WO2018012896A1 - 결핵균 및 비결핵균 동시 진단용 멀티플렉스 pcr 프라이머 세트, 프라이머 세트를 포함하는 조성물 및 키트 - Google Patents

결핵균 및 비결핵균 동시 진단용 멀티플렉스 pcr 프라이머 세트, 프라이머 세트를 포함하는 조성물 및 키트 Download PDF

Info

Publication number
WO2018012896A1
WO2018012896A1 PCT/KR2017/007507 KR2017007507W WO2018012896A1 WO 2018012896 A1 WO2018012896 A1 WO 2018012896A1 KR 2017007507 W KR2017007507 W KR 2017007507W WO 2018012896 A1 WO2018012896 A1 WO 2018012896A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
seq
nucleotide sequence
sequence represented
tuberculosis
primer set
Prior art date
Application number
PCT/KR2017/007507
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
신성재
채한송
한승정
조상래
Original Assignee
주식회사 큐라티스
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 주식회사 큐라티스 filed Critical 주식회사 큐라티스
Publication of WO2018012896A1 publication Critical patent/WO2018012896A1/ko

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/689Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for bacteria
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2531/00Reactions of nucleic acids characterised by
    • C12Q2531/10Reactions of nucleic acids characterised by the purpose being amplify/increase the copy number of target nucleic acid
    • C12Q2531/113PCR
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2537/00Reactions characterised by the reaction format or use of a specific feature
    • C12Q2537/10Reactions characterised by the reaction format or use of a specific feature the purpose or use of
    • C12Q2537/143Multiplexing, i.e. use of multiple primers or probes in a single reaction, usually for simultaneously analyse of multiple analysis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/158Expression markers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/16Primer sets for multiplex assays

