WO2015005301A1 - ＰＧＦ２α含有マクサ抽出物 - Google Patents

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WO2015005301A1
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maxa
extract
alpha
ethanol
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久史 吉岡
鎌田　彰
浩司 織田
史生 國永
勇紀 小林
一貴 室田
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マルハニチロ株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to a red algae Properaceae genus Maxa extract, and more particularly to a PGF 2 ⁇ - containing Maxa ethanol extract.
  • Maxa The scientific name of Maxa is called Gelidium amansi and is classified into the red algae Probosidae genus Amanita (hereinafter sometimes referred to as “Red Algae genus Maxa”). I came.
  • maxa extract has a body fat reducing action (see Patent Document 1). It was also found that maxa methanol extract has an effect of improving bone metabolism (see Patent Document 2).
  • dinoprost (hereinafter referred to as PGF 2 ⁇ ), which is a kind of prostaglandin, has the following structure.
  • PGF 2 ⁇ is widely used in the medical field because it has a physiological effect (see Non-Patent Documents 2 and 3) such as a fat accumulation suppressing action (see Non-Patent Document 1), a uterine muscle contraction action and an intraocular pressure-lowering action. .
  • PGF 2 ⁇ has been reported to have a sex pheromone action in fish (see Non-Patent Documents 4 to 6) and an estrus synchronization action in livestock animals (see Non-Patent Documents 7 to 9). Research is being conducted to use it for the purpose of improving seed production efficiency in the field of livestock. Therefore, it is suggested that it may be widely used not only in the medical industry but also in various industries in the future.
  • prostaglandins including PGF 2 ⁇ are very unstable substances that are easily decomposed by heat or the like, a stabilization technique is desired, and several stabilization methods have been reported. ing. For example, a method of inclusion with cyclodextrin (see Patent Documents 3 and 4), a method of blending with an ammonio methacrylate copolymer (see Patent Document 5), and the like are known.
  • Patent Document 6 a method for enhancing chemical stability by adding polyethoxylated castor oil to a prostaglandin-containing pharmaceutical (see Patent Document 6), and making PGF 2 ⁇ an oil-in-water emulsion together with a medium-chain fatty acid triglyceride, a water-soluble polymer, and water A method (see Patent Document 7) has been reported.
  • JP 2003-160505 A JP 2012-201681 A JP-A-7-109254 JP-A-7-291865 Japanese Patent Laid-Open No. 11-35488 JP 2010-43131 A WO2005 / 044276 republication gazette
  • An object of the present invention is to provide a material that can easily obtain stabilized PGF 2 ⁇ and can be applied not only for medical purposes but also for food and drink, aquaculture feed, livestock feed, and the like. .
  • the present invention resides in a maxa aqueous ethanol extract containing PGF 2 ⁇ .
  • Another aspect of the present invention lies in a method for producing a maca extract containing PGF 2 ⁇ , wherein the red alga Tengusa is extracted with aqueous ethanol.
  • the ethanol concentration for extracting the red alga genus is preferably 40 to 80% by volume.
  • Yet another embodiment of the present invention lies in a method for stabilizing PGF 2 ⁇ , wherein the red alga genus is extracted with aqueous ethanol.
  • Still another embodiment of the present invention resides in a food containing a maxa aqueous ethanol extract containing the PGF 2 ⁇ .
  • Yet another embodiment of the present invention resides in a feed containing a maxa aqueous ethanol extract containing the PGF 2 ⁇ .
  • Yet another embodiment of the present invention resides in a pharmaceutical composition containing a maxa aqueous ethanol extract containing the PGF 2 ⁇ .
  • PGF 2.alpha are stabilized, since it is remarkably stable as compared to PGF 2.alpha purified product can be easily and universally applicable.
  • a PGF 2 ⁇ - purified product can be easily and easily used as a medicine or functional food that can be ingested and stored for a long period of time, or aquaculture feed or livestock feed, which is impossible due to its instability. It can be easily manufactured.
  • FIG. 1 is a diagram showing the results of a fat accumulation inhibitory activity evaluation test of mouse-derived 3T3-L1 adipocytes when various seaweed extracts are added as fat accumulation ratios.
  • FIG. 2 shows the results of the cytotoxicity evaluation test of mouse-derived 3T3-L1 adipocytes when a PGF 2 ⁇ - containing maxa extract was added to a dry weight concentration of 0.75, 7.5, 75 ⁇ g / ml. It is a figure represented by a survival rate.
  • FIG. 3 shows mice using water or an extract obtained by extracting PGF 2 ⁇ fraction from maxa using 20% by volume, 40% by volume, 60% by volume, 80% by volume hydrous ethanol or 100% by volume ethanol.
  • FIG. 4 shows that each sample containing PGF 2 ⁇ - containing red algae maxa extract or purified PGF 2 ⁇ sample is stored for 14 days in a room set at 25 ° C. as it is, and is included in each sample. It is a figure which shows the time-dependent change of the PGF2 ( alpha) storage stability rate when PGF2 ( alpha) quantity is 100%.
  • FIG. 5 shows each feed on the day when the storage was started when the feed containing the PGF 2 ⁇ - containing red alga maxa extract and the feed added with the purified PGF 2 ⁇ standard were stored in a room set at 25 ° C. for 14 days.
  • FIG. 6 shows C57BL / 6J mice fed with a high-fat feed, a high-fat plus PGF 2 ⁇ - containing red algae extract, and a high-fat plus purified PGF 2 ⁇ preparation. It is a figure which shows the time-dependent change of the increase rate of the body weight per ingested calorie.
  • FIG. 7 shows C57BL / 6J mice fed with a high-fat feed, a high-fat plus PGF 2 ⁇ - containing red algae extract, and a high-fat plus purified PGF 2 ⁇ standard.
  • the present invention relates to a stabilized PGF 2 ⁇ extract obtained by aqueous ethanol extraction of the red alga Tengusa.
  • the present invention will be described in more detail.
  • the seaweed was repeatedly washed while being stirred with water to remove salt and polysaccharides and then dried, and the dried product was pulverized to obtain dry powder of each seaweed.
  • the dry powder was extracted with ethanol and evaporated to dryness.
  • the PGF 2 ⁇ ELISA measurement kit for example, manufactured by Cayman Chemical Co.
  • each seaweed extract and dried product was measured only for the above-mentioned seaweed maxa extract. Contained PGF 2 ⁇ .
  • the obtained extract was evaluated using mouse-derived 3T3-L1 adipocytes with the effect of inhibiting fat accumulation as an index, and the physiological action of PGF 2 ⁇ could be confirmed. Further, no cytotoxicity was confirmed in the extract of the maca containing PGF 2 ⁇ , and it was confirmed that the fat accumulation inhibiting action was not a cytotoxicity but a physiological action of PGF 2 ⁇ .
  • the extraction method for obtaining the PGF 2 ⁇ - containing maxa extract of the present invention can be performed using ethanol or aqueous ethanol as an extraction solvent, and a maxa extract containing a significant amount of PGF 2 ⁇ can be easily obtained.
