WO2019230737A1 - 糸球体ポドサイトの誘導方法、及び該誘導方法を用いた多能性幹細胞からのポドサイトの製造方法 - Google Patents

糸球体ポドサイトの誘導方法、及び該誘導方法を用いた多能性幹細胞からのポドサイトの製造方法 Download PDF

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隆一 西中村
敦博 太口
仁宏 吉村
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国立大学法人熊本大学
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/15—Medicinal preparations ; Physical properties thereof, e.g. dissolubility

Definitions

  • the present invention relates to a method for selectively inducing glomerular podocytes from nephron precursor cells.
  • the present invention also relates to a method for producing glomerular podocytes from pluripotent stem cells using the induction method.
  • Podocyte research is an important medical and economic research topic because proteinuria presents when podocytes are impaired and eventually progresses to end-stage renal failure and requires dialysis treatment.
  • Non-patent Document 1 immortalized cell lines of human podocytes have been used for in vitro analysis.
  • this cell line has a very low expression level of genes and proteins characteristic of podocytes, and has been a problem that it is an insufficient material for conducting research (Non-patent Document 2).
  • NPHS1 which should be a podocyte-specific gene
  • the expression is as low as 10 (Non-patent Documents 3 to 5; Patent Document 1). Therefore, the cells induced in these reports are considered to be of insufficient quality to be called podocytes.
  • Non-patent Document 6 nephron progenitor cells are induced from human iPS cells and renal organoids containing podocytes and tubular cells are prepared in vitro.
  • Patent Document 2 Renal organoids are a population that contains many cell types.
  • cell-autonomous using more purified podocytes. Verification of (cell-autonomous) effect is required.
  • the present invention aims to provide a method for inducing glomerular podocytes. It is another object of the present invention to provide a method for producing podocytes that can obtain a cell population having a high podocyte composition ratio by selectively inducing podocytes.
  • MET Mesenchymal-to-epithelical transition
  • RV renal body
  • nephron fraction formation phase As a result of examining the signals required for induction into podocytes, it was revealed that time-specific adjustment of specific signals is important, and the present invention was completed. did.
  • the present invention includes the following aspects.
  • Step A A step of culturing nephron progenitor cells or a population thereof in a medium containing a Wnt agonist (preferably Glycogen Synthase Kinase (GSK) -3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021) and a ROCK inhibitor (preferably Y27632).
  • Wnt agonist preferably Glycogen Synthase Kinase (GSK) -3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021
  • ROCK inhibitor preferably Y27632
  • Step B a step of culturing the cells or population thereof obtained in Step A in a medium containing Fgf (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9) (the cell or cell population obtained here is referred to as “ Called “renal vesicle (RV)”)
  • Step C a step of culturing the cells or population thereof obtained in Step B in a medium containing Fgf (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9) (the cell or cell population obtained here is referred to as “ Including podocyte ")
  • at least one of the media in Step B or Step C contains a TGF ⁇ signal pathway inhibitor (preferably, SB431542).
  • the concentration of the Wnt agonist in the medium used in Step A is more than 1 ⁇ M and less than 10 ⁇ M (preferably about 2 ⁇ M to about 8 ⁇ M, more preferably about 3 ⁇ M to about 5 ⁇ M).
  • [3] The above-mentioned [1], wherein the medium in Steps B and C further contains a Wnt agonist (preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021) at a concentration of about 1 ⁇ M or less (preferably about 0.5 ⁇ M). Or the method as described in [2].
  • the culture in the step A is 12 hours to 48 hours (preferably 18 hours to 30 hours, more preferably 21 to 27 hours, more preferably about 24 hours), and the culture in the step B is 12 hours.
  • the culture in the step C is 2 to 30 days (preferably about 3 to about 15 days, more preferably 4 to 10 days).
  • the Wnt agonist is CHIR99021 and the TGF ⁇ signal pathway inhibitor is SB431542.
  • nephron progenitor cells are nephron progenitor cells derived from mammalian-derived iPS cells.
  • the iPS cell is a human-derived iPS cell.
  • the medium in Step B and / or Step C further contains a Wnt signal inhibitor (preferably IWR-1).
  • Wnt signal inhibitor preferably IWR-1.
  • the nephron progenitor cell comprises the following steps: (A) culturing embryoid bodies derived from human iPS cells in a medium containing a high concentration (concentration A) of a Wnt agonist (preferably CHIR99021); (B) culturing the embryoid body in a medium containing Bmp (preferably Bmp2, Bmp4 or Bmp7, more preferably Bmp4), activin, retinoic acid, and a medium concentration (concentration B) of a Wnt agonist.
  • A culturing embryoid bodies derived from human iPS cells in a medium containing a high concentration (concentration A) of a Wnt agonist (preferably CHIR99021);
  • B culturing the embryoid body in a medium containing Bmp (preferably Bmp2, Bmp4 or Bmp7, more preferably Bmp4), activin, retinoic acid, and a medium concentration (concentration B) of a Wnt agonist.
  • Bmp
  • culturing the embryoid body in a medium containing Fgf (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9) and a low concentration (concentration C) of a Wnt agonist (In this case, the concentration of Wnt agonist is concentration A> concentration B> concentration C, and concentration A is at least 5 times the concentration C).
  • the Wnt agonist in the steps (a), (b) and (c) is CHIR99021, and the concentrations A and C are 7.5 ⁇ M to 15 ⁇ M and 0.5 ⁇ M to 2.0 ⁇ M, respectively.
  • Bmp4 Bmp4
  • the concentration in the medium is 1 ng / mL to 10 ng / mL
  • the concentration of activin in the medium in the step (b) is 2.5 ng / mL
  • a culture medium kit for inducing differentiation of podocytes wherein the kit includes a differentiation induction medium and three containers containing the respective components described below, (1) a first container containing a Wnt agonist (preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021) and a ROCK inhibitor (preferably Y27632); (2) TGF ⁇ signal pathway inhibitor (preferably SB431542), Wnt signal inhibitor (preferably IWR-1), retinoic acid (RA) or RA analog, and Fgf (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably A second container containing Fgf9), and (3) a TGF ⁇ signaling pathway inhibitor (preferably SB431542), a Wnt signal inhibitor (preferably IWR-1), retinoic acid (RA) or an RA analog, and Fgf A third container containing (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9).
  • a Wnt agonist preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR
  • a method for producing a cell population of podocytes comprising the following steps: (I) a step of inducing differentiation of a nephron progenitor cell or a population thereof from a mammal-derived iPS cell (preferably a human iPS cell) or a population thereof; (Ii) The nephron progenitor cells or population thereof obtained in step (i) is cultured in a medium containing a Wnt agonist (preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021) and a ROCK inhibitor (preferably Y27632).
  • a Wnt agonist preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021
  • ROCK inhibitor preferably Y27632
  • a step of culturing (the cell or cell population obtained here is referred to as “pre-tubular aggregate (PA)”), (Iii) a step of culturing the cell or population thereof obtained in step (ii) in a medium containing Fgf (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9) (the cell or cell population obtained here) Is referred to as “renal vesicle (RV)”), and (Iv) a step of culturing the cells or population thereof obtained in step (iii) in a medium containing Fgf (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9) (the cell or cell population obtained here) , Referred to as “podocyte”),
  • at least one of the media in step (iii) or step (iv) contains a TGF ⁇ signal pathway inhibitor (preferably SB431542), and at least one of the media in step (iii) or step (iv) is
  • An inhibitor preferably IWR-1 is included, and at least one of the media in step (iii) or step (iv) contains retinoic acid (RA) or an RA analog.
  • the concentration of the Wnt agonist in the medium used in the step (ii) is more than 1 ⁇ M and less than 10 ⁇ M (preferably about 2 ⁇ M to about 8 ⁇ M, more preferably about 3 ⁇ M to about 5 ⁇ M), 15].
  • the medium in the steps (iii) and (iv) further contains a Wnt agonist (preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021) at a concentration of about 1 ⁇ M or less (preferably about 0.5 ⁇ M).
  • the culture in the step (ii) is 12 hours to 48 hours (preferably 18 hours to 30 hours, more preferably 21 to 27 hours, further preferably about 24 hours), and the step (ii) The culture according to any one of [15] to [18] above, wherein the culture is performed for 12 hours to 48 hours (preferably 18 hours to 30 hours, more preferably 21 to 27 hours, still more preferably about 24 hours). the method of.
  • the step (i) includes the following steps: (A) culturing embryoid bodies derived from human iPS cells in a medium containing a high concentration (concentration A) of a Wnt agonist (preferably CHIR99021); (B) culturing the embryoid body in a medium containing Bmp (preferably Bmp2, Bmp4 or Bmp7, more preferably Bmp4), activin, retinoic acid, and a medium concentration (concentration B) of a Wnt agonist.
  • A culturing embryoid bodies derived from human iPS cells in a medium containing a high concentration (concentration A) of a Wnt agonist (preferably CHIR99021);
  • B culturing the embryoid body in a medium containing Bmp (preferably Bmp2, Bmp4 or Bmp7, more preferably Bmp4), activin, retinoic acid, and a medium concentration (concentration B) of a Wnt agonist.
  • Bmp preferably Bmp2, B
  • culturing the embryoid body in a medium containing Fgf (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9) and a low concentration (concentration C) of a Wnt agonist (In this case, the concentration of Wnt agonist is concentration A> concentration B> concentration C, and concentration A is at least 5 times the concentration C).
  • the Wnt agonist in the steps (a), (b) and (c) is CHIR99021, and the concentrations A and C are 7.5 ⁇ M to 15 ⁇ M and 0.5 ⁇ M to 2.0 ⁇ M, respectively.
  • Bmp4 Bmp4
  • the concentration in the medium is 1 ng / mL to 10 ng / mL
  • the concentration of activin in the medium in the step (b) is 2.5 ng / mL
  • [24] A method for evaluating the influence or effect of a test substance on podocytes, which is described in any one of [1] to [12] and [15] to [23] in the presence of the test substance.
  • the podocyte cell population prepared by the above method is cultured, and the following items relating to the cells: cell proliferation, cell survival, cell damage, protein expression level, gene expression level, albumin uptake capacity, albumin filtration capacity, autophagy
  • a method comprising measuring at least one item selected from the group consisting of an activity and an intracellular transmission signal, and evaluating the influence of the test substance on podocytes.
  • a method for screening a substance that treats or ameliorates a podocyte disorder (x) prepared by the method described in any one of [1] to [12] and [15] to [23] above A step of culturing a cell population of podocytes in the presence of a podocyte-damaging drug and a test substance; and (y) podocyte cell survival, reduction of proliferation or damage, change in protein expression level, and change in gene expression level Measuring at least one item selected from the group consisting of: a method for screening a candidate substance for treating or ameliorating a podocyte disorder,
  • the culture of the podocyte cell population in the step (x) may be any of the following: (X-1) culturing a podocyte cell population in an environment where a drug exhibiting podocyte damage and a test substance are present simultaneously; or (x-1) culturing a podocyte cell population in the presence of a drug exhibiting podocyte damage.
  • the damaged podocyte cell population is then cultured in the presence of the test substance.
  • the drug exhibiting podocyte damage is at least one drug selected from the group consisting of puromycin aminonucleoside, doxorubicin, angiotensin II, and an anti-podocyte antibody.
  • a method for treating or preventing kidney and / or glomerular disease (I) The podocyte cell population produced by the method according to any one of [1] to [12] and [15] to [23] described above as a part of a kidney tissue of a subject affected with the disease (Wherein the podocyte cell population is optionally transplanted with stromal cells and / or vascular endothelial cells and / or cell scaffolds), and (II) in the transplanted podocyte cell population At least some of the cells migrate into and remain in at least some glomeruli of the kidney tissue, thereby regenerating the kidney tissue to treat kidney and / or glomerular disease, Including methods.
  • the kidney and / or glomerular disease is a pathological condition accompanied by podocyte disorder, nephrotic syndrome, nephrosclerosis, diabetic nephropathy, chronic glomerulonephritis, or a combination thereof, or a complication of those diseases.
  • glomerular podocytes can be efficiently induced from nephron progenitor cells.
  • the upper figure (a) shows an example of a method for inducing podocytes using mouse nephron progenitor cells
  • the lower figure (b) shows an example of a method for inducing podocytes using nephron progenitor cells derived from human iPS cells.
  • CHIR CHIR99021; Y: Y27632; SB: SB431542; F: Fgf9; RA: retinoic acid.
  • NPCs nephron progenitor cells
  • the kidney is generated by the interaction of glomerular podocytes and nephron progenitor cells (NPCs), which are precursors of tubules, ureteric buds, which are precursors of collecting ducts and ureters, and stromal cells.
  • NPCs nephron progenitor cells
  • MET mesenchymal epithelial transition
  • PT proximal tubules
  • DT distal tubules
  • Nephron progenitor cells form renal progenitor aggregates (PA) by Wnt signals from ureteric buds and then differentiate into renal bodies (RV) with proximal and distal polarity.
  • the renal corpuscle extends along the proximal distal axis and differentiates through the sigmoid into the nephron epithelium.
  • Podocyte progenitors are present in the WT1-positive proximal domain of the renal body (RV) and the Wt1-positive proximal domain of the sigmoid, and eventually differentiate into mature podocytes that are MafB positive / Nephrin positive . It was suggested that the Wnt and Notch signals play some role in the process of nephron proximal and distal axis formation, but it is unclear what signals are involved in nephron fractionation, particularly podocyte differentiation. Met.
  • the present inventors do not go through nephron progenitor cells having the ability to differentiate into all nephron fractions, and follow the differentiation process from nephron progenitor cells to podocytes.
  • the extent to which cells produced by these induction methods are close to real podocytes has not been verified, and the validity and validity of the induction method are not guaranteed. There was a thing.
  • Non-Patent Document 6 The differentiation process from progenitor cells to podocytes is divided into three stages: (1) mesenchymal epithelial transformation induction (MET) phase, (2) Renal vesicle (RV) formation phase, and (3) nephron fractionation phase. Signals necessary for induction into podocytes were examined, and it was clarified that time-specific regulation of CHIR99021, SB431542, IWR-1, retinoic acid, and Fgf9 was important.
  • MET mesenchymal epithelial transformation induction
  • RV Renal vesicle
  • Podocyte derived in accordance with the present invention 104 times of human iPS cells, in 10 5 times the height of the immortalized cell lines are expressing NPHS1 (Nephrin), iPS cells and immortalized in other podocyte related protein The expression level was extremely high compared to the cell line.
  • the inventors conducted podocytes from adult human kidneys and verified the comparison between induced podocytes and genuine podocytes.
  • the induced podocytes are almost identical to podocytes in vivo, such as NPHS1 and NPHS2 (Podocin). It was confirmed that it was expressed at the same level.
  • the induced podocyte according to the present invention shows almost the same quality as a real podocyte in vivo at the gene expression level, which proves the validity of the induction method of the present invention.
  • One embodiment of the present invention is a method for inducing podocytes from nephron progenitor cells, comprising three steps: induction from nephron progenitor cells to renal epithelial progenitor aggregates (PA), PA to renal corpuscles (RV). ), Induction from RV to podocyte.
  • Another embodiment of the present invention is a method for selectively inducing glomerular podocytes from nephron progenitor cells using the above three steps.
  • Another embodiment of the present invention is a method for producing glomerular podocytes from nephron progenitor cells using the above three steps.
  • Another embodiment of the present invention is a method for producing podocytes from mammalian iPS cells (preferably human iPS cells), the step of inducing nephron progenitor cells from iPS cells, This is a method for producing podocytes, which is a combination of the steps of inducing podocytes from nephron progenitor cells comprising two steps.
  • One embodiment of the present invention is a medium kit for inducing differentiation of podocytes from nephron progenitor cells, and a kit including a container and a medium each containing various substances used in the above three steps.
  • Another embodiment of the present invention is to provide an experimental model of podocytes using the podocytes induced by any of the methods described above.
  • Another embodiment of the present invention is a method for evaluating a substance having cytotoxicity against podocytes, using the podocytes induced by any of the methods described above.
  • Another aspect of the present invention is a method for screening a substance for improving or treating a podocyte disorder or a disease related thereto, using the podocyte induced by any of the above methods.
  • Yet another aspect of the present invention includes transplanting a podocyte induced by any of the above methods to a subject suffering from a kidney and / or glomerular disease. This is a method for the treatment or prevention of diseases.
  • FIG. 1 shows an outline of a protocol for the induction of glomerular podocytes from nephron progenitor cells (NPCs) of the present invention.
  • the upper figure shows induction from mouse-derived NPCs, and the lower figure shows induction from human-derived NPCs.
  • podocytes are derived from NPCs through a three-step process.
  • Nephron progenitor cells As nephron progenitor cells used in the method of the present invention, either those prepared from a living body or those derived from pluripotent stem cells can be used, but those derived from pluripotent stem cells are preferred. Particularly preferred are nephron progenitor cells derived from iPS cells which are pluripotent stem cells. Moreover, the nephron progenitor cells used in the present invention may be those obtained by culturing nephron progenitor cells derived from iPS cells while maintaining their characteristics under specific conditions, or by cryopreserving them. Induction of nephron progenitor cells from pluripotent stem cells can be performed with reference to known methods.
  • Non-Patent Document 6 Non-Patent Document 2
  • Wnt agonist preferably CHIR99021
  • B culturing the embryoid body in a medium containing Bmp (preferably Bmp2, Bmp4 or Bmp7, more preferably Bmp4), activin, retinoic acid, and a medium concentration (concentration B) of a Wnt agonist.
  • the embryoid body used in the step (a) can be prepared by culturing pluripotent stem cells (for example, ES cells or iPS cells) in any medium, preferably a serum-free medium.
  • pluripotent stem cells for example, ES cells or iPS cells
  • any medium preferably a serum-free medium.
  • human pluripotent stem cells are used, but not limited thereto, preferably, human iPS cells are treated with Bmp4 and a Rock inhibitor (Y27632) (added with Fgf as necessary).
  • An embryoid body is prepared, and more preferably, an embryoid body treated with activin and Fgf is then used.
  • the concentration of Bmp4 in the medium can be, for example, 0.3 to 5 ng / mL, preferably 0.5 to 2 ng / mL.
  • the concentration of the Rock inhibitor (Y27632) in the medium is, for example, 1 to 100 ng / mL, preferably 5 to 20 ng / mL can be raised, and the concentration of Fgf in the medium can be raised, for example, 0 to 20 ng / mL.
  • the concentration of activin in the medium is, for example, 0 1 to 5 ng / mL, preferably 0.5 to 1 ng / mL.
  • the treatment with Bmp4 and Rock inhibitor (Y27632), Fgf can be carried out, for example, for 1 to 2 days, preferably 1 day, and the treatment with activin and Fgf can be carried out, for example, for 1 to 4 days, preferably 2 days. .
  • Induced pluripotent stem (iPS) cells are artificial stem cells derived from somatic cells and can be produced by introducing specific reprogramming factors into somatic cells in the form of DNA or protein. Show almost the same characteristics as ES cells (for example, differentiation pluripotency and proliferation ability based on self-replication) (K. Takahashi and S. Yamanaka (2006) Cell, 126: 663-676; K. Takahashi et al. (2007), Cell, 131: 861-872; J. Yu et al. (2007), Science, 318: 1917-1920; Nakagawa, M. et al., Nat. Biotechnol. 26: 101-106 (2008) ; WO2007 / 069666).
  • a reprogramming factor is a gene that is specifically expressed in an ES cell, its gene product or its non-coding RNA, a gene that plays an important role in maintaining undifferentiation of ES cells, its gene product or its non-coding RNA, or It may be composed of a low molecular weight compound.
  • genes included in the reprogramming factor include Oct3 / 4, Sox2, Sox1, Sox3, Sox15, Sox17, Klf4, Klf2, c-MYC, N-Myc, L-Myc, Nanog, Lin28, Fbx15, Eras , ECAT15-2, Tcl1, beta-catenin, Lin28b, Sall1, Sall4, Esrrb, Nr5a2, Tbx3, Glis1, and the like. These reprogramming factors may be used alone or in combination.
  • a c-MYC gene When a c-MYC gene is introduced into a somatic cell as a reprogramming factor, an introduction method is used in which it is unlikely that the introduced c-MYC gene will be integrated into the chromosome of the target cell after the creation of the iPS cell.
  • introduction using a Sendai virus vector or episomal vector can be mentioned.
  • the concentrations A, B and C of the Wnt agonist contained in the medium used in each step have a specific relationship.
  • the concentration of Wnt agonist in the medium used in each step is concentration A> concentration B> concentration C and concentration A is at least 5 times the concentration C, but preferably concentration A is at least twice concentration B
  • concentration B is at least twice the concentration C, more preferably the concentration A is at least three times the concentration B, and the concentration B is at least three times the concentration C.
  • the concentration C of the Wnt agonist in step (c) is not particularly limited as long as differentiation induction occurs, and is appropriately selected depending on the Wnt agonist used.
  • CHIR99021 when CHIR99021 is used, it is preferably 0.1 to 3.0 ⁇ M. Can be 0.5 to 2.0 ⁇ M.
  • concentration A is 6 to 20 ⁇ M, preferably 7 0.5-15 ⁇ M, more preferably selected from about 10 ⁇ M
  • concentration B is selected from 2-6 ⁇ M, preferably 2-4.5 ⁇ M, more preferably about 3 ⁇ M
  • concentration C is 0.5-2 ⁇ M, preferably Can be a combination selected from 0.7 to 1.5 ⁇ M, more preferably about 1 ⁇ M.
  • Wnt agonist to be used Wnt agonists that can be used in the method of the present invention described below can be used.
  • Bmp used in step (b) can be any of the above-described Bmp, and the concentration of each Bmp compound used can be appropriately selected according to the purpose of use.
  • Bmp4 Bmp4 of any origin can be used, but human Bmp4 is preferable, and the concentration in the medium is not particularly limited as long as an effect of inducing differentiation is obtained. -30 ng / mL, preferably 1-10 ng / mL.
  • concentration which can exhibit the effect similar to the effect acquired when Bmp4 is used can be selected suitably.
  • the activin used in step (b) can be any activin, but is preferably human activin A.
  • the concentration in the medium is not particularly limited as long as the differentiation-inducing effect is obtained, and can be, for example, 2.5 to 40 ng / mL, preferably 7.5 to 15 ng / mL.
  • the concentration of retinoic acid used in the step (b) in the medium is not particularly limited as long as a differentiation-inducing effect is obtained, but is, for example, 0.001 to 1 ⁇ M, preferably 0.01 to 0.3 ⁇ M. be able to.
  • any of the above-mentioned Fgf can be used, and the use concentration of each Fgf compound can be appropriately selected according to the purpose of use.
  • Fgf9 when Fgf9 is used, Fgf9 of any origin can be used, but human Fgf9 is preferred.
  • the concentration in the medium is not particularly limited as long as the differentiation-inducing effect is obtained, and can be, for example, 1 to 25 ng / mL, preferably 2.5 to 10 ng / mL.
  • concentration which can exhibit the effect similar to the effect acquired when Fgf9 is used can be selected suitably.
  • a preferable combination in the steps (a) to (c) is that the Wnt agonist is CHIR99021, and the concentration A and the concentration C are 7.5 ⁇ M to 15 ⁇ M, 0.5 ⁇ M to 2.0 ⁇ M, respectively, and
  • the Bmp in the step (b) is Bmp4, the concentration in the medium is 1 ng / mL to 10 ng / mL, and the concentration of activin in the medium in the step (b) is 2.5 to 40 ng / mL Is a method for inducing nephron progenitor cells.
  • the induced pluripotent stem (iPS) cell may be derived from a mammal, and examples of the mammal include mouse, rat, guinea pig, hamster, rabbit, cat, dog, sheep, cow, horse, goat, monkey or A human or the like can be mentioned, and a mouse or a human is preferable.
  • Nephron progenitor cells prepared from living organisms or derived from mammalian pluripotent stem cells can optionally be further subjected to a cell sorting step.
  • selection can be performed using a cell sorter with at least one of markers selected from the group consisting of ITGA8, ROBO2, PDGFRa, PDGFRb, CXCR4, and NGFR, or any combination thereof.
  • Step A A step of culturing nephron progenitor cells or a population thereof in a medium containing a Wnt agonist (preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021) and a ROCK inhibitor (preferably Y27632) (cells obtained here) Or the cell population is referred to as “pre-tubular aggregate (PV)”)
  • Step B The cells or population thereof obtained in Step A are cultured in a medium containing a TGF ⁇ signaling pathway inhibitor (preferably SB431542) and Fgf (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9).
  • a Wnt agonist preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021
  • ROCK inhibitor preferably Y27632
  • Step B The cells or population thereof obtained in Step A are cultured in a medium containing a TGF ⁇ signaling pathway inhibitor (preferably SB431542) and Fgf (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20,
  • a step (the cell or cell population obtained here is referred to as “renal vesicle (RV)”), and Step C: The cells or population thereof obtained in Step B are cultured in a medium containing a TGF ⁇ signaling pathway inhibitor (preferably SB431542) and Fgf (preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9).
  • a process (the cell or cell population obtained here is referred to as “podocyte”),
  • the medium in Step B contains a TGF ⁇ signal pathway inhibitor
  • the medium in Step C may not contain a TGF ⁇ signal pathway inhibitor
  • the medium in Step C contains a TGF ⁇ signal pathway inhibitor
  • the medium in B may not contain a TGF ⁇ signal pathway inhibitor.
  • Step A Induction of NPCs into renal epithelial progenitor aggregates (PA)
  • Step A is a step of culturing nephron progenitor cells or a population thereof in a medium containing a Wnt agonist and a ROCK inhibitor (preferably Y27632). It is.
  • a Wnt agonist preferably Y27632
  • a ROCK inhibitor preferably Y27632
  • a Wnt agonist is defined as an agent that activates TCF / LEF-mediated transcription in a cell.
  • Wnt agonists are selected from true Wnt agonists, inhibitors of intracellular ⁇ -catenin degradation and activators of TCF / LEF that bind to and activate Frizzled receptor family members, including any and all of the Wnt family proteins.
  • the Wnt agonists also include Wnt signaling pathway inhibitors, GSK-3 ⁇ inhibitors, Dkk1 antagonists, and the like.
  • a GSK-3 ⁇ inhibitor is defined as a substance that inhibits the kinase activity of Glycogen Synthase Kinase (GSK) -3 ⁇ protein (for example, phosphorylation ability for ⁇ -catenin).
  • CHIR99021 (CAS number: 252917-06-9) ), BIO (CAS number: 667463-62-9), SB216763 (CAS number: 280744-09-4), R-Spondin1, etc. are already known.
  • the Wnt agonist used in the present invention is preferably CHIR99021, SB216673, BIO, R-Spondin1, A 1070722, Lithium carbonate, 3F8, SB 415286, TDZD 8, TWS 119, TCS 2002, Wnt3, Wnt3b, More preferred is CHIR99021 or SB216763, and more preferred is CHIR99021.
  • the concentration of CHIR99021 in the medium varies depending on the origin of cells used, but is usually a concentration of more than 1 ⁇ M and less than 10 ⁇ M, and the lower limit is preferably about 2 ⁇ M, more preferably About 3 ⁇ M, the upper limit is preferably about 8 ⁇ M, more preferably about 6 ⁇ M, and even more preferably about 5 ⁇ M.
  • the combination of the upper and lower limits is preferably about 2 ⁇ M to about 8 ⁇ M, more preferably about 2 ⁇ M to about 6 ⁇ M, and even more preferably about 3 ⁇ M to about 5 ⁇ M.
  • Step A By setting the concentration of CHIR99021 in step A within this range, NPCs can be efficiently differentiated into PA.
  • Step A when another Wnt agonist is used instead of CHIR99021, a concentration showing the same effect can be set with reference to CHIR99021.
  • the ROCK inhibitor is not particularly limited as long as it can suppress the function of Rho kinase (ROCK).
  • Y27632 Fasudil hydrochloride, GSK 429286, GSK 269862, AS 1899802, H 1152 dihydride, HA 1100 hydrochloride can be used, preferably Y27632 or Fastil hydrochloride, more preferably Y27632.
  • the concentration is 1 ⁇ M to 1000 ⁇ M, preferably 1 ⁇ M to 200 ⁇ M, more preferably 1 ⁇ M to 100 ⁇ M, and even more preferably about 10 ⁇ M.
  • Step A when another Rock inhibitor is used in place of Y27632, a concentration showing the same effect can be set with reference to Y27632.
  • the culture time in step A varies depending on the cell source used, but is usually about 12 hours to about 48 hours, preferably about 18 hours to about 30 hours, more preferably about 21 hours to about 27 hours, and even more preferably. About 24 hours.
  • NPCs can be efficiently differentiated into PA.
  • Step B Induction from PA to renal body (RV)
  • Step B is a step of culturing PA cells or a population thereof in a medium containing Fgf and optionally a TGF ⁇ signaling pathway inhibitor.
  • the cell or cell population obtained in this step is referred to as “renal vesicle”.
  • the TGF ⁇ signaling pathway inhibitor contained in at least either step B or step C is defined as a substance that inhibits signal transduction from binding to the receptor of TGF ⁇ to SMAD, and is, for example, a receptor for TGF ⁇ .
  • Many substances have been reported, such as substances that inhibit the binding to the ALK family and substances that inhibit the phosphorylation of SMAD by the ALK family.
  • the TGF ⁇ signaling pathway inhibitor used in the step B of the present invention is not particularly limited as long as an inducing effect on a desired cell can be obtained, but SB431542 (CAS number: 301836-41) which is an ALK inhibitor. -9) or A83-01 (CAS number: 909910-43-6), D4476, GW788388, LY364947, R268712, RepSox, SB505124, SB525334, or SD208, preferably SB431542 or A83-01, and SB431542 More preferred.
  • the concentration of SB431542 in the medium of Step B varies depending on the origin of the cells used, but is usually 1 ⁇ M to 500 ⁇ M, preferably 2 ⁇ M to 100 ⁇ M, more preferably Is 3 ⁇ M to 50 ⁇ M, about 25 ⁇ M is particularly preferable when a mouse-derived nephron progenitor cell is used in Step A, and about 0.5 ⁇ M is used when a human pluripotent stem cell-derived nephron progenitor cell is used in Step A. 5 ⁇ M is particularly preferred.
  • Step B by adding SB431542 at the above concentration, PA can be efficiently differentiated into RV having proximal polarity.
  • a concentration showing the same effect can be set with reference to SB431542.
  • the fibroblast growth factor (Fgf) can include, for example, Fgf2, Fgf4, Fgf7, Fgf9, or Fgf20, which are prepared by referring to a known method based on known amino acid sequence information.
  • Fgf to be used is preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9 or Fgf20, and even more preferably Fgf9.
