WO2015170844A1 - 마그네틱(magnetic)을 이용한 형광다중면역검사 - Google Patents

마그네틱(magnetic)을 이용한 형광다중면역검사 Download PDF

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WO2015170844A1
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박성식
이상래
장규태
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한국생명공학연구원
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Definitions

  • the present invention relates to a fluorescence multiple immunoassay (mul t i -f luorescence immune-assay) using a magnetic (magnet i c). .
  • radioimmunoassay As immunoassay, radioimmunoassay (RIA) is used to detect signals using radioisotopes according to the detection principle and method, and enzyme immunoassay using signal amplification by enzymes (ELISA: enzyme- l Inked immunosorbent assay, or EIA (enzyme-immunassay), fluorescence antibody detection using fluorescence (FA: f luorescence ant) ibody technique), chemi luminescence immunoassay (CLIA) using chemiluminescence, and other classifications are possible depending on the labeling method and substrate type.
  • ELISA enzyme- l Inked immunosorbent assay
  • EIA enzyme-immunassay
  • FFA fluorescence antibody detection using fluorescence
  • F f luorescence ant
  • CLIA chemi luminescence immunoassay
  • enzyme immunoassay has excellent sensitivity, specificity, rapidity and reproducibility, and it has the advantage of universality that can be used to detect various kinds of antigens and antibodies by the same operation when different antigens or antibodies are used. It is the most used.
  • Enzyme immunoassay can be subdivided into three types, Di rect ELISA, Indirect ELISA, and Sandwich enzyme immunoassay (Sandwi ch EUSA). Specifically, in direct enzyme immunoassay, when an enzyme linked to an antigen immobilized on a solid surface is bound to an enzyme, the enzyme generates a signal by catalyzing the reaction of a substrate.
  • Indirect enzyme-linked immunoassay firstly binds the primary antibody (pri imary ant ibody) to the antigen, and the secondary antibody (secondary ant ibody) to which the enzyme is secondarily recognized and binds the main antibody. In this state, the enzyme linked to the secondary antibody is signaled by catalyzing the reaction of the substrate.
  • sandwich enzyme immunoassay the most widely used form, uses two kinds of antibodies with different epi tope for one antigen to be detected and shows high selectivity for the antigen to be detected. It is also used a lot.
  • enzyme immunoassay has a disadvantage that at least 2 hours of washing time for removing the unbound material after antigen-antibody reaction and antigen-antibody reaction are required.
  • the absorbance measurement has a disadvantage that it is impossible to detect the trace amount. Accordingly, the inventors maintain the advantages of the ELISA method . As a result of shortening the time required for the experiment, and trying to detect a trace amount of the target antigen, the magnetic binder was directly moved by a magnet to detect the antigen, and a ' photosensitive pipe fluorescence detector was used to detect the antigen-binding marker. By this, the present invention was completed.
  • the object of the present invention is 1) a first transfer step of moving a magnetic conjugate including a magnetic bead and a first antibody to a first well containing a sample by using a magnet;
  • a well part including a well in which a sample is dispensed
  • a magnet part consisting of a magnetic bar and a magnetic bar cap which can cover the magnetic bar;
  • a fluorescence detector capable of detecting the fluorescence of the marker bound to the sample in the sample
  • a fluorescence multiple immunoassay device comprising a moving unit for moving the well to the fluorescence detection unit.
  • Another object of the present invention is to perform a fluorescence multiple immunoassay device, characterized in that to use a magnetic to implement a magnet unit and a fluorescence detection unit as one automated device to perform a single or multiple immunoassay
  • the present invention is 1) a magnetic binder containing a magnetic bead (magnet ic bead) and the first antibody by using a magnet A first moving step of moving to the first well contained;
  • the present invention is a well portion including a well (wel l) in which the sample is dispensed; A magnet part consisting of a magnetic bar and a magnetic bar cap capable of covering the magnetic bar; A fluorescence detector capable of detecting the fluorescence of the marker bound to the sample in the sample; And a moving unit capable of moving the wells to the fluorescence detection unit.
  • the present invention provides an immunoassay method using a magnetic (magnet i c) conjugate, it is possible to shorten the time required for the test because it is moved directly by the target antigen sub-magnetic in the sample bound to the magnetic conjugate. In addition, since the sample is moved, it can be usefully used for multiple testing by using respective antibodies and markers for a plurality of target antigens.
  • FIG. 1 is a diagram illustrating a test method (ELISA) of a general enzyme immunoassay
  • Figure 2 is a diagram illustrating a test of fluorescence immunoassay using a magnetic (magnet i c)
  • 3 is a diagram illustrating a test flow manually implementing the present invention
  • 4 is a device diagram of a magnetic fluorescence multiple immunoassay device.
  • Magnetic i c bead refers to small particles having magnetic particles inside and coating silica and various functional groups on the outside.
  • antibody refers to an immunoglobulin molecule that is immunologically covalent with a particular antigen.
  • Forms produced by genetic engineering which may include antibody fragments having antigen binding capability, but for the purposes of the present invention are meant monoclonal antibodies.
  • first antibody as used in the present invention means an antibody that specifically binds to a target antigen and binds to the magnetic beads.
  • second antibody refers to an antibody that specifically binds to a target antigen and binds to a marker.
  • magnetic binder as used in the present invention means a binder in which the magnetic beads and the first antibody specifically binding to the target antigen are bound.
  • magnetic binder-antigen complex used in the present invention refers to a complex of the magnetic conjugate and the antigen.
  • magnetic binder-antigen-marker complex used in the present invention means a complex in which the magnetic binder-antigen complex and the marker bind.
  • marker means a complex comprising a second antibody and a marker that binds to the second antibody.
  • EDC EDC [N-ethyl-N '-(dimethl aminopropyl) carbodi imide hydrochlor ide' hereinafter referred to as EDC] coupling
  • EDC solution By reacting, it means forming a carboxyl group by a functional group on the surfaces of magnetic beads and the like.
  • ELISA ELISA
  • Figure 1 the first antibody (primary antibody) is fixed to the surface of the first antigen (specific antibody) specific binding, the second antibody to which the marker is secondary binding After detecting and binding the first antibody-antigen conjugate, the fluorescence of the marker is finally detected to detect the target antigen.
  • the present invention after moving the magnetic conjugate to the first well containing the sample using an external magnet, as shown in Figure 2, after detecting the woody antigen with the magnetic conjugate attached to the magnet, it is attached to the magnet again
  • the magnetic binder-antigen complex is then transferred to a plate containing the washing solution to wash off the unfunged residues on the surface of the magnetic conjugate.
  • the magnetic conjugate-antigen complex attached to the magnet is labeled with a second marker. Transfer to wells to form a magnetic conjugate-antigen-marker complex.
  • the present invention may further include, but is not limited to, a washing step in which the magnetic conjugate-antigen complex is moved to a plate containing a washing solution using a magnet before step 3).
  • the present invention may further include a step of washing the magnetic conjugate-antigen-marker complex before the step 5) by moving to a plate containing the cleaning liquid using a magnet, but is not limited thereto.
