WO2016175672A9 - Método, sequências, composições e estojo para detecção de mutações no promotor do gene htert - Google Patents

Método, sequências, composições e estojo para detecção de mutações no promotor do gene htert Download PDF

Info

Publication number
WO2016175672A9
WO2016175672A9 PCT/PT2016/050007 PT2016050007W WO2016175672A9 WO 2016175672 A9 WO2016175672 A9 WO 2016175672A9 PT 2016050007 W PT2016050007 W PT 2016050007W WO 2016175672 A9 WO2016175672 A9 WO 2016175672A9
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
seq
mutations
composition
dna
gene promoter
Prior art date
Application number
PCT/PT2016/050007
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2016175672A1 (pt
Inventor
Ana Paula SOARES DIAS FERREIRA
Hugo João MARQUES PRAZERES
Catarina Miguel ALVES SALGADO
Rui Pedro MONTEIRO BATISTA
João Pedro RICO DE OLIVEIRA VINAGRE
Original Assignee
Ipatimup ( Instituto De Patologia E Imunologia Molecular Da Universidade Do Porto)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ipatimup ( Instituto De Patologia E Imunologia Molecular Da Universidade Do Porto) filed Critical Ipatimup ( Instituto De Patologia E Imunologia Molecular Da Universidade Do Porto)
Priority to BR112017023109-3A priority Critical patent/BR112017023109A2/pt
Priority to AU2016256302A priority patent/AU2016256302B2/en
Priority to RU2017141563A priority patent/RU2720257C2/ru
Priority to US15/569,964 priority patent/US20180155793A1/en
Priority to DK16732356.7T priority patent/DK3301186T3/da
Priority to ES16732356T priority patent/ES2873049T3/es
Priority to CA2984516A priority patent/CA2984516C/en
Priority to EP16732356.7A priority patent/EP3301186B1/en
Priority to CN201680038603.8A priority patent/CN109790580A/zh
Publication of WO2016175672A1 publication Critical patent/WO2016175672A1/pt
Publication of WO2016175672A9 publication Critical patent/WO2016175672A9/pt

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/65—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression using markers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6883—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material
    • C12Q1/6886—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material for cancer
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/52—Genes encoding for enzymes or proenzymes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6806—Preparing nucleic acids for analysis, e.g. for polymerase chain reaction [PCR] assay
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/156—Polymorphic or mutational markers