  • the concentration of Fgf9 in the medium varies depending on the culture conditions and the like, but is, for example, 1 ng to 500 ng / mL, preferably 2 ng to 200 ng / mL, more preferably 5 ng to 100 ng / mL, and even more preferably about 10 ng / mL.
  • a concentration that exhibits the same effect can be set with reference to Fgf9.
  • the medium of Step B may further contain a Wnt agonist at a concentration of about 1 ⁇ M or less.
  • the Wnt agonist that can be used is the same as the Wnt agonist described in Step A, but is preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021.
  • CHIR99021 is used as a Wnt agonist in Step B
  • the concentration of CHIR99021 in the medium varies depending on the origin of cells used, but is about 1 ⁇ M or less, preferably about 0.7 ⁇ M or less, more preferably about 0.5 ⁇ M.
  • the concentration showing the same effect can be set with reference to CHIR99021.
  • a Wnt signal inhibitor may be added to the medium in either step B or step C, thereby improving the efficiency of inducing podocytes.
  • a Wnt signal inhibitor include, but are not limited to, for example, IWR-1 or IWP-2, IWP-3, IWP-4, XAV939, FH535, C59, VS-507, and CCT031374. Is IWR-1, IWP-2, or XAV939.
  • the concentration of IWR-1 in the medium of Step B varies depending on the origin of the cells to be used, but is usually 0.1 ⁇ M to 50 ⁇ M, preferably 0 2 ⁇ M to 10 ⁇ M, more preferably 0.5 ⁇ M to 5 ⁇ M, still more preferably about 1 ⁇ M to about 2 ⁇ M.
  • a concentration showing the same effect can be set with reference to IWR-1.
  • retinoic acid When using PA derived from human iPS cell-derived nephron progenitor cells by step A, it is also preferable to add retinoic acid (RA) or an RA analog to the medium of step B.
  • retinoic acid that can be used in Step B is all-trans retinoic acid (ATRA), which can be purchased from Sigma-Aldrich.
  • ATRA all-trans retinoic acid
  • An artificially modified retinoic acid while retaining the function of natural retinoic acid can also be used.
  • the concentration of ATRA in the medium varies depending on the culture conditions and the like, and is not particularly limited as long as desired cells can be obtained, but is usually 1 nM to 100 ⁇ M, preferably It is 10 nM to 50 ⁇ M, more preferably 100 nM to 20 ⁇ M, still more preferably about 1 ⁇ M to about 10 ⁇ M.
  • a retinoic acid analog can be used instead of retinoic acid.
  • retinoic acid analogs include AGN 193109, AM 580, AM 80, BMS 453, BMS 195614, AC 261066, AC 55649, and Isoretinoin, and AGN 193109 is particularly preferable.
  • RA analog when RA analog is used instead of RA, a concentration showing the same effect can be set with reference to RA.
  • the culture time in Step B varies depending on the cell source used, but is usually about 12 hours to about 48 hours, preferably about 18 hours to about 30 hours, more preferably about 21 to about 27 hours, and even more preferably about 24 hours. By setting the culture time in step B within this range, PA can be efficiently differentiated into RV.
  • Step C Induction from RV to podocytes
  • Step C is a step of inducing podocytes by culturing RV cells or a population thereof in a medium containing Fgf and optionally a TGF ⁇ signal pathway inhibitor.
  • the TGF ⁇ signal pathway inhibitor that can be used in Step C is the same as the TGF ⁇ signal pathway inhibitor described in Step B, but is preferably SB431542 or A83-01, more preferably SB431542.
  • concentration of the TGF ⁇ signal pathway inhibitor in the medium in Step C the same concentration as described in Step B can be used.
  • Fgf that can be used in Step C is the same as Fgf described in Step B, but is preferably Fgf2, Fgf9, or Fgf20, and more preferably Fgf9.
  • the concentration of Fgf in the medium in Step C can be the same as that described in Step B.
  • the medium of Step C may further contain a Wnt agonist at a concentration of about 1 ⁇ M or less.
  • the Wnt agonist that can be used is the same as the Wnt agonist described in Step A, but is preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021.
  • CHIR99021 is used as the Wnt agonist in Step C
  • the concentration of CHIR99021 in the medium varies depending on the origin of the cells used, but is about 1 ⁇ M or less, preferably about 0.7 ⁇ M or less, more preferably about 0.5 ⁇ M.
  • the concentration showing the same effect can be set with reference to CHIR99021.
  • a Wnt signal inhibitor When podocytes are induced from nephron progenitor cells derived from human iPS cells using PA induced by step A, a Wnt signal inhibitor may be added to the medium in either step B or step C. And it is preferable to add a Wnt signal inhibitory substance to the culture medium of both of process C.
  • the Wnt signal inhibitor used in Step C is the same as the Wnt signal inhibitor described in Step B, but preferably IWR-1.
  • concentration is the same as that of what was described in the process B.
  • retinoic acid (RA) or an RA analog may be added to the medium of step C.
  • the RA or RA analog used in Step C is the same as the RA or RA analog described in Step B.
  • the concentration is the same as that described in Step B. It is the same.
  • the culture time in Step C varies depending on the origin of cells used, but is usually about 2 days to about 9 days, preferably about 3 days to about 8 days. In the case of using mouse cells, the culture time in Step C is usually about 2 days to about 10 days, preferably about 3 days to about 7 days, more preferably about 4 days, and when human cells are used. Is usually about 5 days to about 30 days, preferably about 5 days to about 20 days, more preferably 6 days to 15 days, and even more preferably about 7 days to about 10 days. By setting the culture time in step C within this range, RV can be efficiently differentiated into podocytes.
  • Step A culturing nephron progenitor cells or a population thereof in a medium containing a Wnt agonist (preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021) and a ROCK inhibitor (preferably Y27632)
  • Step B The cells or population thereof obtained in Step A are converted into a TGF ⁇ signal pathway inhibitor (preferably SB431542), a Wnt signal inhibitor (preferably IWR-1), RA or RA analog, and Fgf (preferably Culturing in a medium containing Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9)
  • Step C The cells or population thereof obtained in Step B are converted into a TGF ⁇ signal pathway inhibitor (preferably SB431542), a Wnt signal inhibitor (preferably IWR-1), RA or RA analog, and Fgf (preferably Culturing in a medium containing Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9)
  • Step C The cells or population thereof obtained in Step B
  • the medium used in the present invention can be prepared using a medium used for culturing animal cells as a basal medium.
  • a basal medium examples are not limited as long as desired cells are obtained.
  • DMEM Dulbecco's modified Eagle medium
  • DMEM / F12 medium DMEM / F12 medium
  • GMEM Glasgow MEM
  • Ham's F12 medium Ham's F12 medium
  • IMDM Iscob modified Dulbecco medium
  • ⁇ MEM eagle minimum essential medium ⁇ modified type
  • the medium used in the present invention may contain serum or may be serum-free.
  • the medium used in the present invention may be, for example, albumin, ITS (insulin, transferrin, selenium), N-2 supplement (Thermo Fisher Scientific), B-27 (registered trademark) supplement minus vitamin A (Thermo Fisher Scientific). ), 2-mercaptoethanol, 1-thioglycerol, amino acids, L-glutamine, non-essential amino acids, ascorbic acid, antibiotics including penicillin streptomycin, and the like.
  • the medium kit is composed of a differentiation induction medium and three mediums containing the following components (1) to (3).
  • (2) may further include a Wnt signal inhibitor and retinoic acid (RA) or an RA analog
  • (3) further includes a Wnt signal inhibitor and retinoic acid (RA) or an RA analog.
  • the components (1) to (3) are preferably stored in separate containers. Therefore, the culture medium kit which is one embodiment of the present invention includes a kit including a differentiation-inducing medium and three containers each including the components (1) to (3).
  • the Wnt agonist, ROCK inhibitor, TGF ⁇ signal pathway inhibitor, Fgf, Wnt signal inhibitor, and retinoic acid (RA) or RA analog used in the medium kit of the present invention are described in the podocyte induction method of the present invention. It is the same ingredient as
  • the Wnt agonist is preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021
  • the ROCK inhibitor is preferably Y27632
  • the TGF ⁇ signaling pathway inhibitor is preferably SB431542
  • Fgf is preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9
  • the Wnt signal inhibitor is preferably IWR-1.
  • Each of the above components, Wnt agonist, ROCK inhibitor, TGF ⁇ signal pathway inhibitor, Fgf, Wnt signal inhibitor, and retinoic acid (RA) or RA analog, is the concentration used in the podocyte induction method of the present invention. Thus, it can be added to the medium and used.
  • Each of the above components may be provided in a state where only the components are stored in the respective containers, or a liquid medium or a powder medium containing these components may be provided in a state where they are stored in the respective containers.
  • the above-described medium kit of the present invention may be further combined with a medium for inducing nephron progenitor cells from pluripotent stem cells or a kit thereof, and such a combination of kits is also a part of the present invention.
  • One aspect of the present invention is a method for producing a cell population of podocytes from iPS cells derived from a mammal, comprising the above-described three-step induction process. Therefore, the present invention includes the following aspects.
  • step (I) a step of inducing differentiation of a nephron progenitor cell or a population thereof from a mammal-derived iPS cell (preferably a human iPS cell) or a population thereof; (Ii) culturing the nephron progenitor cells or population thereof obtained in step (i) in a medium containing a Wnt agonist and a ROCK inhibitor; (Iii) culturing the cells or population thereof obtained in step (ii) in a medium containing a TGF ⁇ signal pathway inhibitor, a Wnt signal inhibitor, Fgf, and optionally further retinoic acid (RA) or an RA analog; as well as, (Iv) culturing the cells or population thereof obtained in step (iii) in a medium containing a TGF ⁇ signal pathway inhibitor Wnt signal inhibitor, Fgf, and optionally further retinoic acid (RA) or an RA analog; However, When the medium in step (iii) contains a
  • the Wnt agonist, ROCK inhibitor, TGF ⁇ signal pathway inhibitor, Wnt signal inhibitor, Fgf, and retinoic acid (RA) or RA analog used in the above production method are those described in the podocyte induction method of the present invention. It is the same.
  • the Wnt agonist is preferably a GSK-3 ⁇ inhibitor, more preferably CHIR99021
  • the ROCK inhibitor is preferably Y27632
  • Fgf is preferably Fgf2, Fgf9 or Fgf20, more preferably Fgf9
  • the TGF ⁇ signal pathway is preferably SB431542 and the Wnt signal inhibitor is preferably IWR-1.
  • the concentration of each of the above components, Wnt agonist, ROCK inhibitor, TGF ⁇ signal pathway inhibitor, Fgf, Wnt signal inhibitor, and retinoic acid (RA) or RA analog in the medium, and the medium containing these components can be applied as it is for the culture period.
  • derivation of the nephron progenitor cell from the iPS cell described in relation to the podocyte induction method of the present invention can be applied as it is to the step (i) in the production method.
  • the podocyte cell population produced using the podocyte production method of the present invention means a cell population substantially composed of cells that are podocytes, specifically, About 40% or more, preferably about 50% or more, more preferably about 60% or more, more preferably about 70% or more, still more preferably about 80% or more, and most preferably about 90% or more is composed of podocytes.
  • a cell population Whether or not the cells in the cell population are podocytes and the proportion thereof can be confirmed by a known method using a cell marker of podocytes. Examples of cell markers include, but are not limited to, NPHS1, NPHS2, WT1, MAFB, or SYNPO.
  • the composition ratio can be detected using, for example, a cell sorter or immunostaining.
  • the podocytes produced using the method for producing podocytes of the present invention are characterized by having similar expression with respect to the expression of NPHS1, NPHS2, WT1, MAFB and SYNPO compared to authentic podocytes (podocytes derived from human adults).
  • Similar expression with respect to the expression of NPHS1, NPHS2, WT1, MAFB and SYNPO refers to genes for at least 2, preferably at least 3, more preferably 4 and even more preferably all of these 5 genes. And / or is equivalently expressed with respect to protein expression. Equivalent expression is about 40% or more, preferably about 50% or more, more preferably about 60% or more, even more preferably about 70% or more, compared to the expression of human adult-derived podocyte genes and / or proteins. More preferably, the expression is about 80% or more, and most preferably about 90% or more.
  • the evaluation method of the present invention is a method comprising culturing a podocyte or a cell population thereof produced using the above-described podocyte induction method or production method together with a target test substance, and confirming the influence on the podocyte cell. is there.
  • the influence on the podocyte cell is not limited to this, for example, cell proliferation, cell survival, cell damage, protein expression level, gene expression level, albumin uptake capacity, albumin filtration capacity, autophagy activity or intracellular transmission Evaluation can be performed by measuring at least one item selected from the group consisting of signals.
  • the test substance to be used is not particularly limited, and examples thereof include low molecular compounds, medium molecular compounds, high molecular compounds, amino acids, peptides, proteins, and natural extracts.
  • the measurement of the evaluation items can be performed by appropriately referring to known methods. Reagents and kits for measuring these evaluation items are also commercially available, and they can be used without limitation.
  • the evaluation method of the present invention for example, but not limited to, the toxicity of a drug that may cause renal damage can be evaluated.
  • Examples of the screening method of the present invention include a method of screening for a substance that treats or ameliorates a podocyte disorder.
  • Candidate substances can be screened by carrying out the following steps using the podocytes produced by the above-described podocyte induction method or production method or a cell population thereof.
  • (X) a step of culturing in the presence of a drug exhibiting podocyte damage and a test substance, and
  • (y) a step of measuring the survival or proliferation of podocyte cells.
  • the podocyte cell population may be cultured in an environment where (x-1) a drug exhibiting podocyte damage and a test substance are present simultaneously, and (x-1 )
  • the podocyte cell population may be cultured in the presence of an agent exhibiting podocyte damage and then the damaged podocyte cell population in the presence of a test substance.
  • the test substance may be added after removing the drug exhibiting podocyte damage, or the test substance may be added without removal.
  • drugs that show podocyte damage include, but are not limited to, anti-podocyte antibodies including, for example, puromycin aminonucleoside, doxorubicin, angiotensin II, anti-nephrin antibody, and preferably puromycin aminonucleoside, Or doxorubicin.
  • the test substance is not particularly limited, and examples thereof include low molecular compounds, medium molecular compounds, high molecular compounds, amino acids, peptides, proteins, and natural extracts. Although it is not limited to this by using the screening method of this invention, For example, the search of the chemical
  • the podocyte cell population can also be produced from iPS cells derived from a patient having a disease associated with podocytes, using the podocyte induction method or production method of the present invention.
  • the podocyte cell population prepared as described above it is possible to evaluate and screen a drug for treating a podocyte-related disease. Such evaluation methods or screening methods are also part of the present invention.
  • the present invention provides (I) transplanting the podocyte cell population produced by the above-described podocyte induction method or production method into a part of kidney tissue of a subject affected with a disease, and (II) transplanted podocyte cells. At least some of the cells in the population migrate into and remain in at least some of the glomeruli of the kidney tissue, thereby regenerating the kidney tissue to treat kidney and / or glomerular disease It is also a method including.
  • the subject affected by the disease is not particularly limited as long as it is a mammal, and examples thereof include mice, rats, guinea pigs, hamsters, rabbits, cats, dogs, sheep, cows, horses, goats, monkeys, and humans. Preferably, it is a human.
  • the podocyte cell population can be transplanted together with other cells or cell scaffolds that assist the podocyte transplantation. Examples of other cells include, but are not limited to, stromal cells and vascular endothelial cells.
  • the cell scaffold a known or commercially available scaffold can be used as appropriate.
  • a scaffold composed of a biocompatible substance can be used.
  • biomaterials include, but are not limited to, silk fibroin, polyethylene oxide, polyethylene glycol, fibronectin, keratin, polyaspartic acid, polylysine, chitin, hyaluronic acid, pectin, polycaprolactone, polylactic acid, polyglycolic acid, poly Mention may be made of hydroxyalkanoates, dextran, PHA, collagen, chitosan, alginate, and other biocompatible polymers.
  • the podocytes induced according to the present invention can also be transplanted with or as part of a renal organoid.
  • Renal organoids are higher-ordered kidney-like structures that have a differentiated nephron consisting of glomeruli and tubules, nephron progenitor cells, and stromal cells, and a dendritic branch structure of collecting ducts that connect the differentiated nephrons together. It is an organization.
  • kidney and glomerular diseases include, but are not limited to, for example, a condition associated with podocyte disorder, nephrotic syndrome, nephrosclerosis, diabetic nephropathy, chronic glomerulonephritis, or a combination thereof, or a disease thereof. It is preferable that the disease is accompanied by podocyte disorder.
  • mice MafB-GFP knock-in mice and Six2-GFP-Cre transgenic mice were provided by Dr. Satoshi Takahashi of University of Tsukuba and Dr. Andrew McMahon of University of Southern California. Mice were fed with CE-2 radiation sterilized diet in a 12 hour light cycle and were housed in plastic cages. All analyzes were performed using a minimum of 3 litters. In the analysis of the embryonic stage, noon on the day when the uterine plug was confirmed in the mated female was considered as the embryonic stage (E) 0.5 day. All animal experiments were performed according to a protocol approved by the Animal Experiment Committee of the Kumamoto University School of Medicine.
  • Podocyte induction from mouse nephron progenitor cells Isolate the metanephros from E15.5 MafB-GFP embryos, minced in PBS using forceps, and incubated at 37 ° C for 8 min in 0.25% trypsin-EDTA And dissociated. The cells were then subjected to the primary antibody staining with anti Robo2 antibody and anti-PDGFR [beta] antibody on ice, and then after the secondary antibody staining, using FACS Robo2 -high / Pdgfr ⁇ - / Mafb -GFP - sorted population did.
  • NPCs were sorted as Six2-GFP + cells or Robo2 -high / Pdgfr ⁇ ⁇ / Podocalyxin ⁇ cells.
  • differentiation medium 150 ⁇ L
  • CHIR99021 and Y27632 10 ⁇ M
  • 201B7 hiPS cell line from a healthy female donor was maintained on iMatrix-511 silk in StemFit AK02N medium. Cells were cultured at 37 ° C. with 5% CO 2 and passaged every 6-7 days. The medium was changed at 2, 4, 5, and / or 6 days.
  • the NPHS1-GFP knock-in hiPS cell line was made according to previous reports (Shamin et al. J. Am. Soc. Nephrol. 27, 1778-1791, 2016) and maintained similarly.
  • the human immortalized podocyte cell line (cell line) was purchased from Bristol University. Cells were grown in RPMI medium supplemented with 10% FBS at 33 ° C. with 5% CO 2 and passaged 4-5 days. The induction into the podocyte phenotype was performed by culturing the cells at 37 ° C. and 5% CO 2 for 14 days.
  • NPCs nephron progenitor cells
  • hiPSC human iPS cells
  • a 96-well low cell adhesion U-bottom plate 50,000 to 100,000 NPCs were seeded on serum-free differentiation medium (150 ⁇ L) supplemented with CHIR99021 (3 ⁇ M) and Y27632 (10 ⁇ M). The cells were attached to the bottom by centrifugation and then cultured at 37 ° C. in a 5% CO 2 incubator. After 24 hours, the aggregated cells were transferred onto transwell inserts filled with serum-free differentiation medium supplemented with Fgf9 (10 ⁇ g / mL), and IWR-1 (2 ⁇ M), SB431542 (5 ⁇ M) and retinoic acid (10 ⁇ M) were added.
  • Fgf9 10 ⁇ g / mL
  • IWR-1 2 ⁇ M
  • SB431542 5 ⁇ M
  • retinoic acid 10 ⁇ M
  • the culture was performed in a medium supplemented with the contained STEP 2 factor (the above-mentioned step B factor). After 48 hours of culture, the differentiated cells were transferred to a medium supplemented with STEP 3 factor (the above-mentioned step C factor) containing IWR-1 (2 ⁇ M) and SB431542 (5 ⁇ M). The medium was changed every 3 days. On day 9-12, the induced podocytes were collected and analyzed.
  • Tissue derived from mouse or human NPCs was dissociated by treatment with 0.25% trypsin-EDTA for 8 minutes. Blocking was performed using normal mouse serum, and staining was performed in 1 ⁇ HBSS buffer containing 1% BSA and 0.035% NaHCO 3 for 30 minutes, followed by staining with the secondary antibody for 10 minutes. Stained cells were analyzed using FACS. Information on the antibodies used is shown in the table below.
  • Kidney tissue was obtained. Patients are 49-year-old female, 69-year-old male and 80-year-old male. All patients showed normal renal function and normal urinary findings. Normal sites of kidney tissue removed from patients were immersed in high glucose DMEM containing 10% FBS on ice immediately after removal. The glomeruli were isolated and digested with the enzyme mixture (collagenase XI: 1 mg / mL, dispase: 2.4 U / mL) and then digested with 0.25% trypsin-EDTA.
  • the enzyme mixture (collagenase XI: 1 mg / mL, dispase: 2.4 U / mL) and then digested with 0.25% trypsin-EDTA.
  • Nephrin + / Podocalyxin + population After cell dissociation, red blood cells were disrupted using RBC lysis buffer. Thereafter, the anti-human Nephrin antibody, and subjected to primary antibody staining with anti-human Podocalyxin antibody, then after the secondary antibody staining, using FACS, normal human podocyte was isolated as Nephrin + / Podocalyxin + population.
  • Mouse b-Act, Six2, Pax2, Sall1, Cited1, Robo2, Lhx1, Pax8, Cdh1, WT1, MafB, Foxc2, Pou3f3, Dkk1, Sox9, Nphs1, Nphs2, Cldn1, Lrp2, Slc34a1, Cdh6; human: B ACT, NPHS1, NPHS2, WT1, SYNPO. All samples were normalized by ⁇ -actin expression.
  • Immunohistochemical analysis Samples were fixed with 10% formalin and embedded in paraffin to obtain 6 mm thick sections. Antigen recovery was performed with a pH 6.0 citrate buffer. Sections were blocked with PBS containing 1% BSA and incubated with primary antibody at 4 ° C. overnight. Staining was performed with a secondary antibody conjugated with Alexa488, 568, 594, 633 or 647. Nuclei were stained with DAPI. Fluorescence images were taken with a confocal microscope. The antibody information used is shown below.
  • Electron microscope imaging Observation was performed with an immunoelectron microscope.
  • an antibody an antibody against the N-terminal domain of Nephrin was used.
  • the prepared sections were incubated with the antibody overnight and then with a secondary antibody conjugated with 12 nm gold particles. After immunostaining, the sections were fixed and imaged using a JEM1230 transmission electron microscope (JEOL).
  • JEOL JEM1230 transmission electron microscope
  • Example 1 Purification of nephron progenitor cells from mouse embryonic kidney
  • a culture system capable of detecting differentiation from NPCs purified from mouse embryonic kidneys to nephron epithelium and podocytes Established.
  • NPCs express Robo2, and Pdgfrb is negative. Therefore, flow cytometry analysis was performed using Six2-GFP transgenic mice, and it was confirmed that the Robo2- high / Pdgfrb - fraction of E15.5 kidney was Six2-GFP + NPCs.
  • Example 2 Examination of Wnt signals essential for differentiation into MET and podocytes In vivo and in vitro, Wnt signals have been reported to be required for MET of NPCs (Stark et al. Nature 372, 679-83). , 1994, Kispert et al. Development 125, 4225-4234, 1998, Carrol et al. Dev. Cell 9, 283-292, 2005, Kuure et al. J. Am. Soc. Nephrol. 18, 1130-9, 2007 ). However, the effect of Wnt signal intensity and duration on podocyte differentiation was unclear. Therefore, we first examined the concentration and duration of the Wnt signal required to induce mesenchymal epithelial transition from NPCs.
  • CHIR99021 (CHIR) was used as a Wnt agonist and treated at a concentration of 1 to 10 ⁇ M for 12 to 48 hours, and analysis was performed on the sixth day. An outline is shown in FIG. After the initial CHIR treatment, 0.5 ⁇ M CHIR was continuously added as a basal medium to maintain tissue growth and survival. It was found that treatment of NPCs with 3-5 ⁇ M CHIR and a combination of 24-48 hours resulted in MET, resulting in epithelialized nephron tissue formation. The result of microscopic observation is shown in FIG. When Mafb-GFP + cells were confirmed, as shown in FIG.
  • Example 3 Inhibition of TGF- ⁇ Signal in Differentiation from Renal Epithelial Precursor Aggregate (PA) to Renal Body (RV)
  • PA Renal Epithelial Precursor Aggregate
  • RV Renal Body
  • Example 4 Other effects of inhibition of TGF- ⁇ signal after RV formation process
  • ST3 in the culture process (STEP 3) from 48 hours to 6 days after differentiation into proximal RV and differentiation into each nephron site
  • the effect of growth factors on podocyte induction was examined. The results are shown in FIG. Continuous addition of SB from 48 hours to 6 days significantly increased MafB-GFP + podocytes on day 6.
  • addition of 2 ⁇ M CHIR completely inhibited podocyte differentiation.
  • the Wnt signal inhibitor did not significantly affect the podocyte ratio. This result suggests that suppression of Wnt signal does not promote differentiation into podocytes in mice, but strong Wnt signal suppresses differentiation into podocytes.
  • the other factors, activin and RA signal agonist / antagonist had no significant effect on the podocyte percentage compared to the baseline condition (0.5 ⁇ M CHIR).
  • Example 5 Induction of selective podocytes from human iPS cells
  • efficient induction into podocytes was examined using nephron progenitor cells derived from human iPS cells.
  • the induction efficiency from hiPSC to podocytes was monitored using a Nephrin-GFP hiPS cell line.
  • a three-step podocyte differentiation induction method established with mouse NPCs was applied to hiPS. The outline is shown in FIG. First, the concentration and duration of the Wnt agonist in the stage from NPCs to PA (STEP 1) were examined, and then culture was continued up to day 9 under standard conditions (0.5 ⁇ M CHIR99021). Podocyte induction efficiency was confirmed by Nephrin-GFP + cell ratio. The results are shown in FIG. A 24-hour treatment with 3 ⁇ M CHIR99021 was found to be most efficient in podocyte induction.
  • NPCs were differentiated into PA (LHX1 + / ECAD ⁇ ) and formed RV (LHX1 + / ECAD + ) in 48 hours by CHIR induction for 24 hours.
  • SB431542 treatment increased the proportion of podocytes, as in mice.
  • Wnt signal inhibitor (IWR1) and RA in STEP 2 also increased the percentage of podocytes.
  • IWR1 and RA Wnt signal inhibitor
  • STEP 2 STEP 2
  • Step C after RV formation, the effect of increasing the induction efficiency of podocytes was observed when SB, IWR1, and RA were all administered alone. Furthermore, by combining SB and IWR1, the induction efficiency of podocytes further increased, reaching 90% or more (FIG. 17).
  • selective derivation of podocytes from hiPSCs-derived NPCs was achieved by examining and optimizing the necessary culture conditions for each STEP. A schematic of the process is shown in FIG. It has also been clarified that this induction method can be applied even to a hiPS cell line (201B7) in which gene editing is not performed.
  • the yield of podocytes itself was able to induce 300,000 podocytes from 10,000 hiPSCs, which was about three times the number of normal renal organoids (FIG. 18). Further, STEP 3 can continue culturing even after the start of culture on the 9th day, and the cells were alive at the 15th day after the start of culture.
  • Example 6 Comparison of gene expression profiles of induced podocytes, human podocytes, and cell lines Gene expression profiles of induced podocytes were compared between human adult kidney-derived podocytes and human immortalized podocyte cell lines. As a result of the analysis, the induced podocytes showed high expression levels of podocyte-specific genes such as NPHS1, NPHS2, WT1, and SYNPO, which were comparable to human adult podocytes (FIG. 19). . In the cell line, the expression of SYNPO was relatively maintained, but the expression levels of NPHS1 and NPHS2 were very low, compared to human adult podocytes and induced podocytes.
  • podocyte-specific genes such as NPHS1, NPHS2, WT1, and SYNPO
  • Example 7 Examination of morphological and functional characteristics of induced podocytes As shown in FIG. 20, it was confirmed that in induced podocytes, WT1 was expressed in the nucleus and NEPHERIN was expressed on the cell boundary. . Other slit membrane-related proteins, NEPH1 and PODOCIN, were also localized with NEPHERIN. As a result of transmission electron microscopic analysis, the presence of a foot process on the basal side of the podocyte was also confirmed (FIG. 21). It was also confirmed by staining with anti-nephrin antibody that these foot processes expressed nephrin protein (FIG. 22). In addition, a slit-like structure was also confirmed as a filamentous cross-link existing between adjacent podocytes (FIG. 21).
  • Protein expression in the induced podocytes was confirmed by Western blot and compared with hiPSCs, human immortalized podocyte cell lines, and hiPSC-derived renal organoids.
  • the induced podocytes expressed a large amount of slit membrane-related proteins such as NEPHRIN, phosphorylated NEPHRIN (p-NEPHRIN), NEPH1, and PODOCIN.
  • Induced podocytes also expressed the differentiated podocyte marker SYNAPTOPODIN, epilepsy, and PLA2R, the endogenous antigen of membranous nephropathy, which were higher than in hiPSCs and cell lines.
  • induced podocytes prepared by the method of the present invention can be used in vitro for podocyte damage and toxicity tests.
  • the induced podocytes were treated with puromycin aminonucleoside (PAN) for 48 hours.
  • PAN is a drug used in podocyte injury models in vitro and in vivo.
  • induced podocytes were treated with PAN, a decrease in the podocyte survival rate was confirmed (FIG. 24). This indicates that induced podocytes can be applied to cytotoxicity tests.
  • slit membrane-related proteins expressed on the membrane surface such as NEPHRIN, p-NEPHRIN, and NEPH1 were significantly reduced by PAN treatment (FIG. 25).
  • Podocyte disorder is the most important pathological cause of urinary protein, and the development of a drug that protects against podocytes is awaited in kidney diseases such as diabetic nephropathy and chronic glomerulonephritis.
  • the podocytes produced by the induction method of the present invention express a large number of podocyte-related proteins, and are screened for the development of a drug that acts protectively on podocytes when damaged, that is, in the kidney disease area. It is considered useful in drug discovery.
  • induced podocytes can be applied as a material for cytotoxicity tests when verifying the toxicity of drugs that may cause kidney damage.
  • iPS cells obtained from patients with congenital nephrotic syndrome, which is a disease associated with podocytes
  • congenital nephrotic syndrome which is a disease associated with podocytes
  • it can be applied to elucidate the pathology of rare diseases and develop therapeutic methods.
  • CRISPR / CAS9 and TALEN since it has become possible to edit genes for iPS cells using technologies such as CRISPR / CAS9 and TALEN, cell lines from which specific genes have been removed or overexpressed were established, and such cell lines were By applying the induction method of the invention, it is possible to apply to an experimental system in which the role of the gene in human podocytes is examined.
  • the podocyte can be efficiently induced by the induction method of the present invention. Moreover, the podocytes induced by the method of the present invention express many podocyte-related proteins, and are useful as mimics of podocytes.