Definitions

  • the present invention includes a primer set for multiplex PCR capable of specifically amplifying genes specifically present in the Mycobacterium tuberculosis bacteria and genes capable of simultaneously diagnosing Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis bacteria, the primer set.
  • the present invention relates to a composition and kit for the simultaneous detection and discrimination of Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis, and to a method of simultaneously detecting and discriminating Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis, including the primer set.
  • MDR multi-drug-resistant
  • XDR Mycobacterium tuberculosis
  • the Beijing family Mycobacterium tuberculosis which has a Beijing genotype, is a dominant tuberculosis bacterium in Asia and the former Soviet Union, especially in China. About 50% in East Asia, 70% in Korea, about 20% in countries with low incidence of tuberculosis in the US and Canada, and 13% worldwide. There are reports that the Beijing family is closely linked to multidrug resistant tuberculosis and widespread resistant tuberculosis with high relapse rates, treatment failures and the ability to obtain favorable resistance.
  • BCG Bacillus Calmette-Guein
  • NTM non-tuberculous mycobacteria
  • NTMs are widely distributed in natural environments such as natural waters and soils and have low pathogenicity, thus reducing the risk of infection among humans.However, NTM was detected because there is no proper medicine and antibiotic resistance is different for each NTM. This is important. In other words, for the efficient treatment of lung disease caused by mycobacteria, a technique for accurately diagnosing at least certain species is required.
  • the present inventors in this study including the genetic markers specifically present in Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis, and Mycobacterium tuberculosis through multiplex PCR comprising a genetic marker specifically present in Beijing family Mycobacterium tuberculosis closely related to multidrug resistance and The present invention was completed after confirming that simultaneous detection and type of non-TB bacteria were diagnosed.
  • An object of the present invention is to provide a primer set for multiplex PCR for simultaneous detection and discrimination of Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis.
  • Still another object of the present invention is to provide a composition for the simultaneous detection and determination of Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis, including kits for multiplex PCR for simultaneous detection and determination of Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis, and a kit comprising the composition.
  • Still another object of the present invention is to provide a method for simultaneously detecting and discriminating tuberculosis bacteria and non-tuberculosis bacteria.
  • rv0577 comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 3 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 4 Detection primer sets;
  • a mtbk_20680 detection primer set comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 7 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 8;
  • a primer set for detecting 16S rRNA comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2;
  • RD9 a primer set for detecting Region of Difference 9 (RD9) comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 5 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 6;
  • a primer set for detecting IS 1311 comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 9 and a nucleotide sequence represented by SEQ
  • the present invention (a) rv0577 comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 3 and the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 4 Detection primer sets; (b) a mtbk _20680 primer set for detecting a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 7 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 8; (c) a primer set for detecting 16S rRNA comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2; And (d) a primer set for detecting Region of Difference 9 (RD9) comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 5 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 6; A primer set for detecting IS 1311 comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 9 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO:
  • the present invention provides a kit for the simultaneous detection and determination of Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis, including the composition for the tuberculosis and non-tuberculosis bacteria.
  • the present invention comprises the steps of (a) performing PCR by adding a primer set for multiplex PCR for simultaneous detection and discrimination of Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis bacteria; And (b) detecting tuberculosis bacteria and non-tuberculosis bacteria in the PCR product.
  • the method provides simultaneous detection and discrimination of tuberculosis bacteria and non-tuberculosis bacteria.
  • NTM non-tuberculosis bacillus
  • MTBC tuberculosis bacillus
  • MTB M. tuberculosis Beijing and M. tuberculosis non-Beijing
  • NTM M. avium subsp.hominissius , MI; M. intracellulare , MAB; M. abscessus subsp. Abscessus and MAS; M. abscessus subsp massiliense
  • other mycobacteria are shown showing the results of multiplex PCR using the primer set of the present invention.
  • Figure 2 is a diagram showing the results of performing multiplex PCR on MTB ( M. tuberculosis Beijing and M. tuberculosis non-Beijing) clinical strains.
  • Figure 3 is a diagram showing the results of performing multiplex PCR on the MTBC and NTM strains.
  • FIG. 4 is a diagram showing the results of confirming the sensitivity of the multiplex PCR according to the concentration of the template DNA.
  • the invention (a) rv0577 comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 3 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 4 Detection primer sets; (b) a mtbk _20680 primer set for detecting a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 7 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 8; (c) a primer set for detecting 16S rRNA comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2; And (d) a primer set for detecting Region of Difference 9 (RD9) comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 5 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 6; A primer set for detecting IS 1311 comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 9 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 4
  • Region of Difference 9 is a PCR amplification product It means the part from rv2072c to rv2073c .
  • detection in the present invention means to discriminate between Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis, and to identify the types of Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis by PCR using the primer set of the present invention, and to discriminate between Beijing and non-Beijing families. .
  • primer refers to a nucleic acid sequence having a short free 3 'hydroxyl group, which may form a base pair and a base pair of complementary nucleic acids, By a short nucleic acid sequence that serves as a starting point for. Primers can initiate DNA synthesis in the presence of four different nucleoside triphosphates and reagents for polymerization (ie, DNA polymerase or reverse transcriptase) at appropriate buffers and temperatures.
  • multiplex PCR refers to a method of amplifying a plurality of target genes in the same reaction solution by using a plurality of primer pairs simultaneously.
  • the primer set of the present invention can simultaneously amplify 16S rRNA, rv0577 , RD9 , mtbk _20680, IS 1311, DT1 ( ocu_18960 ) , mab_3265 c through one PCR reaction. It can effectively discriminate against the Beijing family, a tuberculosis bacterium that is popular all over the world, and at the same time, identify and distinguish clinically significant non-tuberculosis bacteria (NTM) and tuberculosis bacteria (MTBC).
  • NTM non-tuberculosis bacteria
  • MTBC tuberculosis bacteria
  • the primer When designing the primer, there are various restrictions such as the A, G, C, T content ratio of the primer, prevention of primer dimer formation, and prohibition of repeating three or more times of the same nucleotide sequence. (template) amounts of DNA, the conditions of the concentration of the primer, the dNTP concentration, Mg concentration of 2 +, such as reaction temperature, reaction time should be adequate.
  • the conditions as in the case of single PCR when designing a primer are more stringent.
  • the size of the gene products must be distinguished according to the size constraints. In setting the reaction conditions, since common reaction conditions for all primers to be PCR must be set at one time, a very difficult condition setting process is required compared to a single PCR.
  • Such primers may incorporate additional features that do not change the basic properties. That is, the nucleic acid sequence can be modified using many means known in the art. Examples of such modifications include methylation, capping, substitution of one or more homologs of nucleotides and uncharged linkages, such as phosphonates, phosphoresteres, phosphoramidates or carbamates, or phosphorothioates or phosphorodithioates. Modification of the nucleotides to charged linkers, etc. is possible.
  • Nucleic acids may also include one or more of nucleases, toxins, antibodies, signal peptides, proteins such as poly L-lysine, insertion agents such as acridine or psoralen, chelating agents such as metals, radioactive metals, iron oxidizing metals, and alkylating agents. It may have additional covalently linked residues.
  • the primer sequence of the present invention can be modified using a label that can provide a detectable signal directly or indirectly.
  • the primer can include a label that can be detected using spectroscopy, photochemistry, biochemistry, immunochemistry or chemical means.
  • Useful labels include 32 P, fluorescent dyes, electron dense reagents, enzymes (generally used in ELISA), biotin or hapten and proteins for which antiserum or monoclonal antibodies are available.
  • the primers of the present invention are suitable for cloning and restriction enzyme digestion of the appropriate sequence and phosphoester ester method such as Narang (1979, Meth, Enzymol. 68: 90-99), diethylphosphoramidie such as Beaucage, etc. And any other well known methods, including direct chemical synthesis, such as the Tetrahedron Lett. 22: 1859-1862, and the solids support method of US Pat. No. 44,580,66.
  • Mycobacterium tuberculosis refers to pathogenic bacteria that cause tuberculosis
  • non-TB tuberculosis is a bacterium that does not cause tuberculosis
  • non-tuberculous mycobacteria NTM means do.
  • Mycobacterium tuberculosis in the present invention is M. tuberculosis Beijing family (MTB Beijing) or M. tuberculosis non-Beijing family (MTB non-Beijing), in the present invention non-TB bacteria M avium subsp. hominissuis (MAH), M. intracellulare (MI), M. abscessus subsp. abscessus (MAB), M. abcessus subsp. massiliense It may be at least one selected from the group consisting of (MAS).
  • the present invention (a) rv0577 comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 3 and the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 4 Detection primer sets; (b) a mtbk _20680 primer set for detecting a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 7 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 8; (c) a primer set for detecting 16S rRNA comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2; And (d) a primer set for detecting Region of Difference 9 (RD9) comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 5 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 6; A primer set for detecting IS 1311 comprising a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 9 and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO:
  • the composition for the simultaneous detection of Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis bacterium may further include a reaction amplification mixture, wherein the reaction amplification mixture is free of reagents, heat stable DNA polymerases, deoxynucleotides, and nucleases necessary for carrying out the amplification reaction. It refers to a solution containing sterile water and a divalent metal cation, and may preferably include a reaction buffer, deoxynucleotide, DNA polymerase.
  • the present invention provides a kit for the simultaneous detection and determination of tuberculosis and non-TB tuberculosis, including the composition for tuberculosis and non-TB tuberculosis.
  • the kit of the present invention in addition to the composition for the simultaneous detection of nucleus and non-tuberculosis bacteria, reagents, thermal stability DNA polymerase, deoxynucleotides, nuclease-free sterile water and divalent metal cations necessary for carrying out the amplification reaction, and the like And it may preferably further comprise a reaction buffer, deoxynucleotide, DNA polymerase.
  • the present invention comprises the steps of (a) performing PCR by adding a primer set for multiplex PCR for simultaneous detection and discrimination of Mycobacterium tuberculosis and non-tuberculosis bacteria; And (b) detecting tuberculosis bacteria and non-tuberculosis bacteria in the PCR product.
  • the method provides simultaneous detection and discrimination of tuberculosis bacteria and non-tuberculosis bacteria.
  • Simultaneous detection and determination of tuberculosis and non-tuberculosis bacteria of the present invention may further comprise the step of (c) identifying the types of tuberculosis bacteria and non-tuberculosis bacteria of step (b) in the PCR product.
  • the sample may be DNA isolated from Mycobacterium tuberculosis or non-tuberculosis, but is not limited thereto.
  • the reaction can be carried out at a sample concentration, dNTP concentration and temperature suitable for the person skilled in the art. Although not limited thereto, it is preferable to use 1 ⁇ l of cDNA and PCR buffer solution in 25 ⁇ l of the PCR reaction solution.
  • the multiplex PCR is performed to amplify the genes present in the sample, and then electrophores them on the acrylamide gel or agarose gel and check the bands.
  • tuberculosis bacteria and non-tuberculosis bacteria simultaneous detection method of the present invention has the advantage of high sensitivity and specificity because it can amplify the gene from the sample to 1200 ng / ⁇ l to 1 ng / ⁇ l level.
  • a set of primers were prepared to have a difference of at least 50 bp in size.
  • the six bacteria used for the preparation of the primer set are as follows.
  • MI intracellulare
  • Table 1 shows the information of the primer set produced in the present invention.
  • the 16s rRNA gene can be detected in all mycobacteria and the size of the amplification product is 506 bp.
  • rv0577 (NCBI Reference Sequence No. NP_215091) is available for all MTBC ( Mycobecterium). detectable in the tuberculosis complex, and the size of the amplification product is 705 bp.
  • RD9 (Genbank accession No. Y18604) can be detected in all MTB (Mycobacterium tuberculosis), designed to amplify a portion spanning from the rv2072 rv2073 c c and the size of the amplification product is 369 bp.
  • mtbk _20680 (Genbank accession No. AIB48613) can be specifically detected in M. tuberculosis Beijing family in MTB, and the size of amplification products is 231 bp.
  • IS 1311 (Genbank accession No. U16276) is a Mycobacterium avium (MAC) Complex (Insertion Sequence (IS)) that is specifically repeated in the complex, can be detected in all MAC except MI, the size of the amplification product is 600 bp.
  • MAC Mycobacterium avium
  • IS Insertion Sequence
  • DT1 ( ocu_18960, Genbank accession No. L04543) can be detected in MI ( M. intracellulare ) and the size of the amplification product is 106 bp.
  • mab _ 3265c (Genbank accession No. CAM63341.1) is a gene present in MAB, and the MAS mass_3210 (Genbank accession No. AGM29812.1) gene is inserted between mab _3265c and mab_3266c genes in MAS so that it is specific to different amplification sizes.
  • the size of each amplification product is 310 bp, 1145 bp.
  • the method of Murray and Thomson (1980) was modified to extract genomic DNA from the strain of Example 1. Specifically, the strain was inoculated in a Middlebrook 7H9 liquid medium containing 10 ml of 10% (v / v) OADC and incubated at 37 ° C. and 200 rpm for 2-4 weeks to sufficiently extract DNA. The cultured bacteria were inactivated by boiling at 80 ° C. for 30 minutes, centrifuged at 4000 rpm for 10 minutes, and the collected precipitates were placed in a microcentrifuge tube and suspended in 300 ⁇ l of 1 ⁇ TE buffer.
  • lysozyme 100 ⁇ l of lysozyme at a concentration of 100 ⁇ g / ml was added thereto and then left at 37 ° C. for 2 days.
  • 80 ⁇ l of hexadecyltrimethyl ammonium bromide (CTAB) / NaCl was left at 65 ° C. for 10 minutes and 20 minutes, respectively.
  • CTAB hexadecyltrimethyl ammonium bromide
  • Mycobacterium tuberculosis HN878 (Beijing family), Mycobacterium tuberculosis H37Rv (non-Beijing family), Mycobacterium bovis BCG, Mycobacterium avium subsp. hominissuis , Mycobacterium intracellulare , Mycobacterium abscessus subsp. abscessus , Mycobacterium abscessus subsp. massiliense , Mycobacterium kansasii , Escherichia DNA was extracted from coli by the same method as in Example 2.
  • the reaction mixture was amplified with S1000 Thermal Cycler (BIORAD) machine at 95 ° C for 10 minutes, (96 ° C for 45 seconds, 60.5 ° C for 45 seconds, 72 ° C for 40 seconds), and at 72 ° C for 10 minutes.
  • PCR amplification products were electrophoresed on 6% (v / v) acrylamide DNA gel for 1 hour and the results are shown in FIG. 1.
  • composition comprising the primer set of the present invention shows a different band pattern according to the type of strain, it was confirmed that it can be analyzed for the major lung disease antioxidants including the MTB Beijing family.
  • PCR was performed on 69 DNAs of mycobacteria described in Table 2 below.
  • gene amplification products specific to the target lung disease acid bacteria were identified, and only 16s rRNA (506 bp) was identified for strains other than the lung disease acid bacteria.
  • amplification products are not formed in microorganisms other than the antibacterial bacteria, and when performing multiplex PCR using the primer set of the present invention, it was confirmed that the main lung disease antibacterial bacteria can be distinguished and detected quickly.
  • DNA extracted by CTAB extraction method from Mycobacterium tuberculosis HN878 strain was used, and the DNA concentration was measured by absorbance measurement (260 nm), and then the DNA was adjusted to 1200 ng / ⁇ l per ⁇ l. The concentration was adjusted.
  • PCR was carried out by diluting the adjusted DNA in 9 steps from 1200 g / ⁇ l to 0.1 ng / ⁇ l through dilution. 4 ⁇ L of each diluted DNA is shown in FIG. 4.
  • PCR was performed on the diluted DNA, and it was confirmed that gene amplification products were generated up to 1 ng / ⁇ l.

