WO2019150919A1 - Ｄｎａ断片、組み換えベクター、形質転換体及び窒素固定酵素 - Google Patents

Ｄｎａ断片、組み換えベクター、形質転換体及び窒素固定酵素 Download PDF

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    • C12N5/10—Cells modified by introduction of foreign genetic material

Definitions

  • the present invention relates to a DNA fragment encoding a nitrogen-fixing enzyme, a recombinant vector containing the DNA fragment, a transformant transformed with the recombinant vector, and a nitrogen-fixing enzyme.
  • Escherichia coli is inhibited from growing in a medium without a nitrogen source (ammonium chloride, sodium nitrate, etc.). Therefore, it is necessary to add a nitrogen source to the medium for its growth.
  • a nitrogen source ammonium chloride, sodium nitrate, etc.
  • nitrogen fixing method in addition to the conventional Harbor Bosch method, there is an enzyme method using nitrogenase. According to this method, nitrogen in the atmosphere can be immobilized as ammonia in an environment of normal temperature and pressure, so that the addition of the nitrogen source can be eliminated in the presence of nitrogenase.
  • the nitrogenase is a metal enzyme containing V or Mo (see, for example, Patent Document 1).
  • JP 2016-136972 A paragraphs [0006, 0007]
  • An object of the present invention is to provide a DNA fragment encoding a nitrogen-fixing enzyme that can eliminate the need to add a nitrogen source required for the growth of E. coli to a medium, a recombinant vector containing the DNA fragment, and a recombinant vector. It is to provide a transformed transformant and the nitrogen-fixing enzyme.
  • Another object of the present invention is to provide a DNA fragment encoding a nitrogen-fixing enzyme that allows growth of Escherichia coli without adding a metal element such as V or Mo to the medium, a recombinant vector containing the DNA fragment, and the recombinant vector. It is to provide a transformant transformed by the above and the nitrogen-fixing enzyme.
  • the following DNA fragments [1] to [12], recombinant vectors, transformants and nitrogen-fixing enzymes are provided.
  • the nitrogen-fixing enzyme means an enzyme that promotes the growth (growth) of E. coli in a medium without a nitrogen source (ammonium chloride, sodium nitrate, etc.).
  • the DNA fragment according to [3] above, wherein the DNA fragment is derived from cyanobacterial genomic DNA.
  • a recombinant vector comprising the DNA fragment according to any one of [1] to [5] above.
  • a nitrogen-fixing enzyme comprising the same amino acid sequence as the nitrogen-fixing enzyme according to [9] or an amino acid sequence having 40% or more identity with the amino acid sequence.
  • a DNA fragment encoding a nitrogen-fixing enzyme that can eliminate the need to add a nitrogen source required for the growth of E. coli to the medium, a recombinant vector containing the DNA fragment, A transformant transformed with the recombinant vector and the nitrogen-fixing enzyme can be provided.
  • a DNA fragment encoding a nitrogen-fixing enzyme capable of growing Escherichia coli without adding a metal element such as V or Mo to the medium, a recombinant vector containing the DNA fragment, A transformant transformed with a recombinant vector and the nitrogen-fixing enzyme can be provided.
  • FIG. 1 is an explanatory diagram showing the position of a DNA fragment according to an embodiment of the present invention in genomic DNA and 32 open reading frames contained in the DNA fragment.
  • FIG. 2 is an explanatory view showing the position of incorporation of the DNA fragment according to the embodiment of the present invention into the fosmid vector.
  • FIG. 3 is a graph showing the evaluation results of the nitrogen fixing ability in the examples.
  • FIG. 1 is an explanatory diagram showing the position of a DNA fragment according to an embodiment of the present invention in genomic DNA and 32 open reading frames contained in the DNA fragment.
  • the DNA fragment 2 comprises a base sequence of SEQ ID NO: 1 encoding a nitrogen-fixing enzyme or a base sequence having 50% or more identity with SEQ ID NO: 1.
  • the nitrogen-fixing enzyme is a nitrogen-fixing enzyme that can eliminate the need to add a nitrogen source required for the growth of E. coli to the medium, or a nitrogenase such as V or Mo. It means a nitrogen-fixing enzyme that allows E. coli to grow without adding the required metal elements to the medium. In a more preferred embodiment of the present invention, it means a nitrogen-fixing enzyme that can function in photosynthetic organisms that generate oxygen, such as algae and plants.
  • the DNA fragment having the base sequence of SEQ ID NO: 1 is derived from, for example, the genomic DNA (reference numeral 1 in FIG. 1) of cyanobacteria (also referred to as cyanobacteria) (from 2982634 to 3013880). 31247 base sequences).
  • cyanobacteria include Cyanothece sp. ATCC 51142. Cyanothece sp. ATCC 51142 can be obtained from, for example, The American Type Culture Collection (ATCC).
  • the base sequence encoding the nitrogen-fixing enzyme may be a base sequence having 50% or more identity with SEQ ID NO: 1.
