WO2016158897A1 - 細胞のシート形成能の評価方法 - Google Patents

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WO2016158897A1
WO2016158897A1 PCT/JP2016/060010 JP2016060010W WO2016158897A1 WO 2016158897 A1 WO2016158897 A1 WO 2016158897A1 JP 2016060010 W JP2016060010 W JP 2016060010W WO 2016158897 A1 WO2016158897 A1 WO 2016158897A1
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sheet
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cell
cells
forming ability
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PCT/JP2016/060010
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竹内涼平
頼紘一郎
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テルモ株式会社
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    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/483—Physical analysis of biological material
    • G01N33/4833—Physical analysis of biological material of solid biological material, e.g. tissue samples, cell cultures
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/02—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating impedance
    • G01N27/04—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating impedance by investigating resistance
    • G01N27/041—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating impedance by investigating resistance of a solid body
    • G—PHYSICS
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    • G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/02—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating impedance
    • G01N27/026—Dielectric impedance spectroscopy

Definitions

  • the present invention relates to a method and system for evaluating the sheet forming ability of cells.
  • Non-Patent Document 1 fetal cardiomyocytes, skeletal myoblasts, mesenchymal stem cells, cardiac stem cells, ES cells, etc. have been tried to repair myocardial tissue damaged by ischemic heart diseases such as angina pectoris and myocardial infarction.
  • Patent Document 1 cell structures formed using scaffolds and sheet-shaped cell cultures in which cells are formed into sheets have been developed.
  • sheet cell culture For the application of sheet cell culture to the treatment, use of cultured epidermis sheet for skin damage caused by burns, use of corneal epithelial sheet cell culture for corneal injury, oral mucosa sheet for endoscopic resection of esophageal cancer Studies such as the use of cell cultures are ongoing.
  • Patent Document 2 determines the sheet-like state of the sheet-like cell culture by measuring the non-adherent cell concentration in the liquid medium or the change in the sheet culture.
  • Patent Document 3 describes a method for calculating the adhesion rate between a sheet-forming cell and a culture container, and determining the formation of a sheet-shaped cell culture based on this.
  • An object of the present invention is to provide a method and system for evaluating the sheet forming ability of cells.
  • the present inventor studied the sheet-shaped cell culture, and even when the sheet-shaped cell culture was produced under the same culture conditions, the sheet-shaped cell culture was broken when peeled from the culture substrate, and the sheet shape In some cases, the sheet-like cell culture may spontaneously peel off from the culture substrate before the end of the sheet culture period. Then, if we were able to determine in some way whether cells could form a normal sheet-like cell culture under normal conditions, we proceeded further research and thought that the production of sheet-like cell culture could be made more efficient.
  • the present invention has been completed by finding that cells capable of forming a normal sheet-shaped cell culture can be distinguished from cells not capable of forming a normal sheet-like cell culture based on numerical values such as the electrical resistance of the cell culture at the time of culture.
  • the present invention relates to the following. ⁇ 1> (1) determining impedance and / or electrical resistance of a cell culture during sheet culture or a numerical value related thereto, (2) comparing the numerical value determined in step (1) with a reference value; (3) A method for evaluating cell sheet-forming ability, comprising the step of determining cell sheet-forming ability based on the comparison result obtained in step (2).
  • ⁇ 2> (1) determining the impedance and / or electrical resistance of a cell culture during sheet culture or a numerical value related thereto, (2) comparing the numerical value determined in step (1) with a reference value; (3) A step of determining the sheet-forming ability of cells based on the comparison result obtained in step (2) (4) A step of controlling the manufacturing process of the sheet-shaped cell culture based on the determination result obtained in step (3) A method for producing a sheet-shaped cell culture.
  • ⁇ 3> The method according to ⁇ 1> or ⁇ 2> above, wherein in step (1), determination of impedance and / or electrical resistance is periodically performed.
  • step (1) determination of impedance and / or electrical resistance is periodically performed.
  • step (1) the phase of the voltage with respect to the current is further determined.
  • step (1) the impedance determination in step (1) is performed at two or more frequencies.
  • a numerical value related to impedance is a parameter selected from the group consisting of electrical resistance, capacitance, Rb, ⁇ , Rb / ⁇ , Cm of cell culture, and peak value, peak time and peak of the parameter.
  • ⁇ 7> Any one of the above ⁇ 1> to ⁇ 6>, wherein in step (3), when the electric resistance is less than or equal to a reference value or less than the reference value, it is determined that the cell sheet forming ability is low.
  • the method described in 1. ⁇ 8> The above ⁇ 6> or ⁇ 7>, wherein in step (3), when Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ are equal to or less than the reference value or smaller than the reference value, it is determined that the cell sheet forming ability is low. The method described in 1.
  • step (3) when Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ are greater than or equal to a reference value or greater than the reference value, the cell sheet forming ability is determined to be appropriate or excessive, ⁇ 6> or ⁇ 7>.
  • step (3) when the numerical value selected from the group consisting of the peak value of electrical resistance, the peak value of Rb, and the slope to the peak of Rb is less than or equal to the reference value, and / or Alternatively, when the numerical value selected from the group consisting of the peak time of electrical resistance and the peak time of Rb is greater than or equal to a reference value or greater than the reference value, the cell sheet forming ability is determined to be low ⁇ 6> The method described in 1.
  • step (3) the numerical value selected from the group consisting of the peak time of electrical resistance and the peak time of Rb is less than or equal to the reference value and less than the reference value, and the peak value of Rb / ⁇ and Rb
  • the numerical value selected from the group consisting of the slopes up to the peak of / ⁇ is less than or equal to the reference value and / or selected from the group consisting of the peak time of electrical resistance and the peak time of Rb
  • the cell sheet forming ability is determined to be appropriate. 6>.
  • step (3) if the numerical value selected from the group consisting of the peak value of Rb / ⁇ and the slope to the peak of Rb / ⁇ is greater than or equal to the reference value, and / or The method according to ⁇ 6> above, wherein when the peak time of Rb / ⁇ is equal to or less than a reference value or smaller than the reference value, the cell sheet forming ability is determined to be excessive.
  • a system for evaluating the sheet-forming ability of a cell comprising a container for culturing cells into a sheet and a measuring instrument for determining impedance and / or electrical resistance of the cell culture in the container .
  • the sheet forming ability of the cell can be determined by the sheet forming ability evaluation method of the present invention
  • the sheet-like cell culture is adjusted by adjusting the manufacturing process of the sheet-like cell culture according to the sheet forming ability of the cells. This makes it possible to increase the efficiency of manufacturing.
  • FIG. 1 is a photograph showing the appearance of a release sheet.
  • FIG. 2 is a photograph showing the appearance of the weak sheet.
  • FIG. 3 is a photograph showing the appearance of a normal sheet.
  • FIG. 4 is a graph showing temporal changes in electrical resistance (R) of a weak sheet (Weak), a normal sheet (Normal), and a release sheet (Detaching).
  • FIG. 5 is a graph showing changes over time in Rb and ⁇ of a weak sheet (Weak), a normal sheet (Normal), and a release sheet (Detaching).
  • FIG. 6 is a graph showing the change over time of Rb / ⁇ of a weak sheet (Weak), a normal sheet (Normal), and a release sheet (Detaching).
  • FIG. 1 is a photograph showing the appearance of a release sheet.
  • FIG. 2 is a photograph showing the appearance of the weak sheet.
  • FIG. 3 is a photograph showing the appearance of a normal sheet.
  • FIG. 4 is a graph showing
  • FIG. 7 is a graph showing the peak values of electrical resistance (R), Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ of a weak sheet (Weak), a normal sheet (Normal), and a release sheet (Detaching). * Represents p ⁇ 0.005.
  • FIG. 8 is a graph showing the electric resistance (R), Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ peak times of the weak sheet (Weak), normal sheet (Normal), and release sheet (Detaching).
  • FIG. 9 is a graph showing the slopes of the weak sheet (Weak), normal sheet (Normal), and release sheet (Detaching) to the electric resistance (R), Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ peaks. * Represents p ⁇ 0.005.
  • One aspect of the present invention is (1) determining the impedance and / or electrical resistance of a cell culture during sheeting culture or a numerical value related thereto, (2) comparing the numerical value determined in step (1) with a reference value; (3) A method for evaluating cell sheet-forming ability including the step of determining cell sheet-forming ability based on the comparison result obtained in step (2) (hereinafter sometimes abbreviated as “sheet-forming ability evaluation method”). )
  • sheet forming ability means the ability of cells to form a sheet-shaped cell culture.
  • the “sheet-like cell culture” refers to a cell-like form in which cells are connected to each other by intercellular adhesion or the like.
  • the sheet forming ability is a comprehensive ability relating to cell sheet formation, including intercellular adhesion ability, adhesion ability to a culture substrate, and the like.
  • the sheet-shaped cell culture is typically composed of one cell layer, but also includes those composed of a laminate of two or more cell layers.
  • cells may be linked to each other directly (including those via cell elements such as adhesion molecules) and / or via intervening substances.
  • the intervening substance is not particularly limited as long as it is a substance that can connect cells at least physically (mechanically), and examples thereof include an extracellular matrix.
  • the intervening substance is preferably derived from cells, particularly derived from cells constituting the sheet-shaped cell culture.
  • the cells are at least physically (mechanically) connected, but may be further functionally, for example, chemically or electrically connected.
  • the sheet-like cell culture may be attached to the culture substrate or may be released (peeled), but is typically released from the culture substrate while maintaining the sheet shape (isolation). Sometimes referred to as sheet cell culture or free sheet cell culture).
  • sheet culture means culturing cells seeded in a culture vessel so as to form a sheet-like cell culture (that is, to form a sheet).
  • cells capable of forming a sheet-like cell culture are seeded in a culture vessel, and cultured under conditions for forming a cell-cell adhesion for a predetermined period of time so that the cells interact with each other. This is done by connecting cells together.
  • Conditions that form cell-cell adhesion include any conditions that can form cell-cell adhesion, including but not limited to, general cell culture conditions. Examples of such conditions include culture at 37 ° C. and 5% CO 2 .
  • those skilled in the art can select optimal conditions according to the type of cells to be seeded.
  • Non-limiting examples of sheet culture are described in, for example, Patent Document 1, JP 2010-081829, JP 2010-226991, JP 2011-110368, JP 2011-172925, WO 2014/185517, and the like.
  • Cell seeding can be performed by any known method and condition.
  • Cell seeding may be performed by, for example, injecting a cell suspension in which cells are suspended in a sheeting medium into a container.
  • an apparatus suitable for the operation of injecting the cell suspension such as a dropper or a pipette, can be used.
  • the seeding density of the cells is not particularly limited, and may be a density at which a sheet-like cell culture can be formed without substantially growing the cells, for example. “The density at which cells can form a sheet-shaped cell culture without substantial growth” means that the sheet-shaped cell culture is expressed when cultured in a non-proliferating medium that does not substantially contain growth factors. It means the cell density that can be formed. This seeding density is higher than that in the method using a culture solution containing a growth factor, and may be equal to or higher than the density at which cells reach confluence. A non-limiting example of such density is, for example, 1.0 ⁇ 10 5 pieces / cm 2 or more.
  • the upper limit of the seeding density is not particularly limited as long as the formation of the cell culture is not impaired and the cells do not shift to differentiation, but may be less than 3.4 ⁇ 10 6 cells / cm 2 .
  • the density at which cells can form a sheet-shaped cell culture without substantial growth is 1.0 ⁇ 10 5 to 3.4 ⁇ 10 6 cells / cm 2 in one embodiment, and 3. 0 ⁇ 10 5 to 3.4 ⁇ 10 6 pieces / cm 2 , in yet another embodiment, 3.5 ⁇ 10 5 to 3.4 ⁇ 10 6 pieces / cm 2 , and in yet another embodiment, 1.0 ⁇ 10 6 3.4 ⁇ 10 6 pieces / cm 2 , in another embodiment 3.0 ⁇ 10 5 to 1.7 ⁇ 10 6 pieces / cm 2 , and in another embodiment 3.5 ⁇ 10 5 to 1.7 ⁇ 10 6 pieces / cm 2 , and in yet another aspect, 1.0 ⁇ 10 6 to 1.7 ⁇ 10 6 pieces / cm 2 .