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Abstract

本発明の目的は、インビトロにおいて、糸球体ポドサイトを誘導する方法を提供することである。より具体的には、選択的なポドサイトの誘導を行うことによりポドサイトの構成比率が高い細胞集団を得ることができるポドサイドの製造方法を提供することである。本発明により、以下の工程：工程Ａ：ネフロン前駆細胞又はその集団を、Ｗｎｔアゴニスト及びＲＯＣＫ阻害物質を含む培地で培養する工程、工程Ｂ：工程Ａで得られた細胞又はその集団を、Ｆｇｆを含む培地で培養する工程、及び、工程Ｃ：工程Ｂで得られた細胞又はその集団を、Ｆｇｆを含む培地で培養する工程（ここで、工程Ｂ又は工程Ｃにおける培地の少なくとも一つは、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含む）、を含むポドサイトを分化誘導する方法が提供された。

Description

糸球体ポドサイトの誘導方法、及び該誘導方法を用いた多能性幹細胞からのポドサイトの製造方法
　本発明は、ネフロン前駆体細胞から糸球体ポドサイトを選択的に誘導する方法に関する。本発明はまた、該誘導方法を用いて多能性幹細胞から糸球体ポドサイトを製造する方法に関する。
　腎臓の糸球体に存在するポドサイトは、血液の濾過において重要な役割を担っている。ポドサイトが障害されると蛋白尿を呈し、やがて末期腎不全へと進行し透析治療を要することから、ポドサイト研究は医療経済学的にも重要な研究テーマである。
　ポドサイト研究において、インビトロ解析にはヒトポドサイトの不死化細胞株が用いられてきた（非特許文献１）。しかしながら、この細胞株はポドサイトに特徴的な遺伝子や蛋白の発現レベルが極めて低く、研究の遂行にあたって不十分な素材であることが問題であった(非特許文献２)。
　また過去にヒトiPS細胞から選択的にポドサイトを誘導したとする報告があるが、ポドサイト特異的な遺伝子であるはずのＮＰＨＳ１の発現レベルは誘導前のヒトiPS細胞に比べて１／５から１／１０ほどの極めて低い発現に留まっている(非特許文献３～５；特許文献１)。よって、これらの報告で誘導された細胞は、ポドサイトと称するのには不十分な品質であると考えられる。
　本発明者らによる報告を含め、近年、ヒトiPS細胞からネフロン前駆細胞を誘導し、ポドサイトや尿細管細胞を含有する腎オルガノイドを試験管内で作成する研究が複数報告されている（非特許文献６～９；特許文献２）。腎オルガノイドは多数の細胞種を含む集団であるが、ポドサイト障害モデル実験や尿蛋白を軽減するための治療薬開発のための薬剤スクリーニングのためには、より純化したポドサイトを用いた細胞自律的な（cell-autonomous）な効果の検証が必要とされている。そこで、効率的に高純度のポドサイトからなる細胞集団を分化誘導又は製造する方法が求められている。
米国特許出願公開 2016/0143949 A1 ＷＯ２０１５／０５６７５６
M.A.Saleem et al., J. Am. Soc. Nephrol. 13, 630-638, 2002） S. Chittiprol et al., Am J Physiol Renal Physiol 301, F660-671, 2011 B. Song et al., PLoS ONE 7, e46453, 2012 O. Ciampi, et al., Stem Cell Res. 17, 130-139, 2016 S. Musah et al., Nat. Biomed. Eng. 1, 0069, 2017 Taguchi et al., Cell Stem Cell 14, 53-67, 2014 Takasato et al., Nature 526, 564-568, 2015 Morizane et al., Nat. Biotechnol. 33, 1193-1200, 2015 Taguchi et al., Cell Stem Cell 21, 730－746, 2017
　本発明は、糸球体ポドサイトを誘導する方法を提供することを目的とする。本発明はまた、選択的なポドサイトの誘導を行うことによりポドサイトの構成比率が高い細胞集団を得ることができるポドサイトの製造方法を提供することを目的とする。
　本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、ネフロン前駆細胞からポドサイトまでの分化過程を、（１）間葉上皮転換（Mesenchymal-to-epithelical transition：MET）期（以下、腎上皮前駆凝集体（pre-tubular aggregate：PA）形成期という場合もある）、（２）腎小体（Renal vesicle：RV）形成期 、及び（３）ネフロン分画形成期（以下、ポドサイト形成期という場合もある）という３つの段階に分け、ポドサイトへの誘導に必要なシグナルを検討した結果、特定のシグナルの時期特異的な調整が重要であることを明らかにし、本発明を完成した。
　本発明は、以下の態様を含むものである。
［１］ポドサイトを分化誘導する方法であって、以下の工程：
工程Ａ：ネフロン前駆細胞又はその集団を、Ｗｎｔアゴニスト（好ましくは、Glycogen Synthase Kinase（ＧＳＫ）－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１）及びＲＯＣＫ阻害物質（好ましくはＹ２７６３２）を含む培地で培養する工程（ここで得られる細胞又は細胞集団を「腎上皮前駆凝集体（pre-tubular aggregate：PV）」と称する。）、
工程Ｂ：工程Ａで得られた細胞又はその集団を、Ｆｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）を含む培地で培養する工程（ここで得られる細胞又は細胞集団を「腎小体（renal vesicle：RV）」と称する。）、及び、
工程Ｃ：工程Ｂで得られた細胞又はその集団を、Ｆｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）を含む培地で培養する工程（ここで得られる細胞又は細胞集団を「ポドサイト（podocyte）」と称する。）、を含む方法、
ここで、工程Ｂ又は工程Ｃにおける培地の少なくとも一つは、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質（好ましくは、ＳＢ４３１５４２）を含む。
［２］工程Ａで用いる培地のＷｎｔアゴニストの濃度が、１μＭより多くかつ１０μＭより少ない（好ましくは、約２μＭ～約８μＭ、より好ましくは、約３μＭ～約５μＭである）、上記［１］に記載の方法。
［３］前記工程Ｂ及びＣにおける培地が、さらに約１μＭ以下（好ましくは約０．５μＭ）の濃度のＷｎｔアゴニスト（好ましくは、ＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１）を含む上記［１］又は［２］に記載の方法。
［４］前記工程Ａにおける培養が、１２時間～４８時間（好ましくは１８時間～３０時間、より好ましくは２１～２７時間、さらに好ましくは約２４時間）であり、かつ前記工程Ｂにおける培養が１２時間～４８時間（好ましくは１８時間～３０時間、より好ましくは２１～２７時間、さらに好ましくは約２４時間）である、上記［１］～［３］のいずれか一つに記載の方法。
［５］前記工程Ｃにおける培養が、２～３０日（好ましくは約３～約１５日、より好ましくは４日～１０日）である、上記［４］に記載の方法。
［６］前記ＷｎｔアゴニストがＣＨＩＲ９９０２１であり、前記ＴＧＦβシグナル経路阻害物質がＳＢ４３１５４２である、上記［１］～［５］のいずれか一つに記載の方法。
［７］前記ネフロン前駆細胞が哺乳動物由来のｉＰＳ細胞から誘導されたネフロン前駆細胞である、上記［１］～［６］のいずれか一つに記載の方法。
［８］前記ｉＰＳ細胞が、ヒト由来のｉＰＳ細胞である上記［７］に記載の方法。
［９］前記工程Ｂ及び／又は工程Ｃにおける培地が、さらに、Ｗｎｔシグナル阻害物質（好ましくはＩＷＲ－１）を含む、上記［７］又は［８］に記載の方法。
［１０］前記工程Ｂ及び／又は工程Ｃにおける培地が、さらに、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログを含む、上記［７］～［９］のいずれか一つに記載の方法。
［１１］前記ネフロン前駆細胞が、以下の工程：
（ａ）ヒトｉＰＳ細胞から誘導された胚様体を、高濃度（濃度Ａ）のＷｎｔアゴニスト（好ましくは、ＣＨＩＲ９９０２１）を含有する培地で培養する工程、
（ｂ）前記胚様体を、Ｂｍｐ（好ましくは、Ｂｍｐ２、Ｂｍｐ４又はＢｍｐ７、より好ましくはＢｍｐ４）、アクチビン、レチノイン酸、及び中濃度（濃度Ｂ）のＷｎｔアゴニスト、を含有する培地で培養する工程、及び
（ｃ）前記胚様体を、Ｆｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）、及び低濃度（濃度Ｃ）のＷｎｔアゴニストを含有する培地で培養する工程、
をその順で含む分化誘導工程（ここで、Ｗｎｔアゴニストの濃度は、濃度Ａ＞濃度Ｂ＞濃度Ｃであって、濃度Ａは濃度Ｃの少なくとも５倍である。）、
によりヒトｉＰＳ細胞から誘導される、上記［７］～［１０］のいずれか一つに記載の方法。
［１２］前記工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）におけるＷｎｔアゴニストがＣＨＩＲ９９０２１であって、前記濃度Ａ及び濃度Ｃが、それぞれ、７．５μＭ～１５μＭ、０．５μＭ～2．０μＭであり、かつ、前記工程（ｂ）におけるＢｍｐがＢｍｐ４であって、培地における濃度が１ｎｇ／ｍＬ～１０ｎｇ／ｍＬであり、かつ、前記工程（ｂ）の培地におけるアクチビンの濃度が、２．５ｎｇ／ｍＬ～４０ｎｇ／ｍＬの濃度である、上記［１１］に記載の方法。
［１３］ポドサイトを分化誘導するための培地キットであって、該キットは、分化誘導培地、及び、以下に記載のそれぞれの成分を含む３つの容器を含む培地キット、
（１）Ｗｎｔアゴニスト（好ましくは、ＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１）及びＲＯＣＫ阻害物質（好ましくはＹ２７６３２）を含む第一の容器、
（２）ＴＧＦβシグナル経路阻害物質（好ましくは、ＳＢ４３１５４２）、Ｗｎｔシグナル阻害物質（好ましくはＩＷＲ－１）、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログ、及びＦｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）を含む第二の容器、及び
（３）ＴＧＦβシグナル経路阻害物質（好ましくは、ＳＢ４３１５４２）、Ｗｎｔシグナル阻害物質（好ましくはＩＷＲ－１）、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログ、及びＦｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）を含む第三の容器。
［１４］前記容器（２）及び（３）が、さらに、Ｗｎｔアゴニスト（好ましくは、ＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１）、を含む、上記［１３］に記載の培地キット。
［１５］ポドサイトの細胞集団を製造する方法であって、以下の工程：
（ｉ）哺乳動物由来のｉＰＳ細胞（好ましくはヒトｉＰＳ細胞）又はその集団からネフロン前駆細胞又はその集団を分化誘導する工程、
（ｉｉ）工程（ｉ）で得られたネフロン前駆細胞又はその集団を、Ｗｎｔアゴニスト（好ましくは、ＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１）及びＲＯＣＫ阻害物質（好ましくはＹ２７６３２）、を含む培地で培養する工程（ここで得られる細胞又は細胞集団を、「腎上皮前駆凝集体（pre-tubular aggregate：PA）」と称する。）、
（ｉｉｉ）工程（ｉｉ）で得られた細胞又はその集団を、Ｆｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）を含む培地で培養する工程（ここで得られる細胞又は細胞集団を、「腎小体（renal vesicle：RV）」と称する。）、及び、
（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）で得られた細胞又はその集団を、Ｆｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）を含む培地で培養する工程（ここで得られる細胞又は細胞集団を、「ポドサイト（podocyte）」と称する。）、を含む方法、
ここで、工程（ｉｉｉ）又は工程（ｉｖ）における培地の少なくとも一つはＴＧＦβシグナル経路阻害物質（好ましくは、ＳＢ４３１５４２）含み、工程（ｉｉｉ）又は工程（ｉｖ）における培地の少なくとも一つはＷｎｔシグナル阻害物質（好ましくはＩＷＲ－１）を含み、かつ工程（ｉｉｉ）又は工程（ｉｖ）における培地の少なくとも一つはレチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログを含む。
［１６］前記工程（ｉｉ）で用いる培地のＷｎｔアゴニストの濃度が、１μＭより多くかつ１０μＭより少ない（好ましくは、約２μＭ～約８μＭ、より好ましくは、約３μＭ～約５μＭである）、上記［１５］に記載の方法。
［１７］前記工程（ｉｉｉ）及び（ｉｖ）における培地が、さらに約１μＭ以下（好ましくは約０．５μＭ）の濃度のＷｎｔアゴニスト（好ましくは、ＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１）を含む上記［１５］又は［１６］に記載の方法。
［１８］前記ｉＰＳ細胞が、ヒト由来のｉＰＳ細胞である上記［１５］～［１７］のいずれか一つに記載の方法。
［１９］前記工程（ｉｉ）における培養が、１２時間～４８時間（好ましくは１８時間～３０時間、より好ましくは２１～２７時間、さらに好ましくは約２４時間）であり、かつ前記工程（ｉｉ）における培養が１２時間～４８時間（好ましくは１８時間～３０時間、より好ましくは２１～２７時間、さらに好ましくは約２４時間）である、上記［１５］～［１８］のいずれか一つに記載の方法。
［２０］前記工程（ｉｖ）における培養が、２～３０日（好ましくは約３～約１５日、より好ましくは４日～９日）である、上記［１７］に記載の方法。
［２１］前記ＷｎｔアゴニストがＣＨＩＲ９９０２１であり、前記ＴＧＦβシグナル経路阻害物質がＳＢ４３１５４２であり、前記Ｗｎｔシグナル阻害物質がＩＷＲ－１である、上記［１５］～［１８］のいずれか一つに記載の方法。
［２２］前記工程（ｉ）が、以下の工程：
（ａ）ヒトｉＰＳ細胞から誘導された胚様体を、高濃度（濃度Ａ）のＷｎｔアゴニスト（好ましくは、ＣＨＩＲ９９０２１）を含有する培地で培養する工程、
（ｂ）前記胚様体を、Ｂｍｐ（好ましくは、Ｂｍｐ２、Ｂｍｐ４又はＢｍｐ７、より好ましくはＢｍｐ４）、アクチビン、レチノイン酸、及び中濃度（濃度Ｂ）のＷｎｔアゴニスト、を含有する培地で培養する工程、及び
（ｃ）前記胚様体を、Ｆｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）、及び低濃度（濃度Ｃ）のＷｎｔアゴニストを含有する培地で培養する工程、
をその順で含む分化誘導工程（ここで、Ｗｎｔアゴニストの濃度は、濃度Ａ＞濃度Ｂ＞濃度Ｃであって、濃度Ａは濃度Ｃの少なくとも５倍である。）、
である、上記［１５］～［２１］のいずれか一つに記載の方法。
［２３］前記工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）におけるＷｎｔアゴニストがＣＨＩＲ９９０２１であって、前記濃度Ａ及び濃度Ｃが、それぞれ、７．５μＭ～１５μＭ、０．５μＭ～2．０μＭであり、かつ、前記工程（ｂ）におけるＢｍｐがＢｍｐ４であって、培地における濃度が１ｎｇ／ｍＬ～１０ｎｇ／ｍＬであり、かつ、前記工程（ｂ）の培地におけるアクチビンの濃度が、２．５ｎｇ／ｍＬ～４０ｎｇ／ｍＬの濃度である、上記［２０］に記載の方法。
［２４］試験物質のポドサイトに対する影響又は効果を評価する方法であって、該試験物質の存在下で、上記［１］～［１２］、［１５］～［２３］のいずれか一つに記載の方法で作製したポドサイトの細胞集団を培養し、該細胞に関する以下の項目：細胞の増殖、細胞の生存、細胞の障害、タンパク質発現量、遺伝子発現量、アルブミン取り込み能、アルブミンろ過能、オートファジー活性及び細胞内伝達シグナルからなる群から選ばれる少なくとも一つの項目を測定し、該試験物質のポドサイトに対する影響を評価することを含む方法。
［２５］ポドサイト障害を治療又は回復させる物質をスクリーニングする方法であって、（ｘ）上記［１］～［１２］、［１５］～［２３］のいずれか一つに記載の方法で作製したポドサイトの細胞集団を、ポドサイト障害性を示す薬剤及び試験物質の存在下で培養する工程と、（ｙ）ポドサイト細胞の生存、増殖又は障害の軽減、タンパク質発現量の変化、及び遺伝子発現量の変化からなる群から選ばれる少なくとも一つの項目を測定する工程、とを含むポドサイト障害を治療又は回復させる候補物質をスクリーニングする方法、
ここで、工程（ｘ）におけるポドサイト細胞集団の培養は、以下のいずれでもよい：
（ｘ－１）ポドサイト障害性を示す薬剤及び試験物質が同時に存在する環境下でポドサイト細胞集団を培養する、又は
（ｘ－１）ポドサイト障害性を示す薬剤の存在下でポドサイト細胞集団を培養し、次いで、試験物質の存在下で該障害ポドサイト細胞集団を培養する。
［２６］前記ポドサイト障害性を示す薬剤が、ピューロマイシンアミノヌクレオシド、ドキソルビシン、アンジオテンシンＩＩ、及び抗ポドサイト抗体からなる群より選ばれる少なくとも一つの薬剤である上記［２５］に記載のスクリーニング方法。
［２７］腎臓及び／又は糸球体の疾患を治療又は予防する方法であって、
（Ｉ）上記［１］～［１２］、［１５］～［２３］のいずれか一つに記載の方法で作製したポドサイトの細胞集団を、該疾患に罹患する対象の腎臓組織の一部に移植すること（ここで、該ポドサイトの細胞集団は、場合により、間質細胞及び／又は血管内皮細胞及び／又は細胞の足場とともに移植される）、及び
（ＩＩ）該移植したポドサイトの細胞集団中の少なくとも一部の細胞が、該腎組織の少なくとも一部の糸球体内へと移動してそこにとどまり、それにより、腎臓組織を再生して腎臓及び／又は糸球体の疾患を治療すること、
を含む方法。
［２８］前記腎臓及び／又は糸球体の疾患が、ポドサイト障害を伴う病態、ネフローゼ症候群、腎硬化症、糖尿病性腎症、慢性糸球体腎炎、又はそれらの組合せ、或いはそれらの疾患の合併症である上記［２７］に記載の方法。
［２９］前記ポドサイトの細胞集団が、ヒトｉＰＳ細胞又はその集団から分化誘導された腎オルガノイドの一部として移植される、上記［２７］又は［２８］に記載の方法。
　本発明により、効率良く、ネフロン前駆細胞から糸球体ポドサイトを誘導することができる。
本発明のポドサイトの誘導のプロトコルの概略の一例を示した図である。上図（ａ）は、マウスのネフロン前駆細胞を用いてポドサイトを誘導する方法の一例を、下図（ｂ）は、ヒトｉＰＳ細胞から誘導したネフロン前駆細胞を用いてポドサイトを誘導する方法の一例を示している。CHIR：CHIR99021；Y：Y27632；SB：SB431542；F：Fgf9；RA：レチノイン酸。 Six2-GFP陰性細胞、Six2-GFP陽性ネフロン前駆細胞（NPCs）、及び抗体で選別したネフロン前駆細胞（NPCs）のそれぞれの細胞の遺伝子発現を示した図である。 実施例１で調製したネフロン前駆細胞（NPCs）を用いて、Wntアゴニスト（CHIR99021）の影響を確認する実験の概要を示した図である。 実施例１で調製したネフロン前駆細胞（NPCs）を用いたポドサイトの誘導において、それぞれの濃度及び時間にて、Wntアゴニスト（CHIR99021）を処理した結果を示した図である。6日目における顕微鏡写真である。 ネフロン前駆細胞（NPCｓ）を用いたポドサイトの誘導において、3μM又は5μMの濃度にて24時間又は48時間CHIR99021処理した場合のMafB-GFP陽性のポドサイトの存在を6日目に確認した結果である。上図は、可視光及び蛍光での観察結果を示す。下図は、その結果をグラフにしたものである。 ネフロン前駆細胞を24時間CHIR99021処理した場合に、ネフロン前駆細胞（NPC）が腎上皮前駆凝集体（PA）、及び腎小体（RV）へと分化していることを、時系列（0時間、24時間、48時間）で確認した結果である。誘導過程において、Six2, Lhx1, Pax8, 及びCdh1の遺伝子発現を確認した結果を示す。 腎上皮前駆凝集体（PA）から腎小体（RV）への分化誘導過程における、成長因子又は阻害剤の影響を、顕微鏡観察で確認した結果である。ａは、CHIR99021（2μM）及びSB431542、ｂは、IWR-1、Activin A、RA及びBMS493である。上段は可視光による細胞の成長を観察した結果、下段は、蛍光によりMafB-GFP陽性細胞を観察した結果である。 腎上皮前駆凝集体（PA）から腎小体（RV）への分化誘導過程における、成長因子又は阻害剤の影響を確認した結果である。MafB-GFP陽性細胞の割合（ａ）及びポドサイトの数（ｂ）を示す。 腎小体（RV）ステージ（48時間）における、SB431542処理による遺伝子発現を検討した結果である。 SB431542処理によるWt1陽性近位腎小体（RV）細胞の比率と数を確認した結果である。 近位化腎小体（RV）誘導後のSTEP3における、ポドサイト系譜への分化に対する各因子（CHIR99021（2μM）、IWR-1、アクチビン、SB431542、レチノイン酸（RA）、及びBMS493の影響を確認した結果である。ａ：上段は可視光による細胞の成長を観察した結果、下段は、蛍光によりMafB-GFP陽性細胞を観察した結果である。ｂ：細胞集団におけるMafB-GFP陽性細胞（ポドサイト）の割合を示す。 近位化腎小体（RV）誘導後のSTEP3における、各ネフロン（ポドサイト、PT、及びDT）の細胞数に対するSB431542の効果を確認した結果である。 本発明の方法を用いて作製したポドサイトにおける、ポドサイト特異的タンパク質の発現と、その他の尿細管マーカーの発現を確認した結果である。 マウスNPCsで確立した３段階の段階的なポドサイト分化誘導方法をヒトiPS細胞（hiPS）に適用した場合の一例の概略図である。 ヒトiPS細胞（hiPS）から誘導したネフロン前駆細胞（NPCs）を用いたポドサイトの誘導において、STEP1におけるWntアゴニスト（CHIR99021）の影響を確認した結果を示した図である。 ヒトiPS細胞（hiPS）から誘導したネフロン前駆細胞（NPCs）を用いたポドサイトの誘導において、STEP2における各種因子の添加の影響を確認した結果を示した図である。 ヒトiPS細胞（hiPS）から誘導したネフロン前駆細胞（NPCs）を用いたポドサイトの誘導において、STEP3における各種因子の添加の影響を確認した結果を示した図である。 本発明の方法を用いて誘導したポドサイトと、腎オルガノイドのポドサイトを、比較した結果である。左図は割合を、右図はポドサイト数を比較した図である。 誘導ポドサイト、ヒト成体腎臓由来ポドサイト、ヒトｉＰＳ細胞、及び不死化ポドサイト細胞株における、ポドサイト特異的遺伝子の発現を比較した図である。 誘導ポドサイトにおける、WT1、NEPHERIN、NEPH1、及びPODOCINの発現部位を示す図である。 誘導ポドサイトを透過型電子顕微鏡で観察した写真である。左図の矢印は、基底外側領域に存在する足突起を示している。右図の矢印は、ポドサイト間に存在するスリット膜様構造（フィラメント状の架橋）を示している。 誘導ポドサイトを透過型電子顕微鏡で観察した他の写真である。矢印は、NEPHRIN分子を示している。 誘導ポドサイトのタンパク質発現をウエスタンブロットで解析した結果である。 誘導ポドサイトをピューロマイシンアミノヌクレオシド（PAN）で処理した場合の生存率を示している。 誘導ポドサイトをピューロマイシンアミノヌクレオシド（PAN）で処理した場合のタンパク質発現をウエスタンブロットで解析した結果である。
　以下、本発明を、例示的な実施態様を例として、本発明の実施において使用することができる好ましい方法および材料とともに説明するが、本発明は以下に記載の態様に限定されるものではない。なお、文中で特に断らない限り、本明細書で用いるすべての技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者に一般に理解されるのと同じ意味をもつ。また、本明細書に記載されたものと同等または同様の任意の材料および方法は、本発明の実施において同様に使用することができる。また、本明細書に記載された発明に関連して本明細書中で引用されるすべての刊行物および特許は、例えば、本発明で使用できる方法や材料その他を示すものとして、本明細書の一部を構成するものである。
　本明細書中で、「Ｘ～Ｙ」という表現を用いた場合は、下限としてＸを上限としてＹを含む意味で、或いは上限としてＸを下限としてＹを含む意味で用いる。本明細書において「及び／又は」は、いずれか一方、あるいは、両方を包含する意味で使用される。また、本明細書において「約」とは、±１０％を許容する意味で用いる。
　腎臓は、糸球体ポドサイト及び尿細管の前駆体であるネフロン前駆細胞（NPCs）、集合管および尿管の前駆体である尿管芽、および間質細胞の３者による相互作用により発生する。ネフロン前駆細胞は、間葉上皮転換（MET）を経て、ポドサイト、近位尿細管（PT）、及び遠位尿細管（DT）を含む上皮ネフロン構造へと発達する。ネフロン前駆細胞は、尿管芽からのWntシグナルによって、腎前駆凝集体（PA）を形成し、その後近位遠位の極性を持った腎小体(RV)へと分化する。腎小体（RV）は、近位遠位軸に沿って伸長し、Ｓ字体を経て、ネフロン上皮へと分化する。ポドサイトの前駆細胞は、腎小体（RV）のWT1陽性近位ドメイン、およびＳ字体のWt1陽性近位端ドメインに存在し、最終的にはMafB陽性/Nephrin陽性の成熟したポドサイトへと分化する。
　このネフロンの近位遠位軸形成過程において、Wnt及びNotchシグナルが何らかの役割を果たしていることは示唆されていたが、ネフロン分画形成、特にポドサイトの分化にどのようなシグナルが関わっているかは不明であった。
　本発明者らは、ポドサイトの誘導に関する従来の報告における誘導法では、ネフロン全分画への分化能を有するネフロン前駆細胞を経由しておらず、またネフロン前駆細胞からポドサイトへの分化過程に沿った段階的な検討ができていないことに着目した。そして、さらに重要なことは、これらの誘導法によって作られた細胞は、どの程度本物のポドサイトに近いものなのかという検証がなされておらず、誘導法の妥当性や正当性が保証されていないことにあった。