  • it is a base sequence having 60% or more identity with SEQ ID NO: 1, more preferably a base sequence having 70% or more identity with SEQ ID NO: 1, and still more preferably 80% or more with SEQ ID NO: 1.
  • a base sequence having 98% or more identity with SEQ ID NO: 1 is preferred.
  • the DNA fragment having the base sequence of SEQ ID NO: 1 or the base sequence having 50% or more identity with SEQ ID NO: 1 may be artificially synthesized by a genetic engineering technique.
  • the DNA fragment according to the embodiment of the present invention comprises any one or more of the base sequences of SEQ ID NOs: 2 to 33 encoding a nitrogen-fixing enzyme.
  • the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 2 to 33 correspond to the open reading frames (gene IDs: cce — 2943 to cce — 2974) shown in FIG. 1, respectively.
  • the gene ID is defined by, for example, CyanoBase ([genome.microbedb.jp/cyanobase/]) or KEGG, Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes ([http://www.genome.jp/kegg/]). Has been.
  • the DNA fragment according to the embodiment of the present invention preferably comprises 5 or more of the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 2 to 33, more preferably 10 or more, and further comprises 15 or more.
  • 20 or more are more preferable, 25 or more are more preferable, 28 or more are more preferable, and 30 or more are more preferable.
  • the order of the base sequences of SEQ ID NOs: 2 to 33 may be changed, but is preferably not changed.
  • the DNA fragment 2 according to the embodiment of the present invention shown in FIG. 1 has the base sequence of SEQ ID NO: 1 and all of the base sequences of SEQ ID NOS: 2-33.
  • the DNA fragment 2 according to the embodiment of the present invention may include a base sequence other than the base sequences of SEQ ID NOs: 2 to 33, for example, a base sequence (gene ID: cce_RNA037) that is tRNA. Also good.
  • the DNA fragment comprising any one or more of the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 2 to 33 is derived from, for example, genomic DNA of cyanobacteria.
  • cyanobacteria include Cyanothece sp. ATCC 51142.
  • Isolation of DNA fragment 2 from cyanobacterial genomic DNA can be carried out in accordance with the following general operation procedures 1 to 5. More specifically, for example, it can be performed in accordance with an embodiment described later. The method of each operation is not particularly limited, and various known methods can be employed.
  • 1. Mass culture of cyanobacteria Extraction and fragmentation of cyanobacterial genomic DNA: After fragmentation, polysaccharides may be removed as a step to increase the purity of the DNA. 3.
  • Cloning (1) Modify the ends of DNA fragments. (2) Sizing is carried out by electrophoresis (for example, 18 V for 24 hours with low melting point agarose for polymer separation). (3) Collect a DNA fragment of about 25-40 kb.
  • Each recovered DNA fragment is inserted into a vector (for example, fosmid vector) to prepare a vector (recombinant vector) having various DNA fragments. 4).
  • Preparation of transformant (1) A vector having various DNA fragments is introduced (packaged) into a bacteriophage. (2) Infecting a host such as E. coli with the bacteriophage of (1) above, introducing the vector, and obtaining E. coli (transformant) having vectors having various DNA fragments. (3) The transformant is grown on an agar medium and obtained as a colony. 5). Screening (1) E. coli that can grow on a medium not containing a nitrogen source (nitrogen compounds such as ammonium chloride and sodium nitrate) is selected. (2) Extract the vector from E. coli. (3) Decoding the genetic information of the DNA fragment inserted into the vector.
  • the DNA fragment comprising any one or more of the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 2 to 33 may be artificially synthesized by a genetic engineering technique.
  • FIG. 2 is an explanatory view showing the position of incorporation of the DNA fragment according to the embodiment of the present invention into the fosmid vector.
  • the recombinant vector 3 includes the DNA fragment according to the embodiment of the present invention.
  • the recombinant vector 3 is preferably one in which the DNA fragment is incorporated (inserted) into a fosmid vector, but is not limited thereto.
  • it may be incorporated into a plasmid vector, cosmid vector, virus vector or the like.
  • the recombinant vector 3 according to the embodiment of the present invention can be obtained, for example, according to the procedure for isolating the DNA fragment 2 from cyanobacteria genomic DNA described above.
  • the transformant according to the embodiment of the present invention is obtained by transforming a host such as Escherichia coli with the above recombinant vector according to the embodiment of the present invention.
  • the transformant according to the embodiment of the present invention can be obtained, for example, according to the procedure for isolating DNA fragment 2 from cyanobacterial genomic DNA described above.
  • the nitrogen-fixing enzyme according to the embodiment of the present invention is expressed by the transformant according to the embodiment of the present invention.
  • the nitrogen-fixing enzyme according to the embodiment of the present invention includes amino sequences of SEQ ID NOs: 34 to 65 corresponding to the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 2 to 33 (see Table 1 below.
  • SEQ ID NO: 2 corresponds to SEQ ID NO: 34, ..., SEQ ID NO: 33 corresponds to SEQ ID NO: 65) in this order (SEQ ID NO: 34 is on the left end side and SEQ ID NO: 65 is on the right end side).