Definitions

  • the present invention relates to an ultrasensitive method of detecting c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Utert gene promoter, reaction compositions comprising primers for amplification and probes for genotyping whose The sequences, SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 6, are designed to have high specificity for such mutations, as well as a kit comprising such compositions for carrying out said method.
  • the present invention can be advantageously used to detect trace amounts of said C.-1240T and C.-1460T mutations present in in vitro biological samples due to the high method sensitivity and specificity of the created genetic sequences, thus allowing early detection, identification, detection of recurrence or prediction and monitoring of pathologies associated with this type of mutation, such as bladder, thyroid, epidermoid, basal cell carcinoma, melanoma, gliomas and hepatocarcinomas, among others and possibly as a basis for defining treatment appropriate.
  • the present invention is in the technical field of medicine, pharmaceuticals, molecular biology, biochemistry, human genetics and the like.
  • Somatic mutations which occur during DNA replication preceding a mitotic division, are the cause of certain human pathologies, in particular certain types of cancers.
  • the presence of telomerase enzyme was found in a high percentage of tumor lines, about 75-80%.
  • Recently, recurrent mutations have been identified in the promoter of the gene encoding this enzyme, the TERT gene, namely mutations at positions c.-124C> T and C.-1460T (from ATG). These mutations were associated with different neoplasms such as central nervous system (43-51%), bladder (59-66%), hepatocellular carcinoma (59%), thyroid (10%), skin (29% -73 melanoma) %, BCC 73% and SCC 45%) and GISTs (4%) [1-7].
  • telomerase promoter mutations are present at a relatively high frequency in certain cancers makes them potential biomarkers for early detection, diagnosis, prognosis, recurrence detection, or prediction / monitoring of tumor therapy response such as gliomas. and glioblastomas, bladder, hepatocellular, thyroid, squamous cell, basal cell, melanoma, among others.
  • tumor therapy response such as gliomas. and glioblastomas, bladder, hepatocellular, thyroid, squamous cell, basal cell, melanoma, among others.
  • somatic mutations at the c.-124C> T and c.-146C> T from ATG
  • positions of the telomerase gene have a prevalence of up to 85% and, together with mutations R248C and S249C in the FGFR3 gene [9] are the most reliable biomarkers for bladder cancer.
  • the method for detecting mutations at positions c-124 C> T and c-146 (a from ATG) of the telomerase gene should have high analytical sensitivity to detect trace amounts of mutated alleles, even when they are "diluted” in a sample with greater abundance of "wild-type" alleles.
  • WO2015153808 discloses methods and compositions useful in detecting certain pathologies, particularly carcinogens, more specifically thyroid cancer, related to mutations at positions c-124 C> T and c-146 of the TERT gene.
  • the nucleotide sequences disclosed herein are used for detection of said mutations by sequence-dependent direct amplification methods and have limited sensitivity when the presence of normal sequences is very abundant with respect to mutant sequences.
  • they are susceptible to the occurrence of non-specific amplification, so that they do not present high specificity for this type of mutation, which in general makes the respective method not sensitive and specific enough.
  • WO2014160834 discloses methods and compositions useful in detecting and treating different types of thyroid cancer, related to mutations at positions c-124 OT and c-146 of the TER gene.
  • the disclosed nucleotide sequences are also not highly sensitive when the presence of normal sequences is very abundant with respect to mutant sequences as the proposed method for using the sequences disclosed herein is based on DNA sequencing using "Big Dye”.
  • Applied Biosystems terminator v3.1 cycle sequencing ready kit and an ABI PRISM 3730 "equipment, which has limited sensitivity in detecting rare reaction alleles.
  • the presence of the mutation has to be confirmed by both sense and antisense sequencing, which makes the method impractical and laborious and applicable only to thyroid cancers.
  • the present invention proposes an ultrasensitive method that allows detection of the c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter by designing primers and probes whose sequences are specific for this purpose.
  • the present invention relates to a set of primer and probe sequences (SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 6) for DNA amplification and hybridization of biological samples which have been designed to have high specificity in detecting c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter according to claim 1.
  • primers and genetic probes having high specificity in detecting said mutations allow to be used in a high sensitivity method for detecting such mutations.
  • the present invention also relates to compositions for DNA amplification and hybridization by Polymerase Chain Reaction (PCR) techniques comprising said sequences. primers and genetic probes according to claim 2.
  • PCR Polymerase Chain Reaction
  • compositions are applicable for detecting c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter and may be advantageously pre-prepared or prepared at the time of carrying out the detection method of the invention.
  • compositions for detecting c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter which comprise the compositions for PCR and additionally human DNA from a biological sample to be tested for such. mutation according to claim 7.
  • the amount of DNA sample to be tested can be quite low, given the high specificity of the primers and probes of the present invention designed for this purpose.
  • kits comprising primer compositions and gene probes specific for detecting pre-prepared c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter according to the invention. claim 9.
  • This kit has the advantage of developing an ultra-sensitive in vitro method of detecting c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter, quickly and reliably by adding a human DNA sample. to be tested for detection of said mutation.
  • Another aspect of the present invention relates to a method for in vitro detection of c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter, which uses reaction compositions comprising primers for amplification and probes for genotyping whose sequences are specific for these mutations according to claim 11.
  • This method can be advantageously used to detect trace amounts of said C.-1240T and C.-1460T mutations present in biological samples because of their high sensitivity, conferred by the genetic sequences designed for this purpose and which have high specificity for this type of mutation. .
  • the present invention may be applied in the early detection, identification, recurrence detection or prediction and monitoring of conditions associated with such mutations, such as bladder, thyroid, epidermoid, basal cell carcinoma, melanoma, gliomas and hepatocarcinomas. , among others and possibly serve as a basis for the definition of appropriate treatment.
  • another aspect of the present invention relates to a method of treatment wherein an appropriate amount of an Htert gene promoter inhibitor is administered to an individual who tests positive when the biological sample has tested positive for mutation detection and -124 c> t and / or c-146 c> t in the Htert gene promoter of the present invention according to claim 15.
  • the present invention relates to a method for in vitro detection of c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter.
  • Said method utilizes reaction compositions comprising primers for amplification and probes for genotyping whose sequences (SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 6) are specific for these mutations.
  • sequences of primers for amplification and probes for genotyping are created to construct the bases for said amplification reaction, e.g. a Real Time PCR (RT-PCR) or Digital Time PCR assay.
  • RT-PCR Real Time PCR
  • Six primer and probe sequences were created as shown in the sequence list. This comprises the sequences for the following purposes: a) Detection of the -124 base localized mutation upstream of the hTERT gene ATG
  • each oligonucleotide (controlled pore glass or polystyrene) functionalized with the first base of the 3 'end of each oligonucleotide.
  • the preparation of each oligonucleotide then follows a set of synthesis cycles, each composed of chemical reactions, typically four chemical reactions: i) unlocking
  • fluorophores such as FAM, Yakima yellow, quencher (TAMRA), etc. known to the person skilled in the art for multiplex PCR amplification and hybridization reactions.
  • fluorophores such as FAM, Yakima yellow, quencher (TAMRA), etc. known to the person skilled in the art for multiplex PCR amplification and hybridization reactions.
  • suitable fluorophores within the scope of the present invention are for example compounds known as Alexa Fluor, FAM, TET, JOE, VIC, HEX, Cy3, ATTO 550, TAMRA, ROX, Cy5, Cy5.5.
  • Nucleotides refer to nucleotides of natural or synthetic origin, capable of base pairing hybridization to complementary nucleotides, and may include, without limitation, DNA, RNA, as well as nucleotide analogs (e.g., closed-stranded nucleic acids, known as "locked nucleic acids” (LNA) or nucleotides without phosphodiester-like inter-nucleotide bonds (for example peptide nucleic acids - PNAs) or thiodiester-linked nucleic acids, or the like for the same purpose.
  • LNA locked nucleic acids
  • DNA amplification and hybridization compositions were prepared by the addition of commercially available PCR reagent solutions with different nucleotides having the sequences SEQ ID Nr. 1 to SEQ ID nr.6 at different concentrations, and with bi-distilled water and bi-deionized water.
  • PCR reagent solutions to be used vary with the type of amplification reaction desired.
  • suitable PCR reagent solutions for carrying out the present invention are for example the "TaqMan® Universal PCR Master Mix” solution from Thermofesscher Scientific or similar solutions for the purpose of DNA amplification and hybridization.
  • Probe concentrations refer to the molar concentration in the solution, corresponding to the number of moles of each probe per volume of solution, where nanoMolar (nM) corresponds to 1x10 9 moles per liter.
  • PCR compositions were prepared comprising various combinations of different probe concentrations with the sequences SEQ ID NO: 3 to SEQ ID NO: 6.
  • probes whose sequences are defined by SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4 are designed for the specific detection of the c-124 c> t mutation in the Htert gene promoter, while the probes with SEQ ID no. 5 and SEQ ID no. 6 are designed for the specific detection of the c-146 c> t mutation in the Htert gene promoter.
  • the PCR compositions of the invention may comprise only one or both of the above-mentioned probe sets, i.e. the PCR compositions of the invention may comprise only the probes with SEQ ID no. 3 and SEQ ID NO: 4 (set C-124), probes with probes with SEQ ID NO: 5 and SEQ ID no.6 (set C-146) or with all probes with SEQ ID NO: 3 SEQ ID NO: 6 (sets C-124 + set C-146).
  • compositions of the invention comprise only one probe set, set C-124 or set C-146, then they are specific for detecting only the respective mutation c-124 c> t or c-146 c> t. In the event that both probe sets are present in the PCR compositions, then these compositions are specific for detection of both mutations c-124 c> te c-146 Ot.
  • the concentration of the nucleotide probes of the present invention is adjusted in the PCR solutions to promote the sensitivity of the method of the invention in detecting said mutations.
  • the final concentration of each probe is adjusted to 400 to 1600nM, more preferably to a final concentration of 800 to 1600nM and in a preferred embodiment of the invention the final concentration values of each probe is approximately 1600nM.
  • the PCR compositions comprise the following probe concentrations of SEQ ID NO: 3 to SEQ ID NO: 6: i) from 250nM to 500nM of SEQ ID NO: 3, from 400nM to 1600nM of SEQ. ID nr.4, from 250nM to 500nM of SEQ ID Nr. 5 and from 400nM to 1600nM of SEQ ID Nr. 6, or ii) from 250nM to 500nM of SEQ ID nr.3, from 800nM to 1600nM of SEQ ID nr. 4, from 250nM to 500nM of SEQ ID NO: 5 and from 800nM to 1600nM of SEQ ID NO: 6.
  • compositions of the reaction mixtures for detecting c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter were prepared by adding DNA from the biological sample to be tested to the aforementioned PCR compositions.
  • Test DNA can be obtained from tissue, urine, circulating, germinal, or other biological sources using common methods known in the art, such as QIAamp® marketed by Qiagen or similar methods.
  • the amount of DNA to be tested may be present in the composition for detecting c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter at concentrations below 500ng, below 100ng, 50ng and above 1ng. Said adjustment in the concentration of the probes used is intended to enhance the analytical sensitivity of the method of the present invention, inferred by the minimum number of mutant alleles (ADN-MUT) detected relative to the number of wild-type alleles (ADN-WT). Increasing analytical sensitivity is assumed to result from increasing probe concentrations used in the reaction by favoring amplification of the mutated allele.
  • the amplification and hybridization efficiency of the wild-type allele was reduced as a means of maintaining the reaction balance as far as possible in favor of amplifying the mutated allele.
  • the method of the present invention comprises the steps of: i) preparing one of a composition for detecting c-124 c> t and / or c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter as described above; ii) promoting contact of DNA extracted from a biological sample to be tested for said mutation with a PCR amplification and hybridization composition as described above; iii) DNA amplification and hybridization of the composition sample for detection of c-124 c> te / or c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter by PCR reaction, Real Time PCR or Time PCR Digital or PCR Multiplex reaction, and iv) analysis of the amplification curves thus obtained.
  • the method of the present invention is useful for detecting trace amounts of C.-1240T and C.-1460T mutations in various biological fluids, for example urine, plasma, cerebrospinal fluid, aspiration cytology, among others, having DNA obtained from these as input. different sources.
  • the advantage is that a determination can be made from a less invasive sample type without having to resort to biopsy or surgery.
  • the method of the present invention may further be applied in the detection of other cancers in which TERT gene mutations are present and for other clinical purposes.
  • An example of this is by analyzing fine-needle aspirate from thyroid nodules for the purpose and providing useful prognostic information for deciding the need for ablative treatment or extension of ganglion dissection.
  • Another application example of the present invention relates to the early detection, diagnosis, prognosis, recurrence detection or prediction / monitoring of response to therapy of tumors such as gliomas and glioblastomas, bladder, hepatocellular, thyroid, squamous cell carcinomas , basal cells, melanoma, among others.
  • the present invention may further be useful in the analysis of tumor tissue or circulating DNA in the context of "liquid biopsy" for eventual selection and treatment of candidate patients, prediction of treatment response and monitoring of their treatment with, for example Telomerase inhibitors. or tert gene promoter.
  • Figure 1 Demonstration of assay ability to detect TERTp c-124 OT mutation.
  • the assay is specific for detecting alleles at position -124.
  • the performance of the assay is confirmed by performing analyzes for detection of c-124 OT mutation in c-124 OT mutation heterozygous DNA samples (HET124 DNA) and wild-type cases (W DNA).
  • the results show that the mutated allele-specific probe (Probe -124T) generates a signal in the HET-124 DNA sample and not in the WT DNA sample and that the probe for the wild-type allele (Probe-124C) generates an amplification signal in both samples.
  • the assay is specific for detecting alleles at position -146.
  • Assay performance for mutation detection c. -146 OT is confirmed by analysis of heterozygous DNA samples for the c-146 OT mutation (HET146 DNA) and wild-type cases (WT DNA).
  • the results show that the mutated allele-specific probe (Probe -146T) generates a signal in the HET-146 DNA sample and not in the WT DNA sample and that the probe for the wild-type allele (Probe-146C) generates an amplification signal in both samples.
  • Fig. 3-A A heterozygous DNA sample for the TERTp - 1460T mutation is not amplified by the -124T Probe and the only probe to emit fluorescence is in fact the 124C Probe (which corresponds to the "Wild-Type" allele at -124)
  • a heterozygous DNA sample for the TERTp -1240T mutation is not amplified by the -146T Probe and the only probe to emit fluorescence is in fact the Probe-146C (which corresponds to the Wild-Type allele). "at position -146).
  • Figure 4 Evaluation of analytical sensitivity for detection of -124T (A) and -146T (B) alleles under conditions that mimic DNA samples derived from biological fluids, where reduced amounts of mutated alleles exist in a global context where wild alleles predominate.
  • -type ". C.-1240T mutated DNA samples or C.-1460T mutated samples "successively diluted" in wild-type DNA samples were used.
  • Figure 5 Enhancement of analytical sensitivity in detecting the -125T (A) and -146T (B) alleles.
  • Figure 6 Evaluation of analytical sensitivity for detection of the -124T (A) and -146T (B) alleles when increasing the probe concentration for the mutated allele and reducing the probe concentration used for the wild-type allele. This change in the relative composition of probes results in increased analytical sensitivity.
  • This figure shows the increased efficiency and sensitivity in detecting the -124T and -146T mutated alleles: the minimum detection values were 1.56% for the -124T allele and 0.78% for allele -146T).
  • Figure 7 Demonstration of the ability of the assay to detect TERTp C.-124 OT and c-1460T mutations in urine samples from bladder cancer patients.
  • the detection of c-124 OT mutation or c-146 OT mutation can be detected in urine samples.
  • the results show that in such specimens obtained from bladder cancer patients, mutated alleles for the -124 (A) or -146 (B) mutation are detected, as well as signals for the corresponding "wild" alleles. -type ".
  • Probe concentration was adjusted to 400 to 1600nM by diluting the lyophilized preparation in bi-distilled water and bi-deionized water.
  • PCR reaction compositions comprising a nucleotide mixture according to the sequences SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 6, at different concentrations (such as 400nM, 800nM, 1600nM), and as described below. .
  • solutions with alternative probe concentration for the wild-type allele eg 250nM, 500nM were also prepared.
  • Oligonucleotide with the sequence: SEQ ID no. 1 at a concentration of 900nM;
  • Oligonucleotide with the sequence: SEQ ID no. 2, at a concentration of 900 nM;
  • Oligonucleotide probe with the sequence: SEQ ID nr. 3 at a concentration of 250nM, containing modifications such as the compound known as YAKIMA YELLOW® and tetramethyl rhodamine (TAMRA) at the 5 'and 3' ends, respectively;
  • Oligonucleotide probe with the sequence: SEQ ID nr. 4, at a concentration of 1600nM, containing modifications, as per example 6-carboxy-fluorescein (6-FAM) and tetra-methyl rhodamine (TAMRA) at the 5 'and 3' ends, respectively;
  • 6-FAM 6-carboxy-fluorescein
  • TAMRA tetra-methyl rhodamine
  • composition was prepared similarly to composition Ia but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ ID no. 4, present at a concentration of 800nM.
  • composition was prepared similarly to composition Ia but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ ID no. 4, present at a concentration of 400nM.
  • composition was prepared similarly to composition Ia but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ ID no. 3, present at a concentration of 500nM.
  • Oligonucleotide with sequence: SEQ ID no. 1 a final concentration of 900nM;
  • Oligonucleotide with sequence: SEQ ID no. 2 a concentration of 900 nM;
  • Oligonucleotide probe with the sequence: SEQ ID no. 5, a concentration of 250nM, containing modifications, at the 5 'and 3' ends;
  • Oligonucleotide probe with the sequence: SEQ ID no. 6, a concentration of 1600nM, containing modifications at the 5 'and 3' ends;
  • composition was prepared similarly to composition I but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ no. 6, present at a concentration of 800nM.
  • composition was prepared similarly to composition I but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ no. 6, present at a concentration of 400nM.
  • composition was prepared similarly to the composition but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ no. 5, present at a concentration of 500nM.
  • Oligonucleotide with the sequence: SEQ ID no. 1 at a final concentration of 900nM;
  • Oligonucleotide with the sequence: SEQ ID no. 2 at a concentration of 900 nM;
  • Oligonucleotide probe with the sequence: SEQ ID no. 3 at a concentration of 250nM, containing modifications at the 5 'and 3'ends;
  • Oligonucleotide probe with the sequence: SEQ ID no. 6 at a concentration of 1600nM containing modifications at the 5 'and 3' ends;
  • composition was prepared similarly to composition IIIa but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ ID no. 4, present at a concentration of 800nM.
  • composition was prepared similarly to composition IIIa but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ ID no. 4, present at a concentration of 400nM.
  • composition was prepared similarly to composition IIIa but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ ID no. 6, present at a concentration of 800nM.
  • composition was prepared similarly to composition IIIa but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ ID no. 6, present at a concentration of 400nM.
  • composition was prepared similarly to composition Ia but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ ID no. 3, present at a concentration of 500nM.
  • composition was prepared similarly to composition Ia but the oligonucleotide probe having the sequence: SEQ ID no. 5, present at a concentration of 500nM.
  • oligonucleotide probe having the sequence: SEQ ID no. 5, present at a concentration of 500nM.
  • compositions of the reaction mixtures for detecting c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter were prepared by adding DNA from the biological sample to be tested, about 100 ⁇ g of DNA, (a combination of smaller amount, for example from 1 ng to 500ng) to the above PCR compositions, the concentration of the probes having the sequences SEQ ID nr.3 to SEQ ID nr.6 adjusted to 400 to 1600nM as described in the previous example. Detection compositions were thus prepared with C.-1240T mutated DNA samples or C.-1460T mutated samples "successively diluted" in wild-type DNA samples.
  • compositions for detection for comparative purposes were prepared by adding DNA from the biological sample to be tested to comparative solutions from the previous example.
  • Example 4 Method for detecting c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter
  • cell line DNA or formalin-fixed, paraffin-embedded, tumor-tissue DNA was used.
  • the detection compositions of the previous example were subjected to Real Time PCR and Digital Time PCR amplification and hybridization processes.
  • the compositions were also subjected to simultaneous assays (Multiplex) using probes for both mutations under analysis in the same reaction, the probes being labeled with distinct fluorophores.
  • fluorophores are compounds known as Alexa Fluor, FAM, TET, JOE, VIC, HEX, Cy3, ATTO 550, TAMRA, ROX, Cy5, Cy5.5.
  • Real-time PCR was performed using the ABI Prism® 7500 Fast apparatus sold by ThermoFicher Scientific.
  • Phase 2 45 cycles comprising 30 seconds at 92 ° C, 1 minute at 60 ° C with temperature drop of 0.2 ° C per cycle from cycle 25
  • Phase 3 1 cycle of 1 minute at 57 ° C with signal acquisition
  • Example 5 Method for detecting c-124 c> t and c-146 c> t mutations in the Htert gene promoter in a urine sample
  • Urine samples were obtained from bladder cancer patients or from patients in clinical (cystoscopic) surveillance programs for possible tumor recurrence.
  • the urine was centrifuged at a force greater than 1000 times the gravitational force (1000G) for a time greater than 5 minutes to sediment the scaled bladder epithelial cells present in the urine.
  • From pelleted cells DNA was obtained using common methods known in the art, such as QIAamp® marketed by Qiagen or similar methods. Between 1 and 500ng of the DNA thus obtained were added to the mutation detection amplification compositions prepared as described in examples 1, 2 and 3.
  • Example 3 The detection compositions of Example 3 were subjected to amplification and hybridization procedures in Real Time PCR and Digital Time PCR. The compositions were also subjected to simultaneous assays (Multiplex) using probes for both mutations under analysis in the same reaction, the probes being labeled with distinct fluorophores.
  • fluorophores are compounds known as Alexa Fluor, FAM, TET, JOE, VIC, HEX, Cy3, ATTO 550, TAMRA, ROX, Cy5, Cy5.5.
  • Phase I 1 cycle 10 minutes at 95 ° C
  • Phase 2 45 cycles comprising 30 seconds at 92 ° C, 1 minute at 60 ° C with temperature drop of 0.2 ° C per cycle from cycle 25
  • Phase 3 1 cycle of 1 minute at 57 ° C with signal acquisition
  • Probe specificity was verified, ie whether probes for the -1240T mutation (Probes with SEQ ID no. 3 and SEQ ID no. 4) were not amplified in a heterozygous DNA sample for the -1460T mutation (DNA MUT 146) and vice versa (with probes having SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6) (Fig.3A and 3B), ie it is found that there are no false detection or cross-detection phenomena between said probes. and their mutations.