  • the maxa raw material used for extraction is subjected to a pretreatment for removing water-soluble fractions other than PGF 2 ⁇ such as salt and polysaccharides and water-insoluble impurities.
  • washing is performed with stirring for several minutes, and the same washing operation is repeated several times. C.) and dried overnight under conditions, and then pulverized to facilitate extraction of PGF 2 ⁇ .
  • the concentration of aqueous ethanol is 40% to 100%, preferably 40% to 80%, and most preferably 60%.
  • the extraction temperature is, for example, 4 ° C. to 80 ° C., preferably 25 ° C. to 78.2 ° C., more preferably 25 ° C.
  • the extraction time is, for example, 1 hour to 24 hours, preferably 15 hours.
  • the obtained PGF 2 ⁇ - containing maxa extract can be used as a raw material as it is for a predetermined application.
  • Both the PGF 2 ⁇ - containing maxa extract itself and the mixture of the extract and feed, etc. of the present invention are remarkably superior in storage stability as compared with the purified PGF 2 ⁇ product. That is, after the PGF 2 ⁇ purified product or the PGF 2 ⁇ - containing maxa extract was stored at room temperature for 2 weeks, the amount of PGF 2 ⁇ remaining was measured. As a result, it was confirmed that the purified PGF 2 ⁇ product was degraded to about 60% in 2 weeks, whereas about 90% of the PGF 2 ⁇ in the extract was remaining.
  • PGF 2 ⁇ exhibits the following various physiological actions.
  • Sex pheromone action in fish There is a report that PGF 2 ⁇ involved in maturation in fish is metabolized and excreted in urine, and exhibits a function as a sex pheromone (formal pheromone) that attracts mature males (non-patent literature) 4 and 5). Moreover, examination of the egg-laying inducing effect (nest egg-laying rate, number of eggs laid and average fertilization rate) by PGF 2 ⁇ using Chinese black sleeper ( Bostrichthys sinensis ) has been carried out (Non-patent Document 6). d.
  • PGF 2 ⁇ exhibits various physiological actions, and PGF 2 ⁇ is stabilized by extraction with maxa aqueous ethanol, so that many applications can be expected.
  • the maxa extract of the present invention can be applied to various uses in the form as it is or by mixing with other additives.
  • the food can be made into a functional food or drink having a fat accumulation-inhibiting action, an intraocular pressure-lowering action, etc.
  • the type of food or drink to be targeted is not particularly limited as long as the action of PGF 2 ⁇ , which is an active ingredient, does not inhibit the action of suppressing fat accumulation, the action of lowering intraocular pressure, and the like.
  • processed foods include, for example, confectionery and breads; flour and noodles; processed fishery products; processed agricultural and forestry foods; processed livestock products; milk and dairy products; processed fats and oils and fats; alcoholic beverages; Frozen foods; Retort foods; Instant foods; Seasoned and dried products such as seafood rice crackers; Salted products such as fish and egg salted products; Processed products: Steamed sea bream, grilled kamaboko, fried kamaboko, boiled kamaboko, flavored kamaboko, wrapping kamaboko, crafted kamaboko, smoked kamaboko and other kamaboko; Salted sea urchins such as sea urchin salt and squid salt; canned; bottled; fish soy sauce; extract products.
  • processed foods include, for example, confectionery and breads; flour and noodles; processed fishery products; processed agricultural and forestry foods; processed livestock products; milk and dairy products; processed fats and oils and fats; alcoholic beverages; Frozen foods; Retort foods;
  • the food / beverage products of the present invention include health food / beverage products, health supplement food / beverage products, foods for specified health use, nutritional functional foods, and the like.
  • the food for specified health use refers to a food or drink that is ingested for the purpose of specific health in the diet, and displays that the purpose of the health can be expected by the intake.
  • These foods and drinks are labeled with, for example, reducing body fat, alleviating obesity symptoms, foods for people who are concerned about body fat, reducing intraocular pressure, improving glaucoma, etc. Also good.
  • composition of the present invention as it is or by adding the composition to livestock feed, fish farming feed or pet food, or, for example, powders, granules, tablets, syrups, injections, drops , Powders, suppositories, suspensions, ointments, etc., and the feed or pet food or preparation is made into a feed or pet food or preparation for fish breeding or livestock or pet estrus synchronization
  • the type of feed or pet food to be used is not particularly limited as long as the physiological action of PGF 2 ⁇ as an active ingredient is not inhibited.
  • the feed or pet food of the present invention may be feed for livestock and poultry such as cattle, pigs and chickens, aquaculture feed such as crustaceans and seafood, and pets such as dogs, cats, hamsters and squirrels Pet food may be used and is not particularly limited.
  • the form of the feed or pet food of the present invention is not particularly limited. For example, pellet type, crumble type, flake type, bulky type, dry type, wet type, semi-moist type, biscuit type, sausage type, jerky type, powder type , Granule type, capsule type and the like.
  • the form of the pharmaceutical preparation is not particularly limited. Examples include powders, granules, tablets, syrups, injections, drops, powders, suppositories, suspensions, ointments and the like.
  • the composition of the present invention may be administered orally, or may be administered parenterally, such as intravenous injection, intramuscular injection, subcutaneous administration, rectal administration, or transdermal administration.
  • the composition may contain additives such as excipients, disintegrants, binders, lubricants, and colorants. Examples of excipients include lactose, glucose, corn starch, sorbit, and crystalline cellulose.
  • disintegrants examples include starch, sodium alginate, gelatin powder, calcium carbonate, calcium citrate, and dextrin.
  • binders include dimethylcellulose.
  • the pharmaceutical preparation of the present invention varies depending on the dosage form, but usually about 0.01 to 10 mg of PGF 2 ⁇ is contained in the whole preparation as a dry weight.
  • a maxa extract containing PGF 2 ⁇ as an active ingredient is usually contained in an amount of about 0.1 to 10% by weight, preferably about 1 to 3% by weight in the whole preparation.
  • the dose is appropriately determined according to each case in consideration of the age, weight, sex, disease difference, symptom level, etc. of the patient, and may be administered once or several times a day.
  • PGF 2.alpha is 0.01 ⁇ 10 mg as a dry weight
  • MAXA extract containing PGF 2.alpha as active ingredient 0.1 g ⁇ 10 g, preferably may be ingested about 1 g ⁇ 3 g.
  • Example 1 Measurement of PGF 2 ⁇ content in seaweed
  • Each seaweed (Brown algae Honda walla hinoki, Brown algae Nissan walla akamoku, Brown algae Nissan walla sawtooth mushroom, Brown algae Hyundai walla spruce, Brown algae wakame hirome, Brown algae wakame genus wakame , Brown algae Kajime Kajime, brown algae Kajime kurome, brown algae Tosakanori Tosakanori, brown algae Fukuronori genus Fukuronori, brown algae Kagomenori genus Kagomenori, brown algae Sugime Susume, brown algae Algae sagarame, green algae
  • water-soluble fractions other than PGF 2 ⁇ and water-insoluble impurities such as salinity and polysaccharides from (Mukadenori spp. Washing was performed with stirring for 3 minutes, and the same washing operation was repeated three times. After drying overnight under the conditions of, and pulverized using a pulverizer to make it
  • Example 2 Confirmation test of physiological action inherent to PGF 2 ⁇ using fat accumulation inhibitory activity as an index
  • Mouse-derived 3T3-L1 preadipocytes were cultured under conditions of 37 ° C, 5% CO 2 and 100% humidity.