  • the amino acid sequence has one or more amino acid insertions, substitutions, deletions and / or additions, and is functionally combined with the nitrogen-fixing enzyme.
  • An equivalent nitrogen-fixing enzyme may be encoded (hereinafter, the same applies to a nitrogen-fixing enzyme according to another embodiment of the present invention).
  • Such nitrogen-fixing enzyme is, for example, inserted or substituted with 1 to 30, preferably 1 to 20, more preferably 1 to 10, further preferably 1 to 5, most preferably 1 to 2, amino acids.
  • Deletions and / or additions can be provided (hereinafter the same applies to the nitrogen-fixing enzyme according to another embodiment of the present invention).
  • the nitrogen-fixing enzyme according to the embodiment of the present invention may have any one or more of the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 34 to 65.
  • the nitrogen-fixing enzyme according to the embodiment of the present invention preferably comprises 5 or more of the amino sequences of SEQ ID NOs: 34 to 65, more preferably 10 or more, and 15 or more. More preferably, it is more preferably provided with 20 or more, further preferably with 25 or more, further preferably with 28 or more, and further preferably with 30 or more.
  • the order of the amino acid sequences of SEQ ID NOs: 34 to 65 may be changed, but is preferably not changed.
  • the nitrogen-fixing enzyme according to another embodiment of the present invention is not limited to that expressed by the transformant according to the embodiment of the present invention, and the nitrogen-fixing enzyme according to the embodiment of the present invention.
  • Any nitrogen-fixing enzyme having the same amino acid sequence as that described above may be used.
  • it may be synthesized with a commercially available protein synthesizer.
  • the nitrogen-fixing enzyme is not limited to the same amino acid sequence as the nitrogen-fixing enzyme according to the embodiment of the present invention, and is a nitrogen-fixing enzyme having an amino acid sequence having 40% or more identity with the amino acid sequence. There may be. Preferably, it is a nitrogen-fixing enzyme having an amino acid sequence having 50% or more identity with the amino acid sequence, more preferably a nitrogen-fixing enzyme having an amino acid sequence having 60% or more identity with the amino acid sequence. More preferably, it is a nitrogen-fixing enzyme having an amino acid sequence having 70% or more identity with the amino acid sequence, and more preferably a nitrogen-fixing enzyme having an amino acid sequence having 80% or more identity with the amino acid sequence.
  • a nitrogen-fixing enzyme having an amino acid sequence having 90% or more identity with the amino acid sequence, more preferably nitrogen having an amino acid sequence having 95% or more identity with the amino acid sequence.
  • Nitrogen having a fixed enzyme, and more preferably having an amino acid sequence having 98% or more identity with the amino acid sequence A constant enzyme.
  • the nitrogen-fixing enzyme having an amino acid sequence having 40% or more identity with the nitrogen-fixing enzyme may be artificially synthesized with a commercially available protein synthesizer.
  • identity of a base sequence or an amino acid sequence is used to mean the degree of coincidence of bases or amino acid residues constituting each sequence between sequences to be compared.
  • amino acid sequence the existence of a gap and the nature of the amino acid are considered (Wilbur, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 80: 726-730 (1983)).
  • commercially available softwares such as BLAST (Altschul: J. Mol. Biol. 215: 403-410 (1990)), FASTA (Peasron: Methods in Enzymology 183: 63-69 (1990)), etc. Can be used.
  • any numerical value of “identity” may be a numerical value calculated using a homology search program known to those skilled in the art.
  • the homology algorithm BLAST Basic bioalignment search of the National Center for Biotechnology Information (NCBI) tool
  • NCBI National Center for Biotechnology Information
  • a DNA fragment encoding a nitrogen-fixing enzyme capable of making it unnecessary to add a nitrogen source required for the growth of Escherichia coli to the medium, a recombinant vector containing the DNA fragment, and a transformation with the recombinant vector A transformant and the nitrogen-fixing enzyme can be provided.
  • a DNA fragment encoding a nitrogen-fixing enzyme capable of growing E. coli without adding rare metal elements such as V and Mo to the medium, a recombinant vector containing the DNA fragment, and a trait transformed with the recombinant vector A converter and the nitrogen-fixing enzyme can be provided.
  • nitrogen-fixing enzyme nitrogen-fixing enzyme different from nitrogenase
  • cyanobacteria which is a photosynthetic organism that generates oxygen
  • Nitrogen fixation can be performed.
  • Genomic DNA extracted from cyanobacteria Cyanothece sp. ATCC 51142 (ATCC number (trust number): 51142) is physically sheared. Specifically, the extracted genomic DNA solution is put in and out five times with a thin pipette tip (QSP). Then, it was blunt ended with End-Repair Enzyme Mix (Epicentre). The physical shearing may be performed by vortexing or ultrasonic treatment. The blunt-ended DNA fragment was sized by electrophoresis, and a DNA fragment having an average chain length of 25-40 kb was extracted.
