WO2018143650A1 - 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물 및 그 제조방법 - Google Patents

과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물 및 그 제조방법 Download PDF

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Definitions

  • the present invention relates to a method for preparing a composition capable of preventing, ameliorating or treating an overactive immune disease including an allergic disease and the like, and a composition prepared by the method.
  • the immune response and immune tolerance response must be balanced and balanced. Hyper-immune reactions can lead to irritable allergic diseases and autoimmune diseases, which have a great impact on human survival and quality of life.
  • Allergy refers to pathological hypersensitivity caused by immunological mechanisms to non-self substances such as allergens and is mediated by antibodies or cells. Allergic reactions are represented by T-helper type 2 (Th2) cell responses, which involve cytokines such as IL-4, IL-5, IL-13 and tumor necrosis factor (TNF) -a. Chemokines such as T-cell expressed & secreted (RANTES), eotaxin and macrophage chemoattractant protein-3 (MCP-3) play important roles in allergic inflammatory responses. It also includes autoimmunity, which causes pathological hypersensitivity to self.
  • Th2 T-helper type 2
  • Chemokines such as T-cell expressed & secreted (RANTES), eotaxin and macrophage chemoattractant protein-3 (MCP-3) play important roles in allergic inflammatory responses. It also includes autoimmunity, which causes pathological hypersensitivity to self.
  • allergic reactions include asthma, rhinitis, urticaria, anaphylaxis and the like, and some allergic reactions include allergic asthma and eczema caused by genetic binding to specific allergens. These allergies are generally characterized by harmless substances (such as pollen, mold, animal hair and dandruff, dust, ticks, and peanuts).
  • Dendritic cells play a pivotal role in regulating acquired immunity, which is selectively generated by acquired causality as well as innate immunity. It is a kind of representative antigen presenting cells to perform.
  • the dendritic cells are composed of various subpopulations according to origin, phenotype, function, and the like. Specifically, plasmacytoide dendritic cells (pDC) can produce high levels of type I IFN in response to various pathogen-derived stimuli. They are distinguished from conventional dendritic cells (cDCs) by surface phenotype. The pDCs express B220 and CD11c express at low levels, while cDCs express high levels of CD11c and CD11b, but do not express B220. Both pDCs and cDCs are obtained by the process of maturation of immature dendritic cells so that they can act as effective stimulators of a harmonious immune response.
  • pDCs are known to play an important role in the defense of viral infections by activating immune cells by releasing large amounts of type I IFNs when infected by DNA viruses or single-stranded RNA viruses.
  • mDCs mature DCs
  • the inventors of the present invention treated toll-like receptor agonists (TLR agonists) in immature dendritic cells and then induced differentiation, or toll-like receptor agonists during the process of differentiating immature dendritic cells.
  • TLR agonists toll-like receptor agonists
  • the immune tolerant plasmacytoid dendritic cells are induced, and when used, the present invention has been found to effectively prevent, ameliorate or treat an overactive immune disease.
  • One object of the present invention is to provide a method for preparing a composition that can effectively prevent, ameliorate or treat an overactive immune disease.
  • Another object of the present invention is to provide a composition prepared by the above method, which can effectively prevent, ameliorate or treat an overactive immune disease.
  • the present invention comprises the step of treating toll-like receptor agonist to immature dendritic cells to produce immune tolerant plasmacytoid dendritic cells (pDC),
  • pDC plasmacytoid dendritic cells
  • the present invention also provides a pharmaceutical composition for the prevention or treatment of irritable immune disease, comprising immune tolerant plasmacytoid dendritic cells induced by treating toll-like receptor agonists to immature dendritic cells.
  • the present invention also provides a cosmetic composition for preventing or ameliorating irritable immune disease, comprising immune tolerant plasmacytoid dendritic cells induced by treating a toll-like receptor agonist to immature dendritic cells.
  • the present invention also provides a food composition for preventing or ameliorating irritable immune disease, comprising immune tolerant plasmacytoid dendritic cells induced by treating a toll-like receptor agonist to immature dendritic cells.
  • the present invention can induce high yield of plasmacytoid dendritic cells having immune tolerance from immature dendritic cells through a simple and easy process, thereby enabling a stable supply of large amounts of immune tolerant plasmacytoid dendritic cells.
  • the immune tolerant plasmacytoid dendritic cells obtained as described above in the present invention can inhibit the expression of allergen-specific immunoglobulin and Th2 cytokines, thereby effectively preventing or treating various hypersensitivity immune diseases including food-derived allergic diseases. It is safe when administered to a human body.
  • Figure 1 shows the design of the method for treating differentiation-inducing factors (Flt3L-containing media) and toll-like receptor agonists (TLR agonists) for immature dendritic cells according to an embodiment of the present invention.
  • differentiation-inducing factors Flt3L-containing media
  • TLR agonists toll-like receptor agonists
  • FIG. 2 shows the separation of differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells (TLRs-pDC) after treatment of toll-like receptor agonist (Pam3) in Example 1 according to one embodiment of the present invention.
  • FIG. 3 (a) shows surface expression molecules specifically induced in differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells after treatment of toll-like receptor agonist (Pam3) in Example 1 according to one embodiment of the present invention.
  • Figure 3 (b) is a graph of the ratio of the number of immature dendritic cells in Example 1 compared to the number of differentiation-induced plasma cytokine dendritic cells after treatment of toll-like receptor agonist (Pam3) according to an embodiment of the present invention It is shown.
  • FIG. 4 shows cytokines in differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells (TLRs-pDC) and common plasmacytoid dendritic cells (pDC) after treatment of toll-like receptor agonist (Pam3) in Example 2 according to one embodiment of the present invention.
  • TLRs-pDC differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells
  • pDC common plasmacytoid dendritic cells
  • IFN- ⁇ , IFN- ⁇ , IL-12p70, IL-10 toll-like receptor agonist
  • Figure 5 shows the expression patterns of cytokine IL-10 in differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells and general plasmacytoid dendritic cells (non) after treatment of various toll-like receptor agonists according to an embodiment of the present invention in Example 3
  • the graph shows the result of comparing.
  • FIG. 6 shows cytokines (IFN- ⁇ , IFN- ⁇ , TNF- ⁇ , IL) according to the time point of treatment of toll-like receptor agonist (Pam3) treated to immature dendritic cells according to an embodiment of the present invention in Example 4. -12p70, IL-10) is shown in a graph comparing the expression pattern.
  • TLRs-pDC differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells
  • pDC general plasmacytoid dendritic cells
  • the graph shows the results of comparing the expression patterns of the complex molecules, CD80 and CD86.
  • FIG. 8 shows IDO in differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells (TLRs-pDC) and common plasmacytoid dendritic cells (pDC) after treatment of toll-like receptor agonist (Pam3) in Example 6.
  • TLRs-pDC differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells
  • pDC common plasmacytoid dendritic cells
  • Pam3 toll-like receptor agonist
  • TLRs-pDC plasmacytoid dendritic cells
  • Pam3 toll-like receptor agonist
  • FIG. 9 (b) shows the differentiation-induced differentiation of plasmacytoid dendritic cells (TLRs-pDC) or general plasmacytosis after treatment of toll-like receptor agonist (Pam3) according to one embodiment of the present invention.
  • TLRs-pDC plasmacytoid dendritic cells
  • Pam3 toll-like receptor agonist
  • FIG 10 shows the degree of binding of Rv1411c protein of dendritic cells (TLR2-/-) isolated from wild-type dendritic cells (WT) and TLR2 knockout mice in Example 8.
  • FIG. 11 shows differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells (Rv1411c (Rv1411c) after treatment of a toll-like receptor agonist (Rv1411c protein (0.1 ⁇ g / ml, 0.5 ⁇ g / ml)) according to an embodiment of the present invention in Example 9.
  • a toll-like receptor agonist Rv1411c protein (0.1 ⁇ g / ml, 0.5 ⁇ g / ml)
  • cytokine IFN- ⁇ , IFN- ⁇ , TNF- ⁇ , IL-12p70, IL-
  • the graph shows the results of comparing the expression patterns of 10).
  • Example 10 shows in Example 10 differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells (Rv1411c-pDC) and general plasmacytoid dendritic cells (pDC) after treatment of toll-like receptor agonists (Rv1411c protein) according to one embodiment of the present invention.
  • Comparison of the expression patterns of MHC complex molecules, CD80, CD86 and immune tolerance induction molecules (IDO, CCR9 and PD-L1) is shown graphically.
  • Figure 13 shows the differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells (Rv1411c-pDC) or general plasmacytoid dendritic cells after treatment of T cells in Example 11 and toll-like receptor agonist (Rv1411c protein) according to one embodiment of the present invention.
  • pDC is a graph showing the results of comparing the degree of proliferation of T cells after the mixed culture.
  • Figure 14 shows the differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells (Rv1411c-pDC) or common plasmacytoid dendritic cells after treatment of T cells in Example 11 and toll-like receptor agonist (Rv1411c protein) according to one embodiment of the present invention. (pDC) after the mixed culture and confirmed the secretion pattern of IFN-gamma is shown in the graph.
  • FIG. 15 (a) shows differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells (Rv1411c-pDC) or general plasma after treatment of toll-like receptor agonist (Rv1411c protein) according to an embodiment of the present invention with respect to T cells in Example 12.
  • pDC cytokine dendritic cells
  • FIG. 15B shows differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells (RVc1411c-pDC) or general plasma after treatment of Toll-like receptor agonist (Rv1411c protein) according to an embodiment of the present invention with respect to T cells in Example 12.
  • the result of measuring the proliferation rate of regulatory T cells after treatment with cytoid dendritic cells (pDC) is shown graphically.
  • FIG. 16 shows a toll-like receptor agonist (Rv1411c protein) according to one embodiment of the present invention in Example 13.
  • T cells differentiated by plasmacytoid dendritic cells (RVc1411c-pDC) induced after treatment were incubated with CD4 + and CD25-acting T cells, and then T cells to the ratio of primed T cells to CD25-acting T cells.
  • the graph shows the results of measuring changes in proliferative capacity.
  • TLR agonist plasma cytokine dendritic cells
  • Non plasma cytokine dendritic cells
  • FIG. 19 shows plasmacytoid dendritic cells (TLRs-pDC 14d iv) induced after treatment of toll-like receptor agonist (Rv1411c protein) according to an embodiment of the present invention for an egg yolk protein-induced food allergy disease animal model in Example 15.
  • TLRs-pDC 14d iv plasmacytoid dendritic cells
  • Rv1411c protein toll-like receptor agonist
  • FIG. 20 shows plasmacytoid dendritic cells (TLRs-pDC 14d iv) induced after treatment of toll-like receptor agonist (Rv1411c protein) according to an embodiment of the present invention for an egg yolk protein-induced food allergy disease animal model in Example 15.
  • FIG. The graph shows the results of measuring changes in body temperature after injection.
  • TLRs-pDC 14d iv plasmacytoid dendritic cells
  • Rv1411c protein plasmacytoid dendritic cells
  • TLRs-pDC 14d plasmacytoid dendritic cells
  • Rv1411c protein toll-like receptor agonist
  • TLRs-pDC 14d plasmacytoid dendritic cells
  • Rv1411c protein toll-like receptor agonist
  • the present invention relates to a method for preparing a pharmaceutical composition for preventing or treating an overactive immune disease, comprising the steps of preparing the following immune tolerant plasmacytoid dendritic cells.
  • the step of preparing the immune tolerant plasmacytoid dendritic cells may be performed by treating toll-like receptor agonists on the dendritic cells.
  • DC dendritic cell
  • MHC major histocompatibility complex
  • mDC mature dendritic cells
  • the term “immature dendritic cell” is found in the early stages of maturation of dendritic cells and does not express CD14, the surface phenotype of monocyte cells, and also does not include any of the co-stimulatory molecules CD40, CD54, CD80, CD86 and CD274. One is expressed at low levels compared to mature dendritic cells.
  • the term “quasi-dendritic dendritic cell” is a dendritic cell that loses some of the properties of immature dendritic cells and has some characteristics of the phenotype of mature dendritic cells, and partially or incompletely matured morphological and phenotypic characteristics. Meaning dendritic cells.
  • mature dendritic cell refers to a cell formed by maturation of immature dendritic cells.
  • Mature dendritic cells have high expression of MHC class II, CD40, CD54, CD80, CD86, and CD274 as well as DC-LAMP, release anti-inflammatory cytokine, and primitive allogeneic in mixed lymphocyte reactions. Characterized by having the ability to produce increased production of allogeneic T cells and syngeneic T cells and / or increased production of dendritic cell cytokines.
  • Mature dendritic cells typically express high levels of CCR7 and CXCR4.
  • the dendritic cells to which the toll-like receptor agonist is treated are preferably immature dendritic cells that are not differentiated.
  • the immature dendritic cells may include primitive dendritic cells, and may be isolated and obtained from mammalian bone marrow or the like.
  • the immune tolerant dendritic cells induced by differentiation by treating toll-like receptor agonists to immature dendritic cells as described above may be immune tolerant plasmacytoid dendritic cells (pDC).
  • pDC plasmacytoid dendritic cells
  • plasmacytoid dendritic cells refers to a subset of dendritic cells, 1958, Lennert and Dr. Plasmacytoid T cells, first known by histological detection of plasma cell morphology in human lymph nodes, but not expressing B cell specific markers (Plasmacytoid T cells) After being known to express myeloid lineage antigen and MHC class II without expressing CD3, a common marker of T cells, it was named plasmacyytoid monocyte. After that, the ability to induce an allerogenic mixed lymphocyte reaction (MLR), which is inherent in dendritic cells, has been identified, which is again referred to as plasmacytoid dendritic cells, or simply referred to as 'pDC'. do.
  • MLR mixed lymphocyte reaction
  • the term “immune tolerance” refers to a state that suppresses an immune response as well as a state that does not exhibit an immune response to a specific antigen. Therefore, in the present invention, the "immune tolerant plasmacytoid dendritic cells” promote the secretion of anti-inflammatory cytokines such as IL-10, inhibit the secretion of inflammatory cytokines such as IL-12p70 and TNF- ⁇ , Indoleamine-2,3 dioxygenase (IDO) molecules, recently known as immune tolerance inducing molecules, and CCR9, a surface molecule of immune tolerance induction cells, are expressed at high levels. Induce differentiation of regulatory T cells and inhibit the activity of effector T cells.
  • anti-inflammatory cytokines such as IL-10
  • IDO Indoleamine-2,3 dioxygenase
  • immune tolerant plasmacytoid dendritic cells can be stably and in large quantities prepared by treating the toll-like receptor agonist before or during differentiation of immature dendritic cells.
  • the term "before the differentiation start” may include a time point before the immature dendritic cells are treated with a factor for inducing differentiation.
  • the term “differentiating” means a time point from the time of processing the factor for inducing differentiation to the immature dendritic cells until the differentiation is completed by the factor for inducing differentiation. Preferably, it may include a time within 7 days after the treatment from the time of processing the factor for inducing differentiation, but is not limited thereto.
  • the toll-like receptor agonist is not particularly limited as long as it is treated only before or during the differentiation of immature dendritic cells as described above.
  • the toll-like receptor agonist may be treated within 7 days (168 hours), 5 days (120 hours) or 3 days (72 hours) from the start of differentiation.
  • the present invention is not limited thereto.
  • the immature dendritic cells may be depleted by using a factor for inducing differentiation within 36 hours, preferably 24 hours, after the agent is treated. Differentiation may be initiated, but is not limited thereto.
  • the toll-like receptor agonist may be treated one or more times, and the number of specific treatments is not particularly limited, but when the toll-like receptor agonist is treated during differentiation of immature dendritic cells, the immature dendritic cells are differentiated.
  • the toll like receptor agonist may be treated at least once within 7, 5 or 3 days from the start.
  • the immature dendritic cell is treated at least once with the toll-like receptor agonist, and then within 36 hours or 24 hours from any one treatment time point. Differentiation of immature dendritic cells may be initiated and optionally further treated one or more times during the differentiation.
  • the "initiation of differentiation” may mean a process of adding a factor for inducing differentiation to a culture medium of immature dendritic cells or inoculating immature dendritic cells in a medium containing a factor for inducing differentiation.
  • the differentiation-inducing factor is not particularly limited as long as it can induce differentiation of immature dendritic cells.
  • the term "toll-like receptor agonist” is a pathogen-derived conserved molecular substance, which may be Pathogen associated molecular patterns (PAMPs).
  • PAMPs Pathogen associated molecular patterns
  • the pathogen may be Gram-positive bacterium, Gram-negative bacterium, fungus or virus.
  • the toll-like receptor agonists are endogenous molecules released from damaged or dead cells, and may be Damage associated molecular patterns (DAMPs). DAMPs or PAMPs collect adapter molecules in the cytoplasm of the cell to initiate and transmit an immune response via the TLR signal.
  • the toll like receptor agonist will be a derivative of PAMPs or DAMPs that bind to fragments, variants, analogs, homology or toll like receptors and induce activation by TLR-mediated, such as activation of NF- ⁇ B activity.
  • TLR-mediated such as activation of NF- ⁇ B activity.
  • the toll-like receptor agonist fragments, variants, analogs, homologs or derivatives are at least 30-99% identical to the amino acids of the TLR agonist and will induce activation by toll-like receptor-mediated.
