WO2014156736A1 - 微生物の固定化及び脱離方法 - Google Patents

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WO2014156736A1
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dna
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adhesion
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克敏 堀
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国立大学法人名古屋大学
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Definitions

  • the present invention relates to a microorganism immobilization technique. Specifically, the present invention relates to a method for attaching and detaching microorganisms imparted with adhesion (a method involving attachment to a carrier and subsequent detachment).
  • This application claims priority based on Japanese Patent Application No. 2013-063695 filed on March 26, 2013, the entire contents of which are incorporated by reference.
  • Biocatalysts such as enzymes and microbial cells are useful for producing fine chemicals, general-purpose chemicals, pharmaceutical intermediates, biofuels and the like. Biocatalysts catalyze efficient and highly selective reactions under mild conditions such as normal temperature, normal pressure, and neutrality. However, a bioprocess using a biocatalyst has a high production cost, which hinders practical use.
  • Immobilization of biocatalysts enables repeated use and continuous reaction of the catalyst, facilitates recovery and separation of the catalyst and product from the reactor, facilitates catalyst regeneration, It has been considered as an important strategy for reducing the cost of bioprocesses because it enables the catalyst concentration to be increased.
  • the use of whole cell catalysts that use whole microbial cells eliminates the need for enzyme separation and purification, is more stable than the separated enzyme, is capable of growth and reactivation, is expensive This greatly contributes to the cost reduction of bioprocesses because it is not necessary to supply reducing power such as NADH from the outside.
  • the problem of mass transport rate limiting and obstacles in the cell surface which has been a major problem in the use of all cells, has recently been opened up by the surface display technology that localizes enzymes on the surface of microbial cells. .
  • Non-Patent Documents 1 to 8 Recently, a methodology for utilizing biofilm as a natural immobilization method has also been reported (Non-Patent Documents 1 to 8), but only a method of screening microorganisms having both biofilm-forming ability and desired reaction activity is available. No, the versatility of microorganisms and reaction types is low. In addition, it is not an efficient method because it relies on a naturally formed biofilm, and it is not at a level applicable to actual substance production. Therefore, it cannot be said that the conventional immobilization method is truly effective, and there are many problems. Therefore, the development of a general-purpose and effective immobilization method has been desired.
  • Acinetobacter sp. Tol 5 (Acinetobacter genus Tol 5 strain) previously isolated from the biofilter by the present inventor has high cell self-aggregation property, and hydrophilic glass and metal surfaces from various hydrophobic plastic carriers. Until now, it is a non-pathogenic Gram-negative bacterium with high adhesion to various material surfaces. We discovered a novel bacterio nanofiber that exists on the surface of bacterial cells as a factor that brings about such adhesion characteristics that have not been reported in other microorganisms, and also identified a new protein that constitutes the nanofiber. This protein belongs to the trimeric autotransporter adhesin (TAA) family, and the present inventor named it AtaA (Non-patent Document 9).
  • TAA trimeric autotransporter adhesin
  • TAA is known as a virulence factor that various gram-negative pathogenic bacteria specifically adhere to extracellular cells such as host cells and collagen, fibronectin, and laminin to infect the host (Non-patent Document 10). ). Proteins belonging to the TAA family form homotrimers and have a common overall structure of head-stalk-outer membrane binding site from the amino terminus to the carboxyl terminus. However, the number of amino acid residues in a single peptide chain ranges from as small as 300 to as large as more than 3000, and the amino acid sequence is diverse. The peptide chain of AtaA discovered by the present inventor consists of 3630 amino acids, and is the largest in TAA.
  • AtaA has a unique primary structure in which multiple long repeating arrays are arranged in a mosaic pattern on a long stalk. Only AtaA exhibits nonspecific and high adhesion to various surfaces. TAA research is focused on pathogenic bacteria, and there are no examples of TAA research on non-pathogenic bacteria such as Tol 5. Based on the above research results, the present inventor has reported a method for imparting or enhancing nonspecific adhesion and / or aggregation to a target microorganism by introducing a gene encoding AtaA (Patent Document 1). In Patent Document 1, AtaA and a gene (ataA gene) encoding the same are referred to as AadA and aadA gene, respectively.
  • Patent Document 1 a novel microorganism immobilization method using AtaA that exhibits unique adhesive properties and has a relatively simple structure. That is, by introducing the ataA gene into a microorganism that does not have adhesion or aggregation, the inventors succeeded in imparting adhesion and aggregation. Although this method can be said to be one of the physical adsorption methods, the adsorption force is based on the high adhesion force of AtaA, and thus exhibits a high immobilization force that cannot be compared with the conventional method. Moreover, if the ataA gene can be introduced and expressed, adhesion can be imparted to various microorganisms, and thus versatility is high.
  • Patent Document 1 The method (Patent Document 1) reported by the present inventor is a highly useful technique that enables immobilization of industrially useful microorganisms, and AtaA used therein solves various problems in the conventional immobilization technique. It has the potential to be overcome. Accordingly, an object of the present invention is to provide a more practical immobilization technique in order to advance the use and application of AtaA that has been found and identified by the present inventor.
  • AtaA can impart adhesion and / or aggregation to a target microorganism.
  • details of the attachment mechanism of AtaA are not clear. Therefore, the present inventor decided to examine the adhesion characteristics of AtaA in detail.
  • a surprising phenomenon was observed in which AtaA nanofibers cut and separated from the surface layer of Tol 5 cells adhered to the material surface in the presence of salt, but not in pure water.
  • the adherence of the target microorganism introduced and expressed with AtaA depends on the ionic strength.
  • the adhesion of the target microorganism can be manipulated, and the attachment / detachment (attachment and detachment) of the target microorganism to the carrier can be repeated (detachment is possible while maintaining the attachment ability). It was also found. Furthermore, it was shown that the catalytic function of the microorganism imparted with adhesion ability does not deteriorate even when the attachment and detachment is repeated.
  • the invention shown below is mainly based on the above findings and results.
  • a method for attaching and detaching microorganisms including the following steps (1) and (2): (1) A microorganism having nonspecific adhesion imparted or enhanced by introduction of DNA encoding an autotransporter adhesin derived from an Acinetobacter microorganism is brought into contact with a carrier under high ionic strength, Attaching to the carrier; (2) A step of washing under low ionic strength to desorb the microorganism from the carrier. [2] The method according to [1], wherein the DNA is ataA gene.
  • DNA is the following DNA (a), (b) or (c): (A) DNA consisting of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1; (B) a DNA encoding a protein comprising a nucleotide sequence having 90% or more homology with the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 and having an activity of imparting or enhancing nonspecific adhesion to microorganisms; (C) A DNA encoding a protein consisting of a part of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 and having an activity of imparting or enhancing nonspecific adhesion to microorganisms.
  • [5] The method according to [1], wherein the following DNA (a) or (b) including the DNA is introduced into the microorganism: (A) DNA consisting of the base sequence represented by SEQ ID NO: 5; (B) A DNA comprising a nucleotide sequence having 90% or more homology with the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 5, and having an activity of imparting or enhancing nonspecific adhesion to microorganisms. [6] The method according to any one of [1] to [5], wherein a boundary between the high ionic strength and the low ionic strength is between 5 mM and 20 mM.
  • step (11] The method according to any one of [1] to [9], wherein the following step (3-2) is performed after step (2): (3-2) A step of recovering the carrier.
  • step (12] The method according to any one of [1] to [11], wherein the following step (i) is performed between step (1) and step (2): (I) A step of bringing the microorganism attached to the carrier into contact with a liquid to be treated and maintaining the contact state.
  • step (i) is performed between step (1) and step (2): (I) A step of bringing the microorganism attached to the carrier into contact with a liquid to be treated and maintaining the contact state.
  • step (13] The method according to [12], wherein the microorganism has an ability to produce a specific enzyme, and the liquid to be treated contains a substrate of the specific enzyme.
  • the microorganism is an Escherichia bacterium.
  • 3CAtaA design and ionic strength dependence of adhesion to polystyrene (PS) and glass plates.
  • A 3CAtaA was designed by inserting a recognition sequence of HRV 3C protease and a 3-residue glycine linker near the root of the surface exposed site of AtaA. The amino acid sequence near the carboxyl terminus of the designed protein is shown. The amino acid site constituting the outer membrane binding site (MAD) is shown in bold. The HRV 3C protease recognition sequence is underlined. The three amino acid residues immediately before the sequence are a glycine linker (GGG). The arrow indicates the protease cleavage site.
  • NH and CH represent the amino-terminal temporal domain and the carboxyl-terminal partial head domain, respectively.
  • SP is a signal peptide and is not present in the AtaA fiber exposed on the cell surface.
  • ADP1 (pAtaA) cells Changes in adhesion due to repeated attachment / detachment of ADP1 (pAtaA) cells.
  • ADP1 (pAtaA) cells were suspended in 100 mM KCl solution and incubated in PS plates. The attached cells were washed with pure water, and detached cells were collected. The collected cells were resuspended in KCl solution and seeded again on PS plates. Detachment was repeated by the same operation. The attachment / detachment operation was repeated three times, and adherent cells at each time (before the first detachment, the first time, the second time, and the third time) were visualized by crystal violet staining.
  • the present invention relates to a microorganism attachment / detachment method using an autotransporter adhesin derived from an Acinetobacter microorganism.
  • the “detaching method” refers to a method including a step (operation) for attaching a microorganism to a carrier and a step (operation) for removing the microorganism attached to the carrier.
  • Autotransporter adhesin is a protein reported as an adhesive nanofiber of gram-negative bacteria, and is known to interact specifically with host tissues, cell surface molecules, and extracellular matrix. .
  • the autotransporter adhesin is said to have functions such as adhesion, invasion, cytotoxicity, serum resistance, and cell-to-cell transmission.
  • Autotransporter adhesins have a common region organization: N-terminal signal peptide, internal passenger domain, and C-terminal translocator domain. Among them, the C-terminal translocator domain is a domain that defines this genus. Secretion of the autotransporter adhesin is initiated by the signal peptide and begins with passage through the inner membrane by the Sec system.
  • the translocator domain is inserted into the outer membrane, forming a ⁇ -barrel structure.
  • the passenger domain passes through the tunnel formed by the barrel and appears on the surface of the cells.
  • Autotransporter adhesins are classified into monomeric autotransporter adhesins and trimeric autotransporter adhesins (Shane E.Cotter, Neeraj K.Surana and Joseph W.St GemeIII 2005.Trimeric autotransporters: a distinct subfamily of Autotransporter proteins.TRENDS in Microbiology.13: 199-205).
  • the translocator domain of the monomeric autotransporter adhesin is thought to form a ⁇ barrel structure consisting of 12 transmembrane antiparallel ⁇ sheets from one subunit.
  • the translocator domain of the trimer autotransporter adhesin forms a trimer that is heat-stable and strong in SDS in the outer membrane, and the subunits with four ⁇ sheets are oligomerized into three subunits. It is known that a ⁇ -barrel structure of 12 strands is formed.
  • Trimeric autotransporter adhesin is abbreviated as TAA (trimeric autotransporter adhesin) and is also called the Oca family (Oligomeric Coiled-coil Adhesin Family) as a new class that creates coiled coils with a common oligomer structure ( Andreas Roggenkamp, Nikolaus Ackermann, Christoph A.Jacobi, Konrad Truelzsch, Harald Hoffmann, and Jurgen Heesemann 2003.Molecular analysisoleof transport and oligomerization of the Yersinia enterocolitica.adhesin 3735
  • the attachment / detachment method of the present invention is based on the surprising finding that the adhesion property of the trimeric autotransporter adhesin AtaA derived from Acinetobacter sp. Tol5 strain depends on the ionic strength, as shown in Examples below.
  • the following steps (1) and (2) are included.
  • a microorganism having nonspecific adhesion imparted or enhanced by introduction of DNA encoding an autotransporter adhesin derived from an Acinetobacter microorganism is brought into contact with a carrier under high ionic strength, Step of adhering to the carrier (2) Step of washing under low ionic strength to desorb the microorganism from the carrier
  • step (1) that is, the attachment step
  • DNA encoding TAA derived from an Acinetobacter genus microorganism (hereinafter referred to as “adhesion-imparting DNA”) is introduced to impart or enhance nonspecific adhesion.
  • Adhesion-imparting microorganisms Prepared microorganisms (hereinafter referred to as “adhesion-imparting microorganisms”).
  • AtaA gene isolated and identified from Acinetobacter sp. Tol5 strain is preferably used.
  • the ataA gene consists of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 and encodes the protein AtaA represented by SEQ ID NO: 2.
  • Acinetobacter sp. Tol5 strain is a strain with toluene resolution isolated from an exhaust gas treatment reactor, and under the accession number FERM P-17188, National Institute of Technology and Evaluation (NITE IPOD) (Ibaraki, Japan) It is deposited in Tsukuba City Prefecture 1-1-1 Tsukuba Center Central 6).
  • DNA consisting of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 is adopted as the adhesion-imparting DNA, but DNA functionally equivalent to the DNA may be used.
  • the DNA functionally equivalent to the DNA consisting of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 is 70% or more, preferably 80% or more, more preferably 90% or more, more than the base sequence represented by SEQ ID NO: 1.