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

본 발명은 베이징 패밀리(Beijing family)의 결핵균에 특이적으로 존재하는 유전자와 결핵균과 비결핵균을 동시에 진단할 수 있는 유전자를 특이적으로 증폭할 수 있는 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트, 상기 프라이머 세트를 포함하는 결핵균 및 비결핵균의 동시 검출 및 판별을 위한 조성물 및 키트, 상기 프라이머 세트를 포함하는 결핵균 및 비결핵균의 동시 검출 및 판별방법에 관한 것이다. 본 발명의 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별용 프라이머 세트를 사용하면 전세계적으로 유행하고 있는 결핵균인 베이징 패밀리를 효과적으로 감별할 수 있고 동시에 임상적으로 의미가 큰 비결핵균(NTM)과 결핵균(MTBC)의 감별 및 종류를 동정할 수 있는 효과가 있다.

Description

결핵균 및 비결핵균 동시 진단용 멀티플렉스 PCR 프라이머 세트, 프라이머 세트를 포함하는 조성물 및 키트
본 발명은 베이징 패밀리(Beijing family)의 결핵균에 특이적으로 존재하는 유전자와 결핵균과 비결핵균을 동시에 진단할 수 있는 유전자를 특이적으로 증폭할 수 있는 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트, 상기 프라이머 세트를 포함하는 결핵균 및 비결핵균의 동시 검출 및 판별을 위한 조성물 및 키트, 상기 프라이머 세트를 포함하는 결핵균 및 비결핵균의 동시 검출 및 판별방법에 관한 것이다.
전세계 인구의 3분의 1 이상이 결핵균(MTB; Mycobacterium tuberculosis)에 감염 되어 있으며, 결핵균은 결핵(TB; Tuberculosis)을 일으키는 병원성 세균을 지칭한다. 세계보건기구(WHO; World Health Organization)에서는 결핵을 인류의 건강을 위협하는 3대 감염질병 중 하나로 인식하고 있으며, 한 해에만 9백 6십만 명의 새로운 결핵환자가 발생하고 이 중 약 150만 명의 사람들이 사망하였다고 보고된 바 있다. 최근에는 다제내성 (MDR; Multi-drug-resistant) 결핵균 및 광범위 내성(XDR; Extensively-drug-resistant) 결핵균의 증가로 인하여 결핵의 치료가 어려워지고 있고, 모든 약제에 대한 내성을 가지는 결핵균(TDR; Totally-drug-resistant)도 등장하여 상황은 더욱 심각해지고 있다. 이처럼 약제 내성 결핵은 치료비용의 증가를 불러올 뿐만 아니라 치료 효율도 낮아져 난치성 결핵으로 발전하는 위협을 주고 있다.
베이징 유전형을 갖는 베이징 패밀리 결핵균은 중국을 중심으로 아시아와 구소련 지역에서 우세한 결핵균으로, 특징적인 유전자형을 공유하고 있다. 동아시아에서 약 50%, 한국에서 70%, 미국, 캐나다 등의 결핵 발병률이 낮은 나라에서 약 20%, 그리고 전세계적으로는 13%로 널리 분포하고 있음이 확인되었다. 베이징 패밀리는 높은 재발률, 치료실패 그리고 유리한 내성 획득 능력으로 다제내성 결핵 및 광범위 내성 결핵과 밀접한 연관이 되어있다는 보고들이 있다.
또한 베이징 패밀리는 주로 고병원성으로, 낮은 수준의 사이토카인을 유도하여 Th1 유형의 면역반응을 회피하고, 동물실험상에서 베이징 패밀리에 감염시 다른 균주들보다 빠른 치사율을 보인다고 보고되고 있다. 또한 BCG (Bacillus Calmette-Guein) 백신의 효과가 미미한 균주 중 하나로, 성인 환자뿐만 아니라 BCG 예방접종이 이루어진 소아 및 청소년 환자들에서도 빈번히 동정 되는 것으로 알려져 있다. 따라서 결핵균 중에서도 베이징 패밀리가 동정되는 비율이 높아지면, 결핵의 위험성이 높아질 수 있다는 기준이 되기도 한다.
뿐만아니라 1980년 이후로, 비결핵 항산균(NTM; Non-tuberculous mycobacteria)에 의한 감염 빈도가 점차 증가하고 있으며, NTM 폐질환을 일으키는 원인균의 분포는 국가에 따라 다양하다. 한국에서 NTM에 의한 폐질환의 가장 흔한 원인균은 Mycobacterium avium complex(MAC)로 50-60%를 차지하며, 신속 성장균인 M. abscessus(MAB)가 20-30%를 차지하여 두 번째로 흔한 원인균으로 보고되고 있다. 미국과 일본에서도 가장 흔한 원인균은 MAC으로 60-80%를 차지하며, M. kansasii가 15%를, 그리고 MAB가 5% 미만을 차지하고 있다. 대부분의 NTM은 자연수와 토양 등 자연환경에 널리 분포하고 병원성이 낮아 사람간의 감염 위험이 적지만, 제대로 된 치료약이 없을 뿐더러 각 NTM마다 항생제 내성이 다르기 때문에 NTM이 검출되었다는 사실 자체보다는 정확한 균의 동정이 중요하다. 즉, 마이코박테리아에 의한 폐질환의 효율적인 치료를 위해 최소한의 특정 균종들을 정확하게 진단할 수 있는 기법이 필요한 실정이다.
마이코박테리아를 진단하는 방법으로 가장 많이 사용되는 호흡기 검체를 이용한 도말 배양 검사는 주로 과거에 결핵을 동정하는데 이용되었으나, 최근 비결핵 항산균에 의한 폐질환의 증가로 인하여, 결핵을 포함한 항산균에 의한 폐질환을 유발하는 주요 비결핵 항산균을 정확하고 동시에 고병원성 결핵균인 베이징 패밀리를 감별할 수 있는 진단기법의 개발이 절실히 요구된다. 최근 많은 진단기법이 개발되었으나 이러한 임상적 수요를 정확히 반영하는 분자생물학적 진단기법의 개발은 여전히 부족하다.
이에 본 발명자들은 본 연구에서는 결핵균 및 비결핵균에 특이적으로 존재하는 유전자 마커를 포함하고 다제내성에 밀접한 연관이 있는 베이징 패밀리 결핵균에 특이적으로 존재하는 유전자 마커를 포함하는 멀티플렉스 PCR을 통하여 결핵균 및 비결핵균의 동시검출 및 종류를 진단할 수 있는 것을 확인하고 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 목적은 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트를 제공하는 것이다.
본 발명의 또다른 목적은 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트를 포함하는 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 조성물, 및 상기 조성물을 포함하는 키트를 제공하는 것이다.
본 발명의 또다른 목적은 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별방법을 제공하는 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, (a) 서열번호 3으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 4로 표시되는 염기서열을 포함하는 rv0577 검출용 프라이머 세트; (b) 서열번호 7로 표시되는 염기서열 및 서열번호 8로 표시되는 염기서열을 포함하는 mtbk_20680 검출용 프라이머 세트; (c) 서열번호 1로 표시되는 염기서열 및 서열번호 2로 표시되는 염기서열을 포함하는 16S rRNA 검출용 프라이머 세트; 및 (d) 서열번호 5로 표시되는 염기 서열 및 서열번호 6으로 표시되는 염기서열을 포함하는 RD9(Region of Difference 9) 검출용 프라이머 세트; 서열번호 9로 표시되는 염기서열 및 서열번호 10으로 표시되는 염기서열을 포함하는 IS1311 검출용 프라이머 세트; 서열번호 11로 표시되는 염기서열 및 서열번호 12로 표시되는 염기서열을 포함하는 DT1(ocu_18960) 검출용 프라이머 세트; 및 서열번호 13으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 14로 표시되는 염기서열을 포함하는 mab _3265c 검출용 프라이머 세트;로 구성되는 군으로부터 선택된 2종 이상의 프라이머 세트;를 포함하는, 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트를 제공한다.