  • the type of toll-like receptor agonist to be treated to the immature dendritic cells is not particularly limited, but is preferably a PAMP ligand, more preferably immature that can pass through MyD88 (Myeloid differentiation primary response gene 88) signal. Differentiation of immune tolerant plasmacytoid dendritic cells can be induced from dendritic cells.
  • the toll-like receptor agonist in the present invention may include one or more selected from the group consisting of TLR2 agonist, TLR4 agonist, TLR5 agonist, TLR7 agonist, TLR8 agonist, TLR9 agonist, TLR11 agonist, TLR12 agonist and TLR13 agonist.
  • TLR2 agonist TLR4 agonist
  • TLR5 agonist TLR5 agonist
  • TLR7 agonist TLR8 agonist
  • TLR9 agonist TLR11 agonist
  • TLR12 agonist and TLR13 agonist TLR13 agonist.
  • one or more of the ligands shown in Table 1 may be included, but is not particularly limited thereto, and may bind to toll-like receptors of dendritic cells, and may be a ligand that may pass through a MyD88 signal. Can be used without limitation.
  • the TLR2 agonist when used as the toll-like receptor agonist in the present invention, it may further include at least one of a TLR1 agonist and a TLR6 agonist that acts as a co-receptor.
  • a TLR1 agonist and a TLR6 agonist that acts as a co-receptor.
  • specific examples of the TLR1 agonist and the TLR6 agonist may be ligands shown in Table 1 below, but any ligand that may act as a co-receptor of the TLR2 agonist is not particularly limited.
  • Ligand Pathogen Associated Ligands Ligand-derived host Synthetic ligands TLR1 Multiple triacyl lipopeptides bacteria Pam3Cys- * TLR2 Multiple Glycolipids bacteria CFA Multiple lipopeptides bacteria Pam3, MALP2-** Multiple lipoproteins bacteria Pam2Cys ** Lipoteichoic acid Gram-positive bacteria FSL-1 HSP 70, or other heat shock proteins Host cells Hib-OMPC Zymosan (Beta-glucan) Fungi protein Mycobacterium tuberculosis Rv1411c Protein, ESAT-6, PE / PPE Protein, Rv0577 TLR3 Double stranded RNA virus Poly (I: C); Low or High Molecular Weight Poly (A: U) TLR4 Lipopolysaccharides (LPS); or IPS analogue (MPLA) Gram negative bacteria AGP Heat shock protein Bacteria and Host Cells MPLA Fibrinogen Host cell RC-529 Heparin sulfate
  • TLR10 TLR11
  • Profili Toxoplasma gondii TLR12
  • Profili Toxoplasma gondii TLR13
  • the toll-like receptor agonist may be derived from a microorganism, a virus, a plant or an animal, may be synthesized, and the source is not particularly limited.
  • the differentiation of the immature dendritic cells in the present invention can be performed using a factor for inducing differentiation.
  • a factor for inducing differentiation it is preferable to use FMS-like tyrosine kinase 3 ligand (FMS-like tyrosine kinase 3, Flt3L).
  • the immature dendritic cells may be plasmacytoid dendritic cells and general dendritic cells (conventional). There is no particular restriction as long as it can induce differentiation into plasmacytoid cells (cDC).
  • the differentiation of the immature dendritic cells in the present invention may be performed by culturing the immature dendritic cells in a medium containing a factor for inducing differentiation, or by adding the factor for inducing differentiation to the culture medium of the immature dendritic cells.
  • the factor for inducing differentiation may be additionally added one or more times during the process of differentiating the immature dendritic cells.
  • FMS-like tyrosine kinase 3 (Flt3L) corresponds to endogenous small molecules that activate hematopoietic progenitors to perform cytokines and growth factors. do.
  • the differentiation period of the immature dendritic cells in the present invention is not particularly limited, and may vary depending on the type and environment of the medium used, for example, may be performed for 5 to 15 days, preferably 7 days May be carried out for 10 to 10 days, more preferably for 8 to 9 days.
  • the immune tolerance of the plasmacytoid dendritic cells can be activated.
  • the kind of toll-like receptors used for activating the differentiated immune tolerant plasmacytoid dendritic cells as described above is not particularly limited, and the TLR1 agonist, TLR2 agonist, TLR3 agonist, TLR4 agonist, TLR5 agonist, TLR6 agonist It may include one or more selected from the group consisting of, TLR7 agonist, TLR8 agonist, TLR9 agonist, TLR11 agonist, TLR12 agonist and TLR13 agonist, but preferably TLR9 agonist may be used.
  • the above-described process can effectively induce differentiation from immature dendritic cells to immune tolerant plasmacytoid dendritic cells. Accordingly, immature dendritic cells can be used to stably supply a large amount of immune tolerant plasmacytoid dendritic cells through a simple and easy process.
  • the immune tolerant plasmacytoid dendritic cells obtained as described above in the present invention inhibit the expression of inflammatory cytokines, promote the expression of anti-inflammatory cytokines, induce differentiation into regulatory T cells and operate By inhibiting the activity of effector T cells can effectively suppress the immune response, and furthermore, allergen-specific immunoglobulin By suppressing the expression of Th2 cytokines, it is possible to effectively prevent or treat various hypersensitivity immune diseases, including food-derived allergic diseases.
  • the "sensitizing immune disease” refers to an excessive immune response to one or more antigenic exposures, for example, substances that cause no problems in humans, such as pollen, come into contact with the skin, ingested into the body, or metabolism in the body, and It is a disease caused by the body's immune system caused by a lesion, and refers to any disease that is harmful to the human body in which an excessive immune response by memory cells occurs due to repeated contact with an external substance.
  • the hypersensitive immune disease in the present invention is allergic urticaria, allergic rhinitis, allergic conjunctivitis, allergic asthma, allergic dermatitis, autoimmune hepatitis, allergic bronchopulmonary aspergillosis (allergic bronchopulmonary aspergillosis) and At least one selected from the group consisting of allergic stomatitis, but is not limited thereto.
  • Prevention in the present invention means any action that inhibits or delays progression of an overactive immune disease by administration of a composition of the present invention.
  • Treatment and “improvement” in the present invention means all actions that improve or beneficially change the symptoms of an overactive immune disease by administration of the composition of the present invention.
  • the pharmaceutical composition may be characterized in the form of capsules, tablets, granules, injections, ointments, powders or beverages, the pharmaceutical composition may be characterized in that it is intended for humans.
  • compositions of the present invention are not limited to these, but each may be formulated in the form of oral dosage forms, such as powders, granules, capsules, tablets, aqueous suspensions, external preparations, suppositories, and sterile injectable solutions according to conventional methods.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may comprise a pharmaceutically acceptable carrier.
  • Pharmaceutically acceptable carriers can be used as oral administration binders, suspending agents, disintegrants, excipients, solubilizers, dispersants, stabilizers, suspending agents, pigments, fragrances, etc.
  • buffers, preservatives, analgesic Topical agents, solubilizers, isotonic agents, stabilizers and the like can be mixed and used, and for topical administration, bases, excipients, lubricants, preservatives and the like can be used.
  • the formulation of the pharmaceutical composition of the present invention can be prepared in various ways by mixing with the pharmaceutically acceptable carrier as described above.
  • oral administration may be in the form of tablets, troches, capsules, elixirs, suspensions, syrups, wafers, and the like, in the case of injections, in unit dosage ampoules or multiple dosage forms. have. And others, solutions, suspensions, tablets, capsules, sustained release preparations and the like.
  • Suitable carriers, excipients, and diluents for formulation include lactose, dextrose, sucrose, sorbitol, mannitol, xylitol, erythritol, malditol, starch, acacia rubber, alginate, gelatin, calcium phosphate, calcium silicate, Cellulose, methyl cellulose, microcrystalline cellulose, polyvinylpyrrolidone, water, methylhydroxybenzoate, propylhydroxybenzoate, talc, magnesium stearate or mineral oil and the like can be used.
  • fillers, anti-coagulants, lubricants, wetting agents, fragrances, emulsifiers, preservatives and the like may be further included.
  • Routes of administration of the pharmaceutical compositions according to the invention are not limited to these, but are oral, intravenous, intramuscular, intraarterial, intramedullary, intradural, intracardiac, transdermal, subcutaneous, intraperitoneal, intranasal, intestinal, topical , Sublingual or rectal. Oral or parenteral release is preferred.
  • parenteral includes subcutaneous, intradermal, intravenous, intramuscular, intraarticular, intramuscular, intrasternal, intradural, intralesional and intracranial injection or infusion techniques.
  • the pharmaceutical compositions of the invention may also be administered in the form of suppositories for rectal administration.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is dependent on a number of factors, including the activity, age, weight, general health, sex, formulation, time of administration, route of administration, rate of release, drug combination and severity of the particular disease to be prevented or treated, of the specific compound employed. It may vary and the dosage of the pharmaceutical composition depends on the condition, weight, extent of disease, drug form, route of administration and duration of the patient, but may be appropriately selected by those skilled in the art, 0.0001 to 50 mg / day It may be administered at kg or 0.001 to 50 mg / kg. Administration may be administered once a day or may be divided several times. The dosage does not limit the scope of the invention in any aspect.
  • the pharmaceutical composition according to the present invention may be formulated as pills, dragees, capsules, solutions, gels, syrups, slurries, suspensions.
  • composition of the present invention may be used alone or in combination with methods using surgery, radiation therapy, hormone therapy, chemotherapy and biological response modifiers.
  • the present invention also relates to a method of treating an overactive immune disease comprising administering a pharmaceutically effective amount of the pharmaceutical composition according to the present invention to an individual suffering from an overactive immune disease.
  • the present invention also relates to a method for preventing an overactive immune disease comprising administering a pharmaceutically effective amount of the pharmaceutical composition according to the present invention to an individual suffering from an overactive immune disease.
  • compositions administered in the therapeutic or prophylactic methods of the present invention overlap with those described above, and the following description is omitted to avoid excessive complexity of the description.
  • the method of administering the pharmaceutical composition may be administered orally or parenterally, and in parenteral administration, intraperitoneal injection, rectal injection, subcutaneous injection, intravenous injection, intramuscular injection, intrauterine dural injection, cerebrovascular It can be administered by intracerebroventricular injection or intrathoracic injection.
  • the composition can be administered orally during clinical administration and can be used in the form of a general pharmaceutical formulation.
  • the number of administration of the pharmaceutical composition is not particularly limited, and may be performed one or more times, and more specifically, may be repeated administration of one or more times or symptoms depending on the purpose of prevention and treatment.
  • the pharmaceutically effective amount is 0.0001 to 50 mg / kg or 0.001 to 50 mg / kg, but is not limited thereto.
  • the dosage may vary depending on the weight, age, sex, health condition, diet, duration of administration, method of administration, clearance, severity of the disease, and the like of the particular patient.
  • the term "administration" means providing a subject of any composition of the invention in any suitable manner.
  • the term "individual” refers to all animals, such as humans, monkeys, dogs, goats, pigs, or rats, having a disease that can be improved by administering a composition of the present invention to the immune system.
  • the term “pharmaceutically effective amount” means an amount sufficient to treat a disease at a reasonable benefit or risk ratio applicable to medical treatment, which is dependent on the type of disease, the severity, the activity of the drug, the drug, and the drug. Sensitivity, time of administration, route of administration and rate of release, duration of treatment, factors including drug used concurrently, and other factors well known in the medical arts.
  • the present invention relates to a method for preparing a cosmetic composition for preventing or ameliorating irritable immune disease, comprising the step of preparing the above-mentioned immune tolerant plasma cytoplasmic dendritic cells.
  • the cosmetic composition is a lotion, nutrition lotion, nutrition essence, massage cream, beauty bath additives, body lotion, body milk, bath oil, baby oil, baby powder, shower gel, shower cream, sunscreen lotion, sunscreen cream, Suntan cream, skin lotion, skin cream, sunscreen cosmetic, cleansing milk, depilatory ⁇ cosmetic ⁇ , face and body lotion, face and body cream, skin whitening cream, hand lotion, hair lotion, cosmetic cream, jasmine oil, Bath Soap, Water Soap, Beauty Soap, Shampoo, Hand Cleanser (Hand Cleaner), Medicated Soap ⁇ Non-Medical ⁇ , Cream Soap, Facial Wash, Systemic Cleanser, Scalp Cleaner, Hairrin, Cosmetic Soap, Tooth Whitening Gel, Toothpaste It may be prepared in the form.
  • the composition of the present invention may further comprise a solvent or a suitable carrier, excipient or diluent commonly used in the preparation of the cosmetic composition.
  • the kind of the solvent that can be further added in the cosmetic composition of the present invention is not particularly limited, but, for example, water, saline, DMSO, or a combination thereof may be used, and as the carrier, excipient or diluent, purified water, oil, wax , Fatty acids, fatty acid alcohols, fatty acid esters, surfactants, humectants, thickeners, antioxidants, viscosity stabilizers, chelating agents, buffers, lower alcohols, and the like.
  • a whitening agent, a moisturizing agent, vitamins, sunscreens, perfumes, dyes, antibiotics, antibacterial agents, antifungal agents may be included as necessary.
  • the oil may be hydrogenated vegetable oil, castor oil, cottonseed oil, olive oil, palm oil, jojoba oil, avocado oil, wax, wax, carnauba, candelilla, montan, ceresin, liquid paraffin, lanolin Can be used.
  • Stearic acid, linoleic acid, linolenic acid, oleic acid may be used as fatty acids, cetyl alcohol, octyl dodecanol, oleyl alcohol, pantenol, lanolin alcohol, stearyl alcohol, hexadecanol may be used as fatty acid alcohol.
  • Isopropyl myristate, isopropyl palmitate, butyl stearate may be used as the fatty acid ester.
  • surfactants cationic surfactants, anionic surfactants and nonionic surfactants known in the art can be used, and surfactants derived from natural products are preferred as much as possible.
  • it may include a hygroscopic agent, a thickener, an antioxidant, and the like, which are widely known in the cosmetic field, and their types and amounts are known in the art.
  • the present invention relates to a method for producing a food composition for preventing or ameliorating irritable immune disease, comprising the step of preparing the above-mentioned immune tolerant plasma cytoplasmic dendritic cells.
  • the food composition of the present invention may be prepared in the form of various foods, for example, beverages, gums, teas, vitamin complexes, powders, granules, tablets, capsules, sweets, rice cakes, breads and the like. Since the food composition of the present invention is composed of plant extracts having little toxicity and no side effects, it can be used with confidence even for long-term use for prophylactic purposes.
  • the amount may be added at a ratio of 0.1 to 50% of the total weight.
  • natural carbohydrates include monosaccharides such as glucose, disaccharides such as fructose, sucrose and the like, and common sugars such as polysaccharides, dextrins and cyclodextrins, and sugar alcohols such as xylitol, sorbitol, and erythritol.
  • the flavourant include natural flavourants (tautin, stevia extract (for example, rebaudioside A, glycyrrhizin, etc.), synthetic flavors (saccharin, aspartame, etc.).
  • compositions of the present invention include various nutrients, vitamins, minerals (electrolytes), flavors such as synthetic flavors and natural flavors, colorants, pectic acid and salts thereof, alginic acid and salts thereof, organic acids, protective colloidal thickeners. , pH adjusters, stabilizers, preservatives, glycerin, alcohols, carbonation agents used in carbonated drinks, and the like.
  • additives can be used independently or in combination.
  • the proportion of such additives is not so critical but is usually selected in the range of 0.1 to about 50 parts by weight per 100 parts by weight of the composition of the present invention.
  • femoral bone marrow was collected from bone marrow harvesting injections from C57BL / 6 mice.
  • the collected bone marrow was washed with phosphate buffer saline (PBS) and red blood cells were removed using ammonium chloride.
  • PBS phosphate buffer saline
  • the isolated cells (3 ⁇ 10 6 cells / well) were seeded in 6-well plates, followed by 10% FBS (Fetal bovine serum, calf serum), 2 mM L-glutamine, 100 U / ml penicillin / streptomycin, 50 ⁇ M.
  • Incubation and differentiation were initiated by addition of 1 ml RPMI 1640 comprising mercaptoethanol, 0.1 mM non-essential amino acid, 1 mM sodium pyruvate and 250 ng / ml FLT3L.
  • Pam 3 was treated at a concentration of 100-500 ng / ml.
  • 1 ml of RPMI 1640 was supplemented and incubated for 8 days.
  • the cells obtained after the cultivation were subjected to plasmacytoid dendritic cells using a plasmacytoid dendritic cell separation kit (Miltenyi Biotec, Auburn, CA) and a magnetic cell sorting system (Vario MACS: Miltenyi Biotec, Auburn, CA). Separation (FIG. 2). Since the treatment of the toll-like receptor agonist may affect the differentiation of the plasmacytoid dendritic cells, the surface-expressing molecules specifically induced in the plasmacytoid dendritic cells are confirmed on the 8th day, and the results are shown in FIG. ).
  • a plasmacytoid dendritic cell separation kit Miltenyi Biotec, Auburn, CA
  • Vario MACS Miltenyi Biotec, Auburn, CA
  • the toll-like receptor agonist when the toll-like receptor agonist was treated (TLRs-pDC), the ratio of the number of plasmacytoid dendritic cells obtained after 8 days to the number of initial immature dendritic cells was measured, and the result is shown in FIG. ).
  • the case where the toll-like receptor agonist was not treated is shown as a comparative example (pDC).