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hospice & Palliative Care (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

A presente invenção refere-se a um método para detecção das mutações c.-124 C>T e c.-146 C>T no promotor do gene Htert. O referido método utiliza composições de reacção que compreendem iniciadores para amplificação e sondas para genotipagem. Outro aspecto da presente invenção diz respeito aos referidos iniciadores e sondas para utilização na realização do referido método, cujas sequências, SEQ ID nr.1 a SEQ ID nr.6, apresentam elevada especificidade para estas mutações, bem como às composições que os contêm. A presente invenção refere-se ainda a um estojo, que compreende as composições acima mencionadas, para detecção das mutações c.-124 C>T e c.-146 C>T no promotor do gene Htert, através da realização do método da presente invenção. O método, sequências genéticas, composições e estojo da presente invenção podem ser vantajosamente utilizados para detectar quantidades vestigiais das mutações c.-124 c>T e c.-146C>T, presentes em amostras biológicas, devido à sua elevada sensibilidade e especificidade para as referidas mutações. A presente invenção pode assim ser aplicada na detecção precoce, identificação, detecção de recorrência ou previsão e monitorização de patologias associadas a este tipo de mutações, como por exemplo carcinomas da bexiga, tiróide, epidermóide, das células basais, melanoma, gliomas e hepatocarcinomas, entre outros e eventualmente servir de base para a definição de tratamento adequado. Desta forma, a presente invenção insere-se na área técnica da medicina, farmacêutica, biologia molecular, bioquímica, genética humana e afins.