　そこで本発明者らは、本発明者らの従来の報告に基づいて、ヒトiPS細胞から、ネフロン全分画への分化能を有するネフロン前駆細胞を誘導したのちに（非特許文献６）、ネフロン前駆細胞からポドサイトまでの分化過程を、（１）間葉上皮転換誘導（MET）期、（２）Renal vesicle（RV）形成期、（３）ネフロン分画形成期という３つの段階に分けて、ポドサイトへの誘導に必要なシグナルを検討し、CHIR99021、SB431542、IWR-1、レチノイン酸、Fgf9の時期特異的な調整が重要であることを明らかにした。本発明に従って誘導したポドサイトは、ヒトiPS細胞の104倍、不死化細胞株の105倍の高さでNPHS1（Nephrin）を発現しており、その他のポドサイト関連蛋白においてもiPS細胞や不死化細胞株と比べて極めて高い発現レベルを示していた。さらに発明者らは、ヒト成体腎臓からポドサイトを分取し、誘導ポドサイトと本物のポドサイトを比較した検証を行い、誘導ポドサイトが、NPHS1やNPHS2（Podocin）といったポドサイト関連蛋白を生体内のポドサイトとほぼ同程度のレベルで発現していることを確認した。すなわち、本発明による誘導ポドサイトは、遺伝子発現レベルにおいて生体内の本物のポドサイトとほぼ同程度の品質を示しており、このことは本発明の誘導法の妥当性を証明している。
　本発明の一つ態様は、ネフロン前駆細胞からポドサイトを誘導する方法であって、３つの工程、すなわち、ネフロン前駆細胞から腎上皮前駆凝集体（PA）への誘導、PAから腎小体（RV）への誘導、RVからポドサイトへの誘導を含む方法である。
　本発明の別の一つの態様は、上記３つの工程を用いて、ネフロン前駆細胞から糸球体ポドサイトを選択的に誘導する方法である。
　本発明の他の一つの態様は、上記３つの工程を用いて、ネフロン前駆細胞から糸球体ポドサイトを製造する方法である。
　本発明の他の別の一つの態様は、哺乳動物由来のiPS細胞（好ましくは、ヒトiPS細胞）からポドサイトを製造する方法であって、iPS細胞からネフロン前駆細胞を誘導する工程と、上記３つの工程を含むネフロン前駆細胞からポドサイトを誘導する工程を組み合わせてなるポドサイトの製造方法である。
　また、本発明の一つの態様は、ネフロン前駆細胞からポドサイトを分化誘導するための培地キットであって、上記３つの工程において用いる各種物質をそれぞれ含んだ容器、及び培地を含むキットである。
　また別の本発明の一つの態様は、上記の何れかの方法により誘導したポドサイトを用いた、ポドサイトの実験モデルの提供である。
　また別の本発明の一つの態様は、上記の何れかの方法により誘導したポドサイトを用いた、ポドサイトに対する細胞毒性を有する物質の評価方法である。
　また他の本発明の一つの態様は、上記の何れかの方法により誘導したポドサイトを用いた、ポドサイト障害又はそれに関連する疾患を改善又は治療する物質のスクリーニング方法である。
　また別の他の本発明の一つの態様は、上記の何れかの方法によって誘導されたポドサイトを腎臓及び／又は糸球体の疾患に罹患する対象に移植することを含む、腎臓及び／又は糸球体の疾患の治療又は予防方法である。
　以下、本発明の詳細を説明する。
　図１に、本発明のネフロン前駆細胞（ＮＰＣｓ）からの糸球体ポドサイトの誘導のプロトコルの概略を示してある。上図はマウス由来のＮＰＣｓからの誘導を、下図はヒト由来のＮＰＣｓからの誘導を示している。いずれにおいても、３段階の工程を経て、ＮＰＣｓからポドサイトが誘導される。
ネフロン前駆細胞
　本発明の方法で用いるネフロン前駆細胞は、生体から調製したもの、多能性幹細胞から誘導したもののいずれを用いることもできるが、好ましくは、多能性幹細胞から誘導したものである。特に好ましくは、多能性幹細胞であるｉＰＳ細胞から誘導したネフロン前駆細胞である。また本発明で用いるネフロン前駆細胞は、ｉＰＳ細胞から誘導したネフロン前駆細胞を特定の条件で形質を維持しながら培養したもの或いは冷凍保存したものであってもよい。多能性幹細胞からのネフロン前駆細胞の誘導は、公知の方法を参考にして行うことができる。例えば、本発明者らによる報告（非特許文献６；特許文献２）を参考にして調製できる。これらの文献は、引用することにより本明細書の一部である。
　これに限定されないが、例えば、以下の工程をあげることができる。
（ａ）多能性幹細胞から誘導された胚様体を、高濃度（濃度Ａ）のＷｎｔアゴニスト（好ましくは、ＣＨＩＲ９９０２１）を含有する培地で培養する工程、
（ｂ）前記胚様体を、Ｂｍｐ（好ましくは、Ｂｍｐ２、Ｂｍｐ４又はＢｍｐ７、より好ましくはＢｍｐ４）、アクチビン、レチノイン酸、及び中濃度（濃度Ｂ）のＷｎｔアゴニスト、を含有する培地で培養する工程、及び
（ｃ）前記胚様体を、Ｆｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）、及び低濃度（濃度Ｃ）のＷｎｔアゴニストを含有する培地で培養する工程、
をその順で含む分化誘導工程（ここで、Ｗｎｔアゴニストの濃度は、濃度Ａ＞濃度Ｂ＞濃度Ｃであって、濃度Ａは濃度Ｃの少なくとも５倍である。）により、ネフロン前駆細胞を作製できる。
。
　上記工程（ａ）に用いる胚様体は、多能性幹細胞（例えば、ＥＳ細胞やｉＰＳ細胞）を、任意の培地、好ましくは無血清培地で培養することにより調製できる。例えば、ヒト多能性幹細胞を用いる場合は、これに限定されないが、好ましくはヒトｉＰＳ細胞を、Ｂｍｐ４およびＲｏｃｋ阻害剤（Ｙ２７６３２）で（必要に応じてさらにＦｇｆを加えて）処理した細胞を用いて胚様体が調製され、さらに好ましくは、次いで、アクチビンおよびＦｇｆで処理された胚様体が用いられる。培地中のＢｍｐ４の濃度は、例えば、０．３～５ｎｇ／ｍＬ、好ましくは０．５～２ｎｇ／ｍＬをあげることができ、培地中のＲｏｃｋ阻害剤（Ｙ２７６３２）の濃度は、例えば、１～１００ｎｇ／ｍＬ、好ましくは５～２０ｎｇ／ｍＬをあげることができ、培地中のＦｇｆの濃度は、例えば、０～２０ｎｇ／ｍＬ、をあげることができ、培地中のアクチビンの濃度は、例えば、０．１～５ｎｇ／ｍＬ、好ましくは０．５～１ｎｇ／ｍＬをあげることができる。Ｂｍｐ４およびＲｏｃｋ阻害剤（Ｙ２７６３２）、Ｆｇｆでの処理は、例えば、１～２日、好ましくは１日行い、アクチビンおよびＦｇｆの処理は、例えば、１～４日、好ましくは２日行うことができる。
　誘導多能性幹（ｉＰＳ）細胞は、体細胞に由来する人工的な幹細胞であって、特異的な再プログラム化因子をＤＮＡ又はタンパク質の形態で体細胞に導入することにより製造することができ、ＥＳ細胞とほぼ同等の特性（例えば、分化多能性及び自己複製に基づく増殖能）を示す（K. Takahashi及びS. Yamanaka (2006) Cell, 126:663－676; K. Takahashi et al. (2007), Cell, 131:861－872; J. Yu et al. (2007), Science, 318:1917－1920; Nakagawa, M. et al., Nat. Biotechnol. 26:101－106 (2008);WO2007/069666）。再プログラム化因子は、ＥＳ細胞で特異的に発現される遺伝子、その遺伝子産物若しくはその非コードＲＮＡ、ＥＳ細胞の未分化維持に重要な役割を果たす遺伝子、その遺伝子産物若しくはその非コードＲＮＡ、又は低分子量化合物で構成されてもよい。再プログラム化因子に含まれる遺伝子の例としては、Ｏｃｔ３／４、Ｓｏｘ２、Ｓｏｘ１、Ｓｏｘ３、Ｓｏｘ１５、Ｓｏｘ１７、Ｋｌｆ４、Ｋｌｆ２、ｃ－ＭＹＣ、Ｎ－Ｍｙｃ、Ｌ－Ｍｙｃ、Ｎａｎｏｇ、Ｌｉｎ２８、Ｆｂｘ１５、ＥＲａｓ、ＥＣＡＴ１５－２、Ｔｃｌ１、ｂｅｔａ－ｃａｔｅｎｉｎ、Ｌｉｎ２８ｂ、Ｓａｌｌ１、Ｓａｌｌ４、Ｅｓｒｒｂ、Ｎｒ５ａ２、Ｔｂｘ３、Ｇｌｉｓ１等が挙げられる。これらの再プログラム化因子は、単独で、あるいは組み合わせて使用してもよい。なお、再プログラミング因子としてｃ－ＭＹＣの遺伝子を体細胞に導入して用いる場合は、ｉＰＳ細胞の作成後に、導入したｃ－ＭＹＣ遺伝子が標的細胞の染色体に組み込まれる可能性が低い導入方法を用いるのが好ましく、例えば、これに限定されないが、センダイウイルスベクターやエピゾーマルベクターを用いた導入をあげることができる。
　上記工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）において、それぞれの工程において用いる培地が含有するＷｎｔアゴニストの濃度Ａ、Ｂ及びＣが、特定の関係にあることが重要である。各工程で用いる培地のＷｎｔアゴニストの濃度は、濃度Ａ＞濃度Ｂ＞濃度Ｃでありかつ濃度Ａは濃度Ｃの少なくとも５倍であるが、好ましくは、濃度Ａは濃度Ｂの少なくとも２倍でありかつ濃度Ｂは濃度Ｃの少なくとも２倍であり、さらに好ましくは、濃度Ａは濃度Ｂの少なくとも３倍であり、かつ濃度Ｂは濃度Ｃの少なくとも３倍である。工程（ｃ）におけるＷｎｔアゴニストの濃度Ｃは、分化誘導が起こる限り特に制限がなく、また、用いるＷｎｔアゴニストによって適宜選択されるが、例えばＣＨＩＲ９９０２１を用いた場合、０．１～３．０μＭ、好ましくは、０．５～２．０μＭをあげることができる。
　例えばＣＨＩＲ９９０２１を用いた場合、これに限定されないが、工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）におけるＷｎｔアゴニストの濃度Ａ、ＢおよびＣの組み合わせとして、濃度Ａは、６～２０μＭ、好ましくは７．５～１５μＭ、より好ましくは約１０μＭから選ばれ、濃度Ｂは、２～６μＭ、好ましくは２～４．５μＭ、より好ましくは約３μＭから選ばれ、濃度Ｃは、０．５～２μＭ、好ましくは０．７～１．５μＭ、より好ましくは約１μＭから選ばれる組合せをあげることができる。
　用いるＷｎｔアゴニストは、下記で説明する本発明の方法において用いることができるＷｎｔアゴニスを用いることができる。
　工程（ｂ）において用いるＢｍｐは、上記したＢｍｐのいずれを用いることもでき、各Ｂｍｐ化合物の使用濃度は使用目的に合わせて適宜選択できる。例えばＢｍｐ４を用いる場合は、いずれの起源のＢｍｐ４を用いることができるが好ましくはヒトＢｍｐ４であり、培地中の濃度は、分化誘導の効果が得られる限り特に制限がないが、例えば、０．１～３０ｎｇ／ｍＬ、好ましくは１～１０ｎｇ／ｍＬをあげることができる。また、他のＢｍｐ化合物を用いる場合は、Ｂｍｐ４を用いた場合に得られる効果と同様の効果を発揮できる濃度を適宜選択することができる。
　工程（ｂ）において用いるアクチビンは、いずれの起源のアクチビンを用いることができるが好ましくはヒトアクチビンＡである。また、培地中の濃度は、分化誘導の効果が得られる限り特に制限がないが、例えば、２．５～４０ｎｇ／ｍＬ、好ましくは７．５～１５ｎｇ／ｍＬをあげることができる。
　また、工程（ｂ）において用いるレチノイン酸の培地中の濃度は、分化誘導の効果が得られる限り特に制限がないが、例えば、０．００１～１μＭ、好ましくは０．０１～０．３μＭをあげることができる。
　工程（ｃ）において用いるＦｇｆは、上記したＦｇｆのいずれを用いることもでき、各Ｆｇｆ化合物の使用濃度は使用目的に合わせて適宜選択できる。例えばＦｇｆ９を用いる場合は、いずれの起源のＦｇｆ９を用いることができるが好ましくはヒトＦｇｆ９である。培地中の濃度は、分化誘導の効果が得られる限り特に制限がないが、例えば、１～２５ｎｇ／ｍＬ、好ましくは２．５～１０ｎｇ／ｍＬをあげることができる。また、他のＦｇｆ化合物を用いる場合は、Ｆｇｆ９を用いた場合に得られる効果と同様の効果を発揮できる濃度を適宜選択することができる。
　上記行程（ａ）～（ｃ）における好ましい組合せは、Ｗｎｔアゴニストは、ＣＨＩＲ９９０２１であって、前記濃度Ａ及び濃度Ｃが、それぞれ、７．５μＭ～１５μＭ、０．5μＭ～2．０μＭであり、かつ、前記工程（ｂ）におけるＢｍｐがＢｍｐ４であって培地における濃度が、１ｎｇ／ｍＬ～１０ｎｇ／ｍＬであり、かつ、前記工程（ｂ）の培地におけるアクチビンの濃度が、２．５～４０ｎｇ／ｍＬの濃度である、ネフロン前駆細胞の誘導方法である。
　誘導多能性幹（ｉＰＳ）細胞は、哺乳類動物由来であればよく、哺乳動物としては、例えば、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ヒツジ、ウシ、ウマ、ヤギ、サル又はヒト等をあげることができ、好ましくは、マウス又はヒトである。
　生体から調製した又は哺乳類の多能性幹細胞から誘導したネフロン前駆細胞は、場合により、さらに細胞の選別工程に付すこともできる。これに限定されないが、例えば、ITGA8、ROBO2、PDGFRa、PDGFRb、CXCR4、NGFRからなる群より選ばれるマーカーの少なくとも一つ又はそれらの任意の組合せによりセルソーターを用いて選別を行うことができる。
ポドサイトの誘導
　本発明のネフロン前駆細胞からのポドサイトの誘導は、３つの工程Ａ～Ｃからなる。
工程Ａ：ネフロン前駆細胞又はその集団を、Ｗｎｔアゴニスト（好ましくは、ＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１）及びＲＯＣＫ阻害物質（好ましくはＹ２７６３２）を含む培地で培養する工程（ここで得られる細胞又は細胞集団を「腎上皮前駆凝集体（pre-tubular aggregate：PV）」と称する。）、
工程Ｂ：工程Ａで得られた細胞又はその集団を、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質（好ましくは、ＳＢ４３１５４２）及びＦｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）を含む培地で培養する工程（ここで得られる細胞又は細胞集団を「腎小体（renal vesicle：RV）」と称する。）、及び、
工程Ｃ：工程Ｂで得られた細胞又はその集団を、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質（好ましくは、ＳＢ４３１５４２）及びＦｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）を含む培地で培養する工程（ここで得られる細胞又は細胞集団を「ポドサイト（podocyte）」と称する。）、
但し、工程Ｂにおける培地がＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含む場合は工程Ｃにおける培地はＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含まなくてもよく、また、工程Ｃにおける培地がＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含む場合は工程Ｂにおける培地はＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含まなくてもよい。
工程Ａ（ＳＴＥＰ １）：ＮＰＣｓから腎上皮前駆凝集体（ＰＡ）への誘導
　工程Ａは、ネフロン前駆細胞又はその集団を、Ｗｎｔアゴニスト及びＲＯＣＫ阻害物質（好ましくはＹ２７６３２）を含む培地で培養する工程である。本明細書では、この工程で得られる細胞又は細胞集団を、「腎上皮前駆凝集体（pre-tubular aggregate：PA）」と称する。
　Ｗｎｔアゴニストは、細胞中でＴＣＦ／ＬＥＦ介在性の転写を活性化する薬剤として定義される。従ってＷｎｔアゴニストは、Ｗｎｔファミリータンパク質のありとあらゆるものを含むＦｒｉｚｚｌｅｄ受容体ファミリーメンバーに結合し、活性化する真のＷｎｔアゴニスト、細胞内β－カテニン分解の阻害剤およびＴＣＦ／ＬＥＦの活性化物質から選択される。Ｗｎｔアゴニストはまた、Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質、ＧＳＫ－３β阻害物質、Ｄｋｋ１アンタゴニスト等も含む。
　ＧＳＫ－３β阻害物質とは、Glycogen Synthase Kinase（ＧＳＫ）－３βタンパク質のキナーゼ活性（例えば、βカテニンに対するリン酸化能）を阻害する物質として定義され、例えば、ＣＨＩＲ９９０２１（ＣＡＳ番号：２５２９１７－０６－９）、ＢＩＯ（ＣＡＳ番号：６６７４６３－６２－９）、ＳＢ２１６７６３（ＣＡＳ番号：２８０７４４－０９－４）、Ｒ－Ｓｐｏｎｄｉｎ１など、既に多数のものが知られている。
　本発明において用いられるＷｎｔアゴニストは、好ましくは、ＣＨＩＲ９９０２１、ＳＢ２１６７６３、ＢＩＯ、Ｒ-Ｓｐｏｎｄｉｎ１、Ａ　１０７０７２２、Ｌｉｔｈｉｕｍ　ｃａｒｂｏｎａｔｅ、３Ｆ８、ＳＢ　４１５２８６、ＴＤＺＤ　８、ＴＷＳ　１１９、ＴＣＳ　２００２、Ｗｎｔ３、Ｗｎｔ３ａ、Ｗｎｔ９ｂであり、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１、又はＳＢ２１６７６３であり、さらに好ましくはＣＨＩＲ９９０２１である。
　工程ＡにおいてＷｎｔアゴニストとしてＣＨＩＲ９９０２１を用いる場合、培地中のＣＨＩＲ９９０２１の濃度は、用いる細胞の起源によっても異なるが、通常１μＭより多く１０μＭより小さい濃度であり、下限は、好ましくは約２μＭ、より好ましくは約３μＭ、上限は、好ましくは約８μＭ、より好ましくは約６μＭ、さらに好ましくは約５μＭである。上限下限の組合せは、好ましくは約２μＭ～約８μＭ、より好ましくは約２μＭ～約６μＭであり、さらに好ましくは約３μＭ～約５μＭである。工程Ａにおける、ＣＨＩＲ９９０２１の濃度をこの範囲にすることにより、効率良く、ＮＰＣｓをＰＡへと分化させることができる。工程Ａにおいて、ＣＨＩＲ９９０２１の代わりに他のＷｎｔアゴニストを用いる場合は、ＣＨＩＲ９９０２１を参照として同等の効果を示す濃度を設定することができる。
　ＲＯＣＫ阻害物質は、Ｒｈｏキナーゼ（ＲＯＣＫ）の機能を抑制できるものである限り特に限定されないが、本発明においては、例えば、Ｙ２７６３２、Ｆａｓｕｄｉｌ　ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ、ＧＳＫ　４２９２８６、ＧＳＫ　２６９９６２、ＡＳ　１８９２８０２、Ｈ　１１５２　ｄｉｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ、又はＨＡ　１１００　ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅを用いることができ、好ましくは、Ｙ２７６３２又はＦａｓｕｄｉｌ　ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ、より好ましくは、Ｙ２７６３２を用いることができる。Ｙ２７６３２を用いる場合は、濃度は、１μＭ～１０００μＭ、好ましくは１μＭ～２００μＭ、より好ましくは１μＭ～１００μＭ、さらに好ましくは約１０μＭである。工程Ａにおいて、Ｙ２７６３２の代わりに他のＲｏｃｋ阻害剤を用いる場合は、Ｙ２７６３２を参照として同等の効果を示す濃度を設定することができる。
　工程Ａの培養時間は、用いる細胞の起源によっても異なるが、通常、約１２時間～約４８時間、好ましくは約１８時間～約３０時間、より好ましくは約２１時間～約２７時間、さらに好ましくは約２４時間である。工程Ａにおける培養時間をこの範囲にすることにより、効率良く、ＮＰＣｓをＰＡへと分化させることができる。
工程Ｂ：ＰＡから腎小体（ＲＶ）への誘導
　工程Ｂは、ＰＡ細胞又はその集団を、Ｆｇｆ及び場合によりＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含む培地で培養する工程である。本明細書では、この工程で得られる細胞又は細胞集団を、「腎小体（renal vesicle）」と称する。
　工程Ｂ又は工程Ｃの少なくともいずれかに含まれるＴＧＦβシグナル経路阻害物質とは、ＴＧＦβの受容体への結合からＳＭＡＤへと続くシグナル伝達を阻害する物質として定義され、例えば、ＴＧＦβの受容体であるＡＬＫファミリーへの結合を阻害する物質、ＡＬＫファミリーによるＳＭＡＤのリン酸化を阻害する物質などの多数の物質が報告されている。
　本発明の工程Ｂにおいて用いられるＴＧＦβシグナル経路阻害物質としては、所望の細胞への誘導効果が得られる限り特に限定されるものではないが、ＡＬＫ阻害物質である、ＳＢ４３１５４２（ＣＡＳ番号：３０１８３６－４１－９）又はＡ８３－０１（ＣＡＳ番号：９０９９１０－４３－６）、Ｄ４４７６、ＧＷ７８８３８８、ＬＹ３６４９４７、Ｒ２６８７１２、ＲｅｐＳｏｘ、ＳＢ５０５１２４、ＳＢ５２５３３４、又はＳＤ２０８をあげることができ、ＳＢ４３１５４２又はＡ８３－０１が好ましく、ＳＢ４３１５４２がより好ましい。
　工程ＢにおいてＴＧＦβシグナル経路阻害物質としてＳＢ４３１５４２を用いる場合、工程Ｂの培地中のＳＢ４３１５４２の濃度は、用いる細胞の由来などによっても異なるが、通常、１μＭ～５００μＭ、好ましくは、２μＭ～１００μＭ、より好ましくは３μＭ～５０μＭであり、工程Ａにおいてマウス由来のネフロン前駆細胞を用いた場合には、約２５μＭが特に好ましく、工程Ａにおいてヒト多能性幹細胞由来のネフロン前駆細胞を用いた場合には、約５μＭが特に好ましい。工程Ｂにおいて、上記濃度のＳＢ４３１５４２を添加することにより、効率良く、ＰＡを近位極性を有するRVへと分化させることができる。工程Ｂにおいて、ＳＢ４３１５４２の代わりに他の成分を用いる場合は、ＳＢ４３１５４２を参照として同等の効果を示す濃度を設定することができる。　
　線維芽細胞成長因子（Ｆｇｆ）は、例えば、Ｆｇｆ２，Ｆｇｆ４、Ｆｇｆ７、Ｆｇｆ９、又はＦｇｆ２０をあげることができ、これらは、公知のアミノ酸配列情報に基づいて自体公知の方法を参照して作製してもよく、Ｒ＆Ｄ　Ｓｙｓｔｅｍｓなどから組換えヒトＦｇｆタンパク質を購入したものを用いることもできる。用いるＦｇｆは、Ｆｇｆ２，Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０が好ましく、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０がより好ましく、Ｆｇｆ９がさらに好ましい。培地中のＦｇｆ９の濃度は、培養条件などによっても異なるが、例えば、１ｎｇ～５００ｎｇ／ｍＬ、好ましくは２ｎｇ～２００ｎｇ／ｍＬ、より好ましくは５ｎｇ～１００ｎｇ／ｍＬ、さらに好ましくは約１０ｎｇ／ｍＬである。Ｆｇｆ９に代わりに他のＦｇｆを用いる場合は、Ｆｇｆ９を参照として同等の効果を示す濃度を設定することができる。
　工程Ｂの培地は、さらに約１μＭ以下の濃度のＷｎｔアゴニストを含んでもよい。用いることができるＷｎｔアゴニストは、工程Ａにおいて記載したＷｎｔアゴニストと同様であるが、好ましくはＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１である。
　工程ＢにおいてＷｎｔアゴニストとしてＣＨＩＲ９９０２１を用いる場合、培地中のＣＨＩＲ９９０２１の濃度は、用いる細胞の起源によっても異なるが、約１μＭ以下、好ましくは約０．７μＭ以下、より好ましくは約０．５μＭである。ＣＨＩＲ９９０２１に代わりに他のＷｎｔアゴニストを用いる場合は、ＣＨＩＲ９９０２１を参照として同等の効果を示す濃度を設定することができる。
　ヒトｉＰＳ細胞由来のネフロン前駆細胞から工程Ａにより誘導したＰＡを用いる場合は、工程Ｂ又は工程Ｃのいずれかにおいて培地にＷｎｔシグナル阻害物質を添加してもよく、それによりポドサイトの誘導効率を向上させることができるが、工程Ｂ及び工程Ｃの両者の培地にＷｎｔシグナル阻害物質を添加することがより好ましい。
　Ｗｎｔシグナル阻害物質としては、これに限定されないが、例えば、ＩＷＲ－１又はＩＷＰ－２、ＩＷＰ－３、ＩＷＰ－４、ＸＡＶ９３９、ＦＨ５３５、Ｃ５９、ＶＳ－５０７、ＣＣＴ０３１３７４をあげることができり、好ましくはＩＷＲ－１、ＩＷＰ－２、又はＸＡＶ９３９である。
　工程ＢにおいてＷｎｔシグナル阻害物質としてＩＷＲ－１を用いる場合、工程Ｂの培地中のＩＷＲ－１の濃度は、用いる細胞の由来などによっても異なるが、通常、０．１μＭ～５０μＭ、好ましくは、０．２μＭ～１０μＭ、より好ましくは０．５μＭ～５μＭ、さらに好ましくは約１μＭ～約２μＭである。ＩＷＲ－１に代わりに他のＷｎｔシグナル阻害物質を用いる場合は、ＩＷＲ－１を参照として同等の効果を示す濃度を設定することができる。
　ヒトｉＰＳ細胞由来のネフロン前駆細胞から工程Ａにより誘導したＰＡを用いる場合はまた、工程Ｂの培地にレチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログを添加することが好ましい。
　工程Ｂにおいて用いることのできるレチノイン酸としては、全トランスレチノイン酸（ＡＴＲＡ）が例示され、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈなどから購入することができる。また、天然のレチノイン酸が有する機能を保持しながら人工的に修飾されたレチノイン酸も使用され得る。
　工程Ｂにおいてレチノイン酸としてＡＴＲＡを用いる場合、培地中のＡＴＲＡの濃度は、培養条件などによっても異なり、所望の細胞が得られる限り特に限定されるものではないが、通常、１ｎＭ～１００μＭ、好ましくは、１０ｎＭ～５０μＭ、より好ましくは１００ｎＭ～２０μＭ、さらに好ましくは約１μＭ～約１０μＭである。
　工程Ｂにおいては、レチノイン酸の代わりにレチノイン酸アナログを用いることができる。レチノイン酸アナログとしては、例えば、ＡＧＮ１９３１０９、ＡＭ５８０、ＡＭ８０、ＢＭＳ４５３、ＢＭＳ１９５６１４、ＡＣ　２６１０６６，ＡＣ５５６４９，Ｉｓｏｔｒｅｔｉｎｏｉｎをあげることができ、特にＡＧＮ１９３１０９が好ましい。工程Ｂにおいて、ＲＡの代わりにＲＡアナログを用いる場合は、ＲＡを参照として同等の効果を示す濃度を設定することができる。
　工程Ｂの培養時間は、用いる細胞の起源によっても異なるが、通常、約１２時間～約４８時間、好ましくは約１８時間～約３０時間、より好ましくは約２１～約２７時間、さらに好ましくは約２４時間である。工程Ｂにおける培養時間をこの範囲にすることにより、効率良く、ＰＡをＲＶへと分化させることができる
工程Ｃ：ＲＶからポドサイトへの誘導
　工程Ｃは、ＲＶ細胞又はその集団を、Ｆｇｆ及び場合によりＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含む培地で培養してポドサイトを誘導する工程である。
　工程Ｃにおいて用いることができるＴＧＦβシグナル経路阻害物質は、工程Ｂにおいて記載したＴＧＦβシグナル経路阻害物質と同様であるが、好ましくはＳＢ４３１５４２又はＡ８３－０１、より好ましくはＳＢ４３１５４２である。