  • Example 2 In order to confirm the cytokine secretion of the plasma cytokine dendritic cells isolated in Example 1, inoculated cells (5 ⁇ 10 5 cells / ml) in 48 well plate and then ODN1826 (1 ⁇ g / ml) Treatment was stimulated. After 24 hours, the obtained supernatant was separated, and cytokine secretion was confirmed by an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). The results are shown in FIG. 4. However, in order to confirm the treatment effect of the toll-like receptor agonist, the case where the toll-like receptor agonist was not treated during differentiation of immature dendritic cells in Example 1 is shown as a comparative example (pDC).
  • pDC comparative example
  • plasma-cytoid dendritic cells strongly induced type I interferons (IFN- ⁇ and IFN- ⁇ ) and representative inflammatory cytokines TNF- ⁇ and IL-12p70.
  • toll-like receptor agonists 0.5 ⁇ g / ml
  • ODN1826 differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells
  • TLRs-pDC differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells
  • IL-10 an immunosuppressive cytokine
  • the plasmacytoid dendritic cells induced by differentiation by treating toll-like receptor agonists to immature dendritic cells according to the present invention were confirmed to have immune tolerance unlike ordinary plasmacytoid dendritic cells.
  • plasmacytoid dendritic cells were induced in the same manner as in Example 1, but as the toll-like receptor agonist, ligands shown in Table 2 were used. After 8 days of incubation, plasmacytoid dendritic cells were separated with a purity of 85% or more using a plasmacytoid dendritic cell separation kit (Miltenyi Biotec, Auburn, CA) and a magnetic cell sorting system (Vario MACS: Miltenyi Biotec, Auburn, CA). It was.
  • a plasmacytoid dendritic cell separation kit Miltenyi Biotec, Auburn, CA
  • Vario MACS Miltenyi Biotec, Auburn, CA
  • Isolated cells (5 ⁇ 10 5 cells / ml) were inoculated in 48 well plates, treated with ODN1826 (1 ⁇ g / ml) and incubated for 24 hours. Thereafter, only the supernatant was separated and the secretion pattern of the immunosuppressive cytokine IL-10 was confirmed by enzyme immunoassay. The results are shown in FIG. 5. However, in order to confirm the treatment effect of the toll-like receptor agonist, the case where the toll-like receptor agonist was not treated during differentiation of immature dendritic cells is shown as a comparative example (non).
  • the differentiation of plasmacytoid dendritic cells is induced in the same manner as in Example 1, but the time to start the differentiation of the toll-like receptor agonist (0 day treatment)
  • the treatment was performed after 3 days from the start of differentiation (3 day treatment).
  • the plasmacytoid dendritic cells were purified to 85% or higher using a plasmacytoid dendritic cell separation kit (Miltenyi Biotec, Auburn, CA) and a magnetic cell sorting system (Vario MACS: Miltenyi Biotec, Auburn, CA). Separated.
  • Isolated cells (5 ⁇ 10 5 cells / ml) were inoculated in 48 well plates, treated with ODN1826 (1 ⁇ g / ml) and incubated for 24 hours. After separating only the supernatant, the secretion pattern of cytokines was confirmed by enzyme immunoassay, and the results are shown in FIG. 6. However, in order to confirm the treatment effect of the toll-like receptor agonist, the case where the toll-like receptor agonist was not treated during the differentiation of immature dendritic cells is shown as a comparative example (no-treatment, non).
  • Dendritic cells including plasmacytoid dendritic cells, present antigens through MHC molecules to activate T cells upon recognition of foreign antigens and express co-stimulatory factors such as CD80 and CD86 to facilitate interaction.
  • the plasmacytoid dendritic cells isolated in Example 1 were stimulated with ODN1826 and then cultured for 24 hours to confirm the expression level of the cell surface molecules.
  • specific markers of plasmacytoid dendritic cells anti-CD11c (PE-Cy7, BD Biosciences), anti-PDCA-1 (PerCP-eFluor® 710 , ebioscience) and anti-CD80 (v450, BD Biosciences), anti-CD86 (APC, ebioscience), anti-MHC-I (PE, ebioscience) and anti-MHC-II (APC-eFluor) specific for cell surface molecules 780, ebioscience)
  • the antibody was treated for 30 minutes at 4 ° C and analyzed by flow cytometry LSRFortessa x-20 (BD Biosciences). The results are shown in FIG. However, in order to confirm the treatment effect of the toll-like receptor agonist
  • TLRs-pDC general plasmacytoid dendritic cells express high levels of co-stimulating factor CD86 and MHC class II molecules exogenous antigen presentation, but differentiation-induced plasma by treating toll-like receptor agonists Cytoid dendritic cells (TLRs-pDC) showed no or no response. Meanwhile, another co-stimulatory factor, CD80, and MHC class I molecules presenting endogenous or cross-antigens, were treated with toll-like receptor agonists and were not treated with differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells (TLRs-pDC). It was found to be expressed at higher levels than (pDC).
  • anti-CD11c PE-Cy7, BD Biosciences
  • markers specific for plasmacytoid dendritic cells and Cell surface factor antibodies such as anti-PDCA-1 (PerCP-eFluor® 710, ebioscience) and immune tolerance induced cell surface molecules, such as anti-PD-L1 (PE, ebioscience) and anti-CCR9 (FITC, ebioscience)
  • anti-PDCA-1 PerCP-eFluor® 710, ebioscience
  • immune tolerance induced cell surface molecules such as anti-PD-L1 (PE, ebioscience) and anti-CCR9 (FITC, ebioscience
  • CCR9 and IDO molecules were significantly increased compared to the untreated plasmacytoid dendritic cells upon stimulation with ODN1826.
  • the expression of CCR9 was higher than that of untreated plasmacytoid dendritic cells even when unstimulated.
  • TLRs-pDC differentiation-induced plasma cytokine dendritic cells
  • RPMI1640 culture medium containing 10% FBS, 1% antibiotic and 100ng / ml of granulocyte-macrophage-colony stimulating factor (GM-CSF) was used for differentiation of dendritic cells. Incubated for 8 days. After 8 days of incubation, 5 ⁇ g / ml of Rv1411c protein was treated to wild-type dendritic cells (WT) and TLR2 knockout mice (TLR2-/-), respectively, and mixed for 2 hours intermittently. Facilitated. Then, the Hisv labeled with the Rv1411c protein was stained with an antibody having antigen-antibody specificity, and the degree of binding was measured using a flow cytometer. The results are shown in FIG. 10.
  • wild-type dendritic cells showed increased binding to Rv1411c protein compared to TLR2 knockout dendritic cells (TLR2-/-), but in TLR2 knockout dendritic cells (TLR2-/-). Although the Rv1411c protein was treated, the same degree of binding as the untreated experimental group was confirmed.
  • Example 8 Induced differentiation of immune tolerant plasmacytoid dendritic cells in the same process as in Example 1, but as the toll-like receptor agonist, the Rv1411c protein (0.1 ⁇ g / ml) was confirmed as a toll-like receptor agonist in Example 8. , 0.5 ⁇ g / ml) was used. After 8 days of incubation, plasmacytoid dendritic cells were separated with a purity of 85% or more using a plasmacytoid dendritic cell separation kit (Miltenyi Biotec, Auburn, CA) and a magnetic cell sorting system (Vario MACS: Miltenyi Biotec, Auburn, CA). It was.
  • a plasmacytoid dendritic cell separation kit Miltenyi Biotec, Auburn, CA
  • Isolated cells (5 ⁇ 10 5 cells / ml) were seeded in 48 well plates, treated with ODN1826 (1 ⁇ g / ml) and incubated for 24 hours. The supernatant obtained after the cultivation was isolated, and the results of confirming cytokine secretion by Enzyme Linked Immunosorbent assay (ELISA) are shown in a graph of FIG. 11. However, in order to confirm the treatment effect of Rv1411c protein, Rv1411c protein was untreated, and typical plasma cytoid dendritic cells stimulated (ODN +) or unstimulated (ODN ⁇ ) with ODN1826 are shown as comparative examples (pDC).
  • ODN1826 Enzyme Linked Immunosorbent assay
  • Rv1411c As shown in FIG. 11, stimulation of plasmacytoid dendritic cells (Rv1411c (0.1 ⁇ g / ml) -pDC, Rv1411c (0.5 ⁇ g / ml) -pDC) treated with Rv1411c protein with ODN1826 results in normal plasmacytoid dendritic cells.
  • the concentrations of strongly induced type I interferons (IFN- ⁇ and IFN- ⁇ ) and the representative inflammatory cytokines TNF- ⁇ and IL-12p70 were rapidly reduced in a dose-dependent manner.
  • IL-10 was found to increase its expression level in a concentration-dependent manner.
  • the plasmacytoid dendritic cells treated with the Rv1411c protein were found to have immunotolerance differently from the normal plasmacytoid dendritic cells, and the degree of immune tolerance was also increased in proportion to the concentration of the Rv1411c protein. It was.
  • Example 9 the expression patterns of surface molecules and enzymes in the plasmacytoid dendritic cells induced differentiation with Rv1411c protein were confirmed.
  • markers specific for plasmacytoid dendritic cells include anti-CD11c (PE-Cy7, BD Biosciences) and anti-PDCA-1 (PerCP-eFluor 710, ebioscience ), Anti-CD80 (v450, BD Biosciences), anti-CD86 (APC, ebioscience), anti-MHC-I (PE, ebioscience) and anti-MHC-II (APC-eFluor® 780, ebioscience), anti-PD Cell surface factor antibodies such as -L1 (PE, ebioscience) and anti-CCR9 (FITC, ebioscience) were treated at 4 ° C.
  • markers specific for plasmacytoid dendritic cells include anti-CD11c (PE-Cy7, BD Biosciences) and anti-PDCA-1 (PerCP-eFluor 710, ebioscience ), Anti-CD80 (v450, BD Biosciences), anti-CD86 (APC, ebioscience), anti-MHC
  • the most important feature in vivo of immune tolerant plasmacytoid dendritic cells is to inhibit the activity of T lymphocytes.
  • the following experiment was performed to determine the effect of differentiation-induced plasma cytokine dendritic cells on the proliferation and activity of T cells by treating Rv1411c protein in Example 9.
  • T cells 1.5 ⁇ 10 5 cells / well isolated from allogeneic mice and stained with CellTrace (Invitrogen) were stimulated through 1 ⁇ PMA / Ionomycin (ebioscience). This treatment of PMA / Ionomycin increases the proliferation rate of T lymphocytes and promotes the secretion of interferon gamma (IFN-gamma).
  • IFN-gamma interferon gamma
  • the cells were treated with Tv and Rv1411c protein to induce differentiation-induced differentiation of plasmacytoid dendritic cells (Rv1411c-pDC) or general plasmacytoid dendritic cells (pDC) in a ratio of 1: 5 and incubated for 3 days. .
  • Rv1411c protein was untreated, and typical plasma cytoid dendritic cells stimulated (ODN +) or unstimulated (ODN ⁇ ) with ODN1826 are shown as comparative examples (pDC).
  • both plasmavoid dendritic cells (Rv1411c-pDC) and general plasmacytoid dendritic cells (pDC) induced by differentiation by treating Rv1411c protein induced T cell proliferation, but treated with Rv1411c protein to differentiate.
  • the induced plasmacytoid dendritic cells (Rv1411c-pDC) were observed to have much lower proliferative induction capacity for CD4 + T cells than normal plasmacytoid dendritic cells (pDC).
  • the secretion of IFN-gamma was lowered at a lower level than that of the non-treated plasmacytoid dendritic cells (pDCs) in which plasmavoid dendritic cells (Rv1411c-pDCs) induced by differentiation were treated with Rv1411c protein. It was confirmed to induce.
  • pDCs plasmacytoid dendritic cells
  • Rv1411c-pDCs plasmavoid dendritic cells
  • T cells stained with CellTrace (Invitrogen) after isolation from allogeneic mice were treated with Rv1411c protein in Example 9 to induce differentiation of plasmacytoid dendritic cells (Rv1411c-pDC) or normal plasmacytoid dendritic cells (pDC). The ratio was 10: 1, 5: 1, or 1: 1 and incubated for 5 days. However, as the plasmacytoid dendritic cells were used ODN1826 stimulated (ODN +) and unstimulated (ODN-). Five days after incubation, cells were treated with anti-CD4 (Percp-cy5.5, ebioscience) for 30 minutes at 4 ° C. and Foxp3 / transcription factor staining buffer (ebioscience) at 37 ° C.
  • T cells are reported to induce immune tolerant dendritic cells and inhibit the proliferation of other T cells. Therefore, below, according to Example 12, the activity of T cells induced by differentiation by Rv1411c protein as regulatory T cells was confirmed.
  • mice spleens are isolated, red blood cells are removed, and CD4 + and CD25- activated T cells are isolated using a magnetic cell sorting system (MACS), and then stained with a violet proliferation dye to determine the extent of proliferation. It was. Differentiated T cells were then incubated for two days in wells coated with anti-CD3e and anti-CD28 antibodies with CD4 +, CD25- effector T cells. As a result, the change in T cell proliferative capacity was measured with respect to the ratio of primed T cells to CD25-acting T cells, and is graphically shown in FIG. 16.
  • MCS magnetic cell sorting system
  • Femoral bone marrow was harvested using bone marrow harvesting injections from C57BL / 6 mice. The collected bone marrow was washed with phosphate buffer saline (PBS) and red blood cells were removed using ammonium chloride. Isolated cells (5 ⁇ 10 5 cells / well) were seeded in 6-well plates, followed by 10% FBS (Fetal bovine serum, calf serum), 2 mM L-glutamine, 100 U / ml penicillin / streptomycin, 50 ⁇ M Incubation and differentiation were initiated by addition of 1 ml RPMI 1640 comprising mercaptoethanol, 0.1 mM non-essential amino acid, 1 mM sodium pyruvate and 250 ng / ml FLT3L.
  • PBS phosphate buffer saline
  • Rv1411c protein and Pam3 were treated with a toll like receptor agonist at a concentration of 100-500 ng / ml.
  • 1 ml of RPMI 1640 was supplemented and incubated for 8 days.
  • the cells obtained after the cultivation were subjected to plasmacytoid dendritic cells using a plasmacytoid dendritic cell separation kit (Miltenyi Biotec, Auburn, CA) and a magnetic cell sorting system (Vario MACS: Miltenyi Biotec, Auburn, CA). Separation.
  • TLR agonist plasmacytoid dendritic cells
  • mice four-week old BALB / c female mice were purchased and purified for one week under SPF (Specific Pathogen Free) conditions, and then experimented at five weeks of age. Sensitization of food allergy by injecting 10 ⁇ g of egg yolk protein (ovalbumin, OVA) and 1 mg aluminum hydroxide (Aluminum hydroxide, Alum, Sigma-Aldrich Korea LTD) into the abdominal cavity at 0 0 and 7 days, respectively. It was. Boosting was performed by orally administering a total of 4 mg of 10 mg yolk protein per horse from day 14 to day 21.
  • OVA egg yolk protein
  • aluminum hydroxide Al hydroxide
  • Example 9 After treating the Rv1411c protein in Example 9 to prepare differentiation-derived plasmacytoid dendritic cells and general plasmacytoid dendritic cells, 1 ⁇ g / ml OVA peptide (OVA323-339 and OVA257-264) and 1 ⁇ g / ml ODN1826 (TLR9 agonist) was harvested after 3 h stimulation.
  • the plasmacytoid dendritic cells were injected in an amount of 1 ⁇ 10 6 cell / mice through the vein of the animal mouse model prepared on the 14th day of sensitization.
  • Intravenous injection (iv) and negative control group was injected only with phosphorylated buffered aqueous solution (PBS) on day 14 of sensitization.
  • PBS phosphorylated buffered aqueous solution
  • diarrhea incidence also showed diarrhea symptoms in all mice treated with only a phosphorylated buffer solution (PBS), and diarrhea symptoms in 80% of normal plasmacytoid dendritic cells injected (pDC).
  • PBS phosphorylated buffer solution
  • pDC normal plasmacytoid dendritic cells injected
  • TLRs-pDC 14d differentiation-induced immune tolerant plasmacytoid dendritic cells treated with Rv1411c protein
  • the differentiation-induced immune tolerant plasmacytoid cells according to the present invention have an effect of suppressing the induction of yolk protein-induced food allergy disease.
  • IgE and IgG1 antibodies are known to be the major antibodies involved in Th2-mediated allergic reactions, the effect of IgE and IgG1 concentrations in the blood on injection of immune tolerant plasmacytoid dendritic cells in animal models of yolk protein-induced food allergy disease It was confirmed to have.
  • an animal model of egg yolk protein-induced food allergy disease was prepared in the same manner as in Example 15, followed by injection of phosphorylated buffered aqueous solution (PBS) or Rv1411c protein in Example 9 to induce differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells. 50 mg of OVA was then challenged. After 1 hour, the blood of the mouse was extracted and serum was isolated to confirm blood concentrations of OVA-specific IgE and IgG1 in serum. The results are shown in FIG. 22.
  • the concentration of OVA-specific IgE and IgG1 was increased in egg yolk protein-derived food allergic reaction (PBS) compared to normal, but differentiation-induced immune tolerant plasmacytosis after Rvc1411c protein treatment When dendritic cells were injected, it was confirmed that the concentration significantly decreased.
  • PBS egg yolk protein-derived food allergic reaction
  • the differentiation-induced immune tolerant plasmacytoid cells according to the present invention suppressed the induction of food allergic diseases by reducing the expression of increased OVA-specific immunoglobulins exposed to egg yolk protein antigen.
  • Th2 cytokines In general, overexpression of Th2 cytokines is known to play an important role in the development of anaphylaxis symptoms.