  • the washing step may be a complete solution such as Tris-HCL, TBECTris borate EDTA, TBS (Tr is-buf fered saline), PBS (Phosphate buffered saline), BSA (Bovine serum albumin) can be used, 3 to 5 times Although it can be repeated, if it is possible to protect the non-banung carboxyl group (-C00H) and the like remaining in the magnetic beads can be made by any known buffer solution known to those skilled in the art.
  • the marker of the present invention may include, but is not limited to, a second antibody that binds to the magnetic conjugate-antigen complex.
  • the detecting step of the present invention may be characterized by measuring the fluorescence value of the magnetic conjugate-antigen-labeled complex, but is not limited thereto. .
  • the fluorescence value measurement may include, but is not limited to, a fluorophotometer, a spectrophotometer, a fluorescence spectrophotometer, an ultraviolet-visible spectrophotometer, a microplate reader, and the like.
  • the magnetic beads of the present invention are neutral carboxyl group (-COOK), ester group (-can, neutral amine group (-NH 2 ), neutral amine group ion (- ⁇ or NH 3- ), on the surface of the magnetic beads, It may include any functional group selected from the group consisting of a neutral thiol group (-SH) and an ion (-S) of the neutral thiol group, but the magnetic bead conjugate of the present invention is not limited thereto. Beads may be characterized in that the antibody and streptavidin-biotin bond, avidin-biotin bond, EDC coupling, sulfhydrylamine coupling, Ni-NTA-histidine bond, amide binding, but is not limited thereto.
  • the marker of the present invention may be a fluorescent substance or an ultraviolet (uv) marker that binds to the second antibody.
  • the present invention includes a well portion including a well (wel l) in which a sample is dispensed;
  • a magnet part consisting of a magnetic bar and a magnetic bar cap capable of covering the magnetic bar
  • a fluorescence detector capable of detecting the fluorescence of the marker bound to the sample in the sample
  • a fluorescence multiple immunoassay device comprising a moving unit for moving the well to the fluorescence detection unit.
  • the well portion of the present invention 6 well plate, 12 well plate, 18 well plate, 24 well plate, 36 well folate, 48 well plate, 96 well full rate, 128 well A plate, 256 well play, 384 well plate is characterized in that it comprises a well plate selected from the group consisting of, but not limited to.
  • the well of the present invention is one column dividing the sample, second column, and dividing the magnetic coupler, and the third column and the fifth column is dispensed with the liquid, and the fourth column dividing the marker complex, and 6 column buffer Dispensing the solution may be characterized by, but not limited to.
  • the present invention provides, but is not limited to, a fluorescence multiple immunoassay device characterized in that the magnetic part and the fluorescence detection part are implemented using a magnetic device.
  • the present inventors prepared 10 ⁇ magnetic beads (7-12 X 10 9 beads /) EDG [N-ethyl-N '-(dimethl aminopropyl) -carbodi imide hydrochlor to prepare a magnetic conjugate.
  • EDC EDC
  • carboxyl group (-C00H) on the surface of the magnetic beads as a functional group, and then the amine group (_NH 2 ) and the carboxyl group of the first thrombin binding antibody to the amide binding (amide binding)
  • the absorbance was measured at 260 nm with a spectrometer to confirm binding of the magnetic binder.
  • the inventors of the present invention in order to prepare a marker, the inventors prepared a second trumpbin monoclonal antibody in 0.5 borate buffer (borate buf fer, pH 8.5, 0.1 M) in 15 ⁇ FITC ( BD Biosc iences, USA), added to the solution, and reacted for 2 hours under dark conditions, and the solution was purified by a desalting column, followed by absorbance at 280 nm and 496 nm. By measuring the binding of the second thrombin monoclonal antibody and FITC, the marker was obtained.
  • FITC BD Biosc iences, USA
  • thrombin Abeam (ab48626), USA
  • PBS solution containing the solution After mixing the magnetic binder (10 ⁇ , 7-12 X 10 9 beads /) with PBS solution containing the solution, the solution was stirred by stirring (200 rpm) for 10 minutes at 37 ° C, and exposed to the magnet for 1 minute As a result, a magnetic conjugate-antigen complex was obtained.
  • the present inventors in order to detect the magnetic binder-antigen-labeled complex, the magnetic binder-antigen (thrombin) complex and the marker of Example 2 at 37 ° C. in PBS solution After incubation for 10 minutes, the target antigen (thrombin) was detected by detecting the magnetic conjugate-antigen-marker complex by irradiation with 488 nm visible light and measuring 520 nm visible light.
  • the present inventors have three antigens, hepatitis A virus (HAV), in order to perform fluorescence multiple immunoassay.
  • HAV hepatitis A virus
  • Each magnetic conjugate-antigen complex was prepared for hepatitis B virus (HBV) and hepatitis C virus (HCV), and then a magnetic conjugate-antigen-marker complex was prepared in which each fluorescent substance was bound to each antigen.
  • HAV hepatitis B virus
  • HCV hepatitis C virus
  • a magnetic conjugate-antigen-marker complex was prepared in which each fluorescent substance was bound to each antigen.
  • the inventors moved the sixth column wells buffered to the rear of the fully automatic fluorescence multiple immunoassay device using an XY stepper to implement the fluorescence multiple immunoassay in an automated device. then, using the 'result of using a fluorescence optical future is attached to the back of the instrument measuring the luminescence value of the markers in combination with the sample an automated multiple fluorescent Immunoassay could detect the antigen of interest. Therefore, the immunodiagnostic method of the present invention can directly capture the target antigen in the sample by the movement of the magnetic bar, can greatly shorten the experiment time, and can be usefully used in the immunodiagnostic method.
  • the present invention will be described in detail by the following examples.
  • the inventors In order to detect antigens using magnetics, the inventors have used a first thrombin monoclonal antibody in the magnetic beads to provide EDC [-et hy 1 -N '-(di me th 1 am i nopr opy l) -carbodi imide hydrochlor ide , By using the following EDC coupling method to prepare a 'magnetic binder'.
  • 10 magnetic beads (7 12 X 10 9 beads ⁇ ) were prepared by washing with 0.01 M aqueous NaOH solution and deionized water. After cleaning, place the cleaning solution on the magnetic The magnetic beads were separated by exposure for 1 minute.
  • PBS phosphate buffered saline
  • Abcam ab8926
  • UK a first thrombin monoclonal antibody
  • a mixture of the magnetic beads and the first thrombin monoclonal antibody was exposed on the magnetic for 1 minute to remove unbound antibody.
  • the amount of bound antibody was analyzed by measuring the absorbance at 260 nm with a spectrometer.
  • the magnetic beads to which the antibody was bound were washed three times with 1000 ⁇ of PBSUO mM, pH 7.4).
  • buffer solution (0.1% BSA [bovime serum albumin] and 0.05% Tween 20) was added to protect the microbanung carboxyl groups on the surface of the magnetic beads, and cultured with stirring (200 rpm) at room temperature. The solution was then exposed to a magnet to separate the magnetic conjugate-antigen complex.
