WO2017104778A1 - 抗ヒトｔｓｌｐ受容体抗体含有医薬組成物 - Google Patents

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恵 池田
亮儀 筑紫
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Definitions

  • the present invention relates to a stable pharmaceutical composition comprising an anti-human TSLP receptor antibody.
  • the present invention also relates to a stable high-concentration pharmaceutical composition comprising an anti-human TSLP receptor antibody.
  • Monoclonal antibodies that specifically bind to the human TSLP (thymic lymphopoietin) receptor and inhibit the action of human TSLP via the human TSLP receptor are those of various diseases in which human TSLP and human TSLP receptor are involved in pathogenesis. It is known to be useful for prevention and / or treatment (for example, prevention and / or treatment of asthma) (Patent Document 1).
  • Patent Document 1 discloses fully human T7-27. Expression of TARC (thymus and activation-regulated chemokin) mRNA induced by TSLP and MDC (macrophage-derived chemokine) Inhibition of protein production, suppression of allergic reaction in a simian squalis antigen sensitization model, and the like are disclosed.
  • TARC thymus and activation-regulated chemokin
  • MDC macrophage-derived chemokine
  • antibody drugs have been developed in recent years and are actually provided to the medical field. Since many antibody drugs are administered by intravenous administration or subcutaneous administration, they are provided in the form of parenteral pharmaceutical compositions such as liquids or lyophilized preparations in the medical field. Since parenteral pharmaceutical compositions are assumed to be administered directly into the body, stable pharmaceutical formulations are required.
  • the pharmaceutical formulation is a high concentration formulation considering the dose for subcutaneous administration. It is desirable.
  • insoluble aggregates and / or soluble aggregates are formed in a solution state by association of antibody molecules.
  • bioactivity of the antibody molecule may decrease due to deamidation of the asparagine residue.
  • Patent Document 2 As technologies relating to high-concentration antibodies and protein preparations, proteins or antibodies in an amount of 100 to 260 mg / mL, arginine hydrochloride in an amount of 50 to 200 mmol / L, histidine in an amount of 10 to 100 mmol / L, 0.01 to 0.1% Stable low turbidity having a kinematic viscosity of about 50 cs or less and an osmotic pressure in the range of 200 mOsm / kg to 450 mOsm / kg, in the range of pH 5.5 to 7.0
  • Patent Document 2 An invention relating to a liquid preparation of this type is known (Patent Document 2). However, Patent Document 2 does not describe or suggest an anti-human TSLP receptor antibody.
  • Patent Document 3 discloses an invention relating to a stable pharmaceutical composition containing an anti-TSLP antibody (Patent Document 3), but does not relate to an anti-TSLP receptor antibody.
  • An object of the present invention is to provide a stable pharmaceutical composition comprising fully human T7-27 which is an anti-human TSLP receptor antibody.
  • the object of the present invention includes fully human T7-27, which is an anti-human TSLP receptor antibody, and includes, for example, (i) chemical modifications such as deamidation and oxidation, which are increased by heat, Or a pharmaceutical composition that suppresses the formation of degradation products and multimers, (ii) a pharmaceutical composition that suppresses the formation of oxidant, promoted by the addition of arginine, and (iii) increases after physical stress.
  • An object of the present invention is to provide a pharmaceutical composition in which the production of fine particles is suppressed, or (iv) a pharmaceutical composition in which the production of oxidants that increase when the concentration of a surfactant is high is suppressed.
  • the present inventors can prepare a stable pharmaceutical composition by formulating fully human T7-27, which is an anti-human TSLP receptor antibody, in an arginine solution (Example 2 described later).
  • a stable pharmaceutical composition by adjusting the pH of the solution to an appropriate range or using various buffer components (Examples 1, 3 and 4 described later), and surfactants It was found that a more stable pharmaceutical composition can be provided by using the antibody, adjusting the antibody concentration, etc. (Example 5 described below), and the present invention has been completed.
  • an anti-human TSLP receptor antibody a pharmaceutically acceptable buffer, arginine or a pharmaceutically acceptable salt thereof, and a surfactant, and the anti-human TSLP receptor antibody
  • a stable pharmaceutical composition comprising the following (1) and / or (2): (1) an anti-human TSLP receptor antibody comprising a heavy chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 and a light chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3, (2) An anti-human TSLP receptor antibody comprising the amino acid sequence of an antibody generated by post-translational modification of the anti-human TSLP receptor antibody of (1);
  • the pharmaceutically acceptable buffer is selected from the group consisting of phosphoric acid, citric acid, acetic acid, succinic acid, histidine, ascorbic acid, glutamic acid, lactic acid, maleic acid, trometamol, and gluconic acid
  • the pharmaceutical composition of [1] which is a species or two or more species
  • An anti-amino acid sequence consisting of an amino acid sequence of an antibody produced by post-translational modification of an anti-human TSLP receptor antibody comprising a heavy chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 and a light chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3.
  • pharmaceutical composition comprising a human TSLP receptor antibody;
  • composition [19] An anti-human TSLP receptor antibody comprising a heavy chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 and a light chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3, and amino acid numbers 1 to 447 of SEQ ID NO: 1.
  • a pharmaceutical composition comprising an anti-human TSLP receptor antibody comprising a heavy chain consisting of an amino acid sequence and a light chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3; About.
  • a stable pharmaceutical composition comprising fully human T7-27, which is an anti-human TSLP receptor antibody, specifically, a chemically modified product such as a deamidated product or an oxidized product, or a degradation product. It is possible to provide a stable pharmaceutical composition containing an anti-human TSLP receptor antibody, which suppresses the production of glycine and multimers, or the production of microparticles.
  • the evaluation result (SEC multimer) of SEC and IEC obtained in Example 1 is shown.
  • the evaluation result (SEC decomposition product) of SEC and IEC obtained in Example 1 is shown.
  • the evaluation result (IEC main peak) of SEC and IEC obtained in Example 1 is shown.
  • the evaluation result of SEC obtained in Example 2 is shown.
  • the effect of arginine and pH in the phosphoric acid addition formulation group obtained in Example 3 is shown.
  • the effect of arginine and pH in the histidine addition prescription group obtained in Example 3 is shown.
  • the evaluation result of HIC obtained in Example 5 is shown.
  • the evaluation result of HIC obtained in Example 5 is shown.
  • the evaluation result of the viscosity obtained in Example 6 is shown.
  • stable means, for example, stable to heat, light, temperature, and / or humidity.
  • impurities contained in the pharmaceutical composition for example, chemically modified products such as deamidated products and oxidized products, or decomposed products and multimers are below a certain amount.
  • the area of the multimer peak and degradation product peak detected by SEC is measured by an automatic analysis method, and is divided by the sum of all peak areas including the main peak, and the main peak detected by IEC Area is measured by an automatic analysis method and divided by the sum of all peak areas including those other than the main peak.
  • the area of the hydrophilic peak detected by HIC is measured by the automatic integration method and includes the main peak. It is defined as a percentage (%) by dividing by the sum of all peak areas.
  • the main peak refers to the peak of the active body.
  • the chemical modification is a structure that is generated by chemical modification of a part of the antibody molecule sequence.
  • the amount of the chemical modification is defined as 0 to 70% in one embodiment and 0 to 50% in another embodiment.
  • the deamidated product is a chemically modified product in which part of the amino residue of the antibody molecule has undergone a deamidation reaction.
  • the method for measuring the deamidated compound is not particularly limited as long as it can be measured. Examples of the measurement method include an ion exchange chromatography method.
  • the amount of deamidated compound is defined as 0 to 70% in one embodiment, 0 to 50% in another embodiment, and 0 to 30% in another embodiment.
  • the oxidized form is a chemically modified form in which part of the antibody molecule sequence is oxidized.
  • the method for measuring the oxidant is not particularly limited as long as it can be measured. Examples of the measurement method include a hydrophobic interaction chromatography method, an ion exchange chromatography method, and the like.
  • the amount of the oxidant is defined as 0 to 70% in one embodiment and 0 to 50% as another embodiment.
  • the degradation product is a fragment produced by detachment of a part of the antibody molecule.
  • the method for measuring the decomposition product is not particularly limited as long as it can be measured. Examples of the measurement method include size exclusion chromatography, gel electrophoresis, capillary electrophoresis, dynamic light scattering, light shielding particle counting, and microflow imaging.
  • the amount of the decomposition product is defined as 0 to 10% in one embodiment and 0 to 5% in another embodiment.
  • the multimer is a complex formed by collecting a plurality of antibody molecules.
  • the method for measuring the multimer is not particularly limited as long as it can be measured. Examples of the measurement method include size exclusion chromatography, gel electrophoresis, capillary electrophoresis, dynamic light scattering, light shielding particle counting, and microflow imaging.
  • the amount of the multimer is defined as 0 to 10% in one embodiment and 0 to 5% in another embodiment.
  • “Stable” means at least 6 months at refrigeration temperature (2-8 ° C.), preferably 1 year, more preferably 2 years; or at least 3 months at room temperature (22-28 ° C.) Means that the amount of impurities has been suppressed for 6 months, more preferably 1 year; or at 40 ° C. for at least 1 week, preferably 2 weeks.
  • the amount of multimers and degradation products after storage for 2 years at 5 ° C. are 10% or less, preferably 5% or less, more preferably 3% or less, or the amount of multimers after storage at 25 ° C.
  • the amount of degradation products is 10% or less, preferably 5% or less, more preferably 3% or less, or the amount of multimers and degradation products after storage for 1 week at 40 ° C. is 5% or less, preferably 3% or less. It is.
  • IgG There are five classes of antibodies: IgG, IgM, IgA, IgD, and IgE.
  • the basic structure of an antibody molecule is common to each class, and is composed of a heavy chain having a molecular weight of 50,000 to 70,000 and a light chain having a molecular weight of 20,000 to 30,000.
  • the heavy chain is usually composed of a polypeptide chain containing about 440 amino acids, has a characteristic structure for each class, and corresponds to IgG, IgM, IgA, IgD, IgE, Ig ⁇ , Ig ⁇ , Ig ⁇ , Ig ⁇ . It is called.
  • IgG has IgG1, IgG2, IgG3, and IgG4 subclasses, and the corresponding heavy chains are called Ig ⁇ 1, Ig ⁇ 2, Ig ⁇ 3, and Ig ⁇ 4.
  • the light chain is usually composed of a polypeptide chain containing about 220 amino acids, and two types of L-type and K-type are known, and are called Ig ⁇ and Ig ⁇ , respectively.
  • the polypeptide structure of the basic structure of an antibody molecule is that two homologous heavy chains and two light chains are linked by a disulfide bond (SS bond) and a non-covalent bond, and have a molecular weight of 150,000 to 190,000. is there.
  • the two light chains can be paired with any heavy chain.
  • Each antibody molecule always consists of two identical light chains and two identical heavy chains.
  • a domain located at the amino terminus (N terminus) of both heavy and light chains is called a variable region because its amino acid sequence is not constant even if it is a specimen from the same class (subclass) of the same species.
  • Each domain is called a heavy chain variable region and a light chain variable region.
  • the amino acid sequence on the carboxy terminus (C terminus) side of the variable region is almost constant for each class or subclass and is called a constant region.
  • the pharmaceutical composition of the present invention contains the following anti-human TSLP receptor antibody (1) and / or (2) as an anti-human TSLP receptor antibody.
  • an anti-human TSLP receptor antibody comprising a heavy chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 and a light chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3, (2) consisting of an amino acid sequence of an antibody produced by post-translational modification of an anti-human TSLP receptor antibody comprising a heavy chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 and a light chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3.
  • Anti-human TSLP receptor antibody International Publication No. 2015/020193
  • the post-translational modification in the anti-human TSLP receptor antibody of (2) is pyroglutamylation at the heavy chain variable region N-terminal and / or lysine deletion at the heavy chain C-terminal.
  • the anti-human TSLP receptor antibody (2) includes an anti-human TSLP receptor antibody comprising a heavy chain consisting of the amino acid sequence of amino acid numbers 1 to 447 of SEQ ID NO: 1 and a light chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3. Examples include human TSLP receptor antibodies.
