／又はグアバ葉を有効成分として含有する内皮間葉移行抑制剤を提供することができる。本発明の内皮間葉移行抑制剤の投与により，内皮間葉移行を抑制することができる。リンパ管の内皮間葉移行を抑制することによりリンパ管の老化を抑制することもできる。
図１は，若年群と高齢群のLYVE1およびSM22αの発現を示す。上図は，若年群と高齢群の皮膚リンパ管の内皮細胞におけるLYVE1およびSM22αの発現を示す代表的な図である。下図は，若年群と高齢群におけるLYVE1とSM22αの発現量の比率（EndMT ratio）を示すグラフである(n=8)（ステューデントのt検定，*p＜0.05）。 図２は，ヒト皮膚由来リンパ管内皮細胞（HDLEC）におけるProx1（上図）とVEGFR3（下図）の発現量を培養世代ごとに示したグラフである。縦軸は，第五継代細胞（kk2 p5）における発現量を100とし，その後の各培養世代における発現量の割合を示す(%)。横軸は，第五継代細胞からの培養世代を示す。 図３は，HDLECにおけるLYVE1とSM22αの発現量を示す。各グラフにおいて，それぞれ，左からSB431542（SB），対照として0.1%BSA/4mM HCl（Ctrl），TGF-β（TGF-β）を添加した結果を示す（T検定，***p＜0.001）。 図４は，各種試料によるTGF-βの阻害効果を示す。PBSのみ（cont），TGF-βのみ（TGFb），TGF-β＋SB431542（TGFb＋SB），TGF-β＋各種試料(1～18）を添加した結果を示す。13はグアバ葉抽出物，15は桑白皮抽出物を示す。 図５は，HDLECにおけるLYVE1およびProx1の発現量をRT-PCRにより測定した結果を示す。左図はLYVE1の発現量を示し，右図はProx1の発現量を示す。各図において，それぞれ，左から順にPBSのみ，TGF-βのみ，SB431542のみ，SB431542＋TGF-β，桑白皮抽出物のみ，TGF-β＋桑白皮抽出物を添加した場合を示す。 図６は，HDLECにおけるSM22αの発現量をRT-PCRにより測定した結果を示す。左から順にPBSのみ，TGF-βのみ，SB431542のみ，SB431542＋TGF-β，桑白皮抽出物のみ，TGF-β＋桑白皮抽出物を添加した場合を示す。 図７は，桑白皮およびTGF-βの添加によるHDLECの形態の変化を示す。上図の左から順にSBのみ（SB），BSA/4mM HClのみ（mock），TGF-β（TGF-β），下図の左から順にSB431542＋TGF-β（SB＋TGF-β），桑白皮抽出物のみ（抽出液），桑白皮抽出物＋TGF-β（抽出液＋TGF-β）を添加した場合を示す。 図８は，HDLECの透過性を測定したアッセイの結果を示す。左から，添加物無（con），並びにTGF-βのみ（TGF-β2），TGF-β＋SB431542（TGF-β2＋SB），TGF-β＋桑白皮抽出物（TGF-β2＋15）を添加した結果を示す（ダネットの多重検定定，*p＜0.01）。縦軸は，各群のinsertから漏出したFITC-Dextranの吸光度を，無添加の場合を1とした相対値で示す。 図９は，SM22αの発現量をRT-PCRにより測定した結果を示す。左から，PBSのみ（control），TGF-βのみ（TGF-β），TGF-β＋SB431542（TGF-β＋SB），TGF-β＋グアバ葉抽出物（TGF-β＋グアバ葉）を添加した結果を，controlを添加した場合を100とした相対値で示す（ダネットの多重検定， **p＜0.001）。
　本発明の内皮間葉移行抑制剤の投与により，リンパ管の内皮間葉移行を抑制することができる。リンパ管の内皮間葉移行を抑制することにより，リンパ管の老化を抑制することができる。本発明の内皮間葉移行抑制剤および老化抑制剤は，老廃物の排出，むくみの予防又は改善，代謝の促進，並びにリンパ管機能障害の予防又は治療に有用である。例えば，皮膚リンパ管の機能が良好に保たれることにより，老廃物の除去，リンパ液の循環等が正常に行われる結果，しみ，しわ，たるみといった皮膚老化の予防が期待される。