  • a DNA encoding a protein consisting of a base sequence having a homology (or identity) of 95% or more, most preferably 98% or more, and having an activity of imparting or enhancing nonspecific adhesion to a microorganism Can be mentioned.
  • a protein that hybridizes with a DNA comprising a base sequence complementary to the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 under stringent conditions and has an activity of imparting or enhancing nonspecific adhesion to a microorganism.
  • the encoding DNA consists of a part of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 and encodes a protein having an activity of imparting or enhancing nonspecific adhesion to microorganisms, in other words, represented by SEQ ID NO: 1. Deletion that does not lose the activity that imparts or enhances nonspecific adhesion to the translated protein. Examples include genetic DNA.
  • Stringent conditions refer to conditions in which specific hybrids are formed and non-specific hybrids are not formed, and include low stringency conditions and high stringency conditions. High stringency conditions are preferred. . Low stringent conditions are conditions such as washing at 42 ° C., 5 ⁇ SSC, 0.1% SDS, and preferably washing at 50 ° C., 5 ⁇ SSC, 0.1% SDS. is there. Highly stringent conditions are conditions in which, for example, washing at 65 ° C., 0.1 ⁇ SSC and 0.1% SDS is performed after washing after hybridization.
  • the mutation in the base sequence also maintains the domain structure consisting of the signal peptide, head domain, neck domain, stalk domain, and membrane anchor domain.
  • the signal peptide corresponds to bases 1 to 171
  • the head domain corresponds to bases 322 to 807 and 8989 to 9444
  • the neck domain 886 to 957 and
  • the stalk domain corresponds to the bases at positions 9445 to 9516
  • the stalk domain corresponds to the bases at positions 1216 to 8898 and 9517 to 10611
  • the membrane anchor corresponds to the bases at positions 10612 to 10890.
  • DNA consisting of a part of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 several tens to several hundreds of continuous base sequences that can be trimmed are preferably one or both stalk domains, one head domain, one In the sequence region encoding the neck domain, one continuous sequence or a plurality of continuous sequences may be deleted. More preferably, it encodes the entire region from the head domain close to the amino terminus to the stalk domain (positions 322 to 8898) or the entire region from the head domain close to the carboxy terminus to the stalk domain. It is preferable to cut the region (8989 to 10611). More preferably, it is preferable that a plurality of repetitive regions appearing in the code region of the stalk domain are removed so that the repetitive region disappears once each time. Most preferably, any one of a plurality of repetitive regions found in the code region of the stalk domain is removed.
  • the nonspecific adhesion of the target microorganism can be further improved by introducing the DNA consisting of the base sequence represented by SEQ ID NO: 3 together with the DNA encoding the autotransporter adhesin into the target microorganism.
  • the DNA functionally equivalent to the DNA consisting of the base sequence represented by SEQ ID NO: 3 is 90% or more, preferably 95% or more, more preferably 98% or more homologous to the base sequence represented by SEQ ID NO: 3.
  • DNA consisting of a nucleotide sequence having a property is 90% or more, preferably 95% or more, more preferably 98% or more homologous to the base sequence represented by SEQ ID NO: 3.
  • DNA that hybridizes under stringent conditions with DNA consisting of a base sequence complementary to the base sequence represented by SEQ ID NO: 3 can be mentioned.
  • the base sequence represented by SEQ ID NO: 3 is a sequence found immediately downstream of the Tol5 strain's AtaA gene, and is homologous to the outer membrane protein ompA gene, BamE gene, omlA gene and the like possessed by Gram-negative bacteria. It encodes the ORF of a protein that indicates The ORF, Tol5-OmlT (referred to as Tol5-OmpA in Patent Document 1) consists of 264 amino acids (SEQ ID NO: 4) encoded by a 795 bp gene (SEQ ID NO: 3).
  • An operon containing DNA encoding the autotransporter adhesin may be introduced into the target microorganism.
  • the DNA encoding the outer membrane protein can be introduced into the target microorganism together with the DNA encoding the autotransporter adhesin.
  • An operon functionally equivalent to the operon may be introduced.
  • the functionally equivalent operon is 70% or more, preferably 80% or more, more preferably 90% or more, still more preferably 95% or more, and most preferably 98% or more with the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 5.
  • Examples thereof include an operon consisting of a DNA having a homologous base sequence and having an activity of imparting or enhancing nonspecific adhesion and / or aggregation to a host microorganism.
  • the base sequence represented by SEQ ID NO: 5 is an operon isolated from Tol5 strain (ataA-omlT operon), promoter / ribosome binding site (positions 1 to 106), ataA gene (positions 107 to 10999) and Contains the Tol5-omlT gene (11064-11858).
  • DH5 ⁇ -XLTOPO aadA-ompA
  • NITE BP-490 date of deposit: February 19, 2008
  • microorganisms can be used as the microorganism (target microorganism) into which the adhesion-imparting DNA is introduced. Although it does not restrict
  • the target microorganism may be a wild strain, a mutant strain, or a genetically modified strain. An appropriate microorganism is selected according to the application of the present invention.
  • microorganisms that can be used as target microorganisms include Escherichia bacteria, such as Escherichia coli, Acinetobacter bacteria, such as Acinetobacter bacterium Calcoaceticus, Ralstonia Ralstonia eutropha, Pseudomonas bacteria, such as Pseudomonas putida, Pseudomonas fluorescens, Aeromonas genus, Almonia caes Genus bacteria such as Alcaligenes latus, Xanthomonas genus bacteria such as Zanthomonas campestris campestris), bacteria belonging to the genus Desulfomonile, such as Desulfomonile tietiei, bacteria belonging to the genus Desulfuromonas, such as Desulfuromonas chloroethenica, Chromobacterium Genus bacteria such as Chromobacterium chocolatum, Burkholderia genus bacteria such as Burk
  • a microorganism with nonspecific adhesion imparted or enhanced By introducing the adhesion-imparting DNA into the target microorganism and transforming it, a microorganism with nonspecific adhesion imparted or enhanced can be obtained.
  • a microorganism having nonspecific adhesion imparted or enhanced can be obtained by ligating the adhesion-imparting DNA to an appropriate vector and transforming the target microorganism (host microorganism) with the vector.
  • the DNA is introduced into a host microorganism in multiple copies, the DNA is linked under the control of a constitutively expressed promoter, or the DNA is linked under the control of an inducible enzyme promoter.
  • a microorganism having nonspecific adhesion imparted or enhanced can be obtained.
  • the target DNA is ligated into a vector to produce a recombinant vector.
  • a phage, cosmid, artificial chromosome or plasmid that can autonomously grow in a host cell is used.
  • the expression cassette is constructed.
  • the autonomous replication ability in a host for example, Acinetobacter genus bacteria
  • a shuttle vector designed so as to be usable in both E. coli and Acinetobacter bacteria can be used.
  • plasmids examples include plasmids derived from E. coli (for example, pET21a (+), pET32a (+), pET39b (+), pET40b (+), pET43.1a (+), pET44a (+), pKK223-3, pGEX4T, pUC118 , PUC119, pUC18, pUC19, etc.), E. coli-Acinetobacter shuttle vector plasmid pARP3 (Non-patent Document 9), and the like, and phage DNA include ⁇ phage ( ⁇ gt11, ⁇ ZAP, etc.).
  • a commercially available cloning vector such as pCR4-TOPO (registered trademark) may be used for cloning and sequence confirmation.
  • the target DNA can be synthesized by a generally known method, and in order to incorporate it into a vector, it is amplified by a PCR method using primers so as to contain an appropriate restriction enzyme cleavage site at both ends. Also good.
  • the conditions for the PCR reaction can be appropriately determined by those skilled in the art.
  • a cis element such as an enhancer, a selection marker, a ribosome binding sequence (SD sequence), and the like may be linked to the recombinant vector as necessary.
  • selectable markers include, but are not limited to, drug resistance markers such as kanamycin, ampicillin, tetracycline, chloramphenicol, and auxotrophic markers such as leucine, histidine, lysine, methionine, arginine, tryptophan, and uracil. .
  • the promoter is not particularly limited, and may be appropriately selected by those skilled in the art depending on the host microorganism.
  • T7 promoter, lac promoter, trp promoter, ⁇ -PL promoter and the like can be used.
  • a promoter consisting of a base sequence having the homology of is also preferably used.
  • a known DNA ligase may be used. Then, the DNA fragment and the vector fragment are annealed and then ligated to prepare a recombinant vector.
  • a recombinant vector can be obtained by performing a ligation reaction under defined conditions using a commercially available ligation kit such as ligation high (manufactured by Toyobo Co., Ltd.).
  • the obtained vector is purified by a boil method, an alkaline SDS method, a magnetic bead method and a commercially available kit using these principles, and further concentrated by, for example, an ethanol precipitation method or a polyethylene glycol precipitation method. It can be concentrated by means.
  • the method for introducing the recombinant vector into the target microorganism is not particularly limited, and examples thereof include a heat shock method using calcium ions, an electroporation method, and a lipofection method.
  • the transformed microorganism containing the target DNA can be selected by forming a colony on an LB medium agar plate containing antibiotics such as ampicillin and kanamycin, for example, with the marker gene of the recombinant vector, In order to confirm whether the cloned host microorganism has been transformed with a recombinant vector, using a part, confirm the amplification of the insert by the PCR method, or perform the sequence analysis by the dideoxy method using a sequencer. Also good.
  • a chromosomal integration method in which a region homologous to a chromosomal gene is placed in a vector and homologous recombination occurs to introduce the target gene. Good.
  • the method of culturing the obtained transformed microorganism in a medium is performed according to a usual method used for culturing target microorganisms.
  • a medium for culturing transformed microorganisms obtained using microorganisms such as Escherichia coli as a host, it contains a carbon source, nitrogen source, inorganic salts, etc. that can be assimilated by the microorganisms, and can efficiently culture transformed microorganisms.
  • the medium can be used, either a natural medium or a synthetic medium may be used. Specific examples include M9 medium, M9G medium, BS medium, LB medium, Nutrient Broth medium, meat extract medium, SOB medium, SOC medium, and the like.
  • the carbon source may be any assimitable carbon compound, for example, sugars such as glucose, polyols such as glycerin, alcohols such as methanol and ethanol, or organic substances such as pyruvic acid, succinic acid, citric acid or lactic acid. In addition to acids, fatty acids and oils can be used.
  • the nitrogen source may be any available nitrogen compound, such as peptone, meat extract, yeast extract, casein hydrolyzate, soybean extract alkaline extract, alkylamines such as methylamine, or ammonia or a salt thereof. Etc. can be used.
  • salts such as phosphate, carbonate, sulfate, magnesium, calcium, potassium, iron, manganese, zinc, a specific amino acid, a specific vitamin, an antifoaming agent, and the like may be used as necessary.
  • a protein expression inducer such as isopropyl- ⁇ -D-thiogalactopyranoside may be added to the medium as necessary.
  • Cultivation is usually carried out under aerobic conditions such as shaking culture or aeration and agitation culture, preferably at 0 to 40 ° C., more preferably at 10 to 37 ° C., particularly preferably at 15 to 37 ° C.
  • the pH of the medium can be appropriately changed within the range in which the host can grow and the activity of the autotransporter adhesin is not impaired, but it is preferably in the range of about pH 4 to 8.
  • the pH is adjusted using an inorganic or organic acid, an alkaline solution, or the like.
  • an antibiotic such as ampicillin or tetracycline may be added to the medium as necessary.
  • a microorganism having nonspecific adhesion imparted or enhanced can be obtained.
  • the non-specific adhesion of the obtained microorganism can be evaluated using an adhesion test (CV adhesion test) by crystal violet staining.
  • CV adhesion test CV adhesion test
  • the cell culture solution is centrifuged, the culture supernatant is removed, an inorganic salt medium or salt solution containing neither a carbon source nor a nitrogen source is added to the cell pellet, and the cells are sonicated.
  • a microorganism having an absorbance A 590 of 0.7 or more, preferably 1.0 or more, more preferably 1.5 or more can be evaluated as a microorganism having nonspecific adhesion.
  • the adhesion test may be performed by a modified method of the above method.
  • the material and volume of the plate, the number of wells, the type and amount of stain and washing solution, the staining time and temperature, the concentration of suspended cells, and the device used for quantification of the number of stains and stained cells can be selected as appropriate. Safranin or fluorescent dyes can also be used as the staining agent.
  • Adhesiveness can be evaluated by comparison with a wild strain (negative control) into which no adhesion-imparting DNA has been introduced.
  • the prepared adhesion-imparting microorganism is brought into contact with the carrier under the condition that the adhesion protein, which is the expression product of the adhesion-imparting DNA, exerts adhesive force, that is, under high ionic strength, Adhesion imparting microorganisms are allowed to adhere to the surface.
  • the boundary between the high ionic strength and the low ionic strength (which is a condition for the step (2) described later) may vary depending on the DNA used for imparting adhesion, but those skilled in the art can change the disclosure of the present specification. It can be set by preliminary experiments with reference. The ionic strength at which the adhesiveness changes rapidly may be adopted as the “boundary” here.