  • the said range may include both an upper limit and a lower limit, or any one thereof. Therefore, the density is, for example, 3.0 ⁇ 10 5 pieces / cm 2 or more and less than 3.4 ⁇ 10 6 pieces / cm 2 (including the lower limit and not including the upper limit), 3.5 ⁇ 10 5 pieces / cm 2.
  • the sheeting medium used for forming the sheet is not particularly limited as long as it has conductivity.
  • physiological saline various physiological buffers including electrolytes (for example, PBS, HBSS, etc.), various cell cultures, and the like.
  • basal media for use may be used.
  • Such a basal medium is not limited, for example, DMEM, MEM, F12, DME, RPMI 1640, MCDB (MCDB102, 104, 107, 120, 131, 153, 199 etc.), L15, SkBM, RITC80-7, DMEM / F12 and the like are included.
  • Many of these basal media are commercially available, and their compositions are also known.
  • the basal medium may be used in a standard composition (for example, as it is commercially available), or the composition may be appropriately changed depending on the cell type and cell conditions. Therefore, the basal medium used in the present invention is not limited to those having a known composition, and includes one in which one or more components are added, removed, increased or decreased.
  • the sheeting medium may contain additives such as serum (eg, bovine serum such as fetal bovine serum, horse serum, human serum, etc.), various growth factors (eg, FGF, EGF, VEGF, HGF, etc.).
  • Adherent cells include, for example, adherent cells (adherent cells).
  • Adherent cells include, for example, adherent somatic cells (eg, cardiomyocytes, fibroblasts, epithelial cells, endothelial cells, hepatocytes, pancreatic cells, kidney cells, adrenal cells, periodontal cells, gingival cells, periosteum cells, skin Cells, synovial cells, chondrocytes, etc.) and stem cells (eg, tissue stem cells such as myoblasts, cardiac stem cells, embryonic stem cells, pluripotent stem cells such as iPS (induced pluripotent stem) cells, mesenchymal stem cells, etc.) Etc.
  • adherent somatic cells eg, cardiomyocytes, fibroblasts, epithelial cells, endothelial cells, hepatocytes, pancreatic cells, kidney cells, adrenal cells, periodontal cells, gingival cells, periosteum cells, skin Cells, synovial
  • Somatic cells may be differentiated from stem cells, particularly iPS cells.
  • Non-limiting examples of cells that can form a sheet-like cell culture include, for example, myoblasts (eg, skeletal myoblasts), mesenchymal stem cells (eg, bone marrow, adipose tissue, peripheral blood, skin, hair roots) , Muscle tissue, endometrium, placenta, cord blood, etc.), cardiomyocytes, fibroblasts, cardiac stem cells, embryonic stem cells, iPS cells, synovial cells, chondrocytes, epithelial cells (eg, oral mucosal epithelium) Cells, retinal pigment epithelial cells, nasal mucosal epithelial cells, etc.), endothelial cells (eg, vascular endothelial cells), hepatocytes (eg, liver parenchymal cells), pancreatic cells (eg, islet cells), kidney cells, adrenal glands Examples include cells, periodontal ligament cells, ging
  • the determination of the impedance and / or electrical resistance of the cell culture can be performed by any known method.
  • the determination of impedance is not limited.
  • the voltage and current are determined by applying an alternating voltage to the cell culture and measuring the current, passing an alternating current through the cell culture and measuring the voltage. However, it can be performed by dividing the voltage by the current.
  • the determination of electrical resistance is not limited.
  • the voltage and current can be measured by applying a DC voltage to the cell culture and measuring the current, passing a DC current through the cell culture and measuring the voltage. Can be determined by dividing the voltage by the current.
  • Devices for determining impedance and / or electrical resistance are well known and such devices can be used to determine the impedance and / or electrical resistance of a cell culture.
  • the application of the voltage is not limited.
  • the cell culture is formed at a position where the current flowing between the working electrode and the counter electrode is blocked, and the cell culture is interposed between the working electrode and the counter electrode. This can be done by applying a voltage.
  • a working electrode and a counter electrode are arranged on the inner bottom surface of a culture vessel, a cell culture is formed thereon, and a voltage is applied between the working electrode and the counter electrode.
  • One of the working electrode and the counter electrode is disposed on the basal surface side of the cell culture, the other is disposed on the upper surface side, and a voltage is applied between the working electrode and the counter electrode.
  • ECIS Electro Cell-substrate Impedance Sensing
  • ECIS method TEER (Trans Epithelial Electric Resistance) measurement method
  • TEER Trans Epithelial Electric Resistance
  • a cell culture e.g., US Pat. No. 5,018,996
  • Devices for determining the impedance and / or electrical resistance of cell cultures are also well known (eg, US Pat. No. 5,018,996) and are commercially available (eg, Applied BioPhysics ECIS Z, ECIS Z ⁇ ). , World® Precision® Instruments EVOM2, etc.), and such an apparatus can be used in the sheet forming ability evaluation method of the present invention.
  • the phase of voltage or current may be determined accompanying the determination of impedance.
  • the determination of the phase of the voltage or current can be performed by any known method, without limitation, for example, a method using a lock-in amplifier or the like. By determining the phase of voltage or current, resistance (electric resistance), reactance, etc. can be determined from the impedance.
  • the frequency of the alternating current applied when determining the impedance may be one type or two or more types. Since the cell culture existing between the electrodes can function as a capacitor as in the ECIS model described later, the impedance can vary depending on the frequency, and this difference can also be used for evaluating the sheet forming ability.
  • the frequency to be used is not particularly limited as long as information on the sheet forming ability of cells can be obtained. For example, it may be 31.25 Hz to 64 KHz, 4 KHz to 64 KHz, etc., and in particular, 62.5 Hz, 125 Hz, 250 Hz. 500 Hz, 1 KHz, 2 KHz, 4 KHz, 8 KHz, 16 KHz, 32 KHz, 64 KHz, and the like.
  • the determination of the impedance and / or electrical resistance of the cell culture can be performed periodically. By making this determination periodically multiple times, changes in impedance and / or electrical resistance over time can be detected and / or monitored.
  • the determination interval is not particularly limited. For example, 0.001 second to 3 hours, 0.01 second to 1 hour, 0.05 seconds to 30 minutes, 0.1 seconds to 10 minutes, 1 second to 1 minute, etc. It may be.
  • the period for determining the impedance and / or electrical resistance is not particularly limited as long as information for evaluating the sheet forming ability is obtained. For example, within 72 hours, within 48 hours, within 36 hours, within 24 hours, and 12 hours. Within 10 hours, within 8 hours, within 6 hours, etc.
  • Numerical values related to impedance and / or electrical resistance are not limited, for example, numerical values determined accompanying determination of impedance and / or electrical resistance, numerical values calculated from impedance and / or electrical resistance, these Includes numerical values calculated from numerical values.
  • the numerical value determined accompanying the determination of the impedance is not limited, for example, voltage, current, frequency of AC voltage, determination time (for example, elapsed time from the start of sheet culture), voltage to be measured or Examples include current phase.
  • the numerical value determined accompanying the determination of the electrical resistance is not limited, and examples thereof include voltage, current, and determination time.
  • the numerical value calculated from the impedance and the numerical value determined accompanying the determination of the impedance is not limited, and examples thereof include, for example, electric resistance, capacitance, Rb, ⁇ , Cm, Rb / ⁇ , and peaks of the cell culture.
  • the determined impedance (Z) is resistance (R) and reactance (Xc).
  • the resistance can be obtained by dividing the voltage in phase with the current by the current, and the reactance can be obtained by dividing the voltage different from the current by the current.
  • Rb, ⁇ , and Cm can also be calculated using an ECIS model.
  • ECIS model cells seeded on the working electrode are regarded as cylindrical objects having a surface made of an insulating film and filled with a conductive electrolyte solution. When an alternating current is passed, the cell gap acts as a resistance when the current flows to the counter electrode, and the cell acts as a capacitor.
  • the resistance of the cell gap is called Rb
  • the capacitance of the cell membrane is called Cm.
  • the basal plane of the cell is not uniformly adhered to the electrode but only partially adhered, there is a uniform gap of height h between the basal plane and the electrode. Assuming that, resistance exists between the basal plane and the electrode.
  • ⁇ is used as a parameter representing the resistance between the base surface and the electrode.
  • ⁇ rc ( ⁇ / h) 0.5 , where rc represents the radius of the cell, and ⁇ represents the resistance of the medium (sheeting medium).
  • Rb and ⁇ can be calculated from the following formulas (see Giaever and Keese, Opp et al., Biosens Bioelectron. 2009 Apr 15; 24 (8): 2625-9, etc.).
  • Zc represents the impedance per unit area of the electrode coated with cells (working electrode)
  • Zn represents the impedance per unit area of the electrode not coated with cells
  • Zm represents the unit of cell culture.
  • I 0 and I 1 represent the zeroth and first order first-order modified Bessel functions
  • S represents the electrode area
  • Rn is the determined value of the resistance of the electrode not coated with cells.
  • F is the frequency of the alternating voltage
  • Cn is the determined value of the capacitance of the electrode not covered with cells
  • Rm is the resistance of the cell membrane
  • Cm is the capacitance of the cell membrane.
  • the parameters R, C, Rb, ⁇ , and Cm can be output by software attached to ECISZ ⁇ (Applied BioPhysics).
  • Rb / ⁇ is Rb divided by ⁇ .
  • the peak value and peak time represent the numerical value and elapsed time when parameters such as R, C, Rb, ⁇ , Cm, and Rb / ⁇ reach the peak, and the slope to the peak is the peak value divided by the peak time. It is a thing. As shown in Example 3, when cells were seeded, it became clear that R, Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ peaked at a relatively early stage of the sheet culture period and then gradually decreased. Therefore, by using the numerical value related to the peak for the determination, the sheet forming ability of the cell can be determined at an early stage.
  • the reference value in step 2 is a numerical value set to determine the degree of sheet forming ability of cells, and can be set by a preliminary experiment using cells with a known degree of sheet forming ability.
  • the degree of sheet-forming ability is not limited, and for example, “appropriate” sheet-forming ability to form a normal sheet-shaped cell culture (normal sheet), and “cannot form a normal sheet-shaped cell culture” 2 levels of “abnormal” sheet-forming ability, “appropriate” sheet-forming ability to form normal sheet-like cell culture (normal sheet), breaks when peeled from culture substrate, maintains sheet shape “Low” sheet-forming ability to form a sheet-shaped cell culture (weak sheet) that cannot be formed, and a sheet-shaped cell culture (release sheet) that spontaneously peels off from the culture substrate before the end of the sheet culture period 3 levels of “excessive” sheet-forming ability to be formed.
  • the reference value for determining whether the sheet-forming ability corresponds to the above-described two-stage or three-stage level is not limited, and is, for example, a predetermined ratio or more of cells having a certain level of sheet-forming ability
  • Non-limiting examples of such proportions include, for example, 60%, 70%, 80%, 85%, 90%, 95%, 97%, 98%, 99%, 100%. The higher this ratio, the higher the reliability as the reference value.
  • the reference value may be set for all types of numerical values, or may be set only for specific types of numerical values useful for evaluating sheet forming ability.
  • the types of numerical values useful for evaluation of sheet forming ability are not limited, and for example, it is possible to select numerical types that show a statistically significant difference between cell groups having different levels of sheet forming ability. .
  • the reference value may vary depending on the type of cells constituting the cell culture and the composition ratio of the cell types.
  • those skilled in the art can set an appropriate reference value for a cell population having a specific cell type or a specific cell composition ratio by referring to the present specification, particularly the following example. Accordingly, it should be understood that the specific numerical values of the reference values described in the following examples are merely examples, and the scope of the present invention is not limited to these specific numerical values.
  • the comparison between the numerical value determined in step (1) and the reference value is, for example, when the reference value is a single numerical value, whether the numerical value determined in step (1) is greater than, smaller than, or equal to the reference value, When the reference value is in the numerical range by determining whether it is less than or equal to the reference value, the numerical value determined in step (1) is included in the reference value, greater than the upper limit, or lower than the lower limit. This can be done by determining whether it is small, above the upper limit, or below the lower limit.