Description

DESCRIÇÃO
MÉTODO, SEQUÊNCIAS, COMPOSIÇÕES E ESTOJO PARA DETECÇÃO DE MUTAÇÕES
NO PROMOTOR DO GENE Utert
Domínio técnico da invenção
A presente invenção refere-se a um método ultrassensivel de detecção das mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Utert, composições de reacção que compreendem iniciadores ou "primers" para amplificação e sondas para genotipagem, cujas sequências, SEQ ID nr .1 a SEQ ID nr.6, foram concebidas para apresentar elevada especificidade para essas mutações, bem como a um estojo compreendendo essas composições para realização do referido método.
A presente invenção pode ser vantajosamente utilizada para detectar quantidades vestigiais das referidas mutações C.-1240T e C.-1460T presentes em amostras biológicas in vitro devido à elevada sensibilidade do método e especificidade das sequências genéticas criadas, permitindo assim a detecção precoce, identificação, detecção de recorrência ou previsão e monitorização de patologias associadas a este tipo de mutações, como por exemplo carcinomas da bexiga, tiróide, epidermóide, das células basais, melanoma, gliomas e hepatocarcinomas , entre outros e, eventualmente servir de base para a definição de tratamento adequado.
Desta forma, a presente invenção insere-se na área técnica da medicina, farmacêutica, biologia molecular, bioquímica, genética humana e afins .
Estado da técnica
As mutações somáticas, que ocorrem durante a replicação do ADN que precede uma divisão mitótica, estão na origem de determinadas patologias humanas, em particular de determinados tipos de cancros. A presença da enzima telomerase foi verificada numa elevada percentagem de linhas tumorais, cerca de 75-80%. Recentemente, foram identificadas mutações recorrentes no promotor do gene que codifica esta enzima, o gene TERT, nomeadamente as mutações nas posições c.-124C>T e C.-1460T (a partir do ATG) . Estas mutações foram associadas a diferentes neoplasias, tais como do sistema nervoso central (43-51%), da bexiga (59-66%), carcinoma hepatocelular (59%), da tiróide (10%), da pele (melanoma 29%-73%; BCC 73% e SCC 45%) e GISTs (4%) [1-7].
O facto das mutações no promotor da telomerase estarem presentes numa frequência relati amente elevada em determinados tipos de cancro faz com que sejam potenciais biomarcadores para detecção precoce, diagnóstico, prognóstico, detecção de recorrência ou previsão/monitorização da resposta à terapia de tumores tais como gliomas e glioblastomas , carcinomas da bexiga, hepatocelular, tiroide, de células escamosas, das células basais, melanoma, entre outros. Por exemplo, no cancro da bexiga, as mutações somáticas nas posições c.-124C>T e c.-146C>T (a partir do ATG) do gene da telomerase apresentam uma prevalência que chega aos 85% e, juntamente com as mutações R248C e S249C no gene FGFR3 [9], constituem os biomarcadores mais fidedignos para o cancro da bexiga .
No entanto, para ser utilizado em amostras in vitro de fluidos biológicos (por exemplo urina, plasma, fluido cérebroespinal , citologias aspirativas, entre outros), o método de detecção das mutações nas posições c-124 C>T e c-146 (a partir do ATG) do gene da telomerase deve ter elevada sensibilidade analítica por forma a detectar quantidades vestigiais dos alelos mutados, mesmo quando estes estão "diluídos" numa amostra com maior abundância dos alelos "wild-type" .
O documento WO2015153808 divulga métodos e composições úteis na detecção de algumas patologias, em particular cancerígenas, mais especificamente cancro da tiróide, relacionadas com mutações nas posições c-124 C>T e c-146 do gene TERT . Contudo, as sequências de nucleótidos divulgadas neste documento são utilizadas para detecção das referidas mutações por métodos de amplificação directa, dependente da sequência e têm uma sensibilidade limitada quando a presença de sequências normais é muito abundante relativamente às sequências mutantes. Por outro lado, são susceptíveis à ocorrência de amplificação não específica, de forma que não apresentam elevada especificidade para este tipo de mutação, o que faz com que, no geral o respectivo método não seja suficientemente sensível e específico.
O documento WO2014160834 divulga métodos e composições úteis na detecção e tratamento de diferentes tipos de cancro da tiróide, relacionadas com mutações nas posições c-124 OT e c-146 do gene TER . No entanto, neste documento as sequências de nucleótidos divulgadas também não apresentam elevada sensibilidade quando a presença de sequências normais é muito abundante relativamente às sequências mutantes pois o método proposto para utilização das sequências divulgadas neste documento baseia-se na sequenciação de ADN usando "Big Dye terminator v3.1 cycle sequencing ready kit da Applied Biosystems e um equipamento ABI PRISM 3730 ", que tem uma sensibilidade limitada na detecção de alelos raros na reacção. Por outro lado, a presença da mutação tem de ser confirmada por sequenciação em ambos os sentidos, sense e antisense, o que torna o método pouco prático e trabalhoso e aplicável exclusivamente a cancros da tiróide.
Desta forma, é necessário desenvolver um método com sensibilidade e especificidade suficientes que permita a detecção deste tipo de mutações em amostras biológicas mesmo em condições em que os alelos mutados estejam presentes em quantidades muito baixas.
A presente invenção propõe um método ultrassensivel que permite a detecção das mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert, através da concepção de iniciadores e sondas cu a sequências são especificas para este efeito.
Sumário da invenção
A presente invenção refere-se a um conjunto de sequências de iniciadores e de sondas (SEQ ID nr .1 a SEQ ID nr.6), para amplificação e hibridização de ADN de amostras biológicas, que foram concebidas de forma a apresentarem elevada especificidade na detecção das mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert, de acordo com a reivindicação 1.
Estes iniciadores e sondas genéticas, por terem elevada especificidade na detecção das referidas mutações permitem serem utilizadas num método de elevada sensibilidade para detecção dessas mutações .
A presente invenção diz também respeito a composições para ampliação e hibridização de ADN, através de técnicas de PCR (Polymerase Chain Reaction) que compreendem as referidas sequências de iniciadores e de sondas genéticas, de acordo com a reivindicação 2.
Estas composições são aplicáveis à detecção de mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert, podendo estar vanta osamente pré-preparadas ou serem preparadas no momento da realização do método de detecção da invenção.
Outro aspecto da presente invenção diz respeito a composições para detecção de mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert, que compreendem as composições para PCR e adicionalmente ADN humano proveniente de uma amostra biológica a testar para essa mutação de acordo com a reivindicação 7.
Nestas composições, a quantidade de amostra de ADN a testar pode ser bastante baixa, dado a elevada especificidade dos iniciadores e sondas da presente invenção concebidas para esse efeito.
Um outro aspecto da presente invenção diz respeito a um estojo que compreende as composições de iniciadores e sondas genéticas especificas para a detecção de mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert, pré-preparadas, de acordo com a reivindicação 9.
Este estojo tem a vantagem de desenvolver um método ultrassensivel de detecção in vitro das mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert, de uma forma rápida e fiável, através da adição de uma amostra de ADN humano a testar para a detecção da referida mutação.
Outro aspecto da presente invenção diz respeito a um método de detecção in vitro das mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert, que utiliza composições de reacção que compreendem iniciadores para amplificação e sondas para genotipagem, cujas sequências são especificas para estas mutações, de acordo com a reivindicação 11.
Este método pode ser vantajosamente utilizado para detectar quantidades vestigiais das referidas mutações C.-1240T e C.-1460T presentes em amostras biológicas devido à sua elevada sensibilidade, conferida pelas sequência genéticas concebidas para esse efeito e que apresentam elevada especificidade para este tipo de mutações. Assim, a presente invenção pode ser aplicada na detecção precoce, identificação, detecção de recorrência ou previsão e monitorização de patologias associadas a este tipo de mutações, como por exemplo carcinomas da bexiga, tiróide, epidermóide, das células basais, melanoma, gliomas e hepatocarcinomas , entre outros e eventualmente servir de base para a definição de tratamento adequado.
Desta forma, um outro aspecto da presente invenção diz respeito a um método de tratamento em que é administrada uma quantidade adequada de um inibidor promotor do gene Htert a um individuo que teste positivo cu a amostra biológica tenha assinalado positivo no teste de detecção das mutações c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert da presente invenção, de acordo com a reivindicação 15.
Descrição da invenção
A presente invenção refere-se a um método para detecção in vitro das mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert. O referido método utiliza composições de reacção que compreendem iniciadores para amplificação e sondas para genotipagem, cujas sequências (SEQ ID nr .1 a SEQ ID nr.6) são especificas para estas mutações .
Desta forma, são criadas sequências de iniciadores para amplificação e sondas para genotipagem a fim de construir as bases para a referida reacção de amplificação, como por ex . um ensaio de PCR em tempo real (RT-PCR) ou de PCR em Tempo Digital. Foram criadas 6 sequências de iniciadores e de sondas, tal como é apresentado na lista de sequências. Esta compreende as sequências para os seguintes objectivos: a) Deteção da mutação localizada a -124 bases a montante do ATG do gene hTERT
SEQ ID nr .1 Iniciador F
SEQ ID nr.2 Iniciador R
SEQ ID nr.3 Sonda -124C
SEQ ID nr.4 Sonda b) Deteção da mutação localizada a -146 bases a montante do ATG do gene hTERT
SEQ ID nr .1 Iniciador F
SEQ ID nr.2 Iniciador R
SEQ ID nr.5 Sonda -146C
SEQ ID nr .6 Sonda -146T
As sequências acima indicadas podem ser preparadas pelo método de síntese de nucleótidos em fase sólida utilizando fosforamidites de nucleosídeos como descrito na publicação: Beaucage, S. L . ; Iyer, R. P. (1992) . "Advances in the Synthesis of Oligonucleotides by the Phosphoramidite Approach". Tetrahedron 48(12) : 2223. A síntese pode ser realizada em colunas coluna empacadas com o suporte sólido
(vidro de poro controlado ou poliestireno) funcionalizado com a primeira base da extremidade 3' de cada oligonucleótido . A preparação de cada oligonucleótido segue depois um conjunto de ciclos de síntese, cada um composto por reacções químicas, tipicamente quatro reacções químicas: i) desbloqueio
( destritilação ) , ii) acoplamento, iii) protecção e iv) oxidação. Em cada ciclo são adicionados, no terminal 5' da cadeia em crescimento, os resíduos de nucleótidos correspondentes à sequência dese ada .