  • the boundary between high ionic strength and low ionic strength can be set between ionic strengths 5 mM and 20 mM.
  • an ionic strength of, for example, 10 mM to 500 mM, preferably 20 mM to 200 mM is employed as the high ionic strength.
  • Adopting an ionic strength higher than necessary is undesirable because it affects the activity and survival of the adhesion-imparting microorganism.
  • Specific examples of the boundary include 5 mM, 7 mM, 10 mM, and 15 mM.
  • step (1) There are no particular restrictions on the type and composition of the solution (high ionic strength solution) used in step (1).
  • various buffers, various salt solutions, culture solutions, and the like can be used.
  • various carriers can be used.
  • the surface characteristics (for example, hydrophilicity and hydrophobicity), material, shape and the like of the carrier are not particularly limited. Examples of materials are polyethylene, polystyrene, polycarbonate, silicon, nylon, polypropylene, polyvinyl alcohol, urethane, chitosan, cellulose derivatives, glass, ceramic, and metal. Examples of shapes are plate, spherical, granular, non-woven, and fibrous. , Film-like, sponge-like (foam).
  • Two or more types of adhesion-imparting microorganisms may be used in combination. Such an embodiment is useful, for example, when two or more stages of treatments or reactions are continuously performed using the adhesion-imparting microorganism attached to the carrier obtained in step (1).
  • the contact state between the adhesion-imparting microorganism and the carrier can be formed by dropping or adding a suspension of the adhesion-imparting microorganism to the carrier, or by introducing the carrier into a solution containing the adhesion-giving microorganism. it can. After such an operation, in order to increase the adhesion rate, it is preferable to incubate for about 1 minute to 3 hours, for example.
  • the adhesion-imparting microorganism can be allowed to adhere to the carrier simultaneously with the growth by growing it in a culture medium containing a salt in the presence of the carrier.
  • the adhesion-imparting microorganism attached to the carrier in the step (1) is usually subjected to one or more treatments or reactions (details of the treatments or reactions will be described later).
  • the step (2) that is, the desorption step is performed.
  • washing is performed under a low ionic strength, and the adhesion-imparting microorganism is detached from the carrier.
  • the adhesion-imparting microorganism is desorbed by a simple operation of washing under a low ionic strength. This is one of the greatest features of the present invention, and is a method with excellent practicality and versatility.
  • the boundary that divides the ionic strength is as described above, and preferably, the low ionic strength is less than 10 mM (range of 0 mM or more and less than 10 mM). More preferably, low ionic strength conditions of 0 mM to 5 mM are employed.
  • washing water in order to achieve more reliable desorption and simple operation, it is substantially free of ions or has an ion content. Very little water, i.e. deionized water, distilled water, pure water or ultrapure water may be used for cleaning.
  • the carrier to which the adhesion-imparting microorganism is attached is maintained in the washing water for a predetermined time (for example, 1 minute to 3 hours) (the washing water may be stirred or the carrier may be shaken during this time)
  • a washing operation such as spraying washing water continuously or intermittently on the carrier to which the sex-imparting microorganisms are attached is performed. The washing water may be replaced during the washing operation. Further, the washing operation may be repeated twice or more.
  • the adhesion-imparting microorganism and / or carrier may be changed to a new one (same type, similar type, different type, etc.).
  • the detached adhesion-imparting microorganism is recovered (step (3-1)).
  • the collected adhesion-imparting microorganism can be reused in the method of the present invention or in another application.
  • the adhesion-imparting microorganisms collected together with the washing liquid, that is, the newly-attached adhesion-imparting microorganisms suspension is added to the suspension, and the salts are dissolved to adhere the adhesion-imparting microorganisms again to the carrier ( Can be fixed). After the collected adhesion-imparting microorganism is regenerated, it may be used for such reuse.
  • the carrier is recovered after the step (2) (step (3-2)).
  • the recovered carrier can be reused in the method of the present invention or in another application.
  • the recovered carrier may be used for such reuse after being regenerated or activated. This aspect is particularly useful when the durability of the carrier is high or when the carrier is expensive.
  • the method of the present invention can be used in various applications using immobilized microorganisms, for example, production of pharmaceuticals, pharmaceutical intermediates and pharmaceutical raw materials, agricultural chemicals production, bioethanol production, biodiesel production, chemical synthesis, food products (isomerism) It is applicable to the production of saccharified sugars, maltodextrins, oligosaccharides, synthetic sweeteners, amino acids, peptides, vitamins, etc.) and treatment of sewage / drainage / industrial waste / industrial wastewater.
  • step (1) and step (2) that is, the step of bringing the adhesion-imparting microorganism attached to the carrier into contact with the liquid to be treated and maintaining the contact state (step) (I)) is performed.
  • a liquid to be treated is used according to the application.
  • a solution containing an enzyme substrate is used as a liquid to be treated.
  • an adhesion-imparting microorganism having the ability to produce a specific enzyme responsible for the enzyme reaction is used.
  • Examples of specific enzymes include lipase, protease, peptidase, esterase, cellulase, hemicellulase, ⁇ -amylase, ⁇ -amylase, ⁇ -glucanase, glutaminase, isomerase, dehydrogenase, reductase, peroxidase, kinase, phosphatase, glycosyltransferase, deoxidation Mention may be made of chlorinases.
  • the enzyme produced by the adhesion-imparting microorganism may be an intracellular enzyme, an extracellular enzyme, a bacterial cell surface localized enzyme, or a surface layer-displayed enzyme.
  • a continuous reaction vessel / reaction vessel or a batch type (batch type) reaction vessel / reaction vessel can be used for the step (i).
  • AtaA Adhesive Properties
  • TAA trimeric autotransporter adhesin
  • PrimeSTAR Max DNA polymerase (Takara Bio Inc.) was used. Amplification of the target DNA fragment from the template plasmid (pTA2-ataA) was confirmed by agarose electrophoresis. A second round of PCR was performed using the amplification product, Bgl II ataA S primer and XbaI ataA AS primer. The amplified 3CataA fragment was subcloned into pTA2 vector (Toyobo Co., Ltd.).
  • the resulting vector construct pTA2-3C was treated with Bgl II and Xba I, and the resulting DNA fragment (including c-terminal side head, HRV 3C recognition site and outer membrane binding anchor site) was ligated to the pTA2-ataA plasmid. PTA2-3CataA. Finally, the 3CataA gene was subcloned into a pARP3 vector (Non-patent Document 9) to obtain a plasmid p3CataA. of Tol 5 by conjugation with donor strain E.
  • the plate was washed with PBST buffer for 10 minutes and reacted with an anti-rabbit IgG secondary antibody conjugated with peroxidase for 1 hour at room temperature.
  • the membrane was washed 3 times with PBST buffer, and the bound antibody was detected with ECL prime detection reagent (GE Healthcare).
  • Adhesion test Bacterial strains cultured overnight in LB medium were inoculated in an amount of 1/100 in LB medium and cultured with shaking at 115 rpm. Tol 5 and its mutants were cultured at 28 ° C. for 8 hours, and ADP1 and its mutants were cultured at 30 ° C. for 12 hours. When inducing the ataA gene, 0.5% arabinose was added at the time of inoculation. After incubation, the cells were collected by centrifugation, washed 3 times with deionized water, and resuspended in different concentrations of aqueous KCl.
  • the cell concentration was adjusted so that the OD 660 was 0.5, and 200 ⁇ l of the suspension was transferred into a 96-well polystyrene (PS) plate or a glass plate. After incubating at 28 ° C. for 2 hours to allow the cells to attach, the wells were washed twice with the same concentration of KCl solution, and the attached cells were stained with 1% crystal violet for 15 minutes. After staining, the plate was further washed three times with the same concentration of KCl solution, the staining agent was eluted from the cells with 70% ethanol, and quantified by measuring the absorbance at 590 nm.
  • PS polystyrene
  • a 100 mM KCl suspension of ADP1 (pAtaA) cells was prepared by the same procedure as the adhesion test. This was added to a 96-well PS plate or glass plate and incubated at 28 ° C. for 2 hours to allow the cells to attach. The plate was then washed 3 times with the same concentration of KCl solution or deionized water and the remaining cells were stained with 1% crystal violet. Then, after washing with the same concentration of KCl or deionized water, the staining agent was quantified by the same method as the adhesion test.
  • Reattachment test A bacterial suspension of 100 mM KCl was prepared by the same procedure as the attachment test. Bacterial cells in the bacterial suspension were similarly attached to 96-well PS plates and 3 wells were used for quantification of adherent cells. This procedure is similar to the adhesion test. The other wells were washed 3 times with deionized water, desorbed bacterial cells in the wash liquid collected by centrifugation, resuspended in 100 mM KCl, after readjusting the OD 660 of 0.5. This cell suspension was used for the reattachment test. Thereafter, the same operation was repeated.
  • ADP1 (pAtaA) cells were subjected to a reattachment test by the above method. After washing the cell-attached 96-well plate with 100 mM KCl, 200 ⁇ l of 4-NBP reaction solution (1.9 mM paranitrophenylbutyric acid, 1.1% Triton-X 100, 50 mM 3,3-dimethylglutaric acid, 50 mM Tris, 50 mM 2 -Amino-2-methyl-1,3-propanediol) was added and incubated at room temperature for 30 minutes, and then the absorbance at 405 nm, the absorption wavelength of the product paranitrophenol, was measured directly with a microplate reader. To determine the esterase activity.
  • 4-NBP reaction solution 1.9 mM paranitrophenylbutyric acid, 1.1% Triton-X 100, 50 mM 3,3-dimethylglutaric acid, 50 mM Tris, 50 mM 2 -Amino-2-methyl-1,
  • 3CAtaA was cleaved from the cell surface layer with HRV 3C protease, and precipitated with 30% ammonium sulfate and separated.
  • the isolate was subjected to SDS-PAGE and Western blotting, and confirmed to be 3CAtaA monomer (results not shown).
  • a protein having a molecular weight of 720 kDa or more could be detected (results not shown). It is presumed that AtaA belonging to the TAA family has a homotrimeric structure, and 3CAtaA actually obtained by cutting, separating and purifying from the vicinity of the outer membrane binding site also maintains a multimeric structure. Indicated.
  • ADP1 (pAtaA) showed higher adhesion to both surfaces as the ionic strength increased (FIGS. 2C, D). And, like Tol 5 cells, the adherence decreased sharply at 5 mM or less, and it became almost impossible to attach to either surface in pure water. That is, the high adherence brought to ADP1 cells by the introduction of the ataA gene is not exhibited in pure water or under very low ionic strength, which reflects the adhesive properties of AtaA, as in Tol 5 cells. It is considered a thing.
  • a solution having an ionic strength of 10 mM or more (preferably 20 mM or more) may be used when attaching a microorganism to which attachment has been made by AtaA to the support. It can be said that a solution having an ionic strength of less than 10 mM (preferably 5 mM or less) may be used.
  • the adhesion of normal microbial cells is much lower than that of attachment via AtaA, which is not at a level that can be used to immobilize microorganisms, but is also known to exhibit ionic strength dependence, as explained in DLVO theory. Is done.
  • the energy required for microbial cells to attach to the surface is the sum of the energy applied to both van der Waals attractive force and electrostatic repulsive force. It becomes large and microbial cells are difficult to attach. Below a certain ionic strength, the energy for the microorganisms to approach the surface cannot be exceeded by the kinetic energy of the microbial cells themselves or the energy of the Brownian motion.
  • Microbial cells cannot directly reach the surface due to this energy barrier, and therefore adhere to the surface by extracellular polymers or nanofibers on the cell surface.
  • Extracellular polymers and nanofibers have a much smaller radius of curvature than the cells themselves, so there is no energy barrier.
  • There should be no energy barrier for adhesion of nanofiber AtaA and this theory cannot explain the loss of adhesion ability in pure water, but the ionic strength dependence of cell attachment itself is based on DLVO theory. Similar to normal microbial adhesion characteristics reflected. Therefore, whether the surface potentials of ADP1 and ADP1 (pAtaA) are different was compared with the ionic strength dependence of the cell's electrophoretic mobility.
  • the electrophoretic mobility profiles of the two were completely the same, and the ionic strength dependency was the same regardless of the presence or absence of AtaA (results not shown).
  • the ADP1 wild strain does not improve the adhesion even if the ionic strength is increased. Therefore, the high adhesion of ADP1 (pAtaA) cells in the presence of ions was brought about by AtaA, and the loss of adhesion under low ionic strength and in pure water also reflected the adhesive properties of AtaA. It is strongly suggested that it is different from the DLVO theory. In any case, it was clarified that microbial cells that have acquired adhesion by AtaA can hardly adhere when they are in pure water or when the ionic strength is extremely low.
  • ADP1 (pAtaA) cells were fixed on a PS plate, and then washed with pure water to be detached. The detached cells were resuspended in 100 mM KCl aqueous solution and immobilized on the PS plate again. By repeating this operation, the ADP1 (pAtaA) cell attachment / detachment operation was repeated. As a result, it was proved that the efficiency of immobilization was not decreased at all even after the cells were repeatedly detached and attached three times (FIG. 5).
  • the direct immobilization method of microorganisms using AtaA can be applied to various microorganisms and carriers, and is the only effective and versatile all-in-one without the disadvantages that have been a problem with conventional immobilization methods.