　リンパ管の内皮間葉移行とは，リンパ管の内皮細胞が間葉系細胞に分化転換（以下，endothelial-mesenchymal transition：以下EndMTと略記する場合がある）することを言う。リンパ管の内皮間葉移行は，リンパ管内皮細胞における内皮細胞マーカーの発現量の減少，間葉系細胞マーカーの発現量の増加，並びに，内皮細胞マーカーに対する間葉系細胞マーカーの発現量の比率（EndMT ratio：下記式１の方法で算出）の増加等で測定可能である。内皮細胞マーカーとしてはLYVE1，Prox1，VEGFR3；間葉系細胞マーカーとしてはSM22α等が挙げられるがこれらに限定されず，任意の内皮細胞マーカーや間葉系細胞マーカーが使用でき，それらの比率であるEndMT ratioも上記マーカーに応じて任意である。また，内皮細胞が間葉系細胞へ分化転換すると，例えば線維化等といった形態の変化が見られるため（図７），細胞を形態的に観察することによって測定することも可能である。更に，内皮細胞が間葉系細胞へ分化転換すると，リンパ管内皮細胞の数が減少する，あるいはリンパ管内皮細胞としての性質を維持できないといった理由により，リンパ管の機能が損なわれリンパ管内を流れる液体が漏出してしまう。このようなリンパ管の機能の悪化は，例えば，実施例で示すような透過性アッセイによりリンパ管内皮細胞が形成されたインサートの透過性を測定することにより確認できる。つまり，リンパ管の内皮間葉移行は，透過性アッセイによる透過性の亢進により確認することが可能である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000001
　リンパ管の内皮間葉移行抑制とは，リンパ管の内皮細胞が間葉系細胞に分化転換することを抑制することを言う。
　リンパ管の内皮間葉移行抑制は，例えば，リンパ管内皮細胞における間葉系細胞マーカーの発現量やEndMT ratioの増加，内皮細胞マーカーの発現量の減少を，リンパ管の内皮間葉移行抑制剤を添加すると，添加しない場合と比べて抑制することを意味する場合がある。抑制は，例えば，有意水準を5％とした統計学的有意差（例えばスチューデントのt検定）を有する減少であってもよく，及び／又は，例えば10％以上，20％以上，30％以上，40％以上，50％以上，60％以上，70％以上，80％以上，90％以上，100％の抑制であってもよい。
　ここで，TGF-βは，内皮間葉移行を誘導する作用があることが報告されている。よって，各種薬剤のリンパ管の内皮間葉移行抑制効果を測定する際に，例えば，リンパ管の内皮間葉移行をTGF-β等の内皮間葉移行を促進する物質の添加によって促進してもよい。例えば，上記間葉系細胞マーカーの発現量やEndMT ratioの増加，内皮細胞マーカーの発現量の減少を，TGF-βにより促進してもよい。
　TGF-βは，線維芽細胞の形質転換を促進する因子として同定されたホモ二量体（分子量約25kDa）の多機能性サイトカインであり，ヒトなどの哺乳動物では，類似する構造を有する3種類のサブタイプ(TGF-β1～3)が存在する。TGF-βは，細胞膜上の受容体に結合することによって細胞増殖，分化，発生の制御といった多様な作用を発揮する。また，TGF-βは，上皮細胞，血管内皮細胞，リンパ球等の各種細胞に対する増殖を抑制することも知られており，癌や腎線維化など様々な病態に関係していると考えられている。
　本発明者らは，加齢によりリンパ管内皮細胞における内皮細胞マーカーの発現量が減少すること，間葉系細胞マーカーの発現量やEndMT ratioが上昇すること，リンパ管内皮細胞の数が減少すること，内皮細胞の形態が変化すること等を確認した。したがって，リンパ管の老化とは，加齢により，リンパ管内皮細胞におけるLYVE1，Prox1，VEGFR3といった内皮細胞マーカーの発現量が減少すること，及び／又はSM22αなどの間葉系細胞マーカーの発現量やEndMT ratioが上昇することを指してもよく，リンパ管内皮細胞が減少あるいは硬化することを指してもよく，リンパ管の内皮細胞の形態の変化（例えば線維芽細胞様への変化）を指してもよく，リンパ管の内皮細胞が減少及び／又は硬化することによりリンパ管の機能が損なわれることを指してもよい。なお，内皮細胞マーカー，間葉系細胞マーカー，EndMT ratioは上述と同様に限定されない。
　リンパ管老化抑制は，上述のようなリンパ管の老化を抑制することを指し，リンパ管の内皮間葉移行の抑制を介するものであってもよい。