  • the culture medium used was a DMEM medium (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) containing 10% fetal bovine serum (hereinafter referred to as FBS), and cells that reached a confluent state of 70-80% were used.
  • FBS fetal bovine serum
  • Example 2 In the fat accumulation inhibitory activity evaluation test, 0.5 mM 3-isobutyl-1-methylxanthine, 0.25 mM dexamethasone, 10 ⁇ g / ml insulin and extraction extracted from each seaweed in the same manner as in Example 1 were used in the culture medium. 100% ethanol was added to the dried product (hereinafter referred to as test sample) or the control group and cultured for 2 days to induce differentiation of mouse-derived 3T3-L1 preadipocytes into adipocytes. Two days later, 10 ⁇ g / ml insulin and 100 vol% ethanol were added to the culture medium and the test sample or control group was changed. The same medium exchange operation is performed until the 8th day after differentiation induction, and neutral fat accumulated in 3T3-L1 adipocytes in 8 days is quantified using a primary cell Lipit assay kit. did.
  • Example 3 Measurement of cell viability of PGF 2 ⁇ - containing red algae maxa extract
  • Mouse-derived 3T3-L1 adipocytes diluted to the same concentration as in Example 2 were dispensed into a 96-well culture plate at 0.1 ml / well. Incubated overnight at 37 ° C., 5% CO 2 , 100% humidity.
  • the cell surface was washed with 1 ml / well of PBS, and then the dried solid product of PGF 2 ⁇ - containing red algae maxa extracted by the same operation as in Example 1 was added to 0.75, 7.5, MT Buffer added at a dry weight concentration of 75 ⁇ g / ml was added by 100 ⁇ l / well, and incubated at 37 ° C., 5% CO 2 , 100% humidity for 40 minutes.
  • MT Buffer containing 0.5% ethanol was added to a control group that did not receive fat accumulation suppression.
  • Example 4 Selection of optimal water-containing ethanol concentration at the time of PGF 2 ⁇ extraction
  • water or 20% by volume or 40% by volume or 60% by volume or 80% by volume aqueous ethanol or dryness extracts PGF 2.alpha fraction from the dry powder of red algae MAXA the same manner as in example 1 using a 100 volume% of ethanol, PGF 2.alpha containing red Algal maxa extract was obtained.
  • the physiological action inherent to PGF 2 ⁇ was confirmed in the same manner as in Example 2 using the fat accumulation inhibitory activity as an index.
  • FIG. No accumulation inhibitory activity was observed, and only the red alga maxa extract extracted with 40 vol% to 80 vol% hydrous ethanol or 100 vol% ethanol exhibited fat accumulation inhibitory activity.
  • Example 5 Storage stability confirmation test of PGF 2 ⁇ and purified PGF 2 ⁇ sample in PGF 2 ⁇ - containing red algae maxa extract PGF 2 ⁇ was most efficiently extracted from red algae maxa in the same manner as in Example 4.
  • the PGF 2 ⁇ - containing red algae maxa extract or purified PGF 2 ⁇ preparation (manufactured by Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.) was stored as it was in a room set at 25 ° C.
  • PGF 2.alpha contained PGF 2.alpha containing red algae MAXA extracts or purified PGF 2.alpha preparation was stored in the same manner as in Example 1 the amount was measured, when the PGF 2.alpha amount included in the date of commencement of storage as 100% was compared with PGF 2.alpha amount remaining in after each retention period.
  • PGF 2.alpha PGF 2.alpha the content contained in red algae MAXA extracts are remained 90% or more even after storage for 14 days at 25 ° C.
  • purified PGF 2.alpha preparation Was stored as it was, it decomposed to about 60%. That, PGF 2.alpha contained PGF 2.alpha containing red algae MAXA extract was found to be stable even 1.5 times than storing the purified PGF 2.alpha preparation as it is.
  • Example 6 mixing PGF 2.alpha containing red algae MAXA extracts of midsole PGF 2.alpha and purification PGF 2.alpha most efficiently PGF 2.alpha from red algae MAXA in preparation storage stability confirmation test
  • Example 4 The same procedure PGF 2 ⁇ - extracted PGF 2 ⁇ is extracted most efficiently by the same procedure as in Example 4 or a mixture obtained by adding 1% (w / w) of a PGF 2 ⁇ - containing red alga maxa extract to feed (Oriental Yeast Co., Ltd.)
  • the purified PGF 2 ⁇ preparation manufactured by Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.
  • PGF 2.alpha contained in the mixture containing a mixture or purified PGF 2.alpha preparation containing PGF 2.alpha containing red algae MAXA extracts were stored at the same operations as in Example 1 the amount was measured, when the PGF 2.alpha amount included in the date of commencement of storage as 100% was compared with PGF 2.alpha amount remaining in after each retention period.
  • PGF 2.alpha contained in the mixture with the addition of PGF 2.alpha containing red algae MAXA extract remaining 80% even after storage for 7 days at 25 ° C. purified PGF 2 ⁇ PGF 2 ⁇ in the mixture preparation was added as it got to decompose up to about 30%. That is, the PGF 2.alpha contained PGF 2.alpha containing red algae MAXA extract even when added to the mixture, it was found to be stable 3 times or more while adding purified PGF 2.alpha preparation directly to the mixture.
  • Example 7 High-fat diet load test using C57BL / 6J mice A high-fat diet (produced by Oriental Yeast Co., Ltd.) was freely given to 4-week-old C57BL / 6J male mice acclimated for 1 week for 9 weeks. Ingested (hereinafter referred to as control group). Alternatively, a diet containing 1% (w / w) of PGF 2 ⁇ - containing red algae extract extracted from PGF 2 ⁇ most efficiently extracted in the same manner as in Example 4 was fed freely to a high fat diet for 9 weeks ( Hereinafter, referred to as a PGF 2 ⁇ - containing maca extract intake group).
  • purification of the same amount as the amount of PGF 2 ⁇ contained in 1% (w / w) of PGF 2 ⁇ - containing red algae maxa extract obtained by extracting PGF 2 ⁇ most efficiently in the same manner as in Example 4 in a high fat diet The feed supplemented with the PGF 2 ⁇ standard was freely ingested for 9 weeks (hereinafter referred to as a purified PGF 2 ⁇ standard intake group). Each group was fed every week, and simultaneously the amount of feed, the amount of remaining food, and the body weight were measured. After free intake for 9 weeks, dissection was performed, and visceral fat around the testicles was collected and weighed.