  • the pharmaceutical composition of the present invention comprises an anti-human TSLP receptor antibody comprising a heavy chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 and a light chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3. And an anti-human TSLP receptor antibody comprising a heavy chain consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 from amino acid Nos. 1 to 447 and a light chain consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3.
  • the anti-human TSLP receptor antibody used in the present invention is based on the heavy chain and light chain sequence information of the anti-human TSLP receptor antibody disclosed herein, using methods known in the art, It can be easily made by those skilled in the art.
  • Examples of the method for producing an anti-human TSLP receptor antibody used in the present invention include the method disclosed in International Publication No. 2015/020193.
  • the amount of the antibody in one unit pharmaceutical composition includes, for example, 0.001 mg to 1000 mg in one embodiment and 0.01 mg to 100 mg in another embodiment.
  • each said lower limit and each upper limit can be arbitrarily combined as desired.
  • the amount of antibody includes, for example, 0.001 mg to 1000 mg in one embodiment and 0.01 mg to 100 mg in another embodiment.
  • each said lower limit and each upper limit can be arbitrarily combined as desired.
  • the amount of solution when dissolved at the time of use is, for example, 0.1 mL to 100 mL in one embodiment and 1 mL to 10 mL in another embodiment.
  • each said lower limit and each upper limit can be arbitrarily combined as desired.
  • the antibody concentration may be, for example, 1 mg / mL to 300 mg / mL (about 0.007 mmol / L to 2 mmol / L) in one embodiment, and 1 mg / mL in another embodiment. ⁇ 200 mg / mL (about 0.007 mmol / L to 1 mmol / L), 1 mg / mL to 100 mg / mL (about 0.007 mmol / L to 0.7 mmol / L) as another embodiment, 10 mg / mL as another embodiment ⁇ 50 mg / mL (about 0.07 mmol / L to 0.3 mmol / L).
  • each said lower limit and each upper limit can be arbitrarily combined as desired.
  • the dose includes, for example, 0.001 mg to 1000 mg in one embodiment and 0.01 mg to 100 mg in another embodiment.
  • each said lower limit and each upper limit can be arbitrarily combined as desired.
  • Indications include prevention and / or treatment of various diseases in which human TSLP and human TSLP receptor are involved in pathogenesis, for example, prevention and / or treatment of asthma.
  • the “pharmaceutically acceptable buffer” used in the present invention is pharmaceutically acceptable and can be used as long as it can adjust the pH of the solution within a desired pH range in a solution state. There is no particular restriction.
  • the pH is, for example, 5 to 6 in one embodiment and 5.0 to 6.0 in another embodiment.
  • the buffer is phosphoric acid or a salt thereof, it is preferably 5.5 to 5.7, and when the buffer is histidine or a salt thereof, preferably 5.3 to 6.0.
  • the pH is the pH of the solution when the pharmaceutical composition is a liquid, and the pH of the solution when the pharmaceutical composition is redissolved in water when the pharmaceutical composition is a lyophilized formulation or a spray-dried formulation. To do.
  • buffer component examples include phosphoric acid (sodium or potassium), citric acid, acetic acid, succinic acid, histidine, ascorbic acid, glutamic acid, lactic acid, maleic acid, trometamol, gluconic acid, and pharmaceutical preparations thereof. Salt and the like that are acceptable.
  • Another embodiment includes phosphoric acid or a pharmaceutically acceptable salt thereof (sodium salt or potassium salt).
  • Other embodiments include sodium dihydrogen phosphate.
  • One or two or more buffering agent components can be used in appropriate amounts.
  • the concentration of the buffering agent is not particularly limited as long as the pH can be adjusted within a desired pH range. Specifically, for example, 5 to 100 mmol / L in one embodiment, 5 to 70 mmol / L in another embodiment, and 5 to 50 mmol / L in another embodiment.
  • the amount of the buffering agent is, for example, 0.1 to 100 mg per mL in one embodiment, 0.1 to 50 mg in another embodiment, or solid state by lyophilization or the like.
  • the amount after re-dissolution with 1 mL of water for injection is 5 to 100 mmol / L in one embodiment, 5 to 70 mmol / L in another embodiment, As 5 to 50 mmol / L.
  • arginine or a pharmaceutically acceptable salt thereof used in the present invention is not particularly limited as long as it is a pharmaceutically acceptable arginine or a salt thereof.
  • Arginine or a salt thereof has a function of stabilizing an anti-human TSLP receptor antibody.
  • L-arginine and L-arginine hydrochloride are included.
  • the amount of arginine or a pharmaceutically acceptable salt thereof is 150 mg / mL (about 700 mmol / L) or less (except for no addition) in one embodiment, and 100 mg / mL (about 500 mmol / L) in another embodiment. L) or less (excluding no addition), and in another embodiment, 45 mg / mL (about 210 mmol / L) or less (excluding no addition).
  • the anti-human TSLP receptor antibody is 30 mg / mL (about 0.2 mmol / L)
  • 30 mg / mL (about 140 mmol / L) is preferable from the viewpoint of osmotic pressure to ensure isotonicity.
  • the lower limit excluding no addition include 10 mg / mL (about 50 mmol / L) or more.
  • the lower limit and each upper limit can be arbitrarily combined as desired.
  • a solution state (solution) dissolved in water for injection for example, per 1 mL, 150 mg or less (excluding no addition) as one aspect, 100 mg or less (excluding no addition) as another aspect, etc.
  • the arginine concentration is 150 mg / mL (about 700 mmol / L) or less (excluding no addition), 100 mg / mL (about 500 mmol / L) or less (excluding no addition) as another embodiment, 45 mg / mL (about 210 mmol / L) as another embodiment The following (except for no addition).
  • the anti-human TSLP receptor antibody is 30 mg / mL, from the viewpoint of osmotic pressure, about 140 mmol / L is preferable for securing isotonicity.
  • the surfactant used in the present invention is not particularly limited as long as it is pharmaceutically acceptable and has a surfactant activity.
  • nonionic surfactants such as sorbitan fatty acid esters such as sorbitan monocaprylate, sorbitan monolaurate, and sorbitan monopalmitate; glycerol monocaprylate, glycerol monomyristate, and monostearic acid Glycerin fatty acid esters such as glycerol; polyglycerol fatty acid esters such as decaglyceryl monostearate, decaglyceryl distearate, and decaglyceryl monolinoleate; polyoxyethylene sorbitan monolaurate, polyoxyethylene sorbitan monooleate, polymonostearate poly Oxyethylene sorbitan, polyoxyethylene sorbitan monopalmitate, polyoxyethylene sorbitan trioleate, and polystearic acid poly Polyoxyethylene sorbitan fatty acid esters such as sorb
  • the surfactant is, in one embodiment, a polyoxyethylene sorbitan fatty acid ester or a polyoxyethylene polyoxypropylene alkyl ether, and in another embodiment, a polysorbate (for example, 20, 21, 40, 60, 65, 80, 81). Or 85), or a pluronic-type surfactant.
  • polysorbate for example, 20 or 80
  • poloxamer 188 pluronic F68
  • polysorbate 20 or 80 is included.
  • the amount of the surfactant is 0.001-1% (w / v) in one embodiment, 0.005-0.5% (w / v) in another embodiment, and 0.01-0. 2% (w / v).
  • each said lower limit and each upper limit can be arbitrarily combined as desired.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is provided as a solution by filling a solution in a container, and as a parenteral pharmaceutical composition such as a freeze-dried preparation or a spray-dried preparation by lyophilization or spray drying. be able to.
  • a liquid agent is preferable.
  • the pharmaceutical composition of the present invention includes a suspending agent, a solubilizing agent, an isotonic agent, a preservative, an adsorption inhibitor, an excipient, a soothing agent, a sulfur-containing reducing agent, an antioxidant and the like.
  • Pharmaceutical additives can be added as appropriate.
  • suspending agent examples include methyl cellulose, hydroxyethyl cellulose, gum arabic, tragacanth powder, sodium carboxymethyl cellulose, polyoxyethylene sorbitan monolaurate and the like.
  • solubilizer examples include polyoxyethylene hydrogenated castor oil, nicotinamide, polyoxyethylene sorbitan monolaurate, tuna gol, castor oil fatty acid ethyl ester, and the like.
  • isotonic agents examples include sodium chloride, potassium chloride, calcium chloride and the like.
  • preservative examples include methyl paraoxybenzoate, ethyl paraoxybenzoate, sorbic acid, phenol, cresol, chlorocresol, and benzyl alcohol.
  • adsorption inhibitor examples include human serum albumin, lecithin, dextran, ethylene oxide / propylene oxide copolymer, hydroxypropyl cellulose, methyl cellulose, polyoxyethylene hydrogenated castor oil, and polyethylene glycol.
  • excipients examples include sodium citrate hydrate and xylitol.
  • soothing agents include inositol and lidocaine.
  • sulfur-containing reducing agent examples include N-acetylcysteine, N-acetylhomocysteine, thioctic acid, thiodiglycol, thioethanolamine, thioglycerol, thiosorbitol, thioglycolic acid and salts thereof, sodium thiosulfate, glutathione, And those having a sulfhydryl group such as thioalkanoic acid having 1 to 7 carbon atoms.
  • antioxidants examples include erythorbic acid, dibutylhydroxytoluene, butylhydroxyanisole, ⁇ -tocopherol, tocopherol acetate, L-ascorbic acid and salts thereof, L-ascorbyl palmitate, L-ascorbic acid stearate, sodium bisulfite And chelating agents such as sodium sulfite, triamyl gallate, propyl gallate, or disodium ethylenediaminetetraacetate (EDTA), sodium pyrophosphate, sodium metaphosphate.
  • EDTA disodium ethylenediaminetetraacetate
  • the method for producing the pharmaceutical composition of the present invention comprises an anti-human TSLP receptor antibody and arginine or a pharmaceutically acceptable salt thereof, and further includes a composition known per se.
  • a method of producing a stable pharmaceutical composition comprising fully human T7-27, which is an anti-human TSLP receptor antibody, according to the production method.
  • the container filled with the pharmaceutical composition of the present invention can be selected according to the purpose of use. For example, it includes those having a predetermined volume shape such as vials, ampoules and syringes, and those having a large volume shape such as bottles. Some embodiments include syringes (including disposable syringes). By pre-filling the syringe with the solution and providing it as a prefilled syringe solution formulation, it is not necessary to perform a dissolving operation or the like at the medical site, and a rapid response is expected.
  • Examples of the material of the container include glass and plastic. Further, as the surface treatment in the container, silicone coating treatment, sulfur treatment, various low alkali treatments and the like may be performed. By performing these treatments, it is expected to provide a more stable pharmaceutical composition.
  • the anti-human TSLP receptor antibody used in Examples, Comparative Examples, and Test Examples is an antibody produced by the production method described in International Publication No. 2015/020193 or a method analogous thereto, and its specific production The procedure is shown in the reference example. In the table, “-” indicates that no addition was made.
  • GS vector into which both the heavy chain and light chain genes of antibody A were inserted was constructed. Furthermore, stable expression strains of antibodies were obtained by transfection into CHOK1SV cells (Lonza), and antibodies were expressed. The culture supernatant was purified by a protein A column (GE Healthcare Japan) and ion exchange chromatography to obtain a purified antibody of a fully human antibody. As a result of analyzing the amino acid modification of the purified antibody A, it was estimated that the lysine deletion at the heavy chain C-terminal occurred in the majority of the purified antibody.
  • Example 1 Stabilizing effect by selection of optimum pH >> About the liquid agent containing the antibody A, the influence which pH has on the stabilization of a formulation was evaluated.
  • An evaluation sample of A5 was prepared. The formulation of each evaluation sample is as shown in Table 1-1 below.
  • each sample was subjected to a thermal acceleration test (stored at 40 ° C. for 2 weeks and 25 ° C. for 4 weeks). And the quality of the antibody before and after thermal acceleration was evaluated by size exclusion chromatography (SEC) and ion exchange chromatography (IEC).
  • SEC size exclusion chromatography
  • IEC ion exchange chromatography
  • IEC ion exchange chromatography
  • a column for Propac WCX10 IEC (Dionex) was connected to the HPLC system, and a mobile phase having a composition of 20 mmol / L MES pH 6.0 on the mobile phase A line, 20 mmol / L MES, 500 mmol / L NaCl pH 6.0 on the mobile phase B line. Connected and flowed at a flow rate of 1 mL / min. The sample was diluted to 1 mg / mL with mobile phase A and 10 ⁇ L was injected.