또한, 본 발명은 (a) 서열번호 3으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 4로 표시되는 염기서열을 포함하는 rv0577 검출용 프라이머 세트; (b) 서열번호 7로 표시되는 염기서열 및 서열번호 8로 표시되는 염기서열을 포함하는 mtbk _20680 검출용 프라이머 세트; (c) 서열번호 1로 표시되는 염기서열 및 서열번호 2로 표시되는 염기서열을 포함하는 16S rRNA 검출용 프라이머 세트; 및 (d) 서열번호 5로 표시되는 염기 서열 및 서열번호 6으로 표시되는 염기서열을 포함하는 RD9(Region of Difference 9) 검출용 프라이머 세트; 서열번호 9로 표시되는 염기서열 및 서열번호 10으로 표시되는 염기서열을 포함하는 IS1311 검출용 프라이머 세트; 서열번호 11로 표시되는 염기서열 및 서열번호 12로 표시되는 염기서열을 포함하는 DT1(ocu_18960) 검출용 프라이머 세트; 및 서열번호 13으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 14로 표시되는 염기서열을 포함하는 mab _3265c 검출용 프라이머 세트;로 구성되는 군으로부터 선택된 2종 이상의 프라이머 세트;를 포함하는, 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 조성물을 포함하는 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별용 키트를 제공한다.
또한, 본 발명은 (a) 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트를 첨가하여 PCR을 수행하는 단계; 및 (b) PCR 산물에서 결핵균 및 비결핵균을 검출하는 단계;를 포함하는, 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별방법을 제공한다.
본 발명의 결핵균 및 비결핵균 동시검출용 프라이머 세트를 사용하면 전세계적으로 유행하고 있는 결핵균인 베이징 패밀리를 효과적으로 감별할 수 있고 동시에 임상적으로 의미가 큰 비결핵균(NTM)과 결핵균(MTBC)의 감별 및 종류를 동정할 수 있는 효과가 있다.
도 1은 MTB(M. tuberculosis Beijing과 M. tuberculosis non-Beijing) 그리고 NTM(MAH; M. avium subsp. hominissius, MI; M. intracellulare, MAB; M. abscessus subsp. abscessus 그리고 MAS; M. abscessus subsp. massiliense)과 다른 마이코박테리아를 대상으로 본 발명의 프라이머 세트를 이용하여 멀티플렉스 PCR을 실시한 결과를 나타낸 도이다.
도 2는 MTB(M. tuberculosis Beijing과 M. tuberculosis non-Beijing) 임상균주에 대해 멀티플렉스 PCR을 수행한 결과를 나타낸 도이다.
도 3은 MTBC와 NTM 균주에 대해 멀티플렉스 PCR을 수행한 결과를 나타낸 도이다.
도 4는 주형 DNA의 농도에 따른 멀티플렉스 PCR의 민감도를 확인한 결과를 나타낸 도이다.
일 양태로서, 본 발명은 (a) 서열번호 3으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 4로 표시되는 염기서열을 포함하는 rv0577 검출용 프라이머 세트; (b) 서열번호 7로 표시되는 염기서열 및 서열번호 8로 표시되는 염기서열을 포함하는 mtbk _20680 검출용 프라이머 세트; (c) 서열번호 1로 표시되는 염기서열 및 서열번호 2로 표시되는 염기서열을 포함하는 16S rRNA 검출용 프라이머 세트; 및 (d) 서열번호 5로 표시되는 염기 서열 및 서열번호 6으로 표시되는 염기서열을 포함하는 RD9(Region of Difference 9) 검출용 프라이머 세트; 서열번호 9로 표시되는 염기서열 및 서열번호 10으로 표시되는 염기서열을 포함하는 IS1311 검출용 프라이머 세트; 서열번호 11로 표시되는 염기서열 및 서열번호 12로 표시되는 염기서열을 포함하는 DT1(ocu_18960) 검출용 프라이머 세트; 및 서열번호 13으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 14로 표시되는 염기서열을 포함하는 mab _3265c 검출용 프라이머 세트;로 구성되는 군으로부터 선택된 2종 이상의 프라이머 세트;를 포함하는, 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트를 제공한다.
본 발명에서 RD9(Region of Difference 9)는 PCR 증폭 산물이 rv2072c에서 rv2073c에 걸쳐져 있는 부분을 의미한다.
본 발명에서 용어 "검출"은 본 발명의 프라이머 세트를 이용한 PCR을 통해서 결핵균 및 비결핵균을 감별하고 동시에 결핵균 및 비결핵균의 종류를 동정하는 것, 베이징 패밀리 및 비-베이징 패밀리를 감별하는 것을 의미한다.
본 발명에서 용어 "프라이머"는 짧은 자유 3 말단 수산화기(free 3' hydroxyl group)를 가지는 핵산 서열로 상보적인 핵산의 주형(template)과 염기쌍(base pair)을 형성할 수 있고 핵산 주형의 가닥 복사를 위한 시작 지점으로 기능하는 짧은 핵산 서열을 의미한다. 프라이머는 적절한 완충용액 및 온도에서 중합반응(즉, DNA 중합효소 또는 역전사효소)을 위한 시약 및 상이한 4가지 뉴클레오사이드 트리포스페이트의 존재 하에서 DNA 합성을 개시할 수 있다.
본 발명에서 용어 "멀티플렉스 PCR(multiplex PCR)"은 복수의 프라이머 쌍을 동시에 사용하여, 복수의 표적 유전자를 같은 반응액 중에서 증폭하는 방법을 지칭한다.
본 발명의 프라이머 세트를 사용하면 기존 방식의 PCR과 달리 한 번의 PCR 반응을 통해 16S rRNA, rv0577, RD9, mtbk _20680, IS1311, DT1(ocu_18960), mab_3265c를 동시에 증폭할 수 있으므로 전세계적으로 유행하고 있는 결핵균인 베이징 패밀리를 효과적으로 감별할 수 있고 동시에 임상적으로 의미가 큰 비결핵균(NTM)과 결핵균(MTBC)의 감별 및 종류를 동정할 수 있는 효과가 있다.
상기 프라이머 설계시, 프라이머의 A, G, C, T 함량비, 프라이머 결합체(dimer) 형성 방지, 같은 염기서열의 3회 이상 반복금지 등 여러 가지 제약이 따르며, 그 외에 단독 PCR 반응조건에 있어서 주형(template) DNA의 양, 프라이머의 농도, dNTP의 농도, Mg2 +의 농도, 반응온도, 반응시간 등의 조건이 적정해야 한다.
또한, 본 발명에서와 같이 2이상의 프라이머 쌍을 혼합하여 동시에 PCR을 수행함으로써 대상 시료 내 2이상의 유전자를 1회에 확인하는 멀티플렉스 PCR 반응에서는, 프라이머 설계시 단독 PCR의 경우와 같은 조건이 더욱 엄격하게 요구되며, 또한 반응완료 후 겔 상에서 증폭되는 유전자 산물의 구별을 위해서는 유전자 산물의 크기가 각각 구별이 되어야 하는 크기의 제약까지 따른다. 반응조건의 설정에 있어서도 한번에 PCR 하고자 하는 프라이머 모두에 대한 공통의 반응조건이 설정되어야 하므로, 단독 PCR에 비해서 매우 어려운 조건 설정 과정이 요구된다.
상기의 프라이머는 기본 성질을 변화시키지 않은 추가의 특징을 혼입할 수 있다. 즉 핵산 서열이 당해 분야에 공지된 많은 수단을 이용하여 변형될 수 있다. 이러한 변형의 예로는 메틸화, 캡화, 뉴클레오타이드의 하나 이상의 동족체로의 치환 및 포스포네이트, 포스포트리에스테르, 포스포로아미데이트 또는 카바메이트 등의 하전되지 않은 연결체나 포스포로티오에이트 또는 포스포로디티오에이트 등의 하전된 연결체로의 뉴클레오타이드의 변형이 가능하다. 또한 핵산은 뉴클레아제, 독소, 항체, 시그날 펩타이드, 폴리 L 리신 등의 단백질, 아크리딘 또는 프소랄렌 등의 삽입제, 금속, 방사성 금속, 철 산화성 금속 등의 킬레이트화제 및 알킬화제 등의 하나 이상의 부가적인 공유 결합된 잔기를 가질 수 있다.
또한 본 발명의 프라이머 서열은 검출 가능한 시그날을 직접적 또는 간접적으로 제공할 수 있는 표지를 이용하여 변형시킬 수 있다. 상기 프라이머는 분광학, 광화학, 생화학, 면역화학 또는 화학적 수단을 이용하여 검출 될 수 있는 표지를 포함할 수 있다. 유용한 표지는 32P, 형광 염료, 전자 밀집 시약, 효소(일반적으로 ELISA 에 이용되는 것), 바이오틴 또는 합텐 및 항혈청 또는 단일클론성 항체가 이용가능한 단백질을 포함한다.