  • the PGF 2 ⁇ - containing red algae maxa extract-ingested group continued to receive body weight throughout the 9-week period of the test compared to the control group or the purified PGF 2 ⁇ standard-ingested group.
  • the increase was suppressed, and it was found that the physiological function inherent to PGF 2 ⁇ was firmly exhibited.
  • the purified PGF 2 ⁇ standard intake group suppression of weight gain was finally confirmed 9 weeks after the start of the test, and as revealed in Example 6, the purified PGF 2 ⁇ standard was used as it was. It was found that even if added to the feed in a state, it cannot be stably present and decomposes, so that the physiological function inherent to PGF 2 ⁇ cannot be effectively exhibited.
  • the PGF 2 ⁇ - containing red algae extract extract group suppressed the accumulation of visceral fat around the testicles 9 weeks after the test, and exhibited the inherent physiological functions of PGF 2 ⁇ .
  • the purified PGF 2 ⁇ standard intake group had no change in the amount of visceral fat around the testicles compared to the control group, and the purified PGF 2 ⁇ standard was fed as it was. It was confirmed that the physiological function inherent to PGF 2 ⁇ could not be exerted well because it could not exist stably even if added to the product and decomposed.

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Abstract

　安定化したＰＧＦ２αを容易に入手でき、医療用ばかりでなく、養殖用飼料、家畜用飼料等に簡便且つ汎用的に応用できる材料を提供すること。　ＰＧＦ２αを含有するマクサ水性エタノール抽出物。

Description

ＰＧＦ２α含有マクサ抽出物
　本発明は紅藻類テングサ科テングサ属マクサ抽出物に関し、特に詳細には、ＰＧＦ２α含有マクサエタノール抽出物に関する。
　マクサの学名はＧｅｌｉｄｉｕｍ　ａｍａｎｓｉｉと称し、紅藻類テングサ目テングサ科テングサ属に分類され（以下、マクサを「紅藻類テングサ属マクサ」と称することがある）、「ところてん」の食料原料として古くから使用されてきた。
　近年、マクサ抽出物を使用した医薬用途、飼料用途、機能性食品用途等への開発が行われている。例えば、マクサ常温水抽出物に体脂肪減少作用があることが見出された（特許文献１参照）。また、マクサメタノール抽出物に骨代謝を改善する作用があることが見出された（特許文献２参照）。
　一方、プロスタグランジンの１種であるジノプロスト（以下、ＰＧＦ２αと称する）は、下記のような構造を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
　ＰＧＦ２αは、脂肪蓄積抑制作用（非特許文献１参照）、子宮筋収縮作用や眼圧降下作用などの生理作用（非特許文献２、３参照）を持つことから医療分野に広く利用されている。また、近年、ＰＧＦ２αは、魚類における性フェロモン作用（非特許文献４～６参照）、家畜動物おける発情同期化作用（非特許文献７～９参照）を有することが報告されており、養殖や家畜の分野で種苗生産の効率化を目的として利用するための研究が行われている。したがって、今後、医療業界だけでなく様々な産業で広く利用される可能性が示唆されている。しかし、ＰＧＦ２αを含むプロスタグランジン類は、熱などで容易に分解されてしまうなど非常に不安定な物質であることから、安定化する技術が望まれ、幾つかの安定化方法が報告されている。例えば、シクロデキストリンで包摂する方法（特許文献３、４参照）や、アンモニオメタクリレートコポリマーと配合する方法（特許文献５参照）等が知られている。さらに、プロスタグランジン含有医薬品にポリエトキシ化ひまし油を配合し化学的安定性を増強させる方法（特許文献６参照）、ＰＧＦ２αを中鎖脂肪酸トリグリセリド、水溶性高分子、水と共に水中油型エマルションとする方法（特許文献７参照）が報告されている。
　しかし、これらの方法では依然として不充分であり、安定化したＰＧＦ２αを容易に入手でき、医薬用ばかりでなく、養殖用飼料、家畜用飼料等に簡便で且つ汎用的に応用できる材料が望まれている。
特開２００３－１６０５０５号公報 特開２０１２－２０１６８１号公報 特開平７－１０９２５４号公報 特開平７－２９１８６５号公報 特開平１１－３５４８８号公報 特開２０１０－４３１３１号公報 ＷＯ２００５／０４４２７６号再公表公報
Ｔｈｅ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ　Ｖｏｌ．２７３．Ｎｏ．４　ｐ１８５５－１８５８（１９９８） 第十六改正日本薬局方解説書第一部医薬品各条Ｃ－１９４２、ジノプロスト、２０１１年、廣川書店 Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ　Ｖｉｓｕａｌ　 Ｓｃｉｅｎｃｅ、Ｖｏｌ．１６、１１２５－１１３４（１９７２） 魚類学会誌　５４（２）、１０５－１２０（２００７） Ｆｉｓｈ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ　２８：２２９－２３５（２００３） Ｈａｉｙａｎｇ　ｙｕ　Ｈｕｚｈａｏ（海洋与湖沼）　Ｖｏｌ．３７，Ｎｏ．６，５４１－５４７（２００６） 農業研究機構ＨＰ：「偽妊娠誘起を応用したブタの発情同期化法」（http://www.naro.affrc.go.jp/project/results/laboratory/niah/2011/170c1_01_29.html） 社団法人畜産技術協会ＨＰ：「プロスタグランジンＦ２αを用いた雌豚の発情同期化技術」（http://jlta.lin.gr.jp/report/techinfo/houkoku/h13_120.html） 愛知農総試研報　３８：１６１－１６６（２００６）