  • Cell catalyst immobilization technology This new method makes it possible to repeat the desorption of microbial cells once immobilized while maintaining the catalytic function, and contributes to the design of a more flexible and practical bioprocess.
  • the method of the present invention it is possible to desorb and recover microorganisms immobilized (attached) to the carrier, to fix the collected microorganisms to the carrier again, and to repeat the immobilization and desorption. is there.
  • the present invention that realizes such a utilization form of microorganisms by a simple operation has an innovative effect on a bioprocess using immobilized microorganisms. It should be noted that the immobilized microorganism can be detached by a very simple operation.
  • the immobilized microorganism once used can be re-immobilized on another carrier and used, or the microorganism having weak activity on the carrier can be replaced with fresh cells having high activity, or Reusing microorganisms and carriers, such as reactivating and re-immobilizing cells with reduced activity that have been detached.
  • the application of the present invention is wide, for example, not only for use in the traditional fermentation industry and waste treatment, but also extremely effective for the production of biomass energy and green biotechnology using microbial cells. By applying the present invention, it is possible to realize cost reduction, production process efficiency, and the like.
  • SEQ ID NO: 7 description of artificial sequence: primer sequence number 8: description of artificial sequence: primer sequence number 9: description of artificial sequence: primer sequence number 10: description of artificial sequence: primer sequence number 11: description of artificial sequence: HRV 3C protease recognition sequence

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Abstract

　アシネトバクターsp. Tol 5由来の接着性蛋白質AtaAを利用した、より実用性の高い微生物固定化技術を提供することを課題とする。（１）アシネトバクター属微生物由来のオートトランスポーターアドヘシンをコードするDNAが導入されることによって非特異的付着性が付与又は増強された微生物を、高イオン強度下で担体に接触させ、該微生物を該担体に付着させる工程と、（２）低イオン強度下で洗浄し、前記担体から前記微生物を脱離させる工程とを含む、微生物の着脱方法が提供される。

Description

微生物の固定化及び脱離方法
　本発明は微生物の固定化技術に関する。詳細には、付着性を付与した微生物の着脱方法（担体への付着及びその後の脱離を伴う方法）に関する。本出願は、２０１３年３月２６日に出願された日本国特許出願第２０１３－０６３６９５号に基づく優先権を主張するものであり、当該特許出願の全内容は参照により援用される。
　酵素や微生物細胞などの生体触媒はファインケミカルや汎用化学品、医薬中間体、バイオ燃料などの生産に有用である。生体触媒は常温・常圧・中性といった温和な条件下で、効率的かつ高選択的な反応を触媒する。しかし、生体触媒を利用するバイオプロセスは生産コストが高く、このことが実用化の妨げとなっていた。
　生体触媒の固定化は、触媒の繰返し使用や連続反応を可能にすること、反応器からの触媒や生産物の回収・分離を容易にすること、触媒の再生が容易になること、体積当たりの触媒濃度の高密度化が可能になることなどから、バイオプロセスの低コスト化における重要な戦略と考えられてきた。また微生物細胞を丸ごと使用する全細胞触媒の利用は、酵素の分離精製が不要になること、触媒としての安定性が分離した酵素より高いこと、増殖や再活性化が可能であること、高価なNADHなどの還元力を外部から供給する必要がないことなどの理由から、バイオプロセスの低コスト化に大きく寄与する。特に最近、全細胞利用の大きな問題点であった細胞表層における物質輸送律速や障害の問題も、微生物細胞の表層に酵素を局在させる表層提示技術の登場により、克服の道が開かれつつある。
　微生物細胞の固定化の従来法として、ゲル包括法、架橋法、共有結合法、物理吸着法があった。最もよく使われてきたゲル包括法には、ゲル内部における物質輸送律速、ゲルからの細胞の漏出、ゲルの脆弱性などの問題があった。架橋法や共有結合法では、架橋剤による阻害や結合そのものによる細胞の不活性化などの問題があった。物理吸着法では、通常の微生物細胞を有効に固定するだけの吸着力は望めず、一部の糸状菌などにしか有効ではなかった。最近、バイオフィルムを天然の固定化法として利用する方法論も報告されているが（非特許文献１～８）、バイオフィルム形成能力と目的の反応活性の双方を有する微生物をスクリーニングしてくるしか方法はなく、微生物や反応の種類について汎用性は低い。また、自然に形成されるバイオフィルムに頼るため効率的な方法とは言えず、実際の物質生産に適用できるレベルではない。よって、従来の固定化法は真に有効であるとは言えず、問題点も多いため、汎用的かつ有効な固定化法の開発が望まれていた。
 
　本発明者が以前にバイオフィルターから単離したAcinetobacter sp. Tol 5（アシネトバクター属細菌Tol 5株）は、細胞自己凝集性が高く、また、疎水性の各種プラスチック担体から親水性のガラス、金属表面まで、様々な材料表面に対して高い付着性を示す非病原性のグラム陰性細菌である。他の微生物では報告例のないこのような付着特性をもたらす因子として、細菌細胞表層に存在する新規のバクテリオナノファイバーを発見し、さらにナノファイバーを構成する新しい蛋白質を同定した。この蛋白質は三量体型オートトランスポーターアドヘシン（TAA）ファミリーに属しており、本発明者がAtaAと名付けた（非特許文献９）。TAAは種々のグラム陰性病原性細菌が宿主の細胞やコラーゲン、フィブロネクチン、ラミニンといった細胞外マトリックスに特異的に接着し、宿主に感染するために有する病原性因子として知られている（非特許文献１０）。TAAファミリーに属する蛋白質はホモ三量体を形成し、アミノ末端からカルボキシル末端に向かって、頭部－柄（ストーク）－外膜結合部位という共通の全体構造をとる。しかし、シングルペプチド鎖のアミノ酸残基数が300ほどの小さなものから3000を超える大きなものまで存在し、アミノ酸配列も多様である。本発明者が見つけたAtaAのペプチド鎖は3630アミノ酸から成り、TAAの中でも最大級である。長いストークに複数の長い繰返し配列がモザイク状に並ぶユニークな一次構造をしている。AtaAのみが様々な表面に対し非特異的で高い接着性を示す。また、TAAの研究は病原性細菌に集中しており、Tol 5のような非病原性細菌についてのTAAの研究例は皆無である。以上の研究成果に基づき、本発明者は、AtaAをコードする遺伝子を導入することによって標的微生物に非特異的付着性及び／又は凝集性を付与又は増強する方法を報告した（特許文献１）。尚、特許文献１ではAtaA及びそれをコードする遺伝子（ataA遺伝子）をそれぞれAadA及びaadA遺伝子と呼称していた。
国際公開第２００９／１０４２８１号パンフレット
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　上記の通り、本発明者は以前に、唯一無二な接着特性を示し、しかも構造が比較的単純であるAtaAを利用する新規の微生物固定化法を発明した（特許文献１）。即ち、ataA遺伝子を付着性や凝集性を有さない微生物に導入することにより、付着性や凝集性を付与することに成功した。この手法は物理吸着法の一つと言えるが、その吸着力はAtaAの高い接着力に基づくため、従来法とは比較にならないほどの高い固定化力を示す。しかもataA遺伝子を導入して発現させることができれば、いろいろな微生物に付着力を付与することができるので、汎用性が高い。また、細胞外多糖などのマトリックスによって付着しているバイオフィルムやゲル包括法とは異なり、細胞を表層蛋白質により直接的に表面に固定しているため、マトリックス中での物質輸送律速の問題はない。担体の材質や形状も自由に設計できる。まさに、唯一無二の有効で汎用的な微生物固定化法である。
　本発明者が報告した方法（特許文献１）は、産業上有用な微生物の固定化を可能とする有用性の高い技術であり、そこで利用するAtaAは、従来の固定化技術における種々の課題を克服できる可能性を秘めている。そこで本発明は、本発明者が見出し、同定に成功したAtaAの利用・応用を進めるべく、より実用性の高い固定化技術を提供することを課題とする。
　上記の通り、これまでの研究の成果として、AtaAが標的微生物に付着性及び／又は凝集性を付与できることが明らかになっている。しかしながら、AtaAの付着メカニズムの詳細は明らかになっていない。そこで本発明者はAtaAの付着特性を詳細に検討することにした。検討を進める中で、Tol 5細胞表層より切り出し分離したAtaAナノファイバーが、塩の存在下では材料表面に接着するが、純水中では接着できないという驚くべき現象が観察された。この現象を考察することにより、AtaAによる微生物細胞の付着性がイオン強度に依存するとの仮定を立て、種々の検証実験を行った。その結果、AtaAを導入・発現させた標的微生物の付着性がイオン強度に依存することが明らかとなった。また、イオン強度を変更することによって標的微生物の付着性を操作でき、しかも、標的微生物の担体への着脱（付着及び脱離）を繰り返し行えること（付着能を維持しつつ脱離が可能になること）も判明した。更には、着脱を繰り返したとしても、付着能を付与した微生物が有する触媒機能が低下しないことが示された。
　以下に示す発明は、主として、上記の知見及び成果に基づく。
　［１］以下の工程（１）及び（２）を含む、微生物の着脱方法：
　（１）アシネトバクター属微生物由来のオートトランスポーターアドヘシンをコードするDNAが導入されることによって非特異的付着性が付与又は増強された微生物を、高イオン強度下で担体に接触させ、該微生物を該担体に付着させる工程；
　（２）低イオン強度下で洗浄し、前記担体から前記微生物を脱離させる工程。
　［２］前記DNAがataA遺伝子である、［１］に記載の方法。
　［３］前記DNAが以下の（ａ）、（ｂ）又は（ｃ）のDNAである、［１］に記載の方法：
（ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるDNA;
（ｂ）配列番号１で表される塩基配列と90％以上の相同性を有する塩基配列からなり、微生物に対して非特異的付着性を付与又は増強する活性を有する蛋白質をコードするDNA；
（ｃ）配列番号１で表される塩基配列の一部からなり、微生物に対して非特異的付着性を付与又は増強する活性を有する蛋白質をコードするDNA。
　［４］オートトランスポーターアドヘシンをコードするDNAとともに、以下の（ａ）又は（ｂ）のDNAが前記微生物に導入されている、［３］に記載の方法：
（ａ）配列番号３で表される塩基配列からなるDNA；
（ｂ）配列番号３で表される塩基配列と90％以上の相同性を有する塩基配列からなるDNA。
　［５］前記DNAを包含する以下の（ａ）又は（ｂ）のDNAが前記微生物に導入されている、［１］に記載の方法：
（ａ）配列番号５で表される塩基配列からなるDNA;
（ｂ）配列番号５で表される塩基配列と90％以上の相同性を有する塩基配列からなり、微生物に対して非特異的付着性を付与又は増強する活性を有するDNA。
　［６］高イオン強度と低イオン強度の境界がイオン強度5mM～20mMの間にある、［１］～［５］のいずれか一項に記載の方法。
　［７］高イオン強度と低イオン強度の境界となるイオン強度が約10mMである、［１］～［５］のいずれか一項に記載の方法。
　［８］高イオン強度が10mM～500mMのイオン強度であり、低イオン強度が10mM未満のイオン強度である、［７］に記載の方法。