  • QSP thin pipette tip
  • CopyControl TM pCC2FOS TM fosmid vector manufactured by Epicenter having a chloramphenicol resistance gene and a DNA fragment (Eco72 was cut with I site (between 382 th C and 383 th G) was linearized, de The phosphorylated ones were ligated (see FIG. 2).
  • T4 DNA ligase (TaKaRa) was used for ligation to the fosmid vector.
  • the ligation to this fosmid vector was packaged in vitro using MaxPlax TM Lambda Packaging Extracts (Epicentre).
  • E. coli EPI-300T1R (Epicentre) (hereinafter referred to as EPI300) was used as the host microorganism.
  • transformed E. coli (transformant) was obtained on an LB medium (LB / Cm) agar plate containing 12.5 mg / mL chloramphenicol.
  • the transformed Escherichia coli colonies were picked and cultured in 4 mL of LB medium (LB / Cm) containing 12.5 mg / mL chloramphenicol in the air at 37 ° C. for 18 hours at 180 rpm. Then, the cultured E. coli was recovered and M9-N medium (0.6% Na 2 HPO 4 , 0.3% KH 2 PO 4 , 0.05% NaCl, 0.2%) containing no nitrogen source (nitrogen compounds such as ammonium chloride and sodium nitrate) was collected.
  • LB medium LB / Cm
  • M9-N medium 0.6% Na 2 HPO 4 , 0.3% KH 2 PO 4 , 0.05% NaCl, 0.25% containing no nitrogen source (nitrogen compounds such as ammonium chloride and sodium nitrate) was collected.
  • % Glucose 0.00147% CaCl 2 ⁇ 2H 2 O, 0.05% MgSO 4 ⁇ 7H 2 O, 0.01% L-leucine
  • the prepared E. coli suspension was plated on an M9-N medium (M9-N / Cm) agar plate containing 12.5 mg / mL chloramphenicol and cultured at 37 ° C. for 72 hours.
  • the obtained colonies were again inoculated on M9-N medium (M9-N / Cm) agar plates, and the grown strains were isolated as clones giving a nitrogen-fixing phenotype.
  • the clone name was designated as Transformant 1.
  • the base sequence inserted into the fosmid vector was analyzed using primers pCC2 forward-b and pCC2 reverse-b.
  • the base sequences of the primers used are as follows. pCC2 forward-b; CCAGTCACGACGTTGTAAAACG pCC2 reverse-b; CGCCAAGCTATTTAGGTGAGAC
  • E. coli EPI300 (Comparative Example 1) is markedly inhibited from growth, whereas Transformant 1 (Example 1) grows rapidly. showed that. From this result, it was revealed that the nitrogen-fixing ability can be imparted by introducing the DNA fragment encoding the nitrogen-fixing enzyme obtained this time into E. coli.
  • this invention is not limited to the said embodiment and Example, A various deformation

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Abstract

窒素固定酵素をコードする、配列番号１の塩基配列又は配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列を備えるＤＮＡ断片。このＤＮＡ断片を含む組み換えベクター。この組み換えベクターにより形質転換された形質転換体。この形質転換体により発現された窒素固定酵素。配列番号３４～６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えた窒素固定酵素。

Description

ＤＮＡ断片、組み換えベクター、形質転換体及び窒素固定酵素
本発明は、窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び窒素固定酵素に関するものである。