  • the present inventors prepared the "marker" for detecting the magnetic conjugate -antigen complex detected in ⁇ Experimental Example 1> by the following method.
  • a second marker monoclonal antibody [5G9] (ab7199) was combined with the fluorescent material Fluorescein isothiocyanate (hereinafter, FITC) to prepare a 'label ' .
  • the second thrombin monoclonal antibody was added to a solution in which l ⁇ FITC (BD Biosciences, USA) was added to 0.5 mi borate buffer (pH 8.5, 0.1 M). Reaction for 2 hours at. Thereafter, the solution was purified by a desalting column and absorbance was measured at 280 nm and 496 nm to confirm the binding of the second thrombin monoclonal antibody to FITC. .
  • Experimental Example 1 Detection of Magnetic Binder-Antigen Complex
  • the present inventors collected the antigen (thrombin) using the magnetic conjugate prepared in Example 1 as in the following experiment.
  • Example 1 the magnetic conjugate of Example 1 (10 ⁇ , 7-12 ⁇ 10 9 ′ ) in a PBS solution containing .1 ng / mi to 1 ug / i of thrombin (Abeam (ab48626), USA) Mixed beads /).
  • thrombin Abeam (ab48626), USA
  • the solution was allowed to bind while stirring (200 rpm) for 10 minutes at 37 ° C.
  • the magnetic conjugate-antigen complex was separated by exposure to the magnetic PBS solution containing the magnetic conjugate and antigen (Trmbin) at room temperature.
  • the supernatant of the solution was transferred to a separate tube to measure the amount of trapped thrombin.
  • the amount of collected thrombin was measured by the Mi cro BCA method.
  • the magnetic conjugate-thrombin (antigen) complex was then washed five times with 1000 PBS (10 mM, H 7.4) solution.
  • buffer solution (0.1% BSA [bovime serum al bumin] and 0.05% Tween 20) was added and incubated at room temperature with stirring (200 rptn). After incubation, the solution was exposed to a magnet for 1 minute to remove the buffer solution.
  • the inventors of the present invention have directed to detecting magnetic conjugates—antigen-marker complexes. The following experiment was performed.
  • the magnetic conjugate -antigen (thrombin) complex and the
  • the markers of Example 2 were incubated at 37 ° C. in PBS solution for 10 minutes, and then irradiated with 488 nm visible light to measure 520 nm visible light. As a result, the magnetic dendrites-antigen- The target antigen (thrombin) could be detected by detecting the marker complex.
  • the present inventors performed the following fluorescence multiple immunoassay in order to perform fluorescence multiple immunoassay.
  • Magnetic conjugates for each antigen in the same manner as in Examples 1 and 2 to simultaneously detect three antigens, hepatitis A virus (HAV), hepatitis B virus (HBV) and hepatitis C virus (HCV). Antigen complexes were prepared.
  • HAV hepatitis A virus
  • HBV hepatitis B virus
  • HCV hepatitis C virus
  • HAV Abl hepatitis A (HAV) antibody 1 (hereinafter HAV Abl) and antibody 2 (hereinafter HAV Ab2)
  • HAV Abl hepatitis B
  • HBV Abl hepatitis B
  • HBV Ab2 Hepatitis C (HCV) Antibody 1 (hereinafter referred to as HCV Abl) and Antibody 2 (hereinafter referred to as HCV Ab2)
  • HAV Abl, HBV Abl and HCV Abl were combined with magnetic beads to prepare magnetic conjugates.
  • HAV Abl, HBV Abl and HCV Abl were combined with magnetic beads to prepare magnetic conjugates.
  • HBV Ab2 HCV Ab2 was combined with respective fluorescent materials Cy3 (HAV Ab2), FAM HBV Ab2), Fluo-4 (HCV Ab2) to prepare a marker.
  • the sample blood was dispensed in column 1 of 96 well plates, and in column 2, each of the magnetic conjugates was equally dispensed by 0.1 ni / n, respectively.
  • Each of the magnetic conjugates was equally dispensed by 0.1 ni / n, respectively.
  • the same washing solution as the third column was dispensed.
  • buffers were dispensed.
  • the magnetic bead-antigen complexes were moved to 4 rows using magnets and reacted for 10 minutes to bind the magnetic conjugate-antigen complexes to the markers.
  • the magnetic conjugate-antigen-labeled conjugate was transferred to 5 rows using a magnet, and then washed for 2 minutes in a washing solution to remove impurities.
  • the fifth row of the magnetic binder-antigen-marker complex after the washing was completed was again placed in a six-row buffer using a magnet.
  • Samples contained in the sixth column were put in a microplate fluorescence detector and the fluorescence value was measured. Specifically, with respect to hepatitis A, irradiated with visible light of 544 nm and was determined to 590 nm, it was examined to measure the 518 nm of a visible light of 492 nm with respect to hepatitis B, of 485 nm with respect to the C-type "hepatitis Visible light was measured and 518 nm was measured.
  • the target antigen was detected by fluorescence multiple immunity by detecting the magnetic conjugate-antigen-labeled complex against three antigens (type A, B, and hepatitis C). '
  • the present inventors conducted the following experiment to implement a fluorescence multiple immunoassay in an automated device.
  • the target antigen could be detected using an automated fluorescence multiple immunoassay device.

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Abstract

본 발명은 마그네틱(magnetic)을 이용한 면역진단방법에 관한 것으로, 구체적으로 본 발명의 마그네틱 결합체에 결합한 검체 내 목적 항원이 자석에 의해 직접 이동하기 때문에 검사에 소요되는 시간을 단축시키는 효과가 있어, 면역진단방법 및 면역진단 기기에 유용하게 사용될 수 있다.

Description

【명세서】
[발명의 명칭】
마그네틱 (magnet ic)을 이용한 형광다중면역검사 【기술분야】
본 발명은 마그네틱 (magnet i c)을 이용한 형광다중면역검사법 (mul t i -f luorescence immune-assay)에 관한 것이다. .