  • the IEC gradient program in Table 1-2 was applied. Detection was performed at UV 280 nm.
  • the column temperature was set to 40 ° C and the sample temperature was set to 5 ° C.
  • the area of the multimer detected by SEC, the degradation product, and the main peak detected by IEC were measured by an automatic analysis method, and the amount (%) was obtained.
  • the amount the area of the multimer peak and degradation product peak detected by SEC is measured by an automatic analysis method, and is divided by the sum of all peak areas including the main peak, and the main peak detected by IEC Is measured by an automatic analysis method, and is divided by the sum of all peak areas including those other than the main peak, thereby being defined as a percentage (%).
  • the main peak refers to the peak of the active body.
  • FIGS. 1-1, 1-2, and 1-3 The evaluation results of SEC and IEC obtained in this example are shown in FIGS. 1-1, 1-2, and 1-3.
  • SEC multimers tended to increase especially at higher pH, except those stored at 40 ° C. for 2 weeks (FIG. 1-1).
  • the SEC degradation products showed an increasing tendency especially on the lower pH side (FIG. 1-2).
  • the IEC main peak the decrease was the smallest and the most stable in the vicinity of pH 5 to 6 (FIG. 1-3). The above results were comprehensively judged and it was confirmed that the optimum pH was around pH 5-6.
  • Example 2 Inhibition of increase in multimers by arginine >> About the liquid agent containing the antibody A, the increase inhibitory effect of the multimer by arginine was evaluated.
  • Table 2-1 The prepared samples in Table 2-1 were concentrated using a spin column, and B1-2 to B1-4, B2-2 to B2-4, B3-2 to B3-4, B4-2 to B4-4 Each sample was prepared.
  • the formulation of each sample is as shown in Table 2-2.
  • the area of the multimer peak detected by SEC was measured by an automatic analysis method, and the amount (%) was obtained.
  • the amount is defined as a percentage (%) by measuring the area of the multimeric peak detected by SEC by an automatic analysis method and dividing by the sum of all peak areas including the main peak.
  • the main peak refers to the peak of the active body.
  • FIG. 2 shows the SEC evaluation results (increased multimer peak%) obtained in this example and the comparative example.
  • prescriptions containing arginine B2, B2-2 to B2-4, B3, B3-2 to B3-4, B4, B4-2 to B4-4
  • the increase in multimers with an increase in the concentration of the main drug is significant. Suppressed.
  • Example 3 Increase promotion effect of HIC hydrophilicity peak by arginine, histidine, pH >> About the liquid agent containing the antibody A, the influence which arginine, histidine, and pH have on the increase in the HIC hydrophilicity peak was evaluated.
  • HIC Hexdrophobic interaction chromatography
  • Two ProPac HIC-10 HIC columns (Dionex) were connected to the HPLC system, 800 mmol / L ammonium sulfate, 20 mmol / L sodium phosphate pH 7.0 on the mobile phase A line, and 20 mmol / L sodium phosphate on the mobile phase B line.
  • a mobile phase having a composition of pH 7.0 was connected and allowed to flow at a flow rate of 0.8 mL / min.
  • the sample was diluted to 1 mg / mL with mobile phase A and 50 ⁇ L was injected.
  • the HIC gradient program in Table 3-2 was applied. Detection was performed at UV 280 nm.
  • the column temperature was set to 30 ° C and the sample temperature was set to 25 ° C.
  • the area of the hydrophilic peak detected by HIC which is an index of oxidant, was measured by an automatic analysis method, and the amount (%) was determined.
  • the amount is defined as a percentage (%) by measuring the area of the hydrophilic peak detected by HIC by an automatic integration method and dividing by the sum of all peak areas including the main peak.
  • the main peak refers to the peak of the active body.
  • Example 4 Examination of prescription by experimental design >> About the liquid agent containing the antibody A, prescription was examined about pH and arginine density
  • each sample was subjected to a thermal acceleration test (stored at 40 ° C. for 1 week). Then, the purity of the antibody before and after thermal acceleration was evaluated by size exclusion chromatography (SEC), ion exchange chromatography (IEC), and hydrophobic interaction chromatography (HIC).
  • SEC size exclusion chromatography
  • IEC ion exchange chromatography
  • HIC hydrophobic interaction chromatography
  • IEC ion exchange chromatography
  • Propac WCX10 IEC column (Dionex) was connected to the HPLC system, and 25 mmol / L phosphoric acid pH 6.0 was transferred to mobile phase A line, 25 mmol / L phosphoric acid, 500 mmol / L NaCl pH 6.0 transferred to mobile phase B line. The phases were connected and flowed at a flow rate of 1 mL / min. The sample was diluted to 1 mg / mL with mobile phase A and 10 ⁇ L was injected. The analysis time was 80 minutes, and the IEC gradient program shown in Table 4-3 was applied. Detection was performed at UV 280 nm. The column temperature was set to 35 ° C and the sample temperature was set to 5 ° C.
  • HIC Hexdrophobic interaction chromatography
  • Two ProPac HIC-10 HIC columns (Dionex) were connected to the HPLC system, 800 mmol / L ammonium sulfate, 20 mmol / L sodium phosphate pH 7.0 on the mobile phase A line, and 20 mmol / L sodium phosphate on the mobile phase B line.
  • a mobile phase having a composition of pH 7.0 was connected and allowed to flow at a flow rate of 0.8 mL / min.
  • the sample was diluted to 1 mg / mL with mobile phase A and 50 ⁇ L was injected.
  • the HIC gradient program in Table 4-4 was applied. Detection was performed at UV 280 nm.
  • the column temperature was set to 30 ° C and the sample temperature was set to 25 ° C.
  • the area of the multimer detected by SEC, the degradation product, the main peak detected by IEC, and the hydrophilic peak detected by HIC were measured by an automatic analysis method, and the amount (%) was obtained.
  • the area of the multimer peak and degradation product peak detected by SEC is measured by an automatic analysis method, and is divided by the sum of all peak areas including the main peak
  • the main peak detected by IEC Area is measured by an automatic analysis method and divided by the sum of all peak areas including those other than the main peak.
  • the area of the hydrophilic peak detected by HIC is measured by the automatic integration method and includes the main peak. It is defined as a percentage (%) by dividing by the sum of all peak areas.
  • the main peak refers to the peak of the active body.
  • Example 5 Inhibition of Formation of Insoluble Fine Particles by Surfactant About the liquid agent containing the antibody A, the formation inhibitory effect of the insoluble fine particles after stress loading by the surfactant was evaluated.
  • each sample was freeze-thawed at a cycle of ⁇ 80 ° C. to 5 ° C. three times, and then shaken at 150 rpm for 24 hours and stored under conditions of 1,000 lux for 24 hours. Then, the number of insoluble fine particles in the sample after stress loading was evaluated by the light shielding particle counting method.
  • samples E1 to E10 were stored at 25 ° C. for 4 weeks, and the samples after storage were subjected to hydrophobic interaction chromatography. Evaluation by (HIC) was performed.
  • HIC Hexdrophobic interaction chromatography
  • Two ProPac HIC-10 HIC columns (Dionex) were connected to the HPLC system, 800 mmol / L ammonium sulfate 20 mmol / L sodium phosphate pH 7.0 on the mobile phase A line, and 20 mmol / L sodium phosphate pH 7 on the mobile phase B line.
  • a 0.0 phase mobile phase was connected and flowed at a flow rate of 0.8 mL / min.
  • the sample was diluted to 1 mg / mL with mobile phase A and 50 ⁇ L was injected.
  • the HIC gradient program in Table 5-3 was applied. Detection was performed at UV 280 nm.
  • the column temperature was set to 30 ° C and the sample temperature was set to 25 ° C.
  • the area of the hydrophilic peak detected by HIC was measured by an automatic analysis method, and the amount (%) was determined.
  • the amount is defined as a percentage (%) by measuring the area of the hydrophilic peak detected by HIC by an automatic integration method and dividing by the sum of all peak areas including the main peak.
  • the main peak refers to the peak of the active body.
  • FIGS. 4-1 and 4-2 The HIC evaluation results obtained in this example are shown in FIGS. 4-1 and 4-2.
  • the sample containing polysorbate 80 an increasing tendency of the HIC hydrophilic peak was observed with an increase in polysorbate 80 concentration.
  • the increase in the HIC hydrophilic peak was suppressed for the sample with the active ingredient concentration of 30 mg / mL (FIG. 4-2) compared to the sample with the active ingredient concentration of 10 mg / mL (FIG. 4-1).
  • Example 6 Reduction of viscosity by arginine >> About the liquid agent containing the antibody A, the viscosity reduction effect by arginine was evaluated.
  • sample no. F1-No In this study, in order to evaluate the effect of arginine on the viscosity of the solution, sample no. F1-No. An evaluation sample of F12 was prepared. The formulation of each evaluation sample is as shown in Table 6-1 below.
  • Viscosity of each sample prepared in Table 6-1 and Table 6-2 was evaluated by dynamic light scattering (DLS).
  • the viscosity range is desirably controlled to 1000 mPa ⁇ s or less, preferably 100 mPa ⁇ s or less, and more preferably 20 mPa ⁇ s or less.
  • Table 6-3 and FIG. 5 show the evaluation results of the viscosity obtained in this example and the comparative example.
  • the increase in viscosity accompanying the increase in the concentration of the active ingredient was suppressed.
  • Example 7 Stability evaluation >> The stability of the solution containing antibody A was evaluated.
  • the formulation of the evaluation sample is as shown in Table 7-1 below.
  • a protein drug solution whose buffer solution was exchanged to the formulation after culture and purification was diluted with a solution containing the component excluding antibody A from the formulation described in Table 7-1, and then filtered through a 0.22 ⁇ m filter. Then, after filling into a glass vial, it was prepared by stoppering and winding.
  • a storage stability test ( ⁇ 20 ° C. 12 months and 5 ° C. 12 months) of each sample was performed.
  • the quality of the antibody before and after storage was evaluated by size exclusion chromatography (SEC), ion exchange chromatography (IEC), and hydrophobic interaction chromatography (HIC).
  • SEC size exclusion chromatography
  • IEC ion exchange chromatography
  • HIC hydrophobic interaction chromatography
  • IEC ion exchange chromatography
  • a column for MabPac SCX10 IEC (Thermo) was connected to the HPLC system, and a mobile phase having a composition of 25 mmol / L MES pH 6.0 on the mobile phase A line, 25 mmol / L MES, 500 mmol / L NaCl pH 6.0 on the mobile phase B line. Connected and flowed at a flow rate of 1 mL / min. The sample was diluted to 1 mg / mL with mobile phase A and 10 ⁇ L was injected. The analysis time was 70 minutes, and the IEC gradient program shown in Table 7-2 was applied. Detection was performed at UV 280 nm. The column temperature was set to 35 ° C and the sample temperature was set to 5 ° C.
  • HIC Hexdrophobic interaction chromatography
  • Two ProPac HIC-10 HIC columns (Dionex) were connected to the HPLC system, 800 mmol / L ammonium sulfate, 20 mmol / L sodium phosphate pH 7.0 on the mobile phase A line, and 20 mmol / L sodium phosphate on the mobile phase B line.
  • a mobile phase having a composition of pH 7.0 was connected and allowed to flow at a flow rate of 0.8 mL / min.
  • the sample was diluted to 1 mg / mL with mobile phase A and 50 ⁇ L was injected.
  • the HIC gradient program in Table 7-3 was applied. Detection was performed at UV 280 nm.
  • the column temperature was set to 30 ° C and the sample temperature was set to 25 ° C.
  • the area of the multimer detected by SEC, the degradation product, the main peak detected by IEC, and the hydrophilic peak detected by HIC were measured by an automatic analysis method, and the amount (%) was obtained.
  • the area of the multimer peak and degradation product peak detected by SEC is measured by an automatic analysis method, and is divided by the sum of all peak areas including the main peak
  • the main peak detected by IEC Area is measured by an automatic analysis method and divided by the sum of all peak areas including those other than the main peak.