  • an animal model of egg yolk protein-induced food allergy disease was prepared in the same manner as in Example 15, followed by injection of phosphorylated buffered aqueous solution (PBS) or Rv1411c protein in Example 9 to induce differentiation-induced plasmacytoid dendritic cells. Afterwards, 50 mg of OVA was challenged. After 1 hour, the blood of the mouse was extracted and serum was isolated to check the blood concentrations of interleukin-4 (IL-4) and interleukin-5 (IL-5), which are Th2 cytokines in the serum. Indicated.
  • PBS phosphorylated buffered aqueous solution
  • Rv1411c protein phosphorylated buffered aqueous solution
  • IL-5 interleukin-5
  • the expression levels of the Th2 cytokines, interleukin-4 and interleukin-5 were increased when the yolk protein-derived food allergic reaction (PBS) was induced compared to the normal group, but differentiation was induced by treating the Rv1411c protein.
  • the expression levels of the immune tolerant plasmacytoid dendritic cells were significantly reduced when mice were injected (TLRs-pDC 14d).
  • the differentiation-induced immune tolerant plasmacytoid cells according to the present invention inhibit the expression of Th2 cytokines during the onset of yolk protein-induced food allergy to inhibit the induction of food allergic diseases.

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Abstract

본 발명은 알레르기 질환 등을 포함하는 과민성 면역 질환을 예방, 개선 또는 치료할 수 있는 조성물의 제조방법과 상기 방법에 의해 제조된 조성물에 관한 것이다. 본 발명은 간단하고 용이한 공정을 통하여 미성숙 수지상 세포로부터 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 높은 수율로 유도할 수 있고, 이를 이용하여 과민성 면역 질환을 효과적으로 예방, 개선 또는 치료할 수 있다.

Description

과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물 및 그 제조방법
본 발명은 알레르기 질환 등을 포함하는 과민성 면역 질환을 예방, 개선 또는 치료할 수 있는 조성물의 제조방법과 상기 방법에 의해 제조된 조성물에 관한 것이다.
면역 체계에 있어서 면역 반응과 면역 관용 반응은 상호 조화와 균형을 이루어야 한다. 과다 면역 반응이 일어나는 경우 과민성 알레르기 질환이나 자가 면역 질환 등이 발생할 수 있으며, 이들은 사람의 생존과 삶의 질에 매우 큰 영향을 준다.
알레르기 (Allergy)란 알레르겐과 같은 비자기 (non-self) 물질에 대해 면역학적 기전에 의해 야기되는 병적인 과민반응을 말하며, 항체 또는 세포에 의해서 매개된다. 알레르기 반응은 T-helper type 2(Th2) 세포반응으로 대표되는데 이에는 IL-4, IL-5, IL-13과 종양괴사인자 (TNF)-a와 같은 사이토카인이 관여하고 regulated upon activation, normal T-cell expressed & secreted(RANTES), eotaxin과 macrophage chemoattractant protein-3(MCP-3)같은 케모카인이 알레르기 염증반응에 중요한 역할을 한다. 또한 자기(self) 물질에 대해서 병적인 과민반응을 보이는 자가 면역 질환 (autoimmunity)도 포함된다.
알레르기 반응에 의한 질환으로는 천식, 비염, 두드러기, 아나필락시스 등이 있으며, 일부 알레르기 반응은 특정 알레르기 항원에 대한 유전적 결합에 의해 유발되는 알레르기 천식 및 습진 등을 포함한다. 이러한 알레르기는 일반적으로 무해한 물질(꽃가루, 곰팡이, 동물의 털 및 비듬, 먼지, 진드기 및 땅콩 등)에 의해서 유발된다는 점이 특징이다.
현재 개발된 알레르기성 질환의 치료를 위한 치료법으로서, 알레르기 환자가 앓고 있는 알레르기에 대한 알레르겐(allergen)을 규명한 후 이를 소량씩 수년간 투여하여 그 알레르기를 점차 감소시키는 방법이 있다. 그러나, 이러한 치료법은 치료 기간이 수년이 걸린다는 단점이 있으며, 아나필락틱 쇼크 등을 유발시킬 수 있다는 문제점이 있다. 이 외에 DNA 백신을 이용하는 방법, IgE가 비만세포의 수용체에 결합하는 것을 차단하는 치료법 및 알레르기를 유발하는 사이토카인인 IL-4에 대한 항체 치료법 등이 있으나 이러한 치료법들은 비용이 많이 들거나 아직 완전히 그 치료 효과가 규명되지 않았다는 단점이 있다.
한편, 수지상 세포는 선천성 면역뿐만 아니라 후천적인 인과에 의해 선택적으로 발생되는 획득 면역 조절에도 중추적인 역할을 담당하는 세포로서, 구체적으로는 주로 외부에서 침입한 항원의 정보를 T 세포에 제시하는 기능을 수행하는 대표적인 항원 제시 세포의 일종이다.
상기 수지상 세포는 근원(origin), 표현형(phenotype) 및 기능(function) 등에 따라 다양한 부분 모집단(subpopulations)으로 구성된다. 구체적으로 플라즈마사이토이드 수지상 세포(plasmacytoide dendritic cells, pDC)의 경우 다양한 병원균 유래 자극에 대응하여 I형 IFN을 높은 수준으로 생산할 수 있다. 이들은 표면 표현형에 의해 일반적인 수지상 세포(conventional DCs, cDCs)와 구별된다. 상기 pDCs는 B220를 발현하고, CD11c는 낮은 수준으로 발현하는 반면, cDCs는 CD11c 및 CD11b를 높은 수준으로 발현하지만, B220는 발현하지 않는다. 상기 pDCs 및 cDCs는 모두 조화로운 면역 반응의 효과적인 자극제로 작용할 수 있도록, 미성숙 수지상 세포가 성숙되는 과정에 의해 얻어진다.
상기한 바와 같이, pDC는 DNA 바이러스나 단일 가닥 RNA 바이러스에 의해 감염 시 대량의 I형 IFNs를 분비함으로써 면역 세포를 활성화시켜 바이러스 감염의 방어에 중요한 역할을 한다고 알려져 있다. 특히 항원을 제시할 수 있는 성숙한 수지상 세포(maturated DCs, mDCs)를 강력하게 활성화시켜 T 세포에 의한 항바이러스 반응을 증폭시키는데 일조한다.
하지만, 체내에서 pDC의 분화나 역할에 대한 연구는 다른 수지상 세포에 비하여 미미한 실정이다. 수지상 세포의 면역을 주관하는 특정 유전자의 발현 조절이나 면역 관용 유발 물질 발굴을 통해 일관성 있게 면역 관용성을 유지 혹은 강화시킨 면역 관용성 수지상 세포의 제조 기술이 시급히 요구되고 있다. 특히, 상기 pDC가 다양한 과민성 면역 질환에서 중요한 역할을 할 것이라는 연구가 많이 이루어지고 있지만, 면역 관용성 pDC를 제작하는 체계적이고 표준화된 분화 방법이 알려지지 않았다.
본 발명의 발명자들은 미성숙 수지상 세포(dendritic cells)에 톨 유사 수용체 작용제(toll-like receptor agonist, TLR agonist)를 처리한 후 분화를 유도하거나, 혹은 상기 미성숙 수지상 세포를 분화하는 과정 중에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하는 경우, 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포가 유도되며, 이를 사용하는 경우 과민성 면역 질환을 효과적으로 예방, 개선 또는 치료할 수 있음을 발견하여 본 발명에 이르게 되었다.
본 발명의 일 목적은 과민성 면역 질환을 효과적으로 예방, 개선 또는 치료할 수 있는 조성물을 제조하는 방법을 제공하고자 한다.
본 발명의 다른 목적은 상기 방법으로 제조되어, 과민성 면역 질환을 효과적으로 예방, 개선 또는 치료할 수 있는 조성물을 제공하고자 한다.
본 발명의 다른 목적 및 이점은 하기의 발명의 상세한 설명, 청구범위 및 도면에 의해 보다 명확하게 된다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제(toll-like receptor agonist)를 처리하여 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포(plasmacytoid dendritic cells, pDC)를 제조하는 단계를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법을 제공한다.
또한 본 발명은 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
또한 본 발명은 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 개선용 화장료 조성물을 제공한다.
또한 본 발명은 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물을 제공한다.
본 발명은 간단하고 용이한 공정을 통하여 미성숙 수지상 세포로부터 면역 관용성을 갖는 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 높은 수율로 유도할 수 있어, 대량의 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 안정적인 공급을 가능하도록 한다.
또한, 본 발명에서 상기와 같이 얻어진 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포는 알레르겐-특이적 이뮤노글로불린과 Th2 사이토카인의 발현을 억제하여 음식 유래 알레르기 질환을 포함해 다양한 과민성 면역 질환을 효과적으로 예방 또는 치료할 수 있고, 인체에 투여하는 경우 안전하다.
도 1은 본 발명의 일 실시예에 따른 미성숙 수지상 세포에 대하여 분화 유도용 인자(Flt3L-containing media) 및 톨 유사 수용체 작용제(TLRs agonists) 처리 방법의 설계도를 나타낸 것이다.
도 2는 실시예 1에서 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Pam3)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)의 분리를 나타낸 것이다.
도 3의 (a)는 실시예 1에서 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Pam3)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포에 특이적으로 유도되는 표면 발현 분자들을 나타낸 것이다.
도 3의 (b)는 실시예 1에서 미성숙 수지상 세포의 수 대비 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Pam3)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 수의 비율을 그래프로 나타낸 것이다.
도 4는 실시예 2에서 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Pam3)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)와 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)에서 사이토카인(IFN-α, IFN-β, IL-12p70, IL-10)의 발현 양상을 비교한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 5는 실시예 3에서 본 발명의 일 실시예에 따라 다양한 톨 유사 수용체 작용제의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포와 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(non)에서 사이토카인 IL-10의 발현 양상을 비교한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 6은 실시예 4에서 본 발명의 일 실시예에 따라 미성숙 수지상 세포에 대하여 처리되는 톨 유사 수용체 작용제(Pam3)의 처리 시점에 따라 사이토카인(IFN-α, IFN-β, TNF-α, IL-12p70, IL-10)의 발현 양상을 비교한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 7은 실시예 5에서 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Pam3)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)와 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)에서 MHC complex 분자, CD80 및 CD86의 발현 양상을 비교한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 8은 실시예 6에서 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Pam3)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)와 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)에서 IDO, CCR9 및 PD-L1의 발현 양상을 비교한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 9의 (a)는 실시예 7에서 T 세포에 대하여 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Pam3)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC) 또는 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)를 처리한 후 조절 T 세포로의 증식 여부를 유세포 분석기 LSRFortessa x-20을 통하여 확인한 결과를 나타낸 것이다.
도 9의 (b)는 실시예 7에서 T 세포에 대하여 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Pam3)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC) 또는 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)를 처리한 후 조절 T 세포의 증식률을 측정한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 10은 실시예 8에서 야생형 수지상 세포(WT) 및 TLR2 넉아웃 마우스에서 분리한 수지상 세포(TLR2-/-)의 Rv1411c 단백질과의 결합 정도를 나타낸 것이다.
도 11은 실시예 9에서 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질(O.1 ㎍/ml, 0.5 ㎍/ml))의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c(0.1㎍/ml)-pDC, Rv1411c(0.5㎍/ml)-pDC)와 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)에서 사이토카인(IFN-α, IFN-β, TNF-α, IL-12p70, IL-10)의 발현 양상을 비교한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 12는 실시예 10에서 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC)와 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)에서 MHC complex 분자, CD80, CD86 및 면역 관용 유도 분자(IDO, CCR9 및 PD-L1)의 발현 양상을 비교한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 13은 실시예 11에서 T 세포와, 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC) 또는 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)를 혼합 배양한 후 T 세포의 증식 정도를 비교한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 14는 실시예 11에서 T 세포와, 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC) 또는 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)를 혼합 배양한 후 IFN-gamma의 분비 양상을 확인한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 15의 (a)는 실시예 12에서 T 세포에 대하여 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC) 또는 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)를 처리한 후 조절 T 세포로의 증식 여부를 유세포 분석기 LSRFortessa x-20을 통하여 확인한 결과를 나타낸 것이다.
도 15의 (b)는 실시예 12에서 T 세포에 대하여 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(RVc1411c-pDC) 또는 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)를 처리한 후 조절 T 세포의 증식률을 측정한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 16은 실시예 13에서 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(RVc1411c-pDC)에 의하여 분화된 T 세포를 CD4+, CD25- 작동 T 세포와 함께 배양한 후, CD25- 작동 T 세포 대비 프라이밍된 T 세포의 비율에 대하여 T 세포 증식능의 변화를 측정한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 17은 실시예 14에서 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질 및 Pam3)의 처리 후 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLR agonist)와, 미처리 후 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Non)의 수를 비교한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 18은 실시예 15에서 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델을 제작하기 위한 실험 설계도를 나타낸 것이다.
도 19는 실시예 15에서 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델에 대하여 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC 14d i.v.)의 주입 후 전신성 아나필락시스 증상을 평가한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 20은 실시예 15에서 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델에 대하여 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC 14d i.v.)의 주입 후 직장의 체온 변화를 측정한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 21은 실시예 15에서 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델에 대하여 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC 14d i.v.)의 주입 후 설사 발병률을 측정한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 22는 실시예 16에서 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델에 대하여 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC 14d)의 주입 후 혈중 내 IgE 및 IgG1의 농도를 측정한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 23은 실시예 17에서 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델에 대하여 본 발명의 일 실시예에 따라 톨 유사 수용체 작용제(Rv1411c 단백질)의 처리 후 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC 14d)의 주입 후 혈중 내 인터루킨-4(IL-4) 및 인터루킨-5(IL-5)의 농도를 측정한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
단, 도 1 내지 23에서 *은 P<0.05, **은 P<0.01, ***은 P<0.005를 의미한다.
본 발명은, 하기의 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 제조하는 단계를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법에 관한 것이다.
본 발명에서 상기 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 제조하는 단계는, 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하며 수행될 수 있다.
본 명세서에서 용어, "수지상 세포 (dendritic cell, DC)"는 항원을 세포 내부로 흡수하여 MHC(major histocompatibility complex) 클래스 I 복합체 또는 MHC 클래스 Ⅱ 복합체와 함께 다양한 항원 샘플을 T 세포에 제시하는 전문적 항원 제시 세포(professional antigen presenting cell)를 의미한다. 또한 수지상 세포는 면역원성(immunogenic) 및 면역 관용성(tolerogenic) 항원 제시 세포를 모두 포함하며, 성숙도에 따라 미성숙 수지상 세포(immature dendritic cells; "imDC"), 준성숙 수지상 세포(semimature dendritic cells; "smDC") 및 성숙 수지상 세포(mature dendritic cells; "mDC")로 분류할 수 있다.
본 명세서에서 용어, "미성숙 수지상 세포"는 수지상 세포의 초기 성숙 단계에 발견되는 것으로, 단핵구 세포의 표면 표현형인 CD14를 발현하지 않으며, 또한, 공동 자극 분자 CD40, CD54, CD80, CD86 및 CD274의 어느 하나가 성숙 수지상 세포에 비해 낮은 수준으로 발현된다.
본 명세서에서 용어, "준성숙 수지상 세포"는 미성숙 수지상 세포의 특성의 일부를 상실하고, 성숙 수지상 세포의 표현형의 일부 특성을 갖는 수지상 세포로서, 부분적으로 또는 불완전하게 성숙된 형태 및 표현형적 특성을 나타내는 수지상 세포를 의미한다.
본 명세서에서 용어, "성숙 수지상 세포"는 미성숙 수지상 세포가 성숙화되어 형성된 세포를 의미한다. 성숙 수지상 세포는 DC-LAMP 뿐만 아니라 MHC 클래스 Ⅱ, CD40, CD54, CD80, CD86 및 CD274의 발현이 높고, 항염증성 사이토카인(proinflammatory cytokine)을 방출하며, 혼합림프구 반응(mixed lymphocyte reaction)에서 원시 동종이계 T 세포(allogeneic T cells) 및 동종동계 T 세포(syngeneic T cells)의 증식의 증가 및/또는 수지상 세포 사이토카인의 증가된 생성을 발생시키는 능력을 갖는 것을 특징으로 한다. 성숙 수지상 세포는 전형적으로 CCR7 및 CXCR4를 높은 수준으로 발현한다.
다만, 본 발명에서 상기 톨 유사 수용체 작용제가 처리되는 수지상 세포는 분화가 되지 않은 미성숙 수지상 세포인 것이 바람직하다. 여기서 상기 미성숙 수지상 세포는 원시적인 수지상 세포(naive dendritic cells)를 포함할 수 있고, 포유류의 골수 등으로부터 분리 및 획득된 것일 수 있다.
또한, 본 발명에서 상기와 같이 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 분화 유도된 면역 관용성 수지상 세포는 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포(plasmacytoid dendritic cells, pDC)일 수 있다.
