WO2021060496A1 - 光切断リンカーの光切断効率向上方法、光切断リンカー結合磁性粒子、並びに、対象物質を測定する測定方法及びこれに用いるためのキット - Google Patents

光切断リンカーの光切断効率向上方法、光切断リンカー結合磁性粒子、並びに、対象物質を測定する測定方法及びこれに用いるためのキット Download PDF

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magnetic particles
target substance
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朗弘 岡
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富士レビオ株式会社
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    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals

Definitions

  • immunological measurement methods such as a sandwich method, a competitive method, and an immunoturbidimetric method, and these principles have been used.
  • a similar measurement method is known.
  • the sandwich method for example, a probe molecule capable of specifically binding to a target substance such as a biomolecule is immobilized on a solid phase such as a plate or particles, thereby capturing and detecting the target substance. There is a way to do it.
  • the present invention by inserting a spacer between the magnetic particles and the light-cutting linker, the distance between the magnetic particles and the light-cutting linker is maintained, so that the magnetic particles
  • the present inventors presume that the absorption of light in the vicinity of the photo-cutting linker is suppressed, a sufficient amount of light reaching the photo-cutting linker can be sufficiently secured, and excellent photo-cutting efficiency is achieved.
  • photocleaving linker As such a photocleaving linker, conventionally known ones can be appropriately used.
  • NHS N-hydroxysuccinimide
  • PC photocleaving linker
  • PC-biotin trade name: PC-Biotin-NHS, Ambergen
  • Fmoc-aminoethyl photolinker manufactured by Novabiochem
  • PC DBCO-PEG4-NHS ester manufactured by BroadPharm
  • PC Mal-NHS carbonate ester manufactured by BroadPharm, etc.
  • the photocleaving linker according to the present invention one of these may be used alone or in combination of two or more.
  • the dextran when the spacer is made of dextran, is preferably 5K to 75KDa in mass per molecule from the viewpoint of being more excellent in the effect of improving the photocutting efficiency, and is preferably 10K to 75K. It is more preferably 70 KDa, and even more preferably 20 K to 70 KDa.
  • the magnetic particles and the photocleaving linker are preferably bonded via a bond with a spacer made of at least one molecule (more preferably one molecule) of dextran. However, two or more of the photocleaving linkers may be bound to one molecule of dextran.
  • a carboxy group is added to a component constituting at least one of the above-mentioned object to be bonded and the above-mentioned bond.
  • the probe molecule according to the present invention may be one of the above alone or in combination of two or more, and is not particularly limited. Measurement using the photocleaving linker-bonded magnetic particles of the present invention. It can be appropriately selected depending on the principle adopted in the method and the substance to be measured, but for example, from the viewpoint of reaction specificity, it has a polynucleotide, a polypeptide, a hormone, and the same or similar structure as these. It is preferably at least one selected from the group consisting of molecules, and more preferably at least one selected from the group consisting of antibody fragments, DNA fragments, and RNA fragments.
  • a plurality of spacers may be bonded to one magnetic particle, and a plurality of photocleaving linkers may be bonded to one spacer, and 1 Multiple photocleaving linkers may be attached to one probe molecule.
  • the content of the photocleaving linker is preferably set to an amount capable of binding a sufficient amount of probe molecules, and the photocleaving is performed with respect to 1 part by mass of the spacer.
  • the mass of the linker (when the photocleaving linker is a combination of two or more kinds, the total amount thereof, the same applies hereinafter) is preferably 0.001 to 1 part by mass, preferably 0.02 to 1 part by mass. Is more preferable.
  • the photocleaving linker-bonded magnetic particles of the present invention can be produced by binding (fixing) the spacer, the photocleaving linker, and the probe molecule to the magnetic particles in this order.
  • the manufacturing method is not particularly limited, and a conventionally known method or a method similar thereto can be appropriately adopted.
  • the bonds between the magnetic particles and the spacer, between the spacer and the photocleaving linker, and between the photocleaving linker and the probe molecule may be independent, direct or indirect (hereinafter, tentatively).
  • the former of "-" is called “bonded product", and the latter is called “bonded product").
  • the magnetic particles, the spacer, the photocleaving linker, and the probe molecule may be bonded at one time, or these may be sequentially bonded separately. From the viewpoint of ease of operation and controllability of the amount of each part, it is preferable to sequentially combine them separately. Further, it is also preferable to bond some of the objects to be bonded and the bonded products in advance, and then combine and bond them. Further, as such a pre-bonded object to be bonded and the bonded product, a commercially available binder similar to that mentioned in the above-mentioned method for improving photocutting efficiency may be appropriately used.
  • the target substance in the sample is measured by using the above-mentioned photocleaving linker-bound magnetic particles of the present invention. Measure.
  • the target substance according to the present invention is not particularly limited, and the principle adopted in the measurement method using the photocleaving linker-bonded magnetic particles of the present invention, the type of the probe molecule, the type of the following competing substance, and the like are appropriately selected.
  • at least one selected from the group consisting of polynucleotides, polypeptides, and hormones is preferable, and the substance serving as an antigen is complementary. More preferably, it is at least one selected from the group consisting of DNA having a sequence and RNA having a complementary sequence.
  • the magnetic particles and the detection target can be easily and highly efficiently separated by light while enjoying the advantages of automation and shortening of time by the magnetic particles.
  • High-precision signal measuring means such as a microchemical analysis method and a measuring method described in International Publication No. 2018/079761 can be easily used.
  • Examples of the method for measuring the target substance using the photocleavable linker-bound magnetic particles of the present invention include immunological measurement methods such as sandwich method, competitive method, and immunoturbidimetric method, and measurement methods based on these principles. Is mentioned, and there is no particular limitation.
  • the target substance measuring method of the present invention the target substance in the sample can be quantified by detecting and quantifying according to the type of the labeled substance and comparing it with the measured value in the standard sample. Further, from the viewpoint of detecting the target substance more easily and quickly, for example, a method such as immunochromatography can be adopted.
  • photo-cleaving linker-bonded magnetic particles of the present invention photo-cleaving linker-bonded magnetic particles which are molecules to which the probe molecule can specifically bind to the target substance are used.
  • examples of the combination of such a target substance and a molecule (probe molecule) capable of specifically binding to the target substance, or the combination of the probe molecule and the target substance include an antigen (antigen peptide, low molecular weight compound, etc.).
  • sample it may be used after being diluted with a sample diluent, or it may be suspended in a particle suspension medium of the trap, and further, a reaction system between the trap and the sample (for example). , Antigen-antibody reaction system), other reaction buffers may be added as appropriate.
  • the sample diluent, particle suspension medium, and reaction buffer are not particularly limited, but for example, each of these independently known buffers (sodium phosphate buffer, MES, Tris, CFB, MOPS, PIPES, HEPES, etc.) Tricine buffer, bicine buffer, glycine buffer, etc.), and the particle suspension medium and reaction buffer may be independently added with a stabilizing protein such as BSA or serum. Good.
  • the photocleaving linker is cleaved to release the complex of the target substance bound to the trap and the probe molecule from the magnetic particles and used for the measurement step.
  • a sample a prepared sample containing the complex is obtained.
  • the light irradiation time is shortened in order to improve the light cutting efficiency of the photo-cutting linker as compared with the case where the photo-cutting linker is bound to the magnetic particles without using the spacer. Can be done.
  • the detection molecule according to the first aspect may be any molecule as long as it can specifically bind to the target substance, and is appropriately selected from the same molecules as those listed as the probe molecule, depending on the type of the target substance. You can choose. Further, the detection molecule may be of the same type as the probe molecule contained in the photocleaving linker-bonded magnetic particles of the present invention.
  • labeling substance those used as labeling substances in known immunological measurements can be used without particular limitation.
  • labeling substances include enzymes; luminescent substances such as acridinium derivatives; fluorescent substances such as europium; fluorescent proteins such as allophycocyanin (APC) and phycoerythrin (R-PE); radioactive substances such as 125 I; fluorescein.
  • Low molecular weight labeling substances such as isothiocyanate (FITC) and rhodamine isothiocyanate (RITC); gold particles; avidin; biotin; latex; dinitrophenyl (DNP); digoxygenin (DIG), and one of them alone. However, it may be a combination of two or more kinds.
  • the enzyme when an enzyme is used as the labeling substance, various detections and quantifications can be performed depending on the substrate by adding a color-developing substrate, a fluorescent substrate, a chemiluminescent substrate, or the like as the substrate.
  • the enzyme is used as the labeling substance according to the present invention from the viewpoint that it tends to enable a simple and stable test and that it is possible to perform a simple, rapid and highly sensitive measurement. preferable.
  • the enzyme include, but are not limited to, horseradish peroxidase (HRP), alkaline phosphatase (ALP), ⁇ -galactosidase ( ⁇ -gal), glucose oxidase, and luciferase.
  • the labeled detection molecule according to the first aspect can be produced by binding the detection molecule and the labeling substance.
  • a binding method a conventionally known method or a method similar thereto can be appropriately adopted, and the detection molecule and the labeling substance may be directly bonded or indirectly bonded.
  • the method described as the method for producing the photo-cutting linker-bonded magnetic particles of the present invention that is, the same method as the method described as the method for inserting the spacer in the above-mentioned method for improving the photo-cutting efficiency
  • a similar method can be mentioned.
  • the labeling detection molecule according to the first aspect a commercially available molecule may be appropriately used.
  • the target substance is a substance serving as an antigen
  • a commercially available labeling antibody or the like against the target substance may be used. It can be used as appropriate.
  • the addition amount (final concentration) of the labeling detection molecule (when the labeling detection molecule is a combination of two or more types, the total amount thereof, the same applies hereinafter) is the type of sample.
  • the concentration is appropriately adjusted according to the concentration, the detection method, and the like, and is not particularly limited. However, for example, it is preferably 0.05 to 1 ⁇ g / mL, and preferably 0.1 to 0.5 ⁇ g / mL. More preferred.
  • the labeling substance of the labeling detection molecule is an enzyme
  • a signal is detected by adding a color-developing substrate or a luminescent substrate corresponding to the enzyme and reacting the enzyme with the substrate.
  • the presence / absence and amount of the target substance in the sample can be detected as a signal, and the amount of the target substance in the sample can be quantified by comparing with the measured value in the standard sample. it can.
  • the magnetic particles 11 and the photocleaving linker 13 are bonded via the spacer 12, and the photocleaving linker 13 is attached to the sample.
  • the photocleaving linker-bound magnetic particles 101 to which the probe molecule 14 (preferably an antibody against the target substance 15) capable of specifically binding to the target substance 15 inside is bound are used.
  • the target substance 15 is captured by the photocleaving linker-bonded magnetic particles 101 existing in the reaction system (reaction solution) via the probe molecule 14.
  • the cleaning step after removing the target substance 15, impurities, etc.
  • the detection molecule 16 (preferably) that can specifically bind to the target substance 15.
  • a solution containing the labeled detection molecule 102 labeled with the labeling substance 17 such as an enzyme (antibody against the target substance 15) is added, and the labeling detection molecule 102 is bound to the target substance 15 (a). Then, in the washing step again, the unreacted labeling detection molecule 102 is removed, and the labeling detection molecule 102 bound to the photocleavable linker-bonded magnetic particles 101 via the target substance 15 remains.
  • the concentration of the photocleaving linker-bonded magnetic particles in each solution is not particularly limited, but is 0 from the viewpoint that an excessive addition tends to increase a non-specific signal in some cases. It is preferably .005 to 0.2% by mass, and more preferably 0.01 to 0.1% by mass.
  • the concentration of the detection molecule is also not particularly limited, but from the same viewpoint, it is preferably 0.05 to 1 ⁇ g / mL, and more preferably 0.1 to 0.5 ⁇ g / mL.
  • the labeled competing substance can be produced by combining the competing substance and the labeling substance.
  • a conventionally known method or a method similar thereto can be appropriately adopted, and the competing substance and the labeling substance may be directly bonded or indirectly bonded.
  • the method described as the method for producing the photo-cutting linker-bonded magnetic particles of the present invention that is, the same method as the method described as the method for inserting the spacer in the above-mentioned method for improving the photo-cutting efficiency
  • a similar method can be mentioned.
  • the labeling competing substance a commercially available substance may be appropriately used.
  • the target substance is a substance serving as an antigen
  • the antigen or an antibody recognition site same or similar to the antigen may be used.
  • a labeled molecule or the like can be appropriately used.
  • the concentration of the photocleaving linker-bonded magnetic particles in each solution is not particularly limited, but is 0 from the viewpoint that an excessive addition tends to increase a non-specific signal in some cases. It is preferably .005 to 0.2% by mass, and more preferably 0.01 to 0.1% by mass.
  • the concentration of the competing substance is not particularly limited, but from the same viewpoint, it is preferably 0.05 to 1 ⁇ g / mL, and more preferably 0.1 to 0.5 ⁇ g / mL.
  • the photo-cleaving linker-bonded magnetic particles of the present invention and the probe molecule is a competing substance of the target substance.
  • the photo-cleaving linker-bonded magnetic particles, the sample, the target substance, and the competing substance are specifically bound to each other.
  • the content (final concentration) of the trap in the reaction system depends on the type, concentration, detection method, etc. of the sample. It is not particularly limited because it is appropriately adjusted, but it is preferably 0.005 to 0.2% by mass, preferably 0.001 to 0.1% by mass, for example, from the viewpoint of efficiently capturing in a short time. Is more preferable.
  • the amount of the detection molecule added (final concentration) depends on the type, concentration, detection method, etc. of the sample. It is not particularly limited because it is appropriately adjusted, but for example, it is preferably 0.05 to 1 ⁇ g / mL, and more preferably 0.1 to 0.5 ⁇ g / mL.
  • the photocleaving linker is cleaved to release the complex of the detection molecule and the probe molecule bound to the trap from the magnetic particles and used for the measurement step.
  • a sample of a prepared sample containing the complex is obtained.
  • the labeled detection molecule according to the third aspect is a molecule in which the detection molecule is labeled with a labeling substance.
  • a labeling substance those used as labeling substances in known immunological measurements can be used without particular limitation, and as the labeling substance of the labeling detection molecule of the first aspect, including the preferred embodiment. Some are similar to those listed.
  • the labeling substance of the labeling detection molecule is an enzyme
  • a signal is detected by adding a color-developing substrate or a luminescent substrate corresponding to the enzyme and reacting the enzyme with the substrate.
  • the bond between the probe molecule and the labeled detection molecule is inhibited by the binding between the competing target substance and the labeled detection molecule. Therefore, the signal is reduced accordingly. Therefore, by detecting the signal of the labeled molecule, it is possible to indirectly detect the presence / absence and amount of the target substance in the sample, and compare it with the measured value in the standard sample. By doing so, the amount of the target substance in the sample can be quantified.
  • the kit for use in the third aspect of the present invention may further include a configuration such as ELISA, CLEIA, immunochromatography, etc. that should be provided for ordinary immunological measurement.
  • a configuration such as ELISA, CLEIA, immunochromatography, etc. that should be provided for ordinary immunological measurement.
  • a standard sample standard sample reagent, each concentration
  • a control reagent the sample diluent
  • the particle suspension medium the reaction buffer
  • washing solution the washing solution
  • dilution cartridge a labeling substance for labeling the detection molecule according to the third aspect.
  • buffer solution 3 containing ALP-PC-biotin conjugate 50 mM MES, 150 mM NaCl, 1 mM MgCl 2 , 0.1 mM ZnCl 2 , 0.5% BSA (pH 6.8) was added. 100 ⁇ L was added and the reaction was carried out at 37 ° C. for 30 minutes. Here, the buffer solution 3 was adjusted so that the ALP concentration was 0.1 ⁇ g / mL or 0.01 ⁇ g / mL. Washing was performed three times with Lumipulse washing solution to obtain an ALP-PC solid phase plate.
  • ALP-PC-biotin conjugate 50 mM MES, 150 mM NaCl, 1 mM MgCl 2 , 0.1 mM ZnCl 2 , 0.5% BSA (pH 6.8)
  • biotin-PC-bound particles were washed 3 times with buffer 4 (20 mM PB, 0.1% Tween 20 (pH 7.2)), and then buffered with 20 ⁇ g / mL SA-bound ALP (Mabtech AB). Liquid 4 was suspended in 100 ⁇ L. After shaking at 37 ° C. for 30 minutes to obtain ALP-PC-bonded magnetic particles, the mixture was washed 3 times with buffer solution 4.
  • Example 2 Cleavage test of photocleaving linker bonded to magnetic particles via polyethylene glycol (1) Preparation of ALP-PC-polyethylene glycol-bonded magnetic particles Dynabeads M- as magnetic particles 270 Carboxylic acid, manufactured by Thermo Fisher Co., Ltd.) was used.
  • the supernatant was collected and transferred 20 ⁇ L to a 96-well microwell plate. 100 ⁇ L of the substrate solution was added to each well and reacted at 37 ° C. for 15 minutes, then 80 ⁇ L of the reaction terminator solution was added, and the mixture was shaken at 37 ° C. for 1 minute. The absorbance at 405 nm of each well was measured.
