WO2013118823A1 - セレウリドおよびその誘導体の製造方法、セレウリド製造の為の中間体ならびにセレウリド誘導体 - Google Patents

セレウリドおよびその誘導体の製造方法、セレウリド製造の為の中間体ならびにセレウリド誘導体 Download PDF

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光統 切畑
幸樹 上原
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    • C07K14/32—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Bacillus (G)

Definitions

  • the present invention relates to a process for the preparation of cereulide and its derivatives.
  • the invention also relates to intermediates and cereulide derivatives for the preparation of cereulide.
  • Bacillus cereus bacteria which inhabit the soil propagate in starch-based foods such as rice, pilaf and spaghetti to produce cereuride which causes vomiting action to animals such as humans. It is also known that not all Bacillus cereus produce cereulide, but only Bacillus cereus which has acquired the cereulide synthetic gene produces this toxic substance.
  • Such cereulide is known to be highly heat resistant, acid resistant and digestive enzyme resistant, not inactivated in the process of cooking and digestion, and acting on the small intestinal nervous system to induce the vomiting phenomenon,
  • liver damage, mitochondrial toxicity, induction of morphological change of cells, induction of apoptosis, etc. have been reported, but molecular studies on the molecular mechanism of the vomiting phenomenon and other toxicities have not progressed.
  • Patent Documents 1 and 2 For the determination of food poisoning etc., methods based on the detection of a synthetase gene in a sample have also been proposed (Patent Documents 1 and 2).
  • cereulide standard products are often required for qualitative or quantitative analysis for the determination of food poisoning by cereulide, and for elucidation of toxicity evaluation or mechanism at the cellular or molecular level.
  • Currently commercially available cereulide is extracted from the culture solution of Bacillus cereus and is available as a methanol solution.
  • Non-Patent Documents 1 and 2 As a method of obtaining such cereulide, a method of synthesizing cereulide and a derivative thereof has also been proposed (Non-Patent Documents 1 and 2).
  • Cereulide which is currently marketed, is very expensive and is not very high in purity because it is derived from a culture solution. It is desirable to easily produce high purity cereulide.
  • an object of the present invention is to provide a method for producing cereulide and a derivative thereof, and a cereulide derivative.
  • the present invention has the following formula: and (Wherein Y represents OH or NH (CH 2 ) 5 COOH) A precursor of cereulide or a derivative thereof selected from the group consisting of
  • the invention further provides: Or (Wherein X represents isopropyl, (CH 2 ) 2 COOH, or (CH 2 ) 2 CONH (CH 2 ) 5 COOH).
  • the present invention further provides the following depsipeptides: (Where l is an integer of 0 to 2, n is an integer of 0 to 2, m is an integer of 0 or 1, where l, m and n do not simultaneously become 0, l + m + n is 2 The following).
  • the invention further provides: (Here, X represents isopropyl, (CH 2 ) 2 COOH, or (CH 2 ) 2 CONH (CH 2 ) 5 COOH)
  • the present invention relates to a method for producing cereulide or a derivative thereof as shown in and including a cyclization reaction by intramolecular amide bond formation of a precursor of the above-mentioned cereulide or derivative thereof.
  • the above-mentioned production method preferably further comprises the step of preparing the above-mentioned didepsi peptide.
  • the above manufacturing method it is preferable to include the step of preparing a depsipeptide of
  • the invention further provides the following formula: (Wherein R represents (CH 2 ) 2 COOH or (CH 2 ) 2 CONH (CH 2 ) 5 COOH).
  • the method for producing cereulide of the present invention and a derivative thereof it is possible to easily obtain high purity cereulide or a derivative thereof. Furthermore, the cereulide derivative of the present invention is useful for preparation of an antibody for detecting cereulide.
  • FIG. 2 shows the 1 H-NMR (CDCl 3 ) spectrum of the octadepsipeptide of this invention.
  • FIG. 2 shows the 1 H-NMR (CDCl 3 ) spectrum of the dodecadepsipeptide of the present invention.
  • FIG. 2 shows the 1 H-NMR (CDCl 3 ) spectrum of the dodecadepsipeptide of the present invention.
  • FIG. 2 shows the 1 H-NMR (CDCl 3 ) spectrum of the dodecadepsipeptide of the present invention.