  • the area of the hydrophilic peak detected by HIC is measured by the automatic integration method and includes the main peak. It is defined as a percentage (%) by dividing by the sum of all peak areas.
  • the main peak refers to the peak of the active body.
  • a stable pharmaceutical composition comprising an anti-human TSLP receptor antibody, specifically, a chemically modified product such as a deamidated product or an oxidized product, or a degradation product or multimer is suppressed. It is possible to provide a stable pharmaceutical composition containing an anti-human TSLP receptor antibody.
  • the description of “Artificial Sequence” is described in the numerical heading ⁇ 223> of the following sequence listing.
  • the base sequences represented by SEQ ID NOs: 2 and 4 in the sequence listing are the heavy chain and light chain base sequences of the anti-human TSLP receptor antibody, respectively.
  • the amino acid sequences represented by SEQ ID NOs: 1 and 3 are respectively represented by SEQ ID NO: 2 And the heavy and light chain amino acid sequences encoded by 4 and 4.

Abstract

脱アミド体や酸化体など化学修飾体、又は分解物や多量体の生成を抑制してなる、安定な抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有してなる医薬組成物を提供する。　前記医薬組成物は、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体、製薬学的に許容される緩衝剤、アルギニン又はその製薬学的に許容される塩、及び界面活性剤を含有してなる。

Description

抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体含有医薬組成物
　本発明は、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有してなる、安定な医薬組成物に関する。また、本発明は、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有してなる、安定な高濃度医薬組成物に関するものである。
　ヒトＴＳＬＰ（ｔｈｙｍｉｃ　ｓｔｒｏｍａｌ　ｌｙｍｐｈｏｐｏｉｅｔｉｎ）受容体に特異的に結合して、ヒトＴＳＬＰ受容体を介するヒトＴＳＬＰの作用を阻害するモノクローナル抗体は、ヒトＴＳＬＰ及びヒトＴＳＬＰ受容体が病態形成に関与する各種疾患の予防及び／又は治療（例えば、喘息の予防及び／又は治療）に有用であることが知られている（特許文献１）。
　抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体として、特許文献１において、完全ヒト型Ｔ７－２７が開示されており、ＴＳＬＰによって誘発されるＴＡＲＣ（ｔｈｙｍｕｓ　ａｎｄ　ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ－ｒｅｇｕｌａｔｅｄ　ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ）　ｍＲＮＡの発現及びＭＤＣ（ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ　ｃｈｅｍｏｋｉｎｅ）蛋白質の産生を阻害すること、また、サルアスカリス抗原感作モデルにおいてアレルギー反応を抑制すること等が開示されている。
　他方、近年様々な抗体医薬が開発され、実際に医療の現場に提供されている。抗体医薬の多くは、静脈内投与や皮下投与等により投薬されるため、医療の現場には、液剤、あるいは凍結乾燥製剤等の非経口医薬組成物の形態として提供される。非経口医薬組成物は、直接体内に投与されることを前提とされるため、安定な医薬品製剤が必要とされる。
　また、製剤的な観点から、投与ルートとして静脈内投与や皮下投与が想定されることから、同一医薬品製剤とする場合、皮下投与のための用量を考慮すれば、医薬品製剤は高濃度製剤であることが望ましい。
　しかしながら、高濃度の抗体を含有する溶液では、不溶性凝集物及び／又は可溶性凝集物の形成を含む、望ましくない現象が起こり得る可能性がある。該不溶性凝集物及び可溶性凝集物は、抗体分子の会合により、溶液状態において形成される。また、液剤が長期間保管された場合、アスパラギン残基の脱アミドにより、抗体分子の生理活性が低下することもある。
　高濃度抗体及び蛋白質製剤に関する技術として、１００～２６０ｍｇ／ｍＬ量の蛋白質又は抗体、５０～２００ｍｍｏｌ／Ｌ量のアルギニン塩酸塩、１０～１００ｍｍｏｌ／Ｌ量のヒスチジン、０．０１～０．１％量のポリソルベートを含んでなり、ｐＨ５．５～７．０の範囲内で、約５０ｃｓ又はその未満の運動学的粘度を持ち、２００ｍＯｓｍ／ｋｇ～４５０ｍＯｓｍ／ｋｇ範囲の浸透圧である安定した低濁度の液体製剤に関する発明が知られている（特許文献２）。しかしながら、特許文献２には、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体については、記載も示唆もなされていない。
　なお、特許文献３には、抗ＴＳＬＰ抗体を含有する安定な医薬組成物に関する発明が開示されている（特許文献３）が、抗ＴＳＬＰ受容体抗体に関するものではない。
国際公開第２０１５／０２０１９３号 国際公開第２００４／０９１６５８号 国際公開第２０１４／０３１７１８号
　本発明の目的は、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体である完全ヒト型Ｔ７－２７を含有してなる、安定な医薬組成物を提供することにある。
　詳細には、本発明の目的は、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体である完全ヒト型Ｔ７－２７を含有し、例えば、（ｉ）熱により増大する、脱アミド体や酸化体などの化学修飾体、又は分解物や多量体の生成を抑制してなる医薬組成物、（ii）アルギニン添加により促進される、酸化体の生成を抑制してなる医薬組成物、（iii）物理的ストレス後に増大する、微粒子の生成を抑制してなる医薬組成物、あるいは、（iv）界面活性剤の濃度が高いと増大する酸化体の生成を抑制してなる医薬組成物を提供することにある。
　本発明者らは、アルギニン溶液中で抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体である完全ヒト型Ｔ７－２７を製剤化することにより、安定な医薬組成物を調製することができること（後記実施例２）、また、溶液のｐＨを適切な範囲に調整したり、各種緩衝剤成分を使用することにより、安定な医薬組成物を調製することができること（後記実施例１、３及び４）、また、界面活性剤を使用したり、抗体濃度を調整すること等により、さらに安定な医薬組成物を提供することができること（後記実施例５）等を知見して、本発明を完成させるに至った。
　すなわち、本発明は、
［１］抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体、製薬学的に許容される緩衝剤、アルギニン又はその製薬学的に許容される塩、及び界面活性剤を含有してなり、該抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体として、以下の（１）及び／又は（２）を含有する、安定な医薬組成物：
（１）配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体、
（２）（１）の抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の翻訳後修飾により生じた抗体のアミノ酸配列からなる、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体；
［２］製薬学的に許容される緩衝剤が、リン酸、クエン酸、酢酸、コハク酸、ヒスチジン、アスコルビン酸、グルタミン酸、乳酸、マレイン酸、トロメタモール、及びグルコン酸からなる群より選択される１種又は２種以上である、［１］の医薬組成物；
［３］製薬学的に許容される緩衝剤が、リン酸である、［１］又は［２］の医薬組成物；
［４］製薬学的に許容される緩衝剤の濃度が、５～１００ｍｍｏｌ／Ｌである、［１］～［３］のいずれかの医薬組成物；
［５］医薬組成物が液剤又は凍結乾燥製剤若しくは噴霧乾燥製剤である、［１］～［４］のいずれかの医薬組成物；
［６］医薬組成物が液剤である、［５］の医薬組成物；
［７］医薬組成物が液剤である場合、該液剤のｐＨが５～６である、あるいは、凍結乾燥製剤又は噴霧乾燥製剤である場合、該製剤が水により再溶解されるとき、該溶解液のｐＨが５～６である、［５］の医薬組成物；
［８］医薬組成物が液剤であり、該液剤のｐＨが５～６である、［７］の医薬組成物；
［９］アルギニン又はその製薬学的に許容される塩の濃度が、７００ｍｍｏｌ／Ｌ以下である、［１］～［８］のいずれかの医薬組成物；
［１０］界面活性剤が、ポリソルベート及びポロキサマー１８８からなる群より選択される１種又は２種以上である、［１］～［９］のいずれかの医薬組成物；
［１１］界面活性剤がポリソルベート８０である、［１］～［１０］のいずれかの医薬組成物；
［１２］界面活性剤の量が、０．００１～１％（ｗ／ｖ）である、［１］～［１１］のいずれかの医薬組成物；
［１３］界面活性剤の量が、０．０１～０．２％（ｗ／ｖ）である、［１］～［１２］のいずれかの医薬組成物；
［１４］医薬組成物が液剤である場合、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の量が、０．００７～２ｍｍｏｌ／Ｌである、あるいは、凍結乾燥製剤又は噴霧乾燥製剤である場合、該製剤が水により再溶解されるとき、該溶解液の抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の量が、０．００７～２ｍｍｏｌ／Ｌである、［５］～［１３］のいずれかの医薬組成物；
［１５］医薬組成物を保存するとき、分解物及び多量体が各１０％以下、又は、化学修飾体が５０％以下である、［１］～［１４］のいずれかの医薬組成物；
［１６］配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する、［１］の医薬組成物；
［１７］配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の翻訳後修飾により生じた抗体のアミノ酸配列からなる抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する、［１］の医薬組成物；
［１８］配列番号１のアミノ酸番号１から４４７までのアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する、［１］の医薬組成物；
［１９］配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体、並びに、配列番号１のアミノ酸番号１から４４７までのアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する、［１］の医薬組成物；
に関する。
　本発明によれば、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体である完全ヒト型Ｔ７－２７を含有してなる安定な医薬組成物、詳細には、脱アミド体や酸化体などの化学修飾体、又は分解物や多量体の生成、あるいは微粒子の生成を抑制してなる、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する、安定な医薬組成物を提供することができる。
実施例１で得られたＳＥＣ、ＩＥＣの評価結果（ＳＥＣ多量体）を示す。 実施例１で得られたＳＥＣ、ＩＥＣの評価結果（ＳＥＣ分解物）を示す。 実施例１で得られたＳＥＣ、ＩＥＣの評価結果（ＩＥＣメインピーク）を示す。 実施例２で得られたＳＥＣの評価結果を示す。 実施例３で得られたリン酸添加処方群における、アルギニン及びｐＨの効果を示す。 実施例３で得られたヒスチジン添加処方群における、アルギニン及びｐＨの効果を示す。 実施例５で得られたＨＩＣの評価結果を示す。 実施例５で得られたＨＩＣの評価結果を示す。 実施例６で得られた粘度の評価結果を示す。