Estas podem ainda ser modificadas, nas extremidades 5' e 3' das sequências das sondas, por correspondes à adição de fluoróforos, como por exemplo FAM, Yakima yellow, quencher (TAMRA) , etc. conhecidas pelo perito na especialidade, para efeitos de reacções de amplificação e hibridização em PCR Multiplex. Desta forma, fluoróforos adequados no âmbito da presente invenção são, por exemplo os compostos conhecidos por Alexa Fluor, FAM, TET, JOE, VIC, HEX, Cy3, ATTO 550, TAMRA, ROX, Cy5, Cy5.5.
Os nucleótidos referem-se a nucleótidos de origem natural ou sintética, com a capacidade de hibridização por emparelhamento de bases com nucleótidos complementares, podendo incluir, sem limitação, DNA, RNA, assim como análogos de nucleótidos (por exemplo ácidos nucleicos com conformação fechada, conhecidos por "locked nucleic acids" - LNA) ou nucleótidos sem ligações inter- nucleotídicas do tipo fosfodiéster (por exemplo ácidos nucleicos peptídicos - PNAs ) ou ácidos nucleicos com ligações tiodiester, ou outros similares para o mesmo efeito. As composições para ampliação e hibridização de ADN (composições para PCR) foram preparadas pela adição de soluções reagente para PCR, disponíveis no mercado, com diferentes nucleótidos com as sequências SEQ ID Nr .1 a SEQ ID nr.6 em diferentes concentrações, e com água bi-destilada e água bi-desionisada .
As soluções reagente para PCR a utilizar variam com o tipo de reacção de amplificação desejada. Exemplos de soluções reagente para PCR adequadas para a realização da presente invenção são por exemplo a solução "TaqMan® Universal PCR Master Mix" da empresa Thermofi scher Scientific ou soluções similares para efeitos de amplificação e hibridização de ADN.
As concentrações das sondas referem-se à concentração molar na solução, correspondendo ao número de moles de cada sonda por volume da solução, em que nanoMolar (nM) corresponde a lxlCT9 moles por Litro .
As composições para PCR foram preparadas compreendendo várias combinações de diferentes concentrações das sondas com as sequências SEQ ID nr .3 a SEQ ID nr.6. Como mencionado anteriormente, as sondas, cujas sequências se encontram definidas por SEQ ID nr .3 e SEQ ID nr .4 foram concebidas para a detecção específica da mutação c-124 c>t no promotor do gene Htert, enquanto as sondas com as SEQ ID nr .5 e SEQ ID nr.6 foram concebidas para a detecção específica da mutação c-146 c>t no promotor do gene Htert.
Assim, as composições para PCR da invenção podem compreender apenas um ou os dois conjuntos de sondas acima mencionados, i.e. as composições para PCR da invenção podem compreender apenas as sondas com SEQ ID nr . 3 e SEQ ID nr .4 (conjunto C-124), as sondas com as sondas com as SEQ ID nr .5 e SEQ ID nr.6 (conjunto C-146) ou com todas as sondas com as SEQ ID nr .3 a SEQ ID nr.6 (conjuntos C-124 + conjunto C-146) .
Nos casos em que as composições da invenção compreendem apenas um conjunto de sondas, conjunto C-124 ou conjunto C-146, então são específicas para a detecção apenas da respectiva mutação c-124 c>t ou c-146 c>t. No caso em que os dois conjuntos de sondas estão presentes nas composições para PCR, então essas composições são específicas para detecção de ambas as mutações c-124 c>t e c-146 Ot .
A concentração das sondas de nucleótidos da presente invenção é ajustada nas soluções para PCR, de forma a promover a sensibilidade do método da invenção na detecção das referidas mutações. Preferencialmente, a concentração final de cada sonda é ajustada para valores de 400 a 1600nM, mais preferivelmente numa concentração final com valores de 800 a 1600nM e ainda numa realização preferida da invenção os valores da concentração final de cada sonda é de aproximadamente a 1600nM.
Desta forma, é possível obter composições para PCR que compreendem as diferentes combinações de valores de concentração final de cada uma das sondas definidas pelas SEQ ID nr.3 a SEQ ID nr .6.
Assim, de uma forma preferencial, as composições para PCR compreendem as seguintes concentrações das sondas com as SEQ ID nr .3 a SEQ ID nr .6 : i) de 250nM a 500nM de SEQ ID nr.3, de 400nM a 1600nM de SEQ ID nr.4, de 250nM a 500nM de SEQ ID nr .5 e de 400nM a 1600nM de SEQ ID nr .6, ou ii) de 250nM a 500nM de SEQ ID nr.3, de 800nM a 1600nM de SEQ ID nr.4, de 250nM a 500nM de SEQ ID nr .5 e de 800nM a 1600nM de SEQ ID nr.6.
As composições das misturas de reacção para detecção das mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert foram preparadas pela adição de ADN da amostra biológica a testar às composições para PCR acima mencionadas.
O ADN a testar pode ser obtido a partir de tecido, urina, circulante, germinativo, ou de outras fontes biológicas utilizando métodos comuns conhecidos na arte, tais como o QIAamp® comercializado pela empresa Qiagen ou métodos similares. A quantidade de ADN a testar pode estar presente na composição para detecção das mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert, em concentrações inferiores a 500ng, inferiores a lOOng, a 50ng e superiores a lng. O referido ajuste na concentração das sondas usadas tem como objectivo potenciar a sensibilidade analítica do método da presente invenção, inferida pelo número mínimo de alelos mutantes (ADN-MUT) detectados relativamente ao número de alelos "wild-type" (ADN-WT) . Supõe-se que o aumento a sensibilidade analítica resulta do incremento das concentrações de sondas utilizadas na reacção através do favorecimento da amplificação do alelo mutado.
Simultaneamente foi reduzida a eficácia de amplificação e hibridização do alelo "wild-type" como forma de manter tanto quanto possível o balanço da reacção em favor da amplificação do alelo mutado .
Desta forma, foi possível desenvolver um método em que diferentes combinações de diferentes concentrações das sondas utilizadas dão origem a condições que potenciam a sensibilidade analítica e permitem detectar níveis muito baixos de alelos mutantes.
Até certos níveis, este aumento na concentração de sondas mutadas não resulta na detecção inespecífica do alelo "Wild-Type", como é comprovado pela ausência de sinal das sondas -124T e -146T quando se utiliza apenas DNA-WT como amostra (Fig. 5 - painéis C e D) . Desta forma, tendo por base a manipulação das concentrações de sondas utilizadas, é possível calibrar a sensibilidade analítica do método enquanto é mantida a sua especificidade.
Em reflexo deste aumento da eficiência na detecção dos alelos mutados -124T e -146T, é possível incrementar significativamente a sensibilidade analítica do método, passando para valores mínimos de detecção a ser de 1,56% no caso do alelo -124T e a ser de 0,78% no caso do alelo -146T (Fig. 6 A e B, respectivamente) .
Desta forma, o método da presente invenção compreende os passos de: i) preparação de uma de uma composição para detecção de mutações c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert, tal como descrito anteriormente, ii) pela promoção do contacto de ADN extraído de uma amostra biológica, a testar para a referida mutação, com uma composição para amplificação e hibridização por PCR igualmente como o descrito anteriormente, iii) amplificação e hibridação do ADN da amostra da composição para detecção de mutações c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert através de reacção por PCR, PCR em Tempo Real ou PCR em Tempo Digital ou ainda em reacção PCR Multiplex, e iv) análise das curvas de amplificação assim obtidas.
A presença de mutação c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert da amostra em análise é verificada pela existência de crescimento exponencial de um sinal de fluorescência, o que corresponde à positividade para a presença de pelo menos uma das referidas mutações.
O método da presente invenção é útil na detecção de quantidades vestigiais das mutações C.-1240T e C.-1460T em diversos fluidos biológicos, por exemplo urina, plasma, fluido cérebroespinal , citologias aspirativas, entre outros, tendo como entrada, ADN obtido destas diferentes fontes. Nestes exemplos, a vantagem é a de poder realizar uma determinação a partir de um tipo de amostra menos invasiva sem ter de recorrer à biópsia ou à cirurgia.
Pode ser aplicado na vigilância de doentes com cancro da bexiga, através de uma análise baseada em ADN obtido de uma amostra de urina. Esta aplicação tem como fundamento o facto de as mutações C.-1240T e C.-1460T serem altamente frequentes no cancro da bexiga e poderem ser detectadas em ADN derivado da urina (Fig.7) . Para os doentes que estão em vigilância clinica pois têm 50-70% de probabilidade de recorrência, a possibilidade de detectar recorrência por um teste de urina apresenta vantagens relativamente ao método convencional baseado na cistoscopia por ser totalmente não invasivo e muito mais cómodo para o doente.
O método da presente invenção pode ainda ser aplicado na detecção de outros tipos de cancro em que as mutações do gene TERT estão presentes e com outras finalidades clinicas. Um exemplo disso é através da análise de aspirados de agulha fina de nódulos da tiróide com a finalidade e fornecer informação prognóstica útil para decidir a necessidade de tratamento ablativo ou extensão de esvaziamento ganglionar.
Outro exemplo de aplicação da presente invenção relaciona-se com a detecção precoce, diagnóstico, prognóstico, detecção de recorrência ou previsão/monitorização da resposta à terapia, de tumores tais como gliomas e glioblastomas , carcinomas da bexiga, hepatocelular, tiróide, de células escamosas, das células basais, melanoma, entre outros . A presente invenção pode ainda ser útil na análise de tecido tumoral ou de ADN circulante no contexto da "biópsia liquida", para eventual selecção e tratamento de doentes candidatos, previsão da resposta ao tratamento e monitorização do respectivo tratamento com, por exemplo inibidores da Telomerase ou promotor do gene tert.
Breve descrição das figuras
Figura 1: Demonstração da capacidade do ensaio detectar a mutação TERTp c-124 OT.
Nesta figura pode verificar-se que o ensaio é especifico para a detecção dos alelos na posição -124. O desempenho do ensaio é confirmado pela realização de análises para detecção da mutação c- 124 OT em amostras de ADN heterozigóticas para a mutação c-124 OT (ADN HET124) e casos "wild-type" (ADN W ) . Os resultados mostram que a sonda especifica para o alelo mutado (Sonda -124T) gera um sinal na amostra de ADN HET-124 e não na amostra de ADN WT e que a sonda para o alelo "wild-type" (Sonda-124C) gera um sinal de amplificação em ambas as amostras.
1 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124C (alelo "wild- type") em ADN WT .
2- Curva de amplificação obtida com a sonda -124C (alelo "wild- type") em ADN HET-124.
3 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T (alelo mutante) em ADN HET-124.
4 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T (alelo mutante) em ADN WT .
Figura 2: Demonstração da capacidade do ensaio detectar a mutação TERTp c-146 OT
Nesta figura pode verificar-se que o ensaio é especifico para a detecção dos alelos na posição -146. O desempenho do ensaio na detecção da mutação c. -146 OT é confirmado pela análise de amostras de ADN heterozigóticas para a mutação c-146 OT (ADN HET146) e casos wild-type (ADN WT) . Os resultados mostram que a sonda especifica para o alelo mutado (Sonda -146T) gera um sinal na amostra de ADN HET-146 e não na amostra de ADN WT e que a sonda para o alelo "wild-type" (Sonda-146C) gera um sinal de amplificação em ambas as amostras .