　リンパ管の老化抑制とは，例えば，老化に伴うリンパ管内皮細胞における間葉系細胞マーカーの発現量やEndMT ratioの増加，内皮細胞マーカーの発現量の減少を，リンパ管の老化抑制剤を添加すると，添加しない場合と比べて抑制することを意味する場合もある。抑制は，例えば，有意水準を5％とした統計学的有意差（例えばスチューデントのt検定）を有する上記マーカー発現量の低減であってもよく，及び／又は，例えば10％以上，20％以上，30％以上，40％以上，50％以上，60％以上，70％以上，80％以上，90％以上，100％の抑制であってもよい。
　ここで，各種薬剤のリンパ管の老化抑制効果を測定する際に，例えば，TGF-β等の添加によってリンパ管の内皮間葉移行を促進させて老化を促進してもよい。例えば，上記老化による間葉系細胞マーカーの発現量やEndMT ratioの増加，内皮細胞マーカーの発現量の減少を，TGF-βの使用により促進してもよい。
　桑白皮は，マグワ（Morus alba Linne）といったクワ科クワ属に属する植物の根皮を指す。桑白皮は，昔から漢方薬として用いられており，利尿，鎮痛，抗炎症，鎮咳作用などがあることが報告されている（特許文献１，２）。また，桑白皮にTGF-β阻害効果があり，育毛などに効果があることが報告された（特許文献２）。グアバ葉は，グアバ（Psidium guajava）といったフトモモ科バンジロウ属に属する植物の葉を指す。グアバ葉は，糖尿病，高血圧，肥満，下痢等効果があることが報告されている（特許文献３）。しかしながら，桑白皮やグアバ葉に皮膚などの器官におけるリンパ管の内皮間葉移行抑制作用やリンパ管老化抑制作用があることは知られていない。
　本発明のリンパ管の内皮間葉移行抑制剤又はリンパ管老化抑制剤は，有効成分として桑白皮及び／又はグアバ葉を，乾燥重量として，例えば，10質量％以上，20質量％以上，30質量％以上，40質量％以上，50質量％以上，60質量％以上，70質量％以上，80質量％以上，90質量％以上，95質量％以上，又は99質量％以上含有することがある。一実施形態では，本発明のリンパ管の内皮間葉移行抑制剤又はリンパ管老化抑制剤は桑白皮及び／又はグアバ葉からなることもある。
　桑白皮及び／又はグアバ葉は生のままでも乾燥したものでも使用することができるが，乾燥粉末あるいは抽出物の形態であってもよい。
　乾燥粉末を得る方法としては，桑白皮及び／又はグアバ葉を細断又は粉砕し，その後に乾燥する方法や植物を乾燥した後に細断又は粉砕して乾燥粉末を得る方法がある。また，植物を細断又は粉砕し，発酵や酵素処理を施した後，乾燥し，更に必要に応じて所定の粒径にすべく粉砕する方法等を適宜採ることができる。
　桑白皮及び／又はグアバ葉を抽出物として用いる場合，抽出方法は溶媒抽出により行うことができる。溶媒抽出の場合には，桑白皮及び／又はグアバ葉を必要に応じて乾燥させ，更に必要に応じて細断又は粉砕した後，水性抽出剤，例えば冷水，温水，又は沸点若しくはそれより低温の熱水，あるいは含水有機溶媒，有機溶媒，例えばメタノール，エタノール，1，3－ブタンジオール，エーテル，酢酸エチル等を常温で又は加熱して用いることにより抽出される。しかしながら，抽出方法は溶媒抽出に限定されず，当業界で知られている常用の手法によってもよい。上記抽出物の形態は，抽出液自体だけでなく，常用の手法により適宜希釈又は濃縮したものであってもよく，更に，抽出液を乾燥することによって得られる粉状あるいは塊状の固体であってもよい。
　本発明は，桑白皮及び／又はグアバ葉を有効成分として含有する内皮間葉移行抑制剤又はリンパ管老化抑制剤あるいはそれを含有する組成物を投与することによりリンパ管の内皮間葉移行抑制を介して，リンパ管の老化を予防するための方法も提供する。本発明の方法は，美容を目的とする方法であり，医師や医療従事者による治療ではない場合がある。一実施形態として，本発明の方法は，桑白皮及び／又はグアバ葉あるいはそれを含有する組成物を投与することにより皮膚におけるリンパ管の内皮間葉移行抑制を介して，皮膚のリンパ管の老化を予防することにより，むくみ，しみ，しわ，たるみといった皮膚のリンパ管の老化に起因する皮膚老化を予防するための美容方法であってもよい。また，本発明は桑白皮及び／又はグアバ葉あるいはそれを含有する組成物を対象に提案することを含む，対象の美容行為を支援する美容カウンセリング方法も提供する。
　本発明の内皮間葉移行抑制剤又はリンパ管老化抑制剤あるいは組成物の投与経路は任意に選択でき，例えば経口投与，経皮投与，皮下投与，経粘膜投与，筋肉内投与等が挙げられる。