　本発明の課題は、安定化したＰＧＦ２αを容易に入手でき、医療用ばかりでなく、飲食品用、養殖用飼料、家畜用飼料等に簡便且つ汎用的に応用できる材料を提供することにある。
　本発明者らは、鋭意検討を行った結果、紅藻類テングサ属マクサの水性エタノール抽出物中に安定化されたＰＧＦ２αが含まれていることを見出し、本発明を完成した。
　すなわち、本発明は、ＰＧＦ２αを含有するマクサ水性エタノール抽出物にある。
　本発明の別の態様は、紅藻類テングサ属マクサを水性エタノールで抽出することを特徴とする、ＰＧＦ２αを含有するマクサ抽出物の製造方法にある。ここで、紅藻類テングサ属を抽出するためのエタノール濃度は４０～８０容量％であることが好ましい。
　本発明のさらに別の態様は、紅藻類テングサ属を水性エタノールで抽出することを特徴とする、ＰＧＦ２αの安定化方法にある。
　本発明のさらに別の態様は、前記ＰＧＦ２αを含有するマクサ水性エタノール抽出物含有食品にある。
　本発明のさらに別の態様は、前記ＰＧＦ２αを含有するマクサ水性エタノール抽出物含有飼料にある。
　本発明のさらに別の態様は、前記ＰＧＦ２αを含有するマクサ水性エタノール抽出物含有医薬組成物にある。
　本発明のＰＧＦ２αを含有するマクサ水性エタノール抽出物は、ＰＧＦ２αが安定化されており、ＰＧＦ２α精製品と比較して顕著に安定であるため、簡便且つ汎用的に応用できる。例えばＰＧＦ２α精製品ではその不安定さから不可能であった、経口摂取が可能であって長期間保存しておくことの出来る薬剤や機能性食品、または養殖用飼料や家畜用飼料を簡便且つ容易に製造することが出来る。
図１は、様々な海藻抽出物を添加した場合のマウス由来３Ｔ３－Ｌ１脂肪細胞の脂肪蓄積抑制活性評価試験の結果を脂肪蓄積率として表す図である。 図２は、ＰＧＦ２α含有マクサ抽出物を０．７５、７．５、７５μｇ／ｍｌの乾燥重量濃度となるように添加した場合のマウス由来３Ｔ３－Ｌ1脂肪細胞の細胞毒性評価試験の結果を細胞生存率で表す図である。 図３は、水または２０容量％、４０容量％、６０容量％、８０容量％の含水エタノール、１００容量％エタノールを用いて、マクサからＰＧＦ２α画分を抽出した抽出物を用いた場合のマウス由来３Ｔ３－Ｌ１脂肪細胞の脂肪蓄積抑制活性評価試験の結果を脂肪蓄積率として表す図である。 図４は、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物または精製ＰＧＦ２α標品をそのままの状態で２５℃に設定した室内で１４日間保存した場合の、保存を開始した日に各試料に含まれているＰＧＦ２α量を１００％とした場合のＰＧＦ２α保存安定率の経時的な変化を示す図である。 図５は、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物を添加した飼料、精製ＰＧＦ２α標品をそのまま添加した飼料を２５℃に設定した室内で１４日間保存した場合の、保存を開始した日の各飼料に含まれているＰＧＦ２α量を１００％とした場合のＰＧＦ２α保存安定率の経時的な変化を示す図である。 図６は、高脂肪を添加した飼料、高脂肪に加えてＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物を添加した飼料、高脂肪に加えて精製ＰＧＦ2α標品を添加した飼料をＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスに与えた場合の摂取カロリー当たりの体重の増加率の経時的な変化を示す図である。 図７は、高脂肪を添加した飼料、高脂肪に加えてＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物を添加した飼料、高脂肪に加えて精製ＰＧＦ2α標品を添加した飼料をＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスに与えた場合の１００ｇ体重当たりの内臓脂肪量を示す図である。
　本発明は、上述したように、紅藻類テングサ属マクサの水性エタノール抽出した安定化されたＰＧＦ２α抽出物に関するものである。以下、本発明についてさらに詳細に説明する。
　多くの海藻類、すなわち、褐藻類ホンダワラ属ヒジキ、褐藻類ホンダワラ属アカモク、褐藻類ホンダワラ属ノコギリモク、褐藻類ホンダワラ属オオバモク、褐藻類ワカメ属ヒロメ、褐藻類ワカメ属ワカメ、褐藻類カジメ属カジメ、褐藻類カジメ属クロメ、褐藻類トサカノリ属トサカノリ、褐藻類フクロノリ属フクロノリ、褐藻類カゴメノリ属カゴメノリ、褐藻類スジメ属スジメ、褐藻類アラメ属サガラメ、緑藻類アオサ属アナアオサ、紅藻類ムカデノリ属ムカデノリ、紅藻類アマノリ属スサビノリ、紅藻類テングサ属マクサをエタノール抽出したところ、マクサ抽出物のみにＰＧＦ２αが検出され、その含有量は実用に足る有意量含まれていることが分かった。すなわち、上記海藻類を、水を用いて攪拌しながら洗浄を繰り返し、塩分や多糖類を除去した後乾燥し、乾燥物を粉砕し、各海藻の乾燥粉末を得た。当該乾燥粉末を、エタノールを用いて抽出した後、蒸発乾固した。各海藻の抽出乾固物を、ＰＧＦ２αＥＬＩＳＡ測定キット（例えば、Ｃａｙｍａｎ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ社製）を使用して、抽出乾固物中のＰＧＦ２αの含量を測定したところ、上記海藻中マクサ抽出物にのみにＰＧＦ２αが含まれていた。
　得られたマクサ抽出物を、マウス由来３Ｔ３－Ｌ１脂肪細胞を使用して、脂肪蓄積抑制作用を指標に評価したところ、ＰＧＦ２αが有する生理作用を確認することができた。また、ＰＧＦ２αを含有するマクサ抽出物に細胞毒性は確認されず、前記脂肪蓄積抑制作用は細胞毒性などではなくＰＧＦ２αの有する生理作用であることが確認された。
　本発明のＰＧＦ２α含有マクサ抽出物を得るための抽出方法は、抽出溶媒としてエタノールまたは水性エタノールを使用して行うことができ、ＰＧＦ２αを有意量含有するマクサ抽出物を容易に得ることができる。例えば、抽出に用いるマクサ原料は、塩分や多糖類などのＰＧＦ２α以外の水溶性画分や水不溶性不純物を除去するための前処理を行う。例えば、水溶性画分や水不溶性の不純物を除去するのに足る量の水を使用して、数分間攪拌しながら洗浄を行い、同様の洗浄操作を数回繰り返した後、常温（例えば、２５℃）条件下で一晩乾燥させた後、ＰＧＦ２αを抽出しやすいように粉砕する。
　水性エタノールの濃度は、４０％～１００％であり、好ましくは、４０％～８０％であり、最も好ましくは、６０％である。抽出温度は、例えば、４℃～８０℃、好ましくは２５℃～７８．２℃、さらに好ましくは２５℃である。抽出時間は、例えば、１時間～２４時間、好ましくは１５時間である。