一般的に、大腸菌は、窒素源（塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム等）なしの培地では生育が阻害されるため、その増殖には窒素源を培地に添加することが必要とされている。
窒素固定の方法としては、従来のハーバーボッシュ法のほかに、ニトロゲナーゼを用いた酵素法がある。この方法によれば、常温常圧の環境下で大気中の窒素をアンモニアとして固定化することができるため、ニトロゲナーゼ存在下においては、上記窒素源の添加を不要とすることができる。
一方、上記ニトロゲナーゼは、Ｖ又はＭｏを含む金属酵素である（例えば、特許文献１参照）。
特開２０１６－１３６９７２号公報（段落〔０００６、０００７〕）
しかし、二トロゲナーゼを導入した大腸菌を用いて窒素固定を行なう場合には活性中心としてのＶやＭｏの金属元素が不足するので、二トロゲナーゼを導入した大腸菌が窒素源を含まない培地で増殖するには、ＶやＭｏの金属元素の添加が必須となる。
本発明の目的は、大腸菌の増殖に必要とされている窒素源の培地への添加を不要とすることができる窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供することである。
また、本発明の別の目的は、ＶやＭｏといった金属元素を培地に添加することなく大腸菌の増殖を可能とする窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供することである。
本発明の一実施の形態により、下記［１］～［１２］のＤＮＡ断片、組み換えベクター、形質転換体及び窒素固定酵素が提供される。本明細書において、窒素固定酵素とは、窒素源（塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム等）なしの培地で大腸菌の増殖（生育）を促進させる酵素を意味する。
［１］窒素固定酵素をコードする、配列番号１の塩基配列又は配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列を備えたＤＮＡ断片。
［２］前記配列番号１の塩基配列を備えたＤＮＡ断片は、シアノバクテリアのゲノムＤＮＡ由来である上記［１］に記載のＤＮＡ断片。
［３］窒素固定酵素をコードする、配列番号２～３３の塩基配列のいずれか１つ以上を備えたＤＮＡ断片。
［４］前記ＤＮＡ断片は、シアノバクテリアのゲノムＤＮＡ由来である上記［３］に記載のＤＮＡ断片。
［５］前記シアノバクテリアは、Cyanothece sp. ATCC 51142である上記［２］又は［４］に記載のＤＮＡ断片。
［６］上記［１］～［５］のいずれか１つに記載のＤＮＡ断片を含む組み換えベクター。
［７］前記ＤＮＡ断片はフォスミドベクターに組み込まれたものである上記［６］に記載の組み換えベクター。
［８］上記［６］又は［７］に記載の組み換えベクターにより形質転換された形質転換体。
［９］上記［８］に記載の形質転換体により発現された窒素固定酵素。
［１０］上記［９］に記載の窒素固定酵素と同一のアミノ酸配列又は前記アミノ酸配列と４０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素。
［１１］配列番号３４～６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えた上記［９］又は［１０］に記載の窒素固定酵素。
［１２］配列番号３４～６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えた窒素固定酵素。
本発明の一実施の形態によると、大腸菌の増殖に必要とされている窒素源の培地への添加を不要とすることができる窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供することができる。
また、本発明の一実施の形態によると、ＶやＭｏといった金属元素を培地に添加することなく大腸菌の増殖を可能とする窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供することができる。
図１は、本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片のゲノムＤＮＡにおける位置とＤＮＡ断片に含まれる３２個のオープンリーディングフレームを示す説明図である。 図２は、本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片のフォスミドベクターへの組み込み位置を示す説明図である。 図３は、実施例における窒素固定能力の評価結果を示すグラフである。
〔ＤＮＡ断片〕
図１は、本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片のゲノムＤＮＡにおける位置とＤＮＡ断片に含まれる３２個のオープンリーディングフレームを示す説明図である。
本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片２は、窒素固定酵素をコードする、配列番号１の塩基配列又は配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列を備える。なお、本発明の実施の形態において、窒素固定酵素とは、大腸菌の増殖に必要とされている窒素源の培地への添加を不要とすることができる窒素固定酵素、又はＶやＭｏといったニトロゲナーゼに必要とされる金属元素を培地に添加することなく大腸菌の増殖を可能とする窒素固定酵素を意味する。より望ましい本発明の実施形態においては、藻類や植物といった酸素を発生する光合成生物内で機能することができる窒素固定酵素を意味する。
配列番号１の塩基配列を備えたＤＮＡ断片（図１の符号２）は、例えば、シアノバクテリア（藍藻ともいう。）のゲノムＤＮＡ（図１の符号１）由来である（2982634番目から3013880番目までの31247個の塩基配列）。シアノバクテリアとしては、例えば、Cyanothece sp. ATCC 51142が挙げられる。Cyanothece sp. ATCC 51142は、例えば、The American Type Culture Collection (ATCC)から入手できる。