  • Table 4 shows the absorbance and cleavage rate of the plate under the conditions using various PEGs (UV irradiation time: 15 minutes).
  • Table 5 shows the absorbance and cleavage rate measured under each UV irradiation time condition for the particles using PEG having a weight average molecular weight of 3.4 K.
  • the absorbance in Tables 4 and 5 is the value obtained by subtracting the blank (ultrapure water + microwell plate).
  • each sample was transferred to a cuvette dedicated to Lumipulse Presto (registered trademark), washed 6 times with Lumipulse washing solution, and 200 ⁇ L of Lumipulse substrate solution was added for reaction.
  • the amount of light emitted (count) of each sample was measured using a luminescence reader BLR-201 (manufactured by Aloka). In addition, the count was measured for each sample in the same manner as above except that the ALP-PC-Dex-bonded magnetic particles were not irradiated with UV.
  • Example 4 Immunoassay using photocleavable linker-bound magnetic particles (1) Preparation of IgG-PC-SA-PEG-bound magnetic particles Dynabeads having an amino group as magnetic particles (trade name: Dynabeads M-270 Amine, Thermo) (Manufactured by Fisher) was used. 600 ⁇ L of DMF containing 2 ⁇ mol / mL of NHS-PEG (weight average molecular weight of PEG: 5K) -biotin (trade name: SUNBRIGHT BI-050TS, manufactured by Nitsuabura Co., Ltd.) was added to 6 mg of magnetic particles, and the temperature was 25 ° C. for 2 hours. Infiltrated. After washing 3 times with 600 ⁇ L of DMF, it was washed 3 times with buffer solution 1. After further washing with the buffer solution 4 three times, the mixture was suspended in the buffer solution 4 to prepare a biotin-PEG-bonded magnetic particle solution.
  • the photocleaving linker was bound to the magnetic particles via streptavidin and polyethylene glycol, so that photocleaving by UV irradiation was performed. It was confirmed that the cleavage rate of the linker could be increased.
  • Dynabeads having an amino group (trade name: Dynabeads M-270 Amine, manufactured by Thermo Fisher Scientific Co., Ltd.) were used. After washing 2 mg of magnetic particles with DMF three times, NHS-PEG (weight average molecular weight of PEG: 5K) -maleimide group (Mal) (2 ⁇ mol / mL DMF, trade name: SUNBRIGHT MA-050TS, Nitsuabura Co., Ltd. The product was added in an amount of 200 ⁇ L and reacted at 25 ° C. overnight. After washing 3 times with DMF, washing 3 times with buffer solution 6, 200 ⁇ L of SA-SH solution (400 ⁇ g / mL) was added.
  • NHS-PEG weight average molecular weight of PEG: 5K
  • Mal -maleimide group
  • the cells were washed 3 times with buffer solution 6. 6 solutions of 5 mM cysteine / buffer were added and shaken at 25 ° C. for 3 hours to obtain SA-PEG-bonded magnetic particles. The cells were washed 6 times with buffer 7 (0.1 M PB, 1 mM EDTA2Na (pH 6.3)) and 3 times with buffer 6, and the washed SA-PEG-bonded magnetic particles were suspended in buffer 2.
  • buffer 7 0.1 M PB, 1 mM EDTA2Na (pH 6.3)
  • the magnetic particles after UV irradiation were further washed 6 times with a Lumipulse washing solution, 200 ⁇ L of a Lumipulse substrate solution was added, and the mixture was reacted at 37 ° C. for 5 minutes.
  • the amount of light emitted (count) of the magnetic particle liquid under each condition was measured using a luminescence reader BLR-201 (manufactured by Aloka). In addition, the count was measured for each sample in the same manner as above except that UV irradiation was not performed on each of the IgG-PC-SA-PEG-bonded magnetic particles and the Fab'-PC-SA-PEG-bonded magnetic particles. ..

Abstract

磁性粒子及び光切断リンカーを備える光切断リンカー結合磁性粒子において、　前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間にスペーサーを挿入する、 光切断リンカーの光切断効率向上方法。

Description

光切断リンカーの光切断効率向上方法、光切断リンカー結合磁性粒子、並びに、対象物質を測定する測定方法及びこれに用いるためのキット
　本発明は、光切断リンカーの光切断効率向上方法、光切断リンカー結合磁性粒子、並びに、前記光切断リンカー結合磁性粒子を用いて対象物質を測定する測定方法及びこれに用いるためのキットに関する。
　従来、試料中に含まれる生体分子等の有無を検出したり、定量したりする測定方法としては、サンドイッチ法、競合法、及び免疫比濁法等の免疫学的測定方法や、これらの原理に準じた測定方法が知られている。前記サンドイッチ法としては、例えば、前記生体分子等の対象物質に特異的に結合可能なプローブ分子をプレートや粒子等の固相に固定化し、これによって前記対象物質を捕捉して検出することで測定する方法が挙げられる。また、前記競合法としては、例えば、前記固相に固定化したプローブ分子に、前記対象物質と該対象物質の競合物質とを競合させて、前記競合物質を捕捉して検出したり、或いは、前記競合物質を前記固相に固定化し、前記対象物質と前記競合物質とを競合させて、検出用のプローブ分子を前記競合物質で捕捉して検出したりすることで、間接的に前記対象物質を測定する方法が挙げられる。
　前記対象物質や競合物質の検出は、例えば、酵素や発光物質等の標識物質の検出を介して行うことが知られており、さらに、例えば、国際公開第２００５／０７５９９７号（特許文献１）には、前記固相に固定化したプローブ分子として、被検物質に特異的に結合する物質をスペーサーを介して磁気ビーズに結合してなる標識化特異的結合物質を用い、磁気シグナルの検出を介して前記被検物質（対象物質）の検出を行うことが記載されている。
　また、前記固相と前記プローブ分子や競合物質との結合には、捕捉した検出対象に与えるダメージを抑制して容易に回収（再遊離）可能なことから、光切断リンカーを用いることが知られている。前記光切断リンカーは、試料中から生体分子等を回収したり、目的物質を特異的に遊離する方法において主に用いられており、例えば、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇ　Ｃｈｅｍ．２０１０　Ｏｃｔｏｂｅｒ　２０；２１（１０）：１９１７－１９２４（非特許文献１）には、プロテインキナーゼの評価を行うことを目的として、スペーサー、光切断リンカー、及び基質ペプチドが結合した磁気ビーズを用い、反応後の基質ペプチドを光切断リンカーの切断によって遊離し、これをＭＡＬＤＩ－ＴＯＦ　ＭＳを用いて測定することが記載されている。
国際公開第２００５／０７５９９７号
Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇ　Ｃｈｅｍ．２０１０　Ｏｃｔｏｂｅｒ　２０；２１（１０）：１９１７－１９２４
　前記プローブ分子や競合物質等を固定化する固相としては、マイクロウェルプレート、メンブレン、粒子等を用いることができる。特に、反応効率の観点から粒子を用いることが好ましい。一方、近年、上記の免疫学的測定方法等における標識物質の検出においては、反応効率、測定感度、測定時間の短縮等の利点から、ガラスやプラスチックの基板上に設けられた微細な流路（マイクロチャネル）を利用したマイクロ化学分析法を利用することが検討されている。しかしながら、このようなマイクロ化学分析法を利用するためには、マイクロウェルプレート、メンブレン等から検出対象を分離する必要がある。また、上記粒子についても、その粒径は捕捉した検出対象（対象物質、競合物質等）や、検出のための標識物質に比較してサイズが大きいため、マイクロ化学分析法にそのまま供することは困難であり、かかる粒子と検出対象とを分離する必要がある。
　前記粒子としては、自動化・短時間化の観点から、磁性粒子を用いることがより好ましい。そこで、本発明者らは、捕捉された検出対象に与えるダメージを抑制しつつ磁性粒子から容易に分離することを目的として、磁性粒子とプローブ分子との結合に前記光切断リンカーを用いることについて検討を行った。しかしながら、磁性粒子に光切断リンカーを組み合わせると、他の粒子やプレートを用いた場合に比較して光切断効率が著しく低下してしまい、また、低下した光切断効率を上げるために光の照射量や時間を多くすると、検出対象によっては光や熱によって変性・分解等を起こしてしまうため、測定精度が低下してしまうという問題が新たに生じることを本発明者らは見い出した。
　本発明は、上記の本発明者らが新たに見い出した課題に鑑みてなされたものであり、磁性粒子及び光切断リンカーを備える光切断リンカー結合磁性粒子において、前記光切断リンカーの光切断効率を向上させる方法、光切断効率に優れた光切断リンカー結合磁性粒子、並びに、これらを用いて対象物質を測定する測定方法及びこれに用いるためのキットを提供することを目的とする。
　上記課題を解決すべく鋭意検討を行った結果、本発明者らは、磁性粒子及び光切断リンカーを備える光切断リンカー結合磁性粒子において、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間にスペーサーを挿入することにより、前記光切断リンカーの光切断効率を著しく向上させることができることを見い出した。また、前記光切断リンカーに検出対象を捕捉可能なプローブ分子を結合させて上記の免疫学的測定方法等に用いることにより、該検出対象に与えるダメージを抑制しつつ、容易にこれを回収（再遊離）できるため、マイクロ化学分析法等を用いた分析等にも適用可能となることを見い出し、本発明を完成するに至った。
　かかる知見により得られた本発明の態様は次のとおりである。
［１］　磁性粒子及び光切断リンカーを備える光切断リンカー結合磁性粒子において、
　前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間にスペーサーを挿入する、
光切断リンカーの光切断効率向上方法。
［２］　前記光切断リンカーは溶液中で光切断される、［１］に記載の方法。
［３］　前記スペーサーの挿入により前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離を４～１７０ｎｍにする、［１］又は［２］に記載の方法。
［４］　前記スペーサーが、タンパク質、ポリエチレングリコール、及びデキストランからなる群から選択される少なくとも１種である、［１］～［３］のうちのいずれかに記載の方法。
［５］　磁性粒子及び光切断リンカーを備える光切断リンカー結合磁性粒子であり、
　前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間にスペーサーを備え、かつ、
　前記光切断リンカーの前記スペーサーとは反対側の端にプローブ分子を備える、
光切断リンカー結合磁性粒子。
［６］　前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離が４～１７０ｎｍである、［５］に記載の光切断リンカー結合磁性粒子。
［７］　前記スペーサーが、タンパク質、ポリエチレングリコール、及びデキストランからなる群から選択される少なくとも１種である、［５］又は［６］に記載の光切断リンカー結合磁性粒子。
［８］　前記プローブ分子が、ポリヌクレオチド、ポリペプチド、及び低分子化合物からなる群から選択される少なくとも１種である、［５］～［７］のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子。
［９］　試料中の対象物質を測定する測定方法であり、
　［５］～［８］のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子と、前記試料と、を接触させ、前記光切断リンカー結合磁性粒子に前記対象物質を捕捉させる捕捉工程と、
　前記光切断リンカーを光切断して、前記磁性粒子から、前記対象物質と前記プローブ分子とを含む複合体を遊離させて調製試料を得る遊離工程と、
　前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する測定工程と、
を含む、測定方法。
［１０］　前記対象物質に特異的に結合可能な検出用分子が標識物質で標識化された標識化検出用分子に前記対象物質を捕捉させる標識化工程をさらに含み、前記複合体が、前記対象物質と前記プローブ分子と前記標識化検出用分子とを含む複合体であり、かつ、前記複合体の検出が、前記標識物質による検出である、［９］に記載の測定方法。
［１１］　［９］又は［１０］に記載の試料中の対象物質を測定する測定方法に用いるためのキットであり、
　［５］～［８］のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子
を含む、キット。
［１２］　前記対象物質に特異的に結合可能な検出用分子が標識物質で標識化された標識化検出用分子をさらに含む、［１１］に記載のキット。
［１３］　試料中の対象物質を測定する測定方法であり、
　［５］～［８］のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質及び前記対象物質の競合物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子と、前記試料と、前記競合物質と、を接触させ、前記対象物質と前記競合物質とを競合させて、前記光切断リンカー結合磁性粒子に前記競合物質を捕捉させる捕捉工程と、
　前記光切断リンカーを光切断して、前記磁性粒子から、前記競合物質と前記プローブ分子とを含む複合体を遊離させて調製試料を得る遊離工程と、
　前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する測定工程と、
を含む、測定方法。
［１４］　前記競合物質が、標識物質で標識化された標識化競合物質であり、かつ、前記複合体の検出が、前記標識物質による検出である、［１３］に記載の測定方法。
［１５］　［１３］又は［１４］に記載の試料中の対象物質を測定する測定方法に用いるためのキットであり、
　［５］～［８］のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質及び前記対象物質の競合物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子
を含む、キット。
［１６］　前記対象物質の競合物質が標識物質で標識化された標識化競合物質をさらに含む、［１５］に記載のキット。