　工程ＣにおけるＴＧＦβシグナル経路阻害物質の培地中の濃度は、工程Ｂにおいて記載した内容と同様の濃度を用いることができる。
　工程Ｃにおいて用いることができるＦｇｆは、工程Ｂにおいて記載したＦｇｆと同様であるが、好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９である。また、工程ＣにおけるＦｇｆの培地中の濃度は、工程Ｂにおいて記載した内容と同様の濃度を用いることができる
　工程Ｃの培地は、さらに約１μＭ以下の濃度のＷｎｔアゴニストを含んでもよい。用いることができるＷｎｔアゴニストは、工程Ａにおいて記載したＷｎｔアゴニストと同様であるが、好ましくはＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１である。
　工程ＣにおいてＷｎｔアゴニストとしてＣＨＩＲ９９０２１を用いる場合、培地中のＣＨＩＲ９９０２１の濃度は、用いる細胞の起源によっても異なるが、約１μＭ以下、好ましくは約０．７μＭ以下、より好ましくは約０．５μＭである。ＣＨＩＲ９９０２１に代わりに他のＷｎｔアゴニストを用いる場合は、ＣＨＩＲ９９０２１を参照として同等の効果を示す濃度を設定することができる。
　ヒトｉＰＳ細胞由来のネフロン前駆細胞から工程Ａにより誘導したＰＡを用いてポドサイトを誘導する場合は、工程Ｂ又は工程Ｃのいずれかにおいて培地にＷｎｔシグナル阻害物質を添加してもよいが、工程Ｂ及び工程Ｃの両者の培地にＷｎｔシグナル阻害物質を添加することが好ましい。
　工程Ｃにおいて用いるＷｎｔシグナル阻害物質は、工程Ｂにおいて記載したＷｎｔシグナル阻害物質と同様であるが、好ましくは、ＩＷＲ－１である。また工程Ｃにおいて培地にＷｎｔシグナル阻害物質を添加する場合は、その濃度は、工程Ｂにおいて記載したものと同様である。
　ヒトｉＰＳ細胞由来のネフロン前駆細胞から工程Ａ及び工程Ｂにより誘導したＲＶを用いる場合は、工程Ｃの培地にレチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログを添加してもよい。工程Ｃにおいて用いるＲＡ又はＲＡアナログは、工程Ｂにおいて記載したＲＡ又はＲＡアナログと同様であり、また工程Ｃにおいて培地にＲＡ又はＲＡアナログを添加する場合は、その濃度は、工程Ｂにおいて記載したものと同様である。
　工程Ｃの培養時間は、用いる細胞の起源によっても異なるが、通常、約２日～約９日間、好ましくは約３日～約８日間である。工程Ｃの培養時間は、マウスの細胞を用いる場合は、通常、約２日～約１０日間、好ましくは約３日～約７日間、より好ましくは約４日間であり、ヒトの細胞を用いる場合は、通常、約５日～約３０日間、好ましくは約５日～約２０日間、より好ましくは６日～１５日間、さらに好ましくは約７日～約１０日間である。工程Ｃにおける培養時間をこの範囲にすることにより、効率良く、ＲＶをポドサイトへと分化させることができる
　上記したように、ヒトｉＰＳ細胞由来のネフロン前駆細胞を用いた場合は、本発明は、以下の工程：
工程Ａ：ネフロン前駆細胞又はその集団を、Ｗｎｔアゴニスト（好ましくは、ＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１）及びＲＯＣＫ阻害物質（好ましくはＹ２７６３２）を含む培地で培養する工程、
工程Ｂ：工程Ａで得られた細胞又はその集団を、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質（好ましくは、ＳＢ４３１５４２）、Ｗｎｔシグナル阻害物質（好ましくはＩＷＲ－１）、ＲＡ又はＲＡアナログ、及びＦｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）を含む培地で培養する工程、及び、
工程Ｃ：工程Ｂで得られた細胞又はその集団を、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質（好ましくは、ＳＢ４３１５４２）、Ｗｎｔシグナル阻害物質（好ましくはＩＷＲ－１）、ＲＡ又はＲＡアナログ、及びＦｇｆ（好ましくは、Ｆｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくは、Ｆｇｆ９）を含む培地で培養する工程、
但し、
工程Ｂにおける培地がＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含む場合は工程Ｃにおける培地はＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含まなくてもよく、また、工程Ｃにおける培地がＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含む場合は工程Ｂにおける培地はＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含まなくてもよく、
工程Ｂにおける培地がＷｎｔシグナル阻害物質を含む場合は工程Ｃにおける培地はＷｎｔシグナル阻害物質を含まなくてもよく、また、工程Ｃにおける培地がＷｎｔシグナル阻害物質を含む場合は工程Ｂにおける培地はＷｎｔシグナル阻害物質を含まなくてもよく、
工程Ｂにおける培地がＲＡ又はＲＡアナログを含む場合は工程Ｃにおける培地はＲＡ又はＲＡアナログを含まなくてもよい、
を含む、ポドサイトを分化誘導する方法でもある。
　本発明において用いる培地は、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地として調製することができる。基礎培地の例としては、所望の細胞が得られる限り限定されるものではないが、ＤＭＥＭ（ダルベッコ改変イーグル培地）、ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地、ＧＭＥＭ（グラスゴーＭＥＭ）培地、Ｈａｍ’ｓ　Ｆ１２培地、ＩＭＤＭ（イスコブ改変ダルベッコ培地）、αＭＥＭ（イーグル最小必須培地　α改変型）など、及びこれらの混合物が挙げられる。
　本発明において用いる培地は、血清が含有されていてもよいし、あるいは無血清でもよい。本発明において用いる培地は、必要に応じて、例えば、アルブミン、ＩＴＳ（インスリン、トランスフェリン、セレニウム）、Ｎ－２サプリメント（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）、Ｂ－２７（登録商標）サプリメントマイナスビタミンＡ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）、２－メルカプトエタノール、１－チオグリセロール、アミノ酸、Ｌ－グルタミン、非必須アミノ酸、アスコルビン酸、ペニシリン・ストレプトマイシンを含む抗生物質などの少なくとも１以上の培地添加物も含有し得る。
培地キット
本発明の一つの態様は、ネフロン前駆細胞からポドサイトを誘導するための培地キットである。培地キットは、分化誘導培地、及び、下記（１）～（３）のそれぞれの成分を含む３つの培地からなる。
（１）Ｗｎｔアゴニスト及びＲＯＣＫ阻害物質、（２）ＴＧＦβシグナル経路阻害物質及びＦｇｆ、及び（３）ＴＧＦβシグナル経路阻害物質及びＦｇｆ。
　上記（２）はさらに、Ｗｎｔシグナル阻害物質、及び、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログを含んでもよく、上記（３）はさらに、Ｗｎｔシグナル阻害物質、及び、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログを含んでもよいが、ネフロン前駆細胞が、ヒトｉＰＳ由来の場合は、これらの成分を含むことが好ましい。
　上記（１）から（３）の成分は、それぞれ別の容器に保存されるのが好ましい。よって、本発明の一態様である培地キットは、分化誘導培地、及び上記（１）～（３）のそれぞれの成分を含む３つの容器、からなるキットを含む。
　本発明の培地キットにおいて用いられるＷｎｔアゴニスト、ＲＯＣＫ阻害剤、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質、Ｆｇｆ、Ｗｎｔシグナル阻害物質、及び、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログは、本発明のポドサイトの誘導方法において記載されたものと同様の成分である。Ｗｎｔアゴニストは、好ましくはＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１であり、ＲＯＣＫ阻害剤は、好ましくはＹ２７６３２であり、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質は、好ましくはＳＢ４３１５４２であり、Ｆｇｆは、好ましくはＦｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくはＦｇｆ９であり、Ｗｎｔシグナル阻害物質は好ましくはＩＷＲ－１である。
　上記各成分であるＷｎｔアゴニスト、ＲＯＣＫ阻害剤、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質、Ｆｇｆ、Ｗｎｔシグナル阻害物質、及び、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログは、本発明のポドサイトの誘導方法において用いられる濃度になるように培地に添加し使用することができる。
　上記各成分は、成分のみがそれぞれの容器に保存された状態で提供されてもよく、また、それらの成分を含む液体培地又は粉末培地がそれぞれの容器に保存された状態で提供さてもよい。
　本発明の上記培地キットはさらに、多能性幹細胞からネフロン前駆細胞を誘導するための培地又はそのキットと組み合わせてもよく、そのようなキットの組合せも本発明の一部である。
ポドサイトの製造
　本発明の一つの態様は、上記の３段階の誘導工程を含む哺乳動物由来のｉＰＳ細胞からのポドサイトの細胞集団の製造方法である。よって、本発明は以下の態様を含むものである。
（ｉ）哺乳動物由来のｉＰＳ細胞（好ましくはヒトｉＰＳ細胞）又はその集団からネフロン前駆細胞又はその集団を分化誘導する工程、
（ｉｉ）工程（ｉ）で得られたネフロン前駆細胞又はその集団を、Ｗｎｔアゴニスト及びＲＯＣＫ阻害物質を含む培地で培養する工程、
（ｉｉｉ）工程（ｉｉ）で得られた細胞又はその集団を、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質、Ｗｎｔシグナル阻害物質、Ｆｇｆ、及び場合によりさらにレチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログを含む培地で培養する工程、及び、
（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）で得られた細胞又はその集団を、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質Ｗｎｔシグナル阻害物質、Ｆｇｆ、及び場合によりさらにレチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログを含む培地で培養する工程、
但し、
工程（ｉｉｉ）における培地がＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含む場合は工程Ｃにおける培地はＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含まなくてもよく、また、工程Ｃにおける培地がＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含む場合は工程Ｂにおける培地はＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含まなくてもよく、
工程（ｉｉｉ）における培地がＷｎｔシグナル阻害物質を含む場合は工程（ｉｖ）における培地はＷｎｔシグナル阻害物質を含まなくてもよく、また、工程（ｉｖ）における培地がＷｎｔシグナル阻害物質を含む場合は工程（ｉｉｉ）における培地はＷｎｔシグナル阻害物質を含まなくてもよく、
工程（ｉｉｉ）における培地がＲＡ又はＲＡアナログを含む場合は工程（ｉｖ）における培地はＲＡ又はＲＡアナログを含まなくてもよい、
を含む、ｉＰＳ細胞からのポドサイトの細胞集団を製造する方法である。
　上記製造方法において用いられるＷｎｔアゴニスト、ＲＯＣＫ阻害物質、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質、Ｗｎｔシグナル阻害物質、Ｆｇｆ、及びレチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログは、本発明のポドサイトの誘導方法において記載されたものと同様である。Ｗｎｔアゴニストは、好ましくはＧＳＫ－３β阻害物質、より好ましくはＣＨＩＲ９９０２１であり、ＲＯＣＫ阻害物質は、好ましくはＹ２７６３２であり、Ｆｇｆは、好ましくはＦｇｆ２、Ｆｇｆ９又はＦｇｆ２０、より好ましくＦｇｆ９であり、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質は、好ましくはＳＢ４３１５４２であり、Ｗｎｔシグナル阻害物質は好ましくはＩＷＲ－１である。
　上記各成分であるＷｎｔアゴニスト、ＲＯＣＫ阻害物質、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質、Ｆｇｆ、Ｗｎｔシグナル阻害物質、及び、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログの培地中の濃度、及びそれらの成分が含む培地での培養期間は、本発明のポドサイトの誘導方法における記載をそのまま適用できる。
　また、上記製造方法における工程（ｉ）は、本発明のポドサイトの誘導方法に関連して記載された、ｉＰＳ細胞からのネフロン前駆細胞の誘導に関する記載がそのまま適用できる。
　本発明のポドサイトの製造方法を用いて製造されたポドサイトの細胞集団は、実質的にポドサイトである細胞から構成される細胞集団を意味し、具体的には、細胞集団を構成する全細胞の、約４０%以上、好ましくは約５０％以上、より好ましくは約６０％以上、さらに好ましくは約７０％以上、よりさらに好ましくは約８０％以上、最も好ましくは約９０％以上がポドサイトから構成される細胞集団をいう。
　細胞集団中の細胞がポドサイトであるか否か及びその割合は、ポドサイトの細胞マーカーを用いて公知の方法により確認できる。細胞マーカーとしては、これに限定されないが、例えば、ＮＰＨＳ１、ＮＰＨＳ２、ＷＴ１、ＭＡＦＢ、又はＳＹＮＰＯをあげることができる。構成割合の検出は、例えば、セルソーターや免疫染色を用いて測定できる。
　　本発明のポドサイトの製造方法を用いて製造されたポドサイトは、真正のポドサイト（ヒト成人由来のポドサイト）に比べ、ＮＰＨＳ１、ＮＰＨＳ２、ＷＴ１、ＭＡＦＢ及びＳＹＮＰＯの発現に関して同様の発現を有するという特徴をもつ。「ＮＰＨＳ１、ＮＰＨＳ２、ＷＴ１、ＭＡＦＢ及びＳＹＮＰＯの発現に関して同様の発現」とは、これらの５つの遺伝子の、少なくとも２つ、好ましくは少なくとも３つ、より好ましくは４つ、さらに好ましくは全てについて、遺伝子及び／又はタンパク質の発現に関して同等に発現していることを意味する。同等に発現とは、ヒト成人由来ポドサイトの遺伝子及び／又はタンパク質の発現と比べ、約４０%以上、好ましくは約５０％以上、より好ましくは約６０％以上、さらに好ましくは約７０％以上、よりさらに好ましくは約８０％以上、最も好ましくは約９０％以上の発現を示すことをいう。
ポドサイトを用いた評価又はスクリーニング方法
　本発明の一つの態様は、上記のポドサイトの誘導方法又は製造方法を用いて製造したポドサイトを用いた評価又はスクリーニングのための細胞モデルであり、また、そのような細胞モデルを用いた評価又はスクリーニング方法である。
　本発明の評価方法は、上記のポドサイトの誘導方法又は製造方法を用いて製造したポドサイト又はその細胞集団を、目的とする試験物質とともに培養し、ポドサイト細胞への影響を確認することを含む方法である。ポドサイト細胞への影響は、これに限定されないが、例えば、細胞の増殖、細胞の生存、細胞の障害、タンパク質発現量、遺伝子発現量、アルブミン取り込み能、アルブミンろ過能、オートファジー活性又は細胞内伝達シグナルからなる群から選ばれる少なくとも一つ以上の項目を測定することにより評価でできる。これにより、目的の物質のポドサイト細胞への毒性評価が可能となる。用いる試験物質は、特に制限がなく、例えば、低分子化合物、中分子化合物、高分子化合物、アミノ酸、ペプチド、タンパク質、天然抽出物をあげることができる。
　上記評価項目の測定は、公知の方法を適宜参照して行うことができる。またそれらの評価項目の測定のための試薬やキットも市販されており、それらを制限なく使用することができる。
　本発明の評価方法を用いることにより、これに限定されないが、例えば、腎障害を与える可能性がある薬剤の毒性を評価することができる。
　本発明のスクリーニング方法としては、ポドサイト障害を治療又は回復させる物質をスクリーニングする方法をあげあることができる。上記のポドサイトの誘導方法又は製造方法を用いて製造したポドサイト又はその細胞集団を用いて、以下の工程を行うことにより候補物質をスクリーニングできる。
（ｘ）ポドサイト障害性を示す薬剤及び試験物質の存在下で培養する工程、及び
（ｙ）ポドサイト細胞の生存又は増殖を測定する工程。
　前記工程（ｘ）におけるポドサイト細胞集団の培養は、（ｘ－１）ポドサイト障害性を示す薬剤及び試験物質が同時に存在する環境下でポドサイト細胞集団を培養してもよく、また、（ｘ－１）ポドサイト障害性を示す薬剤の存在下でポドサイト細胞集団を培養し、次いで、試験物質の存在下で障害ポドサイト細胞集団を培養してもよい。後者の場合は、ポドサイト障害性を示す薬剤を除去した後に試験物質を添加しても、又は、除去せずに試験物質を添加してもよい。
　ポドサイト障害性を示す薬剤としては、これに限定されないが、例えば、ピューロマイシンアミノヌクレオシド、ドキソルビシン、アンジオテンシンＩＩ、抗ネフリン抗体をはじめとする抗ポドサイト抗体をあげることができ、好ましくはピューロマイシンアミノヌクレオシド、又はドキソルビシンである。
　また、試験物質は、特に制限がなく、例えば、低分子化合物、中分子化合物、高分子化合物、アミノ酸、ペプチド、タンパク質、天然抽出物をあげることができる。
　本発明のスクリーニング方法を用いることにより、これに限定されないが、例えば、ポドサイトに対し保護的に作用する薬剤の探索が可能となる。
また、本発明のポドサイトの誘導方法又は製造方法を用い、ポドサイトに関連する疾患を有する患者由来のｉＰＳ細胞からポドサイトの細胞集団を作製することもできる。このようにして作製したポドサイトの細胞集団を用いることにより、ポドサイトに関連する疾患を治療するための薬剤の評価やスクリーニングが可能である。このような評価方法又はスクリーニング方法も本発明の一部である。
腎臓及び糸球体疾患の治療
　本発明の一つの態様は、上記のポドサイトの誘導方法又は製造方法を用いて製造したポドサイトを用いた、腎臓及び／又は糸球体の疾患を治療又は予防する方法である。よって本発明は、（Ｉ）上記のポドサイトの誘導方法又は製造方法で作製したポドサイトの細胞集団を、疾患に罹患する対象の腎臓組織の一部に移植すること及び（ＩＩ）移植したポドサイトの細胞集団中の少なくとも一部の細胞が、腎組織の少なくとも一部の糸球体内へと移動してそこにとどまり、それにより、腎臓組織を再生して腎臓及び／又は糸球体の疾患を治療すること、を含む方法でもある。
　疾患に罹患した対象は、哺乳動物であれば特に限定されないが、例えば、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ヒツジ、ウシ、ウマ、ヤギ、サル又はヒト等をあげることができ、好ましくはヒトである。
　上記（Ｉ）におけるポドサイトの腎臓組織の一部への移植は、ポドサイト細胞集団は、ポドサイト移植を補助する他の細胞や細胞の足場とともに移植することもできる。他の細胞としては、これに限定されないが、例えば、間質細胞や血管内皮細胞をあげあることができる。細胞の足場としては、公知の又は市販のものを適宜利用できるが、例えば、生体適合性の物質（バイオマテリアルともいう）で構成された足場をあげることができる。バイオマテリアルとしては、これに限定されないが、例えば、絹フィブロイン、ポリエチレンオキシド、ポリエチレングリコール、フィブロネクチン、ケラチン、ポリアスパラギン酸、ポリリジン、キチン、ヒアルロン酸、ペクチン、ポリカプロラクトン、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリヒドロキシアルカノエート、デキストラン、ＰＨＡ、コラーゲン、キトサン、アルギン酸塩、及び他の生体適合性のポリマーをあげることができる。
　本発明により誘導したポドサイトは、腎オルガノイドとともに又はオルガノイドの一部として移植することもできる。腎オルガノイドとは、糸球体および尿細管からなる分化したネフロン、ネフロン前駆細胞、間質細胞と共に、分化したネフロン同士を互いに接続する集合管の樹状分岐構造を有する、高次構造をもつ腎臓様組織である。
　上記腎臓及び糸球体の疾患としては、これに限定されないが、例えば、ポドサイト障害を伴う病態、ネフローゼ症候群、腎硬化症、糖尿病性腎症、慢性糸球体腎炎、又はそれらの組合せ、或いはそれらの疾患の合併症をあげることができ、好ましくは、ポドサイト障害を伴う病態である。
　以下、実施例により、本発明を具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
（材料及び方法）
マウス
　MafB-GFPノックインマウス及びSix2-GFP-Creトランスジェニックマウスは、筑波大学の高橋智博士及び南カルフォルニア大学のアンドリュー・マクマホン博士より供与を受けた。マウスは、12時間の光サイクルで、CE-2放射線滅菌飼料を与え、プラスチックケージ内で飼育した。全ての解析は最低限3匹の同腹子を用いて行った。胚性期の解析は、交配した雌に腟栓が確認された日の正午を胎生期（E）0.5日とみなした。全ての動物実験は、熊本大学医学部動物実験委員会の承認を得たプロトコルに従って行った。
マウスネフロン前駆細胞（NPCs）からのポドサイト誘導
　E15.5のMafB-GFP胚から後腎を単離し、鉗子を用い、PBS中で細かく刻み、0.25%トリプシン-EDTA中で、37℃、8分間インキュベートして解離させた。その後、氷上で細胞を抗Robo2抗体及び抗Pdgfrβ抗体を用いて一次抗体染色を行い、次いで二次抗体染色を行った後に、FACSを用いてRobo2-high/Pdgfrβ-/Mafb-GFP- 集団を選別した。Six2-GFP-Cre胚については、NPCsを、Six2-GFP+細胞又はRobo2-high/Pdgfrβ-/Podocalyxin- 細胞として選別した。96-wellの低細胞接着性Ｕ底プレートにて、所定の濃度のCHIR99021、及びY27632（10μM）を添加した分化培地（150μL）に対し、100,000個のNPCsを播種した。細胞を遠心で底に張り付かせた後、5％ CO2インキュベーター中で、37℃で培養した。最初のCHIR99021による誘導の後、凝集した細胞を、Fgf9（10μg/mL）を添加した無血清分化培地で満たしたトランスウェルインサート上に移し、以下の成長因子又は阻害剤とともに培養した：CHIR99021（2μM）、IWR-1（2μM）、アクチビンA（10ng/mL）、SB431542（25μM）、レチノイン酸（10μM）、BMS493（10μＭ）。培地を2日毎に交換し、6日目に、誘導された組織を分析した。無血清の分化培地は、1% (v/v)のInsulin-Transferrin-Selenium及び1% (v/v)のペニシリン・ストレプトマイシンを添加したDMEM/F12培地を用いた。
細胞培養
　健常な女性ドナーからの201B7 hiPSセルラインは、StemFit AK02N培地中で、iMatrix-511 silk上で維持した。細胞は37℃にて5％CO2で培養し、6-7日毎に継代した。培地は、2、4、5、及び／又は6日で交換した。NPHS1-GFPノックインhiPSセルラインは、過去の報告（Shamin et al. J. Am. Soc. Nephrol. 27, 1778-1791, 2016）に従って作製し、同様に維持した。ヒト不死化ポドサイト細胞株（セルライン）は、Bristol Universityから購入した。細胞は、10％FBSを添加したRPMI培地で、33℃にて5％CO2で増殖させ、4-5日で継代した。ポドサイト表現型への誘導は、細胞を37℃、5％CO2で14日間培養により行った。
ヒトiPS細胞（hiPSC）由来のネフロン前駆細胞（NPCs）からのポドサイトの誘導
　太口らの報告（非特許文献６及び非特許文献９）従い、hiPSCからNPCを含んだスフェロイドを誘導した。誘導したスフェロイドを、Accumaxを用いて、37℃にて8分間インキュベートして単一細胞に解離させた。解離した細胞を抗ITGA-8抗体及び抗PDGFRa抗体で30分間、氷上で一次抗体染色し、次いで2次抗体染色を行った後に、FACSを用いてNPCsをITG8+/PDGFRa-集団として選別した。96-wellの低細胞接着性Ｕ底プレートにて、CHIR99021（3μM）及びY27632（10μM）を添加した無血清分化培地（150μL）に対し、50,000～100,000個のNPCsを播種した。細胞を遠心で底に張り付かせた後、5％CO2インキュベーター中で、37℃で培養した。24時間後、凝集した細胞を、Fgf9（10μg/mL）を添加した無血清分化培地で満たしたトランスウェルインサート上に移し、IWR-1（2μM）、SB431542（5μM）及びレチノイン酸（10μM）を含んだSTEP 2因子（上記工程Ｂ因子）を添加した培地で培養した。培養の48時間後、分化した細胞を、IWR-1（2μM）及びSB431542（5μM）を含んだSTEP 3因子（上記工程Ｃ因子）を添加した培地に移した。培地を3日毎に交換した。Day9-12日目に、誘導したポドサイトを回収し分析した。
フローサイトメトリー解析
　マウス又はヒトNPCsから誘導した組織を、0.25%トリプシン-EDTAで8分間処理して解離させた。正常マウス血清を用いてブロッキングし、1% BSA及び0.035 % NaHCO3を含む1×HBSS緩衝液中で、30分間で染色を行い、次いで2次抗体で10分間染色を行った。FACSを用いて染色された細胞を解析した。用いた抗体の情報を以下の表に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001