　本発明のリンパ管の内皮間葉移行抑制剤又はリンパ管老化抑制剤あるいは組成物における桑白皮及び／又はグアバ葉の配合量は，それらの種類，目的，形態，利用方法などに応じて，適宜決めることができる。例えば，経皮投与の場合，外用剤の全体の質量に対して乾燥質量換算で，約０．０００１質量％～約１０質量％，約０．００１質量％～約１質量％，約０．０１質量％～約０．１質量％程度になるように任意に調整してもよい。いずれの場合でも，本発明の有効成分をリンパ管の内皮間葉移行抑制効果が十分発揮されるような量で含有させることが好ましい。
　また，本発明の組成物は食品組成物，化粧料組成物，又は医薬組成物であってもよい。食品組成物は，粉末，飲料，または錠剤であってもよく，粉末状，液状，固形状，顆粒状，粒状，ペースト状，ゲル状等の様々な形態であり得る。化粧料組成物は，乳液，クリーム，美容液，ローション，パック，洗顔料，石鹸，ボディソープ，シャンプー等であってもよく，液状，乳液状，クリーム状，固形状，シート状，スプレー状，ゲル状，泡状，パウダー状等の様々な形態であり得る。医薬組成物は，錠剤，カプセル剤，散剤，顆粒剤，軟膏剤，クリーム剤，貼付剤等であってもよい。
　また，医薬部外品，化粧品，医薬品等に用いられる成分を，必要に応じて適宜配合することができる。例えば，賦形剤，着色剤，保存剤，増粘剤，結合剤，崩壊剤，分散剤，安定化剤，ゲル化剤，酸化防止剤，界面活性剤，保存剤，pH調整剤油分，界面活性剤，粉末，色材，水，アルコール類，増粘剤，キレート剤，シリコーン類，酸化防止剤，紫外線吸収剤，保湿剤，香料，各種薬効成分，防腐剤，pH調整剤，中和剤等，公知のものを適宜選択して使用できる。
　また，本発明は，リンパ管の内皮間葉移行を抑制することを介してリンパ管の老化を抑制するための桑白皮及び／又はグアバ葉；内皮間葉移行抑制剤又はリンパ管老化抑制剤の製造における桑白皮及び／又はグアバ葉の使用；並びに、桑白皮及び／又はグアバ葉を有効成分として用いて内皮間葉移行抑制剤又はリンパ管老化抑制剤あるいはそれを含有する組成物を製造する方法も提供する。本製造方法で使用される桑白皮及び／又はグアバは，上述のように，乾燥状，粉末状，抽出物等任意の形態であり得る。
　次に実施例によって本発明をさらに詳細に説明する。なお，本発明はこれにより限定されるものではない。
　実験1：皮膚リンパ管内皮細胞の老化によるin vivoの変化
　22歳以上の健康な男女の被験者を採用し余剰皮膚を取得した。これらの被験者を，22歳以上40歳以下の若者からなる8名の若年群と，40歳超73歳以下の高齢者からなる8名の高齢群に分けた。内皮細胞マーカーとしてはLYVE1を，間葉系細胞マーカーとしてはSM22αを利用した。
　抗LYVE-1（Reliatech社）と抗SM22alpha抗体（Abcam社），並びに対応する蛍光標識2次抗体を用いた蛍光免疫組織学的染色により各群の皮膚リンパ管における内皮細胞試料を作成し，共焦点レーザー顕微鏡（カールツァイス社）により内皮細胞におけるLYVE1とSM22αの発現を可視化した。また，LYVE1とSM22αの発現量の比率（EndMT ratio）を下記式２に従って算出した。統計的有意差検定には，ステューデントのt検定を用いた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000002
　結果を図１に示す。下図は，実験1の結果である，LYVE1とSM22αの発現量の比率（EndMT ratio）を各群ごとに示したグラフである。この図より，高齢群におけるEndMT ratioは，若年群に対し有意差をもって上昇していた（p＜0.05），つまり，高齢者ほど，LYVE1に対するSM22αの発現量が増加していることがわかる。また，リンパ管を撮影した蛍光顕微鏡写真でも，若年群ではLYVE1の発現が多く見られるものの，高齢群ではLYVE1の発現（赤色）が減りSM22αの発現（緑色）が多く見られるようになった（図１の上図）。これらの結果より，高齢者ほど皮膚のリンパ管の内皮細胞が間葉系細胞へ分化転換していることが確認された。
　実験2：ヒト皮膚リンパ管内皮細胞（HDLEC）の老化によるin vitroの変化
　2－1：ヒト皮膚リンパ管内皮細胞の培養