　得られたＰＧＦ２α含有マクサ抽出物は所定の用途にそのまま原料として使用できる。
　本発明の、ＰＧＦ２α含有マクサ抽出物そのものおよび該抽出物と飼料等との混合物双方ともＰＧＦ２α精製品と比較して、保存安定性が顕著に優れている。すなわち、ＰＧＦ２α精製品またはＰＧＦ２α含有マクサ抽出物を常温で２週間保存した後、残存しているＰＧＦ２α量を測定した。その結果、ＰＧＦ２α精製品は２週間でおよそ６割程度まで分解してしまったのに対してマクサ抽出物中のＰＧＦ２αは９割程度残存していることが確認された。また、ＰＧＦ２α精製品またはＰＧＦ２α含有マクサ抽出物を動物用飼料に混合すると、ＰＧＦ２α精製品含有飼料は２週間で３割程度まで分解してしまったのに対し、ＰＧＦ２α含有マクサ抽出物含有飼料は８割程度残存することが確認された。
　上述したように、ＰＧＦ２αは下記のような種々の生理作用を示す。
ａ．脂肪蓄積抑制作用
　脂肪細胞分化におけるマスターレギュレーターのＰＰＡＲγに作用して、前駆脂肪細胞から脂肪細胞への分化を抑制することで脂肪蓄積を抑制する（非特許文献１）。
ｂ．眼圧降下作用および子宮筋収縮作用
　子宮筋収縮作用を利用した心痛の誘発や促進、分泌促進の目的で注射液として利用されている（非特許文献２）。また、眼圧降下作用を利用した緑内障や高眼圧症治療の目的で点眼薬としても利用されている(非特許文献３)。
ｃ．魚類における性フェロモン作用
　魚類において体内で成熟に関わったＰＧＦ２αが代謝されて尿中に排出され、成熟雄を誘引する性フェロモン（ホルモナルフェロモン）としての機能を示すという報告がある（非特許文献４および５）。また、Ｃｈｉｎｅｓｅ　ｂｌａｃｋ　ｓｌｅｅｐｅｒ（Ｂｏｓｔｒｉｃｈｔｈｙｓ　ｓｉｎｅｎｓｉｓ）を用いたＰＧＦ２αによる産卵誘発作用（巣産卵率、産卵数および平均受精率）の検討が実施されている（非特許文献６）。
ｄ．家畜における発情同期化作用
　家畜動物（特にブタ）において、生産効率の向上や飼育管理のシステム化のため、雄の個々の発情時期を同期化する技術開発が行われており、発情の同期化作用を持つＰＧＦ２αが用いられている（非特許文献７～９）。
　このようにＰＧＦ２αは多様の生理作用を示し、マクサ水性エタノール抽出により、ＰＧＦ２αは安定化されているので、多くの応用が期待できる。
　すなわち、本発明のマクサ抽出物は、そのままの形態で、あるいは他の添加剤と混合して製剤化することにより様々な用途に応用することができる。
　例えば、本発明のマクサ抽出物をそのまま、または当該抽出物を加工食品に添加することによって、当該食品を脂肪蓄積抑制作用、眼圧降下作用などを有する機能性飲食品にすることができるが、対象となる飲食品の種類は、活性成分であるＰＧＦ２αの脂肪蓄積抑制作用、眼圧降下作用などが阻害されないものであれば特に限定されない。
　加工食品の例として、例えば、菓子・パン類；穀粉・麺類；水産加工品；農産・林産加工食品；畜産加工品；乳・乳製品；油脂・油脂加工品；酒類；飲料；調味料；調理冷凍食品；レトルト食品；インスタント食品；魚介せんべいなどの調味乾燥品；魚卵塩蔵品などの塩蔵品；甘露煮、しぐれ煮、角煮などの佃煮；焼き加工品；茹で加工品；魚介味噌などの調味加工品；蒸しかまぼこ、焼きかまぼこ、揚げかまぼこ、茹でかまぼこ、風味かまぼこ、包装かまぼこ、細工かまぼこ、燻製かまぼこなどのかまぼこ；醤油漬、味噌漬、粕漬、酢漬、麹漬などの漬け物；かつお塩辛、うに塩辛、いか塩辛などの塩辛；缶詰；瓶詰；魚醤油；エキス製品などが挙げられる。
　本発明の飲食品は、健康飲食品、健康補助飲食品、特定保健用食品、栄養機能食品、等を含む。ここで、特定保健用食品とは、食生活において特定の保健の目的で摂取をし、その摂取により当該保健の目的が期待できる旨の表示をする飲食品をいう。これらの飲食品には、例えば、体脂肪を減少する、肥満症の症状を緩和する、体脂肪が気になる方の食品、眼圧を下げる、緑内障を改善するなどの表示が付されていてもよい。
　本発明の組成物をそのまま、または当該組成物を家畜用飼料、魚類養殖用飼料またはペットフードに添加することによって、または、例えば、粉末剤、顆粒剤、錠剤、シロップ剤、注射剤、点滴剤、散剤、座剤、懸濁剤、軟膏剤等の剤型に製剤化して、当該飼料もしくはペットフードまたは製剤を、魚類繁殖用または家畜もしくはペット発情同期化作用を有する飼料もしくはペットフードまたは製剤にすることができるが、対象となる飼料またはペットフード等の種類は、活性成分であるＰＧＦ２αの生理作用が阻害されないものであれば特に限定されない。
　本発明の飼料またはペットフードは、牛、豚、鶏等の家畜・家禽用飼料、甲殻類や魚介類等の養殖用飼料であってもよいし、犬、猫、ハムスター、リス等の愛玩動物用ペットフードであってもよく、特に限定されない。本発明の飼料またはペットフードの形態は特に限定されることはなく、例えばペレットタイプ、クランブルタイプ、フレークタイプ、バルキータイプ、ドライタイプ、ウェットタイプ、セミモイストタイプ、ビスケットタイプ、ソーセージタイプ、ジャーキータイプ、粉末タイプ、顆粒タイプ、カプセルタイプなどが挙げられる。
　本発明のマクサ抽出物を医薬用途に使用するとき、当該医薬製剤の形態は特に限定されない。例えば、粉末剤、顆粒剤、錠剤、シロップ剤、注射剤、点滴剤、散剤、座剤、懸濁剤、軟膏剤などが挙げられる。本発明の組成物は、経口で投与してもよく、また静注、筋注、皮下投与、直腸投与、経皮投与等の非経口で投与してもよい。該組成物は、賦形剤、崩壊剤、結合剤、滑沢剤、着色剤等の添加剤を含んでいても良い。賦形剤としては例えば乳糖、ブドウ糖、コーンスターチ、ソルビット、結晶セルロースなどが、崩壊剤としては例えばデンプン、アルギン酸ナトリウム、ゼラチン末、炭酸カルシウム、クエン酸カルシウム、デキストリンなどが、結合剤としては例えばジメチルセルロース、ポリビニルアルコール、ポリビニルエーテル、メチルセルロース、エチルセルロース、アラビアゴム、ゼラチン、ヒドロキシプロピルセルロース、ポリビニルピロリドンなどが、滑沢剤としては例えばタルク、ステアリン酸マグネシウム、ポリエチレングリコール、硬化植物油などがそれぞれ挙げられる。
　本発明の医薬製剤は、その剤型に応じて異なるが、通常全製剤中にＰＧＦ２αが乾燥重量として０．０１～１０ｍｇ程度含まれている。また、ＰＧＦ２αを活性成分として含むマクサ抽出物は、通常全製剤中に０．１～１０重量％、好ましくは１～３重量％程度含まれている。
　投与量は患者の年齢、体重、性別、疾患の相違、症状の程度などを考慮して、個々の場合に応じて適宜決定され、1日1回又は数回に分けて投与すればよい。例えば、一日当たり、ＰＧＦ２αが乾燥重量として０．０１～１０ｍｇ、ＰＧＦ２αを活性成分として含むマクサ抽出物は０．１ｇ～１０ｇ、好ましくは１ｇ～３ｇ程度摂取すればよい。
　以下に実施例を記載して本発明をさらに具体的に説明する。ただし、これらの実施例によって、本発明の範囲は限定的に解釈されることはない。
　（実施例１）　海藻中のＰＧＦ2α含量測定