본 발명의 프라이머들은 적절한 서열의 클로닝 및 제한효소 분해 및 나랭(Narang)등의 포스포트리에스테르 방법(1979, Meth, Enzymol. 68:90-99), 보카지(Beaucage)등의 디에틸포스포라미다이트 방법(1981, Tetrahedron Lett. 22: 1859-1862), 및 미국 특허 제 4458066호의 고형물 지지 방법과 같은 직접적인 화학적 합성법을 포함하는 임의의 기타 널리 공지된 방법을 사용하여 화학적으로 합성할 수 있다.
본 발명에 있어서, "결핵균(Mycobacterium tuberculosis; MTB)"은 결핵을 일으키는 병원성 세균을 의미하고, "비결핵균"은 결핵을 일으키지 않는 균으로, 비결핵 항산균(Non-tuberculous mycobacteria; NTM)를 의미한다.
본 발명에서 결핵균은 M. tuberculosis Beijing family(MTB Beijing) 또는 M. tuberculosis non-Beijing family(MTB non-Beijing)일 수 있고, 본 발명에서 비결핵균은 M avium subsp. hominissuis(MAH), M. intracellulare(MI), M. abscessus subsp. abscessus(MAB), M. abcessus subsp. massiliense(MAS)로 구성되는 군에서 선택된 1종 이상일 수 있다.
또한, 본 발명은 (a) 서열번호 3으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 4로 표시되는 염기서열을 포함하는 rv0577 검출용 프라이머 세트; (b) 서열번호 7로 표시되는 염기서열 및 서열번호 8로 표시되는 염기서열을 포함하는 mtbk _20680 검출용 프라이머 세트; (c) 서열번호 1로 표시되는 염기서열 및 서열번호 2로 표시되는 염기서열을 포함하는 16S rRNA 검출용 프라이머 세트; 및 (d) 서열번호 5로 표시되는 염기 서열 및 서열번호 6으로 표시되는 염기서열을 포함하는 RD9(Region of Difference 9) 검출용 프라이머 세트; 서열번호 9로 표시되는 염기서열 및 서열번호 10으로 표시되는 염기서열을 포함하는 IS1311 검출용 프라이머 세트; 서열번호 11로 표시되는 염기서열 및 서열번호 12로 표시되는 염기서열을 포함하는 DT1(ocu_18960) 검출용 프라이머 세트; 및 서열번호 13으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 14로 표시되는 염기서열을 포함하는 mab _3265c 검출용 프라이머 세트;로 구성되는 군으로부터 선택된 2종 이상의 프라이머 세트;를 포함하는, 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 조성물을 제공한다.
본 발명의 결핵균 및 비결핵균 동시검출을 위한 조성물은 반응 증폭 혼합물을 더 포함할 수 있으며, 반응 증폭 혼합물은 증폭 반응을 수행하기에 필요한 시약, 열 안정성 DNA 중합효소, 데옥시뉴클레오티드, 뉴클레아제가 없는 멸균수 및 2가 금속 양이온을 함유하는 용액 등을 지칭하며, 바람직하게는 반응 완충액, 데옥시뉴클레오티드, DNA 중합효소를 포함할 수 있다.
또한, 본 발명은 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 조성물을 포함하는 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별용 키트를 제공한다.
본 발명의 키트는 핵균 및 비결핵균 동시검출을 위한 조성물 이외에도 증폭 반응을 수행하기에 필요한 시약, 열 안정성 DNA 중합효소, 데옥시뉴클레오티드, 뉴클레아제가 없는 멸균수 및 2가 금속 양이온을 함유하는 용액 등을 지칭하며, 바람직하게는 반응 완충액, 데옥시뉴클레오티드, DNA 중합효소를 더 포함할 수 있다.
또한, 본 발명은 (a) 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트를 첨가하여 PCR을 수행하는 단계; 및 (b) PCR 산물에서 결핵균 및 비결핵균을 검출하는 단계;를 포함하는, 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별방법을 제공한다.
본 발명의 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별방법은 (c) 상기 PCR 산물에서 상기 (b) 단계의 결핵균 및 비결핵균의 종류를 동정하는 단계;를 더 포함할 수 있다.
본 발명에서 시료는 결핵균 또는 비결핵균으로부터 분리한 DNA일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에 따른 결핵균 및 비결핵균 동시검출방법을 수행함에 있어, 당업자에게 자명한 시료 농도, dNTP 농도와 적합한 온도 등에서 반응을 수행할 수 있다. 이에 제한되는 것은 아니나, 바람직하게는 PCR 반응 용액 25 ㎕에 1 ㎕의 cDNA, PCR 완충 용액을 사용하는 것이 좋다.
또한 PCR을 수행함에 있어, 95℃에서 전변성(predenaturation)을 10분, 96℃에서 45초 동안 변성(denaturation), 60.5℃에서 45초 동안 어닐링(annealing) 그리고 72℃에서 40초 동안 서열을 확장시키는 방식으로 한 사이클을 구성하며 상기 사이클을 32번 반복하고 마지막으로 10분 동안 72℃에서 최종 신장(elongation)을 수행한다. 그러나 상기에서 어닐링 온도를 60.5℃로 유지하는 경우 나머지의 온도는 PCR 반응을 수행하기에 적합할 정도이면 당업자의 입장에서 적절한 정도로 조절할 수 있다.
상기 멀티플렉스 PCR을 수행하여 시료에 존재하는 유전자를 증폭한 후 이를 아크릴아미드 겔 또는 아가로오스 겔에 전기영동하고 밴드를 확인한다.
본 발명의 결핵균 및 비결핵균 동시검출방법을 사용하면 시료로부터 1200 g/μl에서 1 ng/μl 수준까지 유전자를 증폭할 수 있으므로 민감도 및 특이도가 높다는 장점이 있다.
본 명세서에서 달리 정의되지 않은 용어들은 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상적으로 사용되는 의미를 갖는 것이다.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다. 단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1: 프라이머의 설계
한국에서 주요 폐질환을 일으키는 항산균 6종에서 각 균마다 나타나는 특이적인 유전자 서열을 바탕으로 하여 증폭되는 산물의 크기가 최소 50 bp이상 차이를 갖도록 하는 프라이머 세트를 제작하였다. 프라이머 세트의 제작에 사용한 6종의 균은 다음과 같다.
1. M. tuberculosis Beijing family(MTB Beijing)
2. M. tuberculosis non-Beijing family(MTB non-Beijing)
3. M avium subsp. hominissuis(MAH)
4. M. intracellulare(MI)
5. M. abscessus subsp. abscessus(MAB)
6. M. abcessus subsp. massiliense(MAS)
본 발명에서 제작한 프라이머 세트의 정보를 표 1에 나타내었다.
Figure PCTKR2017007507-appb-T000001
16s rRNA 유전자는 모든 마이코박테리아에서 탐지할 수 있고, 증폭 산물의 크기는 506 bp이다.
rv0577(NCBI Reference Sequence No. NP_215091)은 모든 MTBC(Mycobecterium tuberculosis complex)에서 탐지할 수 있고, 증폭 산물의 크기는 705 bp이다.
RD9(Genbank accession No. Y18604)는 모든 MTB(Mycobacterium tuberculosis)에서 탐지할 수 있고, rv2072c에서 rv2073c에 걸친 부분을 증폭할 수 있으며 증폭 산물의 크기는 369 bp이다.