　試料は，Kajiya et al., EMBO J. 2005 Aug 17; 24(16): 2885-2895に記載の方法に従い，包皮から単離したヒト皮膚リンパ管内皮細胞（HDLEC細胞：Human Dermal Lymphatic Endothelial Cells）を使用した。このHDLEC細胞にEGMTM-2MV Microvascular Endothelial Cell Growth Medium-2 BulletKitTM（Lonza社，C-3202）を用いて当該キットに付属のBasal Medium（CC-3156）にSingleQuotsTMsupplements(CC-4147)を添加した培地(以下EBM2（＋）培地と略記）を加えて培養した。内皮細胞マーカーとしてProx1とVEGFR3を用いることで細胞の状態を確認し，継代を繰り返した。
　Prox1とVEGFR3の発現量は，applied biosystems社のTaqMan Gene Expression Assaysを用い以下に詳述する定量的RT-PCRにより測定した。
　2－2：細胞の回収とRNAの調製
　PBSでウェルを洗浄後，QIAGEN RNeasy Mini KitのRLT Bufferを加え，cell scraperを使って細胞をかきとり，1.5ml容エッペンチューブに移し取った。QIAGEN RNeasy Mini Kitのプロトコルに従い，RNAを抽出した。RNase free water 30μlで溶出した。RNA濃度はNano Drop2000超微量分光光度計で計測し，50nMの濃度になるよう一部を希釈した。
　2－3：RT-PCRによるmRNAの定量
　プローブ検出によるリアルタイムPCRでRNAの発現を測定した。TaqMan RNA-to-C 1Step Kit Applied Biosystemsを使用し，プローブにはProx1，VEGFR3を用いた。計測機器はLight Cycler 480II（Roche）を使用した。PCRのプログラムと組成は下表の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　図２は，実験2の結果である，Prox1（上図）とVEGFR3（下図）の発現量を培養世代ごとに示したグラフである。継代の回数が増すほど，これらの内皮細胞マーカーの発現量が減少していた。したがって，皮膚のリンパ管の内皮細胞は，老化に伴い正常なリンパ管内皮細胞に分化できず，もしくはリンパ管内皮細胞としての性質を維持できずにその数が減少してしまうことが確認された。
　実験1，2により，皮膚リンパ管の内皮間葉移行は老化と関連があり，内皮間葉移行を抑制できれば，リンパ管の老化を抑制できることが示唆される。そこで，内皮間葉移行を抑制する物質を探索した。
　実験3：試料の調製
　マグワ（Morus alba Linne）の根皮である「ソウハクヒ」を70容量％エタノールで抽出し，得られた抽出液を酢酸エチルで更に抽出したのち，酢酸エチルを留去し，残分を70容量％エタノールで溶解することにより桑白皮抽出物を調製した。
　グアバ（Psidium guajava）の葉である「バンジロウ」の葉を70容量％エタノールで抽出し，得られた抽出液を70容量％エタノールにより精製することによりグアバ葉抽出物を調製した。
　また，上記試料の他，例えばアロエベラ液汁といった32種の植物を使用し，計34種類の試料を調製した。
　実験4：ヒト皮膚リンパ管内皮細胞（HDLEC）における内皮細胞マーカーおよび間葉系細胞マーカーの発現に対するTGF-βシグナルの効果
　4－1：ヒト皮膚リンパ管内皮細胞の培養およびHDLEC細胞への試料添加
　HDLEC細胞（Lonza社，cc-2810）を用い，コラーゲンコートされた6-wellプレートに8×104 cells/wellで播種し37℃で実験2と同じEBM2（＋）培地により培養を行った。翌日，TGF-β受容体キナーゼ阻害剤であるSB431542（Wako社，198-16543）（以下，SBと略記）を最終濃度が5μMとなるように，TGF-β２（以下，TGF-βと略記）を最終濃度が1 ng/mlとなるように，そして対照として4 mM HClに溶解した0.1%BSA（Ctrl）を1 μlそれぞれ添加して更に72時間培養した。
　4－2：細胞の回収とRNAの調製