  • the sheet forming ability in step (3) for example, as a result of comparing the numerical value determined in step (1) with a reference value, it is determined which standard the sheet forming ability corresponds to. This can be done by determining based on the nature of the value. For example, when the reference value is a single numerical value, a value less than the reference value is associated with an “abnormal” sheet forming ability and a reference value or more is associated with a “proper” sheet forming ability, the numerical value determined in step (1) Is less than the reference value, it can be determined that the sheet forming ability is “abnormal”, and if it is greater than the reference value, the sheet forming ability can be determined to be “appropriate”.
  • the reference value is a numerical value range
  • the sheet value within the range of the reference value is “appropriate”
  • the sheet forming ability below the lower limit of the reference value is “low”
  • Steps (2) to (3) may be performed only once or a plurality of times. For example, when determining the sheet forming ability of three or more stages, the sheet forming ability can be determined one step each time Steps (2) to (3) are performed once. More specifically, for example, referring to Example 3, when “less than 550 ⁇ ” is set as the reference value of the peak value of electrical resistance, cells with low sheet forming ability and “appropriate sheet forming ability” "And" excess "cells can be distinguished from each other, but it is not possible to sufficiently distinguish between cells having the proper sheet forming ability and cells having the" excess "sheet forming ability.
  • step (3) when the electric resistance is equal to or lower than the reference value or smaller than the reference value, it is determined that the sheet forming ability of the cell is low. In another aspect of step (3), when Rb, ⁇ and Rb / ⁇ are equal to or smaller than the reference value or smaller than the reference value, it is determined that the cell sheet forming ability is low. In another aspect of step (3), when Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ are greater than or equal to a reference value or greater than the reference value, the cell sheet forming ability is determined to be appropriate or excessive. As shown in FIGS.
  • the electric resistance, Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ are lower in cells having a low sheet forming ability than in cells having an appropriate or excessive sheet forming ability at all time points of sheet culture.
  • the electrical resistance, Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ may be determined at any point during the sheet culture.
  • step (3) when the numerical value selected from the group consisting of the peak value of electrical resistance, the peak value of Rb, and the slope to the peak of Rb is less than or equal to the reference value, And / or when the numerical value selected from the group consisting of the peak time of electrical resistance and the peak time of Rb is greater than or equal to the reference value or greater than the reference value, it is determined that the sheet forming ability of the cells is low.
  • the numerical value selected from the group consisting of the peak time of electrical resistance and the peak time of Rb is less than or equal to the reference value and is a peak value of Rb / ⁇ .
  • step (3) the numerical value selected from the group consisting of the peak value of Rb / ⁇ and the slope to the peak of Rb / ⁇ is greater than or equal to the reference value, and / or Alternatively, when the Rb / ⁇ peak time is equal to or less than the reference value or smaller than the reference value, it is determined that the sheet forming ability of the cell is excessive.
  • the sheet-forming ability evaluation method of the present invention is a sheet-like cell representing a lot consisting of a plurality of sheet-like cell cultures produced under the same conditions even when applied to a sheet-like cell culture actually used for transplantation or the like. It may be applied to cultures. In the latter case, the result of the sheet forming ability evaluation by this method can be applied to the whole lot to which the culture belongs. In this case, the production process of the entire lot to which the culture belongs can be adjusted based on the result of the sheet forming ability quality evaluation by this method.
  • an extracellular matrix component for example, collagen, laminin, fibronectin, vitronectin, gelatin, proteoglycan, glycosylated to medium
  • an extracellular matrix component for example, collagen, laminin, fibronectin, vitronectin, gelatin, proteoglycan, glycosylated to medium
  • Saminoglycans, etc. and factors that promote the production of extracellular matrix (eg, ascorbic acid, derivatives thereof (eg, ascorbic acid 2-phosphate, ascorbic acid monophosphate, etc.), salts thereof (eg, sodium salt, magnesium salt) Etc.)), use of culture substrates coated with serum, extracellular matrix components, etc., seeding at higher cell density, etc. Can do.
  • a culture substrate having high cell adhesion for example, a culture substrate having a negatively charged surface (Corning (R) CellBIND ( R), etc.) and the use of a culture substrate coated with an adhesion factor, etc., and the adhesion between cells and the culture substrate, such as coating with serum, extracellular matrix components, adhesion factors, etc. on the surface of the culture substrate
  • Measures for early detection of signs of detachment such as measures to reduce the sheet culture time and frequent monitoring to detect detachment of the sheet-shaped cell culture from the culture substrate at an early stage be able to.
  • Another aspect of the present invention is (1) determining the impedance and / or electrical resistance of a cell culture during sheeting culture or a numerical value related thereto, (2) comparing the numerical value determined in step (1) with a reference value; (3) A step of determining the sheet-forming ability of cells based on the comparison result obtained in step (2) (4) A step of controlling the manufacturing process of the sheet-shaped cell culture based on the determination result obtained in step (3) And a method for producing a sheet-shaped cell culture (hereinafter sometimes abbreviated as “manufacturing method” or “controlled manufacturing method”).
  • Steps (1) to (3) in the controlled production method of the present invention are as described above for the sheet forming ability evaluation method of the present invention.
  • step (4) the manufacturing process of the sheet-shaped cell culture is variously controlled based on the determination result obtained in step (3).
  • the sheet-shaped cell culture whose production process is controlled is another sheet-shaped cell culture made of cells belonging to the same cell population (lot), even if it is in the form of sheet culture in step (1). May be. In the latter case, the production of the other sheet-shaped cell culture may be performed in parallel with steps (1) to (3) or after the completion of steps (1) to (3).
  • a method for producing a sheet-shaped cell culture is known, and non-limiting examples thereof include, for example, Patent Document 1, JP 2010-081829, JP 2010-226991, JP 2011-110368, JP 2011-172925, It is described in WO 2014/185517.
  • a measure for enhancing the sheet forming ability is not limited.
  • Components eg, collagen, laminin, fibronectin, vitronectin, gelatin, proteoglycan, glycosaminoglycan, etc.
  • factors that promote the production of extracellular matrix eg, ascorbic acid, its derivatives (eg, ascorbic acid diphosphate, ascorbine) Acid monophosphate, etc.
  • salts thereof eg, sodium salt, magnesium salt, etc.
  • use of a culture substrate whose surface is coated with serum, extracellular matrix components, etc., seeding at higher cell density If measures such as enhancing the bond between cells are taken, or if the sheet forming ability is determined to be excessive in step (3)
  • steps to normalize the sheet formation without limitation, for example, cell adhesion highly culture substrate (e.g., surface is charged negatively culture substrate (Corning (R) CellBIND (R ) , etc.
  • Another aspect of the present invention is a sheet forming ability of a cell comprising a container for culturing cells in a sheet and a measuring instrument for determining impedance and / or electrical resistance of the cell culture in the container.
  • a system hereinafter, may be abbreviated as “sheet forming ability evaluation system”.
  • the sheet forming ability evaluation system of the present invention can be used for the sheet forming ability evaluation method of the present invention and the manufacturing method of the present invention.
  • the cell culture container in the sheet forming ability evaluation system of the present invention is not particularly limited as long as cells can be cultivated into a sheet therein, and for example, any known cell culture container can be used.
  • the cell culture container preferably has a structure / material that does not allow the sheet-forming medium to permeate. Examples of such materials include, but are not limited to, polyethylene, polypropylene, Teflon (registered trademark), polyethylene terephthalate, polymethyl methacrylate, nylon 6,6, polyvinyl alcohol, cellulose, silicon, polystyrene, glass, polyacrylamide, polydimethyl. Examples include acrylamide.
  • the cell culture vessel may be provided with a working electrode and / or a counter electrode used for determination of impedance and / or electrical resistance.
  • the arrangement of the working electrode and / or the counter electrode is not particularly limited as long as the information necessary for determining the impedance and / or electric resistance of the cell culture can be obtained, and both the working electrode and the counter electrode are attached to the culture vessel. Even if it arrange
  • the material of the electrode is not particularly limited as long as a voltage can be applied to the cell culture and sheeting medium, and examples thereof include gold, silver, platinum, carbon, indium tin oxide and the like.
  • the cells may be seeded on the electrode, or an insert through which the sheeting medium can permeate may be inserted into the container and seeded in the insert.
  • Specific examples of the cell culture container include, for example, various commercially available ECIS (Applied BioBios) arrays (for example, 8W1E, 8W10E, 8W10E +, 8W1F, 8W1EWDD, 8W2x1E, Applied BioPhysics), and the like. .
  • the measuring instrument of the sheet forming ability evaluation system of the present invention is not particularly limited as long as it can determine the impedance and / or electrical resistance of the cell culture, and a known impedance measuring instrument, ohmmeter, or the like can be used.
  • the measuring device When the culture vessel is equipped with an electrode, the measuring device is configured to be electrically connectable to the electrode.
  • the measuring device is installed in the culture vessel connected to the measuring device.
  • An electrode may be provided.
  • the measuring instrument is preferably one that can periodically determine impedance and / or electrical resistance.
  • the determination interval is not particularly limited. For example, 0.001 second to 3 hours, 0.01 second to 1 hour, 0.05 seconds to 30 minutes, 0.1 seconds to 10 minutes, 1 second to 1 minute, etc.
  • the period for determining the impedance and / or electrical resistance is not particularly limited as long as information for evaluating the sheet forming ability is obtained. For example, within 72 hours, within 48 hours, within 36 hours, within 24 hours, and 12 hours. Within 10 hours, within 8 hours, within 6 hours, etc.
  • the measuring instrument may be capable of further determining the phase of voltage or current.
  • the determination of the phase of the voltage or current can be performed by any known method, without limitation, for example, a method using a lock-in amplifier or the like.
  • the measuring instrument may comprise means for determining the phase of the voltage or current, such as a lock-in amplifier.
  • the measuring instrument may be capable of determining impedance at one or more frequencies.
  • the applicable frequency is not particularly limited as long as information on the sheet forming ability of cells can be obtained, and may be, for example, 31.25 Hz to 64 KHz, 4 KHz to 64 KHz, etc. In particular, 62.5 Hz, 125 Hz, It may be 250 Hz, 500 Hz, 1 KHz, 2 KHz, 4 KHz, 8 KHz, 16 KHz, 32 KHz, 64 KHz, or the like.
  • the sheet-forming ability evaluation system of the present invention has an arbitrary configuration suitable for evaluating the sheet-forming ability of cells, for example, a processor, a display device, and the like for recording and processing data relating to impedance and / or electrical resistance from a measuring instrument. It may further include an interface such as an input device, an injector for adding cells and sheeting medium to the container, a cell culture incubator, a stirrer, and the like.
  • the sheet-forming ability evaluation system of the present invention is manufactured by connecting a communication system with a system for manufacturing a sheet-shaped cell culture or incorporating the sheet-shaped cell culture in the manufacturing system.
  • the process can be controlled. Therefore, the present invention also provides a system for producing a sheet-shaped cell culture that is communicably connected to the sheet-forming ability evaluation system of the present invention or that incorporates the sheet-forming ability evaluation system of the present invention. Also related.
  • the control of the production process of the sheet-shaped cell culture based on the evaluation of the sheet forming ability of the cells is as described above with respect to the production method of the present invention.
  • Example 1 Classification of cells by sheet-forming ability
  • a part of skeletal myoblasts prepared by different methods from different human skeletal muscles was suspended in 20% human serum-containing DMEM-F12 medium (Life Technologies), and a temperature-responsive culture dish (UpCell (R) 12 ⁇ multiwell, cell seed) were seeded at 3.7 ⁇ 10 7 cells, and cultured in a sheet form at 37 ° C. and 5% CO 2 for 12 to 26 hours. After the sheet culture, the state of the cell culture is observed, and the formed sheet-like cell culture is peeled off from the culture dish (FIG. 1) and remains attached to the culture dish. The cells that formed the former sheet-shaped cell culture were classified as a “peeling sheet group”.
  • the sheet-like cell culture that remained attached to the remaining culture dish was detached by lowering the temperature to room temperature.
  • the cells that could not maintain the sheet shape during the peeling operation and formed the damaged sheet-shaped cell culture were defined as “weak sheet group”, and the sheet-shaped cell culture (FIG. 3) that maintained the sheet shape.
  • the formed cells were classified as “normal sheet group”.