　本明細書において「安定」とは、例えば、熱、光、温度、及び／又は湿度に対して安定であることを意味する。例えば、医薬組成物を所定条件下に保存後、前記医薬組成物中に含まれる不純物、例えば、脱アミド体や酸化体などの化学修飾体、又は分解物や多量体がある特定量以下であることを意味する。量については、ＳＥＣで検出された多量体ピーク、分解物ピークの面積を自動分析法により測定し、メインピークを含む全ピーク面積の総和で除することにより、また、ＩＥＣで検出されたメインピークの面積を自動分析法により測定し、メインピーク以外を含む全ピーク面積の総和で除することにより、また、ＨＩＣで検出された親水性ピークの面積を自動積分法により測定し、メインピークを含む全ピーク面積の総和で除することにより、百分率（％）として規定される。ここでメインピークとは、活性本体のピークを指す。
　前記化学修飾体は、抗体分子の配列中の一部が化学修飾を受けて生成する構造体のことである。化学修飾体の量としては、ある態様として、０～７０％、別の態様として０～５０％と規定される。
　前記脱アミド体は、抗体分子のアミノ残基の一部が脱アミド反応を受けた化学修飾体である。脱アミド体の測定方法としては、測定できる方法であれば特に制限されない。前記測定方法には、例えば、イオン交換クロマトグラフ法等が含まれる。脱アミド体の量としては、ある態様として、０～７０％、別の態様として０～５０％、更に別の態様として０～３０％と規定される。
　前記酸化体は、抗体分子の配列中の一部が酸化された化学修飾体である。酸化体の測定方法としては、測定できる方法であれば特に制限されない。前記測定方法には、例えば、疎水性相互作用クロマトグラフ法、イオン交換クロマトグラフ法等が含まれる。酸化体の量としては、ある態様として、０～７０％、別の態様として０～５０％と規定される。
　前記分解物は、抗体分子の一部が脱離して生成する断片体である。分解物の測定方法は、測定できる方法であれば特に制限されない。前記測定方法には、例えば、サイズ排除クロマトグラフ法、ゲル電気泳動法、キャピラリー電気泳動法、動的光散乱法、光遮蔽粒子計数法、マイクロフローイメージング法等が含まれる。分解物の量としては、ある態様として、０～１０％、別の態様として０～５％と規定される。
　前記多量体は、抗体分子が複数個集まって生成する複合体である。多量体の測定方法は、測定できる方法であれば特に制限されない。前記測定方法には、例えば、サイズ排除クロマトグラフ法、ゲル電気泳動法、キャピラリー電気泳動法、動的光散乱法、光遮蔽粒子計数法、マイクロフローイメージング法等が含まれる。多量体の量としては、ある態様として、０～１０％、別の態様として０～５％と規定される。
　また、「安定」とは、冷蔵温度（２～８℃）で少なくとも６ヶ月間、好適には１年間、さらに好適には２年間；又は室温（２２～２８℃）で少なくとも３ヶ月間、好適には６ヶ月間、さらに好適には１年間；又は４０℃保存下で少なくとも１週間、好適には２週間、前記不純物の量が抑制されていることを意味する。例えば、５℃で２年間保存後の多量体量及び分解物量が各１０％以下、好適には５％以下、更に好適には３％以下、あるいは２５℃で３ヶ月保存後の多量体量及び分解物量が各１０％以下、好適には５％以下、更に好適には３％以下、あるいは４０℃で１週間保存後の多量体量及び分解物量が各５％以下、好適には３％以下である。
　本明細書において、「約」とは、数字的変数に関連して使用されるとき、一般的に実験誤差内（例えば、平均に対する９５％信頼区間内）又は表示値の±１０％内のいずれか大きい方の変数の値及び変数の全ての値を意味する。但し、「約」を伴わない数値の場合にあっても、当該解釈がなされるものとする。
　抗体にはＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、及びＩｇＥの５つのクラスが存在する。抗体分子の基本構造は、各クラス共通で、分子量５万～７万の重鎖と２万～３万の軽鎖から構成される。重鎖は、通常約４４０個のアミノ酸を含むポリペプチド鎖からなり、クラスごとに特徴的な構造をもち、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥに対応してＩｇγ、Ｉｇμ、Ｉｇα、Ｉｇδ、Ｉｇεとよばれる。さらにＩｇＧには、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４のサブクラスが存在し、それぞれに対応する重鎖はＩｇγ１、Ｉｇγ２、Ｉｇγ３、Ｉｇγ４とよばれている。軽鎖は、通常約２２０個のアミノ酸を含むポリペプチド鎖からなり、Ｌ型とＫ型の２種が知られており、それぞれＩｇλ、Ｉｇκとよばれる。抗体分子の基本構造のポリペプチド構成は、それぞれ相同な２本の重鎖及び２本の軽鎖が、ジスルフィド結合（Ｓ－Ｓ結合）及び非共有結合によって結合され、分子量１５万～１９万である。２種の軽鎖は、どの重鎖とも対をなすことができる。個々の抗体分子は、常に同一の軽鎖２本と同一の重鎖２本からできている。
　鎖内Ｓ－Ｓ結合は、重鎖に四つ（μ、ε鎖には五つ）、軽鎖には二つあって、アミノ酸１００～１１０残基ごとに一つのループを成し、この立体構造は各ループ間で類似していて、構造単位又はドメインとよばれる。重鎖、軽鎖ともにアミノ末端（Ｎ末端）に位置するドメインは、同種動物の同一クラス（サブクラス）からの標品であっても、そのアミノ酸配列が一定せず、可変領域とよばれており、各ドメインは、それぞれ、重鎖可変領域及び軽鎖可変領域とよばれている。可変領域よりカルボキシ末端（Ｃ末端）側のアミノ酸配列は、各クラス又はサブクラスごとにほぼ一定で定常領域とよばれている。
　抗体を細胞で発現させる場合、抗体が翻訳後に修飾を受けることが知られている。アミノ酸残基が変更される翻訳後修飾の例としては、重鎖Ｃ末端のリジンのカルボキシペプチダーゼによる切断、重鎖及び軽鎖Ｎ末端のグルタミン又はグルタミン酸のピログルタミル化によるピログルタミン酸への修飾等が挙げられ、種々の抗体において、重鎖Ｃ末端のリジンが欠失することや重鎖Ｎ末端のグルタミンの大部分がピログルタミン酸への修飾が生じることが知られている（Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、２００８、Ｖｏｌ．９７、ｐ．２４２６）。また、このようなＮ末端のピログルタミル化又はＣ末端リジン欠失による翻訳後修飾が抗体の活性に影響を及ぼすものではないことも当該分野で知られている（Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、２００６、Ｖｏｌ．３４８、ｐ．２４－３９）。
　本発明の医薬組成物は、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体として、以下の（１）及び／又は（２）の抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する。
（１）配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体、
（２）配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の翻訳後修飾により生じた抗体のアミノ酸配列からなる、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体。（国際公開第２０１５／０２０１９３号）
　１つの実施形態において、前記（２）の抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体における翻訳後修飾は、重鎖可変領域Ｎ末端のピログルタミル化及び／又は重鎖Ｃ末端のリジン欠失である。例えば、前記（２）の抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体として、配列番号１のアミノ酸番号１から４４７までのアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体が挙げられる。
　１つの実施形態において、本発明の医薬組成物は、配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体、並びに、配列番号１のアミノ酸番号１から４４７までのアミノ酸配列からなる重鎖、及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する。
　本発明に用いられる抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体は、本明細書に開示される抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の重鎖及び軽鎖の配列情報に基づいて、当該分野で公知の方法を使用して、当業者によって容易に作製され得る。本発明に用いられる抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の作製方法としては、国際公開第２０１５／０２０１９３号に開示された方法が挙げられる。
　一単位医薬組成物（製剤）中の抗体の量としては、例えば、ある態様として０．００１ｍｇ～１０００ｍｇ、別の態様として０．０１ｍｇ～１００ｍｇを含む。なお、前記の各下限と各上限は、所望により、任意に組み合わせることができる。
　医薬組成物が固体状態（例えば、凍結乾燥製剤、噴霧乾燥製剤など）の場合、抗体の量としては、例えば、ある態様として０．００１ｍｇ～１０００ｍｇ、別の態様として０．０１ｍｇ～１００ｍｇを含む。なお、前記の各下限と各上限は、所望により、任意に組み合わせることができる。
　用時溶解するときの液量は、例えば、ある態様として０．１ｍＬ～１００ｍＬ、別の態様として１ｍＬ～１０ｍＬである。なお、前記の各下限と各上限は、所望により、任意に組み合わせることができる。
　医薬組成物が液体状態（液剤）の場合、抗体の濃度としては、例えば、ある態様として１ｍｇ／ｍＬ～３００ｍｇ／ｍＬ（約０．００７ｍｍｏｌ／Ｌ～２ｍｍｏｌ／Ｌ）、別の態様として１ｍｇ／ｍＬ～２００ｍｇ／ｍＬ（約０．００７ｍｍｏｌ／Ｌ～１ｍｍｏｌ／Ｌ）、他の態様として１ｍｇ／ｍＬ～１００ｍｇ／ｍＬ（約０．００７ｍｍｏｌ／Ｌ～０．７ｍｍｏｌ／Ｌ）、別の態様として１０ｍｇ／ｍＬ～５０ｍｇ／ｍＬ（約０．０７ｍｍｏｌ／Ｌ～０．３ｍｍｏｌ／Ｌ）を含む。なお、前記の各下限と各上限は、所望により、任意に組み合わせることができる。
　用量としては、例えば、ある態様として０．００１ｍｇ～１０００ｍｇ、別の態様として０．０１ｍｇ～１００ｍｇを含む。なお、前記の各下限と各上限は、所望により、任意に組み合わせることができる。
　適応症としては、ヒトＴＳＬＰ及びヒトＴＳＬＰ受容体が病態形成に関与する各種疾患の予防及び／又は治療、例えば、喘息の予防及び／又は治療を含む。
　本発明に用いられる「製薬学的に許容される緩衝剤」としては、製薬学的に許容され、溶液状態において、所望のｐＨ範囲内に該溶液のｐＨを調整することができるものであれば、特に制限されない。
　具体的には、ｐＨは、例えば、ある態様として５～６、別の態様として５．０～６．０である。緩衝剤がリン酸又はその塩のとき、好適には５．５～５．７であり、緩衝剤がヒスチジン又はその塩のとき、好適には５．３～６．０である。
　ｐＨは、医薬組成物が液剤である場合は該液剤のｐＨとし、医薬組成物が凍結乾燥製剤又は噴霧乾燥製剤である場合、該製剤が水に再溶解されるときの該溶解液のｐＨとする。
　緩衝剤成分としては、例えば、ある態様として、リン酸（ナトリウム又はカリウム）、クエン酸、酢酸、コハク酸、ヒスチジン、アスコルビン酸、グルタミン酸、乳酸、マレイン酸、トロメタモール、グルコン酸、又はそれらの製薬学的に許容される塩等を含む。別の態様として、リン酸、又はその製薬学的に許容される塩（ナトリウム塩又はカリウム塩）を含む。他の態様として、リン酸二水素ナトリウムを含む。
　緩衝剤成分は、１種又は２種以上適宜適量使用することができる。
　緩衝剤の濃度は、ｐＨを所望のｐＨ範囲内に調整できる量であれば、特に制限されない。具体的には、例えば、ある態様として５～１００ｍｍｏｌ／Ｌ、別の態様として５～７０ｍｍｏｌ／Ｌ、他の態様として５～５０ｍｍｏｌ／Ｌである。
　緩衝剤の量は、注射用水により溶解された溶液状態（液剤）の場合、例えば、ある態様として１ｍＬあたり０．１～１００ｍｇ、別の態様として０．１～５０ｍｇ、あるいは凍結乾燥等により固体状態（凍結乾燥製剤、噴霧乾燥製剤）となっている場合、例えば、注射用水１ｍＬにより再溶解後の量は、ある態様として５～１００ｍｍｏｌ／Ｌ、別の態様として５～７０ｍｍｏｌ／Ｌ、他の態様として５～５０ｍｍｏｌ／Ｌである。
　本発明に用いられる「アルギニン又はその製薬学的に許容される塩」としては、製薬学的に許容される、アルギニン又はその塩であれば、特に制限されない。アルギニン又はその塩は、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を安定化させる機能を有するものである。例えば、Ｌ－アルギニン、Ｌ－アルギニン塩酸塩を含む。
　アルギニン又はその製薬学的に許容される塩の量は、ある態様として１５０ｍｇ／ｍＬ（約７００ｍｍｏｌ／Ｌ）以下（但し、無添加を除く）であり、別の態様として１００ｍｇ／ｍＬ（約５００ｍｍｏｌ／Ｌ）以下（但し、無添加を除く）、他の態様として４５ｍｇ／ｍＬ（約２１０ｍｍｏｌ／Ｌ）以下（但し、無添加を除く）である。抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体が３０ｍｇ／ｍＬ（約０．２ｍｍｏｌ／Ｌ）のとき、浸透圧の面から、等張性を確保する上で、３０ｍｇ／ｍＬ（約１４０ｍｍｏｌ／Ｌ）が好適である。無添加を除く下限値としては、例えば、１０ｍｇ／ｍＬ（約５０ｍｍｏｌ／Ｌ）以上が挙げられる。なお、前記の下限と各上限は、所望により、任意に組み合わせることができる。
　注射用水により溶解された溶液状態（液剤）の場合、例えば、１ｍＬあたり、ある態様として１５０ｍｇ以下（但し、無添加を除く）、別の態様としては１００ｍｇ以下（但し、無添加を除く）、他の態様として４５ｍｇ以下（但し、無添加を除く）、あるいは凍結乾燥等により固体状態（凍結乾燥製剤）の場合、例えば、注射用水により再溶解後、アルギニン濃度は、ある態様として１５０ｍｇ／ｍＬ（約７００ｍｍｏｌ／Ｌ）以下（但し、無添加を除く）、別の態様として１００ｍｇ／ｍＬ（約５００ｍｍｏｌ／Ｌ）以下（但し、無添加を除く）、他の態様として４５ｍｇ／ｍＬ（約２１０ｍｍｏｌ／Ｌ）以下（但し、無添加を除く）である。抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体が３０ｍｇ／ｍＬのとき、浸透圧の面から、等張性を確保する上で、約１４０ｍｍｏｌ／Ｌが好適である。