　PBSでウェルを洗浄後，NucleoSpin RNAを用いてRNAを調製し，PrimeScript II（TaKaRaBio）によりrandom hexamer primerを用いてcDNA合成を行った。
　4－3：RT-PCRによるmRNAの定量
　実験4-2で合成したcDNAをテンプレートとして，下表に示すPCRプライマーとFastStart Universal SYBR Green Master（ROX）(Roche)を用いて定量的RT-PCRを行った。β-actinを内因性コントロールとして用いた。PCRのプログラムと組成は下表の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　4-4：結果
　上述の定量的RT-PCRによりLYVE1とSM22αの発現量を測定した結果を図３に示す。LYVE1の発現は，TGF-βを添加すると対照よりも有意に減少し，TGF-βの阻害剤を添加すると対照よりも有意に増加した。また，SM22αの発現は，TGF-βを添加すると対照よりも有意に増加し，TGF-βの阻害剤を添加すると対照よりも有意に減少した。
　実験4の結果より，皮膚リンパ管の内皮間葉移行はTGF-βシグナルにより促進されることがわかり，従って，皮膚リンパ管の老化もTGF-βシグナルにより促進されることが示唆される。よって，TGF-βシグナルによる内皮間葉移行を抑制できれば，リンパ管の老化を抑制できることが示唆される。また，HDLECにおける内皮細胞マーカーおよび間葉系細胞マーカーの発現を利用した内皮間葉移行評価系を用いることによりリンパ管の内皮間葉移行抑制剤および老化抑制剤の探索が可能であり，このような評価系にTGF-βシグナルを利用できることがわかる。
　実験5：各種試料によるTGF-βの阻害効果
　実験4の内皮間葉移行評価系に使用する前のプレスクリーニングとして，実験3にて調製した各種試料のTGF-βの阻害効果をHEK－Blue TGF-β細胞（InvivoGen社）を用いて吸光度（640nm）を測定することにより調べた。具体的には，実験3で調製した34種の試料のうちの試料番号1～18の試料を用いてTGF-βと共に添加した。対照として，PBSのみ，TGF-βのみ，TGF-β＋SBを使用した。24wellプレートにHEK-Blue TGF-β細胞を12×104cells/wellで播種した。翌日に下表のようにそれぞれ刺激を行った。SBの添加がある場合は，SBを添加してから2時間後にTGF-β及び各リガンドで刺激した。刺激から24時間後に上清2.5μLを取り基質であるQUANTI-Blue 100μLと混合し37℃で30分間保温し，640nmにおける吸光度を測定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　上記試料番号1～18とTGF-βを添加した結果（1～18），並びにPBSのみ（cont），TGF-βのみ（TGFb），TGF-β＋SB（TGFb＋SB）を添加した結果を図４に示す。図中，試料番号15は桑白皮抽出物（最終濃度0.01質量％），試料番号13はグアバ葉抽出物（最終濃度0.1質量％）を示す。TGF-βが入っていないcont以外では，吸光度が低いほどTGF-βの阻害効果が高いことを示す。
　図４より，桑白皮抽出物（15）およびグアバ葉抽出物（13）についてTGF-βの阻害効果が見られたことがわかる。
　実験6：桑白皮抽出物添加による内皮細胞マーカーの発現量の解析
　実験5でプレスクリーニングされた桑白皮抽出物を用いて実験4の内皮間葉移行評価系により内皮細胞マーカーLYVE1およびProx1の発現量を解析した。具体的には，実験4と同様にHDLEC細胞をコラーゲンコートされた6-wellプレートに8×104 cells/wellで播種し37℃で実験2と同じEBM2（＋）培地で培養した。翌日，細胞の接着を確認し，下表のような試験区を設定し各試料を添加した。つまり，対照としてPBSを2 μl，TGF-βを最終濃度が1ng／mLとなるように，SBを最終濃度が5μMとなるように，そして実験3で調製した桑白皮抽出物を（最終濃度が0.1質量％となるように）2 μlをそれぞれ添加して72時間培養した後に実験4と同様の定量的RT-PCRを行った。内皮細胞マーカーLYVE1に加えProx1のPCRプライマーを用い，内因性コントロールとしてβ－アクチンプローブを用いた。