　［９］高イオン強度が20mM～200mMのイオン強度である、［８］に記載の方法。
　［１０］工程（２）の後に以下の工程（３－１）を行う、［１］～［９］のいずれか一項に記載の方法：
　（３－１）脱離した前記微生物を回収する工程。
　［１１］工程（２）の後に以下の工程（３－２）を行う、［１］～［９］のいずれか一項に記載の方法：
　（３－２）前記担体を回収する工程。
　［１２］工程（１）と工程（２）の間に以下の工程（ｉ）を行う、［１］～［１１］のいずれか一項に記載の方法：
　（ｉ）前記担体に付着した前記微生物を被処理液に接触させ、接触状態を維持する工程。
　［１３］前記微生物が特定酵素の産生能を有し、前記被処理液が該特定酵素の基質を含む、［１２］に記載の方法。
　［１４］前記微生物がエシェリヒア属細菌である、［１］～［１３］のいずれか一項に記載の方法。
3CAtaAの設計とポリスチレン（PS）プレート及びガラスプレートへの接着のイオン強度依存性。（A）HRV 3Cプロテアーゼの認識配列と3残基のグリシンリンカーをAtaAの表層露出部位の根元付近に挿入するようにして3CAtaAを設計した。設計した蛋白質のカルボキシル末端付近のアミノ酸配列を示した。外膜結合部位（MAD）を構成するアミノ酸部位を太字で表記した。HRV 3Cプロテアーゼ認識配列には下線を付した。当該配列の直前の３アミノ酸残基がグリシンリンカー（GGG）である。矢印はプロテアーゼ切断部位を示している。模式図中のNHおよびCHはそれぞれアミノ末端側頭部ドメイン、カルボキシル末端寄り頭部ドメインを示している。またSPはシグナルペプチドであり、細胞表層に露出されるAtaAファイバー中には存在しない。（B）精製した3CAtaAのPSプレート及びガラスプレートへの付着性とイオン強度の関係をELISAで検討した。平均±標準誤差で結果を示した（n=3）。 様々なイオン強度下における、AtaAを介した微生物細胞の付着。PSプレート及びガラスプレートを用い、Tol5細胞、ADP1細胞、ADP1（pAtaA）細胞を様々な濃度（0～100mM）のKCl溶液中でインキュベートした。その後、付着した細胞をクリスタルバイオレット染色で可視化した（A: Tol5、C: ADP1（pAtaA））。付着細胞からクリスタルバイオレットを溶出し、590nm（A590）の吸光度を測定して付着細胞を定量した（B: Tol5、D: ADP1（pAtaA）●，▲及びADP1○，△）。グラフ中の●及び○はPSプレートを使用した場合の測定値、▲及び△はガラスプレートを使用した場合の測定値。独立した３回の実験から得られた平均±標準誤差で結果を示す（n=3）。 PSプレート及びガラスプレートへのADP1細胞の付着。PSプレート／ガラスプレートに付着したADP1細胞をクリスタルバイオレット染色で可視化した。 付着したADP1（pAtaA）細胞の純水による脱離。PSプレート（A）及びガラスプレート（B）を用い、ADP1（pAtaA）細胞を100mMのKCl溶液中でインキュベートした。その後、100mMのKCl溶液又は純水で３回洗浄し、残存する細胞をクリスタルバイオレットで染色し、可視化した。染色剤を細胞から溶出し、590nm（A590）の吸光度を測定することで定量した。独立した３回の実験から得られた平均±標準誤差で結果を示す（n=3）。 ADP1（pAtaA）細胞の着脱の繰り返しによる付着性の変化。ADP1（pAtaA）細胞を100mMのKCl溶液に懸濁し、PSプレート内でインキュベートした。付着した細胞を純水で洗浄し、脱離した細胞を回収した。回収した細胞をKCl溶液に再懸濁し、PSプレートに再度、播種した。同様の操作で着脱を繰り返した。着脱操作を３回繰り返し、各回（最初の脱離前、１回目、２回目、３回目）の付着細胞をクリスタルバイオレット染色で可視化した。また、染色剤を細胞から溶出し、590nm（A590）の吸光度を測定することで定量した。独立した３回の実験から得られた平均±標準誤差で結果を示す（n=3）。 PSプレートへの着脱を繰り返した固定化ADP1（pAtaA）細胞のエステラーゼ活性。最初の脱離前と、着脱操作の各回（１回目、２回目、３回目）についてPSプレート上に固定化されたADP1（pAtaA）細胞を、プレートウェル中でKCl溶液により洗浄した。洗浄後、細胞が固定化されたままのプレートウェル中に200μlのエステラーゼ反応基質溶液（1.9mM パラニトロフェニル酪酸、1.1% トリトン-X 100、50mM 3,3-ジメチルグルタル酸、50mM トリス、50mM 2-アミノ-2-メチル-1,3-プロパンジオール）を加え30分間室温でインキューべートした後、405nmの吸光度をそのままマイクロプレートリーダーで測定することによりエステラーゼ活性を検出した。独立した３回の実験から得られた平均±標準誤差で結果を示す（n=3）。 着脱実験の結果。（１）菌体を純水に懸濁し、黒のスポンジ（ウレタンフォーム）を投入した状態。（２）塩（KCl）溶液を加えて振とうした（固定化）。（３）純水を加えて振とうした（脱着）。（４）塩（KCl）溶液を加えて振とうした（固定化）。
　本発明はアシネトバクター属微生物由来のオートトランスポーターアドヘシンを利用した微生物の着脱方法に関する。本発明において「着脱方法」とは、微生物を担体に付着させる工程（操作）と、担体に付着した当該微生物を脱離させる工程（操作）を含む方法をいう。
　オートトランスポーターアドヘシンとは、グラム陰性細菌の持つ接着性ナノファイバーとして報告されている蛋白質であり、宿主の組織や細胞表層分子、細胞外マトリックスと特異的に相互作用することが知られている。オートトランスポーターアドヘシンは、付着、浸入、細胞毒性、血清耐性、細胞間伝播といった機能を持つと言われている。オートトランスポーターアドヘシンは、N末端シグナルペプチド、内部パッセンジャードメイン、C末端トランスロケータードメインという共通の領域編成を持っている。その中でもC末端トランスロケータードメインはこの属を定義するドメインである。オートトランスポーターアドヘシンの分泌はシグナルペプチドによって開始され、Secシステムによる内膜の通過から始まる。続いて、トランスロケータードメインが外膜へ挿入され、βバレル構造を形成する。最終的にパッセンジャードメインはバレルで形成されたトンネル内を通過し菌体表面へその姿を現す。オートトランスポーターアドヘシンは、単量体オートトランスポーターアドヘシンと三量体オートトランスポーターアドヘシンに分類される（Shane E.Cotter,Neeraj K.Surana and Joseph W.St GemeIII 2005.Trimeric autotransporters:a distinct subfamily of Autotransporter proteins.TRENDS in Microbiology.13:199-205）。単量体オートトランスポーターアドヘシンのトランスロケータードメインは、１２の膜貫通逆平行βシートからなるβバレル構造を、一つのサブユニットから形成していると考えられている。しかし三量体オートトランスポーターアドヘシンのトランスロケータードメインは、外膜中で熱に安定でSDSに強い三量体を形成しており、４つのβシートを持つサブユニットがオリゴマー化し三つのサブユニットから１２ストランドのβバレル構造を形成していることが知られている。さらに、事実上全ての単量体オートトランスポーターアドヘシンのパッセンジャードメインはトランスロケータードメインと非共有結合でバクテリア表面につながれるか、細胞外に放出されるのに対し、全ての三量体オートトランスポーターアドヘシン蛋白質ではパッセンジャードメインはトランスロケータードメインと共有結合でつながれたままであると考えられている。
　三量体オートトランスポーターアドヘシンは、TAA（トリメリックオートトランスポーターアドヘシン）と略称され、共通オリゴマー構造のコイルドコイルをつくる新しいクラスとしてOcaファミリー（Oligomeric Coiled-coil Adhesin Family）とも呼ばれている（Andreas Roggenkamp,Nikolaus Ackermann,Christoph A.Jacobi,Konrad Truelzsch,Harald Hoffmann,and Jurgen Heesemann 2003.Molecular analysis of transport and oligomerization of the Yersinia enterocolitica adhesin YadA.J Bacteriol.185:3735-3744）。
　本発明の着脱方法は、後述の実施例に示す通り、アシネトバクター sp. Tol5株由来の三量体型オートトランスポーターアドヘシンAtaAの接着性がイオン強度に依存するという、驚くべき知見に基づくものであり、以下の工程（１）及び（２）を含む。
　（１）アシネトバクター属微生物由来のオートトランスポーターアドヘシンをコードするDNAが導入されることによって非特異的付着性が付与又は増強された微生物を、高イオン強度下で担体に接触させ、該微生物を該担体に付着させる工程
　（２）低イオン強度下で洗浄し、前記担体から前記微生物を脱離させる工程
　工程（１）、即ち付着工程ではまず、アシネトバクター属微生物由来のTAAをコードするDNA（以下、「付着性付与DNA」と呼称する）が導入されることによって非特異的付着性が付与又は増強された微生物（以下、「付着性付与微生物」と呼称する）を用意する。
　付着性付与DNAとしては、好ましくは、アシネトバクター sp.Tol5株から単離・同定されたataA遺伝子が用いられる。ataA遺伝子は配列番号１で表される塩基配列からなり、配列番号２で表される蛋白質AtaAをコードする。アシネトバクター sp.Tol5株は、排ガス処理リアクターから分離されたトルエン分解能を有する株であり、受託番号FERM P-17188として、独立行政法人製品評価技術基盤機構　特許生物寄託センター（ＮＩＴＥ　ＩＰＯＤ）（日本国茨城県つくば市東１－１－１つくばセンター中央第６）に寄託されている。
　好ましい一態様では配列番号１で表される塩基配列からなるDNAが付着性付与DNAとして採用されるが、該DNAと機能的に同等のDNAを用いることにしてもよい。配列番号１で表される塩基配列からなるDNAと機能的に同等のDNAとしては、配列番号１で表される塩基配列と70％以上、好ましくは80％以上、より好ましくは90％以上、さらに好ましくは95％以上、最も好ましくは98％以上の相同性（又は同一性）を有する塩基配列からなり、微生物に対して非特異的付着性を付与又は増強する活性を有する蛋白質をコードするDNAが挙げられる。あるいは、配列番号１で表される塩基配列と相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、微生物に対して非特異的付着性を付与又は増強する活性を有する蛋白質をコードするDNAが挙げられる。さらに、配列番号１で表される塩基配列の一部からなり、微生物に対して非特異的付着性を付与又は増強する活性を有する蛋白質をコードするDNA、換言すれば、配列番号１で表される塩基配列から数十から数千の連続する塩基配列を１箇所又は数箇所削った塩基配列からなり、それによって翻訳される蛋白質が非特異的付着性を付与又は増強する活性が失われない欠損遺伝子のDNAが挙げられる。
　ストリンジェントな条件とは、特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいい、低ストリンジェントな条件及び高ストリンジェントな条件が挙げられるが、高ストリンジェントな条件が好ましい。低ストリンジェントな条件とは、ハイブリダイゼーション後の洗浄において、例えば42℃、5×SSC、0.1％　SDSで洗浄する条件であり、好ましくは50℃、5×SSC、0.1％　SDSで洗浄する条件である。高ストリンジェントな条件とは、ハイブリダイゼーション後の洗浄において、例えば65℃、0.1×SSC及び0.1％　SDSで洗浄する条件である。
　塩基配列における変異も、シグナルペプチド、ヘッドドメイン、ネックドメイン、ストークドメイン及びメンブレンアンカードメインからなる当該ドメイン構造を維持するものであることが好ましい。配列番号１で表される塩基配列において、シグナルペプチドは1～171位の塩基に相当し、ヘッドドメインは322～807位及び8989～9444位の塩基に相当し、ネックドメインは886～957位及び9445～9516位の塩基に相当し、ストークドメインは1216～8898位及び9517～10611位の塩基に相当し、メンブレンアンカーはドメイン10612～10890位の塩基に相当する。
　配列番号１で表される塩基配列の一部からなるDNAにおいて、削ることが可能な数十から数百の連続する塩基配列とは、好ましくは片方あるいは両方のストークドメイン、片方のヘッドドメイン、片方のネックドメインをコードする配列部位で、そのうちの一つの連続配列又は複数の連続配列を削ってもよい。より好ましくは前述した各ドメインの部位のうちアミノ末端に近いヘッドドメインからストークドメインまでの全領域をコードする領域（322～8898位）又はカルボキシ末端に近いヘッドドメインからストークドメインまでの全領域をコードする領域（8989～10611位）を削るのが好ましい。さらに好ましくはストークドメインのコード領域に複数見られる繰り返し領域を、繰り返しがなくなって各一回ずつ出てくるように削るのが好ましい。最も好ましくはストークドメインのコード領域に複数見られる繰り返し領域のどれか一箇所削ることが好ましい。