  • Example 2 Measurement of electrical characteristics in sheet culture
  • ECISZ ⁇ Applied BioPhysics
  • ECISZ ⁇ measures the impedance, voltage, and phase of the cell layer on the electrode in real time, and the electrical resistance (R) and capacitance (C) of the cell layer, Rb as an index of the adhesion state between cells, the cell and the electrode ( Parameters such as ⁇ , which is an index of the state of adhesion to the culture substrate), and the average capacitance Cm of the cell membrane can be calculated (see Operation Manual for all ECIS Systems, Version 1.2.78, Applied BioPhysics).
  • Example 1 Cells of each group classified in Example 1 were seeded at a density of 8.57 ⁇ 10 5 cells / well in a well plate with electrodes (8W10E +, Applied BioPhysics), and 37 ° C. in DMEM-F12 medium containing 20% human serum. While performing sheet culture in an environment of 5% CO 2 , the impedance, voltage, and phase thereof were measured and recorded over time in MFT (Multiple Frequency / Time) mode using ECISZ ⁇ . The measurement frequencies were 62.5, 125, 250, 500, 1000, 2000, 4000, 8000, 16000, 32000, and 64000 Hz, and the measurement results at 8000 Hz were used below. The device was operated according to the manufacturer's manual. After the measurement, various parameters were calculated using the attached software.
  • MFT Multiple Frequency / Time
  • FIG. 4 shows changes in electrical resistance (R) over time during sheet culture in a representative experiment of each group. From this figure, it can be seen that the electric resistance of the weak sheet group is lower than that of the other groups. Therefore, a low electrical resistance value is an indicator of a weak sheet. It can also be seen that the electrical resistance increases rapidly at the beginning of sheet culture and gradually decreases after peaking.
  • FIG. 5 shows changes in Rb and ⁇ over time during sheet culture in representative experiments of each group. From the figure, it can be seen that the Rb of the weak sheet group is lower than the other groups. Therefore, a low Rb is an indicator of a weak sheet.
  • ⁇ of the release sheet group is almost the same as that of the normal sheet group, but Rb of the release sheet group is higher than that of the normal sheet group. It can be seen that it is relatively high.
  • a graph of Rb / ⁇ obtained by dividing Rb by ⁇ was prepared. Rb / ⁇ is considered to indicate the ease of detachment of the cell culture from the culture substrate (cell detachability). From the results shown in FIG. 6, it can be seen that the Rb / ⁇ of the release sheet group is significantly higher than the other groups.
  • the peak value (the highest value during sheet culture), the peak time (time to reach the peak value), and the slope to the peak (peak value / It was examined whether (peak time) can be an index of sheet forming ability.
  • the individual values for each cell tested and the average value for each group are shown below.
  • the average value of each group is shown in FIGS.
  • Cells forming a weak sheet have small peak values for all parameters, particularly extremely small values for R and Rb.
  • Cells that form normal sheets or release sheets have large peak values for all parameters, and cells that form release sheets have particularly large peak values for Rb / ⁇ .
  • Cells that form a weak sheet have a long peak time for all parameters, and in particular, the peak times for R, Rb, and Rb / ⁇ are extremely long.
  • Cells that form normal sheets or release sheets have short peak times for all parameters, and cells that form release sheets have particularly short Rb / ⁇ peak times.
  • the cells forming the weak sheet have a small slope to the peak of all parameters, and in particular, the slopes to the R, Rb, and Rb / ⁇ peaks are extremely small.
  • Cells forming a normal sheet or a release sheet have a large inclination to the peak of all parameters, and cells forming a release sheet have a particularly large inclination to the peak of Rb / ⁇ .
  • Tables 7 to 8 show the results of analyzing the numerical values of the weak sheet group, normal sheet group, and release sheet group by t-test.
  • Tables 9 to 10 show the results of analyzing the numerical value of the weak sheet group and the numerical value of the group including the normal sheet group and the release sheet group by t-test (weak ⁇ normal / exfoliation), and the normal sheet group and The result (normal x peeling) which analyzed the numerical value of the normal sheet group and the peeling sheet group in the group which put the peeling sheet group together by t test is shown.
  • the analysis by t-test was performed after F-test, followed by “t-test targeting two samples with equal variance” or “t-test targeting two samples with non-uniform variance” (one-sided distribution).
  • Tables 7 to 8 are numerical values after Bonferroni correction. Assuming that the significance level is 5%, the results shown in Tables 7 to 8 show that the weak sheet and the normal sheet have the R, Rb, and Rb / ⁇ peak values and the slope to the peak, and the ⁇ peak value. There was a statistically significant difference between the peak value of R and Rb and the slope to the peak between the release sheet and the release sheet, but there was an item showing a statistically significant difference between the normal sheet and the release sheet. I could't.
  • the numerical value of the normal sheet group after comparing the numerical value of the weak sheet group with the numerical value of the group combining the normal sheet group and the release sheet group, in the group combining the normal sheet group and the release sheet group, the numerical value of the normal sheet group between the weak sheet group and the normal sheet group and the release sheet group.
  • the peak values of R, Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ , Rb and Rb / ⁇ are compared. A statistically significant difference is observed in the peak time of and the slope to the R, Rb, and Rb / ⁇ peaks, and the R peak value is statistically different between the normal sheet group and the release sheet group. Significant differences were observed.
  • the peak value, peak time, and slope to the peak of each parameter of R, Rb, ⁇ , and Rb / ⁇ can be an index for distinguishing cells that form a weak sheet, a normal sheet, or a release sheet.