LYVE1とβ－アクチンのPCRプライマーは実験4と同じである。Prox1のPCRプライマーを下記に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　結果を図５に示す。TGF-βのみを添加した場合LYVE1およびProx1の発現は減少したが，SBを添加したところ，その発現は上昇した。さらに，桑白皮抽出物を添加するとTGF-βによるLYVE1およびProx1の発現の減少は抑制されており，その上，何も添加しない場合よりもかなり上昇していた。したがって，桑白皮には，TGF-βにより促進させた内皮間葉移行を抑制する効果のみならずリンパ管内皮細胞への分化を促進させる効果もあることが示唆される。
　実験7：桑白皮抽出物添加による間葉系細胞マーカーの発現量の解析
　内皮細胞マーカーの代わりに間葉系細胞マーカーSM22αの発現量を測定した以外は実験6と同じ試料／方法を行った。
　結果を図６に示す。間葉系細胞マーカーSM22αのTGF-βによる発現の上昇は，桑白皮抽出液によって阻害されていた。その阻害効果はSBによるものより強いものであった。
　実験8：桑白皮およびTGF-βの添加によるHDLECの形態の変化
　実験4と同様のHDLEC細胞をコラーゲンコートされた6-wellプレートに8×104 cells/wellで播種し37℃で実験2と同じEBM2（＋）培地で培養した。翌日細胞の接着を確認し，下表のような試験区を設定し各試料を添加した。つまり，SBを最終濃度が5μMとなるように，対照として0.1%BSA/4mM HClを1 μl，TGF-βを最終濃度が1ng／mLとなるように，そして実験3で調製した桑白皮抽出物を（最終濃度が0.1質量％となるように）2 μlをそれぞれ添加し72時間培養した後に蛍光顕微鏡BZ-X710（Keyence社）を用いて細胞の形態を観察した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　図７に結果を示す。図７より，TGF-βを添加した場合，細胞の数が著しく減少しその形態も変化していることが分かる。よって，TGF-βにより皮膚リンパ管内皮細胞が影響を受け，リンパ管としての機能も損なわれることが示唆される。しかしながら，TGF-βを添加した場合であっても，SBや桑白皮抽出物も同時に添加すると細胞数の減少や形態の変化が抑制されているのがわかる。
　実験9：ヒトリンパ管内皮細胞（HDLEC）の透過性（漏出性）アッセイ
　PBSで5 μg/mlに希釈したFibronectin（Corning社）をHTS transwell-24well 0.4um（corning社）のinsertに100μlずつ添加し，37度で15分間インキュベートした後アスピレートした（fibronectin coating）。実験2と同様にEBM2（＋）培地で培養したHDLECをfibronectin coat済insertに4x104cells/wellで播種し，37度で培養した。
　24時間後，細胞を4群（対照（control），TGF-β，TGF-β+SB，TGF-β+桑白皮抽出物（15））に分けた。SBを添加する群にはEBM2（＋）培地にSBを最終濃度が1μMとなるように，あるいは桑白皮抽出物を添加する群はEBM2（＋）培地に桑白皮抽出物を最終濃度が0.1%となるように添加して調製した培地，それ以外の群は無添加のEBM2（＋）培地に培地を交換し，37度で培養した。
　3時間後，すべてのwellについて無添加EBM2（＋）培地に培地を交換し，37度で培養した。その24時間後，TGF-βを添加する群にはTGF-βを最終濃度が1ng/mlになるよう添加して調製したEBM2（＋）培地に，それ以外の群は無添加EBM2（＋）培地に培地を交換し，37度で培養した。24時間後，10mg/mlに調整したFITC-Dextranを50μl添加し，37度で15分間インキュベートした後，insertから漏出したFITC-Dextranをプレートリーダーで測定した。
　結果を図８に，各群のinsertから漏出したFITC-Dextranの吸光度を，対照の場合を1とした相対値として示す。TGF-β2のみの添加によってHDLECの透過性が上昇した一方，TGF-β阻害剤であるSBならびに桑白皮抽出物の処理によって，透過性の上昇が抑制された。