【배경기술]
임상검시" 분야에서， 생체 시료 (혈액, 뇨 등)를 이용하여 각종 질환들의 진단을 수행하고 있는데， 이러한 진단방법으로서， 각종 측정법이 개발되어 이용되고 있다. 이러한 측정방법의 대표적인 방법으로서. 효소반웅을 이용한 생화학적 측정법 또는 항원 -항체반웅을 어용한 면역측정법을 들 수 있다. 최근에는 생체 시료중의 성분을 정밀하게 측정하는 것이 요구되고, 특이성이 높은 항원 -항체반웅을 이용한 면역측정방법이 폭넓게 이용되고 있다. 면역측정법으로는 그 검출 원리 및 방법에 따라 방사성 동위원소를 사용하여 신호를 검출하는 방사면역분석법 (RIA: radioimmunoassay) , 효소에 의한 신호증폭을 사용하는 효소면역측정법 (ELISA: enzyme- l inked immunosorbent assay, 혹은 EIA : enzyme - immunoassay) , 형광을 이용하여 검출하는 형광항체법 (FA: f luorescence ant ibody technique) , 화학발광을 사용하는 화학발광면역즉정법 (CLIA: chemi luminescence immunoassay) 등으로 나눌 수 있으며， 그 밖에도 표지물질의 사용 방법이나 기질의 종류에ᅳ 따라 다양한 분류가 가능하다. 여러 가지 면역분석법 중 효소면역측정법은 반웅의 민감도， 특이성， 신속성 및 재현성이 매우 뛰어나고 항원이나 항체를 달리할 경우 동일 조작으로 다양한 종류의 항원， 항체 검출에 이용될 수 있는 범용성의 장점이 있어 가장 많이 사용되고 있다. 효소면역측정법은 항체의 활용 방법에 따라 직접효소면역측정법 (Di rect ELISA) , 간접효소면역측정법 ( Indirect ELISA) 및 샌드위치효소면역측정법 (Sandwi ch EUSA)의 3가지로 세분할 수 있다. 구체적으로， 직접효소면역측정법은 고체표면에 고정된 항원에 효소와 연결된 항체 (Enzyme- l inked Ant ibody)가 결합하면 효소가 기질의 반웅을 촉매 함으로써 신호를 생성하게 된다. 간접효소면역측정법은 1차로 주항체 (pr imary ant ibody)가 항원에 특이적인 결합을 하고, 2차로 효소가 연결된 보조항체 (secondary ant ibody)가 주항체를 인식하여 결합한다. 이상태에서 보조항체에 연결되어 있는 효소가 기질의 반웅올 촉매 하여 신호를 내게 된다. 마지막으로， 가장 널리 사용되는 형태인 샌드위치효소면역측정법은 검출하려는 하나의 항원에 대하여， 인식부위 (epi tope)가 다른 2종의 항체를 사용하는 것이며, 검출하고자 하는 항원에 대한 높은 선택성을 나타내어 진단용으로도 많이 사용이 되고 있다.
다만, 효소면역측정법은 항원-항체간 반웅시간 및 항원 -항체 반웅을 시킨후 결합되지 않은 물질을 제거하기 위한 세척시간이 최소 2 시간 이상 요구되는 단점이 있다. 또한， 검사하고자 하는 물질의 검출을 위해 마커 등의 흡광도를축정하는데， 흡광도 측정은 극미량의 검출이 불가능한 단점이 있다. 이에， 본 발명자들은 엘라이자 방법 (ELISA)이 갖는 장점을 유지하면서，. 실험에 소요되는 시간을 단축하고， 극미량의 목적 항원의 검출을 하기 위해 노력한 결과， 마그네틱 결합체를 자석에 의해 직접 이동시켜 항원을 검출하고，' 광전자증배관 형광검출기를 이용하여 항원과 결합한 표지자를 검출함으로써 본 발명을 완성하였다.
[발명의 상세한 설명】
【기술적 과제】
본 발명의 목적은 1) 마그네틱 비드 (magnet i c bead) 및 제 1 항체를 포함하는 마그네틱 결합체를 자석을 이용하여 검체가 담긴 제 1 웰 (wel l )로 이동시키는 제 1 이동단계;
2) 상기 마그네틱 결합체와 검체 내의 타겟 항원이 결합하여 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 형성하는 제 1 결합단계;
3) 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 자석을 이용하여 표지자가 담긴 제 2 웰 (wel l )로 이동시키는 제 2 이동단계; '
4) 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체와 상기 표지자가 결합하여 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 형성하는 제 2 결합단계; 및
5) 상기 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 검출하는 검출단계를 포함하는 면역검사방법을 제공하는 것이다. 본 맣명의 또 다른 목적은
시료가 분주되는 웰 (wel l )을 포함하는 웰부;
마그네틱 바 (magnet ic bar ) 및 이를 덮을 수 있는 마그네틱 바-캡 (cap)로 구성되는 자석부;
상기 시료내 검체와 결합한 표지자의 형광을 검출할 수 있는 형광검출부; 및
상기 웰을 상기 형광검출부로 이동시킬 수 있는 이동부를 포함하는 형광다중면역검사기기를 제공하는 것이다. 본 발명의 또 다른 목적은 단일 또는 다중면역검사를 수행하기 위하여， 자석부 및 형광 검출부를 하나의 자동화된 기기로 구현하는 마그네틱을 이용하는 것을 특징으로 하는 형광다중면역검사기기
[기술적 해결방법】
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 1) 마그네틱 비드 (magnet i c bead) 및 제 1 항체를 포함하는 마그네틱 결합체를 자석을 이용하여 검체가 담긴 제 1 웰 (wel l )로 이동시키는 제 1 이동단계;
2) 상기 마그네틱 결합체와 검체 내의 타켓 항원이 결합하여 마그네틱. 결합체 -항원 복합체를 형성하는 제 1 결합단계;
3) 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 자석을 이용하여 표지자가 담긴 제 2 웰 (wel l )로 이동시키는 제 2 이동단계;
4) 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체와 상기 표지자가 결합하여 마그네틱 결합체-항원—표지자 복합체를 형성하는 제 2 결합단계; 및
5) 상기 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 검출하는 검출단계를 포함하는 면역검사방법을 제공한다. 또한 본 발명은 시료가 분주되는 웰 (wel l )을 포함하는 웰부; 마그네틱 바 (magnet i c bar ) 및 이를 덮을 수 있는 마그네틱 바-캡 (cap)으로 구성되는 자석부; 상기 시료내 검체와 결합한 표지자의 형광을 검출할 수 있는 형광검출부; 및 상기 웰을 상기 형광검출부로 이동시킬 수 있는 이동부를 포함하는 형광다중면역검사기기를 제 Ϋ한다.
【유리한 효과】
본 발명은 마그네틱 (magnet i c) 결합체를 이용하는 면역검사방법을 제공함으로서， 상기 마그네틱 결합체에 결합한 검체 내 목적 항원아 마그네틱에 의해 직접 이동하기 때문에 검사에 소요되는 시간을 단축할 수 있다. 또한， 검체가 이동하는 방식이므로 다수의 목적 항원에 대한 각각의 항체 및 표지자를 사용함으로서 다중검사에 유용하게 사용될 수 있다.
【도면의 간단한 설명】
도 1은 일반적인 효소면역검사법의 실험방법 (ELISA)을 도식화한 도이고， 도 2는 마그네틱 (magnet i c)을 이용한 형광다증면역검사법의 실험을 도식화한 도이고，
도 3은 본 발명을 수동으로 구현한 검사흐름을 도식화한 도이고, , 도 4는 마그네틱 형광다중면역검사기의 기기도이다.
【발명의 실시를 위한 최선의 형태]
이하， 본 발명에서 사용된 용어를 설명한다. 본 발명에 사용된 용어. "마그네틱 비드 (magnet i c bead) " 란， 내부에 자성입자가 있고 외부에 실리카 및 다양한 관능기를 코팅한 소입자를 의미한다.