各海藻（褐藻類ホンダワラ属ヒジキ、褐藻類ホンダワラ属アカモク、褐藻類ホンダワラ属ノコギリモク、褐藻類ホンダワラ属オオバモク、褐藻類ワカメ属ヒロメ、褐藻類ワカメ属ワカメ、褐藻類カジメ属カジメ、褐藻類カジメ属クロメ、褐藻類トサカノリ属トサカノリ、褐藻類フクロノリ属フクロノリ、褐藻類カゴメノリ属カゴメノリ、褐藻類スジメ属スジメ、褐藻類アラメ属サガラメ、緑藻類アオサ属アナアオサ、紅藻類ムカデノリ属ムカデノリ、紅藻類アマノリ属スサビノリ、紅藻類テングサ属マクサ）から塩分や多糖類などのＰＧＦ２α以外の水溶性画分や水不溶性の不純物を除去する目的で、１５倍量の水を用いて３分間撹拌しながら洗浄を行い、同様の洗浄操作を３回繰り返した後、２５℃の条件下で一晩乾燥させたのち、ＰＧＦ２αを抽出しやすいように粉砕機を用いて粉砕し各海藻の乾燥粉末を作製した。
　次に、作製した各海藻乾燥粉末の乾燥重量の１５倍量の１００容量％のエタノールを用いて撹拌しながら、２５℃の条件下で一晩抽出した。その後、吸引濾過して不溶物を除去して得られた抽出液を、ロータリーエバポレーターを用いて乾固させることで、脂溶性成分を含む抽出乾固物を得た。この各海藻の抽出乾固物に含まれるＰＧＦ２α量をＰＧＦ２α ＥＬＩＳＡ測定キット（Ｃａｙｍａｎ社製）を用いて測定したところ、表１に示す通り、様々な海藻の中で紅藻類テングサ属マクサにのみＰＧＦ２αが含まれ、しかも実用的に有意な量で含有されていることが分かった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　（実施例２)　脂肪蓄積抑制活性を指標にしたＰＧＦ２αが本来持つ生理作用の確認試験
　マウス由来３Ｔ３－Ｌ1前駆脂肪細胞を３７℃、５％ＣＯ２、１００％湿度の条件下で培養した。培養培地は、１０％のウシ胎児血清（Ｆｅｔａｌ　ｂｏｖｉｎｅ　ｓｅｒｕｍ；以降ＦＢＳと記載する）を含むＤＭＥＭ培地（和光純薬工業（株）製）を用い、７０～８０％のコンフルエント状態に達した細胞を、０．２５％トリプシン－１ｍＭＥＤＴＡ－４Ｎａ溶液(和光純薬工業（株）製)を用いて剥がし、培養培地を用いて１０倍に希釈したものを、表面にコラーゲンIが塗布された２４Ｗｅｌｌのプレート（日本ベクトン・ディッキンソン社製）に捲き込み、捲き込んだ２日後に培地交換して更に１日間培養した細胞を試験に用いた。脂肪蓄積抑制活性評価試験では、培養培地に０．５ｍＭの３－イソブチル－１－メチルキサンチン、０．２５ｍＭのデキサメタゾン、１０μｇ／ｍｌのインスリンと実施例１と同様の操作で各海藻から抽出した抽出乾固物（以降被験サンプルと記載する）又はコントロール群には１００容量％のエタノールを添加して２日間培養し、マウス由来３Ｔ３－Ｌ１前駆脂肪細胞の脂肪細胞への分化誘導を行った。２日後、培養培地に１０μｇ／ｍｌのインスリンと被験サンプルまたはコントロール群には１００容量％のエタノールを添加して培地交換を行った。同様の培地交換操作を、分化誘導を行ってから８日目まで行い、８日間に３Ｔ３－Ｌ1脂肪細胞内に蓄積された中性脂肪を、プライマリーセル社製のリピットアッセイキットを用いて定量した。
　また、効果の評価に際して、分散分析を行い群間において統計学的に有意な差が認められた場合について、Ｄｕｎｎｅｔｔの方法を用いた多重比較の検定を行った。統計学的に有意な差がある群については、５％の有意水準において有意な差が認められた場合は図表中に記号「＊」を、１％の有意水準において有意な差が認められた場合は図表中に記号「＊＊」を付した。以降全ての実施例において同様の検定を行った。
　その結果、図１に示す通り、実施例１によって明らかとなったＰＧＦ２αを含有する紅藻類マクサ抽出物を添加した群のみ、ＰＧＦ２αが本来持つ脂肪蓄積抑制活性を示すこと明らかとなり、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物中のＰＧＦ２αであってもＰＧＦ２αが本来持つ生理作用を発揮出来ることが明らかとなった。
　（実施例３）ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物の細胞生存率測定
　実施例２と同様の濃度に希釈したマウス由来３Ｔ３－Ｌ１脂肪細胞を９６ウェル培養プレートに０．１ｍｌ/ウェルずつ分注して３７℃、５％ＣＯ２、１００％湿度条件下で一晩培養した。培養上清を除去した後、１ｍｌ/ウェルのＰＢＳで細胞表面を洗浄したのち、実施例1と同様の操作で抽出したＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出乾固物を０．７５、７．５、７５μｇ／ｍｌの乾燥重量濃度で添加したＭＴ　Ｂｕｆｆｅｒを１００μｌ/ウェルずつ添加し、３７℃、５％ＣＯ２、１００％湿度条件下で４０分間インキュベーションした。また、脂肪蓄積抑制を受けないコントロール群には０．５％のエタノールを含むＭＴ　Ｂｕｆｆｅｒを添加した。４０分のインキュベーション後、ＷＳＴ－１試薬（(株)同仁化学研究所製）を１０μｌ/ウェルずつ添加し、３７℃、５％ＣＯ２、１００％湿度条件下で３０分間インキュベーションした。インキュベーション終了後、室温にて１０分間静置したのち４５０ｎｍの吸光度を測定することで細胞生存率を評価した。
　その結果、図２に示す通り、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出乾固物を添加したいずれの細胞群においても細胞生存率の低下は認められず、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出乾固物による脂肪蓄積抑制活性は細胞毒性によるものではなく、ＰＧＦ２αが本来持つ生理作用が発揮されたものであることが明確になった。
　（実施例４）ＰＧＦ２α抽出時の最適な含水エタノール濃度の選定
　紅藻類マクサからＰＧＦ２αを効率的に抽出することの出来る含水エタノール濃度を選定するため、水または２０容量％または４０容量％または６０容量％または８０容量％の含水エタノールまたは１００容量％のエタノールを用いて実施例１と同様の操作により紅藻類マクサの乾燥粉末からＰＧＦ２α画分を抽出して乾固し、ＰＧＦ2α含有紅藻類マクサ抽出物を得た。この各抽出物について、実施例２と同様にして脂肪蓄積抑制活性を指標にＰＧＦ2αの本来持つ生理作用を確認した結果、図３に示す通り、水及び２０容量％含水アルコール抽出物には脂肪蓄積抑制活性はまったく認められず、４０容量％～８０容量％の含水エタノールまたは１００容量％のエタノールを用いて抽出した紅藻類マクサ抽出物のみ脂肪蓄積抑制活性が認められた。
　更には、６０容量％の含水エタノールを用いて抽出した抽出物に最も強い脂肪蓄積抑制活性が認められた。よって、生理作用を持つＰＧＦ２αを効率的に抽出する抽出方法として、４０容量％～１００容量％の含水エタノールを用いることが有効であり、更には６０容量％の含水エタノールを用いて抽出する場合が最も効率的にＰＧＦ２αを抽出出来ることが確認され、ＰＧＦ2αを含有した紅藻類マクサの乾燥粉末から、最も効率的にＰＧＦ２αを抽出したＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物を製造した。
　（実施例５）ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物中のＰＧＦ２α及び精製ＰＧＦ２α標品の保存安定性確認試験