　オートトランスポーターアドヘシンをコードするDNAとともに、配列番号３で表される塩基配列からなるDNAを標的微生物に導入することにより、標的微生物の非特異的付着性をさらに向上させることができる。配列番号３で表される塩基配列からなるDNAと機能的に同等の遺伝子を導入してもよい。配列番号３で表される塩基配列からなるDNAと機能的に同等のDNAとしては、配列番号３で表される塩基配列と90％以上、好ましくは95％以上、より好ましくは98％以上の相同性を有する塩基配列からなるDNAが挙げられる。あるいは、配列番号３で表される塩基配列と相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAが挙げられる。尚、配列番号３で表される塩基配列は、Tol5株のAtaA遺伝子のすぐ下流に見出された配列であり、グラム陰性細菌が有する外膜蛋白質ompA遺伝子やBamE遺伝子、omlA遺伝子などと相同性を示す蛋白質のORFをコードする。当該ORFであるTol5-OmlT（特許文献１ではTol5-OmpAと呼称されていた）は795bpの遺伝子（配列番号３）でコードされる264アミノ酸（配列番号４）からなる。
　オートトランスポーターアドヘシンをコードするDNAを含むオペロンを標的微生物に導入してもよい。例えば、配列番号５で表される塩基配列からなるDNAを標的微生物に導入することにより、オートトランスポーターアドヘシンをコードするDNAとともに上記外膜蛋白質をコードするDNAを標的微生物に導入することができる。該オペロンと機能的に同等のオペロンを導入してもよい。機能的に同等のオペロンとしては、配列番号５で表される塩基配列と70％以上、好ましくは80％以上、より好ましくは90％以上、さらに好ましくは95％以上、最も好ましくは98％以上の相同性を有する塩基配列からなり、宿主微生物に対して非特異的付着性及び／又は凝集性を付与又は増強する活性を有するDNAからなるオペロンが挙げられる。配列番号５で表される塩基配列はTol5株から単離・同定されたオペロン（ataA-omlTオペロン）であり、プロモーター／リボソーム結合部位（1～106位）、ataA遺伝子（107～10999位）及びTol5-omlT遺伝子（11064～11858位）を含む。尚、当該オペロンを組込んだベクターで形質転換したE.coli DH5αは、「DH5α-XLTOPO::aadA-ompA」として、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８）に受託番号NITE BP-490（受託日２００８年（平成２０年）２月１９日）として寄託されている。
　付着性付与DNAを導入する微生物（標的微生物）には様々な微生物を用いることができる。標的微生物としては、特に制限されないが、例えば、非特異的付着性がない又は弱い微生物が挙げられる。標的微生物は野生株、変異株、遺伝子組換え株のいずれであってもよい。本発明の用途に応じて適切な微生物が選択される。標的微生物として利用し得る微生物を例示すると、エシェリヒア（Escherichia）属細菌、例えば、エシェリヒア　コリ（Escherichia coli）、アシネトバクター（Acinetobacter）属細菌、例えばアシネトバクター　カルコアセチカス（Acinetobacter calcoaceticus）、ラルストニア（Ralstonia）属細菌、例えばラルストニア　ユートロファ（Ralstonia eutropha）、シュードモナス（Pseudomonas）属細菌、例えばシュードモナス　プチダ（Pseudomonas putida）、シュードモナス　フルオレセンス（Pseudomonas fluorescens）、アエロモナス（Aeromonas）属細菌、例えばアエロモナス　キャビエ（Aeromonas caviae）、アルカリゲネス（Alcaligenes）属細菌、例えばアルカリゲネス　レータス（Alcaligenes latus）、ザントモナス（Xanthomonas）属細菌、例えばザントモナス　カンペストリス（Xanthomonas campestris）、デスルフォモナイル（Desulfomonile）属細菌、例えばデスルフォモナイル　ティージェイ（Desulfomonile tiedjei）、デスルフォモナス（Desulfuromonas）属細菌、例えばデスルフォモナス　クロロエテニカ（Desulfuromonas chloroethenica）、クロモバクテリウム（Chromobacterium）属細菌、例えばクロモバクテリウム　チヨコラチウム（Chromobacterium chocolatum）、バークホルデリア（Burkholderia）属細菌、例えばバークホルデリア　アルボリス（Burkholderia arboris）、ロドバクター（Rhodobacter）属細菌、アシドボラックス（Acidovorax）属細菌、例えばアシドボラックス ファシリス(Acidovorax facilis）、ザイモモナス（Zymomonas）属細菌、例えばザイモモナス・モビリス（Zymomonas mobilis）である。
　付着性付与DNAを標的微生物に導入して形質転換することにより、非特異的付着性が付与又は増強された微生物が得られる。典型的には、付着性付与DNAを適当なベクターに連結し、該ベクターで標的微生物（宿主微生物）を形質転換することにより、非特異的付着性が付与又は増強された微生物を得ることができる。具体的には、宿主微生物に該DNAを多コピーにて導入したり、構成的に発現するプロモーター支配下に該DNAを連結したり、又は誘導酵素系プロモーター支配下に該DNAを連結したりして、非特異的付着性が付与又は増強された微生物を得ることができる。
　まず、目的のDNAをベクター中に連結し、組換えベクターを製造する。上記ベクターには、宿主細胞で自律的に増殖し得るファージ、コスミド、人工染色体又はプラスミドが使用されるほかに、例えば、プラスミドを発現カセットとして染色体に導入するような場合にはその発現カセットの構築に必要な宿主（例えば、大腸菌）での自律複製能は必要だが、その発現カセットを導入する宿主（例えば、アシネトバクター属細菌）での自律複製能は必ずしも必要でない。これらの組換えベクターは例えば、大腸菌とアシネトバクター属細菌の両方で使用可能なように設計したシャトルベクター等も使用可能である。
　プラスミドとしては、大腸菌由来のプラスミド（例えば、pET21a(+)、pET32a(+)、pET39b(+)、pET40b(+)、pET43.1a(+)、pET44a(+)、pKK223-3、pGEX4T、pUC118、pUC119、pUC18、pUC19等）、大腸菌-アシネトバクター間シャトルベクタープラスミドpARP3（非特許文献９）などが挙げられ、ファージDNAとしてはλファージ（λgt11、λZAP等）が挙げられる。また、クローニング、シークエンス確認用にpCR4-TOPO（登録商標）などの市販のクローニング用ベクターを用いてもよい。
　ベクターにDNAを挿入するには、まず、精製されたDNAを適当な制限酵素で切断し、適当なベクターDNAの制限酵素部位又はマルチクローニングサイトに挿入してベクターに連結する方法などが採用される。例えば、目的のDNAは、通常知られている方法により合成することができ、ベクターに組み込むため、適当な制限酵素の切断部位を両末端に含むように、プライマーを用いてPCR法により増幅してもよい。PCR反応の条件は、当業者が適宜決定することができる。
　その他、組換えベクターには、プロモーター及び本発明のDNAに加えて、必要に応じてエンハンサーなどのシスエレメント、選択マーカー、リボソーム結合配列（SD配列）などが連結されていてもよい。選択マーカーの例としては、カナマイシン、アンピシリン、テトラサイクリン、クロラムフェニコールなどの薬剤耐性マーカー、ロイシン、ヒスチジン、リジン、メチオニン、アルギニン、トリプトファン、ウラシルなどの栄養要求性マーカーが挙げられるがこれに限定されない。
　プロモーターは、特に制限されず、宿主微生物に応じて当業者が適宜選択すればよい。例えば、宿主が大腸菌である場合には、T7プロモーター、lacプロモーター、trpプロモーター、λ－PLプロモーターなどが使用できる。配列番号６で表される塩基配列からなるプロモーター、及びそれと機能的に同等のプロモーター、例えば、配列番号６で表される塩基配列と90％以上、好ましくは95％以上、より好ましくは98％以上の相同性を有する塩基配列からなるプロモーターも好適に用いられる。
　DNA断片とベクター断片とを連結させるには公知のDNAリガーゼを用いるとよい。そして、DNA断片とベクター断片とをアニーリングさせた後連結させ、組換えベクターを作成する。好ましくは市販のライゲーションキット、例えば、ライゲーションhigh（東洋紡株式会社製）を用いて、規定の条件にてライゲーション反応を行うことにより組換えベクターを得ることができる。
　クローニング、連結反応、PCR等を含む組換えDNA技術は、例えば、Sambrook,J et al.,Molecular Cloning 2nd ed.,9.47-9.58,Cold Spring Harbor Lab.press(1989)及びShort Protocols In Molecular Biology,Third Edition,A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology,John Wiley & Sons,Inc.に記載されるものを利用することができる。
　得られたベクターを、必要であればボイル法、アルカリSDS法、磁性ビーズ法及びそれらの原理を使用した市販されているキット等により精製し、さらに例えばエタノール沈殿法、ポリエチレングリコール沈殿法などの濃縮手段により濃縮することができる。
　標的微生物への組換えベクターの導入方法は、特に限定されないが、例えばカルシウムイオンを用いるヒートショック法、エレクトロポレーション法、リポフェクション法等が挙げられる。
　目的のDNAを含む形質転換微生物は、その組換えベクターが有するマーカー遺伝子により、例えば、アンピシリン、カナマイシンなどの抗生物質を含むＬＢ培地寒天プレート上でコロニーを形成することにより選抜することができるが、クローニングされた宿主微生物が組換えベクターにより形質転換されたものかどうかを確認するため、一部を用いて、PCR法によるインサートの増幅確認、又はシーケンサーを用いたダイデオキシ法による配列解析をしてもよい。自律複製可能なプラスミドを導入する形式の他に、染色体の遺伝子と相同な領域をベクター内に配置し、相同組換えを起こさせて目的遺伝子を導入させる染色体組み込み型の導入方法を使用してもよい。
　得られた形質転換微生物を培地で培養する方法は、標的微生物の培養に用いられる通常の方法に従って行われる。大腸菌等の微生物を宿主として得られた形質転換微生物を培養する培地としては、微生物が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、形質転換微生物の培養を効率的に行うことができる培地であれば、天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。具体的には、M9培地、M9G培地、BS培地、LB培地、Nutrient Broth培地、肉エキス培地、SOB培地、SOC培地等が挙げられる。
　炭素源としては資化可能な炭素化合物であればよく、例えば、グルコースなどの糖類、グリセリンなどのポリオール類、メタノール、エタノールなどのアルコール類、又はピルビン酸、コハク酸、クエン酸若しくは乳酸等の有機酸類の他、脂肪酸類や油脂などを使用することができる。また、窒素源としては利用可能な窒素化合物であればよく、例えば、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、カゼイン加水分解物、大豆粕アルカリ抽出物、メチルアミンなどのアルキルアミン類、又はアンモニア若しくはその塩などを使用することができる。その他、リン酸塩、炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム、カルシウム、カリウム、鉄、マンガン、亜鉛などの塩類、特定のアミノ酸、特定のビタミン、消泡剤なども必要に応じて使用してもよい。また、イソプロピル－β－Ｄ－チオガラクトピラノシドなどのタンパク質発現誘導剤を必要に応じて培地に添加してもよい。
　培養は、通常、振盪培養又は通気攪拌培養などの好気的条件下、好ましくは0～40℃、より好ましくは10～37℃、特に好ましくは15～37℃で行う。培養期間中、培地のｐＨは宿主の発育が可能で、オートトランスポーターアドヘシンの活性が損なわれない範囲で適宜変更することができるが、好ましくはpH4～8程度の範囲である。pHの調整は、無機又は有機酸、アルカリ溶液等を用いて行う。培養中は必要に応じてアンピシリンやテトラサイクリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。
　上記のようにして、非特異的付着性が付与又は増強された微生物を得ることができる。得られた微生物の非特異的付着性については、クリスタルバイオレット染色による付着試験（CV付着試験）を用いて評価することができる。具体的な手順の例としては、菌体培養液を遠心分離にかけ、培養上清を除き、炭素源も窒素源も含まない無機塩培地または塩溶液を菌体ペレットに加え、超音波処理により菌体懸濁液を得、菌体懸濁液の濁度OD660を一定（0.5付近）になるように培地または塩溶液で調整し、96穴のポリスチレン製プレートの各ウェルに懸濁液を200μlずつ添加し、微生物の至適温度で２時間インキュベートし、ウェル中の懸濁液をピペットで全て除き、200μlの無機塩培地または塩溶液でウェルを２回洗浄後、風乾し、1％のクリスタルバイオレット水溶液をウェルに加え、室温で15分間インキュベートし、ピペットでクリスタルバイオレットを除き、200μlの無機塩培地でウェルを３回洗浄後、70％エタノール水溶液で染色された付着菌体からクリスタルバイオレットを溶出させ、吸光度A590を測定する。そして、吸光度A590が0.7以上、好ましくは1.0以上、より好ましくは1.5以上の微生物は、非特異的付着性を有する微生物と評価することができる。適当な容器の内壁に微生物細胞を非増殖条件下で付着させ、付着した細胞を適当な染色剤を用いて染色し、染色剤または染色細胞数を定量することにより付着細胞量を定量するという原理に基づけば、上記の方法を改変した手法により付着試験を行ってもよい。例えばプレートの材質や容量、ウェルの数、染色剤や洗浄液の種類と量、染色時間と温度、懸濁細胞濃度、染色剤や染色細胞数の定量に使用する装置（吸光光度計、プレートリーダー、顕微鏡など）などは、適宜選択可能である。染色剤にはサフラニンや蛍光色素などを用いることも可能である。また、付着性は、付着性付与DNAを導入していない野生株（ネガティブコントロール）との比較により評価することができる。