또한， 본 발명에 사용된 용어 "항체" 란， 면역학적으로 특정 항원과 반웅성인 면역글로블린 분자를 의미한다. 유전 공학에 의해 생산된 형태， 항원결합 능력을 가지는 항체 단편을 포함할 수 있으나 본 발명의 목적상 단일클론 항체를 의미한다. - 또한， 본 발명에 사용된 용어 "제 1 항체" 란， 목적 항원과 특이적으로 결합하며， 상기 마그네틱 비드와 결합하는 항체를 의미한다.
또한， 본 발명에 사용된 용어 "제 2 항체" 란， 목적 항원과 특이적으로 결합하며， 표지자와 결합하는 항체를 의미한다.
또한， 본 발명에 사용된 용어 "마그네틱 결합체" 란， 상기 마그네틱 비드와 목적 항원에 특이적으로 결합하는 제 1 항체가 결합한 결합체를 의미한다.
또한， 본 발명에 사용된 용어 "마그네틱 결합체-항원 복합체" 란， 상기 마그네틱 결합체와 항원이 결합한 복합체를 의미한다.
또한， 본 발명에 사용된 용어 "마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체" 란， 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체와 표지자가 결합한 복합체를 의미한다.
또한， 본 발명에 사용된 용어 "표지자" 란， 제 2 항체 및 제 2 항체와 결합하는 마커를 포함하는 복합체를 의미한다 .
또한, 본 발명에 사용된 용어 "EDC[N-ethyl- N' -(dimethl aminopropyl ) carbodi imide hydrochlor ide ' 이하 EDC 라 한다] 커플링" 이란, EDC 용액을 반웅시킴으로써， 마그네틱 비드 등의 표면에 카르복실기를 작용기로 형성시키는 것을 의미한다. 이하， 본 발명을 상세히 설명한다. 본 발명은
1) 마그네틱 비드 및 제 1 항체를 포함하는 마그네틱 결합체를 자석을 이용하여 검체가 담긴 제 1 웰 (wel l )로 이동시키는 제 1 이동단계;
2) 상기 마그네틱 결합체와 검체 내의 타겟 항원이 결합하여 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 형성하는 제 1 결합단계;
3) 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 자석을 이용하여 표지자가 담긴 제 2 웰 (wel l )로 이동시키는 제 2 이동단계;
4) 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체와 상기 표지자가 결합하여 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 형성하는 제 2 결합단계; 및
5) 상기 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 검출하는 검출단계를 포함하는 면역검사방법을 제공한다. 일반적으로 가장 많이 사용되는 엘라이자 방법 (ELISA)은 도 1과 같이 1차로 표면에 고정된 제 1항체 (주항체)에 목적 항원이 특이적인 결합을 하고， 2차로 표지자가 결합된 제 2항체가 제 1항체 -항원 결합체를 인지하여 결합한 후， 마지막으로 표지자의 형광을 검출하여， 목적항원을 검출하게 된다. 구체적으로 본 발명은， 도 2와 같이 외부의 자석을 이용하여 마그네틱 결합체를 검체가 담긴 제 1 웰로 이동한 후， 상기 자석에 부착되어 있는 마그네틱 결합체로 목작 항원을 검출한 후， 다시 상기 자석에 부착되어 있는 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 세척액이 담긴 플레이트로 이동시켜 세척을 통해 마그네틱 결합체 표면의 미반웅 잔기를 보호 (blocking)한다. 그 후， 상기 자석에 부착된 상태의 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 표지자가 담겨있는 제 2 웰로 옮겨， 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 형성한다. 또한， 본 발명은 상기 단계 3) 전에 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 자석을 이용하여 세척액이 담긴 플레이트로 이동시켜 세척하는 세척단계를 더 포함할 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니다. 또한， 본 발명은 상기 단계 5) 전에 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 자석을 이용하여 세척액이 담긴 플레이트로 이동시켜 세척하는 단계를 더 포함할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 상기 세척단계는 Tris-HCL, TBECTris borate EDTA), TBS(Tr is-buf fered saline), PBS(Phosphate buffered saline), BSA( Bovine serum albumin) 등의 완층용액올 사용할 수 있으며， 3회 내지 5회 반복할 수 있으나， 마그네틱 비드에 잔존하는 미반웅 카르복실기 (-C00H) 등을 보호할 수 있다면 이에 한정되지 않고 당업자에게 알려진 모든 공지의 완충용액에 의해 이루어질 수 있다. 또한, 본 발명의 상기 표지자는 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체와 결합하는 제 2 항체를 포함할 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니다. 또한， 본 발명의 상기 검출단계는 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체의 형광값을 측정하는 것을 특징으로 할 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니다. . 상기 형광값 측정은 형광광도계， 분광광도계， 형광분광광도계， 자외-가시선 분광광도계， 마이크로플레이트 리더 (microplate reader) 등을 사용할 수 있으나 이에 한정되는 것은 아니다. 또한， 본 발명의 상기 마그네틱 비드는 마그네틱 비드의 표면에 중성 카르복시기 (-COOK) , 에스테르기 (-can , 중성 아민기 (-NH2) , 중성 아민기의 이온 (-ΝΙΓ 또는 NH3-) , 중성 티올기 (-SH) 및 중성 티올기의 이온 (-S )으로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 작용기를 포함할 수 있으나， 이에 한정되는 것은 아니다. 또한， 본 발명의 상기 마그네틱 비드 결합체는 상기 마그네틱 비드는 항체와 스트렙타비딘-바이오틴 결합， 아비딘-바이오틴 결합， EDC 커플링， 설프하이드릴아민 커플링， Ni-NTA-히스티딘 결합, 아마이드 바인딩을 하는 것을 특징으로 할 수 있으나， 이에 한정되는 것은 아니다. 또한， 본 발명의 상기 표지자는 제 2 항체와 결합하는 형광물질 또는 자외선 (uv) 표지자일 수 있다. 구체적으로， 상기 형광물질 또는 자외선 (uv) 표지자는 FITC(Fluorescein i sothiocyanate) , PE(phycoerythr in) , TRITC(tetramethyl -rhodamine i sothiocyanate) , Cy3(Cyanine 3) , Cy5(Cyanine 5) 및 로다민 (Rhodamine)으로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있으나， 이에 한정되는 것은 아니다. 또한， 본 발명은 시료가 분주되는 웰 (wel l )을 포함하는 웰부;
마그네틱 바 (magnet i c bar ) 및 이를 덮을 수 있는 마그네틱 바-캡 (cap)으로 구성되는 자석부;
상기 시료내 검체와 결합한 표지자의 형광을 검출할 수 있는 형광검출부; 및
상기 웰을 상기 형광검출부로 이동시킬 수 있는 이동부를 포함하는 형광다중면역검사기기를 제공한다. 또한， 본 발명의 상기 웰부는 6웰 플레이트, 12웰 플레이트, 18웰 플레이트， 24웰 플레이트， 36웰 폴레이트， 48웰 플레이트, 96웰 풀레이트， 128웰 플레이트， 256웰 플레이 ， 384웰 플레이트로 구성되는 군으로부터 선택되는 웰플레이트를 포함하는 것을 특징으로 하나 이에 한정되는 것은 아니다. 또한， 본 발명의 상기 웰은 1열에는 시료를 분주하고， 2열에는 마그네틱 결합체를 분주하고， 3열 및 5열에는 세척액을 분주하고， 4열에는 표지자 복합체를 '분주하며 , 6열에는 버퍼용액을 분주하는 것을 특징으로 할 수 있으나 이에 한정 되는 것^ 아니다. 또한， 본 발명은 상기 자석부 및 상기 형광 검출부를 하나의 자동화된 기기로 구현하는 마그네틱을 이용하는 것을 특징으로 하는 형광다중면역검사기기를 제공하나 이에 한정되는 것은 아나다.