mtbk _20680(Genbank accession No. AIB48613)은 MTB 중 M. tuberculosis 베이징 패밀리에서 특이적으로 탐지할 수 있고, 증폭 산물의 크기는 231 bp이다.
IS1311(Genbank accession No. U16276)은 MAC(Mycobacterium avium complex)에서 특이적으로 반복되는 삽입 유전자(Insertion sequence, IS)로, MI를 제외한 모든 MAC에서 탐지할 수 있고, 증폭산물의 크기는 600 bp이다.
DT1(ocu_18960, Genbank accession No. L04543)은 MI(M. intracellulare)에서 탐지할 수 있고, 증폭산물의 크기는 106 bp이다.
mab _ 3265c(Genbank accession No. CAM63341.1)은 MAB에 존재하는 유전자로 MAS에는 mass_3210(Genbank accession No. AGM29812.1)유전자가 mab _3265cmab_3266c유전자 사이에 삽입되어 있어 각기 다른 증폭사이즈로 특이적으로 탐지할 수 있고, 각각의 증폭산물의 크기는 310 bp, 1145 bp이다.
실시예 2: PCR을 위한 DNA 시료의 제조
본 발명의 PCR에 사용할 DNA 시료를 수득하기 위하여 Murray와 Thomson(1980)의 방법을 변형하여 실시예 1의 균주로부터 지노믹 DNA(genomic DNA)를 추출하였다. 구체적으로, 균주를 10 ㎖의 10% (v/v) OADC가 함유된 Middlebrook 7H9 액체배지에 접종하여 37℃, 200 rpm으로 2-4주 동안 배양하여 DNA를 충분히 추출할 수 있을 정도로 하였다. 상기 배양한 균을 80℃에서 30분간 끓여서 불활성 시킨 후, 4000 rpm, 10분간 원심 분리하고, 모은 침전물을 마이크로센트리퓨지 튜브(microcentrifuge tube)에 넣고 300 ㎕의 1x TE 완충액에 현탁하였다. 여기에 100 ㎍/㎖ 농도인 100 ㎕의 리소자임을 첨가한 후 37℃에서 2일 동안 방치하였다. 이 혼합액에 20 ㎎/㎖ 농도인 30 ㎕의 프로테이나제 K(proteinase K)와 100 ㎕의 10% (w/v) SDS를 65℃ 에서 3시간 방치하였다. 이 혼합액에 100 ㎕의 5 M NaCl을 첨가한 후, 80 ㎕의 헥사데실트리메틸 암모늄 브로마이드(hexadecyltrimethyl ammonium bromide: CTAB)/ NaCl을 65℃에서 각각 10분, 20분간 방치하였다. 700 ㎕의 페놀: 클로로포름: 이소아밀알코올 (25:24:1, v/v/v)용액을 첨가하고, 13000 rpm으로 4℃에서 20분 동안 원심 분리하여 얻은 상층 액을 취하여 같은 과정을 1회 반복하였다. 이렇게 하여 얻은 용액에 대한 0.6 용량의 이소프로필을 첨가하여 섞은 후, -20℃에서 1시간 동안 안정화시켰다. 안정화 후, 13000 rpm으로 4℃에서 1분 동안 원심분리한 후, 침전물에 RNase를 첨가한 200 ㎕의 1x TE 완충액을 넣고 65℃에 1시간 방치한 후, 4℃에 보관하였다. 이를 PCR을 위한 주형 DNA로 사용하였다.
실시예 3: PCR 반응조건 확립
Mycobacterium tuberculosis HN878(베이징 패밀리), Mycobacterium tuberculosis H37Rv(비-베이징 패밀리), Mycobacterium bovis BCG, Mycobacterium avium subsp. hominissuis, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium abscessus subsp. abscessus, Mycobacterium abscessus subsp. massiliense, Mycobacterium kansasii , Escherichia coli에서 실시예 2와 같은 방법에 의하여 DNA를 추출하였다. 주형 DNA 1 ㎕, 2X EF-Taq PCR Smart mix2 (SolGent co., Ltd., Daejeon, South Korea) 25 ㎕, 10 pmole의 각 프라이머 세트 [mtbk _20680, DT1(ocu_18960) : 16s rRNA 유전자, RD9(rv2072c ~ rv2073c), IS1311, mab _3265c : rv0577 프라이머 세트의 비율이 0.6 : 1 : 4 (㎕)가 되도록 한다]를 혼합한 후 최종 부피가 50 ㎕ 되도록 멸균 증류수를 첨가하여 PCR 반응 혼합물을 제조하였다.
상기 반응 혼합물을 S1000 Thermal Cycler(BIORAD)기계로 95℃ 10분, (96℃ 45초, 60.5℃ 45초, 72℃ 40초) 32번, 72℃ 10분으로 증폭하였다. PCR 증폭 산물을 6% (v/v) 아크릴아마이드 DNA 겔에 1시간 전기영동 하고 그 결과를 도 1에 나타내었다.
도 1에 나타낸 바와 같이, MTB 베이징 패밀리 시료에서는 16s rRNA (506 bp), rv0577(705 bp), RD9(rv2072c ~ rv2073c, 369 bp), mtbk _20680 (231 bp) 밴드가 나타났고, MTB 비-베이징 패밀리 시료에서는 16s rRNA (506 bp), rv0577, RD9(rv2072c ~ rv2073c) 밴드가 나타났고, MAC 시료에서는 16s rRNA (506 bp), IS1311(600 bp) 밴드가 나타났고, MI 시료에서는 16s rRNA(506 bp), DT1(ocu_18960, 106 bp) 밴드가 나타났고, MAB는 16s rRNA(506 bp), mab _3265c(310 bp) 밴드가 나타났으며, MAS는 16s rRNA(506 bp), mab _3265c(1145 bp) 밴드가 나타남을 확인하였다. 음성대조군인 E.coli에서는 밴드가 나타나지 않음을 확인하였다.
따라서, 본 발명의 프라이머 세트를 포함하는 조성물은 균주의 종류에 따라 상이한 밴드 패턴을 나타내므로 MTB 베이징 패밀리를 포함한 주요 폐질환 항산균에 대하여 분석 가능함을 확인하였다.
실시예 4: 프라이머의 특이성 및 민감도 확인
4.1 프라이머의 특이성 확인
본 발명의 프라이머 세트의 특이성을 확인하기 위해서 하기의 표 2에 기재된 마이코박테리아 69종의 DNA에 대한 PCR을 수행하였다.
Figure PCTKR2017007507-appb-T000002
표 2의 마이코박테리아에서 주형 DNA를 Murray와 Thomson (1980) 방법으로 추출하였고, 상기 실시예 3과 동일한 방법으로 PCR을 수행하였다. MTB (M. tuberculosis 베이징 패밀리 및 비-베이징 패밀리) 임상균주에 대해 멀티플렉스 PCR을 실시한 결과를 도 2에, MTBC와 NTM 균주에 대해 멀티플렉스 PCR을 실시한 결과를 도 3에 나타내었다.
도 2 및 도 3에 나타낸 바와 같이, 타겟으로 한 주요 폐질환 항산균에 특이적인 유전자 증폭 산물이 확인되었으며, 폐질환 항산균 이외의 균주에 대해서는 16s rRNA(506 bp)만 증폭산물이 확인되었다. 또한 항산균 이외의 미생물에서는 증폭 산물이 형성되지 않아, 본 발명의 프라이머 세트를 사용하여 멀티플렉스 PCR을 수행할 경우 주요 폐질환 항산균을 특이적으로 신속히 구분하여 검출할 수 있음을 확인하였다.
4.2 프라이머의 민감도 확인
본 발명의 프라이머 세트의 민감도를 확인하기 위해서, Mycobacterium tuberculosis HN878 균주로부터 CTAB추출법으로 추출한 DNA를 사용하였고, DNA 농도를 흡광도 측정법(260 nm)으로 측정한 다음, 1 ㎕ 당 1200 ng/㎕이 되도록 DNA 농도를 조정하였다. 조정된 DNA를 희석을 통해서 1200 g/㎕부터 0.1 ng/㎕까지 총 9단계로 희석하여 PCR을 실시하였다. 각각 희석된 DNA를 1 ㎕씩 PCR을 수행한 결과를 도 4에 나타내었다.
도 4에 나타낸 바와 같이 희석된 DNA에 대한 PCR을 수행한 결과, 1 ng/㎕ 수준까지 유전자 증폭 산물이 생성됨을 확인하였다.
따라서, 본 발명의 프라이머 세트를 사용하는 경우 민감도가 우수하므로 주요 폐질환 항산균을 검출할 수 있음을 확인하였다.
비록 본 발명이 상기에 언급된 바람직한 실시예로서 설명되었으나, 발명의 요지와 범위로부터 벗어남이 없이 다양한 수정이나 변형을 하는 것이 가능하다. 또한 첨부된 청구 범위는 본 발명의 요지에 속하는 이러한 수정이나 변형을 포함한다.