［１７］　試料中の対象物質を測定する測定方法であり、
　［５］～［８］のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質の競合物質である光切断リンカー結合磁性粒子と、前記試料と、前記対象物質及び前記競合物質に特異的に結合可能な検出用分子と、を接触させ、前記検出用分子に前記対象物質と前記プローブ分子とを競合させて、前記光切断リンカー結合磁性粒子に前記検出用分子を捕捉させる捕捉工程と、
　前記光切断リンカーを光切断して、前記磁性粒子から、前記検出用分子と前記プローブ分子とを含む複合体を遊離させて調製試料を得る遊離工程と、
　前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する測定工程と、
を含む、測定方法。
［１８］　前記検出用分子が、標識物質で標識化された標識化検出用分子であり、かつ、前記複合体の検出が、前記標識物質による検出である、［１７］に記載の測定方法。
［１９］　［１７］又は［１８］に記載の試料中の対象物質を測定する測定方法に用いるためのキットであり、
　［５］～［８］のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質の競合物質である光切断リンカー結合磁性粒子
を含む、キット。
［２０］　前記対象物質及び前記競合物質に特異的に結合可能な検出用分子が標識物質で標識化された標識化検出用分子をさらに含む、［１９］に記載のキット。
　なお、本発明の構成によって上記目的が達成される理由は必ずしも定かではないが、本発明者らは以下のように推察する。すなわち、磁性粒子に光切断リンカーを組み合わせると、当該磁性粒子における光の吸収率が高いため、前記光切断リンカーに光を照射してこれを切断する際に、照射した光が磁性粒子に吸収されて光切断リンカーに到達する光量が少なくなってしまう。そのため、光切断リンカーの切断が阻害され、その光切断効率が低下するものと本発明者らは推察する。これに対して、本発明においては、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間にスペーサーを挿入することにより、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離が維持されるため、磁性粒子による光切断リンカーの近傍での光の吸収が抑制されて光切断リンカーに到達する光量を十分に確保することができ、優れた光切断効率が達成されるものと本発明者らは推察する。
　また、磁性粒子に捕捉された検出対象が光や熱に分解されやすい物質であっても、光切断効率が向上したことによって光量や熱を過剰に与える必要がなくなるため、当該検出対象に与えるダメージを十分に抑制することができる。そのため、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子を用いて対象物質を測定する測定方法によれば、測定精度を向上させることも可能となる。さらに、磁性粒子による自動化・短時間化の利点を享受しつつ、光によって容易に前記磁性粒子と検出対象とを分離することができるため、マイクロ化学分析法や国際公開第２０１８／０７９７６１号に記載されているような測定方法等、より高精度の測定手段を利用することが容易に可能となる。
　本発明によれば、磁性粒子及び光切断リンカーを備える光切断リンカー結合磁性粒子において、前記光切断リンカーの光切断効率を向上させる方法、光切断効率に優れた光切断リンカー結合磁性粒子、並びに、これらを用いて対象物質を測定する測定方法及びこれに用いるためのキットを提供することが可能となる。
本発明の対象物質測定方法の第１の態様の一例を示す概略図である。 本発明の対象物質測定方法の第２の態様の一例を示す概略図である。 本発明の対象物質測定方法の第３の態様の一例を示す概略図である。
　以下、本発明をその好適な実施形態に即して詳細に説明する。
　＜光切断リンカーの光切断効率向上方法＞
　本発明の光切断リンカーの光切断効率向上方法（以下、場合により単に「光切断効率向上方法」という）は、磁性粒子及び光切断リンカーを備える光切断リンカー結合磁性粒子において、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間にスペーサーを挿入することを特徴とする。
　本発明において、「光切断リンカー結合磁性粒子」とは、少なくとも磁性粒子及び光切断リンカーを備えるものを示す。
　〔磁性粒子〕
　本発明において、「磁性粒子」とは、少なくとも磁性体を含み、少なくとも外部から磁石を作用させている間は磁化する粒子のことを示す。前記磁性体としては、例えば、鉄、コバルト、ニッケル等の強磁性金属（例えば、スピネルフェライト、酸化コバルト、ニッケルフェライト）やそれらのうちの少なくとも１種を含む合金が挙げられ、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。本発明に係る磁性粒子としては、前記磁性体を単独で粒子状に成形したものであっても、前記磁性体を核としてその表面を非磁性体で被覆したものであっても、前記非磁性体を核として前記磁性体で被覆したものであってもよい。
　前記非磁性体としては、特に制限されないが、例えば、高分子ポリマー（例えば、ポリスチレン、（メタ）アクリル酸エステル、ポリメチルメタクリレート、ポリイミド、ナイロン）、ゼラチン、セルロース、ニトロセルロース、ガラス、ラテックス、シリカ、非磁性金属（例えば、金、白金）が挙げられ、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。
　また、本発明に係る磁性粒子としては、例えば、カルボキシ基、エポキシ基、トシル基、アミノ基、ヒドロキシ基、イソチオシアネート基、イソシアネート基、アジド基、アルデヒド基、カーボネート基、アリル基、アミノオキシ基、マレイミド基、チオール基、ＮＨＳエステル（Ｎ－ヒドロキシエステル）基、ピリジルジスルフィド基等のうちの少なくとも１種の活性基で表面修飾されたもの、又は前記活性基と下記のスペーサーとの結合残基を有するものであってもよい。また、ビオチン等による修飾がなされたものであってもよい。
　本発明に係る磁性粒子の粒子径としては、０．１～１０μｍの範囲内にあることが好ましく、０．５～８μｍの範囲内にあることがより好ましい。前記磁性粒子の粒子径が前記下限未満であると、集磁に必要な磁気及び時間がより多く必要となる傾向にあり、他方、前記上限を超えると、粒子の比表面積が小さくなり、下記のプローブ分子を固定化し、標識物質を用いて対象物質を測定する場合に、標識物質の磁性粒子への結合量が少なくなる傾向にある。
　このような磁性粒子としては、従来公知のものを適宜用いることができ、例えば、特開平３－１１５８６２号公報に記載の磁性粒子（フェライト被覆粒子、カルボキシル化フェライト粒子）；ダイナビーズ（サーモフィッシャー社製）；Ｍａｇｎｏｓｐｈｅｒｅ（ＪＳＲ株式会社製）；マグラピッド（三洋化成工業株式会社製）等の市販の磁性粒子を適宜用いることもできる。また、本発明に係る磁性粒子としては、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。
　〔光切断リンカー〕
　本発明において、「光切断リンカー」とは、光照射によって分解される構造（光切断ユニット）を含む化合物を示す。前記光切断ユニットとしては、例えば、３－ａｍｉｎｏ－３－（２－ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ）ｐｒｏｐｉｏｎｉｃ　ａｃｉｄ（ＡＮＰ）、クマリンが挙げられる。本発明に係る光切断リンカーとしては、前記光切断ユニットに加えて、アルキル鎖、エチレングリコール鎖等の構造を有するものであってもよい。また、例えば、カルボキシ基、エポキシ基、トシル基、アミノ基、ヒドロキシ基、イソチオシアネート基、イソシアネート基、アジド基、アルデヒド基、カーボネート基、アリル基、アミノオキシ基、マレイミド基、チオール基、ＮＨＳエステル（Ｎ－ヒドロキシエステル）基、ピリジルジスルフィド基等のうちの少なくとも１種の活性基を付加されたもの、又は前記活性基と下記のスペーサー及び／又はプローブ分子との結合残基を有するものであってもよい。また、ビオチン等による修飾がなされたものであってもよい。
　このような光切断リンカーとしては、従来公知のものを適宜用いることができ、例えば、Ｎ－ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）－光切断リンカー（ＰＣ）－ビオチン（商品名：ＰＣ－Ｂｉｏｔｉｎ－ＮＨＳ、Ａｍｂｅｒｇｅｎ社製）、Ｆｍｏｃ－ａｍｉｎｏｅｔｈｙｌ　ｐｈｏｔｏｌｉｎｋｅｒ（Ｎｏｖａｂｉｏｃｈｅｍ社製）、ＰＣ　ＤＢＣＯ－ＰＥＧ４－ＮＨＳ　ｅｓｔｅｒ（ＢｒｏａｄＰｈａｒｍ社製）、ＰＣ　Ｍａｌ－ＮＨＳ　ｃａｒｂｏｎａｔｅ　ｅｓｔｅｒ（ＢｒｏａｄＰｈａｒｍ社製など）等の市販の光切断リンカーを適宜用いることもできる。また、本発明に係る光切断リンカーとしては、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。
　〔スペーサー〕
　本発明において、「スペーサー」とは、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間に挿入することができ、その長さ及び／又は分子量若しくは１分子あたりの質量に基づく大きさによって前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離を維持することができるものであればよい。本発明に係るスペーサーを構成する分子としては、タンパク質、ポリエチレングリコール、及びデキストランからなる群から選択される少なくとも１種が挙げられる。
　本発明に係るスペーサーを構成するタンパク質としては、例えば、アビジンＤ、ストレプトアビジン等のアビジン類；アルブミン、カゼイン、コラーゲンが挙げられ、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。これらの中でも、前記タンパク質としては、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離をより好適な範囲内に維持することができ、光切断効率の向上効果により優れる観点から、アビジン類であることが好ましく、ストレプトアビジンであることがより好ましい。
　本発明に係るスペーサーを構成するポリエチレングリコールとしては、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離をより好適な範囲内に維持することができ、光切断効率の向上効果により優れる観点から、ゲルパーミエーションクロマトグラフィ（ＧＰＣ）を用いて、標準ポリマーとしてポリメタクリル酸メチルを用いることで測定される重量平均分子量（Ｍｗ）が、０．５Ｋ～２１Ｋであることが好ましく、０．８Ｋ～２０Ｋであることがより好ましく、０．８Ｋ～１０Ｋであることがさらに好ましく、０．８Ｋ～８Ｋであることがさらにより好ましく、１Ｋ～６Ｋであることが特に好ましい。ポリエチレングリコールの前記重量平均分子量が前記下限未満であると、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離が短くなってスペーサーによる光切断効率の向上効果が不十分となる傾向にあり、他方、前記上限を超えると、下記のプローブ分子を固定化し、標識物質を用いて対象物質を測定する場合に、標識物質の磁性粒子への結合量が少なくなる傾向にある。
　本発明に係るスペーサーを構成するデキストランとしては、光切断効率の向上効果により優れるという観点から、１分子あたりの質量が、５Ｋ～７５ＫＤａであることが好ましく、１０Ｋ～７０ＫＤａであることがより好ましく、２０Ｋ～７０ＫＤａであることがさらに好ましい。デキストランの前記質量が前記下限未満であると、スペーサーによる光切断効率の向上効果が不十分となる傾向にあり、他方、前記上限を超えると、下記のプローブ分子を固定化し、標識物質を用いて対象物質を測定する場合に、標識物質の磁性粒子への結合量が少なくなる傾向にある。
　また、本発明に係るスペーサーとしては、例えば、カルボキシ基、エポキシ基、トシル基、アミノ基、ヒドロキシ基、イソチオシアネート基、イソシアネート基、アジド基、アルデヒド基、カーボネート基、アリル基、アミノオキシ基、マレイミド基、チオール基、ＮＨＳエステル（Ｎ－ヒドロキシエステル）基、ピリジルジスルフィド基等のうちの少なくとも１種の活性基が付加されたもの、又は前記活性基と前記磁性粒子及び／又は光切断リンカーとの結合残基を有するものであってもよい。また、ビオチン等による修飾がなされたものであってもよい。
　本発明に係るスペーサーとしては、前記タンパク質、前記ポリエチレングリコール、及び前記デキストランのうちの１種からなるものであっても、２種以上からなるものであってもよい。これらの中でも、本発明に係るスペーサーとしては、前記ポリエチレングリコールからなるものであるか、前記ポリエチレングリコール及びアビジン類（より好ましくはストレプトアビジン）からなるものであるか、又は、デキストランからなるものであることが好ましく、前記ポリエチレングリコールからなるものであるか、又は、前記ポリエチレングリコール及びアビジン類（より好ましくはストレプトアビジン）からなるものであることがより好ましい。
　（光切断効率向上方法）
　本発明の光切断効率向上方法では、前記光切断リンカー結合磁性粒子において、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間に前記スペーサーを挿入する。
　前記スペーサーの挿入としては、前記スペーサーの挿入後の前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離が、磁性粒子表面から垂直方向の光切断リンカーの前記磁性粒子側の末端までの水溶液中における最長距離で、４～１７０ｎｍの範囲内とすることが好ましく、５～１６０ｎｍの範囲内とすることがより好ましく、６～８０ｎｍの範囲内とすることがさらに好ましく、６～５０ｎｍの範囲内とすることがさらにより好ましい。前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離が前記下限未満であると、光切断効率の向上効果が不十分となる傾向にあり、他方、前記上限を超えると、下記のプローブ分子を固定化し、標識物質を用いて対象物質を測定する場合に、標識物質の磁性粒子への結合量が少なくなる傾向にある。このような最長距離は、スペーサーを構成する分子が水溶液中でとりうる構造の最長径を示し、例えば、当該スペーサーを構成する分子の分子量及び構造から公知技術により算出することができる。
　また、前記スペーサーの挿入としては、当該スペーサーが前記タンパク質及び／又はポリエチレングリコールからなる場合、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離をより好適な範囲内に維持することができ、光切断効率の向上効果に優れるという観点から、前記タンパク質が前記アビジン類（より好ましくはストレプトアビジン）であることが好ましく、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとが、少なくとも１分子（より好ましくは１分子）の前記アビジン類からなるスペーサーとの結合を介して結合されることが好ましい。また、同様の観点から、この場合、当該ポリエチレングリコールが、重量平均分子量（Ｍｗ）０．５Ｋ～２１Ｋであることが好ましく、０．８Ｋ～２０Ｋであることがより好ましく、０．８Ｋ～１０Ｋであることがさらに好ましく、０．８Ｋ～８Ｋであることがさらにより好ましく、１～６Ｋであることが特に好ましい。さらに、この場合、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとが、少なくとも１分子（より好ましくは１分子）のポリエチレングリコールからなるスペーサーとの結合を介して結合されることが好ましい。或いは、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとが、少なくとも１分子（より好ましくは１分子）の前記アビジン類及び少なくとも１分子（より好ましくは１分子）のポリエチレングリコールからなるスペーサーとの結合を介して結合されることが好ましい。ただし、前記タンパク質及び／又はポリエチレングリコール１分子に対して、前記光切断リンカーは２以上の複数が結合していてよい。
　また、前記スペーサーの挿入としては、当該スペーサーがデキストランからなる場合、光切断効率の向上効果により優れるという観点から、当該デキストランが、１分子あたりの質量で５Ｋ～７５ＫＤａであることが好ましく、１０Ｋ～７０ＫＤａであることがより好ましく、２０Ｋ～７０ＫＤａであることがさらに好ましい。さらに、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとが、少なくとも１分子（より好ましくは１分子）のデキストランからなるスペーサーとの結合を介して結合されることが好ましい。ただし、デキストラン１分子に対して、前記光切断リンカーは２以上の複数が結合していてよい。
　本発明の光切断効率向上方法において、前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間に前記スペーサーを挿入する方法としては、特に制限されず、適宜公知の方法を採用することができる。このような方法としては、例えば、前記磁性粒子に、前記スペーサー及び前記光切断リンカーを、この順となるように結合する（固定する）方法が挙げられ、かかる結合方法としては、特に制限されず、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができる。このとき、磁性粒子－スペーサー間、スペーサー－光切断リンカー間の各結合は、それぞれ独立に、直接的であっても間接的であってもよい（以下、仮に、「－」の前者を「被結合物」、後者を「結合物」という）。
　前記磁性粒子、前記スペーサー、及び前記光切断リンカーをそれぞれ直接的に結合する方法としては、例えば、上記の被結合物及び結合物のうちの少なくともいずれかを構成する成分に、例えば、カルボキシ基、エポキシ基、トシル基、アミノ基、ヒドロキシ基、イソチオシアネート基、イソシアネート基、アジド基、アルデヒド基、カーボネート基、アリル基、アミノオキシ基、マレイミド基、チオール基、ＮＨＳエステル（Ｎ－ヒドロキシエステル）基、ピリジルジスルフィド基等のうちの少なくとも１種の活性基を付与し、或いは、前記成分としてこれらの活性基を有するものを用い、当該活性基による共有結合によって被結合物と結合物とを結合する方法が挙げられる。