1 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146C (alelo "wild- type") em ADN WT . 2 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146T (alelo mutante) em ADN HET-146.
3- Curva de amplificação obtida com a sonda -146C (alelo "wild- type") em ADN HET-146.
4 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146T (alelo mutante) em ADN W .
Figura 3: Avaliação da especificidade analítica dos ensaios:
(A) detecção específica da mutação TERTp c-124 OT
(B) detecção específica da mutação TERTp c-146 OT
Nesta figura pode verificar-se que o ensaio não apresenta reactividade cruzada entre as mutações interrogadas .
Fig. 3-A: uma amostra de ADN heterozigótica para a mutação TERTp - 1460T não é amplificada pela Sonda -124T e a única sonda a emitir fluorescência é de facto a Sonda-124C (que corresponde ao alelo "Wild-Type" na posição -124)
Fig. 3-B Por outro lado, uma amostra de ADN heterozigótica para a mutação TERTp -1240T não é amplificada pela Sonda -146T e a única sonda a emitir fluorescência é de facto a Sonda-146C (que corresponde ao alelo "Wild-Type" na posição -146) .
1 - Curva de amplificação obtida com a Sonda -124C (alelo "wild- type") em ADN HET-146.
2- Curva de amplificação obtida com a Sonda -124T (alelo mutante) em ADN HET-146.
3 - Curva de amplificação obtida com a Sonda -146C (alelo "wild- type") em ADN HET-124.
4 - Curva de amplificação obtida com a Sonda -146T (alelo mutante) em ADN HET-124.
Figura 4: Avaliação da sensibilidade analítica para detecção dos alelos -124T (A) e -146T (B) em condições que mimetizam amostras de DNA derivado de fluidos biológicos, em que existem quantidades reduzidas de alelos mutados num contexto global onde predominam alelos "wild-type". Foram utilizadas amostras de DNA com mutação C.-1240T ou amostras com a mutação C.-1460T "diluídas" sucessivamente em amostras de DNA "wild-type".
Nesta figura pode verificar-se a eficiência e sensibilidade do ensaio na detecção dos alelos mutados -124T e -146T.
1 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T em 50% de ADN MUT124/ADNWT .
2 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T em 25% de ADN MUT124/ADNWT .
3 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T em 12,5% de ADN MUT124/ADNWT .
4 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T em 6,25% de ADN MUT124/ADNWT . 5 - Curva de amplificação obtida 124T em 3, 125% de ADN MU 124/ADNW .
6 - Curva de amplificação obtida 146T em 50% de ADN MU 146/ADNW .
7 - Curva de amplificação obtida 146T em 25% de ADN MU 146/ADNW .
8 - Curva de amplificação obtida 146T em 12, 5% de ADN MU 146/ADNW .
9 - Curva de amplificação obtida 146T em 6,25% de ADN MU 146/ADNW .
Figura 5: Potenciação da sensibilidade analítica na detecção dos alelos -125T (A) e -146T (B) .
Foram utilizadas amostras de DNA com mutação C.-1240T ou amostras com a mutação C.-1460T "diluídas" sucessivamente em amostras de DNA "wild-type" numa proporção de 25% de DNA-MUT/DNA-WT .
É possível observar que, em condições de baixa concentração da sonda para o alelo "wild-type" (por exemplo 250nM) a utilização de uma maior concentração da sonda para os alelos mutados -124T e - 146T ( 400-800- 1600nM) resulta num aumento significativo do sinal de detecção dos alelos mutados (Fig. 5 painéis A e B, respectivamente) .
Nos painéis C e D desta figura pode verificar-se que até certos níveis, o aumento na concentração de sondas mutadas não resulta na detecção inespecífica do alelo "Wild-Type", como é comprovado pela ausência de sinal das sondas -124T e -146T quando se utiliza apenas DNA-WT como amostra.
1 - Curva de amplificação da sonda -124T (mutante) usada à concentração de 400nM.
2 - Curva de amplificação da sonda -124C (wild-type) usada concentração de 250nM.
3 - Curva de amplificação da sonda -124T (mutante) usada concentração de 800nM.
4 - Curva de amplificação da sonda -124C (wild-type) usada concentração de 250nM.
5 - Curva de amplificação da sonda -124T (mutante) usada concentração de 1600nM.
6 - Curva de amplificação da sonda -124C (wild-type) usada concentração de 250nM.
7 - Curva de amplificação da sonda -146T (mutante) usada concentração de 400nM. 8 - Curva de amplificação da sonda -146C (wild-type) usada à concentração de 250nM.
9 - Curva de amplificação da sonda -146T (mutante) usada à concentração de 800nM.
10 - Curva de amplificação da sonda -146C (wild-type) usada à concentração de 250nM.
11 - Curva de amplificação da sonda -146T (mutante) usada à concentração de 1600nM.
12 - Curva de amplificação da sonda -146C ("wild-type") usada à concentração de 250nM.
13 - Curva de amplificação da sonda -124T (mutante) usada à concentração de 1600nM.
14 - Curva de amplificação da sonda -124C ("wild-type") usada à concentração de 250nM.
15 - Curva de amplificação da sonda -1246T (mutante) usada à concentração de 400nM.
16 - Curva de amplificação da sonda -146C ("wild-type") usada à concentração de 250nM.
Figura 6: Avaliação da sensibilidade analítica para detecção dos alelos -124T (A) e -146T (B) quando se aumenta a concentração da sonda para o alelo mutado e se reduz a concentração de sonda utilizada para o alelo "wild-type". Esta alteração na composição relativa de sondas resulta num aumento da sensibilidade analítica. Nesta figura pode verificar-se o aumento da eficiência e sensibilidade na detecção dos alelos mutados -124T e -146T: os valores mínimos de detecção passaram a ser de 1,56% no caso do alelo -124T e de 0,78% no caso do alelo -146T) .
1 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T em 25% de ADN MU 124/ADNW .
2 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T em 12,5% de ADN MU 124/ADNW .
3 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T em 6,25% de ADN MU 124/ADNW .
4 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T em 3,125% de ADN MU 124/ADNW .
5 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T em 1,56% de ADN MU 124/ADNW .
6 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146T em 50% de ADN MU 146/ADNW .
7 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146T em 25% de ADN MU 146/ADNW . 8 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146T em 12,5% de ADN MU 146/ADNW .
9 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146T em 6,25% de ADN MU 146/ADNW .
10 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146T em 3,125% de ADN MU 146/ADNW .
11 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146T em 1,56% de ADN MUT 124 /ADNWT .
12 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146T em 0,78% de ADN MUT 146/ADNWT .
Figura 7: Demonstração da capacidade do ensaio detectar as mutações TERTp C.-124 OT e c—1460T em amostras de urina de doentes com cancro da bexiga. Nesta figura pode verificar-se a detecção da mutação c-124 OT ou da mutação c-146 OT em amostras de urina. Os resultados mostram que, neste tipo de amostras, obtidas de doentes com cancro da bexiga, são detectados os alelos mutados para a mutação -124 (A) ou para a mutação -146 (B) , assim como sinais para os correspondentes alelos "wild-type".
1 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124C (alelo "wild- type") em ADN obtido de uma amostra de urina de um doente com cancro da bexiga.
2 - Curva de amplificação obtida com a sonda -124T (alelo mutante) em ADN obtido de uma amostra de urina de um doente com cancro da bexiga .
3 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146C (alelo "wild- type") em ADN obtido de uma amostra de urina de um doente com cancro da bexiga.
4 - Curva de amplificação obtida com a sonda -146T (alelo mutante) em ADN obtido de uma amostra de urina de um doente com cancro da bexiga .
EXEMPLOS
Exemplo 1 - Preparação das sequências de iniciadores e de sondas
Foram preparadas 2 sequências de iniciadores, SEQ ID nr .1 a SEQ ID nr.2, e outras 4 sequências de sondas, SEQ ID nr .3 a SEQ ID nr .6 da seguinte forma:
As sequências acima indicadas foram preparadas pelo método de síntese de nucleótidos em fase sólida utilizando fosforamidites de nucleosídeos . A síntese foi realizada em colunas coluna empacadas com o suporte sólido funcionalizado com a primeira base da extremidade 3' de cada oligonucleótido . A preparação de cada oligonucleótido seguiu depois um conjunto de ciclos de síntese, cada um composto por quatro reacções químicas: desbloqueio (destritilação) ; acoplamento; protecção e Oxidação. Em cada ciclo foram adicionados, passo a passo, no terminal 5' da cadeia em crescimento, os resíduos de nucleótidos correspondentes à sequência dese ada .
A concentração das sondas foi ajustada para valores de 400 a 1600nM através de diluição da preparação liofilizada em água bi-destilada e água bi-desionisada .
Exemplo 2 - Preparação das composições de reacção PCR
Foram preparadas várias composições de reacção PCR compreendendo uma mistura nucleótidos de acordo com as sequências SEQ ID nr .1 a SEQ ID nr.6, em diferentes concentrações (como por ex . 400nM, 800nM, 1600nM), e tal como o descrito a seguir. Para efeitos comparativos foram também preparadas soluções com concentração alternativa da sonda para o alelo "wild-type" (por exemplo, 250nM, 500nM) .
I - Composições para detecção da mutação localizada a -124 bases a montante do codão de iniciação ATG do gene hTERT
Composição inventiva Ia:
■ Solução reagente para PCR em Tempo-Real "TaqMan® Universal PCR Master Mix" à concentração de IX;
■ Oligonucleótido com a sequência: SEQ ID nr . 1, a uma concentração de 900nM;
■ Oligonucleótido com a sequência: SEQ ID nr . 2, a uma concentração de 900 nM;
■ Sonda oligonucleotídica com a sequência: SEQ ID nr . 3, a uma concentração de 250nM, contendo modificações, como por exemplo o composto conhecido por YAKIMA YELLOW® e tetra- metil-rodamina (TAMRA) nas extremidades 5' e 3', respectivamente ;
■ Sonda oligonucleotídica com a sequência: SEQ ID nr . 4, a uma concentração de 1600nM, contendo modificações, como por exemplo 6-carboxi-fluoresceina (6-FAM) e tetra-metil-rodamina (TAMRA) nas extremidades 5' e 3', respectivamente;
Água bi-destilada e bi-desionisada .
Composição inventiva Ib:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição Ia estando contudo a sonda oligonucleotidica com a sequência: SEQ ID nr . 4, presente numa concentração de 800nM.
Composição inventiva Ic:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição Ia estando contudo a sonda oligonucleotidica com a sequência: SEQ ID nr . 4, presente numa concentração de 400nM.
Composição comparativa Id:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição Ia estando contudo a sonda oligonucleotidica com a sequência: SEQ ID nr . 3, presente numa concentração de 500nM.
II - Composições para detecção da mutação localizada a -146 bases a montante do codão de iniciação ATG do gene hTERT
Composição inventiva lia:
Solução reagente para PCR em Tempo-Real "TaqMan® Universal PCR Master Mix" à concentração de IX;
Oligonucleótido com a sequência: SEQ ID nr . 1 uma concentração final de de 900nM;
Oligonucleótido com a sequência: SEQ ID nr . 2 uma concentração de 900 nM;
Sonda oligonucleotidica com a sequência: SEQ ID nr . 5, uma concentração de 250nM, contendo modificações, nas extremidades 5' e 3' ;
Sonda oligonucleotidica com a sequência: SEQ ID nr . 6, uma concentração de 1600nM, contendo modificações nas extremidades 5' e 3' ;