　実験10：グアバ葉抽出物添加による間葉系細胞マーカーの発現量の解析
　10－1：リンパ管内皮細胞の培養
　実験5でプレスクリーニングされたグアバ葉抽出物を用いて実験4の内皮間葉移行評価系により間葉系細胞マーカーSM22αの発現量を解析した。具体的には，LONZA社から得たヒト皮膚微小リンパ管内皮細胞（HDLEC）を実験2と同じEBM2（＋）を加え6×104cells／wellで6ウェルプレートに播き，37℃で一晩培養した。翌日細胞の接着を確認し，SBを5 μM，TGF-βを1 ng／mLでそれぞれ刺激してから72時間培養した。
　10－2：HDLEC細胞への試料添加
　上述のように培養したHDLEC細胞をコラーゲンコートされた6ウェルデッシュに，4×105cells／wellで播種した。実験2と同じキットに付属のBasal Medium（CC-3156）にSingleQuotsTMsupplements(CC-4147)を添加した培地（EBM2（＋）培地）を加え，1ウェルにつき細胞懸濁液が2mlになるようにした。37℃で24時間培養後，当該キットのBasal Medium（CC-3156）（EBM2（－）培地）に0.5％の濃度でFBSを加えた培地に置き換えた。37℃で4時間培養後，下表のような試験区を設定し各試料を添加した。各試料はPBSで希釈して以下の表に記載の濃度になるように加えた。添加後，HDLEC細胞を37℃で20時間培養した。培養後，実験2と同様の定量的RT-PCRによりSM22αの発現量を解析した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
　10-3：結果
　結果を図９に示す。TGF-βのみを添加した場合SM22αの発現は上昇したが，SBを添加したところ，その発現は減少した。さらに，グアバ葉抽出物についてもTGF-βによるSM22αの発現が有意に減少していたことが分かった。したがって，グアバ葉抽出物にも，TGF-βにより促進させたリンパ管の内皮間葉移行を抑制する効果があった。
　実験11：他の試料の解析
　実験3にて調製した桑白皮及びグアバ葉以外の32種の試料について，試料18についてTGF-β阻害効果がみられた。しかし，実験4と同様の方法により試料18を使用してSM22αの発現を確認したところ，TGF-βのみを添加した場合より，TGF-β＋試料18のほうがSM22αの発現が高くなり，内皮間葉移行はむしろ促進されていた。さらに，試料17にもTGF-β阻害効果がみられたものの，細胞毒性が見られた（データ示さず）。
　以上の結果により，桑白皮及びグアバ葉にはTGF-β阻害効果，並びに内皮間葉移行抑制効果やリンパ管老化抑制効果があることが明らかになった。
　本発明は，桑白皮及び／又はグアバ葉を有効成分として含有する内皮間葉移行抑制剤の投与により，内皮間葉移行を抑制することができる。リンパ管の内皮間葉移行を抑制することによりリンパ管の老化を抑制することができる。また，本発明の内皮間葉移行抑制剤は，リンパ管のみならず血管の内皮間葉移行を抑制し，血管の老化を予防することも期待される。

Claims (8)

  1. 　桑白皮及び／又はグアバ葉を有効成分として含有するリンパ管の内皮間葉移行抑制剤。
  2. 　TGF-β（transforming growth factor-β）を阻害することによりリンパ管の内皮間葉移行を抑制する，請求項１に記載の内皮間葉移行抑制剤。
  3. 　桑白皮及び／又はグアバ葉を有効成分として含有し，リンパ管の内皮間葉移行を抑制することによりリンパ管の老化を抑制するリンパ管老化抑制剤。
  4. 　TGF-βを阻害することによりリンパ管の内皮間葉移行を抑制する，請求項３に記載のリンパ管老化抑制剤。
  5. 　グアバ葉を有効成分として含有するTGF-β阻害剤。
  6. 　請求項１又は２に記載の内皮間葉移行抑制剤，請求項３又は４に記載のリンパ管老化抑制剤，及び／又は，請求項５に記載のTGF-β阻害剤を含む組成物。
  7. 　請求項６に記載の組成物を対象に投与することを含む，対象のリンパ管老化を予防するための美容方法。
  8. 　請求項６に記載の組成物を対象に提案することを含む，対象の美容行為を支援する美容カウンセリング方法。
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