Claims (7)

  1. (a) 서열번호 3으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 4로 표시되는 염기서열을 포함하는 rv0577 검출용 프라이머 세트;
    (b) 서열번호 7로 표시되는 염기서열 및 서열번호 8로 표시되는 염기서열을 포함하는 mtbk_20680 검출용 프라이머 세트;
    (c) 서열번호 1로 표시되는 염기서열 및 서열번호 2로 표시되는 염기서열을 포함하는 16S rRNA 검출용 프라이머 세트; 및
    (d) 서열번호 5로 표시되는 염기 서열 및 서열번호 6으로 표시되는 염기서열을 포함하는 RD9(Region of Difference 9) 검출용 프라이머 세트; 서열번호 9로 표시되는 염기서열 및 서열번호 10으로 표시되는 염기서열을 포함하는 IS1311 검출용 프라이머 세트; 서열번호 11로 표시되는 염기서열 및 서열번호 12로 표시되는 염기서열을 포함하는 DT1(ocu_18960) 검출용 프라이머 세트; 및 서열번호 13으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 14로 표시되는 염기서열을 포함하는 mab _3265c 검출용 프라이머 세트;로 구성되는 군으로부터 선택된 2종 이상의 프라이머 세트;를 포함하는,
    결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트.
  2. 제1항에 있어서, 상기 결핵균은 M. tuberculosis 베이징 패밀리(MTB Beijing family) 또는 M. tuberculosis 비-베이징 패밀리(MTB non-Beijing family)인, 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트.
  3. 제1항에 있어서, 상기 비결핵균은 M avium subsp. hominissuis(MAH), M. intracellulare(MI), M. abscessus subsp. abscessus(MAB), M. abcessus subsp. massiliense(MAS)로 구성되는 군으로부터 선택된 1종 이상인, 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 멀티플렉스 PCR용 프라이머 세트.
  4. (a) 서열번호 3으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 4로 표시되는 염기서열을 포함하는 rv0577 검출용 프라이머 세트;
    (b) 서열번호 7로 표시되는 염기서열 및 서열번호 8로 표시되는 염기서열을 포함하는 mtbk _20680 검출용 프라이머 세트;
    (c) 서열번호 1로 표시되는 염기서열 및 서열번호 2로 표시되는 염기서열을 포함하는 16S rRNA 검출용 프라이머 세트; 및
    (d) 서열번호 5로 표시되는 염기 서열 및 서열번호 6으로 표시되는 염기서열을 포함하는 RD9(Region of Difference 9) 검출용 프라이머 세트; 서열번호 9로 표시되는 염기서열 및 서열번호 10으로 표시되는 염기서열을 포함하는 IS1311 검출용 프라이머 세트; 서열번호 11로 표시되는 염기서열 및 서열번호 12로 표시되는 염기서열을 포함하는 DT1(ocu_18960) 검출용 프라이머 세트; 및 서열번호 13으로 표시되는 염기서열 및 서열번호 14로 표시되는 염기서열을 포함하는 mab _3265c 검출용 프라이머 세트;로 구성되는 군으로부터 선택된 2종 이상의 프라이머 세트;를 포함하는,
    결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별을 위한 조성물.
  5. 제4항의 조성물을 포함하는 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별용 키트.
  6. (a) 제1항의 프라이머 세트를 첨가하여 PCR을 수행하는 단계; 및
    (b) PCR 산물에서 결핵균 및 비결핵균을 검출하는 단계;를 포함하는, 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별방법.
  7. 제6항에 있어서, (c) 상기 PCR 산물에서 상기 (b) 단계의 결핵균 및 비결핵균의 종류를 동정하는 단계;를 더 포함하는, 결핵균 및 비결핵균 동시검출 및 판별방법.
PCT/KR2017/007507 2016-07-13 2017-07-13 결핵균 및 비결핵균 동시 진단용 멀티플렉스 pcr 프라이머 세트, 프라이머 세트를 포함하는 조성물 및 키트 WO2018012896A1 (ko)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020160088592A KR101802417B1 (ko) 2016-07-13 2016-07-13 결핵균 및 비결핵균 동시 진단용 멀티플렉스 pcr 프라이머 세트, 이 프라이머 세트를 포함하는 조성물 및 키트
KR10-2016-0088592 2016-07-13

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2018012896A1 true WO2018012896A1 (ko) 2018-01-18

Family

ID=60812581

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/KR2017/007507 WO2018012896A1 (ko) 2016-07-13 2017-07-13 결핵균 및 비결핵균 동시 진단용 멀티플렉스 pcr 프라이머 세트, 프라이머 세트를 포함하는 조성물 및 키트

Country Status (2)