窒素固定酵素をコードする塩基配列は、配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列であってもよい。好ましくは配列番号１と６０％以上の同一性を有する塩基配列であり、より好ましくは配列番号１と７０％以上の同一性を有する塩基配列であり、更に好ましくは配列番号１と８０％以上の同一性を有する塩基配列であり、更に好ましくは配列番号１と９０％以上の同一性を有する塩基配列であり、更に好ましくは配列番号１と９５％以上の同一性を有する塩基配列であり、更に好ましくは配列番号１と９８％以上の同一性を有する塩基配列である。
なお、配列番号１の塩基配列又は配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列を備えるＤＮＡ断片は、遺伝子工学的手法により人工的に合成したものであってもよい。
本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片は、窒素固定酵素をコードする、配列番号２～３３の塩基配列のいずれか１つ以上を備える。配列番号２～３３の塩基配列は、それぞれ図１に示すオープンリーディングフレーム（遺伝子ＩＤ：ｃｃｅ＿２９４３～ｃｃｅ＿２９７４）に相当する。なお、遺伝子ＩＤとは、例えば、ＣｙａｎｏＢａｓｅ（[genome.microbedb.jp/cyanobase/]）、又はＫＥＧＧ, Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes（[http://www.genome.jp/kegg/]）で定義されている。
本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片は、配列番号２～３３の塩基配列のうちの５個以上を備えることが好ましく、１０個以上を備えることがより好ましく、１５個以上を備えることが更に好ましく、２０個以上を備えることが更に好ましく、２５個以上を備えることが更に好ましく、２８個以上を備えることが更に好ましく、３０個以上を備えることが更に好ましい。配列番号２～３３の塩基配列の順序は、入れ替えても構わないが、変更しないことが好ましい。
図１に示す本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片２は、配列番号１の塩基配列を備え、かつ配列番号２～３３の塩基配列のすべてを備える。本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片２は、配列番号２～３３の塩基配列のほかの塩基配列を含んでいても良く、例えば、ｔＲＮＡである塩基配列（遺伝子ＩＤ：ｃｃｅ＿ＲＮＡ０３７）を含んでいても良い。
配列番号２～３３の塩基配列のいずれか１つ以上を備えるＤＮＡ断片は、例えば、シアノバクテリアのゲノムＤＮＡ由来である。シアノバクテリアとしては、例えば、Cyanothece sp. ATCC 51142が挙げられる。
ＤＮＡ断片２のシアノバクテリア・ゲノムＤＮＡからの単離は、一般的に行われている以下の操作手順１～５に沿って行なうことができる。より詳細には、例えば、後述する実施例にしたがって行なうことができる。各操作の手法は特に限定されるものではなく、公知の種々の手法を採用可能である。
１．シアノバクテリアの大量培養
２．シアノバクテリアのゲノムＤＮＡの抽出及び断片化：断片化後、ＤＮＡの純度を上げるステップとして多糖の除去を行なっても良い。
３．クローニング
（１）ＤＮＡ断片の末端を修飾する。
（２）電気泳動（例えば、高分子分離用低融点アガロースで１８Ｖ，２４時間）によりサイズ分けする。
（３）約２５～４０ｋｂのＤＮＡ断片を回収する。
（４）回収した各ＤＮＡ断片をそれぞれベクター（例えばフォスミドベクター）に挿入し、様々なＤＮＡ断片を持つベクター（組み換えベクター）を作製する。
４．形質転換体の作製
（１）様々なＤＮＡ断片を持つベクターをバクテリオファージに導入（パッケージング）する。
（２）上記（１）のバクテリオファージを大腸菌等の宿主に感染させ、ベクターを導入し、様々なＤＮＡ断片を持つベクターを持つ大腸菌（形質転換体）を得る。
（３）形質転換体を寒天培地で生育し、コロニーとして取得する。
５．スクリーニング
（１）窒素源（塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム等の窒素化合物）を含まない培地で生育できる大腸菌を選抜する。
（２）大腸菌からベクターを抽出する。
（３）ベクターに挿入したＤＮＡ断片の遺伝子情報を解読する。
なお、配列番号２～３３の塩基配列のいずれか１つ以上を備えるＤＮＡ断片は、遺伝子工学的手法により人工的に合成したものであってもよい。
〔組み換えベクター〕
図２は、本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片のフォスミドベクターへの組み込み位置を示す説明図である。
本発明の実施の形態に係る組み換えベクター３は、本発明の実施の形態に係る上記ＤＮＡ断片を含む。組み換えベクター３は、好ましくは当該ＤＮＡ断片がフォスミドベクターに組み込まれた（挿入された）ものであるが、これに限られない。例えば、プラスミドベクター、コスミドベクター、ウイルスベクター等に組み込まれたものであっても良い。
本発明の実施の形態に係る組み換えベクター３は、例えば、前述したＤＮＡ断片２のシアノバクテリア・ゲノムＤＮＡからの単離操作手順にしたがって取得できる。
〔形質転換体〕
本発明の実施の形態に係る形質転換体は、本発明の実施の形態に係る上記組み換えベクターにより大腸菌等の宿主を形質転換したものである。
本発明の実施の形態に係る形質転換体は、例えば、前述したＤＮＡ断片２のシアノバクテリア・ゲノムＤＮＡからの単離操作手順にしたがって取得できる。
〔窒素固定酵素〕
本発明の実施の形態に係る窒素固定酵素は、本発明の実施の形態に係る上記形質転換体により発現されたものである。本発明の実施の形態に係る窒素固定酵素は、配列番号２～３３の塩基配列にそれぞれ対応する配列番号３４～６５のアミノ配列（下記表１参照。配列番号２が配列番号３４に対応し、・・・・、配列番号３３が配列番号６５に対応する）をこの順番（配列番号３４が左端側、配列番号６５が右端側）で備えるものであることが好ましい。なお、配列番号３４～６５のいずれか１以上のアミノ酸配列において、１又は複数個のアミノ酸の挿入、置換、欠失及び／又は付加されたアミノ酸配列を有して上記窒素固定酵素と機能的に同等な窒素固定酵素をコードするものであってもよい（以下、本発明の別の実施の形態に係る窒素固定酵素においても同様）。こうした窒素固定酵素は、例えば、１～３０個、好ましくは１～２０個、より好ましくは１～１０個、さらに好ましくは１～５個、最も好ましくは１～２個のアミノ酸の挿入、置換、欠失及び／又は付加を備えることができる（以下、本発明の別の実施の形態に係る窒素固定酵素においても同様）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