Água bi-destilada e bi-desionisada; As modificações mencionadas nas extremidades 5' e 3' das sequências das sondas são as modificações correspondes à adição dos fluoróforos (FAM, Yakima yellow) e quencher (TAMRA) , etc. conhecidas pelo perito na especialidade.
Composição inventiva Ilb:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição I estando contudo a sonda oligonucleotidica com a sequência: SEQ nr . 6, presente numa concentração de 800nM.
Composição inventiva IIc:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição I estando contudo a sonda oligonucleotidica com a sequência: SEQ nr . 6, presente numa concentração de 400nM.
Composição comparativa Ild:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição estando contudo a sonda oligonucleotidica com a sequência: SEQ nr . 5, presente numa concentração de 500nM.
III- Composições para detecção simultânea daas mutações localizada a -124 e a -146 bases a montante do codão de iniciação ATG do gene hTERT:
Composição inventiva Illa:
■ Solução reagente para PCR em Tempo-Real "TaqMan® Universal PCR Master Mix" à concentração de IX;
■ Oligonucleótido com a sequência: SEQ ID nr . 1 a uma concentração final de de 900nM;
■ Oligonucleótido com a sequência: SEQ ID nr . 2 a uma concentração de 900 nM;
■ Sonda oligonucleotidica com a sequência: SEQ ID nr . 3, a uma concentração de 250nM, contendo modificações nas extremidades 5 ' e 3 ' ;
■ Sonda oligonucleotidica com a sequência: SEQ ID nr . 4, a uma concentração de 1600nM, contendo modificações nas extremidades 5' e 3' ; Sonda oligonucleotídica com a sequência: SEQ ID nr . 5, a uma concentração de 250nM, contendo modificações, nas extremidades 5' e 3' ;
Sonda oligonucleotídica com a sequência: SEQ ID nr . 6, a uma concentração de 1600nM, contendo modificações nas extremidades 5' e 3' ;
Água bi-destilada e bi-desionisada;
Composição inventiva Illb:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição Illa estando contudo a sonda oligonucleotídica com a sequência: SEQ ID nr . 4, presente numa concentração de 800nM.
Composição inventiva IIIc:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição Illa estando contudo a sonda oligonucleotídica com a sequência: SEQ ID nr . 4, presente numa concentração de 400nM.
Composição inventiva Illd:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição Illa estando contudo a sonda oligonucleotídica com a sequência: SEQ ID nr . 6, presente numa concentração de 800nM.
Composição inventiva Ille:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição Illa estando contudo a sonda oligonucleotídica com a sequência: SEQ ID nr . 6, presente numa concentração de 400nM.
Composição comparativa III f :
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição Ia estando contudo a sonda oligonucleotídica com a sequência: SEQ ID nr . 3, presente numa concentração de 500nM.
Composição comparativa Illg:
Esta composição foi preparada de forma semelhante à composição Ia estando contudo a sonda oligonucleotídica com a sequência: SEQ ID nr . 5, presente numa concentração de 500nM. Exemplo 3 - Preparação das composições para detecção de mutações
As composições das misturas de reacção para detecção das mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert foram preparadas pela adição de ADN da amostra biológica a testar, cerca de lOOng de ADN, (podendo ser utilizado uma quantidade menor, por exemplo de 1 ng até 500ng) às composições para PCR acima mencionadas, sendo a concentração das sondas, com as sequências SEQ ID nr.3 a SEQ ID nr.6, ajustada para valores de 400 a 1600nM, tal como descrito no exemplo anterior. As composições para detecção foram assim preparadas com amostras de ADN com mutação C.-1240T ou amostras com a mutação C.-1460T "diluídas" sucessivamente em amostras de ADN "wild-type".
Da mesma forma foram preparadas composições para detecção para efeitos comparativos, através da adição de ADN da amostra biológica a testar a soluções comparativas do exemplo anterior.
Exemplo 4 - Método para detecção de mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert
Para realização do método da presente invenção foram preparadas diversas composições para detecção de mutações de acordo com o descrito no exemplo anterior.
Neste exemplo foi utilizado ADN de linhas celulares ou ADN de tecido tumoral, fresco ou fixado em formol e embebido em parafina.
As composições de detecção do exemplo anterior foram submetidas a processos de amplificação e hibridização em PCR em Tempo Real e em PCR em Tempo Digital. As composições foram igualmente submetidas a ensaios em simultâneo (Multiplex) , usando-se na mesma reacção sondas para ambas as mutações em análise, sendo as sondas marcadas com fluoróforos distintos. Entre os fluoróforos mais comuns encontram-se os compostos conhecidos por Alexa Fluor, FAM, TET, JOE, VIC, HEX, Cy3, ATTO 550, TAMRA, ROX, Cy5, Cy5.5. Para realização do método em PCR em Tempo Real foi utilizado o aparelho ABI Prism® 7500 Fast comercializado pela empresa ThermoFi scher Scientific.
Condições de amplificação e hibridização : Ia fase: 1 ciclo de 10 minutos a 95°C
2a fase: 45 ciclos compreendendo 30 segundos a 92°C, 1 minuto a 60°C, com descida da temperatura de 0,2°C por ciclo a partir do ciclo 25
3a fase: 1 ciclo de 1 minuto a 57°C, com aquisição de sinal
Exemplo 5 - Método para detecção de mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert numa amostra de urina
Foram obtidas amostras de urina de doentes com cancro da bexiga ou de doentes em programas de vigilância clinica (por cistoscopia) para a eventual recorrência do tumor. A urina foi centrifugada a uma força superior a 1000 vezes a força gravitacional (1000G) durante um intervalo de tempo superior a 5 minutos, por forma a sedimentar as células escamadas do epitélio da bexiga presentes na urina. A partir das células sedimentadas foi obtido ADN utilizando métodos comuns conhecidos na arte, tais como o QIAamp® comercializado pela empresa Qiagen ou métodos similares. Entre 1 e 500ng do ADN assim obtido foram adicionadas às composições de amplificação para detecção de mutações preparadas de acordo com o descrito nos exemplos 1, 2 e 3.
As composições de detecção do exemplo 3 foram submetidas a processos de amplificação e hibridização em PCR em Tempo Real e em PCR em Tempo Digital. As composições foram igualmente submetidas a ensaios em simultâneo (Multiplex) , usando-se na mesma reacção sondas para ambas as mutações em análise, sendo as sondas marcadas com fluoróforos distintos. Entre os fluoróforos mais comuns encontram-se os compostos conhecidos por Alexa Fluor, FAM, TET, JOE, VIC, HEX, Cy3, ATTO 550, TAMRA, ROX, Cy5, Cy5.5.
Para realização do método em PCR em Tempo Real foi utilizado o aparelho ABI Prism® 7500 Fast comercializado pela empresa ThermoFi scher Scientific.
Condições de amplificação e hibridização: Ia fase: 1 ciclo de 10 minutos a 95°C
2a fase: 45 ciclos compreendendo 30 segundos a 92°C, 1 minuto a 60°C, com descida da temperatura de 0,2°C por ciclo a partir do ciclo 25
3a fase: 1 ciclo de 1 minuto a 57°C, com aquisição de sinal
Utilizando este método, as mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert foram detectadas tanto em doentes com cancro da bexiga, quer de baixo como de alto grau, assim como em doentes com recorrência do cancro da bexiga (Figura7) .
Em conclusão :
Foi verificada a especificidade das sondas, isto é, foi avaliado se as sondas para a mutação -1240T (Sondas com SEQ ID nr .3 e SEQ ID nr .4 ) não produzia amplificação numa amostra de ADN heterozigótica para a mutação -1460T (ADN MUT 146) e vice-versa (com sondas com SEQ ID nr .5 e SEQ ID nr.6) (Fig.3A e 3B) , ou seja verifica-se que não existem fenómenos de falsa detecção ou detecção cruzada entre as referidas sondas e as respectivas mutações.
Nas amostras de ADN derivado de fluidos biológicos, em que existem quantidades reduzidas de alelos mutados num ambiente onde predominam alelos "Wild-Type", a sensibilidade analítica das sondas -124T e -146T, numa concentração final de 400nM, na sua capacidade de detecção das respectivas mutações, é mantida até um limite de 3,125% no caso da Sonda -124T e 6,25% no caso da Sonda -146T (Figura 4-A e B, respectivamente), o que claramente demonstra a elevada eficácia das sondas para a detecção das respectivas mutações em condições de elevada diluição em alelos "wild-type" e, por isso, a ultra sensibilidade do método da presente invenção.
Em condições em que se utilizaram 25% de ADNMUT/ADNWT , é possível observar, que em condições de baixa concentração da sonda para o alelo "wild-type" (por exemplo 250nM) a utilização de uma maior concentração da sonda para os alelos mutados -124T e -146T (400- 800-1600nM) resulta num aumento significativo do sinal de detecção dos alelos mutados (Fig. 5 painéis A e B, respectivamente), o que claramente indica que através da manipulação da concentração das sondas é possível ajustar a sensibilidade do método da presente invenção para a detecção das mutações em causa.
Ao aumento da eficiência na detecção dos alelos mutados -124T e - 146T, correspondeu um aumento significativo da sensibilidade analítica do método da invenção, passando para valores mínimos de detecção de 1,56% no caso do alelo -124T e de 0,78% no caso do alelo -146T (Fig. 6 A e B, respectivamente), o que claramente indica que através da manipulação da concentração das sondas é possível potenciar a sensibilidade analítica do método da presente invenção para a detecção das mutações em causa, mantendo a sua especificidade .
Referências :
1. Hayflick, L. and P.S. Moorhead, The serial cultivation of human diploid cell strains. Exp Celi Res, 1961. 25: p. 585-621.
2. Blackburn, E.H., Structure and function of telomeres. Nature, 1991. 350 (6319) : p. 569-73.
3. Greider, C.W., Telomerase is processive. Mol Cell Biol, 1991. 11 (9) : p. 4572-80.
4. Szostak, J.W. and E.H. Blackburn, Cloning yeast telomeres on linear plasmid vectors. Cell, 1982. 29(1) : p. 245-55.
5. Gunes, C. and K.L. Rudolph, The role of telomeres in stem cells and câncer. Cell, 2013. 152 ( 3 ) : p .390-3
6. Murnane, J.P., Telomere dysfunction and chromosome instability. Mutat Res, 2012. 730(1-2): p. 28-36.
7. Cesare, A.J. and R.R. Reddel, Alternative lengthening of telomeres: models, mechanisms and implications . Nat Rev Genet, 2010. 11 (5) : p. 319-30.
8. Kim, N.W., et al . , Specific association of human telomerase activity with immortal cells and câncer. Science, 1994. 266(5193) : p. 2011-5.
9. Kyo, S., et al . , Understanding and exploiting hTERT promoter regulation for diagnosis and treatment of human cancers . Câncer Sei, 2008. 99(8): p. 1528-38.
10. Aubert, G. and P.M. Lansdorp, Telomeres and aging. Physiol Rev, 2008. 88(2): p. 557-79.
11. Killela, P.J., et al . , TERT promoter mutations oceur frequently in gliomas and a subset of tumors derived from cells with low rates of self-renewal . Proc Natl Acad Sei U S A, 2013. 110(15): p. 6021- 6. 12. Liu, X., et al . , Highly prevalent TERT promoter mutations in aggressive thyroid cancers. Endocr Relat Cancer, 2013. 20(4) : p. 603-10.
13. Nault, J.C., et al . , High frequency of telomerase reverse- transcriptase promoter somatic mutations in hepatocellular carcinoma and preneoplastic lesions. Nat Commun, 2013. 4: p. 2218.
14. Vinagre, J., et al . , Frequency of TERT promoter mutations in human cancers. Nat Commun, 2013. 4: p. 2185.
Lisboa, 2 de maio de 2016