　本発明の工程（１）では、用意した付着性付与微生物を、付着性付与DNAの発現産物である付着性蛋白質が付着力を発揮する条件、即ち、高イオン強度下で担体に接触させ、担体に付着性付与微生物を付着させる。高イオン強度と低イオン強度（後述の工程（２）の条件となる）の境界は、付着性の付与に利用するDNAによって変動し得るが、当業者であれば、本願明細書の開示事項を参考にしつつ、予備実験により設定可能である。付着性が急激に変化するイオン強度をここでの「境界」として採用するとよい。例えば、高イオン強度と低イオン強度の境界をイオン強度5mM～20mMの間に設定することができる。この場合、高イオン強度として例えば10mM～500mM、好ましくは20mM～200mMのイオン強度を採用する。必要以上に高いイオン強度を採用することは、付着性付与微生物の活性、生存などに影響を与えることから好ましくない。尚、具体的な境界として、5mM、7mM、10mM、15mMを例示できる。
　工程（１）に使用する溶液（高イオン強度の溶液）の種類や組成に特段の制約はない。例えば、各種緩衝液、各種塩溶液、培養液等を用いることができる。
　本発明で使用する微生物は非特異的付着性を示すことから様々な担体（固定化用担体）を用いることができる。担体の表面の特性（例えば親水性、疎水性）、材質、形状等は特に限定されない。材質の例はポリエチレン、ポリスチレン、ポリカーボネート、シリコン、ナイロン、ポリプロピレン、ポリビニルアルコール、ウレタン、キトサン、セルロース誘導体、ガラス、セラミック、金属であり、形状の例は板状、球状、粒状、不織布状、繊維状、膜状、スポンジ状（発泡体）である。
　２種類以上の付着性付与微生物を併用することにしてもよい。このような態様は、例えば、工程（１）によって得られる、担体に付着した付着性付与微生物を利用して２段階以上の処理ないし反応を連続的に行う場合に有用である。
　付着性付与微生物の懸濁液を担体に滴下ないし添加することや付着性付与微生物を含有する溶液中に担体を投入すること等によって、付着性付与微生物と担体との接触状態を形成することができる。このような操作の後、付着率を高めるために例えば1分～３時間程度、インキュベートするとよい。あるいは、付着性付与微生物を、塩を含む培養液中、担体の存在下で増殖させることで、増殖と同時に担体に付着させることも可能である。
　工程（１）によって担体に付着した付着性付与微生物は、通常、一又は二以上の処理ないし反応に供される（当該処理ないし反応の詳細は後述する）。本発明では、その後、工程（２）、即ち脱離工程を行う。工程（２）では、低イオン強度下で洗浄し、担体から付着性付与微生物を脱離させる。本発明では、低イオン強度下での洗浄という、簡便な操作によって付着性付与微生物の脱離を行う。この点は本発明の最大の特徴の一つであり、実用性や汎用性に優れた方法となる。
　本発明においてイオン強度の高低を分ける境界は上述の通りであり、好ましくは、低イオン強度として10mM未満（0mM以上で10mMに満たない範囲）の条件が採用される。より好ましくは0mM～5mMの低イオン強度条件を採用する。
　上記の条件を満たす緩衝液や培養液等を洗浄水として使用することもできるが、より確実な脱離を図り且つ簡便な操作を実現するため、イオンを実質的に含まないかイオン含有量の極めて少ない水、即ち、脱イオン水、蒸留水、純水又は超純水を洗浄に使用するとよい。例えば、付着性付与微生物が付着した担体を洗浄水中に所定時間（例えば1分～３時間）維持することや（この間、洗浄水を攪拌したり、担体を振盪させたりしてもよい）、付着性付与微生物が付着した担体に対して洗浄水を連続的又は間欠的に吹きかけること等の洗浄操作を行う。洗浄操作の途中で洗浄水を取り替えることにしてもよい。また、洗浄操作を２回以上繰り返すことにしてもよい。
　工程（１）と工程（２）、即ち担体への付着と脱離を繰り返すことも可能である。この場合において、途中で付着性付与微生物及び／又は担体を新たなもの（同種のもの、類似のもの、異種のもの等）に変更してもよい。
　一態様では、工程（２）の後、脱離した付着性付与微生物を回収する（工程（３－１））。回収した付着性付与微生物は本発明の方法又は別の用途に再利用できる。例えば、洗浄液とともに回収した付着性付与微生物、即ち脱離した付着性付与微生物の懸濁液に新たな担体を投入し、塩類を溶解させることにより、再度、付着性付与微生物を担体に付着させる（固定化する）ことが可能である。回収した付着性付与微生物を再生した後に、このような再利用に供してもよい。
　別の一態様では、工程（２）の後、担体を回収する（工程（３－２））。回収した担体は本発明の方法又は別の用途に再利用できる。回収した担体を再生ないし活性化した後に、このような再利用に供してもよい。この態様は担体の耐久性が高い場合や担体が高価な場合等において特に有用である。
　本発明の方法は、固定化微生物を利用した各種用途、例えば医薬品・医薬中間体・医薬原料の生産、農薬の生産、バイオエタノールの生産、バイオディーゼルの生産、化学品の合成、食品類（異性化糖、マルトデキストリン、オリゴ糖、合成甘味料、アミノ酸、ペプチド、ビタミン等）の製造、下水・排水・工業廃液・工業廃水の処理に適用可能である。そこで本発明の一態様では、工程（１）と工程（２）の間に以下の工程、即ち、担体に付着した付着性付与微生物を被処理液に接触させ、接触状態を維持する工程（工程（ｉ））を行う。用途に応じた被処理液が用いられる。例えば、酵素反応を伴う物質（例えば、上掲の医薬品、バイオエタノール、バイオディーゼル、化学品、食品）の製造又は合成を行うのであれば、酵素の基質を含有する溶液を被処理液として用いる。この場合、当該酵素反応を担う特定酵素の産生能を有する付着性付与微生物が用いられる。特定酵素の例としては、リパーゼ、プロテアーゼ、ペプチダーゼ、エステラーゼ、セルラーゼ、ヘミセルラーゼ、α－アミラーゼ、β－アミラーゼ、β－グルカナーゼ、グルタミナーゼ、イソメラーゼ、デヒドロゲナーゼ、レダクターゼ、ペルオキシダーゼ、キナーゼ、フォスファターゼ、グリコシルトランスフェラーゼ、脱塩素化酵素を挙げることができる。付着性付与微生物が産生する酵素は菌体内酵素であっても菌体外酵素であっても菌体表層局在酵素であっても、さらには表層提示酵素であってもよい。
　工程（ｉ）の実施には例えば、連続式反応容器／反応槽、又は回分式（バッチ式）反応容器／反応槽を用いることができる。
Ａ．AtaAの付着特性の検討
　アシネトバクター sp. Tol 5由来の三量体型オートトランスポーターアドヘシン（TAA）であるAtaAの利用・応用を進めるべく、AtaAの付着特性を詳細に検討することにした。
１．方法と材料
（１）使用菌株と培養条件
　Tol 5株とその変異株は0.05%のトルエンを添加した無機塩培地中またはLB培地中で28℃で培養した。アシネトバクター属細菌ADP1株とその変異株はLB培地中で30℃で培養した。抗生物質は必要に応じて次の濃度で添加した。Tol 5由来変異株に対しアンピシリン：500μg/ml、ゲンタマイシン：10μg/ml。ADP1由来変異株に対しアンピシリン：100μg/ml、ゲンタマイシン10μg/ml。ataA遺伝子の誘導のため、0.5%のアラビノースを与えた。
（２）p3CAtaAの構築
　オーバーラップPCRを利用してHRV3Cプロテアーゼ認識部位をコードするDNA配列を全長ataA遺伝子に挿入した。Bgl II ataA S プライマー(5’-GGTTTGAGCAATAAAGATCTAAATTCAAC-3’：配列番号７)と3CプロテアーゼataA AS プライマー(5’-GGGTCCCTGAAAGAGGACTTCAAGCCCACCACCAAGATAATTGACTAC-3’：配列番号８)のセット、又はXbaI ataA ASプライマー(5’-TGGGTCTAGAGAATTAGTCAATCAC-3’：配列番号９)と3CプロテアーゼataA Sプライマー(5’-CTTGAAGTCCTCTTTCAGGGACCCGGTGGTGGGGCAGGTTATGACAAC-3’：配列番号１０)のセットを用いて最初のPCRを行った。PrimeSTAR Max DNA polymerase（タカラバイオ株式会社）を使用した。鋳型プラスミド(pTA2-ataA)からの目的DNA断片の増幅をアガロース電気泳動で確認した。増幅産物とBgl II ataA Sプライマー及びXbaI ataA ASプライマーを用い、２回目のPCRを行った。増幅した3CataA断片をpTA2ベクター(東洋紡績株式会社)にサブクローニングした。得られたベクターコンストラクトpTA2-3CをBgl IIとXba Iで処理し、生成したDNA断片（c末端側頭部、HRV 3C認識部位及び外膜結合アンカー部位を含む）をpTA2-ataAプラスミドにライゲートし、pTA2-3CataAとした。最後に3CataA遺伝子をpARP3ベクター（非特許文献９）にサブクローニングし、プラスミドp3CataAを得た。p3CAtaAを保有するドナー株E. coli S17-1（Simon, R.; Priefer, U.; Puhler, A., Bio-Technol 1983, 1, (9), 784-791）との接合によりTol 5のataA遺伝子欠損変異株である4140株を形質転換した。
（３）SDS-PAGEとイムノブロッティング
　バクテリア細胞懸濁液または蛋白質溶液を２×SDS-PAGEローディング溶液に溶解し、97℃で5分間加熱処理した。これらサンプルを7.5%ポリアクリルアミド上、トリス－グリシンSDS緩衝液で電気泳動分離し、CBB染色を行った。イムノブロッティングにおいては、SDS-PAGEによって分離した蛋白質をPVDF膜上にセミドライ法にて転写した。その膜を5%スキムミルクを含むPBS緩衝液中で１時間インキュベートすることによりブロッキング処理をし、AtaA699-1014に対する抗AtaA抗血清と１時間反応させた。PBST緩衝液で10分間洗浄を行い、ペルオキシダーゼを結合させた抗ウサギIgG二次抗体と室温で１時間反応させた。膜をPBST緩衝液で３回洗浄し、結合した抗体をECLプライム検出試薬（GEヘルスケア）で検出した。
（４）フローサイトメトリー
　バクテリア細胞懸濁液を2%と4%のパラホルムアルデヒド中で10分間順次固定し、遠心分離により細胞を回収した。細胞を脱イオン水で２回洗浄後、PBS中の抗AtaA抗血清と30分間反応させた。PBSで一回洗浄後、細胞をAlexa Flour 488結合抗ウサギIgG二次抗体とNET緩衝液中で反応させた。染色された細胞をPBSで２回洗浄し、脱イオン水中に再懸濁し、フロサイトメトリー（FACSCant, BD）で解析した。
（５）付着試験
　LB培地中で一晩培養した細菌株をLB培地に1/100量植菌し、115rpmで振とう培養した。Tol 5とその変異株については28℃にて8時間、ADP1とその変異株については30℃にて12時間培養した。ataA遺伝子を誘導する場合は、植菌時に0.5%アラビノースを添加した。培養後、遠心分離により集菌し、脱イオン水で３回洗浄し、異なる濃度のKCl水溶液中に再懸濁した。最終的に細胞濃度をOD660が0.5になるように調製し、200μlの懸濁液を96穴ポリスチレン（PS）プレートまたはガラスプレート中に移した。28℃で2時間インキュベートして細胞を付着させた後、ウェルを同濃度のKCl溶液で２回洗浄し、付着した細胞を1%クリスタルバイオレットで15分間染色した。染色後、同濃度のKCl溶液でさらに３回洗浄し、染色剤を70%エタノールで細胞から溶出し、590nmの吸光度を測定することで定量した。
（６）脱離試験
　付着試験と同様の手順により、ADP1(pAtaA)細胞の100mM KCl懸濁液を用意した。これを96穴PSプレートまたはガラスプレートに添加し、28℃で2時間インキュベートして細胞を付着させた。その後、プレートを同濃度のKCl溶液または脱イオン水で３回洗浄し、残っている細胞を1%クリスタルバイオレットで染色した。その後、同濃度のKClまたは脱イオン水で洗浄してから付着試験と同じ方法で染色剤を定量した。
（７）再付着試験
　付着試験と同じ手順により、100mM KClの細菌懸濁液を用意した。細菌懸濁液中の細菌細胞を同様に96穴PSプレートに付着させ、３つのウェルを付着細胞の定量に使用した。この手順は付着試験と同様である。他のウェルについては脱イオン水で３回洗浄し、洗浄液中に脱離した細菌細胞を遠心分離により集め、100mM KClに再懸濁し、OD660を0.5に再調整した。この細胞懸濁液を再付着試験に用いた。その後は同じ操作を繰り返した。
（８）エステラーゼ活性測定
　ADP1(pAtaA)細胞を上記方法により再付着試験に供した。細胞が付着した96穴プレートを100mM KClで洗浄後、200μlの4-NBP反応溶液（1.9mM パラニトロフェニル酪酸、1.1% トリトン-X 100、50mM 3,3-ジメチルグルタル酸、50mM トリス、50mM 2-アミノ-2-メチル-1,3-プロパンジオール）を加え30分間室温でインキューべートした後、生成物であるパラニトロフェノールの吸収波長である405nmの吸光度をそのままマイクロプレートリーダーで測定することによりエステラーゼ活性を求めた。
２．結果と考察
（１）AtaA蛋白質の分離精製と接着特性の解析
　Tol 5の細胞表層からAtaAを切り出すため、HRV 3Cプロテアーゼの認識配列（LEVLFQGP：配列番号１１）をグリシン3残基から成るリンカー（GGG）とともに、AtaAの外膜結合アンカー部位（MAD）近くのループを形成していると推定されるFGG部位に挿入した（図１Ａ）。この修飾ataA遺伝子p3CataAをTol 5のataA欠損4140株に導入し、4140(p3CAtaA)を得た。アラビノースによりataA発現を誘導した全細胞溶解液中からは、抗AtaA血清を用いたウェスタンブロッティングにより3CAtaAが検出された（結果を図示せず）。また、同じ抗血清を用いたフローサイトメトリーの解析により、3CAtaAが細胞表層の外側に提示されていることを確認した（結果を図示せず）。付着試験により、4140(p3CAtaA)は、オリジナルのAtaAを恒常的に発現しているTol 5細胞以上に、ポリスチレン（PS）表面とガラス表面に対し付着することを示した（結果を図示せず）。