ヒト成人のポドサイトの採取
　熊本大学大学院生命科学研究部の倫理委員会の承認に従い、インフォームドコンセントを得た上で、３人の腎癌患者から摘出された腎組織のうち、正常部位からヒト成体腎組織を得た。患者は、49歳女性、69歳男性及び80歳男性である。全ての患者が、正常な腎機能及び正常な尿所見を示した。患者から摘出された腎組織の正常部位は、摘出後すぐに、氷上で、10%FBSを含有する高グルコースDMEMに浸漬した。糸球体を単離し、酵素混合液（コラゲナーゼXI：1mg/mL、ディスパーゼ：2.4U/mL）を用いて消化し、次いで、0.25%トリプシン－EDTAで消化した。細胞の解離処理後に、RBC溶解緩衝液を用いて、赤血球を破壊した。その後、抗ヒトNephrin抗体、及び抗ヒトPodocalyxin抗体で一次抗体染色を行い、次いで2次抗体染色を行った後に、FACSを用いて、ヒト正常ポドサイトを、Nephrin+/Podocalyxin+集団として単離した。
定量的RT-PCR及びRNA配列分析
　RNeasy Plus Micro Kit（Qiagen）を用いて全RNAを単離し、ランダムプライマー及びSuperscript VILO cDNA synthesis kit（Life Technology）を用いて逆転写反応を行った。Dice Real Time System Thermal Cycler（Takara Bio）及びThunderbird SYBR qPCR Mix（Toyobo）を用いて定量的PCRを実行した。用いたプライマー（フォワードプライマー及びリバースプライマー）は、以下の遺伝子に対応するものである。マウス：b-Act、Six2、Pax2、Sall1、Cited1、Robo2、Lhx1、Pax8、Cdh1、WT1、MafB、Foxc2、Pou3f3、Dkk1、Sox9、Nphs1、Nphs2、Cldn1、Lrp2、Slc34a1、Cdh6；ヒト：B-ACT、NPHS1、NPHS2、WT1、SYNPO。全てのサンプルについて、β－アクチン発現により標準化した。
免疫組織化学分析
　サンプルを10%ホルマリンで固定し、パラフィン包埋して、6mm厚切片を得た。pH6.0のクエン酸緩衝液で抗原回復を行った。切片を1％BSA含有PBSでブロックし、1次抗体とともに4℃で一晩インキュベートした。Alexa488, 568, 594, 633又は647とコンジュゲートした2次抗体で染色した。核は、DAPIで染色した。共焦点顕微鏡で蛍光イメージを撮像した。用いた抗体情報を以下に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002