  • the reference values shown in Tables 11 to 12 below were set for the peak value, peak time, and slope to the peak of each parameter, and it was examined whether or not the above distinction was possible. The results are shown in Tables 13 to 14 below.
  • reference values for example, those that are 100% or 0% for a specific group of cells can be said to be extremely useful as reference values.

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Abstract

　細胞のシート形成能を評価するための方法およびシステムを提供する。　本発明は、（１）シート化培養中の細胞培養物のインピーダンスおよび／もしくは電気抵抗またはこれに関連する数値を決定するステップ、（２）ステップ（１）で決定した数値と基準値とを比較するステップ、（３）ステップ（２）で得た比較結果に基づき細胞のシート形成能を判定するステップを含む、細胞のシート形成能を評価する方法等に関する。

Description

細胞のシート形成能の評価方法
　本発明は、細胞のシート形成能を評価する方法およびシステムなどに関する。
　近年、損傷した組織等の修復のために、種々の細胞を移植する試みが行われている。例えば、狭心症、心筋梗塞などの虚血性心疾患により損傷した心筋組織の修復のために、胎児心筋細胞、骨格筋芽細胞、間葉系幹細胞、心臓幹細胞、ＥＳ細胞等の利用が試みられている（非特許文献１）。
　このような試みの一環として、スキャフォールドを利用して形成した細胞構造物や、細胞をシート状に形成したシート状細胞培養物が開発されてきた（特許文献１）。
　シート状細胞培養物の治療への応用については、火傷などによる皮膚損傷に対する培養表皮シートの利用、角膜損傷に対する角膜上皮シート状細胞培養物の利用、食道ガン内視鏡的切除に対する口腔粘膜シート状細胞培養物の利用などの検討が進められている。
　このような細胞培養物を臨床応用する場合には、その適用可能性や有効性、安全性、保存性、移送性などを担保するため、製造方法を最適化する指標の設定や、品質管理の一環としてシート状細胞培養物の強度などの品質を評価することが必要である。シート状細胞培養物の強度などの評価に関し、特許文献２には、シート化培養における液体培地中の非接着細胞濃度またはその変化を測定することにより、シート状細胞培養物のシート化状態を判定する方法が、特許文献３には、シート形成細胞と培養容器との接着率を算出し、これに基づきシート状細胞培養物の形成を判定する方法が、それぞれ記載されている。
特表２００７－５２８７５５号公報 特開２０１２－１５２１８８号公報 特開２０１２－１５２１８９号公報
Haraguchi et al., Stem Cells Transl Med. 2012 Feb;1(2):136-41
　本発明は、細胞のシート形成能を評価するための方法およびシステムなどの提供を目的とする。
　本発明者は、シート状細胞培養物を研究する中で、同じ培養条件でシート状細胞培養物を製造しても、シート状細胞培養物を培養基材から剥離する際に破損し、シート形状を維持できないケースや、シート化培養期間が終了する前にシート状細胞培養物が培養基材から自発的に剥離してしまうケースがあることに気付いた。そして、細胞が通常の条件で正常なシート状細胞培養物を形成し得るか否かを何らかの方法で判定できればシート状細胞培養物の製造を効率化できると考えさらに研究を進めたところ、シート化培養時の細胞培養物の電気抵抗などの数値に基づいて正常なシート状細胞培養物を形成し得る細胞とそうでない細胞とを区別できることを見出し、本発明を完成させた。
　すなわち、本発明は以下に関する。
　＜１＞（１）シート化培養中の細胞培養物のインピーダンスおよび／もしくは電気抵抗またはこれに関連する数値を決定するステップ、
（２）ステップ（１）で決定した数値と基準値とを比較するステップ、
（３）ステップ（２）で得た比較結果に基づき細胞のシート形成能を判定するステップ
を含む、細胞のシート形成能を評価する方法。
　＜２＞（１）シート化培養中の細胞培養物のインピーダンスおよび／もしくは電気抵抗またはこれに関連する数値を決定するステップ、
（２）ステップ（１）で決定した数値と基準値とを比較するステップ、
（３）ステップ（２）で得た比較結果に基づき細胞のシート形成能を判定するステップ
（４）ステップ（３）で得た判定結果に基づいてシート状細胞培養物の製造過程を制御するステップ
を含む、シート状細胞培養物の製造方法。
　＜３＞ステップ（１）において、インピーダンスおよび／または電気抵抗の決定が定期的に行われる、上記＜１＞または＜２＞に記載の方法。
　＜４＞ステップ（１）において、電流に対する電圧の位相をさらに決定する、上記＜１＞～＜３＞のいずれか一項に記載の方法。
　＜５＞ステップ（１）におけるインピーダンスの決定が、２以上の周波数において行われる、上記＜１＞～＜４＞のいずれか一項に記載の方法。
　＜６＞インピーダンスに関連する数値が、細胞培養物の電気抵抗、キャパシタンス、Ｒｂ、α、Ｒｂ／α、Ｃｍからなる群から選択されるパラメータ、ならびに、該パラメータのピーク値、ピーク時間およびピークまでの傾きからなる群から選択される、上記＜１＞～＜５＞のいずれか一項に記載の方法。
　＜７＞ステップ（３）において、電気抵抗が基準値以下であるか、基準値より小さい場合に、細胞のシート形成能が低いと判定する、上記＜１＞～＜６＞のいずれか一項に記載の方法。
　＜８＞ステップ（３）において、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αが基準値以下であるか、基準値より小さい場合に、細胞のシート形成能が低いと判定する、上記＜６＞または＜７＞に記載の方法。
　＜９＞ステップ（３）において、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αが基準値以上であるか、基準値より大きい場合に、細胞のシート形成能が適正または過剰と判定する、上記＜６＞または＜７＞に記載の方法。
　＜１０＞ステップ（３）において、電気抵抗のピーク値、Ｒｂのピーク値およびＲｂのピークまでの傾きからなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さい場合、および／または、電気抵抗のピーク時間およびＲｂのピーク時間からなる群から選択される数値が基準値以上であるか、基準値より大きい場合に、細胞のシート形成能が低いと判定する、上記＜６＞に記載の方法。
　＜１１＞ステップ（３）において、電気抵抗のピーク時間およびＲｂのピーク時間からなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さく、かつ、Ｒｂ／αのピーク値およびＲｂ／αのピークまでの傾きからなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さい場合、および／または、電気抵抗のピーク時間およびＲｂのピーク時間からなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さく、かつ、Ｒｂ／αのピーク時間が基準値以上であるか、基準値より大きい場合に、細胞のシート形成能が適正と判定する、上記＜６＞に記載の方法。
　＜１２＞ステップ（３）において、Ｒｂ／αのピーク値およびＲｂ／αのピークまでの傾きからなる群から選択される数値が基準値以上であるか、基準値より大きい場合、および／または、Ｒｂ／αのピーク時間が基準値以下であるか、基準値より小さい場合に、細胞のシート形成能が過剰と判定する、上記＜６＞に記載の方法。
　＜１３＞細胞をシート化培養するための容器と、容器中の細胞培養物のインピーダンスおよび／または電気抵抗を決定するための測定器とを備えた、細胞のシート形成能を評価するためのシステム。
　本発明のシート形成能評価方法により、細胞のシート形成能を判定することができるため、細胞のシート形成能に応じてシート状細胞培養物の製造過程を調整することなどにより、シート状細胞培養物の製造を効率化することが可能となる。
図１は、剥離シートの外観を示した写真図である。 図２は、弱シートの外観を示した写真図である。 図３は、正常シートの外観を示した写真図である。 図４は、弱シート（Weak）、正常シート（Normal）および剥離シート（Detaching）の電気抵抗（Ｒ）の経時的変化を示したグラフである。 図５は、弱シート（Weak）、正常シート（Normal）および剥離シート（Detaching）のＲｂおよびαの経時的変化を示したグラフである。 図６は、弱シート（Weak）、正常シート（Normal）および剥離シート（Detaching）のＲｂ／αの経時的変化を示したグラフである。 図７は、弱シート（Weak）、正常シート（Normal）および剥離シート（Detaching）の電気抵抗（Ｒ）、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αのピーク値を示したグラフである。*はp<0.005を表す。 図８は、弱シート（Weak）、正常シート（Normal）および剥離シート（Detaching）の電気抵抗（Ｒ）、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αのピーク時間を示したグラフである。 図９は、弱シート（Weak）、正常シート（Normal）および剥離シート（Detaching）の電気抵抗（Ｒ）、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αのピークまでの傾きを示したグラフである。*はp<0.005を表す。
　本明細書において別様に定義されない限り、本明細書で用いる全ての技術用語および科学用語は、当業者が通常理解しているものと同じ意味を有する。本明細書中で参照する全ての特許、出願および他の出版物や情報は、その全体を参照により本明細書に援用する。
　本発明の一側面は、（１）シート化培養中の細胞培養物のインピーダンスおよび／もしくは電気抵抗またはこれに関連する数値を決定するステップ、
（２）ステップ（１）で決定した数値と基準値とを比較するステップ、
（３）ステップ（２）で得た比較結果に基づき細胞のシート形成能を判定するステップ
を含む、細胞のシート形成能を評価する方法（以下、「シート形成能評価方法」と略す場合がある）に関する。
　本発明において、「シート形成能」は、細胞がシート状細胞培養物を形成する能力を意味する。ここで「シート状細胞培養物」は、細胞が細胞間接着などにより互いに連結してシート状になったものをいう。特定の理論に拘束されることは望まないが、細胞が適切な細胞間接着を形成する能力を有するとともに、培養基材への適切な接着力などを有することが、シート状細胞培養物を形成する上で重要と考えられる。したがって、シート形成能は、細胞間接着能や、培養基材への接着能などを含む、細胞のシート形成に係る総合的な能力であるということができる。
　シート状細胞培養物は、典型的には１の細胞層からなるものであるが、２以上の細胞層の積層から構成されるものも含む。シート状細胞培養物において、細胞同士は、直接（接着分子などの細胞要素を介するものを含む）および／または介在物質を介して、互いに連結していてもよい。介在物質としては、細胞同士を少なくとも物理的（機械的）に連結し得る物質であれば特に限定されないが、例えば、細胞外基質などが挙げられる。介在物質は、好ましくは細胞由来のもの、特に、シート状細胞培養物を構成する細胞に由来するものである。細胞は少なくとも物理的（機械的）に連結されるが、さらに機能的、例えば、化学的、電気的に連結されてもよい。シート状細胞培養物は、培養基材に付着していても遊離（剥離）していてもよいが、典型的には、培養基材からシート形状を維持したまま遊離しているもの（単離シート状細胞培養物または遊離シート状細胞培養物と称する場合もある）を指す。
　本発明において、「シート化培養」は、培養容器に播種した細胞を、シート状細胞培養物を形成する（すなわち、シート化する）ように培養することを意味する。シート化培養は、典型的には、培養容器にシート状細胞培養物を形成し得る細胞を播種し、所定の期間、細胞間接着を形成する条件下で培養して細胞同士を相互作用させ、細胞同士を連結させることにより行う。細胞間接着を形成する条件は、細胞間接着を形成することができる任意の条件を含み、これには、限定されずに、例えば、一般的な細胞培養条件が含まれる。かかる条件としては、例えば、３７℃、５％ＣＯ２での培養が挙げられる。また、当業者であれば、播種する細胞の種類に応じて最適な条件を選択することができる。シート化培養の非限定例は、例えば、特許文献１、特開2010-081829、特開2010-226991、特開2011-110368、特開2011-172925、WO 2014/185517などに記載されている。
　細胞の播種は、既知の任意の手法および条件で行うことができる。細胞の播種は、例えば、細胞をシート化媒体に懸濁した細胞懸濁液を容器に注入することにより行ってもよい。細胞懸濁液の注入には、スポイトやピペットなど、細胞懸濁液の注入操作に適した器具を用いることができる。
　細胞の播種密度は特に限定されないが、例えば、細胞が実質的に増殖することなくシート状細胞培養物を形成し得る密度であってもよい。「細胞が実質的に増殖することなくシート状細胞培養物を形成し得る密度」とは、成長因子を実質的に含まない非増殖系の培養液で培養した場合に、シート状細胞培養物を形成することができる細胞密度を意味する。この播種密度は、成長因子を含む培養液を用いる手法におけるものよりも高いものであり、細胞がコンフルエントに達する密度以上であってもよい。かかる密度の非限定例は、例えば、１．０×１０５個／ｃｍ２以上である。播種密度の上限は、細胞培養物の形成が損なわれず、細胞が分化に移行しなければ特に制限されないが、３．４×１０６個／ｃｍ２未満であってもよい。