　前記活性基を付与した成分としては、それぞれ、市販のものをそのまま用いてもよいし、適切な反応条件で前記活性基を導入して調製してもよい。一例として、チオール基の導入は、例えば、Ｓ－アセチルメルカプト無水コハク酸やＮ－スクシンイミジル３－（２－ピリジルジチオ）プロピオネート、２－イミノチオラン等の市販の試薬を用いて行うことができ、アミノ基へのマレイミド基の導入は、例えば、Ｎ－（６－マレイミドカプロイロキシ）スクシンイミドやＮ－（４－マレイミドブチリロキシ）スクシンイミド等の市販の試薬を用いて行うことができる。また、ピリジルジスルフィド基の導入は、例えば、Ｎ－｛６－［３－（２－Ｐｙｒｉｄｙｌｄｉｔｈｉｏ）ｐｒｏｐｉｏｎａｍｉｄｏ］ｈｅｘａｎｏｙｌｏｘｙ｝ｓｕｌｆｏｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｅ、ｓｏｄｉｕｍ　ｓａｌｔ（Ｓｕｌｆｏ－ＡＣ５－ＳＰＤＰ）等の市販の試薬を用いて行うことができる。
　前記磁性粒子、前記スペーサー、及び前記光切断リンカーをそれぞれ間接的に結合する方法としては、例えば、上記の被結合物及び結合物のうちの一方を構成する成分に何らかの修飾を行い、その修飾部分を捕捉する物質を他方に固定化して、かかる捕捉を介して結合させてもよい。例えば、前記修飾部分の代表例としてはビオチンが、その修飾部分を捕捉する物質の代表例としてはストレプトアビジンが、それぞれ挙げられるが、これらに限定されるものではない。
　これらの結合に供する上記の被結合物及び結合物の比率は、例えば、下記の光切断リンカー結合磁性粒子における比率の好ましい範囲を達成するように適宜選択することができる。
　本発明の光切断効率向上方法においては、前記磁性粒子、前記スペーサー、及び前記光切断リンカーを一度に結合させても、これらを別々に順次結合させてもよいが、操作のしやすさ、並びに、各部の量の制御のしやすさ等の観点からは、別々に順次結合させることが好ましい。さらに、一部の被結合物及び結合物を予め結合させておいてからこれらを組み合わせて結合させることも好ましい。また、このような予め結合された被結合物及び結合物としては、例えば、ＳＡ結合ダイナビーズ（商品名：Ｄｙｎａｂｅａｄｓ　Ｍ－２８０　Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ、サーモフィッシャー社製）、磁性ストレプトアビジンビーズ（商品名：Ｍａｇｎｏｓｐｈｅｒｅ　ＭＳ３００／Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ、ＪＳＲ社製）等の市販の結合体を適宜用いてもよい。
　このような本発明の光切断効率向上方法により、前記磁性粒子に前記スペーサーを介さずに前記光切断リンカーを結合させた場合に比較して、光切断リンカーの光切断効率、より好ましくは、溶液中（さらに好ましくは水溶液中）において切断される光切断リンカーの光切断効率（好ましくは、次式：光切断効率（切断率、％）＝｛切断された光切断リンカー／（切断された光切断リンカー＋切断されなかった光切断リンカー）｝×１００で示される）を、十分に向上させることができる。より具体的には、前記磁性粒子に前記スペーサーを介さずに前記光切断リンカーを結合させた場合に比較して約６～３０倍以上、前記光切断効率を向上させることが可能となる。
　＜光切断リンカー結合磁性粒子＞
　本発明の光切断リンカー結合磁性粒子は、前記光切断リンカー結合磁性粒子のうち、
　前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間に前記スペーサーを備え、かつ、
　前記光切断リンカーの前記スペーサーとは反対側の端に前記プローブ分子を備える、
ものである。すなわち、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子は、磁性粒子、スペーサー、光切断リンカー、及びプローブ分子が、この順で結合されてなるものである。好ましくは、前記磁性粒子を核として、その表面に、前記スペーサーからなる層、前記光切断リンカーからなる層、及び前記プローブ分子からなる層が、この順で積層された形態を有するものである。
　〔プローブ分子〕
　本発明において、「プローブ分子」とは、光切断リンカー結合磁性粒子で捕捉する対象（本明細書中、場合により「検出対象」という）に特異的に結合可能な分子のことを示す。前記検出対象としては、例えば、下記の対象物質を測定する測定方法に記載の対象物質、競合物質、及び検出用分子が挙げられる。
　本発明に係るプローブ分子としては、特に制限されないが、例えば、ポリヌクレオチド、ポリペプチド、低分子化合物、及びこれらのうちの２種以上の分子を含む複合分子、並びに、これらと同一又は類似の構造を有する分子が挙げられる。
　本発明において、「ポリヌクレオチド」とは、２以上のヌクレオチドからなるものを示し、本発明に係るポリヌクレオチドには、ＤＮＡ、ＲＮＡ、及びこれらの断片が含まれる。
　本発明において、「ポリペプチド」とは、２以上のアミノ酸からなるものを示し、本発明に係るポリペプチドには、遺伝子にコードされる完全長のポリペプチドの他、その断片や合成したポリペプチドも含まれる。また、前記ポリペプチドには、糖鎖によって修飾された糖ペプチドも含む。前記プローブ分子としてのポリペプチドとしては、例えば、抗体；抗原ペプチド；プロテインＡ、プロテインＧ、プロテインＬ等の結合タンパク質；アビジンＤ、ストレプトアビジン等のアビジン類；コンカナバリンＡ、レンチルレクチン、インゲンマメレクチン等の各種レクチン；レクチン結合性糖鎖を有する糖ペプチド（レクチン結合性糖ペプチド）；及びレセプタータンパク質、輸送タンパク質、転写調節因子が挙げられる。また、前記ポリペプチドの由来としては特に制限されず、哺乳動物、鳥類、爬虫類、両生類、魚類、植物、昆虫、微生物、又はウイルス等のいずれの由来であってもよい。
　前記抗体としては、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよい。また、本発明において、「抗体」には、完全抗体の他、抗体断片（例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、単鎖抗体、ダイアボディー等）や抗体の可変領域を結合させた低分子化抗体も含まれる。これらの中でも、光切断リンカーの光切断効率がより向上する傾向にある観点からは、抗体断片であることがより好ましい。
　本発明に係るプローブ分子としての低分子化合物としては、例えば、ビタミン、補酵素、ホルモン、毒素、抗生物質、抗菌薬剤、抗ウイルス薬剤、抗がん剤、発がん性物質、麻薬、向精神薬、免疫抑制剤が挙げられる。
　また、本発明において、上記のポリヌクレオチド、ポリペプチド、低分子化合物、複合分子と「同一又は類似の構造を有する分子」とは、前記ポリヌクレオチド、前記ポリペプチド、前記低分子化合物、又は前記複合分子と同様に、前記検出対象に対して結合可能な物質のことを示し、より具体的には、前記ポリヌクレオチド、前記ポリペプチド、前記低分子化合物、又は前記複合分子に対して抗原抗体反応を行う場合に、これと交差反応を生じる物質が挙げられる。
　また、本発明に係るプローブ分子としては、例えば、カルボキシ基、エポキシ基、トシル基、アミノ基、ヒドロキシ基、イソチオシアネート基、イソシアネート基、アジド基、アルデヒド基、カーボネート基、アリル基、アミノオキシ基、マレイミド基、チオール基、ＮＨＳエステル（Ｎ－ヒドロキシエステル）基、ピリジルジスルフィド基等のうちの少なくとも１種の活性基が付加されたもの、又は前記活性基と前記光切断リンカーとの結合残基を有するものであってもよい。また、ビオチン等による修飾がなされたものであってもよい。
　本発明に係るプローブ分子としては、上記のうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよく、特に制限されず、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子を用いた測定方法に採用する原理や測定の対象物質に応じて適宜選択することができるが、例えば、反応の特異性の観点からは、ポリヌクレオチド、ポリペプチド、ホルモン、及びこれらと同一又は類似の構造を有する分子からなる群から選択される少なくとも１種であることが好ましく、抗体断片、ＤＮＡ断片、及びＲＮＡ断片からなる群から選択される少なくとも１種であることがより好ましい。
　（光切断リンカー結合磁性粒子の構成及び製造方法）
　本発明の光切断リンカー結合磁性粒子としては、１つの磁性粒子に対して複数のスペーサーが結合していてよく、１つのスペーサーに対して複数の光切断リンカーが結合していてよく、また、１つのプローブ分子に対して複数の光切断リンカーが結合していてよい。
　本発明の光切断リンカー結合磁性粒子において、前記スペーサーの含有量としては、１つの磁性粒子に結合するスペーサー数ができるだけ多くなるように設定することが好ましく、前記磁性粒子（好ましくは平均粒子径８μｍ以下、以下同じ）の質量（磁性粒子が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計量、以下同じ）１質量部に対する前記スペーサーの質量（２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計、以下同じ）が、０．１～５質量部であることが好ましく、０．２～２質量部であることがより好ましい。
　前記スペーサーが前記タンパク質（好ましくはアビジン類、以下同じ）である場合の前記磁性粒子の質量１質量部に対する前記タンパク質の質量（タンパク質が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計量、以下同じ）、前記スペーサーがポリエチレングリコールである場合の前記磁性粒子の質量１質量部に対する前記ポリエチレングリコールの質量（ポリエチレングリコールが２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計量、以下同じ）、前記スペーサーが前記タンパク質とポリエチレングリコールとの組み合わせである場合の前記磁性粒子の質量１質量部に対する前記タンパク質及びポリエチレングリコールの合計質量、前記スペーサーがデキストランである場合の前記磁性粒子の質量１質量部に対するデキストランの質量（デキストランが２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計量、以下同じ）も、同様に０．１～５質量部であることが好ましく、０．２～２質量部であることがより好ましい。
　本発明の光切断リンカー結合磁性粒子において、前記光切断リンカーの含有量としては、プローブ分子が十分量結合できる量となるように設定することが好ましく、前記スペーサーの質量１質量部に対する前記光切断リンカーの質量（光切断リンカーが２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計量、以下同じ）が、０．００１～１質量部であることが好ましく、０．０２～１質量部であることがより好ましい。
　また、例えば、前記スペーサーが前記タンパク質である場合には、前記スペーサーの質量１質量部に対する前記光切断リンカーの質量が、０．００１～１質量部であることが好ましく、０．０２～１質量部であることがより好ましい。さらに、例えば、前記スペーサーがポリエチレングリコールである場合には、前記スペーサーの質量１質量部に対する前記光切断リンカーの質量が、０．０１～１質量部であることが好ましく、０．０２～１質量部であることがより好ましい。また、例えば、前記スペーサーが前記タンパク質とポリエチレングリコールとの組み合わせである場合には、前記スペーサーの質量１質量部に対する前記光切断リンカーの質量が、０．０１～１質量部であることが好ましく、０．０２～１質量部であることがより好ましい。さらに、例えば、前記スペーサーがデキストランである場合には、前記スペーサーの質量１質量部に対する前記光切断リンカーの質量が、０．０１～０．５質量部であることが好ましい。
　本発明の光切断リンカー結合磁性粒子において、前記プローブ分子の含有量としては、光切断リンカーの光切断効率がより向上する傾向にある観点から、１つの粒子におけるプローブ分子の密度が、感度低下が生じない範囲内で、できるだけ少なくなるように設定することが好ましい。
　なお、磁性粒子、スペーサー、光切断リンカー及びプローブ分子の相互の好適な質量比は、使用する素材、分子量等により大きく異なるため、上記の質量比の範囲とは大きく異なる条件となることもあり得る。
　本発明の光切断リンカー結合磁性粒子は、前記磁性粒子に、前記スペーサー、前記光切断リンカー、及び前記プローブ分子を、この順となるように結合する（固定する）ことによって製造することができる。かかる製造方法としては、特に制限されず、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができる。このとき、磁性粒子－スペーサー間、スペーサー－光切断リンカー間、及び光切断リンカー－プローブ分子間の各結合は、それぞれ独立に、直接的であっても間接的であってもよい（以下、仮に、「－」の前者を「被結合物」、後者を「結合物」という）。
　前記磁性粒子、前記スペーサー、前記光切断リンカー、及び前記プローブ分子をそれぞれ直接的に結合する方法、並びに、これらをそれぞれ間接的に結合する方法としては、上記の光切断効率向上方法においてスペーサーを挿入する方法として挙げた方法と同様の方法が挙げられる。
　これらの結合に供する上記の被結合物及び結合物の比率は、上記の光切断リンカー結合磁性粒子における比率の好ましい範囲を達成するように適宜選択することができる。
　また、光切断リンカー結合磁性粒子の製造においては、前記磁性粒子、前記スペーサー、前記光切断リンカー、及び前記プローブ分子を一度に結合させても、これらを別々に順次結合させてもよいが、製造のしやすさ、並びに、各部の量の制御しやすさ等の観点からは、別々に順次結合させることが好ましい。さらに、一部の被結合物及び結合物を予め結合させておいてからこれらを組み合わせて結合させることも好ましい。また、このような予め結合された被結合物及び結合物としては、上記の光切断効率向上方法において挙げたものと同様の市販の結合体を適宜用いてもよい。
　＜対象物質を測定する測定方法及びこれに用いるためのキット＞
　本発明の対象物質を測定する測定方法（本明細書中、場合により「対象物質測定方法」という）においては、上記の本発明の光切断リンカー結合磁性粒子を用いて、試料中の対象物質を測定する。
　〔試料〕
　本発明の対象物質測定方法に用いられる「試料」としては、対象物質が存在し得る試料である限り特に制限はない。一般的には、目的の対象物質を測定する対象（ヒト及び動物、好ましくはヒト）から採取された血清、血漿、全血、尿、便、唾液、髄液、口腔粘膜、咽頭粘膜、腸管粘膜；細胞培養液；及び各種生検試料等が挙げられる。本発明に係る試料として好ましくは、水性試料である。これらの試料は、必要に応じて希釈又は懸濁したものであってもよい。
　〔対象物質〕
　本発明において、「対象物質」とは、測定することを所望する物質のことを示す。本発明に係る対象物質としては、特に制限されないが、例えば、生体分子が挙げられ、より具体的には、ポリヌクレオチド、ポリペプチド、低分子化合物、及びこれらのうちの２種以上の分子を含む複合分子が挙げられ、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。前記ポリヌクレオチド、前記ポリペプチド、前記低分子化合物、及び前記複合分子としては、それぞれ独立に、その好ましい態様も含めて、上記プローブ分子において挙げたものと同様のものが挙げられる。
　本発明に係る対象物質としては、特に制限されず、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子を用いた測定方法に採用する原理や上記プローブ分子の種類及び下記の競合物質の種類等を適宜選択することによって対象物質とすることができるが、例えば、特異性の観点からは、ポリヌクレオチド、ポリペプチド、及びホルモンからなる群から選択される少なくとも１種であることが好ましく、抗原となる物質、相補配列を有するＤＮＡ、及び相補配列を有するＲＮＡからなる群から選択される少なくとも１種であることがより好ましい。
　〔測定〕
　本発明において、「測定」には、試料中の対象物質の存在の有無及び量をシグナルとして取り出す検出の他、前記対象物質の量の定量又は半定量が含まれる。本発明において、前記対象物質の測定は、標識物質によって生じるシグナルを検出し、必要に応じてこれを定量することによって行うことが好ましい。前記「シグナル」には、呈色（発色）、反射光、発光、蛍光、放射性同位体による放射線等が含まれ、肉眼で確認できるものの他、シグナルの種類に応じた測定方法・装置によって確認できるものも含まれる。本発明の対象物質測定方法によれば、前記磁性粒子による自動化・短時間化の利点を享受しつつ、光によって容易かつ高効率で前記磁性粒子と前記検出対象とを分離することができるため、マイクロ化学分析法や、国際公開第２０１８／０７９７６１号に記載されている測定方法等、高精度のシグナル測定手段を容易に利用することが可能となる。
　前記対象物質を本発明の光切断リンカー結合磁性粒子を用いて測定する方法としては、サンドイッチ法、競合法、及び免疫比濁法等の免疫学的測定方法や、これらの原理に準じた測定方法が挙げられ、特に制限されない。本発明の対象物質測定方法において、前記試料中の対象物質の定量は、前記標識物質の種類に応じた検出・定量を行い、標準試料における測定値との比較をすることによって行うことができる。また、より簡便かつ迅速に対象物質を検出する観点からは、例えば、イムノクロマト等の方法を採用することができる。
　以下、本発明の対象物質測定方法について、より具体的な態様を挙げて説明する。図面を参照しながら本発明の好ましい実施形態を例に挙げてより具体的に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。なお、以下の説明及び図面中、同一又は相当する要素には同一の符号を付し、重複する説明は省略する。
　（第１の態様）
　本発明の対象物質測定方法としては、より感度及び特異度の高い検出システムを構築可能な傾向である観点からは、前記対象物質を捕捉可能な捕捉体を用いて前記対象物質を検出するサンドイッチ法が好ましい。前記サンドイッチ法としては、下記の第１の態様：
　本発明の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子と、前記試料と、を接触させ、前記光切断リンカー結合磁性粒子に前記対象物質を捕捉させる捕捉工程と、
　前記光切断リンカーを光切断して、前記磁性粒子から、前記対象物質と前記プローブ分子とを含む複合体を遊離させて調製試料を得る遊離工程と、
　前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する測定工程と、
を含む測定方法
が好ましい。