Country Link
KR (1) KR101802417B1 (ko)
WO (1) WO2018012896A1 (ko)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109975543A (zh) * 2019-03-01 2019-07-05 中国疾病预防控制中心传染病预防控制所 分枝杆菌Ku蛋白的应用
CN111947248A (zh) * 2020-07-27 2020-11-17 珠海格力电器股份有限公司 消毒机、消毒机的控制方法和存储介质
CN112538538A (zh) * 2020-11-26 2021-03-23 中国医学科学院北京协和医院 用于脓肿分枝杆菌检测的试剂盒及系统
CN113136446A (zh) * 2021-06-02 2021-07-20 上海康黎诊断技术有限公司 一种非结核分枝杆菌鉴定及耐药基因突变检测的方法、引物组以及试剂盒
WO2021195794A1 (es) * 2020-04-01 2021-10-07 Universidad Católica Del Maule Método y sistema de diagnóstico molecular para detección de distintas cepas de mycobacterium tuberculosis

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR102247643B1 (ko) * 2019-11-01 2021-05-03 바이오파크진단 주식회사 결핵균 및 비결핵항산균을 검출하기 위한 2단계 진단방법 및 키트

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2010030049A1 (en) * 2008-09-12 2010-03-18 Lg Life Sciences, Ltd. Composition for detection of m. tuberculosis complex or mycobacteria genus and simultaneous detection method for m. tuberculosis complex and mycobacteria genus with multiplex real time pcr using the same
JP2012214407A (ja) * 2011-03-31 2012-11-08 Univ Of Fukui 免疫刺激g9.1の抗結核ブースターワクチン創出への応用
US20130210005A1 (en) * 2010-05-27 2013-08-15 University Of Ulsan Foundation For Industry Cooperation Method for detecting mycobacterium tuberculosis and nontuberculous mycobacteria by using dual real-time polymerase chain reaction
WO2014148817A1 (ko) * 2013-03-21 2014-09-25 주식회사 현일바이오 결핵균 및 비결핵 마이코박테리아의 선택적 검출 방법, 그리고 이를 이용한 키트

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101443716B1 (ko) 2014-04-08 2014-09-26 주식회사 현일바이오 비결핵 마이코박테리아의 동시 검출 방법 및 이를 이용한 키트

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2010030049A1 (en) * 2008-09-12 2010-03-18 Lg Life Sciences, Ltd. Composition for detection of m. tuberculosis complex or mycobacteria genus and simultaneous detection method for m. tuberculosis complex and mycobacteria genus with multiplex real time pcr using the same
US20130210005A1 (en) * 2010-05-27 2013-08-15 University Of Ulsan Foundation For Industry Cooperation Method for detecting mycobacterium tuberculosis and nontuberculous mycobacteria by using dual real-time polymerase chain reaction
JP2012214407A (ja) * 2011-03-31 2012-11-08 Univ Of Fukui 免疫刺激g9.1の抗結核ブースターワクチン創出への応用
WO2014148817A1 (ko) * 2013-03-21 2014-09-25 주식회사 현일바이오 결핵균 및 비결핵 마이코박테리아의 선택적 검출 방법, 그리고 이를 이용한 키트

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
PARK: "Characterization of a novel antigen of Mycobacterium tuberculosis K strain and its use in immunodiagnosis of tuberculosis", JOURNAL OF MICROBIOLOGY, vol. 52, no. 10, 2014, pages 871 - 878, XP035400730, DOI: doi:10.1007/s12275-014-4235-5 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109975543A (zh) * 2019-03-01 2019-07-05 中国疾病预防控制中心传染病预防控制所 分枝杆菌Ku蛋白的应用
CN109975543B (zh) * 2019-03-01 2022-02-11 中国疾病预防控制中心传染病预防控制所 分枝杆菌Ku蛋白的应用
WO2021195794A1 (es) * 2020-04-01 2021-10-07 Universidad Católica Del Maule Método y sistema de diagnóstico molecular para detección de distintas cepas de mycobacterium tuberculosis
CN111947248A (zh) * 2020-07-27 2020-11-17 珠海格力电器股份有限公司 消毒机、消毒机的控制方法和存储介质
CN112538538A (zh) * 2020-11-26 2021-03-23 中国医学科学院北京协和医院 用于脓肿分枝杆菌检测的试剂盒及系统
CN113136446A (zh) * 2021-06-02 2021-07-20 上海康黎诊断技术有限公司 一种非结核分枝杆菌鉴定及耐药基因突变检测的方法、引物组以及试剂盒

Also Published As

Publication number Publication date
KR101802417B1 (ko) 2017-11-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2018012896A1 (ko) 결핵균 및 비결핵균 동시 진단용 멀티플렉스 pcr 프라이머 세트, 프라이머 세트를 포함하는 조성물 및 키트
McTaggart et al. Phylogeny and identification of Nocardia species on the basis of multilocus sequence analysis
Criado-Fornelio et al. Presence of Mycoplasma haemofelis, Mycoplasma haemominutum and piroplasmids in cats from southern Europe: a molecular study
Niemann et al. Differentiation among members of the Mycobacterium tuberculosis complex by molecular and biochemical features: evidence for two pyrazinamide-susceptible subtypes of M. bovis
US8628926B2 (en) Probe and primer for tubercle bacillus detection, and method of detecting human tubercle bacillus therewith
US10724106B2 (en) Method for determining the presence of diarrhoea causing pathogens
Koltas et al. A comparative analysis of different molecular targets using PCR for diagnosis of old world leishmaniasis
US9458513B2 (en) Primer and probe for detecting chlamydia trachomatis, and method for detecting chlamydia trachomatis using same
Oyama et al. Identification of and screening for human Helicobacter cinaedi infections and carriers via nested PCR
Fenollar et al. Molecular techniques in Whipple’s disease
KR100388548B1 (ko) 알이피 13 이 12 반복서열의 피시알 증폭을 이용한결핵균의 검출방법
JP2001103986A (ja) 鳥型結核菌複合種の増幅および検出
US7638309B2 (en) Method for detecting pathogenic mycobacteria in clinical specimens
KR100455032B1 (ko) 다중-이중 중합효소연쇄반응에 의한 결핵균과 비결핵균의동시 검출 방법
WO2019088702A1 (ko) 퀀타매트릭스 어세이 플랫폼 기반 헬리코박터 파이로리균 및 그 균의 항생제 내성에 관련된 유전자의 검출을 확인할 수 있는 진단법 및 그 응용
Kvitt et al. Photobacterium damselae ssp. piscicida: detection by direct amplification of 16S rRNA gene sequences and genotypic variation as determined by amplified fragment length polymorphism (AFLP)
WO2018026141A1 (ko) 퀀타매트릭스 어세이 플랫폼 기반 결핵 및 비결핵 항산균의 검출 및 동정과 결핵균의 리팜핀 내성여부를 동시 확인할 수 있는 진단법 및 그 키트
EA028354B1 (ru) ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ГЕНОВ СИСТЕМ ТОКСИН-АНТИТОКСИН II ТИПА ДЛЯ ГЕНОТИПИРОВАНИЯ ШТАММОВ Mycobacterium Tuberculosis
WO2002022872A1 (en) Multiplex pcr method and kit and oligonucleotides for detection and identification of mycobacteria using the multiplex pcr method
KR101425149B1 (ko) 원-튜브 네스티드 실시간 피시알을 이용한 개선된 결핵균 진단방법
EP1711620B1 (en) Methods for detection of mycobacterium tuberculosis
Kyriakopoulos et al. Characterization to species level of Mycobacterium avium complex strains from human immunodeficiency virus-positive and-negative patients
JP4477741B2 (ja) マイコプラズマ属およびウレアプラズマ属の細菌の検出方法並びにマイコプラズマ属およびウレアプラズマ属の菌種の同定方法
Suresh et al. Rapid detection of rifampicin-resistant Mycobacterium tuberculosis by in-house, reverse line blot assay
Reischl et al. Rapid detection and simultaneous differentiation of Bordetella pertussis and Bordetella parapertussis in clinical specimens by LightCycler PCR

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 17827966

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 17827966

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1