　次に、HRV 3Cプロテアーゼにより3CAtaAを細胞表層から切断し、30%の硫安により沈殿させ分離した。分離物をSDS-PAGEおよびウェスタンブロッティングに供し、3CAtaAのモノマーであることを確認した（結果を図示せず）。さらにNative PAGEに供したところ、720kDa以上の分子量の蛋白質を検出することができた（結果を図示せず）。TAAファミリーに属するAtaAはホモ三量体構造をとっていることが推定されており、実際に外膜結合部位近辺から切断、分離精製して得た3CAtaAも多量体構造を維持していることが示された。
　分離精製した3CAtaA自体のPS表面とガラス表面への接着特性をELISAにより調べた。イオン強度を塩化カリウム（KCl）により変えて接着への影響を解析したところ、3CAtaAは少量のイオンの存在下でどちらの表面にも接着したが、10mM以下で接着性が急激に低下し、イオンを含まない純水中ではPS表面にもガラス表面にもほとんど接着しなくなった（図１Ｂ）。
（２）AtaAによる微生物細胞付着のイオン強度依存性
　上記発見に基づき、AtaAによる微生物細胞の付着もイオン強度による影響を受けるかどうかについてTol 5の野生株を使って調べた。その結果、Tol 5細胞自体の付着もイオン強度に依存することがわかった（図２Ａ，Ｂ）。PS、ガラスのどちらに対しても、20mM以上で若干のイオン強度の影響を受けながらも高い付着性を示したが、5mM以下で付着性が急激に低下し、純水中ではどちらの表面にもほとんど付着できなくなった。
　このような微生物細胞付着のイオン強度依存性が、AtaAの接着特性を直接的に反映したものであるかどうかを確認するため、同属別種の細菌であるアシネトバクター属細菌ADP1と、これにataA遺伝子を導入したADP1(pAtaA)の付着特性を調べた。ADP1は元来、付着性も凝集性も有していないが、ADP1(pAtaA)は高い付着性と凝集性を示すことは、すでに報告している（非特許文献９）。このことは今回も確認された。ADP1野生株はイオン強度に関わらずPS表面にもガラス表面にもほとんど付着しなかった（図３、図２Ｄ）。他方、ADP1(pAtaA)はイオン強度が高くなるにつれ両方の表面に対してより高い付着性を示した（図２Ｃ，Ｄ）。そしてTol 5細胞と同様に、5mM以下で付着性が急激に低下し、純水中ではどちらの表面にもほとんど付着できなくなった。すなわち、ataA遺伝子の導入によってADP1細胞にもたらされた高付着性は、純水中や非常に低いイオン強度下では発揮されず、これはTol 5細胞同様、AtaAの接着特性を反映しているものと考えられる。尚、以上の結果を踏まえると、AtaAによって付着性を付与した微生物を担体に付着させる場合には、イオン強度が10mM以上（好ましくは20mM以上）の溶液を使用するとよく、担体から脱離させる場合にはイオン強度が10mM未満（好ましくは5mM以下）の溶液を使用するとよいといえる。
　通常の微生物細胞の付着性はAtaAを介する付着性よりずっと低く、微生物の固定化に利用できるレベルではないが、同様にイオン強度依存性を示すことが知られており、これはDLVO理論で説明される。この理論では、微生物細胞が表面に接近して付着するのに要するエネルギーは、ファンデルワールス引力と静電反発力の両方にかかるエネルギーの総和であるため、イオン強度が小さくなると静電反発力が大きくなり微生物細胞が付着しにくくなる。あるイオン強度以下では、微生物が表面に近づくためのエネルギーは、微生物細胞自体の運動エネルギーやブラウン運動によるエネルギーでは越えられないほどになる。このエネルギー障壁により微生物細胞は直接的には表面に到達することができないため、細胞外ポリマーや細胞表層のナノファイバーにより表面に付着する。細胞外ポリマーやナノファイバーは曲率半径が細胞そのものよりずっと小さいので、エネルギー障壁が存在しないのである。ナノファイバーであるAtaAの接着にもエネルギー障壁は存在しないはずであり、純水中で接着能力を失うことはこの理論では説明できないはずであるが、細胞付着自体のイオン強度依存性はDLVO理論を反映した通常の微生物付着特性と似ている。そこで、ADP1とADP1(pAtaA)の表面電位が異なるかどうか、細胞の電気泳動度のイオン強度依存性を比較した。その結果、両者の電気泳動度プロファイルは完全に一致し、AtaAの有無に関わらずそのイオン強度依存性は同じであった（結果を図示せず）。先述の通り、ADP1野生株ではイオン強度を高くしても付着性は向上しない。よって、イオンの存在下でADP1(pAtaA)細胞が高い付着性を示すことはAtaAがもたらしたものであり、低イオン強度下や純水中で付着性を失うこともAtaAの接着特性を反映したものであり、DLVO理論によるものとは異なることが強く示唆される。いずれにせよ、AtaAによって付着性を獲得した微生物細胞も、純水中やイオン強度が極端に低い時はほとんど付着できないことが明確となった。
（２）AtaAを利用した微生物の着脱技術
　上記のようなAtaAの接着特性とそれによる微生物の付着特性を利用し、AtaAによって一度固定化した微生物細胞を純水での洗浄によって脱離させることを試みた。100mMのKCl中でPSプレートまたはガラスプレートに固定化したADP1(pAtaA)細胞を、純水または100mMのKClで洗浄した。その結果、純水での洗浄により両方のプレートから微生物細胞を効果的に取り除くことができることが示された（図４）。むろん100mMのKClによる洗浄では微生物細胞を除くことはできなかった。さらに、純水洗浄により一度脱離させた微生物細胞を再び固定化することができるか、またこの着脱を繰り返すことが可能かについて調べた。まずはADP1(pAtaA)細胞をPSプレートに固定化し、その後純水で洗浄して脱離させた。脱離した細胞を100mMのKCl水溶液中に再懸濁させて再びPSプレートに固定化した。この操作を繰り返すことによって、ADP1(pAtaA)細胞の着脱操作を繰り返した。その結果、3回の着脱を繰り返した細胞でも固定化効率の低下は全くみられず、着脱を繰り返すことができることが証明された（図５）。この反復操作の最後に脱離させた細胞表層上にAtaAがきちんと提示された状態で保たれているかどうかをフローサイトメトリーにより確認したところ、表層提示量は最初の脱離前と全く変わらないことが確認された（結果を図示せず）。これらの実験結果は、洗浄脱離によってAtaAは破壊されることなく、その接着機能も損なわれることがないことを示している。
　最後に、今回開発した、AtaAによって固定化した微生物の脱着技術を実際にバイオプロセスに適用することを考え、着脱を繰返すことによる固定化細胞の有する酵素活性の変化を調べた。ADP1細胞は、もともと細胞表層にエステラーゼを有している。そこで、このエステラーゼ活性を指標に、全細胞触媒として利用する場合の着脱による触媒機能への影響を評価した。固定化したADP1(pAtaA)細胞を純水で脱離させ、100mMのKCl溶液に再懸濁させ、再固定化後、固定化微生物細胞をそのままエステラーゼ活性の定量に供した。着脱操作とエステラーゼ活性測定を繰り返した。その結果、着脱を繰り返しても固定化微生物細胞のエステラーゼ活性は低下しないことが示された（図６）。即ち、AtaAにより固定化した微生物細胞の脱離と再固定化を繰り返しても、全細胞触媒としての機能は低下せずに固定化細胞を反復使用できることが示された。
　以上の通り、AtaAを利用した微生物の直接固定化法は、様々な微生物と担体に適用でき、従来の固定化法で問題となってきた欠点のない、唯一無二の有効で汎用的な全細胞触媒固定化技術である。この新規方法は、その触媒機能を保ったままで、一度固定化した微生物細胞の脱着を繰り返すことを可能とし、より柔軟で実用的なバイオプロセスの設計に資する。
Ｂ．着脱実験（スポンジへの菌体の固定化及び脱離）
　三角フラスコ内でADP1(pAtaA)細胞を純水に懸濁した後、黒のスポンジ（ポリウレタンフォーム）を投入した。最初、液体中に分散した菌体のため液は濁っている（図７（１））。塩（KCl）溶液を加えてから振とうすると、菌体がスポンジに付着し懸濁液が透明になっていく（図７（２））。黒いスポンジだが表面に着いた菌体のため白っぽく見える。塩溶液を純水に置換してから振とうすると、スポンジに固定されていた菌体が脱離して純水中に懸濁してくるため、液が白く濁ってくる（図７（３））。ここに塩溶液を加えて振とうすると再び菌体がスポンジに固定され液が透明になる（図７（４））。振とうと塩溶液の添加／純水への置換と振とうを交互に行えば、上記着脱を繰り返すことができる。
　本発明の方法によれば、担体へ固定化（付着）した微生物を脱離させて回収したり、回収した微生物を再び担体へ固定したり、更には固定化と脱離を繰り返すことも可能である。このような微生物の利用形態を簡便な操作で実現する本発明は固定化微生物を用いたバイオプロセスに革新的な効果をもたらす。特筆すべきは、固定化した微生物を極めて簡便な操作で脱離できることである。本発明の方法を利用すれば、一度使用した固定化微生物を別の担体に固定化し直して使用することや、担体上の活性が弱った微生物を活性の高いフレッシュな細胞に交換すること、或いは脱離させた活性の低下した細胞を再活性化させて再び固定化するなど、微生物と担体の再利用が自在になる。本発明の用途は広く、例えば、伝統的な発酵産業や廃棄物処理に利用できるだけでなく、バイオマスエネルギーの生産や微生物細胞を用いるグリーンバイオテクノロジーにも極めて有効である。本発明を適用すれば、低コスト化、生産プロセスの効率化等を実現可能である。
　この発明は、上記発明の実施の形態及び実施例の説明に何ら限定されるものではない。特許請求の範囲の記載を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。本明細書の中で明示した論文、公開特許公報、及び特許公報などの内容は、その全ての内容を援用によって引用することとする。
配列番号７：人工配列の説明：プライマー
配列番号８：人工配列の説明：プライマー
配列番号９：人工配列の説明：プライマー
配列番号１０：人工配列の説明：プライマー
配列番号１１：人工配列の説明：HRV 3Cプロテアーゼの認識配列

Claims (14)

  1. 　以下の工程（１）及び（２）を含む、微生物の着脱方法：
    　（１）アシネトバクター属微生物由来のオートトランスポーターアドヘシンをコードするDNAが導入されることによって非特異的付着性が付与又は増強された微生物を、高イオン強度下で担体に接触させ、該微生物を該担体に付着させる工程；
    　（２）低イオン強度下で洗浄し、前記担体から前記微生物を脱離させる工程。
  2. 　前記DNAがataA遺伝子である、請求項１に記載の方法。
  3. 　前記DNAが以下の（ａ）、（ｂ）又は（ｃ）のDNAである、請求項１に記載の方法：
    （ａ）配列番号１で表される塩基配列からなるDNA;
    （ｂ）配列番号１で表される塩基配列と90％以上の相同性を有する塩基配列からなり、微生物に対して非特異的付着性を付与又は増強する活性を有する蛋白質をコードするDNA；
    （ｃ）配列番号１で表される塩基配列の一部からなり、微生物に対して非特異的付着性を付与又は増強する活性を有する蛋白質をコードするDNA。
  4. 　オートトランスポーターアドヘシンをコードするDNAとともに、以下の（ａ）又は（ｂ）のDNAが前記微生物に導入されている、請求項３に記載の方法：
    （ａ）配列番号３で表される塩基配列からなるDNA；
    （ｂ）配列番号３で表される塩基配列と90％以上の相同性を有する塩基配列からなるDNA。
  5. 　前記DNAを包含する以下の（ａ）又は（ｂ）のDNAが前記微生物に導入されている、請求項１に記載の方法：
    （ａ）配列番号５で表される塩基配列からなるDNA；
    （ｂ）配列番号５で表される塩基配列と90％以上の相同性を有する塩基配列からなり、微生物に対して非特異的付着性を付与又は増強する活性を有するDNA。
  6. 　高イオン強度と低イオン強度の境界がイオン強度5mM～20mMの間にある、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
  7. 　高イオン強度と低イオン強度の境界となるイオン強度が約10mMである、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
  8. 　高イオン強度が10mM～500mMのイオン強度であり、低イオン強度が10mM未満のイオン強度である、請求項７に記載の方法。
  9. 　高イオン強度が20mM～200mMのイオン強度である、請求項８に記載の方法。
  10. 　工程（２）の後に以下の工程（３－１）を行う、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法：
    　（３－１）脱離した前記微生物を回収する工程。
  11. 　工程（２）の後に以下の工程（３－２）を行う、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法：
    　（３－２）前記担体を回収する工程。
  12. 　工程（１）と工程（２）の間に以下の工程（ｉ）を行う、請求項１～１１のいずれか一項に記載の方法：
    　（ｉ）前記担体に付着した前記微生物を被処理液に接触させ、接触状態を維持する工程。
  13. 　前記微生物が特定酵素の産生能を有し、前記被処理液が該特定酵素の基質を含む、請求項１２に記載の方法。
  14. 　前記微生物がエシェリヒア属細菌である、請求項１～１３のいずれか一項に記載の方法。
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