また、本発明の実施の形態に係る窒素固定酵素は、配列番号３４～６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えたものであってもよい。
本発明の実施の形態に係る窒素固定酵素は、配列番号３４～６５のアミノ配列のうちの５個以上を備えることが好ましく、１０個以上を備えることがより好ましく、１５個以上を備えることが更に好ましく、２０個以上を備えることが更に好ましく、２５個以上を備えることが更に好ましく、２８個以上を備えることが更に好ましく、３０個以上を備えることが更に好ましい。配列番号３４～６５のアミノ配列の順序は、入れ替えても構わないが、変更しないことが好ましい。
また、本発明の別の実施の形態に係る窒素固定酵素は、本発明の実施の形態に係る上記形質転換体により発現されたものに限られず、本発明の実施の形態に係る上記窒素固定酵素と同一のアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であればよい。例えば、市販のタンパク質合成装置で合成されたものであってもよい。
上記窒素固定酵素は、本発明の実施の形態に係る上記窒素固定酵素と同一のアミノ酸配列のものに限られず、当該アミノ酸配列と４０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であってもよい。好ましくは当該アミノ酸配列と５０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、より好ましくは当該アミノ酸配列と６０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、更に好ましくは当該アミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、更に好ましくは当該アミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、更に好ましくは当該アミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、更に好ましくは当該アミノ酸配列と９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、更に好ましくは当該アミノ酸配列と９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素である。
なお、上記窒素固定酵素と４０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備える窒素固定酵素は、市販のタンパク質合成装置で人工的に合成したものであってもよい。
なお、本明細書において、塩基配列又はアミノ酸配列の「同一性」とは、比較される配列間において、各々の配列を構成する塩基又はアミノ酸残基の一致の程度の意味で用いられる。このとき、アミノ酸配列については、ギャップの存在及びアミノ酸の性質が考慮される（Wilbur, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 80:726-730 (1983)）。同一性の計算には、市販のソフトであるＢＬＡＳＴ（Altschul: J. Mol. Biol. 215:403-410 (1990)）、ＦＡＳＴＡ(Peasron: Methods in Enzymology 183:63-69 (1990))等を用いることができる。「同一性」の数値はいずれも、当業者に公知の相同性検索プログラムを用いて算出される数値であればよく、例えば、全米バイオテクノロジー情報センター（ＮＣＢＩ）の相同性アルゴリズムＢＬＡＳＴ（Ｂａｓｉｃｌｏｃａｌ ａｌｉｇｎｍｅｎｔ ｓｅａｒｃｈ ｔｏｏｌ）http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/においてデフォルト（初期設定）のパラメーターを用いることにより、算出することができる。
〔本発明の実施の形態の効果〕
本発明の実施の形態によれば、以下の効果を奏する。
（１）大腸菌の増殖に必要とされている窒素源の培地への添加を不要とすることができる窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供できる。
（２）ＶやＭｏといった希少な金属元素を培地に添加することなく大腸菌の増殖を可能とする窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供できる。
（３）酸素を発生する光合成生物であるシアノバクテリア由来の遺伝子を用いて発現させた窒素固定酵素（ニトロゲナーゼとは異なる窒素固定酵素）であるため、藻類や植物といった酸素を発生する光合成生物内で窒素固定を行うことができる。
（４）高温高圧下の環境で大量のエネルギーを必要とするハーバーボッシュ法に比べて、常温常圧下で機能する省エネルギー型の窒素固定反応であるため、エネルギーコストを大幅に削減できる。
（５）本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片を産業上有用な細菌、藻類、植物に導入することにより、窒素肥料（アンモニア、塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム等）を必要とせず生育可能な品種を得ることができる。
以下に、本発明を実施例に基づいて更に詳しく説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
〔本発明に係る窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片の単離〕