　「細胞が実質的に増殖することなくシート状細胞培養物を形成し得る密度」は、ある態様では１．０×１０５～３．４×１０６個／ｃｍ２、別の態様では３．０×１０５～３．４×１０６個／ｃｍ２、さらに別の態様では３．５×１０５～３．４×１０６個／ｃｍ２、さらに別の態様では１．０×１０６～３．４×１０６個／ｃｍ２、さらに別の態様では３．０×１０５～１．７×１０６個／ｃｍ２、別の態様では３．５×１０５～１．７×１０６個／ｃｍ２、さらに別の態様では１．０×１０６～１．７×１０６個／ｃｍ２である。上記範囲は、上限が３．４×１０６個／ｃｍ２未満である限り、上限および下限の両方、または、そのいずれか一方を含んでもよい。したがって、上記密度は、例えば、３．０×１０５個／ｃｍ２以上３．４×１０６個／ｃｍ２未満（下限を含み、上限は含まない）、３．５×１０５個／ｃｍ２以上３．４×１０６個／ｃｍ２未満（下限を含み、上限は含まない）、１．０×１０６個／ｃｍ２以上３．４×１０６個／ｃｍ２未満（下限を含み、上限は含まない）、１．０×１０６個／ｃｍ２超３．４×１０６個／ｃｍ２未満（下限も上限も含まない）、１．０×１０６個／ｃｍ２超１．７×１０６個／ｃｍ２以下（下限は含まないが、上限は含む）であってもよい。
　シート化に用いるシート化媒体としては、導電性を有するものであれば特に限定されず、例えば、生理食塩水、電解質を含む種々の生理緩衝液（例えば、ＰＢＳ、ＨＢＳＳ等）、種々の細胞培養用の基礎培地をベースにしたものなどを使用してもよい。かかる基礎培地には、限定されずに、例えば、ＤＭＥＭ、ＭＥＭ、Ｆ１２、ＤＭＥ、ＲＰＭＩ１６４０、ＭＣＤＢ（ＭＣＤＢ１０２、１０４、１０７、１２０、１３１、１５３、１９９など）、Ｌ１５、ＳｋＢＭ、ＲＩＴＣ８０－７、ＤＭＥＭ／Ｆ１２などが含まれる。これらの基礎培地の多くは市販されており、その組成も公知となっている。基礎培地は、標準的な組成のまま（例えば、市販されたままの状態で）用いてもよいし、細胞種や細胞条件に応じてその組成を適宜変更してもよい。したがって、本発明に用いる基礎培地は、公知の組成のものに限定されず、１または２以上の成分が追加、除去、増量もしくは減量されたものを含む。シート化媒体は、血清（例えば、ウシ胎仔血清などのウシ血清、ウマ血清、ヒト血清等）、種々の成長因子（例えば、ＦＧＦ、ＥＧＦ、ＶＥＧＦ、ＨＧＦ等）などの添加物を含んでもよい。
　シート状細胞培養物を形成し得る細胞は、限定されずに、例えば、接着細胞（付着性細胞）を含む。接着細胞は、例えば、接着性の体細胞（例えば、心筋細胞、線維芽細胞、上皮細胞、内皮細胞、肝細胞、膵細胞、腎細胞、副腎細胞、歯根膜細胞、歯肉細胞、骨膜細胞、皮膚細胞、滑膜細胞、軟骨細胞など）および幹細胞（例えば、筋芽細胞、心臓幹細胞などの組織幹細胞、胚性幹細胞、ｉＰＳ（induced pluripotent stem）細胞などの多能性幹細胞、間葉系幹細胞等）などを含む。体細胞は、幹細胞、特にｉＰＳ細胞から分化させたものであってもよい。シート状細胞培養物を形成し得る細胞の非限定例としては、例えば、筋芽細胞（例えば、骨格筋芽細胞など）、間葉系幹細胞（例えば、骨髄、脂肪組織、末梢血、皮膚、毛根、筋組織、子宮内膜、胎盤、臍帯血由来のものなど）、心筋細胞、線維芽細胞、心臓幹細胞、胚性幹細胞、ｉＰＳ細胞、滑膜細胞、軟骨細胞、上皮細胞（例えば、口腔粘膜上皮細胞、網膜色素上皮細胞、鼻粘膜上皮細胞など）、内皮細胞（例えば、血管内皮細胞など）、肝細胞（例えば、肝実質細胞など）、膵細胞（例えば、膵島細胞など）、腎細胞、副腎細胞、歯根膜細胞、歯肉細胞、骨膜細胞、皮膚細胞等が挙げられる。
　細胞培養物のインピーダンスおよび／または電気抵抗の決定は、既知の任意の手法で行うことができる。インピーダンスの決定は、限定されずに、例えば、細胞培養物に交流電圧を印加し、電流を測定すること、細胞培養物に交流電流を流し、電圧を測定することなどにより電圧と電流とを決定し、電圧を電流で除すること等により行うことができる。また、電気抵抗の決定は、限定されずに、例えば、細胞培養物に直流電圧を印加し、電流を測定すること、細胞培養物に直流電流を流し、電圧を測定することなどにより電圧と電流とを決定し、電圧を電流で除すること等により行うことができる。インピーダンスおよび／または電気抵抗を決定するための装置（インピーダンス測定器、抵抗計等）は周知であり、こうした装置を細胞培養物のインピーダンスおよび／または電気抵抗の決定に用いることができる。
　電圧の印加は、限定されずに、例えば、細胞培養物を、作用電極と対電極との間を流れる電流を遮る位置に形成させ、細胞培養物を介して作用電極と対電極との間に電圧を印加することなどによって行うことができる。電圧印加の非限定例としては、例えば、作用電極および対電極を培養容器の内部底面に配置し、その上に細胞培養物を形成させ、作用電極と対電極との間に電圧を印加すること、作用電極および対電極のいずれか一方を細胞培養物の基底面側、他方を上面側に配置し、作用電極と対電極との間に電圧を印加することなどが挙げられる。
　細胞培養物のインピーダンスを決定する方法としては、ＥＣＩＳ（Electric Cell-substrate Impedance Sensing）法などが、細胞培養物の電気抵抗を決定する方法としては、ＥＣＩＳ法、ＴＥＥＲ（Trans Epithelial Electric Resistance）測定法などがそれぞれ知られている。また、細胞培養物のインピーダンスおよび／または電気抵抗の決定のための装置も周知であり（例えば、米国特許第5187096号など）、また、市販されており（例えば、Applied BioPhysicsのECIS Z、ECIS Zθ、World Precision InstrumentsのEVOM2など）、こうした装置を本発明のシート形成能評価方法に用いることができる。
　インピーダンスおよび／または電気抵抗の決定に加え、インピーダンスの決定に付随して、電圧または電流の位相を決定してもよい。電圧または電流の位相の決定は既知の任意の手法、限定されずに、例えば、ロックイン増幅器などを用いた手法などにより行うことができる。電圧または電流の位相を決定することにより、インピーダンスからレジスタンス（電気抵抗）やリアクタンスなどを決定することができる。
　インピーダンスを決定する際に印加する交流電流の周波数は１種類であっても、２種類以上であってもよい。電極間に存在する細胞培養物は、後述のＥＣＩＳモデルのように、コンデンサとして機能し得るため、インピーダンスは周波数により異なり得、この違いをシート形成能の評価に用いることもできる。使用する周波数は、細胞のシート形成能に関する情報が得られるものであれば特に限定されず、例えば、３１．２５Ｈｚ～６４ＫＨｚ、４ＫＨｚ～６４ＫＨｚ等であってよく、特に、６２．５Ｈｚ、１２５Ｈｚ、２５０Ｈｚ、５００Ｈｚ、１ＫＨｚ、２ＫＨｚ、４ＫＨｚ、８ＫＨｚ、１６ＫＨｚ、３２ＫＨｚ、６４ＫＨｚ等であってよい。
　細胞培養物のインピーダンスおよび／または電気抵抗の決定は、定期的に行うことができる。前記決定を定期的に複数回行うことにより、インピーダンスおよび／または電気抵抗の経時的変化を検出および／またはモニターすることができる。決定の間隔は特に限定されないが、例えば、０．００１秒～３時間、０．０１秒～１時間、０．０５秒～３０分、０．１秒～１０分、１秒～１分等であってよい。インピーダンスおよび／または電気抵抗を決定する期間も、シート形成能の評価のための情報が得られる限り特に限定されず、例えば、７２時間以内、４８時間以内、３６時間以内、２４時間以内、１２時間以内、１０時間以内、８時間以内、６時間以内等であってよい。
　インピーダンスおよび／または電気抵抗に関連する数値は、限定されずに、例えば、インピーダンスおよび／または電気抵抗の決定に付随して決定される数値、インピーダンスおよび／または電気抵抗から算出される数値、これらの数値からさらに算出される数値などを含む。インピーダンスの決定に付随して決定される数値としては、限定されずに、例えば、電圧、電流、交流電圧の周波数、決定時間（例えば、シート化培養の開始からの経過時間）、測定する電圧または電流の位相などが挙げられる。電気抵抗の決定に付随して決定される数値としては、限定されずに、例えば、電圧、電流、決定時間などが挙げられる。インピーダンスおよびインピーダンスの決定に付随して決定される数値から算出される数値としては、限定されずに、例えば、細胞培養物の電気抵抗、キャパシタンス、Ｒｂ、α、Ｃｍ、Ｒｂ／α、これらのピーク値、ピーク時間、ピークまでの傾き、時間に対する微分係数、所定期間内における経時的な変化量や変化率などが挙げられる。
　ＥＣＩＳモデル（Giaever and Keese, Proc Natl Acad Sci U S A. 1991 Sep 1;88(17):7896-900など参照）によると、決定されるインピーダンス（Ｚ）は、レジスタンス（Ｒ）とリアクタンス（Ｘｃ）とから構成され、レジスタンスは、電流と同相の電圧を電流で除したもの、リアクタンスは電流と異相の電圧を電流で除したものとすることができる。ここで、キャパシタンス（Ｃ）は、周波数をｆとすると、Ｘｃ＝１／（２πｆＣ）およびＺ＝（Ｒ２＋Ｘｃ２）０．５から算出することができる。したがって、細胞培養物の存在下で決定したインピーダンス、電流、電圧、位相、周波数を基に、細胞培養物の電気抵抗（レジスタンス）およびキャパシタンスを算出することができる。
　Ｒｂ、α、ＣｍもＥＣＩＳモデルを用いて算出することができる。ＥＣＩＳモデルは、作用電極上に播種した細胞を、絶縁性の膜からなる表面を有し、内部が導電性の電解液で満たされた円柱状の物体とみなし、細胞の基底面の作用電極から交流電流を流した場合、細胞間隙は電流が対電極に流れる際に抵抗の役割を果たし、細胞はコンデンサの役割を果たす。ＥＣＩＳモデルでは、細胞間隙の抵抗をＲｂ、細胞膜のキャパシタンスをＣｍと称する。また、細胞の基底面は電極に一様に接着しているわけではなく、部分的にしか接着していないことから、基底面と電極との間には高さｈの一様な空隙が存在すると仮定すると、基底面と電極との間に抵抗が存在することになる。ＥＣＩＳモデルでは、基底面と電極との間の抵抗を表すパラメータとして、αを用いている。なお、α＝ｒｃ（ρ／ｈ）０．５であり、式中、ｒｃは細胞の半径、ρは培地（シート化媒体）の抵抗をそれぞれ表す。Ｒｂおよびαは、以下の式から算出することができる（上記Giaever and Keese、Opp et al., Biosens Bioelectron. 2009 Apr 15;24(8):2625-9など参照）。
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　前式中、Ｚｃは細胞で被覆された電極（作用電極）の単位面積当たりのインピーダンスを表し、Ｚｎは細胞で被覆されていない電極の単位面積当たりのインピーダンスを表し、Ｚｍは細胞培養物の単位面積当たりのインピーダンスを表し、Ｉ０およびＩ１は、０次および１次の第１種変形ベッセル関数を表し、Ｓは電極面積を表し、Ｒｎは細胞で被覆されていない電極の抵抗の決定値であり、ｆは交流電圧の周波数であり、Ｃｎは細胞で被覆されていない電極のキャパシタンスの決定値であり、Ｒｍは細胞膜の抵抗であり、Ｃｍは細胞膜のキャパシタンスである。なお、Ｒ、Ｃ、Ｒｂ、αおよびＣｍの各パラメータは、ＥＣＩＳＺθ（Applied BioPhysics）に付属のソフトウェアで出力することができる。Ｒｂ／αは、Ｒｂをαで除したものである。
　ピーク値およびピーク時間は、Ｒ、Ｃ、Ｒｂ、α、Ｃｍ、Ｒｂ／αなどのパラメータがピークに達した時点の数値および経過時間を表し、ピークまでの傾きは、ピーク値をピーク時間で除したものである。例３に示すとおり、細胞を播種すると、Ｒ、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αは、シート化培養期間の比較的早い段階でピークを付け、その後徐々に低下していくことが明らかとなった。したがって、ピークに関連する数値を判定に利用することで、細胞のシート形成能を早期に判定することができる。
　ステップ２における基準値は、細胞のシート形成能の程度を判定するために設定される数値であり、シート形成能の程度が既知の細胞を用いた予備実験等により設定することができる。シート形成能の程度としては、限定されずに、例えば、正常なシート状細胞培養物（正常シート）を形成する「適正な」シート形成能、および、正常なシート状細胞培養物を形成できない「異常な」シート形成能の２段階のレベルや、正常なシート状細胞培養物（正常シート）を形成する「適正な」シート形成能、培養基材から剥離する際に破損し、シート形状を維持できないシート状細胞培養物（弱シート）を形成する「低い」シート形成能、シート化培養期間が終了する前に培養基材から自発的に剥離してしまうシート状細胞培養物（剥離シート）を形成する「過剰な」シート形成能の３段階のレベルなどが挙げられる。シート形成能が上記の２段階または３段階のレベルのいずれに該当するかを判定するための基準値としては、限定されずに、例えば、あるレベルのシート形成能を有する細胞の所定の割合以上が充足するまたは充足しない数値範囲や、あるレベルのシート形成能を有する細胞の所定の割合以上が充足するが、他のレベルのシート形成能を有する細胞の所定の割合以上は充足しない数値範囲などが挙げられる。かかる割合の非限定例としては、例えば、６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９５％、９７％、９８％、９９％、１００％が挙げられる。この割合が高いほど、基準値として信頼性の高いものとなる。
　例えば、例３の表１３に示すとおり、電気抵抗のピーク値として「５５０Ω未満」という基準値を設定すると、「低い」シート形成能を有する細胞の１００％がこの基準値を充足し、「適正な」シート形成能を有する細胞および「過剰な」シート形成能を有する細胞の１００％がこの基準を充足しないこととなり、前記基準値は、「低い」シート形成能を有する細胞と、「適正な」シート形成能を有する細胞および「過剰な」シート形成能を有する細胞とを区別するための基準値として極めて信頼性が高いということができる。また、電気抵抗のピーク時間として「６時間超」という基準値を設定すると、「低い」シート形成能を有する細胞の１８％しかこの基準値を充足しないものの、「適正な」シート形成能を有する細胞および「過剰な」シート形成能を有する細胞の１００％がこの基準を充足しないところ、この基準値を充足する細胞は、ほぼ確実に「低い」シート形成能を有するといえるため、前記基準値は、「低い」シート形成能を有する細胞であると判定するための基準値として極めて信頼性が高いということができる。