Claims

REIVINDICAÇÕES
1. Um conjunto de sequências de nucleótidos para a detecção das mutações c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert caracterizada por compreender as SEQ ID nr. 1 a SEQ ID nr.2 e pelo menos as SEQ ID nr .3 a SEQ ID nr .4 e/ou SEQ ID nr .5 a SEQ ID nr .6.
2. Uma composição de amplificação e hibridização por PCR para detecção das mutações c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert caracterizada por compreender, para além de soluções reagente para PCR, as sequências de nucleótidos com as SEQ ID nr.l a SEQ ID nr.2 e pelo menos as SEQ ID nr .3 a SEQ ID nr .4 e/ou SEQ ID nr .5 a SEQ ID nr .6 tal como descrito na reivindicação 1.
Uma composição, de acordo com a reivindicação anterior, caracterizada por pelo menos uma das sequências SEQ ID nr.
3 a SEQ ID nr .6 estar presente nessa composição na concentração final de 400nM a 1600nM.
4. Uma composição, de acordo com a reivindicação anterior, caracterizada por as sequências de nucleótidos SEQ ID nr.3 a SEQ ID nr .6 estarem presentes nessa composição em concentrações finais de 800nM a 1600nM.
5. Uma composição, de acordo com a reivindicação anterior, caracterizada por as sequências de nucleótidos SEQ ID nr.3 e SEQ ID nr .5 estarem presentes nessa composição em concentrações finais de 250nM a 500nM e por as sequências de nucleótidos SEQ ID nr .4 e SEQ ID nr .6 estarem presentes nessa composição em concentrações finais de 800nM a 1600nM.
Uma composição de acordo com a reivindicação anterior caracterizada por compreender as seguintes concentração das SEQ ID nr.3 a SEQ ID nr .6: i) de 250nM a 500nM de SEQ ID nr.3, de 400nM a 1600nM de SEQ ID nr.4, de 250nM a 500nM de SEQ ID nr .5 e de 400nM a 1600nM de SEQ ID nr .6,
ou
1 ii) de 250nM a 500nM de SEQ ID nr.3, de 800nM a 1600nM de SEQ ID nr.4, de 250nM a 500nM de SEQ ID nr .5 e de 800nM a 1600nM de SEQ ID nr .
6.
7. Uma composição para detecção de mutações c-124 c>t e c-146 c>t no promotor do gene Htert caracterizada por compreender, para além de ADN humano obtido a partir uma amostra biológica in vitro, pelo menos uma composição de amplificação e hibridização por PCR, tal como escrito em qualquer uma das reivindicações 2 a 6.
Uma composição de acordo com a reivindicação anterior caracterizada por compreender uma quantidade de ADN da amostra a testar, na referida composição, numa concentração final inferiores a 500ng, inferiores a lOOng, a 50ng e superiores a lng .
Um estojo para a detecção das mutações c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert caracterizado por compreender pelo menos uma composição para detecção de mutações tal como descrito em qualquer uma das reivindicações 7 a 8.
10. Um estojo, de acordo com a reivindicação anterior caracterizado por adicionalmente compreender pelo menos uma amostra de ADN contendo a mutação c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert.
11. Um método in vitro para a detecção de mutações c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert caracterizada por compreender os seguintes passos:
a) Preparação de uma composição de detecção tal como descrito nas reivindicações 7 a 8, pela promoção do contacto de ADN extraído de uma amostra biológica, a testar para a referida mutação, com uma composição para amplificação e hibridização por PCR de acordo com o descrito nas reivindicações 2 a 6, b) Amplificação e hibridação do ADN da amostra da composição de detecção de (a) através de reacção por PCR,
c) Análise das curvas de amplificação obtidas em (b) e verificação da presença de crescimento exponencial de um sinal de fluorescência, o que corresponde à positividade para a presença de mutação c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert da amostra em análise.
2
12. Um método de acordo com a reivindicação anterior em que a amostra biológica de (a) é proveniente de urina, plasma, fluido cérebroespinal , citologias aspirativas de um ser humano.
13. Um método de acordo com a reivindicação anterior em que a quantidade de ADN da amostra biológica na composição de (a) varia numa concentração final inferior a 500ng, inferiores a lOOng, inferior a 50ng e superior a lng.
14. Um método de acordo com as reivindicações 11 a 13 em que as condições de amplificação são as seguintes:
• Ia fase:l ciclo de 10 minutos a 95°C
• 2a fase: 45 ciclos compreendendo 30 segundos a 92°C, 1 minuto a 60°C, com descida da temperatura de 0,2°C por ciclo a partir do ciclo 25
• 3a fase:l ciclo de 1 minuto a 57°C, com aquisição de sinal.
Um método de tratamento de patologias humanas relacionadas com uma mutação c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert caracterizado por se administrar uma quantidade adequada de um inibidor do promotor do gene Htert a um individuo cu a amostra biológica tenha assinalado positivo num teste de detecção das mutações c-124 c>t e/ou c-146 c>t no promotor do gene Htert, que compreende os passos de um método tal como o descrito em qualquer uma das reivindicações 11 a 14.
Lisboa, 2 de maio de 2016
3
PCT/PT2016/050007 2015-04-30 2016-05-02 Método, sequências, composições e estojo para detecção de mutações no promotor do gene htert WO2016175672A1 (pt)

Priority Applications (9)

Application Number Priority Date Filing Date Title
BR112017023109-3A BR112017023109A2 (pt) 2015-04-30 2016-05-02 método, sequências, composições e estojo para detecção de mutações no promotor do gene htert
AU2016256302A AU2016256302B2 (en) 2015-04-30 2016-05-02 Method, sequences, compositions and kit for detection of mutations in the Htert gene promoter
RU2017141563A RU2720257C2 (ru) 2015-04-30 2016-05-02 СПОСОБ, ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТИ, КОМПОЗИЦИИ И НАБОР ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ ИЗМЕНЕНИЙ В ПРОМОТОРЕ ГЕНА hTERT
US15/569,964 US20180155793A1 (en) 2015-04-30 2016-05-02 Method, sequences, compositions and kit for detection of changes in the promoter of the gene htert
DK16732356.7T DK3301186T3 (da) 2015-04-30 2016-05-02 Fremgangsmåde, sekvenser, sammensætninger og kit til detektering af mutationer i promotoren af genet htert
ES16732356T ES2873049T3 (es) 2015-04-30 2016-05-02 Método, secuencias, composiciones y kit para la detección de mutaciones en el promotor del gen Htert
CA2984516A CA2984516C (en) 2015-04-30 2016-05-02 Method, sequences, compositions and kit for detection of changes in the promoter of the gene htert
EP16732356.7A EP3301186B1 (en) 2015-04-30 2016-05-02 Method, sequences, compositions and kit for detection of mutationen in the promoter of the gene htert
CN201680038603.8A CN109790580A (zh) 2015-04-30 2016-05-02 用于检测Htert基因的启动子中的突变的方法，序列，组合物和试剂盒

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PT108419A PT108419B (pt) 2015-04-30 2015-04-30 Método, sequências, composições e estojo para detecção de mutações no promotor do gene htert
PT108419 2015-04-30

Publications (2)

Publication Number Publication Date
WO2016175672A1 WO2016175672A1 (pt) 2016-11-03
WO2016175672A9 true WO2016175672A9 (pt) 2018-04-26

Family

ID=56236045

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/PT2016/050007 WO2016175672A1 (pt) 2015-04-30 2016-05-02 Método, sequências, composições e estojo para detecção de mutações no promotor do gene htert

Country Status (9)

Country Link
US (1) US20180155793A1 (pt)
EP (1) EP3301186B1 (pt)
CN (1) CN109790580A (pt)
AU (1) AU2016256302B2 (pt)
BR (1) BR112017023109A2 (pt)
CA (1) CA2984516C (pt)
PT (1) PT108419B (pt)
RU (1) RU2720257C2 (pt)
WO (1) WO2016175672A1 (pt)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110724742A (zh) * 2019-10-18 2020-01-24 航天中心医院 一种检测人tert基因启动子热点突变的试剂盒
CN111424094A (zh) * 2019-10-18 2020-07-17 航天中心医院 一种检测人tert基因启动子热点突变的方法

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014160834A1 (en) 2013-03-27 2014-10-02 The Johns Hopkins University Tert promoter mutations in cancer
WO2015049063A1 (en) * 2013-10-02 2015-04-09 Deutsches Krebsforschungszentrum Stiftung des öffentlichen Rechts Human tert promoter variants, as well as kits, methods and uses thereof
CN106164299A (zh) 2014-04-01 2016-11-23 约翰·霍普金斯大学 人类癌症中的tert和braf突变

Also Published As

Publication number Publication date
CN109790580A (zh) 2019-05-21
EP3301186B1 (en) 2021-01-27
RU2017141563A (ru) 2019-05-31
PT108419B (pt) 2021-03-16
AU2016256302A1 (en) 2017-11-30
AU2016256302B2 (en) 2022-02-24
CA2984516C (en) 2024-01-09
PT108419A (pt) 2016-10-31
RU2720257C2 (ru) 2020-04-28
BR112017023109A2 (pt) 2018-07-10
RU2017141563A3 (pt) 2020-02-19
CA2984516A1 (en) 2016-11-03
EP3301186A1 (en) 2018-04-04
US20180155793A1 (en) 2018-06-07
WO2016175672A1 (pt) 2016-11-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU2017268486B2 (en) Methods for detecting nucleic acid sequence variants
WO2015183837A1 (en) Compositions, methods, and uses related to ntrk2-tert fusions
WO2006033664A1 (en) Determining cancer-linked genes and therapeutic targets using molecular cytogenetic methods
JP2019519540A (ja) 肺癌患者におけるａｌｋ阻害薬療法に対する応答を予測する未分化リンパ腫キナーゼにおける新規な変異
KR20130094342A (ko) 인간 표피 성장 인자 수용체 유전자 내의 돌연변이를 탐지하기 위한 방법 및 조성물
CN109266721B (zh) 一种基于无猝灭分子信标检测端粒酶活性的方法
KR20110036646A (ko) 변이의 검출 방법 및 그것에 이용하는 키트
WO2015183836A1 (en) Compositions, methods, and uses related to ntrk2-tert fusions
JP6145083B2 (ja) Ｊａｋ２核酸中の変異を検出するための組成物および方法
CN116761899A (zh) 结直肠癌分子分型及生存风险基因群及诊断产品和应用
ES2691306T3 (es) Procedimientos y composiciones para detectar mutaciones en el gen PI3KCA (PIK3CA) humano
JP2001204483A (ja) ｈＴＥＲＴｍＲＮＡの発現の定量
KR20130029748A (ko) ＩＬ28Ｂ(ｒｓ8099917)와 ＩＴＰＡ(ｒｓ1127354)의 변이를 검출하는 방법
WO2011093606A2 (ko) Pna 기반의 실시간 pcr 클램핑을 이용한 braf 돌연변이 검출 방법 및 키트
WO2016175672A9 (pt) Método, sequências, composições e estojo para detecção de mutações no promotor do gene htert
KR101359851B1 (ko) 간세포암종의 예후 진단용 단일 염기 다형성
CN102906276B (zh) 用于对肝细胞癌复发进行预测的单核苷酸多态性
US11414698B2 (en) Method of quantifying mutant allele burden of target gene
ES2564674T3 (es) Nuevas mutaciones complejas en el dominio quinasa del receptor del factor de crecimiento epidérmico
Yadav et al. Telomerase Structure and Function, Activity and Its Regulation with Emerging Methods of Measurement in Eukaryotes
ES2873049T3 (es) Método, secuencias, composiciones y kit para la detección de mutaciones en el promotor del gen Htert
ES2688840T3 (es) Mutaciones en el dominio cinasa del receptor del factor de crecimiento epidérmico
JP2018088883A (ja) 上皮成長因子受容体遺伝子変異の検出方法
US20140093872A1 (en) Method of Mutation Detection in Blood Cell-Free DNA Using Primer Extension (PE) and PCR
US20120244536A1 (en) Detection of Bladder Cancer Recurrence

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 16732356

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2984516

Country of ref document: CA

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 15569964

Country of ref document: US

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

REG Reference to national code

Ref country code: BR

Ref legal event code: B01A

Ref document number: 112017023109

Country of ref document: BR

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2016256302

Country of ref document: AU

Date of ref document: 20160502

Kind code of ref document: A

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2017141563

Country of ref document: RU

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 112017023109

Country of ref document: BR

Kind code of ref document: A2

Effective date: 20171026