본 발명의 구체적인 실시예에 있어서， 본 발명자들은 마그네틱 결합체를 제조하기 위하여 10 ιΑ 마그네틱 비드 (7-12 X 109 비드 / )를 EDG[N-ethyl-N ' -(dimethl aminopropyl )-carbodi imide hydrochlor i de , EDC] 커플링법에 의해 마그네틱 비드의 표면에 카르복실기 (-C00H)를 작용기로서 구비한 후， 제 1 트름빈결합 항체의 아민기 (_NH2) 와 상기 카르복실기를 아마이드 바인딩 (amide binding)에 의해 결합시킨후， 분광계로 260 nm 에서 흡광도를 측정한 결과， 마그네틱 결합체의 결합을 확인할 수 있었다. 또한, 본 발명의 구체적인 실시예에 있어서， 상기 EDC 용액처리 후 마그네틱 비드 표면에 형성된 미반웅 작용기를 보호 (blocking)하기 위하여， 마그네틱 결합체의 제조 후， 마그네틱 결합체 -항원 복합체의 제조 후 및 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체 제조 후 각 단계마다 1000 의 완충용액 (0. 1% BSA[bovime serum albumin] 및 0.05% Tween 20)을 첨가하고， 실은에서 교반 (200 rpm)하며 배양한 결과， 자석비드 표면의 키르복실기를 보호할 수 있었다. 또한， 본 발명의 구체적인 실시예에 있어서, 본 발명자들은 표지자를 제조하기 위하여 제 2 트름빈 단일클론 항체를 0.5 의 붕산염 완충용액 (borate buf fer , pH 8.5 , 0. 1 M)에 15 μί FITC(BD Biosc iences , USA)을 첨가한 용액에 첨가한 후， 실은의 암실 조건에서 2시간 동안 반웅시킨 후， 상기 용액을 탈염 (desal t ing) 컬럼으로 정제한 후, 280 nm와 496 nm에서 흡광도를 측정하여 상기 제 2 트름빈 단일클론 항체와 FITC의 결합여부를 확인한 결과， 표지자를 수득할 수 있었다. 또한， 본 발명의 구체적인 실험예에 있어서， 본 발명자들은 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 검출하기 위하여， 목적 항원안 1 ng/m« 내지 1 ug/m^ 의 트롬빈 (Abeam (ab48626) ,USA)을 함유한 PBS 용액에 상기 마그네틱 결합체 ( 10 ^， 7-12 X 109 비드 / )를 섞은 후， 상기 용액을 37 °C에서 10분간 교반 (200 rpm)하면서 결합반웅 시키고， 자석에 1분동안 노출시킨 결과， 마그네틱 결합체—항원 복합체를 얻을 수 있었다. 또한， 본 발명의 구체적인 실험예에 있어서, 본 발명자들은 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 검출하기 위하여， 상기 마그네틱 결합체 -항원 (트롬빈)복합체와 상기 실시예 2의 표지자를 PBS용액에서 37°C로 10분간 인큐베이션을 하여에서 결합시킨 후 488 nm의 가시광선을 조사하여， 520 nm의 가시광선을 측정한 결과， 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 검출함으로써 목적 항원 (트롬빈)을 검출할 수 있었다. 또한， 본 발명의 구체적인 실험예에 있어서， 본 발명자들은 형광다중면역검사를 수행하기 위하여 3가지의 항원인 A형 간염바이러스 (HAV) , . B형 간염바이러스 (HBV) 및 C형 간염바이러스 (HCV) 대하여 각각의 마그네릭 결합체 -항원 복합체를 제조한 후, 각각의 항원에 대하여 각각의 형광물질을 결합시킨 마그네틱 결합체—항원-표지자 복합체를 제조하여 (구체적으로 HAV에 대한 형광물질은 ' Cy3 ' , HBV에 대한 형광물질은 ' FAM ' , HCV에 대한 형광물질은 ' Fluo-4 '를 사용하였다)， 각 표지자 형광물질에 특이적인 가시광선 (Cy3는 544 nm , FAM은 492 nm , Fluo_4는 492 nm)을 조사한 후 방사된 가시광선을 측정 (Cy3는 590 nm , FAM은 518 nm, Fluo_4는 518 nm)한 결과 3가지 항원에 대한 형광다중면역을실시하여 목적 항원을 검출할 수 있었다. 또한， 본 발명의 구체적인 실험예에 있어서, 본 발명자들은 형광다중면역검사를 자동화 기기에서 구현하기 위하여 버퍼가 분주된 제 6열의 웰을 X-Y stepper를 이용하여 전자동 형광다중면역검사 기기의 후면으로 이동시킨 후， 상기 '기기의 후면에 장착되어 있는 형광광학장차를 이용하여 검체와 결합한 표지자의 발광값을 측정한 결과 자동화된 형광다중면역검사 기기를 이용하여 목적 항원을 검출할 수 있었다. 따라서， 본 발명의 상기 면역진단방법은， 마그네틱의 이동에 의해 검체 내 목적 항원을 직접 포집할 수 있는바 실험 시간올 크게 단축할 수 있어， 면역진단방법에 유용하게 사용될 수 있다. 이하， 본 발명을 하기 실시예에 의해 상세히 설명한다.
단， 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일뿐， 본 발명의 내용이 하기 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.
<실시예 1>마그네틱 결합체의 제조
본 발명자들은， 마그네틱을 이용하여 항원을 검출하기 위해， 마그네틱 비드에 제 1 트롬빈 단일클론 항체를 EDC [ -e t hy 1 -N ' - ( d i me t h 1 am i nopr opy l )-carbodi imide hydrochlor ide , 이하 EDC] 커플링법을 이용하여 '마그네틱 결합체' 를 제조하였다.
우선, 10 마그네틱 비드 (7 12 X 109비드 Λ )를 0.01 M의 NaOH수용액 및 탈이온수로 세척하여 준비하였다. 세척 후， 상기 세척 용액을 마그네틱 위에 1분 동안 노출시켜서 상기 마그네틱 비드를 분리하였다.
이어서, 마그네틱 비드의 표면에 카르복실기를 형성시킬 수 있도록 마그네틱 비드에 EDC 용액 500 ιΛ (20 mg/i )을 첨가하고, 4°C에서 30분 동안 교반기 (shaking incubator, 200 rpm)에서 배양하였다.