본 명세서에서 용어, "플라즈마사이토이드 수지상 세포(plasmacytoid dendritic cells)"란 수지상 세포의 한 부류(subset)로, 1958년 Dr. Lennert와 Dr. Remmele에 의하여 사람의 림프절에서 형질 세포(plasma cell)의 형태를 조직학적으로 발견함으로써 처음 알려졌지만 B 세포 특이적 마커 (immunoglobulin)를 발현하지 않는다는 사실이 알려지면서 플라즈마사이토이드 T 세포(Plasmacytoid T cells)로 명명되다가, T 세포의 공통적 마커인 CD3를 발현하지 않으면서 골수계 항원(myeloid lineage antigen)과 MHC class Ⅱ를 발현한다는 사실이 알려지면서 플라즈마사이토이드 단핵구(plasmacytoid monocyte)로 명명되었다. 그 후, 수지상 세포의 고유 성질인 동종 이계 혼합 림프구 반응(allerogenic mixed lymphocyte reaction, MLR)을 유도할 수 있는 능력이 확인됨에 따라 다시 플라즈마사이토이드 수지상 세포로 명명되고 있으며, 간단히 'pDC'로 표기하기도 한다.
본 명세서에서 용어, "면역 관용성"이란 특정 항원에 대하여 면역 반응을 나타내지 않는 상태뿐만 아니라, 면역 반응을 억제하는 상태를 의미한다. 따라서, 본 발명에서, 상기 "면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포"는 IL-10 등과 같은 항염증성 사이토카인의 분비를 촉진하고, IL-12p70 및 TNF-α 등의 염증성 사이토카인의 분비는 억제하며, 최근 면역 관용 유도분자들로 알려진 인돌아민-2,3 디옥시제네이즈(indoleamine-2,3 dioxygenase, IDO) 분자 및 면역 관용 유도 세포의 표면 분자인 CCR9이 높은 수준으로 발현되어, 조절 T 세포(regulatory T cells)의 분화를 유도하고, 작동 T 세포(effector T cells)의 활성을 억제할 수 있다.
본 발명에서는 상기 미성숙 수지상 세포의 분화 개시 이전 또는 분화 중에 상기 톨 유사 수용체 작용제를 처리함으로써 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 안정적으로, 그리고 대량으로 제조할 수 있다. 여기서, 상기 "분화 개시 이전"이라 함은, 미성숙 수지상 세포에 분화 유도용 인자를 처리하기 이전의 시점을 포함할 수 있다. 또한, 상기 "분화 중"이라 함은 상기 미성숙 수지상 세포에 분화 유도용 인자를 처리하는 시점으로부터 상기 분화 유도용 인자에 의하여 분화가 완료되기 이전까지의 시점을 의미한다. 바람직하게는 분화 유도용 인자를 처리하는 시점으로부터 상기 처리 후 7일 이내의 시기를 포함할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에서 상기 톨 유사 수용체 작용제는, 상기한 바와 같이 미성숙 수지상 세포의 분화 개시 이전 또는 분화 중에만 처리되면 구체적인 시점을 특별히 제한하지 않는다. 다만, 본 발명에서 상기 톨 유사 수용체 작용제를 미성숙 수지상 세포의 분화 중에 처리하는 경우, 분화 개시 시점으로부터 7일(168시간), 5일(120시간) 또는 3일(72시간) 이내에 처리할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 또한, 본 발명에서 상기 톨 유사 수용체 작용제를 미성숙 수지상 세포의 분화 개시 이전에 처리하는 경우, 상기 작용제를 처리한 시점으로부터 36시간, 바람직하게는 24시간 내에 분화 유도용 인자를 사용하여 미성숙 수지상 세포의 분화를 개시할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
또한, 본 발명에서는 상기 톨 유사 수용체 작용제를 1회 이상 처리할 수 있으며, 구체적인 처리 횟수를 특별히 제한하지 않으나, 상기 톨 유사 수용체 작용제를 미성숙 수지상 세포의 분화 중에 처리하는 경우, 상기 미성숙 수지상 세포의 분화 개시 시점으로부터 7일, 5일 또는 3일 이내에 상기 톨 유사 수용체 작용제를 적어도 1회 처리할 수 있다. 또한, 상기 톨 유사 수용체 작용제를 미성숙 수지상 세포의 분화 개시 이전에 처리하는 경우, 상기 미성숙 수지상 세포에 대하여 톨 유사 수용체 작용제를 적어도 1회 처리한 뒤, 어느 일 처리 시점으로부터 36시간 또는 24시간 이내에 상기 미성숙 수지상 세포의 분화를 개시하고, 그 분화 중에 선택적으로 1회 이상 추가로 처리할 수 있다.
여기서, 상기 "분화 개시"라 함은 미성숙 수지상 세포의 배양 배지에 분화 유도용 인자를 첨가하거나, 또는 분화 유도용 인자를 포함하는 배지에 미성숙 수지상 세포를 접종하여 배양하는 공정을 의미할 수 있으나, 분화 유도용 인자를 사용하여 미성숙 수지상 세포의 분화를 유도할 수 있는 것이라면 특별히 제한하지 않는다.
본 명세서에서 용어, "톨 유사 수용체 작용제(toll-like receptor agonist)"는 병원체(pathogen) 유래 보존된 분자적 물질로, PAMPs(Pathogen associated molecular patterns)일 수 있다. 여기서, 상기 병원체로는 그람-양성 박테리움, 그람-음성 박테리움, 균류 또는 바이러스가 될 수 있다. 또한, 상기 톨 유사 수용체 작용제는 손상되거나 또는 죽은 세포로부터 방출되는 내인성(endogenous) 분자들로, DAMPs(Damage associated molecular patterns)일 수 있다. DAMPs 또는 PAMPs는 TLR 신호를 통해 면역 응답을 개시하고 신호를 전달하기 위해 세포의 세포질 내에서 어댑터 분자들을 모으게 된다. 상기 톨 유사 수용체 작용제는 프래그먼트, 변종, 아나로그, 호모로지(homology) 또는 톨 유사 수용체와 결합하고 NF-κB 활동의 활성화와 같은, TLR-중재에 의한 활성화를 유도하는 PAMPs 또는 DAMPs의 유도체가 될 수 있다. 상기 톨 유사 수용체 작용제인 프래그먼트, 변종, 아나로그, 호모로그 또는 유도체는 TLR 효능제의 아미노산의 최소한 30~99% 동일하며 톨 유사 수용체-중재에 의한 활성화를 유도하게 된다.
본 발명에서 상기 미성숙 수지상 세포에 처리되는 톨 유사 수용체 작용제의 종류는 특별히 제한하지 않으나, PAMPs 리간드인 것이 바람직하고, 보다 바람직하게는 MyD88(Myeloid differentiation primary response gene 88) 시그널을 경유할 수 있는 것이 미성숙 수지상 세포로부터 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 분화를 유도할 수 있다.
또한, 본 발명에서 상기 톨 유사 수용체 작용제로는 TLR2 작용제, TLR4 작용제, TLR5 작용제, TLR7 작용제, TLR8 작용제, TLR9 작용제, TLR11 작용제, TLR12 작용제 및 TLR13 작용제로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 포함할 수 있고, 보다 구체적으로는 하기 표 1에 나타낸 리간드 중 1종 이상을 포함할 수 있으나, 이에 특별히 제한되는 것은 아니며, 수지상 세포의 톨 유사 수용체에 결합할 수 있는 것으로, MyD88 시그널을 경유할 수 있는 리간드라면 제한없이 사용될 수 있다.
또한, 본 발명에서 상기 톨 유사 수용체 작용제로 TLR2 작용제를 사용하는 경우, 그 보조 수용체(co-receptor)로 작용하는 TLR1 작용제 및 TLR6 작용제 중 1종 이상을 추가로 더 포함할 수 있다. 여기서, 상기 TLR1 작용제 및 TLR6 작용제의 구체적인 예시로는 하기 표 1에 나타낸 리간드일 수 있으나, 상기 TLR2 작용제의 보조 수용체로서 작용할 수 있는 리간드라면 특별히 제한하지 않는다.
리간드 PAMPs(Pathogen Associated Ligands) 리간드 유래 호스트(Ligand natural host) 합성 리간드
TLR1 다양한 트리아실 리포펩티드(multiple triacyl lipopeptides) 박테리아 Pam3Cys-*
TLR2 다양한 글리코리피드(multiple glycolipids) 박테리아 CFA
다양한 리포펩티드(multiple lipopeptides) 박테리아 Pam3, MALP2-**
다양한 리포프로테인(multiple lipoproteins) 박테리아 Pam2Cys**
리포테이코산(lipoteichoic acid) 그람 양성 박테리아 FSL-1
HSP 70, 또는 다른 열 충격 단백질(other heat shock proteins) 숙주 세포(host cells) Hib-OMPC
지모산(zymosan) (Beta- glucan) 균류 (fungi)
단백질 결핵균(Mycobacterium tuberculosis) Rv1411c 단백질, ESAT-6, PE/PPE Protein, Rv0577
TLR3 이중 가닥 RNA(double stranded RNA) 바이러스 Poly (I: C); 저분자량 또는 고분자량Poly (A: U)
TLR4 리포다당류(lipopolysaccharides, LPS); or IPS 유사체(MPLA) 그람 음성 박테리아 AGP
열 충격 단백질 박테리아 및 숙주 세포 MPLA
피브리노겐(fibrinogen) 숙주 세포 RC-529
헤파린 황산 프레그먼트(heparin sulfate fragments) 숙주 세포 MDF2B
히알루론산 프레그먼트(hyaluronic acid fragments) 숙주 세포 CFA
니켈(nickel)
다양한 오피오이드 약제(Various opoid drugs)
단백질 결핵균(Mycobacterium tuberculosis) RpfE, RpfB, Rv2299c, HBHA
TLR5 플라젤린(Flagellin) 박테리아 플라젤린
TLR6 다양한 디아실 리포펩티드(multiple diacyl lipopeptides) 마이코플라즈마(mycoplasma) FSL1-**Pam2Cys**MALP2-**
TLR7 바이러스 ssRNA(인플루엔자, VSV, HIV, HCV) RNA 바이러스 구아노신 아날로그(guanosine analogs);이미다조퀴놀린(imidazoquinolines)(e.g. 이미퀴모드(Imiquimod), Aldara   R848, 레시퀴모드(Resiquimod) ), 록소리빈(loxoribine)
TLR8 작은 합성 화합물(small synthetic compounds); 단일 가닥 RNA(single-stranded RNA) RNA, 인간 및 바이러스 이미다조퀴놀린;록소리빈;ssPolyU, 3M-012
TLR9 비메틸화된 CpG 올리고뉴클레오티드 DNA(Unmethylated CpG Oligodeoxynucleotide DNA); DNA; dsDNA 바이러스(HSV, MCMV); 헤모조인(Hemozoin)(Plasmodium) 박테리아, DNA 바이러스 CpG-올리고뉴클레오티드, 합성된 다양한 서열들(e.g. CpG-ODN 2006, 1826, 2395)
TLR10
TLR11 프로필린(Profilin) 톡소플라즈마 곤디(Toxoplasma gondii)
TLR12 프로필린(Profilin) 톡소플라즈마 곤디(Toxoplasma gondii)
TLR13 박테리아 리보솜 RNA 서열(bacterial ribosomal RNA sequence)"CGGAAAGACC" 바이러스, 박테리아
* TLR1 및 TLR2에 의해 인식되는 리간드** TLR2 및 TLR6에 의해 인식되는 리간드
본 발명에서 상기 톨 유사 수용체 작용제는 미생물, 바이러스, 식물 또는 동물 유래일 수 있고, 합성된 것일 수 있으며, 근원을 특별히 제한하지 않는다.
또한, 본 발명에서 상기 미성숙 수지상 세포의 분화는 분화 유도용 인자를 사용하여 수행될 수 있다. 여기서, 상기 분화 유도용 인자로는 FMS-유사 티로신 키네이즈 3 리간드(FMS-like tyrosine kinase 3, Flt3L)를 사용하는 것이 바람직하지만, 상기 미성숙 수지상 세포를 플라즈마사이토이드 수지상 세포 및 일반적인 수지상 세포(conventional plasmacytoid cells, cDC)로의 분화를 유도할 수 있는 것이라면 특별히 제한하지 않는다.
또한, 본 발명에서 상기 미성숙 수지상 세포의 분화는 분화 유도용 인자를 포함하는 배지에 상기 미성숙 수지상 세포를 배양하거나, 상기 미성숙 수지상 세포의 배양 배지에 상기 분화 유도용 인자를 첨가하며 수행될 수 있다.
또한, 본 발명에서는 선택적으로 상기 분화 유도용 인자는 상기 미성숙 수지상 세포를 분화하는 과정 중에 1회 이상 추가로 첨가될 수 있다.
본 명세서에서 용어, "FMS-유사 티로신 키네이즈 3 리간드(FMS-like tyrosine kinase 3, Flt3L)"는 조혈 전구 세포(hematopoietic progenitors)를 활성화시켜 사이토카인 및 성장 인자로서의 기능을 수행하는 내인성 저분자에 해당한다.
또한, 본 발명에서 상기 미성숙 수지상 세포의 분화 기간은 특별히 제한하지 않으며, 사용되는 배지의 종류 및 환경에 따라 달라질 수 있으나, 예를 들면 5일 내지 15일 동안 수행될 수 있고, 바람직하게는 7일 내지 10일 동안 수행될 수 있으며, 보다 바람직하게는 8일 내지 9일 동안 수행될 수 있다.
본 발명에서는 상기와 같이 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 미성숙 수지상 세포로부터 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 추가로 처리함으로써 상기 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 면역 관용성을 활성화시킬 수 있다.
본 발명에서 상기와 같이 분화 완료된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 활성화시킴에 있어 사용되는 톨 유사 수용체의 종류는 특별히 제한하지 않으며, TLR1 작용제, TLR2 작용제, TLR3 작용제, TLR4 작용제, TLR5 작용제, TLR6 작용제, TLR7 작용제, TLR8 작용제, TLR9 작용제, TLR11 작용제, TLR12 작용제 및 TLR13 작용제로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 포함할 수 있으나, 바람직하게는 TLR9 작용제를 사용할 수 있다.
본 발명에서는 상기와 같은 공정을 통해 미성숙 수지상 세포로부터 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포로의 분화를 효과적으로 유도할 수 있다. 이에 따라, 미성숙 수지상 세포를 이용하여 간단하고 용이한 공정을 통해 대량의 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 안정적으로 공급할 수 있다.
또한, 본 발명에서 상기와 같이 얻어진 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포는 염증성 사이토카인의 발현은 억제하고, 항염증성 사이토카인의 발현은 촉진하며, 조절 T 세포(regulatory T cells)로의 분화를 유도하고 작동 T 세포(effector T cell)의 활성은 억제하여 면역 반응을 효과적으로 억제할 수 있으며, 더 나아가서는 알레르겐-특이적 이뮤노글로불린과 Th2 사이토카인의 발현을 억제하여 음식 유래 알레르기 질환을 포함해 다양한 과민성 면역 질환을 효과적으로 예방 또는 치료할 수 있다.
본 발명에서 상기 "과민성 면역 질환"이란 한번 이상의 항원 노출에 과도한 면역 반응을 나타내는 것으로, 예를 들어, 꽃가루와 같이 사람에게서 아무런 문제도 일으키지 않는 물질이 피부에 접촉되거나 체내로 섭취 또는 체내 신진대사 및 병변에 의해 발생되는 인체의 면역 체계에 의해 유발되는 질환으로, 외부 물질에 반복적으로 접촉되어 기억세포에 의한 과도한 면역 반응이 발생하는 인체에 유해한 모든 질환을 의미한다.
구체적으로, 본 발명에서 상기 과민성 면역 질환은 알레르기성 두드러기, 알레르기성 비염, 알레르기성 결막염, 알레르기성 천식, 알레르기성 피부염, 자가면역성 간염, 알레르기성 기관지폐 아스폐르길루스증(allergic bronchopulmonary aspergillosis) 및 알레르기성 구내염(allergic stomatitis)로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에서 "예방"은 본 발명의 조성물의 투여로 과민성 면역 질환을 억제하거나 진행을 지연시키는 모든 행위를 의미한다.
본 발명에서 "치료" 및 "개선"은 본 발명의 조성물의 투여로 과민성 면역 질환의 증상이 호전 또는 이롭게 변경되는 모든 행위를 의미한다.
본 발명에 있어서, 상기 약학적 조성물은 캡슐, 정제, 과립, 주사제, 연고제, 분말 또는 음료 형태임을 특징으로 할 수 있으며, 상기 약학적 조성물은 인간을 대상으로 하는 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물은 이들로 한정되는 것은 아니지만, 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 캡슐, 정제, 수성 현탁액 등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 및 멸균 주사용액의 형태로 제형화하여 사용될 수 있다. 본 발명의 약학적 조성물은 약제적으로 허용 가능한 담체를 포함할 수 있다. 약학적으로 허용되는 담체는 경구 투여 시에는 결합제, 활탁제, 붕해제, 부형제, 가용화제, 분산제, 안정화제, 현탁화제, 색소, 향료 등을 사용할 수 있으며, 주사제의 경우에는 완충제, 보존제, 무통화제, 가용화제, 등장제, 안정화제 등을 혼합하여 사용할 수 있으며, 국소투여용의 경우에는 기제, 부형제, 윤활제, 보존제 등을 사용할 수 있다. 본 발명의 약학적 조성물의 제형은 상술한 바와 같은 약학적으로 허용되는 담체와 혼합하여 다양하게 제조될 수 있다. 예를 들어, 경구 투여시에는 정제, 트로키, 캡슐, 엘릭서(elixir), 서스펜션, 시럽, 웨이퍼 등의 형태로 제조할 수 있으며, 주사제의 경우에는 단위 투약 앰플 또는 다수회 투약 형태로 제조할 수 있다. 기타, 용액, 현탁액, 정제, 캡슐, 서방형 제제 등으로 제형할 수 있다.