　実施例４と同様の操作で紅藻類マクサから最も効率的にＰＧＦ２αを抽出したＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物または精製ＰＧＦ２α標品（東京化成工業（株）社製）をそのまま２５℃に設定した室内で保存した。保存を開始した日から１、２、３、４、７、１１、１４日後、実施例１と同様の操作で保存したＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物または精製ＰＧＦ２α標品に含まれるＰＧＦ２α量を測定し、保存を開始した日に含まれるＰＧＦ２α量を１００％とした時の、各保存日数経過後に残存しているＰＧＦ２α量を比較した。その結果、図４に示す通り、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物中に含まれるＰＧＦ２αは２５℃で１４日間保存しても９０％以上残存しているのに対して、精製ＰＧＦ２α標品をそのままの状態で保存すると、６０％程度まで分解した。つまり、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物に含まれるＰＧＦ２αは、精製ＰＧＦ２α標品をそのままの状態で保存するよりも１．５倍も安定していることが分かった。
　（実施例６）混合物中のＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物中のＰＧＦ２α及び精製ＰＧＦ２α標品の保存安定性確認試験
　実施例４と同様の操作で紅藻類マクサから最も効率的にＰＧＦ２αを抽出したＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物を飼料（オリエンタル酵母（株）製）に１％（ｗ／ｗ）添加した混合物、または実施例４と同様の操作で最も効率的にＰＧＦ２αを抽出したＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物１％（ｗ／ｗ）中に含まれるＰＧＦ２α量と同量の精製ＰＧＦ２α標品（東京化成工業（株）社製）をそのまま飼料（オリエンタル酵母（株）製）に１％（ｗ／ｗ）添加した混合物を２５℃に設定した室内で保存した。保存を開始した日から１、３、４、７日後、実施例１と同様の操作で保存したＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物を含む混合物または精製ＰＧＦ２α標品を含む混合物に含まれるＰＧＦ２α量を測定し、保存を開始した日に含まれるＰＧＦ２α量を１００％とした時の、各保存日数経過後に残存しているＰＧＦ２α量を比較した。その結果、図５に示す通り、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物を添加した混合物中に含まれるＰＧＦ２αは２５℃で７日間保存しても８０％以上残存しているのに対して、精製ＰＧＦ２α標品をそのまま添加した混合物中のＰＧＦ２αは３０％程度まで分解してしまった。つまり、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物に含まれるＰＧＦ２αは混合物に添加した状態においても、精製ＰＧＦ２α標品をそのまま混合物に添加した状態よりも３倍以上安定していることが分かった。
　（実施例７）　Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスを用いた高脂肪食負荷試験
　1週間の馴化を行った４週齢のＣ５７ＢＬ／６Ｊ雄性マウスに高脂肪食飼料（オリエンタル酵母(株)製）を９週間自由摂取させた（以降コントロール群と記載する）。あるいは高脂肪食飼料に実施例４と同様の操作で最も効率的にＰＧＦ２αを抽出したＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物を１％(ｗ／ｗ)添加した飼料を９週間自由摂取させた（以降ＰＧＦ２α含有マクサ抽出物摂取群と記載する）。あるいは高脂肪食飼料に実施例４と同様の操作で最も効率的にＰＧＦ２αを抽出したＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物１％（ｗ／ｗ）中に含まれるＰＧＦ２α量と同量の精製ＰＧＦ２α標品を添加した飼料を９週間自由摂取させた（以降精製ＰＧＦ２α標品摂取群と記載する）。各群とも1週間毎に給餌を行い、同時に給餌量、残餌量、体重を測定した。９週間の自由摂取の後、解剖を行い、睾丸周りの内臓脂肪を採取し重量を測定した。
　その結果、図６に示す通り、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物摂取群は、コントロール群または精製ＰＧＦ２α標品摂取群に比べて、試験を実施した９週間の期間中ずっと、継続して体重増加が抑えられており、ＰＧＦ２αの本来持つ生理作用がしっかりと発揮されていることが分かった。一方で、精製ＰＧＦ２α標品摂取群は、試験を開始してから９週間後になってようやく体重増加の抑制が確認され、実施例６で明らかになった通り、精製ＰＧＦ２α標品をそのままの状態で飼料に添加しても安定に存在できずに分解してしまうため、ＰＧＦ２αの本来持つ生理作用を効果的に発揮することが出来ないことが分かった。更に、図７に示す通り、ＰＧＦ２α含有紅藻類マクサ抽出物摂取群は試験を実施した９週間後の睾丸周りの内臓脂肪の蓄積が抑制され、ＰＧＦ２αの本来持つ生理作用をしっかりと発揮していることが確認されたが、一方で、精製ＰＧＦ２α標品摂取群はコントロール群と比べて睾丸周りの内臓脂肪の蓄積量に変化はなく、やはり精製ＰＧＦ２α標品をそのままの状態で飼料に添加しても安定に存在出来ずに分解してしまうため、ＰＧＦ２αの本来持つ生理作用をうまく発揮することが出来ないことが確かめられた。つまり、生体内において、精製ＰＧＦ２α標品をそのまま摂取するよりも、安定して存在しているＰＧＦ２αを含有する紅藻類マクサ抽出物を摂取した方が、ＰＧＦ２αが本来持つ脂肪蓄積抑制活性などの生理作用を効果的に発揮出来ることが明確となった。

Claims (9)

  1. 　ＰＧＦ２αを含有するマクサ水性エタノール抽出物。
  2. 　水性エタノールのエタノール濃度が４０～８０容量％である、請求項１に記載の抽出物。
  3. 　マクサを水性エタノールで抽出することを特徴とする、ＰＧＦ２αを含有するマクサ抽出物の製造方法。
  4. 　水性エタノールのエタノール濃度が４０～８０容量％である、請求項３に記載の方法。
  5. 　マクサを水性エタノールで抽出することを特徴とする、ＰＧＦ２αの安定化方法。
  6. 　水性エタノールのエタノール濃度が４０～８０容量％である、請求項５に記載の安定化方法。
  7. 　請求項１または２に記載のマクサ抽出物含有食品。
  8. 　請求項１または２に記載のマクサ抽出物含有飼料。
  9. 　請求項１または２に記載のマクサ抽出物含有医薬組成物。
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