배양 후， 미반웅된 EDC 용액을 제거하고 남은 마그네틱 비드를 1000
PBS( phosphate buffered saline)에 재현탁시키고， 제 1 트롬빈 단일클론 항체 (Abcam(ab8926), 영국)와 흔합한 다음 실온에서 1시간 동안 교반 (200 rpm)하며 배양하였다.
상기 결합 후， 상기 마그네틱 비드 및 제 1 트롬빈 단일클론 항체의 흔합액을 마그네틱 위에 1분 동안 노출시켜 미결합 항체를 제거하였다. (결합한 항체의 양은 분광계로 260 nm 에서 흡광도를 측정하여 분석하였다.) 이후, 항체가 결합된 마그네틱 비드를 1000 μί 의 PBSUO mM, pH 7.4)로 3회 세척하였다.
세척 후， 마그네틱 비드 표면의 미반웅 카르복실기를 보호하기 위해, 1000 μί 의 완충용액 (0.1% BSA[bovime serum albumin] 및 0.05% Tween 20)을 첨가하고, 실온에서 교반 (200 rpm)하며 배양하였다. 이후 상기 용액을 자석에 노출시켜 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 분리하였다
배양 후, 1000 μί 의 PBSCLO mM, pH 7.4) 용액에 재현탁하여, 항원과 결합할 수 있는 마그네틱 결합체를 제조할 수 있었다.
<실시예 2>표지자의 제조
본 발명자들은, 상기 <실험예 1>에서 검출한 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 검출하기 위한 '표지자' 를 하기의 방법으로 제조하였다.
제 2 트름빈 단일클론 항체 ([5G9](ab7199))를 형광물질인 Fluorescein isothiocyanate (이하， FITC)와 결합시켜서 '표지자' '를 제조하였다.
구체적으로， 제 2 트름빈 단일클론 항체를 0.5 mi 의 붕산염 완충용액 (borate buffer, pH 8.5， 0.1 M)에 l μί FITC(BD Biosciences, USA)올 첨가한 용액에 첨가한 후， 실은의 암실 조건에서 2시간 동안 반웅하였다. 그 후， 상기 용액을 탈염 (desal t ing) 컬럼으로 정제한 후， 280 nm와 496 nm에서 흡광도를 측정하여 상기 제 2 트롬빈 단일클론 항체와 FITC의 결합여부를 확인한 결과， 표지자를 수득할 수 있었다. <실험예 1>마그네틱 결합체 -항원 복합체의 검출
본 발명자들은， 상기 <실시예 1>에서 제조한 마그네틱 결합체를 이용하여 하기의 실험과 같이 항원 (트롬빈)을 포집하였다.
구체적으로， .1 ng/mi 내지 1 ug/i 의 트름빈 (Abeam ( ab48626) , USA)을 함유한 PBS 용액에 상기 <실시예 1>의 마그네틱 결합체 ( 10 μΐ , 7-12 x 109 ' 비드 / )를 섞었다. 타겟 항원인 트롬빈의 검출을 위해， 상기 용액을 37°C에서 10분간 교반 (200 rpm)하면서 결합반응 시켰다.
상기 결합 반웅 후, 상온에서 상기 마그네틱 결합체 및 항원 (트름빈)을 함유한 PBS용액을 마그네틱에 노출시켜 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 분리하였다.
포집된 트름빈의 양을 측정하기 위해 상기 용액의 상층액 ( supernatant )을 별도의 튜브로 옮겼다.
포집된 트롬빈의 양은 Mi cro BCA법에 의해 측정하였다.
이어서, 마그네틱 결합체-트롬빈 (항원) 복합체를 1000 의 PBS( 10 mM , H 7.4) 용액으로 5회 세척하였다.
세척 후， 마그네틱 비드 표면의 미반웅 카르복실기를 보호하기 위해
1000 μί 의 완충용액 (0. 1% BSA[bovime serum al bumin] 및 0.05% Tween 20)올 첨가하고, 실온에서 교반 (200 rptn)하며 배양하였다. 배양 후， 상기 용액을 자석에 1분 동안 노출하여 상기 완충용액을 제거하였다.
이후， 1000 μί 의 PBS 10 mM , pH 7.4) 용액에서 재현탁한 후，자석을 이용하여 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 수득하였다.
<실험예 2>마그네틱 결합체-항원-표지자복합체의 검출
본 발명자들은, 마그네틱 결합체—항원-표지자 복합체를 검출하기 위해 하기의 실험을수행하였다.
구체적으로， 상기 상기 마그네틱 결합체 -항원 (트롬빈)복합체와 상기
<실시예 2>의 표지자를 PBS용액에서 37°C에서 10분간 인큐베이션을 하여 결합시킨 후 488 nm의 가시광선을 조사하여 , 520 nm의 가시광선을 측정하였다 그 결과, 상기 마그네틱 결할체-항원-표지자 복합체를 검출함으로써 목적 항원 (트롬빈)을 검출할 수 있었다.
<실험예 3> 형광다중면역검사 수행
본 발명자들은， 형광다중면역검사를 수행하기 위하여, 하기의 형광다중면역검사를 수행하였다.
3가지의 항원인 A형 간염바이러스 (HAV) , B형 간염바이러스 (HBV) 및 C형 간염바이러스 (HCV)를 동시에 검출하기 위하여 상기 실시예 1 및 2와 같은 방법으로 각 항원에 대하여 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 제조하였다.
구체적으로， A형 간염 (HAV) 항체 1(이하, HAV Abl) 및 항체 2(이하， HAV Ab2) , B형 간염 (HBV) 항체 1(이하， HBV Abl) 및 항체 2(이하， HBV Ab2) , C형 간염 (HCV)항체 1(이하， HCV Abl)및 항체 2(이하, HCV Ab2)를 준비하고， HAV Abl , HBV Abl , HCV Abl는 각각 마그네틱 비드와 결합시켜 마그네틱 결합체를 제조하였으며， HAV Ab2 , HBV Ab2 , HCV Ab2는 각각의 형광물질인 Cy3(HAV Ab2) , FAM HBV Ab2) , Fluo-4(HCV Ab2)와 결합시켜 표지자를 제조하였다.
형광다중면역 검사를 위해， 96 웰플레이트 (wel l pl ate) 1열에 검체인 혈액을 분주하였고， 2열에는 상기의 각각의 마그네틱 결합체를 각각 0. 1 ni /n 씩 동량으로 분주하였고， 3열에는 1000 ^ 의 PBS( 10 mM, pH 7.4)세척액을 분주하였으며， 4열에는 상기 표지자 (Cy3-HAV Ab2 , FAM-HBV Ab2 , Fluo-4-HCV Ab2)를 각각 0. 1 mg/m씩 동량으로 분주하였으며， 5열에는 상기 3열과 같은 세척액을 분주하였다. 6열에는 버퍼를 분주하였다.