電子顕微鏡撮像
　免疫電子顕微鏡による観察を行った。抗体として、NephrinのN-末端ドメインに対する抗体を用いた。調製した切片を抗体と一晩インキュベートした後、12nmの金粒子と結合した2次抗体とインキュベートした。免疫染色後切片を固定し、JEM1230透過型電子顕微鏡（JEOL）を用いて撮像した。
（結果）
実施例１：マウス胚腎臓からのネフロン前駆細胞の精製
　NPCsからポドサイトへの分化に必要なシグナルを分析するために、マウス胚腎臓から精製したNPCsからネフロン上皮及びポドサイトへの分化を検出できる培養系を確立した。従来の報告によると、NPCsは、Robo2を発現し、Pdgfrbは陰性である。そこで、Six2-GFPトランスジェニックマウスを用い、フローサイトメトリー解析を行い、E15.5の腎臓のRobo2-high/Pdgfrb- フラクションが、Six2-GFP+ NPCsであることを確認した。加えて、Robo2-high/Pdgfrb- フラクションに存在するポドサイトを除去するために、Podocalyxin+ フラクションを除外して、Six2-GFP+ NPCsを高純度で単離する方法を確立した。ポドサイト誘導を定量評価するため、分化したポドサイトのみでGFP発現を示すMafB-GFPノックインマウス（MafB-GFPマウス）を用いた。Robo2-high/Pdgfrb-/MafB-GFP- 細胞分画は、予想通り、Six2, Pax2, Sall, 及びCited1などのNPC特異的遺伝子をSix2-GFP+ 細胞と同等レベルで発現しており、NPCsを高純度で単離できていることを確認した。結果を図２に示す。
実施例２：MET及びポドサイトへの分化に必須のWntシグナルの検討
　インビボ及びインビトロにおいて、Wntシグナルが、NPCsのMETに必要であることが報告されている（Stark et al. Nature 372, 679-83, 1994、Kispert et al. Development 125, 4225-4234, 1998, Carrol et al. Dev. Cell 9, 283-292, 2005、Kuure et al. J. Am. Soc. Nephrol. 18, 1130-9, 2007）。しかし、Wntシグナルの強度や期間が、ポドサイトへの分化に与える影響については不明であった。
　そこでまず、NPCsからの間葉上皮転換を引き起こすために必要なWntシグナルの濃度と期間を検討した。実施例１で調製したNPCsを用いて、WntアゴニストとしてCHIR99021（CHIR）を用い、1～10μMの濃度にて、12～48時間処理し、6日目に分析を行った。概要を図３に示す。初期のCHIR処理の後は、組織増殖及び生存を維持するために、基本培地として0.5μMのCHIRを継続的に添加した。NPCsを、3～5μMのCHIR、及び、24～48時間の組合せで処理することによって、METがおこり、上皮化したネフロン組織形成をもたらすことが判った。顕微鏡観察の結果を図４に示す。Mafb-GFP+ 細胞を確認したところ、図５に示されるように、3μMの24時間のCHIR処理が顕著にMafb-GFP+ のポドサイトを誘導した一方、5μM及び48時間の処理は殆どポドサイトを誘導しなかった。このことから、マウス胚腎臓由来のNPCsを用いた場合は、3μMのCHIRで24時間処理する条件が最適であると判った。これらの結果は、NPCsの上皮化におけるWnt処理において、最適な濃度と期間があることを示唆しており、さらに初期のWntシグナルが、最終的なポドサイトの形成に大きく影響していることを示している。
実施例３：腎上皮前駆凝集体（PA）から腎小体（RV）への分化におけるTGF-βシグナルの阻害
　NPCsからポドサイトへの誘導工程を検討するために、本発明者らは、上記のインビトロの培養系において中間工程を定義した。qRT-PCRの結果を図６に示す。これにより、誘導開始24時間の時点ではPAの、48時間の時点ではRVの分化ステージに相当することが明らかとなった。
　RVでは既に近位遠位軸に沿って極性形成がなされ、RVの近位領域はポドサイトの前駆体を含んでいると推測されるので、NPCsから近位RVへの直接の分化が、ポドサイトへの誘導効率を高めるとの仮説をたて、以下検討を行った。
　PAからRVへの分化工程（24時間～48時間：STEP 2）における、成長因子又は阻害剤の効果を確認した。高濃度のCHIR（2μM）は、基準条件である0.5μMのCHIRに比べ、最終的なポドサイトの割合を抑制した。また、Wntシグナル阻害物質であるIWR-1は、上皮化を阻害した。これに対し、Tgf-βシグナル経路阻害剤であるSB431542（SB）は、最終的なポドサイトの割合を有意に上昇させた。他の因子についても同様に検討した結果、アクチビンA、レチノイン酸（RA）、及びRAアンタゴニストであるBMS493は、ポドサイトの誘導効率を上昇させなかった。結果を、図７及び図８に示す。
　RVステージ（48時間）における遺伝子発現プロファイルを検討したところ、SBの処理により、近位領域マーカーであるWt1, MafB, 及びFoxc2の発現が亢進していた（図９）。一方、RVの遠位マーカーは、基準条件（0.5μM CHIR）に比べて僅かに減少していた。また、SB処理により、Wt1+近位RV細胞の比率及び数ともに上昇していた。 一方、高濃度のCHIR処理は、Wt1-細胞の増加及び近位RV細胞の減少をもたらした。結果を図１０に示す。
　これらの結果は、PAからRVへの過程におけるTGF-βシグナルの阻害が、近位側RVへの分化を促進し、その結果として、最終ポドサイトの比率及び数を増加させることを示唆している。
実施例４：RV形成過程後のTGF-βシグナルの阻害の他の効果
　次に近位側RVへ分化後、各ネフロン部位へ分化する48時間から6日目までの培養過程（STEP 3）において、増殖因子がポドサイトの誘導に与える影響について検証した。結果を図１１に示す。48時間～6日目までの継続的なSBの添加は、6日目におけるMafB-GFP+ポドサイトを顕著に増加させた。一方、2μMのCHIRの添加は、ポドサイトへの分化を完全に阻害した。一方、Wntシグナル阻害物質は、ポドサイトの比率には有意には影響しなかった。この結果は、マウスにおいては、Wntシグナルの抑制がポドサイトへの分化を促進はしないが、強いWntシグナルはポドサイトへの分化を抑制することを示唆している。他の因子であるアクチビン及びRAシグナルアゴニスト／アンタゴニストは、基準条件（0.5μMのCHIR）に比べ、ポドサイトの割合に関しては有意な影響はなかった。
　６日目の細胞数の検討で、SB処理により最終ポドサイト数には大きな影響がない一方、LTL陽性近位尿細管細胞の細胞数は減少していた。Cdh1陽性遠位尿細管の細胞数は減少傾向であったが、有意な差ではなかった。結果を図１２に示す。さらに遺伝子発現解析の結果、ポドサイト関連遺伝子の発現は上昇し、一方、ポドサイト以外のネフロン分画に関連する遺伝子の発現は減少していた。結果を図１３に示す。
　本発明の高効率誘導法を用いて作製したポドサイトは、MafB-GFPが陽性であるだけでなく、一連の典型的なポドサイト特異的タンパク質を発現していた（図１３下）。
　これらの結果は、各ネフロン部位への分化ステージ（STEP 3）におけるTGF-βシグナルの阻害は、ポドサイトへの分化を促進し、かつ、他のネフロン部位への分化を抑制することにより、ポドサイト誘導効率をあげることを示唆している。
実施例５：ヒトｉＰＳ細胞からの選択的ポドサイトの誘導
　次に、ヒトiPS細胞から誘導したネフロン前駆細胞を用い、ポドサイトへの効率的な誘導を検討した。Nephrin-GFP hiPSセルラインを用い、hiPSCからのポドサイトへの誘導効率をモニターした。マウスNPCsで確立した3段階の段階的なポドサイト分化誘導方法をhiPSに適用した。概略を図１４に示す。まず、NPCsからPAへの段階（STEP 1）におけるWntアゴニストの濃度と期間を検討し、その後、基準条件（0.5μM CHIR99021）で培養を9日目まで行った。ポドサイトの誘導効率は、Nephrin-GFP+細胞比で確認した。結果を図１５に示す。3μMのCHIR99021での24時間処理が、ポドサイト誘導において最も効率が良いことが判った。
　組織学的分析の結果、24時間のCHIR誘導によって、NPCsは、PA（LHX1+/ECAD-）へと分化し、48時間でRV（LHX1+/ECAD+）を形成することが確認できた。
PAからRVへの分化過程において、マウスの場合と同様に、SB431542処理はポドサイトの割合を上昇させた。加えて、hiPSC由来のNPCsの場合は、STEP 2（工程Ｂ）におけるWntシグナル阻害剤（IWR1）及びRAの添加もポドサイトの割合を増加させた。結果を図１６に示す。これらの3つの試薬の組合せは、近位RV細胞の数を著しく増加させ、そして最終的なポドサイトの誘導効率を70％以上にまで上昇させた。
　RV形成後のSTEP 3（工程Ｃ）においては、SB、IWR1、RAのいずれも単独での投与でポドサイトの誘導効率を上昇させる効果がみられた。さらにSBとIWR1を組み合わせることによって、ポドサイトの誘導効率はさらに上昇し、90％以上に達した（図１７）。
　上記のように、STEP毎に必要な培養条件を検討し、それを最適化することによって、hiPSCs由来のNPCsからのポドサイトの選択的誘導を達成した。工程の概略は、図１ｂに示してある。この誘導法は、遺伝子編集を行っていないhiPSセルライン（201B7）においても適応できることも明らかとなった。またポドサイト自体の収量も、10,000個のhiPSCsから300,000個のポドサイトが誘導できることになり、通常の腎オルガノイドの約3倍の数であった（図１８）。また、STEP 3 は培養開始9日目を超えても培養継続可能であり、培養開始後15日目の時点でも細胞は生存していた。
実施例６：誘導ポドサイトとヒトポドサイト、細胞株の遺伝子発現プロファイルの比較
　誘導ポドサイトを、ヒト成体腎臓由来ポドサイト及びヒト不死化ポドサイト細胞株との間で遺伝子発現プロファイルの比較を行った。分析の結果、誘導ポドサイトは、ポドサイト特異的遺伝子、例えば、NPHS1, NPHS2, WT1, 及びSYNPOの高い発現レベルを示し、これらの発現レベルは、ヒト成人ポドサイトに匹敵するものであった（図１９）。細胞株では、ヒト成体ポドサイトおよび誘導ポドサイトに比べ、SYNPOの発現は比較的維持されていたが、NPHS1及びNPHS2の発現レベルは極めて低かった。
実施例７：誘導ポドサイトの形態学的及び機能的特徴の検討
　図２０に示されるように、誘導ポドサイトでは、核においてWT1が発現し、細胞境界上においてNEPHERINが発現していることが確認された。他のスリット膜関連タンパクであるNEPH1及びPODOCINもNEPHERINとともに局在していた。透過型電子顕微分析の結果、ポドサイトの基底側に足突起の存在も確認された（図２１）。抗ネフリン抗体による染色で、これらの足突起がネフリン蛋白を発現していることも確認できた（図２２）。また、スリット膜様の構造も、隣り合うポドサイト間に存在するフィラメント状の架橋として確認された（図２１）。
　誘導ポドサイトにおけるタンパク発現をウエスタンブロットにより確認し、hiPSCs、ヒト不死化ポドサイト細胞株、hiPSC由来腎オルガノイドと比較した。図２３に示されるように、誘導ポドサイトは、スリット膜関連タンパク、例えば、NEPHRIN, リン酸化NEPHRIN（p-NEPHRIN）, NEPH1,及びPODOCINを多量に発現していた。誘導ポドサイトはまた、分化したポドサイトマーカーであるSYNAPTOPODIN, 及び膜性腎症の内在性抗原であるPLA2Rも発現しており、これらはhiPSCや細胞株に比べて多かった。これらの結果は、誘導ポドサイトが、足突起に関連するタンパクを十分な量で発現していることを示唆している。
　本発明の方法により作製した誘導ポドサイトが、インビトロで、ポドサイトの損傷や毒性試験に利用できるかを以下のように確認した。誘導したポドサイトを、ピューロマイシンアミノヌクレオシド（puromycin aminonucleoside：PAN）で48時間処理した。PANは、インビトロ及びインビボで、ポドサイト障害モデルにおいて用いられている薬剤である。誘導ポドサイトをPANで処理すると、ポドサイトの生存率の低下が確認できた（図２４）。このことは、誘導ポドサイトが、細胞毒性試験へ応用できることを示している。また蛋白レベルにおける検討では、NEPHRIN、p-NEPHRIN、及びNEPH1といった膜表面に発現しているスリット膜関連蛋白が、PAN処理によって有意に減少していた（図２５）。これらスリット膜関連蛋白を障害前後で定量することは、これまでの細胞株や他のプロトコルで誘導したポドサイト様細胞では実現できないことである。これらの結果は、本発明の方法で作製したポドサイトが、ポドサイトとしての機能特性の一部を有しており、ポドサイト損傷のモデルとして、障害モデル実験や治療薬開発のスクリーニング、腎細胞における毒性試験に有用であることを示唆している。
　ポドサイト障害は尿蛋白の原因として最も重要な病態であり、糖尿病性腎症、慢性糸球体腎炎などの腎臓病において、ポドサイトに対し保護的に作用する薬剤の開発が待たれている。本発明の誘導法で作製されたポドサイトは、非常に多くのポドサイト関連蛋白を発現しており、障害を受けた際にポドサイトに保護的に作用する薬剤の開発にあたってのスクリーニング、すなわち腎臓病領域の創薬において有用であると考えられる。また、腎障害を与える可能性がある薬剤の毒性を検証する際に、誘導ポドサイトを細胞毒性試験の素材として応用することもできる。
　さらには、ポドサイトに関連する疾患である先天性ネフローゼ症候群の患者より入手したiPS細胞から患者由来のポドサイトを誘導することで、希少疾患の病態解明や治療法の開発にも応用が可能である。加えて、CRISPR/CAS9やTALENなどの技術を用いてiPS細胞の遺伝子編集も可能となったことから、特定の遺伝子を除去もしくは過剰発現させた細胞株を樹立し、そのような細胞株に本発明の誘導法を適用することにより、その遺伝子がヒトポドサイトにおいてどのような役割をもつのか検討するような実験系への応用も可能である。
　上記の詳細な記載は、本発明の目的及び対象を単に説明するものであり、添付の特許請求の範囲を限定するものではない。添付の特許請求の範囲から離れることなしに、記載された実施態様に対しての、種々の変更及び置換は、本明細書に記載された教示より当業者にとって明らかである。
　本発明の誘導法により、効率良くポドサイトを誘導することができる。また、本発明の方法により誘導されたポドサイトは、多くのポドサイト関連蛋白を発現しており、ポドサイトのミミック（mimic）として有用である。