한편, 제제화에 적합한 담체, 부형제 및 희석제의 예로는, 락토즈, 덱스트로즈, 수크로즈, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말디톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로즈, 폴리비닐피롤리돈, 물, 메틸하이드록시벤조에이트, 프로필하이드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 또는 광물유 등이 사용될 수 있다. 또한, 충진제, 항응집제, 윤활제, 습윤제, 향료, 유화제, 방부제 등을 추가로 포함할 수 있다.
본 발명에 따른 약학적 조성물의 투여 경로는 이들로 한정되는 것은 아니지만 구강, 정맥 내, 근육 내, 동맥 내, 골수 내, 경막 내, 심장 내, 경피, 피하, 복강 내, 비강 내, 장관, 국소, 설하 또는 직장이 포함된다. 경구 또는 비경구 투하가 바람직하다.
본 발명에서, "비경구"는 피하, 피내, 정맥내, 근육내, 관절내, 활액낭내, 흉골내, 경막내, 병소내 및 두개골내 주사 또는 주입기술을 포함한다. 본 발명의 약학적 조성물은 또한 직장 투여를 위한 좌제의 형태로 투여될 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물은 사용된 특정 화합물의 활성, 연령, 체중, 일반적인 건강, 성별, 정식, 투여시간, 투여경로, 배출율, 약물 배합 및 예방 또는 치료될 특정 질환의 중증을 포함한 여러 요인에 따라 다양하게 변할 수 있고, 상기 약학적 조성물의 투여량은 환자의 상태, 체중, 질병의 정도, 약물 형태, 투여 경로 및 기간에 따라 다르지만 당업자에 의해 적절하게 선택될 수 있고, 1일 0.0001 내지 50mg/kg 또는 0.001 내지 50mg/kg으로 투여할 수 있다. 투여는 하루에 한번 투여할 수도 있고, 수회 나누어 투여할 수도 있다. 상기 투여량은 어떠한 면으로든 본 발명의 범위를 한정하는 것은 아니다. 본 발명에 따른 의약 조성물은 환제, 당의정, 캡슐, 액제, 겔, 시럽, 슬러리, 현탁제로 제형될 수 있다.
본 발명의 조성물은 단독으로, 또는 수술, 방사선 치료, 호르몬 치료, 화학 치료 및 생물학적 반응 조절제를 사용하는 방법들과 병용하여 사용할 수 있다.
또한 본 발명은, 약학적으로 유효한 양의 본 발명에 따른 상기 약학적 조성물을 과민성 면역 질환에 걸린 개체에 투여하는 단계를 포함하는 과민성 면역 질환의 치료 방법에 관한 것이다.
또한 본 발명은, 약학적으로 유효한 양의 본 발명에 따른 상기 약학적 조성물을 과민성 면역 질환에 걸린 개체에 투여하는 단계를 포함하는 과민성 면역 질환의 예방 방법에 관한 것이다.
본 발명의 치료 방법 또는 예방 방법에서 투여되는 약학적 조성물은 앞서 기재된 바와 중복되어, 명세서 기재의 과도한 복잡성을 피하기 위해 이하의 기재를 생략한다.
본 발명에서 상기 약학적 조성물의 투여 방법은 경구 또는 비경구 투여할 수 있으며, 비경구 투여 시 복강 내 주사, 직장 내 주사, 피하 주사, 정맥 주사, 근육 내 주사, 자궁 내 경막 주사, 뇌혈관 내(intracerebroventricular) 주사 또는 흉부 내 주사에 의해 투여될 수 있다. 또한, 상기 조성물은 임상 투여 시에 경구로 투여가 가능하며 일반적인 의약품 제제의 형태로 사용될 수 있다.
본 발명에서 상기 약학적 조성물의 투여 횟수는 특별히 제한하지 않으며, 1회 이상 수행할 수 있으며, 보다 상세하게는 예방과 치료 목적에 따라 1회 이상 또는 증상이 있을 때에는 반복 투여할 수 있다.
이때, 상기 약학적으로 유효한 양이란 0.0001 내지 50mg/kg 또는 0.001 내지 50mg/kg이며, 이에 제한되는 것은 아니다. 상기 투여량은 특정 환자의 체중, 연령, 성별, 건강 상태, 식이, 투여 기간, 투여 방법, 제거율, 질환의 중증도 등에 따라 변화될 수 있다.
본 명세서에서 용어, "투여"는 임의의 적절한 방법으로 개체에 소정의 본 발명의 조성물을 제공하는 것을 의미한다.
본 명세서에서 용어, "개체"는 본 발명의 조성물을 투여하여 과민성 면역 질환이 호전될 수 있는 질환을 가진 인간, 원숭이, 개, 염소, 돼지 또는 쥐 등의 모든 동물을 의미한다.
본 명세서에서 용어, "약학적으로 유효한 양"은 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜 또는 위험 비율로 질환을 치료하기에 충분한 양을 의미하며, 이는 개체의 질환의 종류, 중증도, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료 기간, 동시에 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다.
또한 본 발명은, 상기의 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 제조하는 단계를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 개선용 화장료 조성물의 제조방법에 관한 것이다.
본 발명에서 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 유도하는 방법에 관한 자세한 설명은 상기 약학적 조성물에 기재된 바와 중복되어, 명세서 기재의 과도한 복잡성을 피하기 위해 이하의 기재를 생략한다.
본 발명에서 화장료 조성물은 화장수, 영양로션, 영양에센스, 마사지 크림, 미용목욕물첨가제, 바디로션, 바디밀크, 배스오일, 베이비오일, 베이비파우더, 샤워겔, 샤워크림, 선스크린로션, 선스크린크림, 선탠크림, 스킨로션, 스킨크림, 자외선차단용 화장품, 크렌징밀크, 탈모제{화장용}, 페이스 및 바디로션, 페이스 및 바디크림, 피부미백크림, 핸드로션, 헤어로션, 화장용크림, 쟈스민오일, 목욕비누, 물비누, 미용비누, 샴푸, 손세정제(핸드클리너), 약용비누{비의료용}, 크림비누, 페이셜 워시, 전신 세정제, 두피 세정제, 헤어린스, 화장비누, 치아미백용 겔, 치약 등의 형태로 제조될 수 있다. 이를 위해 본 발명의 조성물은 화장료 조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 용매나, 적절한 담체, 부형제 또는 희석제를 더 포함할 수 있다.
본 발명의 화장료 조성물 내에 더 추가될 수 있는 용매의 종류는 특별히 한정하지 않으나, 예를 들어, 물, 식염수, DMSO 또는 이들의 조합을 사용할 수 있고, 담체, 부형제 또는 희석제로는 정제수, 오일, 왁스, 지방산, 지방산 알콜, 지방산 에스테르, 계면활성제, 흡습제(humectant), 증점제, 항산화제, 점도 안정화제, 킬레이팅제, 완충제, 저급 알콜 등이 포함되지만, 이에 제한되는 것은 아니다. 또한, 필요에 따라 미백제, 보습제, 비타민, 자외선 차단제, 향수, 염료, 항생제, 항박테리아제, 항진균제를 포함할 수 있다.
상기 오일로서는 수소화 식물성유, 피마자유, 면실유, 올리브유, 야자인유, 호호바유, 아보카도유가 이용될 수 있으며, 왁스로는 밀랍, 경랍, 카르나우바, 칸델릴라, 몬탄, 세레신, 액체 파라핀, 라놀린이 이용될 수 있다.
지방산으로는 스테아르산, 리놀레산, 리놀렌산, 올레산이 이용될 수 있고, 지방산 알콜로는 세틸 알콜, 옥틸 도데칸올, 올레일 알콜, 판텐올, 라놀린 알콜, 스테아릴 알콜, 헥사데칸올이 이용될 수 있으며 지방산 에스테르로는 이소프로필 미리스테이트, 이소프로필 팔미테이트, 부틸 스테아레이트가 이용될 수 있다. 계면 활성제로는 당업계에 알려진 양이온 계면활성제, 음이온 계면활성제 및 비이온성 계면활성제가 사용가능하며 가능한 한 천연물 유래의 계면활성제가 바람직하다.
그 외에도 화장품 분야에서 널리 알려진 흡습제, 증점제, 항산화제 등을 포함할 수 있으며, 이들의 종류와 양은 당업계에 공지된 바에 따른다.
또한 본 발명은, 상기의 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 제조하는 단계를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물의 제조방법에 관한 것이다.
본 발명에서 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 유도하는 방법에 관한 자세한 설명은 상기 약학적 조성물에 기재된 바와 중복되어, 명세서 기재의 과도한 복잡성을 피하기 위해 이하의 기재를 생략한다.
본 발명의 식품 조성물은 각종 식품류, 예를 들어, 음료, 껌, 차, 비타민 복합제, 분말, 과립, 정제, 캡슐, 과자, 떡, 빵 등의 형태로 제조될 수 있다. 본 발명의 식품 조성물은 독성 및 부작용이 거의 없는 식물추출물로 구성된 것이므로 예방 목적으로 장기간 복용 시에도 안심하고 사용할 수 있다.
본 발명의 미세소포체가 식품 조성물에 포함될 때 그 양은 전체 중량의 0.1 내지 50%의 비율로 첨가할 수 있다.
여기서, 상기 식품 조성물이 음료 형태로 제조되는 경우 지시된 비율로 상기 식품 조성물을 함유하는 것 외에 특별한 제한점은 없으며 통상의 음료와 같이 여러가지 향미제 또는 천연 탄수화물 등을 추가 성분으로서 함유할 수 있다. 즉, 천연 탄수화물로서 포도당 등의 모노사카라이드, 과당 등의 디사카라이드, 슈크로스 등의 및 폴리사카라이드, 덱스트린, 시클로덱스트린 등과 같은 통상적인 당 및 자일리톨, 소르비톨, 에리트리톨 등의 당알콜 등을 포함할 수 있다. 상기 향미제로서는 천연 향미제(타우마틴, 스테비아 추출물(예를 들어 레바우디오시드 A, 글리시르히진등) 및 합성 향미제(사카린, 아스파르탐 등) 등을 들 수 있다.
그 외 본 발명의 식품 조성물은 여러 가지 영양제, 비타민, 광물(전해질), 합성 풍미제 및 천연 풍미제 등의 풍미제, 착색제, 펙트산 및 그의 염, 알긴산 및 그의 염, 유기산, 보호성 콜로이드 증점제, pH 조절제, 안정화제, 방부제, 글리세린, 알콜, 탄산 음료에 사용되는 탄산화제 등을 함유할 수 있다.
이러한 성분은 독립적으로 또는 조합하여 사용할 수 있다. 이러한 첨가제의 비율은 그렇게 중요하진 않지만 본 발명의 조성물 100 중량부 당 0.1 내지 약 50 중량부의 범위에서 선택되는 것이 일반적이다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로서, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.
실시예
[실시예 1] 톨 유사 수용체 작용제의 플라즈마사이토이드 수지상 세포로의 분화 조절 효과
미성숙 수지상 세포의 분화 중에 톨 유사 수용체 작용제를 처리한 경우, 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포로 분화가 유도되는지 확인하기 위하여, 도 1에 나타낸 설계도를 따라 하기와 같이 실험을 수행하였다.
구체적으로, C57BL/6 마우스로부터 골수 채취용 주사를 이용해 대퇴부 골수를 채취하였다. 채취한 골수를 인산화 완충 수용액(Phosphate buffer saline, PBS)으로 세척한 후 염화암모늄을 이용하여 적혈구를 제거하였다. 분리한 세포(3×106cell/웰)를 6-웰 플레이트에서 접종한 뒤, 10% FBS(Fetal bovine serum, 송아지 혈청), 2 mM L-글루타민, 100 U/ml 페니실린/스트렙토마이신, 50μM 머캅토에탄올, 0.1 mM 비필수 아미노산, 1 mM 피루브산 나트륨 및 250 ng/ml FLT3L을 포함하는 RPMI 1640 1ml를 첨가하여 배양 및 분화를 개시하였다. 분화 개시 후 3일째에 Pam3를 100 내지 500ng/ml의 농도로 처리하였다. 분화 개시 후 5일이 경과하였을 때 상기의 RPMI 1640 1ml를 추가적으로 보충해준 후 8일까지 배양하였다. 배양 후 얻어진 세포들을 플라즈마사이토이드 수지상 세포 분리 키트 (Miltenyi Biotec, Auburn, CA)와 자기 세포 분류 시스템(Vario MACS: Miltenyi Biotec, Auburn, CA)을 이용하여 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 85% 이상의 순도로 분리였다(도 2). 상기 톨 유사 수용체 작용제의 처리가 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 분화에 영향을 끼칠 수 있기 때문에 플라즈마사이토이드 수지상 세포에서 특이적으로 유도되는 표면 발현 분자들을 8일째에 확인하여 그 결과를 도 3의 (a)에 나타내었다. 또한, 톨 유사 수용체 작용제를 처리한 경우(TLRs-pDC)에 있어서, 초기 미성숙 수지상 세포의 수 대비 8일 경과 후 얻어진 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 수의 비율을 측정하여 그 결과를 도 3의 (b)에 나타내었다. 단, 상기 톨 유사 수용체 작용제의 분화 조절 효과를 확인하기 위하여 톨 유사 수용체 작용제를 처리하지 않은 경우를 비교예(pDC)로 나타내었다.
도 2에서 보는 바와 같이, 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여도 플라즈마사이토이드 수지상 세포로 분화가 유도된 것을 확인할 수 있었고, 분화 효율에 있어서도 미처리한 경우와 차이가 발생하지 않는 것을 확인하였다.
[실시예 2] 분리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 자극 및 사이토카인의 분비 양상 확인
상기 실시예 1에서 분리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 사이토카인 분비 양상을 확인하기 위하여, 분리한 세포(5×105cell/ml)를 48웰 플레이트에 접종한 뒤 ODN1826 (1 μg/ml)을 처리하여 자극하였다. 24시간이 경과한 후 얻어진 상층액을 분리하고, 효소면역정량법(ELISA, Enzyme Linked Immunosorbent assay)을 통해 사이토카인 분비 양상을 확인하여 그 결과를 도 4에 나타내었다. 단, 톨 유사 수용체 작용제의 처리 효과를 확인하기 위하여, 상기 실시예 1에서 미성숙 수지상 세포의 분화 중에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하지 않은 경우를 비교예(pDC)로 나타내었다.
도 4에서 보는 바와 같이, 일반적으로 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)에서는 I형 인터페론 (IFN-α 및 IFN-β)과 대표적인 염증성 사이토카인인 TNF-α 및 IL-12p70가 강력하게 유도되었다. 하지만, 톨 유사 수용체 작용제(0.5 μg/ml)를 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)의 경우 ODN1826으로 자극하자 그 발현 수준이 급격하게 감소하는 것을 확인하였다. 반면, 면역 억제성 사이토카인인 IL-10의 발현 수준은 톨 유사 수용체 작용제의 처리 후 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)에서 현저히 증가한 것을 확인하였다.
이를 통하여, 본 발명에 따라 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포는 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포와는 달리 면역 관용성을 갖는 것을 확인하였다.
[실시예 3] 다양한 톨 유사 수용체 작용제의 처리에 따른 플라즈마사이토이드 수지상 세포에서의 IL-10 분비 양상 확인
다양한 톨 유사 수용체 작용제의 면역 관용성 유도 효과를 확인하기 위하여, 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 분화를 유도하되, 톨 유사 수용체 작용제로는 하기 표 2에 나타낸 리간드를 사용하였다. 8일 배양 후 플라즈마사이토이드 수지상 세포 분리 키트 (Miltenyi Biotec, Auburn, CA)와 자기 세포 분류 시스템(Vario MACS: Miltenyi Biotec, Auburn, CA)을 이용하여 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 85% 이상의 순도로 분리하였다. 분리된 세포(5×105cell/ml)를 48웰 플레이트에 접종하고, ODN1826 (1 μg/ml)을 처리한 후 24시간 동안 배양하였다. 이후 상층액만을 분리하여 면역 억제성 사이토카인 IL-10의 분비 양상을 효소면역정량법으로 확인하여 그 결과를 도 5에 나타내었다. 단, 톨 유사 수용체 작용제의 처리 효과를 확인하기 위하여, 미성숙 수지상 세포의 분화 중에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하지 않은 경우를 비교예(non)로 나타내었다.
Non TLR2 작용제 TLR3 작용제 TLR4 작용제 TLR7 작용제 TLR9 작용제
미처리 Pam3 Poly I:C LPS 이미퀴모드 CpG-ODN
도 5에서 보는 바와 같이, 다양한 톨 유사 수용체 작용제 중 MYD88 시그널을 경유하는 TLR2 작용제, TLR4 작용제, TLR7 작용제 및 TLR8 작용제로 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포만이 ODN1826으로 자극하자 IL-10의 발현 수준이 유의하게 증가된 것을 확인하였다.
이를 통하여 미성숙 수지상 세포의 분화 중에 MYD88 시그널을 경유하는 톨 유사 수용체를 처리하는 경우 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포가 유도되는 것을 확인하였다.