　基準値は全ての種類の数値について設定してもよいし、シート形成能の評価に有用な特定の種類の数値のみについて設定してもよい。シート形成能の評価に有用な数値の種類としては、限定されずに、例えば、シート形成能のレベルが異なる細胞群間で統計学的有意差が認められる数値の種類などを選択することができる。例えば、例３の表７～１０に示すとおり、弱シート形成細胞、正常シート形成細胞および剥離シート形成細胞との間で、一部の種類の数値について統計学的有意差が認められたが（例えば、弱シートと正常シートの間では、Ｒ、ＲｂおよびＲｂ／αのピーク値およびピークまでの傾き、ならびにαのピーク値に、弱シートと剥離シートの間では、ＲおよびＲｂのピーク値およびピークまでの傾きにそれぞれ統計学的有意差が認められた）、これらの種類の数値について基準値を設定することで、表１３～１４に示すとおり、信頼性の高い基準値が得られることが分かる。
　細胞培養物のインピーダンスや電気抵抗は、細胞の種類によって異なり得るため、基準値も細胞培養物を構成する細胞の種類や細胞種の構成比などによって異なることが考えられる。しかしながら、当業者であれば、本明細書、特に下記の例を参照することにより、特定の細胞種や特定の細胞構成比を有する細胞集団について適切な基準値を設定することができる。したがって、下記の例に記載した基準値の具体的な数値は例示にすぎず、本発明の範囲はこれらの具体的な数値に限定されないことを理解すべきである。
　ステップ（１）で決定した数値と基準値との比較は、例えば、基準値が単一の数値である場合、ステップ（１）で決定した数値が基準値より大きいか、小さいか、等しいか、基準値以下であるか、以上であるかを決定することなどにより、基準値が数値範囲である場合、ステップ（１）で決定した数値が基準値に含まれるか、上限より大きいか、下限より小さいか、上限以上か、下限以下かを決定することなどにより行うことができる。
　ステップ（３）におけるシート形成能の判定は、例えば、ステップ（１）で決定した数値と基準値とを比較した結果、前記数値が、どのようなシート形成能に該当するかを、設定した基準値の性質に基づいて決定することにより行うことができる。例えば、基準値が単一の数値であり、基準値未満が「異常な」シート形成能、基準値以上が「適正な」シート形成能と関連付けられている場合、ステップ（１）で決定した数値が基準値未満であれば、シート形成能が「異常」であると決定し、基準値以上であれば、シート形成能が「適正」であると決定することができる。また、例えば、基準値が数値範囲であり、基準値の範囲内が「適正な」シート形成能、基準値の下限未満が「低い」シート形成能、基準値の上限超が「過剰な」シート形成能と関連付けられている場合、ステップ（１）で決定した数値が基準値の範囲内であれば、シート形成能が「適正」であると決定し、基準値の下限未満であれば、シート形成能が「低い」と決定し、基準値の上限より大きければ、シート形成能が「過剰」と決定することができる。
　ステップ（２）～（３）は１回のみ行っても、複数回行ってもよい。例えば、３段階以上のシート形成能を決定する場合、ステップ（２）～（３）を１回行うごとに１段階ずつシート形成能を決定して行くことができる。より具体的には、例えば例３を参照して説明すると、電気抵抗のピーク値の基準値として「５５０Ω未満」を設定した場合、シート形成能が「低い」細胞と、シート形成能が「適正」および「過剰」な細胞とを区別することができるが、シート形成能が「適正」な細胞とシート形成能が「過剰」な細胞とを十分区別することはできない。一方、Ｒｂ／αのピーク値の基準値として「０．５５ｃｍ・Ω０．５超」を設定した場合、シート形成能が「過剰」な細胞と、シート形成能が「低い」および「適正」な細胞とを区別することができるが、シート形成能が「低い」細胞とシート形成能が「適正」な細胞とを十分区別することはできない。したがって、まず１回目のステップ（２）～（３）で、ステップ（１）で決定した数値と、電気抵抗のピーク値の基準値「５５０Ω未満」とを比較してシート形成能が「低い」細胞と、シート形成能が「適正」および「過剰」な細胞とを区別し、２回目のステップ（２）～（３）で、ステップ（１）で決定した数値と、Ｒｂ／αのピーク値の基準値「０．５５ｃｍ・Ω０．５超」とを比較して、シート形成能が「適正」な細胞とシート形成能が「過剰」な細胞とを区別することで、全ての段階のシート形成能を判定することができる。
　ステップ（３）の一態様においては、電気抵抗が基準値以下であるか、基準値より小さい場合に、細胞のシート形成能が低いと判定する。ステップ（３）の別の態様においては、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αが基準値以下であるか、基準値より小さい場合に、細胞のシート形成能が低いと判定する。ステップ（３）の別の態様においては、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αが基準値以上であるか、基準値より大きい場合に、細胞のシート形成能が適正または過剰と判定する。図４～５に示すとおり、電気抵抗、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αは、シート化培養の全ての時点において、シート形成能が低い細胞の方が、シート形成能が適正または過剰な細胞より低くなっているため、これらの態様において、電気抵抗、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αは、シート化培養中の任意の時点で決定したものであってもよい。
　ステップ（３）の別の態様においては、電気抵抗のピーク値、Ｒｂのピーク値およびＲｂのピークまでの傾きからなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さい場合、および／または、電気抵抗のピーク時間およびＲｂのピーク時間からなる群から選択される数値が基準値以上であるか、基準値より大きい場合に、細胞のシート形成能が低いと判定する。ステップ（３）の別の態様においては、電気抵抗のピーク時間およびＲｂのピーク時間からなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さく、かつ、Ｒｂ／αのピーク値およびＲｂ／αのピークまでの傾きからなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さい場合、および／または、電気抵抗のピーク時間およびＲｂのピーク時間からなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さく、かつ、Ｒｂ／αのピーク時間が基準値以上であるか、基準値より大きい場合に、細胞のシート形成能が適正と判定する。ステップ（３）の別の態様においては、Ｒｂ／αのピーク値およびＲｂ／αのピークまでの傾きからなる群から選択される数値が基準値以上であるか、基準値より大きい場合、および／または、Ｒｂ／αのピーク時間が基準値以下であるか、基準値より小さい場合に、細胞のシート形成能が過剰と判定する。
　本発明のシート形成能評価方法は、移植などに実際に使用するシート状細胞培養物に適用しても、同一条件で作製される複数のシート状細胞培養物からなるロットを代表するシート状細胞培養物に適用してもよい。後者の場合、本方法によるシート形成能評価の結果を、当該培養物が属するロット全体に適用することができる。また、この場合、本方法によるシート形成能品質評価の結果に基づいて、当該培養物が属するロット全体の製造過程を調整することができる。例えば、本方法により細胞のシート形成能が低いと評価された場合には、限定されずに、例えば、培地への細胞外基質成分（例えば、コラーゲン、ラミニン、フィブロネクチン、ビトロネクチン、ゼラチン、プロテオグリカン、グリコサミノグリカン等）や細胞外基質の産生を促進する因子（例えば、アスコルビン酸、その誘導体（例えば、アスコルビン酸２リン酸、アスコルビン酸１リン酸等）、その塩（例えば、ナトリウム塩、マグネシウム塩等）など）の添加、血清、細胞外基質成分等で表面がコートされた培養基材の使用、より高い細胞密度での播種といった、細胞間の結合力を増強するための措置などを講じることができる。また、シート形成能が過剰と評価された場合には、限定されずに、例えば、細胞接着性の高い培養基材（例えば、表面がネガティブにチャージされた培養基材（Corning(R) CellBIND(R)等）や、接着因子がコーティングされた培養基材等）の使用、培養基材表面の血清、細胞外基質成分、接着因子等によるコーティングといった、細胞と培養基材との接着を増強するための措置や、シート化培養時間の短縮、シート状細胞培養物の培養基材からの剥離を早期に検出するための頻繁なモニタリングといった、剥離の兆候を早期に検出するための措置などを講じることができる。
　本発明の別の側面は、（１）シート化培養中の細胞培養物のインピーダンスおよび／もしくは電気抵抗またはこれに関連する数値を決定するステップ、
（２）ステップ（１）で決定した数値と基準値とを比較するステップ、
（３）ステップ（２）で得た比較結果に基づき細胞のシート形成能を判定するステップ
（４）ステップ（３）で得た判定結果に基づいてシート状細胞培養物の製造過程を制御するステップ
を含む、シート状細胞培養物の製造方法（以下、「製造方法」または「制御製造方法」と略す場合がある）に関する。
　本発明の制御製造方法におけるステップ（１）～（３）は、本発明のシート化能評価方法について上記したとおりである。
　ステップ（４）においては、ステップ（３）で得た判定結果に基づいてシート状細胞培養物の製造過程を様々に制御する。製造過程が制御されるシート状細胞培養物は、ステップ（１）でシート化培養中のものであっても、これと同じ細胞集団（ロット）に属する細胞による別のシート状細胞培養物であってもよい。後者の場合、当該別のシート状細胞培養物の製造は、ステップ（１）～（３）と並行して行っても、ステップ（１）～（３）の終了後に行ってもよい。シート状細胞培養物の製造方法は知られており、その非限定例は、例えば、特許文献１、特開2010-081829、特開2010-226991、特開2011-110368、特開2011-172925、WO 2014/185517などに記載されている。制御の非限定例としては、例えば、ステップ（３）でシート形成能が低いと判定された場合に、シート形成能を増強するための措置、限定されずに、例えば、培地への細胞外基質成分（例えば、コラーゲン、ラミニン、フィブロネクチン、ビトロネクチン、ゼラチン、プロテオグリカン、グリコサミノグリカン等）や細胞外基質の産生を促進する因子（例えば、アスコルビン酸、その誘導体（例えば、アスコルビン酸２リン酸、アスコルビン酸１リン酸等）、その塩（例えば、ナトリウム塩、マグネシウム塩等）など）の添加、血清、細胞外基質成分等で表面がコートされた培養基材の使用、より高い細胞密度での播種といった、細胞間の結合を増強するための措置などを講じることや、ステップ（３）でシート形成能が過剰と判定された場合に、シート形成を正常化するための措置、限定されずに、例えば、細胞接着性の高い培養基材（例えば、表面がネガティブにチャージされた培養基材（Corning(R) CellBIND(R)等）や、接着因子がコーティングされた培養基材等）の使用、培養基材表面の血清、細胞外基質成分、接着因子等によるコーティングといった、細胞と培養基材との接着を増強するための措置や、シート化培養時間の短縮、シート状細胞培養物の培養基材からの剥離を早期に検出するための頻繁なモニタリングといった、剥離の兆候を早期に検出するための措置などを講じることなどが挙げられる。
　本発明の別の側面は、細胞をシート化培養するための容器と、該容器中の細胞培養物のインピーダンスおよび／または電気抵抗を決定するための測定器とを備えた、細胞のシート形成能を評価するためのシステム（以下、「シート形成能評価システム」と略す場合がある）に関する。本発明のシート形成能評価システムは、本発明のシート形成能評価方法や本発明の製造方法に用いることができる。
　本発明のシート形成能評価システムにおける細胞培養容器は、その内部で細胞をシート化培養できるものであれば特に限定されず、例えば、既知の任意の細胞培養容器を用いることができる。細胞培養容器は、シート化媒体を透過させない構造・材料が好ましい。かかる材料としては、限定することなく、例えば、ポリエチレン、ポリプロピレン、テフロン（登録商標）、ポリエチレンテレフタレート、ポリメチルメタクリレート、ナイロン６，６、ポリビニルアルコール、セルロース、シリコン、ポリスチレン、ガラス、ポリアクリルアミド、ポリジメチルアクリルアミドなどが挙げられる。
　細胞培養容器は、インピーダンスおよび／または電気抵抗の決定に用いる作用電極および／または対電極を備えていてもよい。作用電極および／または対電極の配置は、細胞培養物のインピーダンスおよび／または電気抵抗の決定に必要な情報が得られるものであれば特に限定されず、作用電極および対電極の両方を培養容器の内部底面に配置しても、作用電極および対電極のいずれか一方が細胞培養物の基底面側、他方が上面側に位置するように配置してもよい。電極の材質としては、細胞培養物およびシート化媒体に電圧を印加できるものであれば特に限定されず、例えば、金、銀、白金、炭素、酸化インジウムスズなどが挙げられる。細胞は電極上に播種しても、シート化媒体が透過し得るインサートを容器に挿入し、当該インサート内に播種してもよい。細胞培養容器の特定の例としては、例えば、市販されているＥＣＩＳ（Applied BioPhysics）用の種々のアレイ（例えば、8W1E、8W10E、8W10E+、8W1F、8W1E DD、8W2x1E等、Applied BioPhysics）などが挙げられる。
　本発明のシート形成能評価システムの測定器は、細胞培養物のインピーダンスおよび／または電気抵抗を決定することができれば特に限定されず、既知のインピーダンス測定器、抵抗計などを用いることができる。測定器は、培養容器が電極を備えている場合は、当該電極と電気的に接続可能に構成され、培養容器が電極を備えていない場合は、測定器に接続された培養容器内に設置する電極を備えていてもよい。測定器は、インピーダンスおよび／または電気抵抗を定期的に決定できるものが好ましい。決定の間隔は特に限定されないが、例えば、０．００１秒～３時間、０．０１秒～１時間、０．０５秒～３０分、０．１秒～１０分、１秒～１分等であってよい。インピーダンスおよび／または電気抵抗を決定する期間も、シート形成能の評価のための情報が得られる限り特に限定されず、例えば、７２時間以内、４８時間以内、３６時間以内、２４時間以内、１２時間以内、１０時間以内、８時間以内、６時間以内等であってよい。
　測定器は、電圧または電流の位相をさらに決定できるものであってもよい。電圧または電流の位相の決定は既知の任意の手法、限定されずに、例えば、ロックイン増幅器などを用いた手法などにより行うことができる。したがって、測定器は、ロックイン増幅器などの、電圧または電流の位相を決定する手段を備えていてもよい。