　第１の態様においては、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子として、前記プローブ分子が前記対象物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子を用いる。このような対象物質と前記対象物質に特異的に結合可能な分子（プローブ分子）との組み合わせ、又は前記プローブ分子と前記対象物質との組み合わせとしては、例えば、抗原（抗原ペプチド、低分子化合物等）と抗体、レクチン結合性糖ペプチドとレクチン、核酸と同核酸と相補配列を有する核酸の組み合わせが挙げられる。
　〔捕捉工程〕
　第１の態様の捕捉工程においては、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子（以下、場合により「捕捉体」という）と前記試料とを接触させ、前記対象物質と前記プローブ分子との結合を介して前記対象物質を前記捕捉体に捕捉させる。前記捕捉体と前記試料とを接触させる方法としては、特に制限されず、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、例えば、前記試料中に前記捕捉体を添加する方法又は前記捕捉体液中に前記試料を添加する方法が挙げられる。
　前記試料としては、試料希釈液で希釈して用いてもよく、また、前記捕捉体の粒子懸濁媒に懸濁して用いてもよく、さらに、前記捕捉体と前記試料との反応系（例えば、抗原抗体反応系）には、他の反応用バッファーを適宜添加してもよい。これらの試料希釈液、粒子懸濁媒、反応用バッファーとしては、特に制限されないが、例えば、それぞれ独立に、公知の緩衝液（ナトリウムリン酸バッファー、ＭＥＳ、Ｔｒｉｓ、ＣＦＢ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ、ＨＥＰＥＳ、トリシンバッファー、ビシンバッファー、グリシンバッファー等）が挙げられ、また、前記粒子懸濁媒及び反応用バッファーとしては、それぞれ独立に、ＢＳＡ等の安定化蛋白や血清等が添加されたものであってもよい。
　第１の態様の捕捉工程における前記捕捉体と前記試料との反応において、反応系における捕捉体の含有量（終濃度）（捕捉体が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計量、以下同じ）としては、試料の種類、濃度、検出方法等に応じて適宜調整されるものであるため特に制限されないが、短時間に効率よく捕捉する観点から、例えば、０．００５～０．２質量％であることが好ましく、０．０１～０．１質量％であることがより好ましい。
　また、第１の態様の捕捉工程の条件としても特に制限されず、適宜調整することができ、例えば、室温～４５℃、好ましくは２０～３７℃、ｐＨ６～９程度、好ましくはｐＨ７～８で、５秒～１０分程度、好ましくは３０秒～５分程度行うことができるが、これらの条件に限定されるものではない。
　〔洗浄工程〕
　本発明の対象物質測定方法においては、前記捕捉工程の後、かつ、下記の遊離工程の前に、前記捕捉体に結合した対象物質と、それ以外の前記捕捉体に結合していない（捕捉されていない）夾雑物とを分離し、前記夾雑物を除去する洗浄工程をさらに含むことが好ましい。前記夾雑物を除去する方法としては、特に制限されず、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、例えば、前記捕捉工程の後に前記捕捉体を遠心や集磁によって回収して液相（上清）を除去する方法が挙げられる。また、前記洗浄工程においては、次いで、必要に応じて、洗浄液の注入及び除去を繰り返してもよい。前記洗浄液としては、例えば、中性（好ましくは、ｐＨ６～９）の公知の緩衝液（ナトリウムリン酸バッファー、ＭＥＳ、Ｔｒｉｓ、ＣＦＢ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ、ＨＥＰＥＳ、トリシンバッファー、ビシンバッファー、グリシンバッファー等）が挙げられ、また、ＢＳＡ等の安定化蛋白や界面活性剤等が添加されたものであってもよい。
　〔遊離工程〕
　第１の態様の遊離工程においては、前記光切断リンカーを切断して、前記捕捉体に結合した対象物質と前記プローブ分子との複合体を、前記磁気粒子から遊離させ、測定工程に供するための試料として、前記複合体を含有する調製試料を得る。
　前記光切断リンカーを切断する方法としては、光照射によってこれを切断する方法が挙げられる。前記遊離工程において、照射する光の光源及び光量としては、特に制限されず、前記光切断リンカーの種類に応じて適宜選択することができ、例えば、ＰＣ　Ｍａｌ－ＮＨＳ　ｃａｒｂｏｎａｔｅ　ｅｓｔｅｒを用いる場合には、波長３００～４００ｎｍ、好ましくは３４０～３７０ｎｍの紫外光を、１０～５０℃、好ましくは２０～３７℃で、１０秒～１０分程度、好ましくは１０秒～５分程度照射する条件が挙げられるが、これらの条件に限定されるものではない。ただし、本発明においては、前記磁性粒子に前記スペーサーを介さずに前記光切断リンカーを結合させた場合に比較して、光切断リンカーの光切断効率に優れるため、光の照射時間を短くすることができる。
　〔測定工程〕
　第１の態様の測定工程においては、前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する。前記複合体の検出は、前記対象物質に特異的に結合可能な検出用分子が標識物質で標識化された標識化検出用分子に前記対象物質を捕捉させ（標識化工程）、前記複合体として、前記対象物質と前記プローブ分子と前記標識化検出用分子とを含む複合体を形成させ、当該複合体を前記標識物質によって検出することが好ましい。
　第１の態様に係る検出用分子としては、前記対象物質に特異的に結合可能であればよく、前記対象物質の種類に応じて、前記プローブ分子として挙げたものと同様の分子の中から適宜選択することができる。また、前記検出用分子としては、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子に含まれるプローブ分子と同種のものであってもよい。
　本発明において、前記標識物質としては、公知の免疫学的測定において標識物質として用いられているものを特に制限なく用いることができる。かかる標識物質としては、例えば、酵素；アクリジニウム誘導体等の発光物質；ユーロピウム等の蛍光物質；アロフィコシアニン（ＡＰＣ）及びフィコエリスリン（Ｒ－ＰＥ）等の蛍光蛋白質；１２５Ｉ等の放射性物質；フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）及びローダミンイソチオシアネート（ＲＩＴＣ）等の低分子量標識物質；金粒子；アビジン；ビオチン；ラテックス；ジニトロフェニル（ＤＮＰ）；ジゴキシゲニン（ＤＩＧ）が挙げられ、これらのうちの１種を単独であっても２種以上の組み合わせであってもよい。例えば、前記標識物質として酵素を用いた場合には、発色基質、蛍光基質、化学発光基質等を基質として添加することにより、前記基質に応じて種々の検出・定量を行うことができる。これらの中でも、本発明に係る標識物質としては、簡便かつ安定性のある試験を可能とする傾向にある観点、及び簡便迅速かつ高感度の測定を行うことが可能である観点からは、酵素が好ましい。前記酵素としては、例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、アルカリフォスファターゼ（ＡＬＰ）、β－ガラクトシダーゼ（β－ｇａｌ）、グルコースオキシダーゼ、ルシフェラーゼを挙げることができるが、これらに限定されるものではない。
　第１の態様に係る標識化検出用分子は、前記検出用分子と前記標識物質とを結合することによって製造することができる。かかる結合方法としては、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、前記検出用分子と前記標識物質とを直接結合させてもよく、間接的に結合させてもよい。このような結合方法としては、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子の製造方法として挙げた方法（すなわち、上記の光切断効率向上方法においてスペーサーを挿入する方法として挙げた方法と同様の方法）と同様の方法が挙げられる。また、第１の態様に係る標識化検出用分子としては、市販のものを適宜用いてもよく、例えば、対象物質が抗原となる物質である場合には、それに対する市販の標識化抗体等を適宜用いることができる。
　前記標識化工程において、前記標識化検出用分子の添加量（終濃度）（標識化検出用分子が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計量、以下同じ）としては、試料の種類、濃度、検出方法等に応じて適宜調整されるものであるため特に制限されないが、例えば、０．０５～１μｇ／ｍＬであることが好ましく、０．１～０．５μｇ／ｍＬであることがより好ましい。
　このようなサンドイッチ法としては、２ステップ法であるフォワードサンドイッチ法（光切断リンカー結合磁性粒子（捕捉体）と試料中の対象物質との反応、捕捉体に結合した対象物質と標識化検出用分子との反応を逐次的に行う）、リバースサンドイッチ法（予め標識化検出用分子と試料中の対象物質とを反応させ、生成した複合体を捕捉体と反応させる）、及び１ステップ法（捕捉体、試料中の対象物質、標識化検出用分子の反応を同時に１ステップで行う）を挙げることができるが、これらのいずれも採用可能である。
　第１の態様として、例えば、フォワードサンドイッチ法では、先ず、捕捉工程において、前記捕捉体と、前記試料と、を接触させ、前記捕捉体のプローブ分子に前記対象物質を捕捉させる（１次反応）。次いで、前記標識化検出用分子を前記捕捉体に捕捉された対象物質に接触させ、結合させる（２次反応）。この反応により、捕捉体－対象物質－標識化検出用分子を含む複合体（例えば免疫複合体）が形成される。結合しなかった試料及び標識化検出用分子を必要に応じて洗浄工程で洗浄した後、遊離工程で光切断リンカーを光切断して、磁性粒子から、前記複合体を遊離させ、所定の方法で前記標識化検出用分子の標識物質を測定する。例えば、前記標識化検出用分子の標識物質が酵素である場合には、酵素に対応する発色基質や発光基質を添加し、酵素と基質とを反応させることによってシグナルを検出する。これにより、試料中の前記対象物質の存在の有無及び量をシグナルとして検出することができ、また、標準試料における測定値との比較をすることによって試料中の対象物質の量を定量することができる。
　第１の態様の一例として、より具体的には、例えば、図１に示すように、磁性粒子１１と光切断リンカー１３とがスペーサー１２を介して結合しており、光切断リンカー１３に、試料中の対象物質１５に特異的に結合可能なプローブ分子１４（好ましくは対象物質１５に対する抗体）が結合した光切断リンカー結合磁性粒子１０１を用いる。先ず、捕捉工程において、対象物質１５を、プローブ分子１４を介して反応系（反応液）中に存在する光切断リンカー結合磁性粒子１０１に捕捉させる。次いで、洗浄工程において、集磁された光切断リンカー結合磁性粒子１０１と結合しなかった対象物質１５、不純物等を除去した後、対象物質１５に特異的に結合可能な検出用分子１６（好ましくは対象物質１５に対する抗体）が酵素等の標識物質１７で標識化された標識化検出用分子１０２を含む溶液を添加し、標識化検出用分子１０２を対象物質１５に結合させる（ａ）。次いで、再度の洗浄工程で、未反応の標識化検出用分子１０２を除去し、対象物質１５を介して光切断リンカー結合磁性粒子１０１に結合した標識化検出用分子１０２を残存させる。次いで、集磁した光切断リンカー結合磁性粒子１０１をイオン交換水等で懸濁した後、ＵＶを照射することで、光切断リンカー１３を光切断させ、プローブ分子１４、対象物質１５及び標識化検出用分子１０２を含む複合体１０３を遊離させる（ｂ）。次いで、磁性粒子を集磁して、上清のみを取り出すことで、磁性粒子１１を含まない、複合体１０３溶液を得ることができる（ｃ）。複合体１０３溶液中の標識物質１７を検出することで、対象物質１５の濃度を測定することが可能となる。なお、かかる具体例は第１の態様の一例を示すものであり、例えば、洗浄工程を１回のみとする、標識物質１７やプローブ分子１４としての物質を選択する等、条件を適宜変更してもよい。
　使用する光切断リンカーの種類や、切断条件によっては、図示例のように複合体１０３に切断後の光切断リンカー断片が残存しない場合もあり得る。また、図示例は模式図であり、上述したように、磁性粒子、スペーサー、光切断リンカー、及びプローブ分子の数は、１：１：１：１の関係になくともよい。これらは他の態様においても同様である。
　（第１の態様に用いるためのキット）
　本発明の第１の態様に用いるためのキットは、構成試薬として、少なくとも、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子を含むものである。また、前記キットとしては、第１の態様に係る検出用分子、より好ましくは前記標識化検出用分子をさらに含むことが好ましい。
　これらは、それぞれ独立に、固体（粉末）状であっても緩衝液に溶解された液体状であってもよい。液体状である場合、各溶液（標品）における前記光切断リンカー結合磁性粒子の濃度は、特に限定されないが、過剰に添加すると場合により非特異的なシグナルが増加する傾向にある観点から、０．００５～０．２質量％であることが好ましく、０．０１～０．１質量％であることがより好ましい。また、前記検出用分子の濃度も、特に限定されないが、同様の観点から、０．０５～１μｇ／ｍＬであることが好ましく、０．１～０．５μｇ／ｍＬであることがより好ましい。
　本発明の第１の態様に用いるためのキットとしては、ＥＬＩＳＡ、ＣＬＥＩＡ、イムノクロマト等の通常の免疫学的測定で備えるべき構成をさらに備えていてもよい。例えば、標準試料（標準検体試薬、各濃度）、対照試薬、前記試料希釈液、前記粒子懸濁媒、前記反応用バッファー、前記洗浄液、及び希釈用カートリッジからなる群から選択される少なくとも１種をさらに備えていてもよい。また、第１の態様に係る検出用分子を標識化するための標識物質をさらに備えていてもよい。
　また、例えば、前記標識物質が酵素である場合には、当該標識物質の検出・定量に必要な基質や反応停止液等をさらに含んでいてもよい。さらに、必要に応じて、試料の前処理を行うための前処理液や当該キットの使用説明書をさらに含んでいてもよい。
　（第２の態様）
　本発明の対象物質測定方法としては、抗原のサイズが小さくエピトープ部が限られる場合等には、対象物質とその競合物質とを競合させて前記競合物質を検出することにより、間接的に対象物質を測定する競合法も好ましい。前記競合法としては、下記の第２の態様：
　本発明の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質及び前記対象物質の競合物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子と、前記試料と、前記競合物質と、を接触させ、前記対象物質と前記競合物質とを競合させて、前記光切断リンカー結合磁性粒子に前記競合物質を捕捉させる捕捉工程と、
　前記光切断リンカーを光切断して、前記磁性粒子から、前記競合物質と前記プローブ分子とを含む複合体を遊離させて調製試料を得る遊離工程と、
　前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する測定工程と、
を含む測定方法
が好ましい。
　第２の態様においては、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子として、前記プローブ分子が前記対象物質及び前記対象物質の競合物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子を用いる。
　本発明において、「対象物質の競合物質」とは、対象物質に特異的に結合可能な分子に対する結合において、前記対象物質と競合する関係にある物質のことをいい、前記対象物質と同種の物質、又は、前記対象物質と同一又は類似の構造（前記対象物質に特異的に結合可能な分子に認識される該対象物質の部位と同一又は類似の構造）を有する分子のことをいい、前記対象物質の種類に応じて、前記プローブ分子として挙げたものと同様の分子の中から適宜選択することができる。
　第２の態様における、前記対象物質／前記競合物質／前記対象物質及び前記競合物質に特異的に結合可能な分子（プローブ分子）の組み合わせとしては、例えば、抗原（抗原ペプチド、低分子化合物等）／前記抗原又はこれと同一若しくは類似の抗体認識部位を有する分子／抗体、抗体／前記抗体又はこれと同一若しくは類似の抗原認識部位を有する分子／抗原、レクチン結合性糖ペプチド／前記糖ペプチド又はこれと同一若しくは類似のレクチン認識部位を有する分子／レクチンの組み合わせが挙げられる。
　〔捕捉工程〕
　第２の態様の捕捉工程においては、前記試料に前記競合物質を添加し、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子（捕捉体）と前記試料と前記競合物質とを接触させ、前記競合物質と前記プローブ分子との結合を介して前記競合物質を前記捕捉体に捕捉させる。このとき、前記プローブ分子に対しては、前記対象物質との結合と前記競合物質との結合とが競合することになる。前記捕捉体と前記試料と前記競合物質とを接触させる方法としては、特に制限されず、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、例えば、前記試料中に前記捕捉体及び前記競合物質を添加する方法、又は、前記捕捉体液中若しくは前記競合物質液中に他の２液を添加する方法が挙げられる。
　前記試料としては、試料希釈液で希釈して用いてもよく、また、前記捕捉体の粒子懸濁媒に懸濁して用いてもよく、さらに、前記捕捉体と前記試料と前記競合物質との反応系（例えば、抗原抗体反応系）には、他の反応用バッファーを適宜添加してもよい。これらの試料希釈液、粒子懸濁媒、反応用バッファーとしては、上記の第１の態様で挙げたものと同様のものが挙げられる。
　第２の態様の捕捉工程における前記捕捉体と前記試料と前記競合物質との反応において、反応系における捕捉体の含有量（終濃度）としては、試料の種類、濃度、検出方法等に応じて適宜調整されるものであるため特に制限されないが、短時間に効率よく捕捉する観点から、例えば、０．００５～０．２質量％であることが好ましく、０．０１～０．１質量％であることがより好ましい。また、前記競合物質の添加量（終濃度）としては、主に試料の濃度等に応じて適宜調整することができ、対象物質の測定値の算出方法に応じて適宜段階的濃度にすることもできる。
　また、第２の態様の捕捉工程の条件としても特に制限されず、適宜調整することができ、例えば、室温～４５℃、好ましくは２０～３７℃、ｐＨ６～９程度、好ましくはｐＨ７～８で、５秒～１０分程度、好ましくは３０秒～５分程度行うことができるが、これらの条件に限定されるものではない。
　〔洗浄工程〕