[실시예 4] 톨 유사 수용체 작용제의 처리 시점에 따른 플라즈마사이토이드 수지상 세포에서의 사이토카인 분비 양상 확인
톨 유사 수용체 작용제의 처리 시점에 따른 면역 관용성 유도 효과를 확인하기 위하여, 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 분화를 유도하되, 톨 유사 수용체 작용제를 분화 개시 시점(0 day treatment), 분화 개시일로부터 3일이 경과하였을 때(3 day treatment) 처리하였다. 총 8일 배양 후 플라즈마사이토이드 수지상 세포 분리 키트 (Miltenyi Biotec, Auburn, CA)와 자기 세포 분류 시스템(Vario MACS: Miltenyi Biotec, Auburn, CA)을 이용하여 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 85% 이상의 순도로 분리하였다. 분리된 세포(5×105cell/ml)를 48웰 플레이트에 접종하고, ODN1826 (1 μg/ml)을 처리한 후 24시간 동안 배양하였다. 이후 상층액만을 분리한 뒤 사이토카인의 분비 양상을 효소면역정량법으로 확인하여 그 결과를 그 결과를 도 6에 나타내었다. 단, 톨 유사 수용체 작용제의 처리 효과를 확인하기 위하여, 미성숙 수지상 세포의 분화 중에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하지 않은 경우를 비교예(no-treatment, non)로 나타내었다.
도 6에서 보는 바와 같이, 톨 유사 수용체 작용제를 분화 개시 시점(0 day treatment) 또는 분화 개시일로부터 3일째(3 day treatment)에 처리한 경우 모두, 미처리한 경우(no-treatment)에 비하여 I형 인터페론 (IFN-α 및 IFN-β)과 대표적인 염증성 사이토카인인 TNF-α 및 IL-12p70의 발현은 억제되고, 항염증성 사이토카인인 IL-10의 발현 수준은 현저히 증가한 것을 확인하였다.
이를 통하여 톨 유사 수용체 작용제를 미성숙 수지상 세포의 분화 개시 시점, 즉 분화 유도용 인자인 FLT3L과 동시에 처리하여도, 분화 중에 처리한 경우와 마찬가지로 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 분화가 유도되는 것을 확인하였다.
[실시예 5] 톨 유사 수용체 작용제가 처리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 공동 자극 인자 및 MHC 분자의 발현 확인
플라즈마사이토이드 수지상 세포를 포함한 수지상 세포는 외부 항원 인지 시 T 세포를 활성화시키기 위하여 MHC 분자들을 통해 항원을 제시하고, CD80 및 CD86과 같은 공동 자극 인자를 발현하여 상호작용을 촉진시킨다.
이에 따라, 상기 실시예 1에서 분리한 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 ODN1826으로 자극한 후 24시간 동안 배양한 뒤 상기 세포 표면 분자들의 발현 수준을 확인하였다. 먼저 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 표면 인자 발현에 미치는 영향을 분석하기 위하여, 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 특이적인 마커들인 항-CD11c (PE-Cy7, BD Biosciences), 항-PDCA-1 (PerCP-eFluor  710, ebioscience)와 세포 표면 분자들에 특이적인 항-CD80 (v450, BD Biosciences), 항-CD86 (APC, ebioscience), 항-MHC-I (PE, ebioscience) 및 항-MHC-II (APC-eFluor 780, ebioscience) 항체를 4℃에서 30분간 처리한 후 유세포 분석기 LSRFortessa x-20 (BD Biosciences)를 통하여 분석하였다. 그 결과는 도 7에 나타내었다. 단, 톨 유사 수용체 작용제의 처리 효과를 확인하기 위하여, 미성숙 수지상 세포의 분화 중에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하지 않은 경우를 비교예(pDC)로 나타내었다.
도 7에서 보는 바와 같이, 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)에서는 공동 자극 인자인 CD86과 외인성 항원 제시를 하는 MHC 클래스 Ⅱ 분자가 높은 수준으로 발현되었으나, 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)의 경우 반응을 보이지 않거나 감소하는 특징을 보여 주었다. 한편, 또 다른 공동 자극 인자 중 하나인 CD80과 내인성 항원이나 교차 항원 제시를 하는 MHC 클래스 I 분자는 톨 유사 수용체 작용제로 처리되어 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)가 처리되지 않은 세포(pDC)보다 더 높은 수준으로 발현되는 것을 확인하였다.
[실시예 6] 톨 유사 수용체 작용제가 처리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 면역 관용 유도 분자의 발현 확인
일반적인 수지상 세포는 항원 제시를 통하여 T 세포 반응을 일으켜 후천성 면역 반응을 활성화시키지만, 일부 면역 관용성 수지상 세포의 경우 T 세포의 반응을 억제한다고 보고되고 있다. 이러한 면역 반응의 억제는 최근 다양한 면역 관용 유도 분자들로 예를 들면, PD-L1 및 IDO의 유도를 통해 이루어진다고 보고되고 있다. 또한 CCR9+pDCs은 조절 T 세포의 강력한 유도를 통하여 다양한 면역관용 현상을 유도할 수 있다고 보고되고 있다.
따라서, 이하에서는 상기 실시예 1에서 분리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포에서 면역 관용 유도 분자들의 발현을 확인하기 위하여, 플라즈마사이토이드 수지상 세포에 특이적인 마커들인 항-CD11c (PE-Cy7, BD Biosciences) 및 항-PDCA-1 (PerCP-eFluor 710, ebioscience)과 면역 관용 유도 세포 표면 분자들인 항-PD-L1(PE, ebioscience) 및 항-CCR9 (FITC, ebioscience)과 같은 세포 표면 인자 항체를 4℃에서 30분간 처리하였다. 또한, 세포 내에서 유도되는 IDO의 발현을 측정하기 위해 고정(fixation)/침투(permeabilization) (BD Bioscience)를 4℃에서 30분간 처리한 후 항-IDO (eFluor  660, ebioscience)를 염색하고 유세포 분석기 LSRFortessa x-20을 이용하여 발현 수준을 분석한 뒤 그 결과는 도 8에 나타내었다. 단, 톨 유사 수용체 작용제의 처리 효과를 확인하기 위하여, 상기 실시예 1에서 미성숙 수지상 세포의 분화 중에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하지 않은 경우를 비교예(pDC)로 나타내었다.
도 8에서 보는 바와 같이, 톨 유사 수용체 작용제로 처리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 경우, ODN1826으로 자극하자 CCR9 및 IDO 분자 모두 미처리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포에 비하여 발현양이 현저히 증가한 것을 확인할 수 있었고, CCR9의 경우는 비자극시에도 미처리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포에 비하여 높은 발현 양상을 보였다.
이를 통하여, 미성숙 수지상 세포의 분화 시 톨 유사 수용체 작용제를 처리한 경우, 면역 관용성을 갖는 플라즈마사이토이드 수지상 세포가 분화 유도된 것을 확인하였다.
[실시예 7] 톨 유사 수용체 작용제가 처리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 조절 T 세포 유도 능력 확인
면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Tolerogenic pDC)는 조절 T 세포(Regulatory T cell, Treg)로의 분화를 유도하고, 작동 T 세포(effector T 세포)의 활성이나 증식을 억제한다고 보고되고 있다.
따라서, 이하에서는 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)에 의한 조절 T 세포(Foxp3+CD4+ T cells)의 증식 여부를 확인하였다. 구체적으로, 동종이형 마우스에서 분리 후 CellTrace (Invitrogen)로 염색한 T 세포를 상기 실시예 1에서 분리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)와 5:1의 비율로 5일 동안 혼합 배양하였다. 단, 상기 플라즈마사이토이드 수지상 세포로는, ODN1826로 자극(ODN +)된 플라즈마사이토이드 수지상 세포와 미자극(ODN -)된 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 사용하였다. 5일 배양 후, 항-CD4 (Percp-cy5.5, ebioscience)를 4℃에서 30분 동안 처리하고 Foxp3/전사 인자 염색 버퍼(Transcription Factor Staining Buffer)(ebioscience)를 37℃에서 30분 동안 처리하였다. 그 후, 항-Foxp3 (PE, ebioscience)로 처리한 뒤 조절 T 세포로의 증식 여부를 유세포 분석기 LSRFortessa x-20을 통하여 확인한 결과를 도 9의 (a)에 나타내었고, 조절 T 세포의 증식률을 계산하여 그 결과는 도 9의 (b)에 나타내었다. 단, 톨 유사 수용체 작용제의 처리 효과를 확인하기 위하여, ODN1826로 자극(ODN +) 또는 미자극된 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 비교예(pDC)로 나타내었다.
도 9에서 보는 바와 같이, 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)의 경우 조절 T 세포의 증식을 유도하지 못하였고, ODN1826로 자극(ODN +)하자 오히려 조절 T 세포의 증식이 억제되는 것을 확인할 수 있었다. 반면, 톨 유사 수용체 자극제로 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)의 경우 ODN1826로 자극한 경우(ODN +)가 미자극한 경우(ODN -)보다 조절 T 세포의 증식이 현저하게 유도된 것을 확인하였다.
이를 통하여, 본 발명에 따라 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 추가로 처리한 경우 면역 관용성을 활성화되어 조절 T 세포로의 분화 또한 효과적으로 유도함을 확인하였다.
[실시예 8] Rv1411c 단백질의 톨 유사 수용체 작용제로서의 활성 확인
기존 보고에 따르면 결핵균 유래 단백질들은 다양한 톨 유사 수용체에 결합할 수 있다는 보고가 있다. 따라서, 이하에서는 TLR2 넉아웃 마우스와 야생형 마우스의 골수에서 분화시킨 수지상 세포와 Rv1411c 단백질의 결합을 확인하여 Rv1411c 단백질의 톨 유사 수용체 작용제로서의 활성을 확인하였다.
구체적으로, 마우스 골수를 분리하여 적혈구를 제거한 뒤, 수지상 세포의 분화를 위하여 10% FBS, 1% 항생제 및 100ng/ml의 GM-CSF (granulocyte-macrophage-colony stimulating factor)가 함유된 RPMI1640 배양액을 사용하여 8일간 배양하였다. 8일 배양 후 야생형 수지상 세포(WT)와 TLR2 넉아웃 마우스(TLR2-/-)에서 분리한 수지상 세포 각각에 5 μg/ml의 Rv1411c 단백질을 처리한 후 2시간 동안 간헐적으로 섞어주어 단백질의 결합을 용이하게 하였다. 이후 Rv1411c 단백질에 표지된 His분자에 항원-항체 특이성을 가지는 항체로 염색하여 유세포 분석기를 사용하여 결합 정도를 측정하고, 그 결과는 도 10에 나타내었다.
도 10에서 보는 바와 같이, 야생형 수지상 세포(WT)에서는 TLR2 넉아웃 수지상 세포(TLR2-/-)에 비하여 Rv1411c 단백질과의 결합이 증가한 것으로 확인되었으나, TLR2 넉아웃 수지상 세포(TLR2-/-)에서는 Rv1411c 단백질을 처리하였음에도 불구하고 처리하지 않은 실험군과 동일한 결합 정도를 확인하였다.
이를 통하여 Rv1411c 단백질은 TLR2 수용체에 결합하며 TL2 작용제로서 활성을 갖는 것을 확인하였다.
[실시예 9] Rv1411c 단백질의 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 분화 유도능 확인
상기 실시예 1과 동일한 공정으로 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 분화를 유도하되, 톨 유사 수용체 작용제로는 상기 실시예 8에서 톨 유사 수용체 작용제로서의 활성이 확인된 Rv1411c 단백질(O.1 ㎍/ml, 0.5 ㎍/ml)을 사용하였다. 8일 배양 후 플라즈마사이토이드 수지상 세포 분리 키트 (Miltenyi Biotec, Auburn, CA)와 자기 세포 분류 시스템(Vario MACS: Miltenyi Biotec, Auburn, CA)을 이용하여 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 85% 이상의 순도로 분리하였다. 분리된 세포(5×105cell/ml)를 48웰 플레이트에 접종하고, ODN1826 (1 μg/ml)으로 처리한 뒤 24시간 동안 배양하였다. 배양 후 얻어진 상층액을 분리하여 효소면역정량법(ELISA, Enzyme Linked Immunosorbent assay)을 통해 사이토카인 분비 양상을 확인한 결과를 도 11에 그래프로 나타내었다. 단, Rv1411c 단백질의 처리 효과를 확인하기 위하여, Rv1411c 단백질이 미처리된 것으로, ODN1826로 자극(ODN +) 또는 미자극된(ODN -) 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 비교예(pDC)로 나타내었다.
도 11에서 보는 바와 같이, Rv1411c 단백질로 처리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c(0.1㎍/ml)-pDC, Rv1411c(0.5㎍/ml)-pDC)를 ODN1826으로 자극하자 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포에서 강력하게 유도되는 I형 인터페론(IFN-α 및 IFN-β)과 대표적인 염증성 사이토카인인 TNF-α 및 IL-12p70의 발현이 농도 의존적으로 급격하게 감소하는 것을 볼 수 있었고, 면역 억제성 사이토카인인 IL-10은 농도 의존적으로 그 발현 수준이 현저히 증가하는 것을 확인하였다.
이를 통하여, Rv1411c 단백질로 처리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포는 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포와는 다르게 면역 관용성을 갖는 것을 알 수 있었으며, 상기 Rv1411c 단백질의 처리 농도와 비례하여 면역 관용성의 정도 또한 증가하는 것을 확인하였다.
[실시예 10] Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 공동 자극 인자, MHC 분자 및 면역 관용 유도 분자의 발현 확인
상기 실시예 9에서 Rv1411c 단백질로 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포에서 표면 분자 및 효소의 발현 양상을 확인하였다.
먼저 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 표면 인자 발현 영향을 분석하기 위하여, 플라즈마사이토이드 수지상 세포에 특이적인 마커들인 항-CD11c (PE-Cy7, BD Biosciences) 및 항-PDCA-1 (PerCP-eFluor  710, ebioscience)와, 항-CD80 (v450, BD Biosciences), 항-CD86 (APC, ebioscience), 항-MHC-I (PE, ebioscience) 및 항-MHC-II (APC-eFluor 780, ebioscience), 항-PD-L1(PE, ebioscience) 및 항-CCR9 (FITC, ebioscience)과 같은 세포 표면 인자 항체를 4℃에서 30분간 처리하였다. 또한 세포 내에서 유도되는 IDO의 발현을 측정하기 위하여 고정(fixation)/침투(permeabilization) (BD Bioscience)를 4℃에서 30분 동안 처리한 뒤, 항-IDO (eFluor  660, ebioscience)를 처리한 후 유세포 분석기 LSRFortessa x-20을 통하여 분석하여 그 결과를 도 12에 나타내었다. 단, Rv1411c 단백질의 처리 효과를 확인하기 위하여, Rv1411c 단백질이 미처리된 것으로, ODN1826로 자극(ODN +) 또는 미자극된(ODN -) 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 비교예(pDC)로 나타내었다.
도 12에서 보는 바와 같이, ODN1826 자극 시 Rv1411c 단백질로 미처리된 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)에서는 공동 자극 인자인 CD86과 외인성 항원 제시를 하는 MHC 클래스 Ⅱ 분자가 높은 수준으로 발현되는 반면, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC)는 반응을 보이지 않거나 감소하는 특징을 볼 수 있었다.
반면, 또 다른 공동 자극 인자 중 하나인 CD80과 내인성 항원이나 교차 항원제시를 하는 MHC 클래스 I 분자의 경우는, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC)가 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)보다 더욱 높은 수준으로 발현되는 것을 볼 수 있었다.
또한, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC)의 경우, ODN1826으로 자극(ODN +) 시 PD-L1, CCR9 및 IDO 분자 모두, 미자극한 경우(ODN -)에 비하여 발현 수준이 증가하는 것을 확인할 수 있었고, CCR9과 PD-L1의 경우는 미자극 시(ODN -)에도 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)에 비하여 높은 발현 양상을 나타내는 것을 확인하였다.
[실시예 11] Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 T 세포의 활성 억제
면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 생체 내에서의 가장 중요한 특징은 T 림프구의 활성을 억제하는 것이다. 이에, 상기 실시예 9에서 Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포가 T 세포의 증식과 활성에 미치는 영향을 확인하기 위하여 하기의 실험을 수행하였다.
구체적으로, 동종이형 마우스에서 분리하여 CellTrace (Invitrogen)로 염색한 T 세포(1.5×105cell/well)를 1X의 PMA/Ionomycin (ebioscience)을 통하여 자극을 주었다. 이러한 PMA/Ionomycin의 처리는 T 림프구의 증식 속도를 증가시키며, 인터페론 감마(IFN-gamma)의 분비를 촉진시키게 된다. 이러한 반응들이 이루어질 때 T 세포와 Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC) 또는 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)의 비율이 1:5가 되도록 혼합하여 3일간 배양하였다. 3일 후, 항-CD4 (Percp-cy5.5, ebioscience), 항-CD8 (Percp-cy5.5, ebioscience)를 처리하고, 4℃에서 30분간 염색하였다. 유세포 분석기 LSRFortessa x-20을 통하여 T 세포의 증식 정도를 분석하여 그 결과를 도 13에 나타내었다. 또한, 상기 3일 배양 후 얻어진 상층액을 분리한 뒤 효소면역정량법(ELISA, Enzyme Linked Immunosorbent assay)을 통해 IFN-gamma의 분비 양상을 확인하여 그 결과를 도 14에 나타내었다. 단, Rv1411c 단백질의 처리 효과를 확인하기 위하여, Rv1411c 단백질이 미처리된 것으로, ODN1826로 자극(ODN +) 또는 미자극된(ODN -) 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 비교예(pDC)로 나타내었다.
도 13에서 보는 바와 같이, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC)와 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC) 모두 T 세포의 증식을 유도하였지만, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC)가 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)보다 CD4+ T 세포에 대한 증식 유도 능력이 훨씬 낮게 관찰되었다.