Claims (26)

  1. 　ポドサイトを分化誘導する方法であって、以下の工程：
    工程Ａ：ネフロン前駆細胞又はその集団を、Ｗｎｔアゴニスト及びＲＯＣＫ阻害物質を含む培地で培養する工程、
    工程Ｂ：工程Ａで得られた細胞又はその集団を、Ｆｇｆを含む培地で培養する工程、及び、
    工程Ｃ：工程Ｂで得られた細胞又はその集団を、Ｆｇｆを含む培地で培養する工程、
    を含む方法、
    ここで、工程Ｂ又は工程Ｃにおける培地の少なくとも一つは、ＴＧＦβシグナル経路阻害物質を含む。
  2. 　工程Ａで用いる培地のＷｎｔアゴニストの濃度が、１μＭより多くかつ１０μＭより少ない、請求項１に記載の方法。
  3. 　前記工程Ｂ及び工程Ｃにおける培地が、さらに約１μＭ以下の濃度のＷｎｔアゴニストを含む請求項１又は２に記載の方法。
  4. 　前記工程Ａにおける培養が、１２時間～４８時間であり、かつ前記工程Ｂにおける培養が１２時間～４８時間である、請求項１～３のいずれか一つに記載の方法。
  5. 　前記工程Ｃにおける培養が、２～３０日である、請求項４に記載の方法。
  6. 　前記ＷｎｔアゴニストがＣＨＩＲ９９０２１であり、前記ＴＧＦβシグナル経路阻害物質がＳＢ４３１５４２である、請求項１～５のいずれか一つに記載の方法。
  7. 　前記ネフロン前駆細胞が哺乳動物由来のｉＰＳ細胞から誘導されたネフロン前駆細胞である、請求項１～６のいずれか一つに記載の方法。
  8. 　前記ｉＰＳ細胞が、ヒト由来のｉＰＳ細胞である請求項７に記載の方法。
  9. 　前記工程Ｂ及び／又は工程Ｃにおける培地が、さらに、Ｗｎｔシグナル阻害物質を含む、請求項７又は８に記載の方法。
  10. 　前記工程Ｂ及び／又は工程Ｃにおける培地が、さらに、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログを含む、請求項７～９のいずれか一つに記載の方法。
  11. 　前記ネフロン前駆細胞が、以下の工程：
    （ａ）ヒトｉＰＳ細胞から誘導された胚様体を、高濃度（濃度Ａ）のＷｎｔアゴニストを含有する培地で培養する工程、
    （ｂ）前記胚様体を、Ｂｍｐ、アクチビン、レチノイン酸、及び中濃度（濃度Ｂ）のＷｎｔアゴニスト、を含有する培地で培養する工程、及び
    （ｃ）前記胚様体を、Ｆｇｆ、及び低濃度（濃度Ｃ）のＷｎｔアゴニストを含有する培地で培養する工程、
    をその順で含む分化誘導工程（ここで、Ｗｎｔアゴニストの濃度は、濃度Ａ＞濃度Ｂ＞濃度Ｃであって、濃度Ａは濃度Ｃの少なくとも５倍である。）、
    によりヒトｉＰＳ細胞から誘導される、請求項７～１０のいずれか一つに記載の方法。
  12. 　前記工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）におけるＷｎｔアゴニストがＣＨＩＲ９９０２１であって、前記濃度Ａ及び濃度Ｃが、それぞれ、７．５μＭ～１５μＭ、０．５μＭ～２．０μＭであり、かつ、前記工程（ｂ）におけるＢｍｐがＢｍｐ４であって、培地における濃度が１ｎｇ／ｍｌ～１０ｎｇ／ｍｌであり、かつ、前記工程（ｂ）の培地におけるアクチビンの濃度が、２．５～４０ｎｇ／ｍＬの濃度である、請求項１１に記載の方法。
  13. 　ポドサイトを分化誘導するための培地キットであって、該キットは、分化誘導培地、及び、以下に記載のそれぞれの成分を含む３つの容器を含む培地キット、
    （１）Ｗｎｔアゴニスト及びＲＯＣＫ阻害物質を含む第一の容器、
    （２）ＴＧＦβシグナル経路阻害物質、Ｗｎｔシグナル阻害物質、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログ、及びＦｇｆを含む第二の容器、及び
    （３）ＴＧＦβシグナル経路阻害物質、Ｗｎｔシグナル阻害物質、レチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログ、及びＦｇｆを含む第三の容器。
  14. 　前記容器（２）及び（３）が、さらに、Ｗｎｔアゴニスト、を含む請求項１３に記載の培地キット。
  15. 　ポドサイトの細胞集団を製造する方法であって、以下の工程：
    （ｉ）哺乳動物由来のｉＰＳ細胞又はその集団からネフロン前駆細胞又はその集団を分化誘導する工程、
    （ｉｉ）工程（ｉ）で得られたネフロン前駆細胞又はその集団を、Ｗｎｔアゴニスト及びＲＯＣＫ阻害物質、を含む培地で培養する工程、
    （ｉｉｉ）工程（ｉｉ）で得られた細胞又はその集団を、Ｆｇｆを含む培地で培養する工程、及び、
    （ｉｖ）工程（ｉｉｉ）で得られた細胞又はその集団を、Ｆｇｆを含む培地で培養する工程、
    を含む方法、
    ここで、工程（ｉｉｉ）又は工程（ｉｖ）における培地の少なくとも一つはＴＧＦβシグナル経路阻害物質含み、工程（ｉｉｉ）又は工程（ｉｖ）における培地の少なくとも一つはＷｎｔシグナル阻害物質を含み、かつ工程（ｉｉｉ）又は工程（ｉｖ）における培地の少なくとも一つはレチノイン酸（ＲＡ）又はＲＡアナログを含む。
  16. 　前記工程（ｉｉ）で用いる培地のＷｎｔアゴニストの濃度が、１μＭより多くかつ１０μＭより少ない、請求項１５に記載の方法。
  17. 　前記工程（ｉｉｉ）及び（ｉｖ）における培地が、さらに約１μＭ以下の濃度のＷｎｔアゴニストを含む請求項１５又は１６に記載の方法。
  18. 　前記ｉＰＳ細胞が、ヒト由来のｉＰＳ細胞である請求項１５～１７のいずれか一つに記載の方法。
  19. 　前記工程（ｉｉ）における培養が、１２時間～４８時間であり、かつ前記工程（ｉｉｉ）における培養が１２時間～４８時間である、請求項１５～１８のいずれか一つに記載の方法。
  20. 　前記工程（ｉｖ）における培養が、２～３０日である、請求項１７に記載の方法。
  21. 　前記ＷｎｔアゴニストがＣＨＩＲ９９０２１であり、前記ＴＧＦβシグナル経路阻害物質がＳＢ４３１５４２であり、前記Ｗｎｔシグナル阻害物質がＩＷＲ－１である、請求項１５～１８のいずれか一つに記載の方法。
  22. 　前記工程（ｉ）が、以下の工程：
    （ａ）ヒトｉＰＳ細胞から誘導された胚様体を、高濃度（濃度Ａ）のＷｎｔアゴニストを含有する培地で培養する工程、
    （ｂ）前記胚様体を、Ｂｍｐ、アクチビン、レチノイン酸、及び中濃度（濃度Ｂ）のＷｎｔアゴニスト、を含有する培地で培養する工程、及び
    （ｃ）前記胚様体を、Ｆｇｆ、及び低濃度（濃度Ｃ）のＷｎｔアゴニストを含有する培地で培養する工程、
    をその順で含む分化誘導工程（ここで、Ｗｎｔアゴニストの濃度は、濃度Ａ＞濃度Ｂ＞濃度Ｃであって、濃度Ａは濃度Ｃの少なくとも５倍である。）、
    である、請求項１５～２１のいずれか一つに記載の方法。
  23. 　前記工程（ａ）、（ｂ）及び（ｃ）におけるＷｎｔアゴニストがＣＨＩＲ９９０２１であって、前記濃度Ａ及び濃度Ｃが、それぞれ、７．５μＭ～１５μＭ、０．５μＭ～2．０μＭであり、かつ、前記工程（ｂ）におけるＢｍｐがＢｍｐ４であって、培地における濃度が１ｎｇ／ｍｌ～１０ｎｇ／ｍｌであり、かつ、前記工程（ｂ）の培地におけるアクチビンの濃度が、２．５ｎｇ／ｍＬ～４０ｎｇ／ｍＬの濃度である、請求項２０に記載の方法。
  24. 　試験物質のポドサイトに対する影響又は効果を評価する方法であって、該試験物質の存在下で、請求項１～１２、１５～２３のいずれか一つに記載の方法で作製したポドサイトの細胞集団を培養し、該細胞に関する以下の項目：細胞の増殖、細胞の生存、細胞の障害、タンパク質発現量、遺伝子発現量、アルブミン取り込み能、アルブミンろ過能、オートファジー活性及び細胞内伝達シグナルからなる群から選ばれる少なくとも一つの項目を測定し、該試験物質のポドサイトに対する影響を評価することを含む方法。
  25. 　ポドサイト障害を治療又は回復させる物質をスクリーニングする方法であって、（ｘ）請求項１～１２、１５～２３のいずれか一つに記載の方法で作製したポドサイトの細胞集団を、ポドサイト障害性を示す薬剤及び試験物質の存在下で培養する工程と、（ｙ）ポドサイト細胞の生存、増殖、障害の軽減、タンパク質発現量の変化、及び遺伝子発現量の変化からなる群から選ばれる少なくとも一つの項目を測定する工程、とを含むポドサイト障害を治療又は回復させる候補物質をスクリーニングする方法、
    ここで、工程（ｘ）におけるポドサイト細胞集団の培養は、以下のいずれでもよい：
    （ｘ－１）ポドサイト障害性を示す薬剤及び試験物質が同時に存在する環境下でポドサイト細胞集団を培養する、又は
    （ｘ－１）ポドサイト障害性を示す薬剤の存在下でポドサイト細胞集団を培養し、次いで、試験物質の存在下で該障害ポドサイト細胞集団を培養する。
  26. 　前記ポドサイト障害性を示す薬剤がピューロマイシンアミノヌクレオシド、ドキソルビシン、アンジオテンシンＩＩ、及び抗ポドサイト抗体からなる群より選ばれる少なくとも一つの薬剤である請求項２５に記載のスクリーニング方法。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2021024985A1 (ja) * 2019-08-08 2021-02-11 国立大学法人東京大学 ポドサイトの培養方法、ポドサイトの培養用キット、被検物質の毒性判定方法、及び、生体内ポドサイト保護剤のスクリーニング方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2016529891A (ja) * 2013-07-29 2016-09-29 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲーＦ． Ｈｏｆｆｍａｎｎ−Ｌａ Ｒｏｃｈｅ Ａｋｔｉｅｎｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ 多能性幹細胞の複数能力を有する腎前駆細胞への分化のための方法
US20170205396A1 (en) * 2016-01-15 2017-07-20 Salk Institute For Biological Studies Systems and methods for culturing nephron progenitor cells
WO2018213886A1 (en) * 2017-05-24 2018-11-29 Murdoch Childrens Research Institute Genetically induced nephron progenitors

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP6455729B2 (ja) * 2013-10-18 2019-01-23 国立大学法人 熊本大学 多能性幹細胞からの腎臓誘導法
AU2015353853B2 (en) * 2014-11-25 2020-10-15 President And Fellows Of Harvard College Methods for generation of podocytes from pluripotent stem cells and cells produced by the same

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2016529891A (ja) * 2013-07-29 2016-09-29 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲーＦ． Ｈｏｆｆｍａｎｎ−Ｌａ Ｒｏｃｈｅ Ａｋｔｉｅｎｇｅｓｅｌｌｓｃｈａｆｔ 多能性幹細胞の複数能力を有する腎前駆細胞への分化のための方法
US20170205396A1 (en) * 2016-01-15 2017-07-20 Salk Institute For Biological Studies Systems and methods for culturing nephron progenitor cells
WO2018213886A1 (en) * 2017-05-24 2018-11-29 Murdoch Childrens Research Institute Genetically induced nephron progenitors

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MUSAH S. ET AL.: "Mature induced-pluripotent-stem- cell -derived human podocytes reconstitute kidney glomerular-capillary-wall function on a chip.", NAT BIOMED ENG., vol. 1, 2017, pages 0069 *
NISHINAKAMURA R. ET AL.: "Induction of nephron progenitors and glomeruli from human pluripotent stem cells.", PEDIATR NEPHROL, vol. 32, 2017, pages 195 - 200, XP036123240, DOI: 10.1007/s00467-016-3339-z *
SONG BI ET AL.: "The directed differentiation of human ips cells into kidney podocytes", PLOS ONE, vol. 7, no. 9, pages 3 - 4 *
SONG BI. ET AL.: "The directed differentiation of human iPS cells into kidney podocytes", PLOS ONE, vol. 7, no. 9, 2012, pages 5, XP002712846, DOI: 10.1371/JOURNAL.PONE.0046453 *
YOSHIMURA Y. ET AL.: "Manipulation of nephron-patterning signals enables selective induction of podocytes from human pluripotent stem cells.", J. AM. SOC. NEPHROL., vol. 30, 11 January 2019 (2019-01-11), pages 304 - 321 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2021024985A1 (ja) * 2019-08-08 2021-02-11 国立大学法人東京大学 ポドサイトの培養方法、ポドサイトの培養用キット、被検物質の毒性判定方法、及び、生体内ポドサイト保護剤のスクリーニング方法
JP7492214B2 (ja) 2019-08-08 2024-05-29 国立大学法人 東京大学 ポドサイトの培養方法、ポドサイトの培養用キット、被検物質の毒性判定方法、及び、生体内ポドサイト保護剤のスクリーニング方法

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