　本発明の対象物質測定方法の第２の態様においては、前記捕捉工程の後、かつ、下記の遊離工程の前に、前記捕捉体に結合した競合物質と、それ以外の前記捕捉体に結合していない（捕捉されていない）夾雑物とを分離し、前記夾雑物を除去する洗浄工程をさらに含むことが好ましい。このような洗浄工程としては、特に制限されず、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、上記の第１の態様の洗浄工程として挙げた方法と同様の方法が挙げられる。
　〔遊離工程〕
　第２の態様の遊離工程においては、前記光切断リンカーを切断して、前記捕捉体に結合した競合物質と前記プローブ分子との複合体を、前記磁気粒子から遊離させ、測定工程に供するための試料として、前記複合体を含有する調製試料を得る。
　前記光切断リンカーを切断する方法としては、光照射によってこれを切断する方法が挙げられる。前記遊離工程において、照射する光の光源及び光量としては、特に制限されず、前記光切断リンカーの種類に応じて適宜選択することができ、例えば、その好ましい条件も含めて、上記の第１の態様の遊離工程で挙げた条件と同様の条件が挙げられる。ただし、本発明においては、前記磁性粒子に前記スペーサーを介さずに前記光切断リンカーを結合させた場合に比較して、光切断リンカーの光切断効率に優れるため、光の照射時間を短くすることができる。
　〔測定工程〕
　第２の態様の測定工程においては、前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する。前記複合体の検出は、前記競合物質として、標識物質で標識化された標識化競合物質を用い、前記標識物質によって検出することが好ましい。
　前記標識化競合物質は、前記競合物質が標識物質で標識化されたものである。前記標識物質としては、公知の免疫学的測定において標識物質として用いられているものを特に制限なく用いることができ、好ましい態様も含めて、第１の態様の標識化検出用分子の標識物質として挙げたものと同様のものが挙げられる。
　前記標識化競合物質は、前記競合物質と前記標識物質とを結合することによって製造することができる。かかる結合方法としては、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、前記競合物質と前記標識物質とを直接結合させてもよく、間接的に結合させしてもよい。このような結合方法としては、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子の製造方法として挙げた方法（すなわち、上記の光切断効率向上方法においてスペーサーを挿入する方法として挙げた方法と同様の方法）と同様の方法が挙げられる。また、前記標識化競合物質としては、市販のものを適宜用いてもよく、例えば、前記対象物質が抗原となる物質である場合には、当該抗原又は当該抗原と同一若しくは類似の抗体認識部位を有する分子が標識化されたもの等を適宜用いることができる。
　第２の態様としては、例えば、捕捉工程において、前記捕捉体と、前記試料と、前記標識化競合物質と、を接触させ、前記捕捉体のプローブ分子に前記標識化競合物質を捕捉させる。この反応により、捕捉体－標識化競合物質を含む複合体（例えば免疫複合体）が形成される。結合しなかった試料及び標識化競合物質を必要に応じて洗浄工程で洗浄した後、遊離工程で光切断リンカーを光切断して、磁性粒子から、前記複合体を遊離させ、所定の方法で前記標識化競合物質の標識物質を測定する。例えば、前記標識化競合物質の標識物質が酵素である場合には、酵素に対応する発色基質や発光基質を添加し、酵素と基質とを反応させることによってシグナルを検出する。このとき、試料中に対象物質が多く存在する場合には、前記標識化競合物質と前記プローブ分子との結合が、競合する前記対象物質と前記プローブ分子との結合によって阻害されるため、その分シグナルが減少することになる。したがって、前記標識化競合物質のシグナルを検出することで、間接的に、試料中の前記対象物質の存在の有無及び量を検出することができ、また、標準試料における測定値との比較をすることによって試料中の前記対象物質の量を定量することができる。
　第２の態様の一例として、より具体的には、例えば、図２に示すように、磁性粒子２１と光切断リンカー２３とがスペーサー２２を介して結合しており、光切断リンカー２３に、試料中の対象物質２５及びその競合物質２６に特異的に結合可能なプローブ分子２４（好ましくは対象物質２５及び競合物質２６に対する抗体）が結合した光切断リンカー結合磁性粒子２０１を用いる。反応系には、競合物質２６が標識物質２７で標識化された既知濃度の標識化競合物質２０２が共存する。先ず、捕捉工程において、対象物質２５及び競合物質２６を競合させて、プローブ分子２４を介して反応系（反応液）中に存在する光切断リンカー結合磁性粒子２０１に捕捉させる（ａ）。ここで、対象物質２５の濃度が高いほど、競合物質２６はプローブ分子２４に捕捉されにくくなる。次いで、洗浄工程において、集磁された光切断リンカー結合磁性粒子２０１と結合しなかった対象物質２５、標識化競合物質２０２、不純物等を除去する。次いで、集磁した光切断リンカー結合磁性粒子２０１をイオン交換水等で懸濁した後、ＵＶを照射することで、光切断リンカー２３を光切断させ、プローブ分子２４、及び標識化競合物質２０２を含む複合体２０３、並びに、プローブ分子２４、及び対象物質２５を含む複合体をそれぞれ遊離させる（ｂ）。次いで、磁性粒子を集磁して、上清のみを取り出すことで、磁性粒子２１を含まない、複合体２０３を含む溶液を得て、複合体２０３溶液中の標識物質２７を検出する（ｃ）。試料中の対象物質２５の濃度が高いほど、検出される標識物質２７のシグナルが低くなるため、検量線等を使用して、対象物質２５の濃度を算出することができる。なお、かかる具体例は第２の態様の一例を示すものであり、例えば、標識物質２７、プローブ分子２４、競合物質２６としての物質を選択する等、条件を適宜変更してもよい。
　（第２の態様に用いるためのキット）
　本発明の第２の態様に用いるためのキットは、構成試薬として、少なくとも、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質及び前記対象物質の競合物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子を含むものである。また、前記キットとしては、前記競合物質、より好ましくは前記標識化競合物質をさらに含むことが好ましい。
　これらは、それぞれ独立に、固体（粉末）状であっても緩衝液に溶解された液体状であってもよい。液体状である場合、各溶液（標品）における前記光切断リンカー結合磁性粒子の濃度は、特に限定されないが、過剰に添加すると場合により非特異的なシグナルが増加する傾向にある観点から、０．００５～０．２質量％であることが好ましく、０．０１～０．１質量％であることがより好ましい。また、前記競合物質の濃度は、特に限定されないが、同様の観点から、０．０５～１μｇ／ｍＬであることが好ましく、０．１～０．５μｇ／ｍＬであることがより好ましい。
　本発明の第２の態様に用いるためのキットとしては、ＥＬＩＳＡ、ＣＬＥＩＡ、イムノクロマト等の通常の免疫学的測定で備えるべき構成をさらに備えていてもよい。例えば、標準試料（標準検体試薬、各濃度）、対照試薬、前記試料希釈液、前記粒子懸濁媒、前記反応用バッファー、前記洗浄液、及び希釈用カートリッジからなる群から選択される少なくとも１種をさらに備えていてもよい。また、前記競合物質を標識化するための標識物質をさらに備えていてもよい。
　さらに、例えば、前記標識物質が酵素である場合には、当該標識物質の検出・定量に必要な基質や反応停止液等をさらに含んでいてもよい。さらに、必要に応じて、試料の前処理を行うための前処理液や当該キットの使用説明書をさらに含んでいてもよい。
　（第３の態様）
　本発明の対象物質測定方法として、前記競合法としては、下記の第３の態様：
　本発明の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質の競合物質である光切断リンカー結合磁性粒子と、前記試料と、前記対象物質及び前記競合物質に特異的に結合可能な検出用分子と、を接触させ、前記検出用分子に前記対象物質と前記プローブ分子とを競合させて、前記光切断リンカー結合磁性粒子に前記検出用分子を捕捉させる捕捉工程と、
　前記光切断リンカーを光切断して、前記磁性粒子から、前記検出用分子と前記プローブ分子とを含む複合体を遊離させて調製試料を得る遊離工程と、
　前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する測定工程と、
を含む測定方法
も好ましい。
　第３の態様においては、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子として、前記プローブ分子が前記対象物質の競合物質である光切断リンカー結合磁性粒子を用いる。
　また、第３の態様においては、前記試料に前記対象物質及び前記競合物質に特異的に結合可能な検出用分子を添加し、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子（捕捉体）と前記試料と前記検出用分子とを接触させる。第３の態様に係る検出用分子としては、前記対象物質及び前記競合物質のいずれにも特異的に結合可能であればよく、前記対象物質の種類に応じて、前記プローブ分子として挙げたものと同様の分子の中から適宜選択することができる。
　第３の態様における、前記対象物質／前記競合物質（プローブ分子）／前記対象物質及び前記対象物質の競合物質に特異的に結合可能な分子（検出用分子）の組み合わせとしては、例えば、抗原（抗原ペプチド、低分子化合物等）／前記抗原又はこれと同一若しくは類似の抗体認識部位を有する分子／抗体、抗体／前記抗体又はこれと同一又は類似の抗原認識部位を有する分子／抗原、レクチン結合性糖ペプチド／前記糖ペプチド又はこれと同一若しくは類似のレクチン認識部位を有する分子／レクチンの組み合わせが挙げられる。
　〔捕捉工程〕
　第３の態様の捕捉工程においては、前記接触により、前記競合物質と前記検出用分子との結合を介して前記検出用分子を前記捕捉体に捕捉させる。このとき、前記検出用分子に対しては、前記対象物質との結合と前記捕捉体に含まれる競合物質（プローブ分子）との結合とが競合することになる。前記捕捉体と前記試料と前記検出用分子とを接触させる方法としては、特に制限されず、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、例えば、前記試料中に前記捕捉体及び前記検出用分子を添加する方法、又は、前記捕捉体液中若しくは前記検出用分子液中に他の２液を添加する方法が挙げられる。
　前記試料としては、試料希釈液で希釈して用いてもよく、また、前記捕捉体の粒子懸濁媒に懸濁して用いてもよく、さらに、前記捕捉体と前記試料と前記検出用分子の反応系（例えば、抗原抗体反応系）には、他の反応用バッファーを適宜添加してもよい。これらの試料希釈液、粒子懸濁媒、反応用バッファーとしては、上記の第１の態様で挙げたものと同様のものが挙げられる。
　第３の態様の捕捉工程における前記捕捉体と前記試料と前記検出用分子との反応において、反応系における捕捉体の含有量（終濃度）としては、試料の種類、濃度、検出方法等に応じて適宜調整されるものであるため特に制限されないが、短時間に効率よく捕捉する観点から、例えば、０．００５～０．２質量％であることが好ましく、０．００１～０．１質量％であることがより好ましい。また、前記検出用分子の添加量（終濃度）（検出用分子が２種以上の組み合わせである場合にはそれらの合計量、以下同じ）としては、試料の種類、濃度、検出方法等に応じて適宜調整されるものであるため特に制限されないが、例えば、０．０５～１μｇ／ｍＬであることが好ましく、０．１～０．５μｇ／ｍＬであることがより好ましい。
　また、第３の態様の捕捉工程の条件としても特に制限されず、適宜調整することができ、例えば、室温～４５℃、好ましくは２０～３７℃、ｐＨ６～９程度、好ましくはｐＨ７～８で、５秒～１０分程度、好ましくは３０秒～５分程度行うことができるが、これらの条件に限定されるものではない。
　〔洗浄工程〕
　本発明の対象物質測定方法の第３の態様においては、前記捕捉工程の後、かつ、下記の遊離工程の前に、前記捕捉体に結合した検出用分子と、それ以外の前記捕捉体に結合していない（捕捉されていない）夾雑物とを分離し、前記夾雑物を除去する洗浄工程をさらに含むことが好ましい。このような洗浄工程としては、特に制限されず、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、上記の第１の態様の洗浄工程として挙げた方法と同様の方法が挙げられる。
　〔遊離工程〕
　第３の態様の遊離工程においては、前記光切断リンカーを切断して、前記捕捉体に結合した検出用分子と前記プローブ分子との複合体を、前記磁気粒子から遊離させ、測定工程に供するための試料として、前記複合体を含有する調製試料を得る。
　前記光切断リンカーを切断する方法としては、光照射によってこれを切断する方法が挙げられる。前記遊離工程において、照射する光の光源及び光量としては、特に制限されず、前記光切断リンカーの種類に応じて適宜選択することができ、例えば、その好ましい条件も含めて、上記の第１の態様の遊離工程で挙げた条件と同様の条件が挙げられる。ただし、本発明においては、前記磁性粒子に前記スペーサーを介さずに前記光切断リンカーを結合させた場合に比較して、光切断リンカーの光切断効率に優れるため、光の照射時間を短くすることができる。
　〔測定工程〕
　第３の態様の測定工程においては、前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する。前記複合体の検出は、第３の態様に係る検出用分子として、標識物質で標識化された標識化検出用分子を用い、前記標識物質によって検出することが好ましい。
　第３の態様に係る標識化検出用分子は、前記検出用分子が標識物質で標識化されたものである。前記標識物質としては、公知の免疫学的測定において標識物質として用いられているものを特に制限なく用いることができ、好ましい態様も含めて、第１の態様の標識化検出用分子の標識物質として挙げたものと同様のものが挙げられる。
　第３の態様に係る標識化検出用分子は、前記検出用分子と前記標識物質とを結合することによって製造することができる。かかる結合方法としては、適宜従来公知の方法又はそれに準じた方法を採用することができ、前記検出用分子と前記標識物質とを直接結合させてもよく、間接的に結合させてもよい。このような結合方法としては、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子の製造方法として挙げた方法（すなわち、上記の光切断効率向上方法においてスペーサーを挿入する方法として挙げた方法と同様の方法）と同様の方法が挙げられる。また、第３の態様に係る標識化検出用分子としては、市販のものを適宜用いてもよく、例えば、前記対象物質が抗原となる物質であり、前記競合物質が当該抗原又は当該抗原と同一若しくは類似の抗体認識部位を有する分子である場合には、前記抗原に対する標識化抗体等を適宜用いることができる。
　第３の態様としては、例えば、捕捉工程において、前記捕捉体と、前記試料と、前記標識化検出用分子と、を接触させ、前記捕捉体のプローブ分子を介して前記捕捉体に前記標識化検出用分子を捕捉させる。この反応により、捕捉体－標識化検出用分子を含む複合体（例えば免疫複合体）が形成される。結合しなかった試料及び標識化検出用分子を必要に応じて洗浄工程で洗浄した後、遊離工程で光切断リンカーを光切断して、磁性粒子から、前記標識化検出用分子と前記プローブ分子とを含む複合体を遊離させ、所定の方法で前記標識化検出用分子の標識物質を測定する。例えば、前記標識化検出用分子の標識物質が酵素である場合には、酵素に対応する発色基質や発光基質を添加し、酵素と基質とを反応させることによってシグナルを検出する。このとき、試料中に対象物質が多く存在する場合には、前記プローブ分子と前記標識化検出用分子との結合が、競合する前記対象物質と前記標識化検出用分子との結合によって阻害されるため、その分シグナルが減少することになる。したがって、前記標識化検出用分子のシグナルを検出することで、間接的に、試料中の前記対象物質の存在の有無及び量を検出することができ、また、標準試料における測定値との比較をすることによって試料中の前記対象物質の量を定量することができる。
　第３の態様の一例として、より具体的には、例えば、図３に示すように、磁性粒子３１と光切断リンカー３３とがスペーサー３２を介して結合しており、光切断リンカー３３に、試料中の対象物質３５の競合物質（プローブ分子３４）が結合した光切断リンカー結合磁性粒子３０１を用いる。反応系には、試料中の対象物質３５及びその競合物質３４に特異的に結合可能な検出用分子３６（好ましくは対象物質３５及び競合物質３４に対する抗体）が標識物質３７で標識化された標識化検出用分子３０２が共存する。先ず、捕捉工程において、対象物質３５及び競合物質３４を競合させ、競合物質３４及び検出用分子３６を介して、標識化検出用分子３０２を反応系（反応液）中に存在する光切断リンカー結合磁性粒子３０１に捕捉させる（ａ）。ここで、対象物質３５の濃度が高いほど、競合物質３４は標識化検出用分子３０２を捕捉しにくくなる。次いで、洗浄工程において、集磁された光切断リンカー結合磁性粒子３０１と結合しなかった対象物質３５、標識化検出用分子３０２、不純物等を除去する。次いで、集磁した光切断リンカー結合磁性粒子３０１をイオン交換水等で懸濁した後（ｂ）、ＵＶを照射することで、光切断リンカー３３を光切断させ、プローブ分子３４（競合物質）、及び標識化検出用分子３０２を含む複合体３０３を遊離させる（ｃ）。次いで、磁性粒子を集磁して、上清のみを取り出すことで、磁性粒子３１を含まない、複合体３０３を含む溶液を得て、複合体３０３溶液中の標識物質３７を検出する（ｄ）。試料中の対象物質３５の濃度が高いほど、検出される標識物質３７のシグナルが低くなるため、検量線等を使用して、対象物質３５の濃度を算出することができる。なお、かかる具体例は第３の態様の一例を示すものであり、標識物質３７、プローブ分子３４、検出用分子３６としての物質を選択する等、条件は適宜変更してもよい。
　（第３の態様に用いるためのキット）
　本発明の第３の態様に用いるためのキットは、構成試薬として、少なくとも、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質の競合物質である光切断リンカー結合磁性粒子を含むものである。また、前記キットとしては、第３の態様に係る検出用分子、より好ましくは前記標識化検出用分子をさらに含むことが好ましい。
　これらは、それぞれ独立に、固体（粉末）状であっても緩衝液に溶解された液体状であってもよい。液体状である場合、各溶液（標品）における前記光切断リンカー結合磁性粒子の濃度は、特に限定されないが、過剰に添加すると場合により非特異的なシグナルが増加する傾向にある観点から、０．００５～０．２質量％であることが好ましく、０．０１～０．１質量％であることがより好ましい。また、前記検出用分子の濃度は、特に限定されないが、同様の観点から、０．０５～１μｇ／ｍＬであることが好ましく、０．１～０．５μｇ／ｍＬであることがより好ましい。