　本発明に用いられる界面活性剤としては、製薬学的に許容され、界面活性作用を有するものであれば、特に制限されない。
　具体的には、例えば、非イオン性界面活性剤、例えば、モノカプリル酸ソルビタン、モノラウリン酸ソルビタン、及びモノパルミチン酸ソルビタンなどのソルビタン脂肪酸エステル；モノカプリル酸グリセロール、モノミリスチン酸グリセロール、及びモノステアリン酸グリセロールなどのグリセリン脂肪酸エステル；モノステアリン酸デカグリセリル、ジステアリン酸デカグリセリル、及びモノリノール酸デカグリセリルなどのポリグリセロール脂肪酸エステル；モノラウリン酸ポリオキシエチレンソルビタン、モノオレイン酸ポリオキシエチレンソルビタン、モノステアリン酸ポリオキシエチレンソルビタン、モノパルミチン酸ポリオキシエチレンソルビタン、トリオレイン酸ポリオキシエチレンソルビタン、及びトリステアリン酸ポリオキシエチレンソルビタンなどのポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル；テトラステアリン酸ポリオキシエチレンソルビトール、及びテトラオレイン酸ポリオキシエチレンソルビトールなどのポリオキシエチレンソルビトール脂肪酸エステル；モノステアリン酸ポリオキシエチレングリセリルなどのポリオキシエチレングリセリン脂肪酸エステル；ジステアリン酸ポリエチレングリコールなどのポリエチレングリコール脂肪酸エステル；ポリオキシエチレンラウリルエーテルなどのポリオキシエチレンアルキルエーテル；ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコールエーテル、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンプロピルエーテル、及びポリオキシエチレンポリオキシプロピレンセチルエーテルなどのポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル；ポリオキシエチレンノニルフェニルエーテルなどのポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル；ポリオキシエチレンヒマシ油、及びポリオキシエチレン硬化ヒマシ油（ポリオキシエチレン水素化ヒマシ油）などのポリオキシエチレン硬化ヒマシ油；ポリオキシエチレンソルビトールミツロウなどのポリオキシエチレンミツロウ誘導体；ポリオキシエチレンラノリンなどのポリオキシエチレンラノリン誘導体；ポリオキシエチレン脂肪酸アミド、例えば、ポリオキシエチレンオクタデカンアミドなどの６～１８のＨＬＢを有する界面活性剤；陰イオン性界面活性剤、例えば、セチル硫酸ナトリウム、ラウリル硫酸ナトリウム、及びオレイル硫酸ナトリウムなどのＣ１０～Ｃ１８アルキル基を有するアルキル硫酸塩；ポリオキシエチレンラウリル硫酸ナトリウムなどの、添加されたエチレンオキシド単位の平均モル数が２～４であり、アルキル基の炭素原子の数が１０～１８であるポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸塩；スルホコハク酸ラウリルナトリウムなどのＣ８～Ｃ１８アルキル基を有するスルホコハク酸アルキル塩；レシチン、及びグリセロリン脂質などの天然の界面活性剤；スフィンゴミエリンなどのスフィンゴリン脂質；並びにＣ１２～Ｃ１８脂肪酸のショ糖エステルを含む。
　界面活性剤は、１種又は２種以上適宜選択され使用することができる。
　界面活性剤は、ある態様として、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、又はポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテルであり、別の態様として、ポリソルベート（例えば、２０、２１、４０、６０、６５、８０、８１、若しくは８５）、又はプルロニック型界面活性剤であり、他の態様として、ポリソルベート（例えば、２０若しくは８０）、又はポロキサマー１８８（プルロニック　Ｆ６８）、さらに他の態様として、ポリソルベート２０又は８０を含む。
　界面活性剤の量は、ある態様として０．００１～１％（ｗ／ｖ）、別の態様として０．００５～０．５％（ｗ／ｖ）、他の態様として０．０１～０．２％（ｗ／ｖ）である。なお、前記の各下限と各上限は、所望により、任意に組み合わせることができる。
　本発明の医薬組成物は、溶液を容器に充填して、液剤として、また、溶液を凍結乾燥法や噴霧乾燥法により、凍結乾燥製剤又は噴霧乾燥製剤等の非経口医薬組成物として、提供することができる。好適には、液剤である。
　本発明の医薬組成物には、所望により、懸濁剤、溶解補助剤、等張化剤、保存剤、吸着防止剤、賦形剤、無痛化剤、含硫還元剤、酸化防止剤等の医薬品添加物を適宜添加することができる。
　懸濁剤としては、例えば、メチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、アラビアゴム、トラガント末、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート等を挙げることができる。
　溶解補助剤としては、例えば、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ニコチン酸アミド、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、マグロゴール、ヒマシ油脂肪酸エチルエステル等を挙げることができる。
　等張化剤としては、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム等を挙げることができる。
　保存剤としては、例えば、パラオキシ安息香酸メチル、パラオキシ安息香酸エチル、ソルビン酸、フェノール、クレゾール、クロロクレゾール、ベンジルアルコール等を挙げることができる。
　吸着防止剤としては、例えば、ヒト血清アルブミン、レシチン、デキストラン、エチレンオキサイド・プロピレンオキサイド共重合体、ヒドロキシプロピルセルロース、メチルセルロース、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ポリエチレングリコール等を挙げることができる。
　賦形剤としては、例えば、クエン酸ナトリウム水和物、キシリトール等を挙げることができる。
　無痛化剤としては、例えば、イノシトール、リドカイン等を挙げることができる。
　含硫還元剤としては、例えば、Ｎ－アセチルシステイン、Ｎ－アセチルホモシステイン、チオクト酸、チオジグリコール、チオエタノールアミン、チオグリセロール、チオソルビトール、チオグリコール酸及びその塩、チオ硫酸ナトリウム、グルタチオン、炭素原子数１～７のチオアルカン酸等のスルフヒドリル基を有するもの等が挙げられる。
　酸化防止剤としては、例えば、エリソルビン酸、ジブチルヒドロキシトルエン、ブチルヒドロキシアニソール、α－トコフェロール、酢酸トコフェロール、Ｌ－アスコルビン酸及びその塩、Ｌ－アスコルビン酸パルミテート、Ｌ－アスコルビン酸ステアレート、亜硫酸水素ナトリウム、亜硫酸ナトリウム、没食子酸トリアミル、没食子酸プロピル、あるいはエチレンジアミン四酢酸二ナトリウム（ＥＤＴＡ）、ピロリン酸ナトリウム、メタリン酸ナトリウム等のキレート剤が挙げられる。
　各種医薬品添加物は、本発明の所望の効果を達成できる量の範囲で、適宜適量使用することができる。
　本発明の医薬組成物の製造方法は、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体、及びアルギニン又はその製薬学的に許容された塩を含むことを特徴とし、さらに他の成分を含む組成物について、自体公知の製造方法により、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体である完全ヒト型Ｔ７－２７を含む、安定な医薬組成物を製造する方法を含む。
　本発明の医薬組成物を充填する容器は、使用目的に応じて選択することができる。例えば、バイアル、アンプル、注射器のような規定容量の形状のもの、瓶のような大容量の形状のものを含む。ある態様として注射器（ディスポーザブル注射器を含む）を含む。該注射器に予め溶液を充填して、プレフィルドシリンジ溶液製剤として提供することにより、医療現場において、溶解操作等の操作が不要となり、迅速な対応が期待される。
　容器の材質については、ガラス、プラスチック等が挙げられる。また、容器内の表面処理としては、シリコーンコート処理、サルファー処理、各種低アルカリ処理等が施されてもよい。これらの処理が施されることにより、さらに安定な医薬組成物を提供することが期待される。
　以下、比較例、実施例、及び試験例をあげて、本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらにより限定解釈されるものではない。
　実施例、比較例、及び試験例において用いられた、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体は、国際公開第２０１５／０２０１９３号に記載の製法又はそれに準じた方法により製造された抗体であり、その具体的作製手順を参考例に示す。
　なお、表における「－」は未添加であることを示す。
《参考例：完全ヒト型抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体である完全ヒト型Ｔ７－２７の作製》
　本実施例で用いた完全ヒト型抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体である完全ヒト型Ｔ７－２７（以下、抗体Ａと略記することもある。）の重鎖をコードする塩基配列を配列番号２に、それによりコードされるアミノ酸配列を配列番号１に、該抗体の軽鎖をコードする塩基配列を配列番号４に、それによりコードされるアミノ酸配列を配列番号３にそれぞれ示す。
　国際公開第２０１５／０２０１９３号に従い、抗体Ａの重鎖と軽鎖の両遺伝子が挿入されたＧＳベクター（Ｌｏｎｚａ社）を構築した。さらに、ＣＨＯＫ１ＳＶ細胞（Ｌｏｎｚａ社）にトランスフェクションすることにより抗体の安定発現株を取得し、抗体を発現させた。培養上清をプロテインＡカラム（ＧＥヘルスケアジャパン社）及びイオン交換クロマトグラフィーで精製し、完全ヒト型抗体の精製抗体を得た。精製した抗体Ａのアミノ酸修飾を分析した結果、精製抗体の大部分において、重鎖Ｃ末端のリジンの欠失が生じていると推定された。
《実施例１：至適ｐＨの選定による安定化効果》
　抗体Ａを含む液剤について、ｐＨが製剤の安定化に及ぼす影響を評価した。
　本検討では、ｐＨの効果を評価するために、試料Ｎｏ．Ａ１～Ｎｏ．Ａ５の評価試料を調製した。各評価試料の処方は以下の表１－１の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　液剤の安定性を評価するために、各試料の熱加速試験（４０℃２週間及び２５℃４週間保存）を行った。そして、熱加速前後における抗体の品質を、サイズ排除クロマトグラフ法（ＳＥＣ）、イオン交換クロマトグラフ法（ＩＥＣ）により評価した。分析条件は以下の通りである。
［サイズ排除クロマトグラフ法（ＳＥＣ）］
　ＨＰＬＣシステムにＧ３０００　ＳＷＸＬ　ＳＥＣ用カラム（東ソー）を接続し、１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸、５００ｍｍｏｌ／Ｌ　ＮａＣｌ　ｐＨ６．８組成の移動相を０．５ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは蛋白質量換算で５０μｇとなる注入量（例：１０ｍｇ／ｍＬの場合は５．０μＬ）とし、分析時間は３０分間、検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は３０℃、サンプル温度は５℃に設定した。
［イオン交換クロマトグラフ法（ＩＥＣ）］
　ＨＰＬＣシステムにＰｒｏｐａｃ　ＷＣＸ１０　ＩＥＣ用カラム（Ｄｉｏｎｅｘ）を接続し、移動相Ａラインに２０ｍｍｏｌ／Ｌ　ＭＥＳ　ｐＨ６．０、移動相Ｂラインに２０ｍｍｏｌ／Ｌ　ＭＥＳ、５００ｍｍｏｌ／Ｌ　ＮａＣｌ　ｐＨ６．０組成の移動相を接続し、１ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは移動相Ａで１ｍｇ／ｍＬに希釈し、１０μＬを注入した。表１－２のＩＥＣグラジエントプログラムを適用した。検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は４０℃、サンプル温度は５℃に設定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　ＳＥＣで検出された多量体、分解物、及びＩＥＣで検出されたメインピークの面積を自動分析法により測定し、その量（％）を求めた。量については、ＳＥＣで検出された多量体ピーク、分解物ピークの面積を自動分析法により測定し、メインピークを含む全ピーク面積の総和で除することにより、また、ＩＥＣで検出されたメインピークの面積を自動分析法により測定し、メインピーク以外を含む全ピーク面積の総和で除することにより、百分率（％）として規定される。ここでメインピークとは、活性本体のピークを指す。
　本実施例で得られたＳＥＣ、ＩＥＣの評価結果を図１－１、図１－２、図１－３に示す。ＳＥＣ多量体については、４０℃２週間保管品を除き、特に高ｐＨほど増加傾向となった（図１－１）。一方、ＳＥＣ分解物については、特に低ｐＨ側ほど増加傾向となった（図１－２）。ＩＥＣメインピークについては、ｐＨ５～６付近で最も減少が少なく、最安定となった（図１－３）。以上の結果を総合的に判断し、ｐＨ５～６付近が至適ｐＨであると確認できた。
《実施例２：アルギニンによる多量体の増加抑制効果》
　抗体Ａを含む液剤について、アルギニンによる多量体の増加抑制効果を評価した。