또한, 도 14에서 보는 바와 같이, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC)가 미처리된 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)에 비하여 낮은 수준으로 IFN-gamma의 분비를 유도하는 것을 확인하였다.
[실시예 12] Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 조절 T 세포 분화 조절
동종이형 마우스에서 분리 후 CellTrace (Invitrogen)로 염색한 T 세포를 상기 실시예 9에서 Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC) 또는 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)와 그 비율이 10:1, 5:1 또는 1:1이 되도록 하여 5일 동안 배양하였다. 단, 상기 플라즈마사이토이드 수지상 세포로는 ODN1826로 자극된 것(ODN +)과 미자극 된 것(ODN -)을 사용하였다. 배양 후 5일 째에, 세포들에 항-CD4 (Percp-cy5.5, ebioscience)로 4℃에서 30분간 처리하고 Foxp3/전사 인자 염색 버퍼 (ebioscience)를 37℃에서 30분 동안 처리하였다. 그 후 항-Foxp3 (PE, ebioscience)를 염색하여 유세포 분석기 LSRFortessa x-20을 통해 조절 T 세포로의 증식 여부를 확인하였고, 그 결과는 도 15의 (a)에 나타내었다. 또한, 조절 T 세포의 증식률을 계산하여 그 결과는 도 15의 (b)에 나타내었다.
도 15에서 보는 바와 같이, 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDC)의 경우 조절 T 세포의 증식을 유도하지 못하였고, ODN1826로 자극하는 경우 오히려 조절 T 세포의 증식이 억제되는 것을 확인하였다. 반면, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC)의 경우 ODN1826로 자극하자(ODN +) 미자극한 경우(ODN -)보다 조절 T 세포의 증식을 현저하게 유도함을 확인할 수 있었으며, T 세포 대비 플라즈마사이토이드 수지상 세포(Rv1411c-pDC)의 비율이 증가할수록 조절 T 세포의 증식률 또한 증가하는 것을 확인하였다.
이를 통하여, 본 발명에 따라 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 추가로 처리한 경우 면역 관용성을 활성화시켜 조절 T 세포의 증식 또한 효과적으로 유도함을 확인하였다.
[실시예 13] Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포에 의한 작동 T 세포의 활성 억제
조절 T 세포는 면역 관용 수지상 세포를 유도하고 다른 T 세포의 증식을 억제한다고 보고되고 있다. 따라서 이하에서는 상기 실시예 12에 따라 Rv1411c 단백질에 의해 분화 유도된 T 세포의 조절 T 세포로서의 활성을 확인하였다.
먼저 마우스의 비장을 분리한 후 적혈구를 제거한 뒤 자기세포분류시스템(MACS)을 사용하여 CD4+, CD25- 작동 T 세포를 분리해 낸 후 증식 정도를 알아보기 위하여 보라색 증식 염색제(violet proliferation dye)로 염색하였다. 이후 분화된 T 세포를 CD4+, CD25- 작동 T 세포와 함께 항 CD3e와 항CD28 항체로 코팅된 웰에서 2일 동안 배양하였다. 그 결과, CD25- 작동 T 세포 대비 프라이밍된 T 세포의 비율에 대하여 T 세포 증식능의 변화를 측정하여 도 16에 그래프로 나타내었다.
도 16에서 보는 바와 같이, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포 중 ODN1826으로 자극된 세포(Rv1411c-pDC(ODN))에 의하여 유도된 T 세포만이 작동 T 세포의 분화 정도를 감소시키는 것을 확인하였다.
이를 통하여, 본 발명에 따라 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 추가로 처리한 경우 면역 관용성을 활성화시켜 작동 T 세포의 활성을 효과적으로 억제함을 확인하였다.
[실시예 14] 톨 유사 수용체 작용제의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 획득 수율
C57BL/6 마우스로부터 골수 채취용 주사를 이용해 대퇴부 골수를 채취하였다. 채취한 골수를 인산화 완충 수용액(Phosphate buffer saline, PBS)으로 세척한 후 염화암모늄을 이용하여 적혈구를 제거하였다. 분리한 세포(5×105cell/웰)를 6-웰 플레이트에서 접종한 뒤, 10% FBS(Fetal bovine serum, 송아지 혈청), 2 mM L-글루타민, 100 U/ml 페니실린/스트렙토마이신, 50μM 머캅토에탄올, 0.1 mM 비필수 아미노산, 1 mM 피루브산 나트륨 및 250 ng/ml FLT3L을 포함하는 RPMI 1640 1ml를 첨가하여 배양 및 분화를 개시하였다. 분화 개시 후 3일째에 톨 유사 수용체 작용제로 Rv1411c 단백질과 Pam3를 100 내지 500ng/ml의 농도로 처리하였다. 분화 개시 후 5일이 경과하였을 때 상기의 RPMI 1640 1ml를 추가적으로 보충해준 후 8일까지 배양하였다. 배양 후 얻어진 세포들을 플라즈마사이토이드 수지상 세포 분리 키트 (Miltenyi Biotec, Auburn, CA)와 자기 세포 분류 시스템(Vario MACS: Miltenyi Biotec, Auburn, CA)을 이용하여 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 85% 이상의 순도로 분리였다. 분리된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 수(TLR agonist)를 측정한 결과를 도 17에 그래프로 나타내었다. 단, 톨 유사 수용체 작용제의 처리 효과를 확인하기 위하여, 미성숙 수지상 세포의 분화 중에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하지 않은 경우를 비교예(non)로 나타내었다.
도 17에서 보는 바와 같이, 미성숙 수지상 세포의 분화 중에 톨 유사 수용체 작용제를 처리한 경우(TLR agonist), 미처리한 경우(Non)와 비교하여 분화 유도되는 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 수가 현저히 증가함을 확인하였다.
[실시예 15] 톨 유사 수용체 작용제의 처리 후 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 알레르기 질환 치료 효과
1. 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델의 제작
난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델을 제작하기 위하여, 도 18에 나타낸 설계도를 따라 하기와 같이 실험을 수행하였다.
구체적으로, 4주령 BALB/c 암컷 마우스를 구입하여 SPF (Specific Pathogen Free) 조건하에 1주간 순화시킨 후, 5주령 때에 실험을 실시하였다. 마리 당 각각 10 μg 난황단백 (ovalbumin, OVA)과 1 mg 알루미늄 수산화물 (Aluminum hydroxide, Alum, Sigma-Aldrich korea LTD)을 0일 및 7일차에 100㎕씩 복강에 주입하여 음식 알레르기를 감작 (sensitization)하였다. 감작 14일차부터 21일차까지 마리 당 10 mg 난황 단백을 총 4회 경구 투여하여 부스팅(boosting)을 진행하였다.
2. 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 준비
상기 실시예 9에서 Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포 및 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 준비한 뒤, 1 μg/ml의 OVA 펩타이드 (OVA323-339 및 OVA257-264)와 1 μg/ml의 ODN1826 (TLR9 작용제)을 3시간 자극 후 수집(harvest)하였다.
상기와 같이 활성화된 면역 관용성 수지상 세포의 주입으로 인한 음식 알레르기 억제 효과를 확인하기 위하여, 감작 14일차에 상기 제조한 동물 마우스 모델의 정맥을 통하여 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 1x106 cell/mice의 양으로 정맥을 통해 주입하였고(i.v.), 음성 대조군은 감작 14일차에 인산화 완충 수용액(PBS)만을 주입하였다. 그리고, 최초 감작 후 28일차에 OVA을 마리 당 50 mg의 양으로 경구로 투여하여 알레르기 반응을 유도(challenge)하였다.
3. 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물의 알레르기 증상으로 인한 저체온증 및 전신적 아나필락시스(anaphylaxis) 증상 평가
알레르기 반응으로 인한 전신성 아나필락시스 증상의 평가는, 육안으로 관찰한 결과 하기 표 3과 같은 기준으로 질환 점수를 부여하여 확인하였고, 그 결과는 도 19에 나타내었다. 또한, 저체온증 여부는 알레르기 반응 유도 후 1시간 동안 디지털 체온계 TESTO 925 (Testo AG, Germany)를 사용하여 마우스의 직장의 체온 변화를 측정해 그 결과를 도 20에 나타내었으며, 설사 발병률 또한 평가하여 그 결과는 도 21에 나타내었다.
질환 점수 아나필락시스 증상
0 아무런 증상 없음 (자유롭게 뛰어 다님)
1 코와 머리 주위를 긁거나 문지름
2 눈과 입 주위가 부품, 활성 떨어짐, 설사
3 숨을 헐떡임, 힘든 호흡, 입과 꼬리의 청색증
4 자극 후 활성(반응) 없음, 경련, 떨림
5 죽음
도 19에서 보는 바와 같이, 난황 단백 유래 음식 알레르기 반응을 유발하자, 인산화 완충 수용액만을 처리한 음성 대조군(PBS)의 경우 아나필락시스 반응이 유발되어 활동량이 감소하고 눈과 입 주위가 부풀고 긁는 현상 및 호흡이 가빠지는 현상을 관찰할 수 있었다. 하지만, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 마우스에 주입한 경우(TLRs-pDC 14d)는 활동량에 큰 변화를 나타내지 않았고 부분적인 눈과 입 주변을 긁는 최소한의 현상만을 나타내어, 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포(pDS)를 주입한 경우에 비하여 그 증상이 크게 완화된 것을 볼 수 있었다.
도 20에서 보는 바와 같이, 난황 단백 유래 음식 알레르기 반응을 유발하자, 인산화 완충 수용액만을 처리한 음성 대조군(PBS)의 경우 아나필락시스 반응에 의하여 급격히 저체온 증상이 발생하였지만, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포(TLRs-pDC)를 마우스에 주입한 경우, 직장 온도의 감소폭이 크지 않았으며, 상기 음성 대조군(PBS)에 비하여 저체온증 현상이 빠르게 회복되는 것을 확인하였다.
또한, 도 21에서 보는 바와 같이, 설사 발병률 역시 인산화 완충 수용액만을 투여한 경우(PBS) 모든 마우스에서 설사 증상을 나타내었고, 일반적인 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 주입한 경우(pDC)도 80%에서 설사 증상을 나타낸 반면, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 마우스에 주입한 경우(TLRs-pDC 14d)는 설사 발병률이 40% 정도로 유의적으로 감소하였다.
이를 통하여, 본 발명에 따라 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 세포는 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환의 유발을 억제하는 효과가 있음을 확인하였다.
[실시예 16] 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델에서 혈중 이뮤노글로뷸린에 대한 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 영향
IgE와 IgG1 항체는 Th2 매개한 알레르기 반응에 관여하는 주요 항체로 알려져 있으므로, 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델에서 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 주입을 통하여 혈중 내 IgE와 IgG1의 농도 변화에 어떠한 영향을 미치는지 확인하였다.
구체적으로, 상기 실시예 15와 동일한 방법으로 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델을 제작한 뒤 인산화 완충 수용액(PBS) 또는 상기 실시예 9에서 Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 주입한 후 50 mg의 OVA를 투여 (challenge)하였다. 1시간 경과 후, 마우스의 혈액을 추출하여 혈청을 분리하여 혈청 내 OVA-특이적 IgE 및 IgG1의 혈중 농도를 확인하여 그 결과를 도 22에 나타내었다.
도 22에서 보는 바와 같이, 정상군(Normal)에 비하여 난황 단백 유래 음식 알레르기 반응 유발 시(PBS) OVA-특이적 IgE 및 IgG1이 농도가 증가하였으나, Rvc1411c 단백질 처리 후 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 주입한 경우, 그 농도가 유의성 있게 감소한 것을 확인하였다.
이를 통하여, 본 발명에 따라 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 세포는 난황 단백 항원에 노출되어 증가한 OVA-특이적 이뮤노글로불린의 발현을 감소시켜 음식 알레르기 질환의 유발을 억제하는 것임을 확인하였다.
[실시예 17] 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델에서 Th2 사이토카인 생성에 대한 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포의 영향
일반적으로, Th2 사이토카인의 과발현은 아나필락시스 증상 발병에 중요한 역할을 하는 것으로 알려져 있다. 이에 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델에 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 주입하여 혈청 내 인터루킨-4와 인터루킨-5의 발현 수준의 변화를 평가하여 알레르기 억제 효과를 확인해 보는 실험을 진행하였다.
구체적으로, 상기 실시예 15와 동일한 방법으로 난황 단백 유도 음식 알레르기 질환 동물 모델을 제작한 뒤 인산화 완충 수용액(PBS) 또는 상기 실시예 9에서 Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 주입한 후, 50 mg의 OVA를 투여 (challenge)하였다. 1시간 경과 후, 마우스의 혈액을 추출하여 혈청을 분리하여 혈청 내 Th2 사이토카인인 인터루킨-4(IL-4) 및 인터루킨-5(IL-5)의 혈중 농도를 확인하여 그 결과를 도 23에 나타내었다.
도 23에서 보는 바와 같이, 정상군(Normal)에 비하여 난황 단백 유래 음식 알레르기 반응 유발 시(PBS) Th2 사이토카인인 인터루킨-4와 인터루킨-5 발현 수준이 증가하였으나, Rv1411c 단백질을 처리하여 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 마우스에 주입한 경우(TLRs-pDC 14d) 그 발현 수준이 유의성 있게 감소하였다.
이를 통하여, 본 발명에 따라 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 세포는 난황 단백 유도 음식 알레르기 발병 시 Th2 사이토카인의 발현을 억제하여 음식 알레르기 질환의 유발을 억제하는 것임을 확인하였다.
이상으로 본 발명의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 이러한 구체적인 기술은 단지 바람직한 구현예일 뿐이며, 이에 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백하다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항과 그의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.

Claims (21)

  1. 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제(toll-like receptor agonist)를 처리하여 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포(plasmacytoid dendritic cells, pDC)를 제조하는 단계를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 톨 유사 수용체 작용제는 상기 미성숙 수지상 세포의 분화 개시 이전 또는 분화 중에 처리되어, 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포로의 분화를 유도하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 톨 유사 수용체 작용제는 상기 미성숙 수지상 세포의 분화 개시 시점으로부터 분화 완료 이전에 처리되는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  4. 제2항 또는 제3항에 있어서,
    상기 미성숙 수지상 세포의 분화는 분화 유도용 인자를 사용하여 수행되는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  5. 제4항에 있어서,
    상기 분화 유도용 인자는 FMS-유사 티로신 키네이즈 3 리간드(FMS-like tyrosine kinase 3, Flt3L)인, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  6. 제4항에 있어서,
    상기 분화 유도용 인자는 상기 미성숙 수지상 세포에 1회 이상 처리되는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  7. 제1항에 있어서,
    상기 톨 유사 수용체 작용제는 상기 분화 유도용 인자와 동시에 상기 미성숙 수지상 세포에 처리되는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  8. 제1항에 있어서,
    상기 톨 유사 수용체 작용제는 1회 이상 처리되는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  9. 제1항에 있어서,
    상기 톨 유사 수용체 작용제는 MyD88(Myeloid differentiation primary response gene 88) 시그널을 경유하는 것인, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  10. 제1항에 있어서,
    상기 톨 유사 수용체 작용제는 TLR2 작용제, TLR4 작용제, TLR5 작용제, TLR7 작용제, TLR8 작용제, TLR9 작용제, TLR11 작용제, TLR12 작용제 및 TLR13 작용제로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  11. 제10항에 있어서,
    상기 톨 유사 수용체 작용제는 TLR1 작용제 및 TLR6 작용제 중 적어도 하나를 추가로 더 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  12. 제2항에 있어서,
    상기 분화 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 추가로 처리하여 면역 관용성을 활성화시키는 단계를 더 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  13. 제12항에 있어서,
    상기 면역 관용성을 활성화시키기 위하여 사용되는 상기 톨 유사 수용체 작용제는 TLR9 작용제인, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  14. 제1항에 있어서,
    상기 과민성 면역 질환은 알레르기성 두드러기, 알레르기성 비염, 알레르기성 결막염, 알레르기성 천식, 알레르기성 피부염, 자가면역성 간염, 알레르기성 기관지폐 아스폐르길루스증(allergic bronchopulmonary aspergillosis) 및 알레르기성 구내염(allergic stomatitis)로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상인, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  15. 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
  16. 제15항에 있어서,
    상기 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포는, 상기 미성숙 수지상 세포의 분화 개시 이전 또는 분화 중에 상기 톨 유사 수용체 작용제가 처리되어 분화 유도된 것인, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
  17. 제15항에 있어서,
    상기 톨 유사 수용체 작용제는 TLR2 작용제, TLR4 작용제, TLR5 작용제, TLR7 작용제, TLR8 작용제, TLR9 작용제, TLR11 작용제, TLR12 작용제 및 TLR13 작용제로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
  18. 제17항에 있어서,
    상기 톨 유사 수용체 작용제는 TLR1 작용제 및 TLR6 작용제 중 적어도 하나를 추가로 더 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
  19. 제15항에 있어서,
    상기 과민성 면역 질환은 알레르기성 두드러기, 알레르기성 비염, 알레르기성 결막염, 알레르기성 천식, 알레르기성 피부염, 자가면역성 간염, 알레르기성 기관지폐 아스폐르길루스증(allergic bronchopulmonary aspergillosis) 및 알레르기성 구내염(allergic stomatitis)로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상인, 과민성 면역 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 제조방법.
  20. 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 개선용 화장료 조성물.
  21. 미성숙 수지상 세포에 톨 유사 수용체 작용제를 처리하여 유도된 면역 관용성 플라즈마사이토이드 수지상 세포를 포함하는, 과민성 면역 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물.
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