　本発明の第３の態様に用いるためのキットとしては、ＥＬＩＳＡ、ＣＬＥＩＡ、イムノクロマト等の通常の免疫学的測定で備えるべき構成をさらに備えていてもよい。例えば、標準試料（標準検体試薬、各濃度）、対照試薬、前記試料希釈液、前記粒子懸濁媒、前記反応用バッファー、前記洗浄液、及び希釈用カートリッジからなる群から選択される少なくとも１種をさらに備えていてもよい。また、第３の態様に係る検出用分子を標識化するための標識物質をさらに備えていてもよい。
　さらに、例えば、前記標識物質が酵素である場合には、当該標識物質の検出・定量に必要な基質や反応停止液等をさらに含んでいてもよい。さらに、必要に応じて、試料の前処理を行うための前処理液や当該キットの使用説明書をさらに含んでいてもよい。
　以下、参考例、実施例及び比較例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。なお、各参考例、実施例及び比較例において、「％」の表示は、特に記載のない場合、重量／容量（ｗ／ｖ：ｇ／ｍＬ）パーセントを示す。また、各実施例及び比較例において、使用した機器、試薬等は、特に記載のない限り、参考例１に使用したものと同様のものである。
　（参考例１）マイクロプレートに固相化した光切断リンカーの切断率試験
　（１）アルカリフォスファターゼ－光切断リンカー－ビオチン結合体の調製
　アルカリフォスファターゼ（ＡＬＰ）（ＡＬＰ－２４、オリエンタル酵母社製）２ｍｇをゲル濾過スピンカラム（ＰＤ－１０、ＧＥ社製）にロードし、緩衝液１（２０ｍＭ　ＰＢ（ｐＨ７．２））で溶出した。次いで、溶出液にＮ－ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）－光切断リンカー（ＰＣ）－ビオチン（商品名：ＰＣ－Ｂｉｏｔｉｎ－ＮＨＳ、Ａｍｂｅｒｇｅｎ社製）を５０ｍＭ含むジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）を２．８６μＬ添加し、２５℃で１時間振とうしてアルカリフォスファターゼ－光切断リンカー－ビオチン結合体（ＡＬＰ－ＰＣ－ビオチン結合体）を得た後、再度ゲル濾過スピンカラムにロードし、緩衝液１で溶出した。
　（２）ＡＬＰ－ＰＣ固相化プレートの調製
　９６ウェルマイクロウェルプレート（ポリスチレン製、Ｎｕｎｃ社製）の各ウェルにストレプトアビジン（ＳＡ）を５μｇ／ｍＬ含む緩衝液１を１００μＬ添加し、３７℃で１時間振とう混合した。ルミパルス（登録商標）洗浄液（富士レビオ社製）を用いて３回洗浄した後、緩衝液２（５０ｍＭ　Ｔｒｉｓ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ、２％　ＢＳＡ（ｐＨ７．２））を１００μＬ添加し、３７℃で３０分間静置した。ルミパルス洗浄液で３回洗浄した後、ＡＬＰ－ＰＣ－ビオチン結合体を含む緩衝液３（５０ｍＭ　ＭＥＳ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、１ｍＭ　ＭｇＣｌ２、０．１ｍＭ　ＺｎＣｌ２、０．５％　ＢＳＡ（ｐＨ６．８））を１００μＬ加えて、３７℃で３０分間反応させた。ここで、緩衝液３は、ＡＬＰ濃度が０．１μｇ／ｍＬ又は０．０１μｇ／ｍＬとなるように調整した。ルミパルス洗浄液で３回洗浄し、ＡＬＰ－ＰＣ固相化プレートを得た。
　（３）光切断リンカーの切断
　ＡＬＰ－ＰＣ固相化プレートに超純水を１００μＬ加え、１０分間ＵＶ照射を行った。ＵＶ照射は、ＵＶ－ＬＥＤ（オプトコード社製）を用いて３６５ｎｍの光（ＵＶ）を１５ｍＷ／ｃｍ２の強度で照射することで実施した（特に断りのない限り、以下同じ）。ＵＶ照射後のプレートの上清を回収し、２０μＬを９６ウェルマイクロウェルプレートに添加し、次いで基質液（ｐ－ニトロフェニルリン酸ナトリウム（ｐＮＰＰ）、富士フイルム和光純薬社製）を１００μＬ添加した。３７℃で１５分間反応させた後、反応停止液（０．２ｍｍｏｌ／Ｌ水酸化ナトリウム）８０μＬを加え、３７℃で１分間振とうした。他方、上清回収後のＡＬＰ－ＰＣ固相化プレート（残存プレート）については、ルミパルス洗浄液で３回洗浄した後、超純水２０μＬと基質液１００μＬとを添加した。３７℃で１５分間反応させた後、反応停止液８０μＬを加え、３７℃で１分間振とうした。
　次いで、上清及び残存プレートのそれぞれについて、各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した（Ｖａｒｉｏｓｋａｎ　ｆｌａｓｈ（サーモフィッシャー社製）を使用、以下同様）。また、コントロールとして、ＡＬＰ－ＰＣ固相化プレートにＵＶ照射を行わなかったこと以外は上記と同様にして、上清及び残存プレートのそれぞれについて、各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　各条件におけるプレートの吸光度及び切断率（｛上清吸光度／（上清吸光度＋残存プレート吸光度）｝×１００（％））を下記の表１に示す。なお、表１中の吸光度は、ブランク（超純水＋マイクロウェルプレート）を差し引いた値である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　表１に示したように、ポリスチレン製のマイクロウェルプレートに固相化した光切断リンカーにおいては、ＵＶ照射によって、ＡＬＰがプレートから上清に効率よく移行し、光切断効率が高いことが確認された。
　（比較例１）磁性粒子に直接結合させた光切断リンカーの切断率試験
　（１）ＡＬＰ－ＰＣ結合磁性粒子の調製
　磁性粒子として、アミノ基を有するダイナビーズ（商品名：Ｄｙｎａｂｅａｄｓ　Ｍ－２７０　Ａｍｉｎｅ、サーモフィッシャー社製）を使用した。磁性粒子１０ｍｇをＤＭＦで３回洗浄し、ＤＭＦ４８５μＬ及び５０ｍＭ　ＮＨＳ－ＰＣ－ビオチン／ＤＭＦ溶液１５μＬに懸濁した。２５℃で２時間振とうした後、ＤＭＦで３回洗浄した。ＤＭＦ１ｍＬで懸濁し、ビオチン－ＰＣ結合粒子懸濁液を得た。
　次いで、ビオチン－ＰＣ結合粒子を緩衝液４（２０ｍＭ　ＰＢ、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０（ｐＨ７．２））を用いて３回洗浄した後、２０μｇ／ｍＬ　ＳＡ結合ＡＬＰ（Ｍａｂｔｅｃｈ　ＡＢ社製）を含む緩衝液４　１００μＬに懸濁した。３７℃で３０分間振とうしてＡＬＰ－ＰＣ結合磁性粒子を得た後、緩衝液４で３回洗浄した。
　（２）光切断リンカーの切断
　ＡＬＰ－ＰＣ結合磁性粒子を緩衝液３に懸濁して３７℃で５分間振とうした後、ルミパルス洗浄液で３回洗浄した。超純水１００μＬで磁性粒子を懸濁した後、８ｍＬ試験管に全量を移し、０分間、５分間、１０分間、１５分間のＵＶ照射を行った。
　次いで、上清を回収して９６ウェルマイクロウェルプレートに２０μＬ移した。基質液１００μＬを加えて、３７℃で１５分間反応させた後、反応停止液８０μＬを加え、３７℃で１分間振とうした。各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。他方、上清回収後の残存粒子はルミパルス洗浄液で３回洗浄した後、超純水２０μＬ及び基質液１００μＬに懸濁した。３７℃で１５分間反応させた後、反応停止液８０μＬを加え、３７℃で１分間振とうした。反応後の上清１５０μＬをマイクロウェルプレートに移し、各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　各条件におけるプレートの吸光度及び切断率（｛上清吸光度／（上清吸光度＋残存粒子吸光度）｝×１００（％）、下記表３～５、７において同じ）を下記の表２に示す。なお、表２中の吸光度は、ブランク（超純水＋マイクロウェルプレート）を差し引いた値である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　表２に示したように、磁性粒子にスペーサーを介さずに光切断リンカーを結合させた場合には、ＵＶ照射をしても、光切断リンカーはほとんど切断されないことが確認された。なお、ＵＶ照射後１０分後においても、上清吸光度及び残存粒子吸光度の合計はほとんど一定であり、本試験のＵＶ照射ではＡＬＰが分解されていないことが確認された。
　（実施例１）ストレプトアビジンを介して磁性粒子に結合させた光切断リンカーの切断率試験
　（１）ＡＬＰ－ＰＣ－ＳＡ結合磁性粒子の調製
　磁性粒子としてＳＡ結合ダイナビーズ（商品名：Ｄｙｎａｂｅａｄｓ　Ｍ－２８０　Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ、サーモフィッシャー社製）を使用した。磁性粒子１ｍｇを８ｍＬ試験管中で緩衝液４を用いて３回洗浄した。次いで、参考例１の（１）と同様にして得たＡＬＰ－ＰＣ－ビオチン結合体を２０μＬ／ｍＬ含む緩衝液３を１００μＬ添加し、３７℃で３０分間振とうしてＡＬＰ－ＰＣ－ＳＡ結合磁性粒子を得た。緩衝液４で３回洗浄した後、緩衝液１で６回洗浄し、次いで緩衝液２で３回洗浄した。緩衝液２を４００μＬ加えて３７℃で１時間振とうした後、緩衝液２で３回洗浄し、さらに緩衝液２を１００μＬ加えてＡＬＰ－ＰＣ－ＳＡ結合磁性粒子液とした。
　（２）光切断リンカーの切断
　ＡＬＰ－ＰＣ－ＳＡ結合磁性粒子を０．１５μｇ／ｍＬ含む緩衝液３　１１００μＬを８ｍＬ試験管に入れ、３７℃で５分間静置した。ルミパルス洗浄液で３回洗浄した後、超純水を４４０μＬ加えて懸濁し、試験管に１００μＬずつ分注した。次いで、１０分間ＵＶ照射を行い、上清を回収して９６ウェルマイクロウェルプレートに２０μＬ移した。基質液１００μＬを加えて、３７℃で１５分間反応させた後、反応停止液８０μＬを加え、３７℃で１分間振とうした。各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　他方、上清回収後の残存粒子はルミパルス洗浄液で３回洗浄した後、超純水２０μＬ及び基質液１００μＬに懸濁した。３７℃で１５分間反応させた後、反応停止液８０μＬを加え、３７℃で１分間振とうした。反応後の上清１５０μＬをマイクロウェルプレートに移し、各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　また、コントロールとして、ＡＬＰ－ＰＣ－ＳＡ結合磁性粒子にＵＶ照射を行わなかったこと以外は上記と同様にして、上清及び残存粒子のそれぞれについて、各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。測定は、ＵＶ照射あり、なしの各条件について、それぞれ二重測定（それぞれサンプル１及びサンプル２について測定）を行った。
　各条件におけるプレートの吸光度及び切断率を下記の表３に示す。なお、表３中の吸光度は、ブランク（超純水＋マイクロウェルプレート）を差し引いた値である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　表３に示したように、磁性粒子にアビジンを介して光切断リンカーを結合させた場合には、ＵＶ照射による光切断リンカーの切断率が２０～３０％となり、比較例１に比較して向上した。
　（実施例２）ポリエチレングリコールを介して磁性粒子に結合させた光切断リンカーの切断率試験
　（１）ＡＬＰ－ＰＣ－ポリエチレングリコール結合磁性粒子の調製
　磁性粒子として、ダイナビーズカルボキシル化粒子（Ｄｙｎａｂｅａｄｓ　Ｍ－２７０　Ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ　ａｃｉｄ、サーモフィッシャー社製）を使用した。磁性粒子１０ｍｇを８ｍＬ試験管中で超純水１ｍＬを用いて３回洗浄し、超純水７０μＬ、１９ｍｇ／ｍＬ　ＥＤＣ（１－Ｅｔｈｙｌ－３－［３－ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｍｉｎｏ　ｐｒｏｐｙｌ］ｃａｒｂｏｄｉｉｍｉｄｅ　Ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ）溶液５０５μＬ、２０ｍｇ／ｍＬ　ＮＨ２－ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）－ＮＨ２（ＰＥＧの重量平均分子量：１Ｋ、２Ｋ、３．４Ｋ、５Ｋ、１０Ｋ、又は２０Ｋ；商品名：ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ　ＤＥ－０１０ＰＡ（１Ｋ）、ＤＥ－０２０ＰＡ（２Ｋ）、ＤＥ－０３４ＰＡ（３．４Ｋ）、ＤＥ－０５０ＰＡ（５Ｋ）、ＤＥ－１００ＰＡ（１０Ｋ）、ＤＥ－２００ＰＡ（２０Ｋ）；（株）日油社製）４２５μＬを加えて２５℃で２時間振とうした。超純水１ｍＬで３回洗浄した後、ＤＭＦ　１ｍＬで３回洗浄した。
　次いで、ＤＭＦ４８５μＬ、５０ｍＭ　ＮＨＳ－ＰＣ－ビオチン（Ａｍｂｅｒｇｅｎ社製）のＤＭＦ溶液１５μＬを加えて、２５℃で２時間振とうした。ＤＭＦ　１ｍＬで３回洗浄し、ＤＭＦ１ｍＬに懸濁した。次いで、上記懸濁液０．１ｍＬを試験管中で緩衝液４を用いて３回洗浄し、次いで緩衝液１で６回洗浄した。さらに緩衝液２で３回洗浄した後、緩衝液２で懸濁し、３７℃で１時間振とうした。緩衝液２で３回洗浄した後、緩衝液２　１００μＬに懸濁し、ビオチン－ＰＣ－ＰＥＧ結合磁性粒子液とした。次いで、ビオチン－ＰＣ－ＰＥＧ結合磁性粒子液２５μＬについて、上清を除去し、ＳＡ結合ＡＬＰ（Ｍａｂｔｅｃｈ社製）を緩衝液２で１００００倍希釈した溶液１６６７μＬに懸濁し、３７℃で１時間振とうしてＡＬＰ－ＰＣ－ポリエチレングリコール結合磁性粒子（ＡＬＰ－ＰＣ－ＰＥＧ結合磁性粒子）液とした。
　（２）光切断リンカーの切断
　ＡＬＰ－ＰＣ－ＰＥＧ結合磁性粒子をルミパルス洗浄液で３回洗浄した。超純水６６７μＬに懸濁し、８ｍＬ試験管に１００μＬずつ分注し、各粒子についてＵＶ照射を行った。ＵＶ照射時間は、重量平均分子量３．４ＫのＰＥＧを用いた粒子については、５分間、１２．５分間、１５分間、１７．５分間の各条件とし、その他のＰＥＧを使用した粒子については、１５分間とした。ＵＶ照射後の各溶液について、上清を回収して９６ウェルマイクロウェルプレートに２０μＬずつ移した。各ウェルに基質液１００μＬを加えて、３７℃で１５分間反応させた後、反応停止液８０μＬを加え、３７℃で１分間振とうした。各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　他方、上清回収後の残存粒子はルミパルス洗浄液で３回洗浄した後、超純水２０μＬ及び基質液１００μＬに懸濁した。３７℃で１５分間反応させた後、反応停止液８０μＬを加え、３７℃で１分間振とうした。反応後の上清１５０μＬをマイクロウェルプレートに移し、各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　また、コントロールとして、ＡＬＰ－ＰＣ－ＰＥＧ結合磁性粒子にＵＶ照射を行わなかったこと以外は上記と同様にして、上清及び残存粒子のそれぞれについて、各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　各種ＰＥＧを使用した条件（ＵＶ照射時間：１５分間）におけるプレートの吸光度及び切断率を下記の表４に示す。また、重量平均分子量３．４ＫのＰＥＧを用いた粒子について、各ＵＶ照射時間条件において測定した吸光度及び切断率を下記の表５に示す。なお、表４及び表５中の吸光度は、ブランク（超純水＋マイクロウェルプレート）を差し引いた値である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　表４に示したように、磁性粒子にポリエチレングリコールを介して光切断リンカーを結合させた場合には、ＵＶ照射による光切断リンカーの切断率が高くなることが確認され、また、重量平均分子量３．４Ｋのポリエチレングリコールを使用することでより切断率が高くなる傾向にあることが確認された。さらに、表５に示したように、ＵＶ照射時間を長くすることで、より切断率が高くなる傾向にあることが確認された。
　（実施例３）デキストランを介して磁性粒子に結合させた光切断リンカーの切断率試験
　（１）ＡＬＰ－ＰＣ－デキストラン結合磁性粒子の調製
　磁性粒子として、ダイナビーズカルボキシル化粒子（Ｄｙｎａｂｅａｄｓ　Ｍ－２７０Ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ　ａｃｉｄ、サーモフィッシャー社製）を使用した。磁性粒子１０ｍｇを８ｍＬ試験管中で超純水１ｍＬを用いて３回洗浄し、超純水３００μＬ、１９ｍｇ／ｍＬ　ＥＤＣ（１－Ｅｔｈｙｌ－３－［３－ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ａｍｉｎｏ　ｐｒｏｐｙｌ］ｃａｒｂｏｄｉｉｍｉｄｅ　Ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ）溶液５００μＬ、１０ｍｇ／ｍＬ　ＮＨ２－デキストラン（Ｄｅｘ）（Ｄｅｘの１分子あたりの質量：１０Ｋ、４０Ｋ、又は７０Ｋ；サーモフィッシャー社製）２００μＬを加えて２５℃で一晩振とうした。超純水１ｍＬで３回洗浄した後、超純水１ｍＬに懸濁した。
　次いで、上記懸濁液０．２ｍＬを試験管中でＤＭＦを用いて３回洗浄した後、ＤＭＦ１９４μＬ、５０ｍＭ　ＮＨＳ－ＰＣ－ビオチン（Ａｍｂｅｒｇｅｎ社製）のＤＭＦ溶液６μＬを添加し、２５℃で２時間振とうした。ＤＭＦで３回洗浄し、緩衝液１で３回洗浄した。さらに緩衝液２で３回洗浄した後、緩衝液２　４００μＬで懸濁し、３７℃で一晩振とうし、ビオチン－ＰＣ－Ｄｅｘ結合磁性粒子液とした。次いで、ビオチン－ＰＣ－Ｄｅｘ結合磁性粒子液の上清を除去し、ＳＡ結合ＡＬＰ（Ｍａｂｔｅｃｈ社製）を緩衝液２で１００００倍希釈した溶液６６７μＬに懸濁し、３７℃で１時間振とうしてＡＬＰ－ＰＣ－デキストラン結合磁性粒子（ＡＬＰ－ＰＣ－Ｄｅｘ結合磁性粒子）液とした。
（２）光切断リンカーの切断
　ＡＬＰ－ＰＣ－Ｄｅｘ結合磁性粒子をルミパルス洗浄液で３回洗浄した。緩衝液５（５０ｍＭ　ＨＥＰＥＳ（ｐＨ７．０））に懸濁し、８ｍＬ試験管に１００μＬずつ分注し、１５分間のＵＶ照射を行った。ＵＶ照射後、各試料をルミパルスプレスト（登録商標）専用キュベットに移し、ルミパルス洗浄液で６回洗浄し、ルミパルス基質液を２００μＬ加えて反応させた。各サンプルの発光量（カウント）をルミネッセンスリーダー　ＢＬＲ－２０１（アロカ社製）を用いて測定した。また、ＡＬＰ－ＰＣ－Ｄｅｘ結合磁性粒子にＵＶ照射を行わなかったこと以外は上記と同様にして、各試料について、カウントを測定した。
　各種Ｄｅｘを使用した条件における発光量及び切断率（｛（ＵＶ照射なしの発光量－ＵＶ照射ありの発光量）／ＵＶ照射なしの発光量｝×１００（％））を下記の表６に示す。なお、表６中のカウントは、ブランク（超純水）を差し引いた値である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　表６に示したように、磁性粒子にデキストランを介して光切断リンカーを結合させた場合には、ＵＶ照射による光切断リンカーの切断率が高くなることが確認され、また、１分子あたりの質量がより大きいデキストランを使用することでより切断率が高くなる傾向にあることが確認された。