구체적으로， 자석올 이용하여 2열의 마그네틱 결합체를 검체가 분주된 1열로 이동시킨후， 10분간 반웅시켜서 마그네틱 결합체와 항원을 결합시켰다. 이때 항원 -항체 반웅을 촉진하기 위하여 37°C로 하부에 장착된 알루미늄 블록을 통하여 가열 (heat ing)하였고， 마그네틱 바를 상부에 두고 플라스틱 바캡을 상하운동을 하여 결합반웅을 촉진시켰다. 그 후, 자석을 이용하여 1열의 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 3열로 이동시켜서 세척액에서 2분동안 세척하여 마그네틱 비드 표면의 카르복실 잔기를 보호 (blocking)하였다. 그 후， 자석을 이용하여 마그네탁 비드 -항원 복합체를 4열로 옮겨 10분간 반웅 시킨 결과 마그네틱 결합체 -항원 복합체와 표지자를 결합시켰다. 그 후， 자석을 이용하여 마그네틱 결합체-항원-표지자 결합체를 5열로 옮긴후， 세척액에서 2분간 세착한 결과 불순물을 제거할 수 있었다.
상기 세척이 완료된 제 5열의 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 다시 자석을 이용하여 6열의 버퍼에 넣었다. 상기 6열에 포함된 시료를 마이크로플레이트 형광검출기에 넣고 형광 값을 측정하였다. 구체적으로 A형 간염에 대하여는, 544 nm의 가시광선을 조사하고 590 nm를 측정하였고， B형 간염에 대하여는 492 nm의 가시광선을 조사하고 518 nm를 측정하였으며， C형' 간염에 대하여는 485 nm의 가시광선을 조사하고 518 nm를 측정하였다.
그 결과， 3가지의 항원 (A형， B형， C형 간염)에 대한 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 검출함으로써 형광다중면역을 실시하여 목적항원을 검출할 수 있었다. '
<실험예 4>전자동 형광다중면역검사기기를통한항원의 검출
본 발명자들은， 형광다중면역검사를 자동화 기기에서 구현하기 위하여 하기와 같은 실험을 하였다.
구체적으로， 상기 <실험예 3>의 제 6열의 웰을 X-Y stepper motor를 이용하여 전자동 형광다중면역검시" 기기의 후면으로 이동시킨 후， 상기 기기의 후면에 장착되어 있는 형광광학장치를 이용하여 검체와 결합한 표지자의 형광값을 측정하였다.
그 결과， 자동화된 형광다중면역검사 기기를 이용하여 목적 항원을 검출할 수 있었다.

Claims

[청구의 범위]
[청구항 1】
1) 마그네틱 비드 (magnet i c bead) 및 제 1 항체를 포함하는 마그네틱 결합체를 자석을 이용하여 검체가 담긴 제 1 (wel l )로 이동시키는 제 1 이동단계;
2) 상기 마그네틱 결합체와 검체 내의 타겟 항원이 결합하여 마그네틱 결합체-항원 복합체를 형성하는 제 1 결합단계;
3) 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체를 자석을 이용하여 표지자가 담긴 ' 제 2 웰 (wel l )로 이동시키는 제 2 이동단계;
.
4) 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체와 상기 표지자가 결합하여 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 형성하는 제 2 결합단계; 및
5) 상기 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체를 검출하는 검출단계를 포함하는 면역검사방법. 【청구항 2】
제 1항에 있어서， 상기 단계 3) 전에 마그네틱 결합체-항원 복합체를 자석을 이용하여 세척액이 담긴 플레이트로 이동시켜 세척하는 단계를 더 포함하는 면역검사방법, 【청구항 3】
제 1항에 있어서， 상기 단계 5) 전에 마그네^ 결합체ᅳ항원-표지자 복합체를 자석을 이용하여 세척액이 담긴 플레이트로 이동시켜 세척하는 단계를 더 포함하는면역검사방법. [청구항 4】
제 1항에 있어서， 상기 표지자는 상기 마그네틱 결합체 -항원 복합체와 결합하는 제 2 항체를 포함하는 면역검사방법 . 【청구항 5】
게 1항에 있어서， 상기 검출단계는 마그네틱 결합체-항원-표지자 복합체의 형광 값을 측정하는 것을 특징으로 하는 면역검사방법.
[청구항 6】
제 1항에 있어서， 상기 마그네틱 비드는
상기 마그네틱 비드 표면에 중성카르복시기 (-C00H) , 에스테르기 (—COO—) , 중성아민기 (-N¾) , 중성 아민기의 이은 (-NH—또는 ΝΗ3-) , 중성 티을기 (-SH) , 중성 티올기의 이온 (-S_) 으로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나의 작용기를 포함하는 것을 특징으로 하는 면역검사방법.
【청구항 7】
제 1항에 있어서， 상기 마그네틱 결합체는
상기 마그네틱 비드는 항체와 스트랩타비딘-바이오틴 결합， 아비딘-바이오틴 결합， EDC커플링， 살프하이드릴아민 커플링 , Ni-NTA-히스티딘 결합， 아마이드 바인딩을 하는 것을 특징으로 하는 면역검사방법 .
【청구항 8】 ' . .
제 4항에 있어서， 상기 표지자는 제 2항체와 결합하는 형광물질 또는 자외선 (uv) 표지자인 면역검사방법.
【청구항 9】
제 8항에 있어서， 상기 형광물질 또는 자외선 (uv) 표지자는 FITC(Fluorescein i sothiocyanate) , PE(phycoerythr in) , TRITC( tetramethyl -rhodamine i sothiocyanate) , Cy3(Cyanine 3) , Cy5(Cyanine 5) 및 로다민 (Rhodamine)으로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 면역검사방법.
【청구항 10] 시료가 ¾주되는 웰 (wel l )을 포함하는 웰부;
마그네틱 바 (magnet i c bar ) 및 이를 덮을 수 있는 마그네틱 바-캡 (cap)으로 구성되는 자석부;
상기 시료내 검체와 결합한 표지자의 형광을 검출할 수 있는 형광검출부; 및/ .
상기 웰을 상기 형광검출부로 이동시킬 수 있는 이동부를 포함하는 형광다중면역검사기기.
【청구항 11】
제 10항에 있어서， 상기 웰부는 6웰 플레이트, 12웰 플레이트, 18웰 플레이트, 24웰 폴레이트， 36웰 플레이트， 48웰 플레이트， 96웰 폴레이트， 128웰 플레이트， 256웰 플레이트， 384웰 플레이트로 구성되는 군으로부터 선택되는 웰플레이트를 포함하는 것을 특징으로 하는 형광다중면역검사기기.
[청구항 12】
제 11항에 있어서， 상기 ¾의 1열에는 시료를 분주하고， 2열에는 마그네틱 결합체를 분주하고， 3열 및 5열에는 세척액을 분주하고, 4열에는 표지자 복합체를 분주하며， 6열에는 버퍼용액을 분주하는 것을 특징으로 하는 형광다중면역검사기기.
[청구항 13】
제 10항에 있어서, 상기 형광다중면역검사기기는
자석부 및 형광 검출부를 하나의 자동화된 기기로 구현하는 마그네틱을 이용하는 것을 특징으로 하는 형광다중면역검사기기.
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