シアノバクテリアCyanothece sp. ATCC 51142（ＡＴＣＣ番号(受託番号)：５１１４２）より抽出したゲノムＤＮＡを物理剪断、具体的には抽出したゲノムＤＮＡ溶液を先の細いピペットチップ(QSP社)にて５回出し入れし、End-Repair Enzyme Mix （Epicentre製）により平滑末端化した。なお、物理剪断は、ボルテックスや超音波処理等により行なってもよい。平滑末端化したＤＮＡ断片は、電気泳動にてサイズ分けし、平均鎖長２５－４０ｋｂのＤＮＡ断片を抽出した。次いで、ＤＮＡ断片をクロラムフェニコール耐性遺伝子を有するCopyControlTM pCC2FOSTMフォスミドベクター(Epicentre製)（Eco72 Iサイト（382番目のＣと３８３番目のＧの間）で切断して直鎖化し、脱リン酸化したもの）にそれぞれライゲーションした（図２参照）。フォスミドベクターへのライゲーションにはＴ４ＤＮＡリガーゼ（ＴａＫａＲａ製)を使用した。このフォスミドベクターへライゲーションしたものを、MaxPlaxTMLambda Packaging Extracts(Epicentre製)を用いてin vitroパッケージングした。宿主微生物として大腸菌E. coli EPI-300T1R(Epicentre製) （以下、EPI300という）を使用した。そして、12.5 mg/mLのクロラムフェニコールを含むＬＢ培地(LB/Cm)寒天プレートで、形質転換された大腸菌（形質転換体）を得た。
形質転換された大腸菌のコロニーをとり、12.5 mg/mLのクロラムフェニコールを含むＬＢ培地(LB/Cm) 4 mL中で、空気中、３７℃で１８時間、１８０ ｒｐｍで培養した。次いで、培養した大腸菌を回収して、窒素源(塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム等の窒素化合物)を含まないM9-N培地(0.6% Na2HPO4、0.3% KH2PO4、0.05% NaCl、0.2% グルコース、0.00147% CaCl2×2H2O、0.05% MgSO4×7H2O、0.01% L-ロイシン)で３回洗浄した後、再度M9-N培地に懸濁した。調製した大腸菌懸濁液を、12.5 mg/mLのクロラムフェニコールを含むM9-N培地(M9-N/Cm)寒天プレートにプレーティングし、３７℃で７２時間培養した。得られたコロニーを再度M9-N培地(M9-N/Cm)寒天プレートに植え継ぎ、生育の見られた株について、窒素固定の表現型を与えるクローンとして単離した。クローン名を形質転換体１とした。
次に、窒素固定の表現型を示すクローンが保持するフォスミドベクターに挿入されている塩基配列を解析した結果、前述した配列番号１の塩基配列が形質転換体１に挿入されていることが判明した。この塩基配列中には、前述した配列番号２～３３の塩基配列を有する３２個のオープンリーディングフレームが含まれており、それぞれ前述した配列番号３４～６５のアミノ配列をコードしていることが判明した。これらのタンパク質のアミノ酸配列は既知の窒素固定タンパク質（ニトロゲナーゼ）と相同性が無く、今回得られた窒素固定酵素及びこれをコードするＤＮＡ断片が新規なものであると判断された。なお、フォスミドベクターに挿入されている塩基配列の解析はプライマーpCC2 forward-bとpCC2 reverse-bを用いて行なった。使用したプライマーの塩基配列は以下のとおりである。
pCC2 forward-b; CCAGTCACGACGTTGTAAAACG
pCC2 reverse-b; CGCCAAGCTATTTAGGTGAGAC
〔形質転換体の窒素固定能力の評価〕
形質転換体１の窒素固定能力を評価するため、窒素源を含まないM9-N培地で増殖試験を行った。形質転換体１（実施例１）及び前述のＤＮＡ断片挿入を行なっていないpCC2FOSTMフォスミドベクター(Epicentre製)を保持するEPI300（比較例１）をそれぞれ窒素源として0.1%の塩化アンモニウムをM9-N培地に含ませたM9+N培地(M9+N/Cm)で２４時間培養し、菌体を回収してM9-N培地で３回洗浄した後、5 mLのM9-N培地(M9-N/Cm)に、波長660nmでの光学濃度（optical density）（以下、OD660と記載)が0.02となるように植菌した。小型振盪培養装置［バイオフォトレコーダー（登録商標）TVS062CA、東洋製作所製］を用いて３７℃、４５ ｒｐｍで振とう培養を行ない、培養液のOD660を１時間ごとに測定した。増殖試験の結果を図３に示す。
窒素源を含まないM9-N培地(M9-N/Cm)では、大腸菌EPI300(比較例1)は、増殖が著しく阻害されるのに対し、形質転換体１(実施例１)は、速い増殖を示した。この結果から、今回得られた窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片を大腸菌に導入することで、窒素固定能力を付与することができることが明らかとなった。
なお、本発明は、上記実施の形態及び実施例に限定されず種々に変形実施が可能である。
１　ゲノムＤＮＡ
２　ＤＮＡ断片
３　フォスミドベクター（組み換えベクター）

Claims (12)

  1. 窒素固定酵素をコードする、配列番号１の塩基配列又は配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列を備えたＤＮＡ断片。
  2. 前記配列番号１の塩基配列を備えたＤＮＡ断片は、シアノバクテリアのゲノムＤＮＡ由来である、請求項１に記載のＤＮＡ断片。
  3. 窒素固定酵素をコードする、配列番号２～３３の塩基配列のいずれか１つ以上を備えたＤＮＡ断片。
  4. 前記ＤＮＡ断片は、シアノバクテリアのゲノムＤＮＡ由来である、請求項３に記載のＤＮＡ断片。
  5. 前記シアノバクテリアは、Cyanothece sp. ATCC 51142である、請求項２又は請求項４に記載のＤＮＡ断片。
  6. 請求項１～５のいずれか１項に記載のＤＮＡ断片を含む組み換えベクター。
  7. 前記ＤＮＡ断片はフォスミドベクターに組み込まれたものである、請求項６に記載の組み換えベクター。
  8. 請求項６又は請求項７に記載の組み換えベクターにより形質転換された形質転換体。
  9. 請求項８に記載の形質転換体により発現された窒素固定酵素。
  10. 請求項９に記載の窒素固定酵素と同一のアミノ酸配列又は前記アミノ酸配列と４０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素。
  11. 配列番号３４～６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えた、請求項９又は請求項１０に記載の窒素固定酵素。
  12. 配列番号３４～６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えた窒素固定酵素。
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