　（実施例４）光切断リンカー結合磁性粒子を用いたイムノアッセイ
　（１）ＩｇＧ－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子の調製
　磁性粒子としてアミノ基を有するダイナビーズ（商品名：Ｄｙｎａｂｅａｄｓ　Ｍ－２７０　Ａｍｉｎｅ、サーモフィッシャー社製）を使用した。磁性粒子６ｍｇにＮＨＳ－ＰＥＧ（ＰＥＧの重量平均分子量：５Ｋ）－ビオチン（商品名：ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ　ＢＩ－０５０ＴＳ、（株）日油社製）を２μｍｏｌ／ｍＬ含むＤＭＦ　６００μＬを加え、２５℃で２時間浸透させた。ＤＭＦ６００μＬで３回洗浄した後、緩衝液１で３回洗浄した。さらに緩衝液４で３回洗浄した後、緩衝液４に懸濁してビオチン－ＰＥＧ結合磁性粒子液とした。
　また、抗アルファフェトプロテイン（ＡＦＰ）マウスＩｇＧ抗体（ＩｇＧ、富士レビオ社製）２ｍｇをゲル濾過スピンカラム（ＰＤ－１０、ＧＥ社製）にロードし、緩衝液１で溶出した。次いで、ＮＨＳ－ＰＣ－ビオチン（Ａｍｂｅｒｇｅｎ社製）を５０ｍＭ含むＤＭＦを２．８６μＬ添加し、２５℃で１時間振とうした後、再度ゲル濾過スピンカラムにロードし、緩衝液１で溶出し、ＩｇＧ－ＰＣ－ビオチン結合体を得た。ストレプトアビジン（ＳＡ）を１００μｇ／ｍＬ含む緩衝液４　２ｍＬに、ＩｇＧ－ＰＣ－ビオチン結合体を２５０μｇ／ｍＬ含む緩衝液４を２ｍＬ加え、２５℃で２時間振とうした。Ｓｕｐｅｒｄｅｘ２００を用いたＨＰＬＣを用いてＩｇＧ－ＰＣ－ＳＡ結合体を分取した。
　ビオチン－ＰＥＧ結合磁性粒子液から上清を除去し、ＩｇＧ－ＰＣ－ＳＡ結合体を１μｇ／ｍＬ含む緩衝液４を１６００μＬ添加した。２５℃で１時間振とうした後、ルミパルス洗浄液で３回洗浄した後、緩衝液４　１６００μＬを加えて懸濁し、ＩｇＧ－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子結合体の懸濁液を得た。
　（２）ＡＦＰの検出
　ＩｇＧ－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子の懸濁液を８ｍＬ試験管に２５０μＬずつ小分けした。ルミパルスプレストＡＦＰキャリブレータ（０ｎｇ／ｍＬ又は２０００ｎｇ／ｍＬ、富士レビオ社製）２０μＬを各試験管に加え、３７℃で１０分間反応させた。ルミパルス洗浄液で６回洗浄した後、ＡＬＰ標識抗ＡＦＰ抗体（抗ＡＦＰマウスＩｇＧ抗体）溶液（富士レビオ社製、０．１μｇ／ｍＬ）を２５０μＬ加えた。３７℃で１０分間反応させた後、ルミパルス洗浄液で６回洗浄し、緩衝液４を１００μＬ加えて懸濁した。８ｍＬ試験管に懸濁液全量を移し、１５分間ＵＶ照射を行った。
　ＵＶ照射後の各溶液について、上清を回収して９６ウェルマイクロウェルプレートに２０μＬずつ移した。各ウェルに基質液１００μＬを加えて、３７℃で１５分間反応させた後、反応停止液８０μＬを加え、３７℃で１分間振とうした。各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　他方、上清回収後の残存粒子はルミパルス洗浄液で３回洗浄した後、超純水２０μＬ及び基質液１００μＬに懸濁した。３７℃で１５分間反応させた後、反応停止液８０μＬを加え、３７℃で１分間振とうした。反応後の上清１５０μＬをマイクロウェルプレートに移し、各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　また、コントロールとして、ＩｇＧ－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子にＵＶ照射を行わなかったこと以外は上記と同様にして、上清及び残存粒子のそれぞれについて、各ウェルの４０５ｎｍの吸光度を測定した。
　各条件におけるプレートの吸光度及び切断率を下記の表７に示す。なお、表７中の吸光度は、ブランク（超純水＋マイクロウェルプレート）を差し引いた値である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　表７に示したように、本発明の光切断リンカー結合磁性粒子を用いたイムノアッセイににおいては、磁性粒子にストレプトアビジン及びポリエチレングリコールを介して光切断リンカーを結合させたことでＵＶ照射による光切断リンカーの切断率を高められることが確認された。
　（実施例５）抗体断片（Ｆａｂ’）を含む光切断リンカー結合磁性粒子を用いたイムノアッセイ
　（１）ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子の調製
　ストレプトアビジン（ＳＡ）１．２８ｍｇを０．１Ｍ炭酸水素ナトリウムバッファー（ｐＨ８．５）とともにゲル濾過スピンカラム（ＰＤ－１０、ＧＥ社製）にロードした。イミノチオラン塩酸塩を加えて２５℃で１時間振とうした後、緩衝液６（０．１Ｍ　ＰＢ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ２Ｎａ、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０（ｐＨ６．３））を用いて精製し、ＳＨ基修飾ストレプトアビジン（ＳＡ－ＳＨ）を得た。
　磁性粒子として、アミノ基を有するダイナビーズ（商品名：Ｄｙｎａｂｅａｄｓ　Ｍ－２７０　Ａｍｉｎｅ、サーモフィッシャー社製）を使用した。２ｍｇの磁性粒子をＤＭＦで３回洗浄した後、ＮＨＳ－ＰＥＧ（ＰＥＧの重量平均分子量：５Ｋ）－マレイミド基（Ｍａｌ）（２μｍｏｌ／ｍＬＤＭＦ、商品名：ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ　ＭＡ－０５０ＴＳ、（株）日油社製）を２００μＬ添加し、２５℃で一晩反応させた。ＤＭＦで３回洗浄した後、緩衝液６で３回洗浄し、次いで、ＳＡ－ＳＨ溶液（４００μｇ／ｍＬ）２００μＬを添加した。２５℃で一晩振とうした後、緩衝液６で３回洗浄した。５ｍＭシステイン／緩衝液６溶液を添加し、２５℃で３時間振とうしてＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子を得た。緩衝液７（０．１Ｍ　ＰＢ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ２Ｎａ（ｐＨ６．３））で６回、緩衝液６で３回洗浄し、洗浄後のＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子を緩衝液２に懸濁した。
　（２）ＩｇＧ－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子、Ｆａｂ’－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子の調製
　抗ＩＬ－６マウスＩｇＧ抗体（富士レビオ社製）２ｍｇをゲル濾過スピンカラム（ＰＤ－１０、ＧＥ社製）にロードし、０．１Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ３．５）で溶出し、５ｍｇ／ｍＬの抗体溶液を得た。１．０ｍｇ／ｍＬペプシン溶液（０．１Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ３．５））に体積比が１／１００となるように加え、３７℃で１時間反応させ、２Ｍ　Ｔｒｉｓ緩衝液（ｐＨ１０．０）を体積比１／１０で加えた。Ｓｕｐｅｒｄｅｘ２００カラムと緩衝液６（０．１Ｍ　ＰＢ、１ｍＭ　ＥＤＴＡ２Ｎａ（ｐＨ６．３））とを用いてゲル濾過精製し、５ｍｇ／ｍＬのＦ（ａｂ’）２断片溶液を得た。
　Ｆ（ａｂ’）２断片溶液に、０．２Ｍ　２－メルカプトエチルアミン（２－ＭＥＡ）を体積比１／２０で加え、３７℃で１時間反応させた。次いで、ゲル濾過スピンカラムにロードして、緩衝液７を用いて洗浄してＦａｂ’溶液を得た。これに２５ｍＭ　Ｍａｌ－ＰＣ－ビオチン結合体溶液（ＰＣ－ビオチン-ＮＨＳ及び２－アミノエチルマレイミドより調製）を０．３μＬ添加し、２５℃で一晩振とうした。次いで、遠心フィルター（Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ（３Ｋ））にロードし、ＰＢＳ　５００μＬを加えて遠心した。遠心を３回繰り返した後、緩衝液２に溶解し、Ｆａｂ’－ＰＣ－ビオチン結合体溶液を得た。
　また、上記のＦａｂ’溶液に代えて、抗ＩＬ－６マウスＩｇＧ抗体の完全抗体（ＩｇＧ）溶液を使用したこと以外は上記と同様にして、ＩｇＧ－ＰＣ－ビオチン結合体溶液を得た。
　ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子２２５μｇにＦａｂ’－ＰＣ－ビオチン結合体溶液又はＩｇＧ－ＰＣ－ビオチン結合体溶液（いずれも４００ｎｇ／ｍＬ）を１５００μＬ添加し、３７℃で３０分間反応させ、ＩｇＧ－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子液、Ｆａｂ’－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子液をそれぞれ得た。
（３）ＩＬ－６の測定
　ＩｇＧ－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子、Ｆａｂ’－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子をそれぞれルミパルス洗浄液（富士レビオ社製）で３回洗浄した後、緩衝液２を１５００μＬ添加し、ルミパルスカートリッジ（富士レビオ社製）に小分け分注した。ルミパルスＩＬ－６キャリブレータ（０ｐｇ／ｍＬ又は４００ｐｇ／ｍＬ、富士レビオ社製）５０μＬを各カートリッジに添加し、３７℃で１０分間反応させた。ルミパルス洗浄液で６回洗浄した後、ルミパルス標識体液（ＡＬＰ標識抗ＩＬ－６マウスＩｇＧ抗体）２５０μＬを添加し、３７℃で１０分間反応させた。ルミパルス洗浄液で６回洗浄した後、緩衝液３　１００μＬに懸濁し、ＵＶ照射を１分間行った。ＵＶ照射は、ＬＩＧＨＴＮＩＮＧＣＵＲＥ　ＬＣ－Ｌ１Ｖ３（浜松ホトニクス社製）を使用し、波長３６５ｎｍ、光量１００００ｍＷ／ｃｍ２の条件で、１方向から照射した。ＵＶ照射後の磁性粒子を、さらにルミパルス洗浄液で６回洗浄し、ルミパルス基質液　２００μＬを添加し、３７℃で５分間反応させた。各条件における磁性粒子液の発光量（カウント）をルミネッセンスリーダー　ＢＬＲ－２０１（アロカ社製）を用いて測定した。また、ＩｇＧ－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子、Ｆａｂ’－ＰＣ－ＳＡ－ＰＥＧ結合磁性粒子のそれぞれにＵＶ照射を行わなかったこと以外は上記と同様にして、各試料について、カウントを測定した。
　各条件における発光量を表８に示す。表８中の「切断率」は、ＩＬ－６濃度４００ｐｇ／ｍＬのカウント値からブランクを引いた差分に基づいて、同条件のＵＶ照射なしの切断率を０％（残存率１００％）として算出したものである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　表８に示したように、完全抗体（ＩｇＧ）を使用した条件でも、光切断リンカーの切断率は８割程度と優れていたが、抗体断片（Ｆａｂ’）を使用した条件では、光切断リンカーの切断率がさらに９割にまで向上した。
　本発明によれば、磁性粒子及び光切断リンカーを備える光切断リンカー結合磁性粒子において、前記光切断リンカーの光切断効率を向上させる方法、光切断効率に優れた光切断リンカー結合磁性粒子、並びに、これらを用いて対象物質を測定する測定方法及びこれに用いるためのキットを提供することが可能となる。
　１１、２１、３１…磁性粒子、１２、２２、３２…スペーサー、１３、２３、３３…光切断リンカー、１４、２４…プローブ分子、３４…プローブ分子（競合物質）、１５、２５、３５…対象物質、１６、３６…検出用分子、２６…競合物質、１７、２７、３７…標識物質、１０１、２０１、３０１…光切断リンカー結合磁性粒子、１０２、３０２…標識化検出用分子、２０２…標識化競合物質、１０３、２０３、３０３…複合体。

Claims (20)

  1. 　磁性粒子及び光切断リンカーを備える光切断リンカー結合磁性粒子において、
    　前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間にスペーサーを挿入する、
    光切断リンカーの光切断効率向上方法。
  2. 　前記光切断リンカーは溶液中で光切断される、請求項１に記載の方法。
  3. 　前記スペーサーの挿入により前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離を４～１７０ｎｍにする、請求項１又は２に記載の方法。
  4. 　前記スペーサーが、タンパク質、ポリエチレングリコール、及びデキストランからなる群から選択される少なくとも１種である、請求項１～３のうちのいずれか一項に記載の方法。
  5. 　磁性粒子及び光切断リンカーを備える光切断リンカー結合磁性粒子であり、
    　前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間にスペーサーを備え、かつ、
    　前記光切断リンカーの前記スペーサーとは反対側の端にプローブ分子を備える、
    光切断リンカー結合磁性粒子。
  6. 　前記磁性粒子と前記光切断リンカーとの間の距離が４～１７０ｎｍである、請求項５に記載の光切断リンカー結合磁性粒子。
  7. 　前記スペーサーが、タンパク質、ポリエチレングリコール、及びデキストランからなる群から選択される少なくとも１種である、請求項５又は６に記載の光切断リンカー結合磁性粒子。
  8. 　前記プローブ分子が、ポリヌクレオチド、ポリペプチド、及び低分子化合物からなる群から選択される少なくとも１種である、請求項５～７のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子。
  9. 　試料中の対象物質を測定する測定方法であり、
    　請求項５～８のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子と、前記試料と、を接触させ、前記光切断リンカー結合磁性粒子に前記対象物質を捕捉させる捕捉工程と、
    　前記光切断リンカーを光切断して、前記磁性粒子から、前記対象物質と前記プローブ分子とを含む複合体を遊離させて調製試料を得る遊離工程と、
    　前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する測定工程と、
    を含む、測定方法。
  10. 　前記対象物質に特異的に結合可能な検出用分子が標識物質で標識化された標識化検出用分子に前記対象物質を捕捉させる標識化工程をさらに含み、前記複合体が、前記対象物質と前記プローブ分子と前記標識化検出用分子とを含む複合体であり、かつ、前記複合体の検出が、前記標識物質による検出である、請求項９に記載の測定方法。
  11. 　請求項９又は１０に記載の試料中の対象物質を測定する測定方法に用いるためのキットであり、
    　請求項５～８のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子
    を含む、キット。
  12. 　前記対象物質に特異的に結合可能な検出用分子が標識物質で標識化された標識化検出用分子をさらに含む、請求項１１に記載のキット。
  13. 　試料中の対象物質を測定する測定方法であり、
    　請求項５～８のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質及び前記対象物質の競合物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子と、前記試料と、前記競合物質と、を接触させ、前記対象物質と前記競合物質とを競合させて、前記光切断リンカー結合磁性粒子に前記競合物質を捕捉させる捕捉工程と、
    　前記光切断リンカーを光切断して、前記磁性粒子から、前記競合物質と前記プローブ分子とを含む複合体を遊離させて調製試料を得る遊離工程と、
    　前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する測定工程と、
    を含む、測定方法。
  14. 　前記競合物質が、標識物質で標識化された標識化競合物質であり、かつ、前記複合体の検出が、前記標識物質による検出である、請求項１３に記載の測定方法。
  15. 　請求項１３又は１４に記載の試料中の対象物質を測定する測定方法に用いるためのキットであり、
    　請求項５～８のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質及び前記対象物質の競合物質に特異的に結合可能な分子である光切断リンカー結合磁性粒子
    を含む、キット。
  16. 　前記対象物質の競合物質が標識物質で標識化された標識化競合物質をさらに含む、請求項１５に記載のキット。
  17. 　試料中の対象物質を測定する測定方法であり、
    　請求項５～８のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質の競合物質である光切断リンカー結合磁性粒子と、前記試料と、前記対象物質及び前記競合物質に特異的に結合可能な検出用分子と、を接触させ、前記検出用分子に前記対象物質と前記プローブ分子とを競合させて、前記光切断リンカー結合磁性粒子に前記検出用分子を捕捉させる捕捉工程と、
    　前記光切断リンカーを光切断して、前記磁性粒子から、前記検出用分子と前記プローブ分子とを含む複合体を遊離させて調製試料を得る遊離工程と、
    　前記調製試料中の前記複合体を検出することで前記対象物質を測定する測定工程と、
    を含む、測定方法。
  18. 　前記検出用分子が、標識物質で標識化された標識化検出用分子であり、かつ、前記複合体の検出が、前記標識物質による検出である、請求項１７に記載の測定方法。
  19. 　請求項１７又は１８に記載の試料中の対象物質を測定する測定方法に用いるためのキットであり、
    　請求項５～８のうちのいずれか一項に記載の光切断リンカー結合磁性粒子であり、かつ、前記プローブ分子が前記対象物質の競合物質である光切断リンカー結合磁性粒子
    を含む、キット。
  20. 　前記対象物質及び前記競合物質に特異的に結合可能な検出用分子が標識物質で標識化された標識化検出用分子をさらに含む、請求項１９に記載のキット。
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