　本検討では、アルギニンの添加量が異なる試料Ｎｏ．Ｂ１～Ｎｏ．Ｂ４を調製した。各評価試料の処方は以下の表２－１の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　調製した表２－１の各試料について、スピンカラムを用いて濃縮し、Ｂ１－２～Ｂ１－４、Ｂ２－２～Ｂ２－４、Ｂ３－２～Ｂ３－４、Ｂ４－２～Ｂ４－４の各試料を調製した。各試料の処方は表２－２に示す通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
《比較例１》
　ニコチンアミド、マンニトール、トレハロース、グリシンを含む試料Ｎｏ．Ｂ５～Ｎｏ．Ｂ８を調製した。各評価試料の処方は以下の表２－３の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　調製した表２－３の各試料について、スピンカラムを用いて濃縮し、Ｂ５－２～Ｂ５－４、Ｂ６－２～Ｂ６－４、Ｂ７－２～７－４、Ｂ８－２～Ｂ８－４の各試料を調製した。各試料の処方は表２－４に示す通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　これらの各試料をサイズ排除クロマトグラフ法（ＳＥＣ）により評価した。分析条件は以下の通りである。
［サイズ排除クロマトグラフ法］
　ＨＰＬＣシステムにＧ３０００　ＳＷＸＬ　ＳＥＣ用カラム（東ソー）を接続し、１０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸、５００ｍｍｏｌ／Ｌ　ＮａＣｌ　ｐＨ６．８組成の移動相を０．５ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは、濃縮性検討では、蛋白質量換算で１００μｇとなる注入量とした。分析時間は３０分間、検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は３０℃、サンプル温度は２０℃に設定した。
　ＳＥＣで検出された多量体ピークの面積を自動分析法により測定し、その量（％）を求めた。量については、ＳＥＣで検出された多量体ピークの面積を自動分析法により測定し、メインピークを含む全ピーク面積の総和で除することにより、百分率（％）として規定される。ここでメインピークとは、活性本体のピークを指す。
　本実施例及び比較例で得られたＳＥＣの評価結果（多量体ピーク％の増加分）を図２に示す。アルギニンを含む処方（Ｂ２、Ｂ２－２～Ｂ２－４、Ｂ３、Ｂ３－２～Ｂ３－４、Ｂ４、Ｂ４－２～Ｂ４－４）においては、主薬濃度の増加に伴う多量体増加は顕著に抑制された。一方、アルギニンを含まない処方（Ｂ１、Ｂ１－２～Ｂ１－４）や、ニコチンアミド、マンニトール、トレハロース、グリシンを含む処方（Ｂ５、Ｂ５－２～Ｂ５－４、Ｂ６、Ｂ６－２～Ｂ６－４、Ｂ７、Ｂ７－２～Ｂ７－４、Ｂ８、Ｂ８－２～Ｂ８－４）においては、主薬濃度増加に伴う多量体増加は抑制されなかった。本結果より、アルギニンによる、主薬濃度増加時の多量体増加抑制効果を確認することができた。
　アルギニン濃度の違いによる、多量体増加抑制効果への影響は認められなかった（Ｂ２、Ｂ２－２～Ｂ２－４、Ｂ３、Ｂ３－２～Ｂ３－４、Ｂ４、Ｂ４－２～Ｂ４－４）。
《実施例３：アルギニン、ヒスチジン、ｐＨによるＨＩＣ親水性ピークの増加促進効果》
　抗体Ａを含む液剤について、アルギニン、ヒスチジン、ｐＨがＨＩＣ親水性ピークの増加に与える影響を評価した。
　本検討では、アルギニン、ヒスチジン、ｐＨの影響を評価するために、試料Ｎｏ．Ｃ１～Ｎｏ．Ｃ９の評価試料を調製した。各評価試料の処方は以下の表３－１の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　液剤の安定性を評価するために、各試料の保管安定性試験（５℃５ヶ月間保存）を行った。そして、保管後の抗体の品質を、疎水性相互作用クロマトグラフ法（ＨＩＣ）により評価した。分析条件は以下の通りである。
［疎水性相互作用クロマトグラフ法（ＨＩＣ）］
　ＨＰＬＣシステムにＰｒｏＰａｃ　ＨＩＣ－１０　ＨＩＣ用カラム（Ｄｉｏｎｅｘ）を２本接続し、移動相Ａラインに８００ｍｍｏｌ／Ｌ硫酸アンモニウム、２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸ナトリウム　ｐＨ７．０、移動相Ｂラインに２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸ナトリウム　ｐＨ７．０組成の移動相を接続し、０．８ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは移動相Ａで１ｍｇ／ｍＬに希釈し、５０μＬを注入した。表３－２のＨＩＣグラジエントプログラムを適用した。検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は３０℃、サンプル温度は２５℃に設定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　ＨＩＣで検出された、酸化体の指標である親水性ピークの面積を自動分析法により測定し、その量（％）を求めた。量については、ＨＩＣで検出された親水性ピークの面積を自動積分法により測定し、メインピークを含む全ピーク面積の総和で除することにより、百分率（％）として規定される。ここでメインピークとは、活性本体のピークを指す。
　本実施例で得られたＨＩＣの評価結果を表３－３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　アルギニン添加処方（Ｃ２、Ｃ４、Ｃ６、Ｃ７）においては、非添加（Ｃ３、Ｃ５）及びソルビトール添加処方（Ｃ８、Ｃ９）と比較して、ＨＩＣ親水性ピークの増加促進傾向が認められた。
　また、ｐＨ７．０のアルギニン添加処方（Ｃ６）においては、ｐＨ６．０のアルギニン添加処方（Ｃ４）と比較して、ＨＩＣ親水性ピークの増加促進傾向が認められた。
　また、ヒスチジン添加処方（Ｃ１）においては、リン酸添加処方（Ｃ３）と比較して、ＨＩＣ親水性ピークの増加促進傾向が認められた。
《実施例４：実験計画法による処方の検討》
　抗体Ａを含む液剤について、ｐＨ及びアルギニン濃度について、処方を検討した。
　本検討では、アルギニン及びｐＨの効果を評価するために、実験計画法に基づき、試料Ｎｏ．Ｄ１～Ｎｏ．Ｄ１８の評価試料を調製した。各評価試料の処方は以下の表４－１、表４－２の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　溶液製剤の安定性を評価するために、各試料の熱加速試験（４０℃１週間保存）を行った。そして、熱加速前後における抗体の純度を、サイズ排除クロマトグラフ法（ＳＥＣ）、イオン交換クロマトグラフ法（ＩＥＣ）、疎水性相互作用クロマトグラフ法（ＨＩＣ）により評価した。分析条件は以下の通りである。
［サイズ排除クロマトグラフ法（ＳＥＣ）］
　ＨＰＬＣシステムにＧ３０００　ＳＷＸＬ　ＳＥＣ用カラム（東ソー）を接続し、２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸、１ｍｏｌ／Ｌ　ＮａＣｌ　ｐＨ６．５組成の移動相を０．５ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは、蛋白質量換算で５０μｇとなる注入量とした。分析時間は４０分間、検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は３０℃、サンプル温度は５℃に設定した。
［イオン交換クロマトグラフ法（ＩＥＣ）］
　ＨＰＬＣシステムにＰｒｏｐａｃ　ＷＣＸ１０　ＩＥＣ用カラム（Ｄｉｏｎｅｘ）を接続し、移動相Ａラインに２５ｍｍｏｌ／Ｌリン酸　ｐＨ６．０、移動相Ｂラインに２５ｍｍｏｌ／Ｌリン酸、５００ｍｍｏｌ／Ｌ　ＮａＣｌ　ｐＨ６．０組成の移動相を接続し、１ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは移動相Ａで１ｍｇ／ｍＬに希釈し、１０μＬを注入した。分析時間は８０分間で、表４－３のＩＥＣグラジエントプログラムを適用した。検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は３５℃、サンプル温度は５℃に設定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
［疎水性相互作用クロマトグラフ法（ＨＩＣ）］
　ＨＰＬＣシステムにＰｒｏＰａｃ　ＨＩＣ－１０　ＨＩＣ用カラム（Ｄｉｏｎｅｘ）を２本接続し、移動相Ａラインに８００ｍｍｏｌ／Ｌ硫酸アンモニウム、２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸ナトリウム　ｐＨ７．０、移動相Ｂラインに２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸ナトリウム　ｐＨ７．０組成の移動相を接続し、０．８ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは移動相Ａで１ｍｇ／ｍＬに希釈し、５０μＬを注入した。表４－４のＨＩＣグラジエントプログラムを適用した。検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は３０℃、サンプル温度は２５℃に設定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
　ＳＥＣで検出された多量体、分解物、及びＩＥＣで検出されたメインピーク、及びＨＩＣで検出された親水性ピークの面積を自動分析法により測定し、その量（％）を求めた。量については、ＳＥＣで検出された多量体ピーク、分解物ピークの面積を自動分析法により測定し、メインピークを含む全ピーク面積の総和で除することにより、また、ＩＥＣで検出されたメインピークの面積を自動分析法により測定し、メインピーク以外を含む全ピーク面積の総和で除することにより、また、ＨＩＣで検出された親水性ピークの面積を自動積分法により測定し、メインピークを含む全ピーク面積の総和で除することにより、百分率（％）として規定される。ここでメインピークとは、活性本体のピークを指す。
　本実施例で得られたＳＥＣ、ＩＥＣ、ＨＩＣの評価結果を表４－５に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
　また、本結果をもとに要因スクリーニングの統計解析を行い、実験計画法ソフトウェアであるＤｅｓｉｇｎ－Ｅｘｐｅｒｔ（Ｓｔａｔ－Ｅａｓｅ，Ｉｎｃ．製品）を用いて、各指標の寄与度を示すｐ値を算出した結果を表４－６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
　本結果より、安定性指標であるＳＥＣ、ＩＥＣ、ＨＩＣの全評価項目につき、安定化効果に寄与の大きかったアルギニン濃度、ｐＨについて、実験計画法ソフトウェアであるＤｅｓｉｇｎ－Ｅｘｐｅｒｔ（Ｓｔａｔ－Ｅａｓｅ，Ｉｎｃ．製品）を用いて、満足度を最大化する範囲を解析した結果を図３－１（リン酸添加処方群）、図３－２（ヒスチジン添加処方群）に示す。
　本結果より、リン酸添加処方においてはｐＨ５．５～５．７、アルギニン濃度０（但し、無添加を除く）～２１０ｍｍｏｌ／Ｌ、ヒスチジン添加処方においてはｐＨ５．３～６．０、アルギニン濃度０（但し、無添加を除く）～２１０ｍｍｏｌ／Ｌの範囲において、安定であることが示唆された。
《実施例５：界面活性剤による不溶性微粒子の生成抑制》
　抗体Ａを含む液剤について、界面活性剤による、ストレス負荷後の不溶性微粒子の生成抑制効果を評価した。
　本検討では、界面活性剤であるポリソルベート８０、ポリソルベート２０、ポロキサマー１８８（プルロニック　Ｆ６８）の効果を評価するために、試料Ｎｏ．Ｅ１～Ｎｏ．Ｅ１８の評価試料を調製した。各評価試料の処方は以下の表５－１、表５－２の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000017
　液剤の安定性を評価するために、各試料のストレス負荷試験を実施した。各試料に対し、－８０℃⇔５℃サイクルの凍結融解を３回実施後、１５０ｒｐｍ　２４時間の振とうを加え、１，０００ｌｕｘ　２４時間の条件で保管を実施した。そして、ストレス負荷後における試料中の不溶性微粒子数を、光遮蔽粒子計数法により評価した。
［光遮蔽粒子計数法］
　１．５ｍＬプラスチックチューブに０．７ｍＬのサンプルを入れ、真空乾燥機で２５℃　７５Ｔｏｒｒの条件で２時間脱気した。脱気後、ＨＩＡＣラボ型液中パーティクルカウンターを用いて、Ｔａｒｅボリュームを０．２ｍＬ、Ｓａｍｐｌｉｎｇボリュームを０．２ｍＬ、Ｒｕｎ回数を２回（但し、最初の測定は破棄）に設定し、測定を実施した。
　また、界面活性剤濃度及び主薬濃度が蛋白質へ与える影響を評価するため、試料Ｅ１～Ｅ１０については、試料を２５℃で４週間保管し、保管後のサンプルを用いて疎水性相互作用クロマトグラフ法（ＨＩＣ）による評価を行った。
［疎水性相互作用クロマトグラフ法（ＨＩＣ）］
　ＨＰＬＣシステムにＰｒｏＰａｃ　ＨＩＣ－１０　ＨＩＣ用カラム（Ｄｉｏｎｅｘ）を２本接続し、移動相Ａラインに８００ｍｍｏｌ／Ｌ硫酸アンモニウム　２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸ナトリウム　ｐＨ７．０、移動相Ｂラインに２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸ナトリウム　ｐＨ７．０組成の移動相を接続し、０．８ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは移動相Ａで１ｍｇ／ｍＬに希釈し、５０μＬを注入した。表５－３のＨＩＣグラジエントプログラムを適用した。検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は３０℃、サンプル温度は２５℃に設定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000018