　測定器は、１または２以上の周波数におけるインピーダンスを決定できるものであってもよい。適用可能な周波数は、細胞のシート形成能に関する情報が得られるものであれば特に限定されず、例えば、３１．２５Ｈｚ～６４ＫＨｚ、４ＫＨｚ～６４ＫＨｚ等であってよく、特に、６２．５Ｈｚ、１２５Ｈｚ、２５０Ｈｚ、５００Ｈｚ、１ＫＨｚ、２ＫＨｚ、４ＫＨｚ、８ＫＨｚ、１６ＫＨｚ、３２ＫＨｚ、６４ＫＨｚ等であってよい。
　本発明のシート形成能評価システムは、細胞のシート形成能の評価に適した任意の構成、例えば、測定器からのインピーダンスおよび／または電気抵抗に関するデータの記録や処理などを行うプロセッサ、表示装置や入力装置などのインターフェース、細胞やシート化媒体を容器に添加するインジェクタ、細胞培養用インキュベータ、撹拌器などをさらに備えていてもよい。
　本発明のシート形成能評価システムは、シート状細胞培養物を製造するためのシステムと交信可能に接続することや、当該製造システムに組み込むことなどにより、当該製造システムにおけるシート状細胞培養物の製造過程を制御することができる。したがって、本発明はまた、本発明のシート形成能評価システムと交信可能に接続された、または、本発明のシート形成能評価システムが組み込まれた、シート状細胞培養物を製造するためのシステムにも関する。細胞のシート形成能の評価に基づくシート状細胞培養物の製造過程の制御については、本発明の製造方法に関して上記したとおりである。
　以下に、本発明を実施例を参照してより詳細に説明するが、これは本発明の特定の具体例を示すものであり、本発明はこれに限定されるものではない。
例１　細胞のシート形成能による分類
　異なるヒト骨格筋から定法により調製した骨格筋芽細胞の一部を２０％ヒト血清含有ＤＭＥＭ－Ｆ１２培地（Life Technologies）に懸濁し、温度応答性培養皿（UpCell(R)１２穴マルチウェル、セルシード）に３．７×１０７個播種し、３７℃、５％ＣＯ２の環境で１２～２６時間シート化培養を行った。シート化培養後、細胞培養物の状態を観察し、形成されたシート状細胞培養物が培養皿から剥離しているもの（図１）と、培養皿に付着したままになっているものとに分け、前者のシート状細胞培養物を形成した細胞を「剥離シート群」として分類した。残りの培養皿に付着したままのシート状細胞培養物は、室温への温度低下により剥離した。剥離操作の際にシート形状を維持できず、破損したシート状細胞培養物（図２）を形成した細胞を「弱シート群」、シート形状を維持できたシート状細胞培養物（図３）を形成した細胞を「正常シート群」として、それぞれ分類した。
例２　シート化培養における電気的特性の測定
　例１で同定した「弱シート」、「正常シート」および「剥離シート」における細胞の接着状態を評価するために、リアルタイム細胞解析装置ＥＣＩＳＺθ（Applied BioPhysics）を用いて各シートのシート化培養における電気的特性を評価した。ＥＣＩＳＺθは、電極上の細胞層のインピーダンス、電圧およびその位相をリアルタイムで測定し、細胞層の電気抵抗（Ｒ）およびキャパシタンス（Ｃ）、細胞間の接着状態の指標となるＲｂ、細胞と電極（培養基材）との間の接着状態の指標となるα、細胞膜の平均キャパシタンスＣｍなどのパラメータを算出することができる（Operation Manual for all ECIS Systems, Version 1.2.78、Applied BioPhysics参照）。
　例１で分類した各群の細胞を、電極付ウェルプレート（8W10E+、Applied BioPhysics）に８．５７×１０５個／ウェルの密度で播種し、２０％ヒト血清含有ＤＭＥＭ－Ｆ１２培地中、３７℃、５％ＣＯ２の環境でシート化培養を行いながら、ＥＣＩＳＺθを用いてインピーダンス、電圧およびその位相を、ＭＦＴ（Multiple Frequency/Time）モードで経時的に測定、記録した。測定周波数は、６２．５、１２５、２５０、５００、１０００、２０００、４０００、８０００、１６０００、３２０００および６４０００Ｈｚであり、以下では８０００Ｈｚでの測定結果を用いた。装置の操作は、メーカーのマニュアルに従って行った。測定終了後、付属のソフトウェアを用いて、各種パラメータを算出した。
例３　シート形成能に係る指標の同定
　図４に、各群の代表的な実験におけるシート化培養時の経時的な電気抵抗（Ｒ）の推移を示す。同図より、弱シート群の電気抵抗が他の群に比べて低いことが分かる。したがって、低い電気抵抗値は、弱シートの指標となる。また、電気抵抗が、シート化培養の初期に急速に増大し、ピークを付けた後、徐々に低下していくことが分かる。
　図５に、各群の代表的な実験におけるシート化培養時の経時的なＲｂおよびαの推移を示す。同図より、弱シート群のＲｂが他の群に比べて低いことが分かる。したがって、低いＲｂは、弱シートの指標となる。また、剥離シート群のαは正常シート群のものとほぼ同じだが、剥離シート群のＲｂは正常シート群のものより高いことから、剥離シート群では、他の群に比べ、Ｒｂがαに対し相対的に高いことが分かる。このことをより明らかにするために、Ｒｂをαで除したＲｂ／αのグラフを作成した。Ｒｂ／αは、細胞培養物の培養基材からの剥離のしやすさ（細胞剥離性）を示すと考えられる。図６に示す結果から、剥離シート群のＲｂ／αが、他の群より顕著に高いことが分かる。
　次に、Ｒ、Ｒｂ、α、Ｒｂ／αの各パラメータの、ピーク値（シート化培養中の最も高い値）、ピーク時間（ピーク値に達するまでの時間）およびピークまでの傾き（ピーク値／ピーク時間）がシート形成能の指標となり得るかを検討した。以下に、試験した各細胞の個別の数値および各群の平均値を示す。また、各群の平均値を図７～９に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　上記の結果から、以下のことが分かる：
（１）弱シートを形成する細胞は、すべてのパラメータのピーク値が小さく、特にＲ、Ｒｂで極端に小さい。
（２）正常シートまたは剥離シートを形成する細胞は、すべてのパラメータのピーク値が大きく、剥離シートを形成する細胞は特にＲｂ／αのピーク値大きい。
（３）弱シートを形成する細胞は、すべてのパラメータのピーク時間が長く、特にＲ、Ｒｂ、Ｒｂ／αのピーク時間が極端に長い。
（４）正常シートまたは剥離シートを形成する細胞は、すべてのパラメータのピーク時間が短く、剥離シートを形成する細胞は特にＲｂ／αのピーク時間が短い。
（５）弱シートを形成する細胞は、すべてのパラメータのピークまでの傾きが小さく、特にＲ、Ｒｂ、Ｒｂ／αのピークまでの傾きが極端に小さい。
（６）正常シートまたは剥離シートを形成する細胞は、すべてのパラメータのピークまでの傾きが大きく、剥離シートを形成する細胞は特にＲｂ／αのピークまでの傾きが大きい。
　また、上記各数値について各群間で統計学的有意差があるかを検討したところ、下表７～１０に示す結果が得られた（表中、「値」、「時間」および「傾き」は、「ピーク値」、「ピーク時間」および「ピークまでの傾き」をそれぞれ意味する）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　表７～８は、弱シート群、正常シート群および剥離シート群の各群の数値をｔ検定により解析した結果を示す。また、表９～１０は、弱シート群の数値と、正常シート群および剥離シート群を合わせた群の数値とをｔ検定により解析した結果（弱×正常・剥離）、および、正常シート群および剥離シート群を合わせた群における、正常シート群および剥離シート群の数値をｔ検定により解析した結果（正常×剥離）を示す。ｔ検定による解析は、Ｆ検定を行ってから、「等分散の２標本を対象とするｔ検定」または「非等分散の２標本を対象とするｔ検定」を行った（片側分布）。なお、表７～８に示す結果は、ボンフェローニ補正後の数値である。有意水準を５％とすると、表７～８の結果から、弱シートと正常シートの間では、Ｒ、ＲｂおよびＲｂ／αのピーク値およびピークまでの傾き、ならびにαのピーク値に、弱シートと剥離シートの間では、ＲおよびＲｂのピーク値およびピークまでの傾きにそれぞれ統計学的有意差が認められたが、正常シートと剥離シートの間では、統計学的有意差を示す項目は認められなかった。これに対し、まず弱シート群の数値と、正常シート群および剥離シート群を合わせた群の数値とを比較してから、正常シート群および剥離シート群を合わせた群において、正常シート群の数値と剥離シート群の数値とを比較すると、弱シート群と、正常シート群および剥離シート群を合わせた群との間では、Ｒ、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αのピーク値、ＲｂおよびＲｂ／αのピーク時間、および、Ｒ、ＲｂおよびＲｂ／αのピークまでの傾きに統計学的有意差が認められ、さらに、正常シート群と剥離シート群との間で、Ｒのピーク値に統計学的有意差が認められた。
　上記所見から、Ｒ、Ｒｂ、α、Ｒｂ／αの各パラメータのピーク値、ピーク時間およびピークまでの傾きが、弱シート、正常シートまたは剥離シートを形成する細胞を区別するための指標となり得ることが分かる。このことを確認するために、各パラメータのピーク値、ピーク時間およびピークまでの傾きに下表１１～１２に示す基準値を設定し、これにより上記区別が可能かを検討した。結果を下表１３～１４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
　上記基準値のうち、例えば、特定の分類の細胞群について１００％または０％であるものは、基準値として有用性が極めて高いといえる。
　本明細書に記載された本発明の種々の特徴は様々に組み合わせることができ、そのような組合せにより得られる態様は、本明細書に具体的に記載されていない組合せも含め、すべて本発明の範囲内である。また、当業者は、本発明の精神から逸脱しない多数の様々な改変が可能であることを理解しており、かかる改変を含む均等物も本発明の範囲に含まれる。したがって、本明細書に記載された態様は例示にすぎず、これらが本発明の範囲を制限する意図をもって記載されたものではないことを理解すべきである。

Claims (13)

  1. 　（１）シート化培養中の細胞培養物のインピーダンスおよび／もしくは電気抵抗またはこれに関連する数値を決定するステップ、
    （２）ステップ（１）で決定した数値と基準値とを比較するステップ、
    （３）ステップ（２）で得た比較結果に基づき細胞のシート形成能を判定するステップ
    を含む、細胞のシート形成能を評価する方法。
  2. 　（１）シート化培養中の細胞培養物のインピーダンスおよび／もしくは電気抵抗またはこれに関連する数値を決定するステップ、
    （２）ステップ（１）で決定した数値と基準値とを比較するステップ、
    （３）ステップ（２）で得た比較結果に基づき細胞のシート形成能を判定するステップ
    （４）ステップ（３）で得た判定結果に基づいてシート状細胞培養物の製造過程を制御するステップ
    を含む、シート状細胞培養物の製造方法。
  3. 　ステップ（１）において、インピーダンスおよび／または電気抵抗の決定が定期的に行われる、請求項１または２に記載の方法。
  4. 　ステップ（１）において、電流に対する電圧の位相をさらに決定する、請求項１～３のいずれか一項に記載の方法。
  5. 　ステップ（１）におけるインピーダンスの決定が、２以上の周波数において行われる、請求項１～４のいずれか一項に記載の方法。
  6. 　インピーダンスに関連する数値が、細胞培養物の電気抵抗、キャパシタンス、Ｒｂ、α、Ｒｂ／α、Ｃｍからなる群から選択されるパラメータ、ならびに、該パラメータのピーク値、ピーク時間およびピークまでの傾きからなる群から選択される、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
  7. 　ステップ（３）において、電気抵抗が基準値以下であるか、基準値より小さい場合に、細胞のシート形成能が低いと判定する、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
  8. 　ステップ（３）において、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αが基準値以下であるか、基準値より小さい場合に、細胞のシート形成能が低いと判定する、請求項６または７に記載の方法。
  9. 　ステップ（３）において、Ｒｂ、αおよびＲｂ／αが基準値以上であるか、基準値より大きい場合に、細胞のシート形成能が適正または過剰と判定する、請求項６または７に記載の方法。
  10. 　ステップ（３）において、電気抵抗のピーク値、Ｒｂのピーク値およびＲｂのピークまでの傾きからなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さい場合、および／または、電気抵抗のピーク時間およびＲｂのピーク時間からなる群から選択される数値が基準値以上であるか、基準値より大きい場合に、細胞のシート形成能が低いと判定する、請求項６に記載の方法。
  11. 　ステップ（３）において、電気抵抗のピーク時間およびＲｂのピーク時間からなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さく、かつ、Ｒｂ／αのピーク値およびＲｂ／αのピークまでの傾きからなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さい場合、および／または、電気抵抗のピーク時間およびＲｂのピーク時間からなる群から選択される数値が基準値以下であるか、基準値より小さく、かつ、Ｒｂ／αのピーク時間が基準値以上であるか、基準値より大きい場合に、細胞のシート形成能が適正と判定する、請求項６に記載の方法。
  12. 　ステップ（３）において、Ｒｂ／αのピーク値およびＲｂ／αのピークまでの傾きからなる群から選択される数値が基準値以上であるか、基準値より大きい場合、および／または、Ｒｂ／αのピーク時間が基準値以下であるか、基準値より小さい場合に、細胞のシート形成能が過剰と判定する、請求項６に記載の方法。
  13. 　細胞をシート化培養するための容器と、容器中の細胞培養物のインピーダンスおよび／または電気抵抗を決定するための測定器とを備えた、細胞のシート形成能を評価するためのシステム。
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