　ＨＩＣで検出された親水性ピークの面積を自動分析法により測定し、その量（％）を求めた。量については、ＨＩＣで検出された親水性ピークの面積を自動積分法により測定し、メインピークを含む全ピーク面積の総和で除することにより、百分率（％）として規定される。ここでメインピークとは、活性本体のピークを指す。
　本実施例で得られた、不溶性微粒子数の評価結果を表５－４に示す。界面活性剤の添加の有無にかかわらず、ストレス負荷後の不溶性微粒子数の増加が認められたが、界面活性剤を添加した全試料において、不溶性微粒子数の増加は抑制された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000019
　本実施例で得られた、ＨＩＣの評価結果を図４－１及び図４－２に示す。ポリソルベート８０を含む試料については、ポリソルベート８０濃度の増加に伴い、ＨＩＣ親水性ピークの増加傾向が認められた。一方、主薬濃度３０ｍｇ／ｍＬの試料（図４－２）については、主薬濃度１０ｍｇ／ｍＬの試料（図４－１）と比較して、ＨＩＣ親水性ピークの増加が抑制された。
《実施例６：アルギニンによる粘度の低減》
　抗体Ａを含む液剤について、アルギニンによる粘度の低減効果を評価した。
　本検討では、液剤の粘度におけるアルギニンの効果を評価するために、試料Ｎｏ．Ｆ１～Ｎｏ．Ｆ１２の評価試料を調製した。各評価試料の処方は以下の表６－１の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000020
《比較例２》
　アルギニン及びｐＨの効果を評価するため、アルギニン非添加（試料Ｎｏ．Ｆ１３～Ｎｏ．Ｆ２７）及び低ｐＨ（試料Ｎｏ．Ｆ１９～Ｎｏ．Ｆ２１）の評価試料を調製した。各評価試料の処方は以下の表６－２の通りである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000021
　調製した表６－１及び表６－２の各試料について、粘度を動的光散乱法（ＤＬＳ）により評価した。
［動的光散乱法（ＤＬＳ）］
　ＤｙｎａＰｒｏ　Ｐｌａｔｅｒｅａｄｅｒ（Ｗｙａｔｔ）を用いて、５０、６０、６５、７０、７５％グリセリン溶液にポリスチレン粒子を添加して得られたみかけの粒子半径から、粘度－みかけの粒子半径のスタンダード・カーブを作成した。その後、高濃度サンプルにポリスチレン粒子を添加してみかけの半径を測定し、グリセリン溶液のスタンダード・カーブから粘度を算出した。
　粘度の範囲としては、１０００ｍＰａ・ｓ以下、好適には１００ｍＰａ・ｓ以下、さらに好適には２０ｍＰａ・ｓ以下に制御されることが望ましい。
　本実施例及び比較例で得られた、粘度の評価結果を表６－３及び図５に示す。アルギニンを添加した試料については、主薬濃度の増加に伴う粘度の増加は抑制されていた。
　一方で、ｐＨによる粘度への影響は認められなかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000022
《実施例７：安定性評価》
　抗体Ａを含む液剤について、安定性を評価した。評価試料の処方は以下の表７－１の通りである。評価試料は、培養及び精製後に当該処方へ緩衝液交換された蛋白質薬液を、表７－１に記載の処方から抗体Ａを除いた成分を含む溶液で希釈調製した後、０．２２μｍフィルターでろ過し、ガラスバイアルへ充填後、打栓及び巻き締めを行うことで調製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000023
　液剤の安定性を評価するために、各試料の保管安定性試験（－２０℃１２箇月及び５℃１２箇月）を行った。そして、保管前後における抗体の品質を、サイズ排除クロマトグラフ法（ＳＥＣ）、イオン交換クロマトグラフ法（ＩＥＣ）、疎水性相互作用クロマトグラフ法（ＨＩＣ）により評価した。分析条件は以下の通りである。
［サイズ排除クロマトグラフ法（ＳＥＣ）］
　ＨＰＬＣシステムにＴＳＫ　ｇｕａｒｄ　ｃｏｌｕｍｎ　ＳＷＸＬ（東ソー）１本及びＧ３０００　ＳＷＸＬ　ＳＥＣ用カラム（東ソー）２本を連結して接続し、２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸、１ｍｏｌ／Ｌ　ＮａＣｌ　ｐＨ６．５組成の移動相を０．５ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは、蛋白質量換算で５０μｇとなる注入量とした。分析時間は６０分間、検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は３０℃、サンプル温度は５℃に設定した。
［イオン交換クロマトグラフ法（ＩＥＣ）］
　ＨＰＬＣシステムにＭａｂPａｃ　ＳＣＸ１０　ＩＥＣ用カラム（Ｔｈｅｒｍｏ）を接続し、移動相Ａラインに２５ｍｍｏｌ／Ｌ　ＭＥＳ　ｐＨ６．０、移動相Ｂラインに２５ｍｍｏｌ／Ｌ　ＭＥＳ、５００ｍｍｏｌ／Ｌ　ＮａＣｌ　ｐＨ６．０組成の移動相を接続し、１ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは移動相Ａで１ｍｇ／ｍＬに希釈し、１０μＬを注入した。分析時間は７０分間で、表７－２のＩＥＣグラジエントプログラムを適用した。検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は３５℃、サンプル温度は５℃に設定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000024
［疎水性相互作用クロマトグラフ法（ＨＩＣ）］
　ＨＰＬＣシステムにＰｒｏＰａｃ　ＨＩＣ－１０　ＨＩＣ用カラム（Ｄｉｏｎｅｘ）を２本接続し、移動相Ａラインに８００ｍｍｏｌ／Ｌ硫酸アンモニウム、２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸ナトリウム　ｐＨ７．０、移動相Ｂラインに２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸ナトリウム　ｐＨ７．０組成の移動相を接続し、０．８ｍＬ／ｍｉｎの流速で流した。サンプルは移動相Ａで１ｍｇ／ｍＬに希釈し、５０μＬを注入した。表７－３のＨＩＣグラジエントプログラムを適用した。検出はＵＶ２８０ｎｍで実施した。カラム温度は３０℃、サンプル温度は２５℃に設定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000025
　ＳＥＣで検出された多量体、分解物、及びＩＥＣで検出されたメインピーク、ＨＩＣで検出された親水性ピークの面積を自動分析法により測定し、その量（％）を求めた。量については、ＳＥＣで検出された多量体ピーク、分解物ピークの面積を自動分析法により測定し、メインピークを含む全ピーク面積の総和で除することにより、また、ＩＥＣで検出されたメインピークの面積を自動分析法により測定し、メインピーク以外を含む全ピーク面積の総和で除することにより、また、ＨＩＣで検出された親水性ピークの面積を自動積分法により測定し、メインピークを含む全ピーク面積の総和で除することにより、百分率（％）として規定される。ここでメインピークとは、活性本体のピークを指す。
　本実施例で得られたＳＥＣ、ＩＥＣ、ＨＩＣの評価結果を表７－４に示す。本処方において、－２０℃１２箇月及び５℃１２箇月保管品いずれも、各指標における品質は好適な範囲内であり、本処方が安定であることを確認できた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000026
　本発明によれば、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有してなる、安定な医薬組成物、詳細には、脱アミド体や酸化体など化学修飾体、又は分解物や多量体の生成を抑制してなる、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する、安定な医薬組成物を提供することができる。
　以上、本発明を特定の態様に沿って説明したが、当業者に自明の変法や改良は本発明の範囲に含まれる。
　以下の配列表の数字見出し＜２２３＞には、「Ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ　Ｓｅｑｕｅｎｃｅ」の説明を記載する。配列表の配列番号２及び４で示される塩基配列は、それぞれ抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の重鎖及び軽鎖の塩基配列であり、配列番号１及び３で示されるアミノ酸配列は、それぞれ配列番号２及び４によりコードされる重鎖及び軽鎖のアミノ酸配列である。

Claims (19)

  1. 　抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体、製薬学的に許容される緩衝剤、アルギニン又はその製薬学的に許容される塩、及び界面活性剤を含有してなり、該抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体として、以下の（１）及び／又は（２）を含有する、安定な医薬組成物：
    （１）配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体、
    （２）（１）の抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の翻訳後修飾により生じた抗体のアミノ酸配列からなる、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体。
  2. 　製薬学的に許容される緩衝剤が、リン酸、クエン酸、酢酸、コハク酸、ヒスチジン、アスコルビン酸、グルタミン酸、乳酸、マレイン酸、トロメタモール、及びグルコン酸からなる群より選択される１種又は２種以上である、請求項１に記載の医薬組成物。
  3. 　製薬学的に許容される緩衝剤が、リン酸である、請求項１又は２に記載の医薬組成物。
  4. 　製薬学的に許容される緩衝剤の濃度が、５～１００ｍｍｏｌ／Ｌである、請求項１～３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  5. 　医薬組成物が液剤又は凍結乾燥製剤若しくは噴霧乾燥製剤である、請求項１～４のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  6. 　医薬組成物が液剤である、請求項５に記載の医薬組成物。
  7. 　医薬組成物が液剤である場合、該液剤のｐＨが５～６である、あるいは、凍結乾燥製剤又は噴霧乾燥製剤である場合、該製剤が水により再溶解されるとき、該溶解液のｐＨが５～６である、請求項５に記載の医薬組成物。
  8. 　医薬組成物が液剤であり、該液剤のｐＨが５～６である、請求項７に記載の医薬組成物。
  9. 　アルギニン又はその製薬学的に許容される塩の濃度が、７００ｍｍｏｌ／Ｌ以下である、請求項１～８のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  10. 　界面活性剤が、ポリソルベート及びポロキサマー１８８からなる群より選択される１種又は２種以上である、請求項１～９のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  11. 　界面活性剤がポリソルベート８０である、請求項１～１０のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  12. 　界面活性剤の量が、０．００１～１％（ｗ／ｖ）である、請求項１～１１のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  13. 　界面活性剤の量が、０．０１～０．２％（ｗ／ｖ）である、請求項１～１２のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  14. 　医薬組成物が液剤である場合、抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の量が、０．００７～２ｍｍｏｌ／Ｌである、あるいは、凍結乾燥製剤又は噴霧乾燥製剤である場合、該製剤が水により再溶解されるとき、該溶解液の抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の量が、０．００７～２ｍｍｏｌ／Ｌである、請求項５～１３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  15. 　医薬組成物を保存するとき、分解物及び多量体が各１０％以下、又は、化学修飾体が５０％以下である、請求項１～１４のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  16. 　配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する、請求項１に記載の医薬組成物。
  17. 　配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体の翻訳後修飾により生じた抗体のアミノ酸配列からなる抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する、請求項１に記載の医薬組成物。
  18. 　配列番号１のアミノ酸番号１から４４７までのアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する、請求項１に記載の医薬組成物。
  19. 　配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体、並びに、配列番号１のアミノ酸番号１から４４７までのアミノ酸配列からなる重鎖及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含む抗ヒトＴＳＬＰ受容体抗体を含有する、請求項１に記載の医薬組成物。
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