  • Cereulide is a 36-membered macrocycle (macrolide) in which six amino acids and six hydroxy acids are alternately linked by an amide bond and an ester bond, and can also be called a cyclododecadepsipeptide. Cereulide includes two amino acids, L-valine (L-Val) and D-alanine (D-Ala), and two ⁇ -hydroxy acids, D-leucine (DO-Leu) and L-valine ( It has the following structure composed of LO-Val).
  • cereulide acts as an ionophore for K + , Na + , NH 4 + .
  • Such scavenging action is also considered to be the cause of biological activity.
  • the inventors consider that, in the total synthesis of cereulide, the step of cyclizing a linear precursor to construct a 36-membered ring structure is the most important key step, and in order to achieve this cyclization reaction, It was noted that the method by formation of an ester bond was taken. With respect to cereulide and derivatives, the previously known synthetic methods all include a cyclization step as shown in the schematic below.
  • cereulide is a macrolide in which three of the repeating structural units are linked to form a cyclic, and can also be expressed as (L-Val-DO-Leu-D-Ala-LO-Val) 3 .
  • the present invention relates to a novel production method in which the construction of a macrocycle by amide bond formation is a key reaction unlike the conventional method.
  • Starting materials in the production method of the present invention are all commercially available, and two hydroxy acids, namely D-leucine acid (DO-Leu) and L-valerate (LO-Val) are commercially available D-leucine and L It can be prepared from valine by methods known in the literature and used for subsequent fragment synthesis.
  • a tetradepsipeptide of a repeating structural unit is synthesized, and then, two structural units are combined to obtain an octadepsipeptide (2 x structural unit), and then further combined with a tetradepsipeptide to obtain a three structural unit.
  • the linear dodecadepsipeptide (precursor) was produced and cyclized.
  • the intramolecular cyclization reaction of the precursor by the amide bond construction in the present invention can be performed by changing various reaction conditions such as the condensing agent, the solvent, the temperature, etc., and optimization for achieving a high yield can be achieved. It is.
  • cereulide and its derivative synthesis can be determined as a commercially available raw material (amino acid). That is, L-valine, D-leucine, D-alanine can be synthesized for the synthesis of cereulide, and L-glutamic acid and 6-aminohexanoic acid can be added to these for derivative synthesis.
  • L-valine can be provided for the synthesis with an optional protecting group, or a commercially available product with the protecting group attached can be used as it is.
  • examples of commercially available products include Boc-L-valine protected with a tert-butoxycarbonyl group manufactured by Tokyo Kasei Kogyo Co., Ltd.
  • D-leucine acid and L-valerate can be synthesized from D-leucine and L-valine, respectively.
  • Any hydroxy acid such as D-leucine acid or L-valerate may be used as long as it can convert the amino group of D-leucine and L-valerate to a hydroxyl group.
  • D-leucine or L-valine a method of reacting D-leucine or L-valine with nitrite can be mentioned. Prior to this reaction, it is preferred to use D-leucine or L-valine dissolved in a strong acid such as sulfuric acid or hydrochloric acid.
  • the hydroxy acid thus obtained can be protected for protection in preparation for the next reaction.
  • a protecting group a benzyl group is preferably used.
  • a protective group can be added to D-alanine to prepare for the next reaction.
  • the didepsi peptide is synthesized using the amino acid and hydroxy acid thus obtained.
  • Didepsi peptide may be synthesized under any conditions that can achieve esterification by dehydration reaction.
  • a particularly preferable reaction is a reaction performed by adding a strong base such as dimethylaminopyridine and dicyclohexylcarbodiimide to a solvent such as a dichloromethane solution.
  • L-valine with D-leucine acid, and then remove the group protecting the carboxyl group for the next synthesis of tetradepsipeptide.
  • D-alanine and D-valerate can be coupled, and then the group protecting the amino group can be removed to be subjected to the synthesis of the next tetradepsipeptide.
  • the obtained didepsi peptide is coupled to synthesize tetradepsi peptide.
  • any conditions may be used as long as an amide bond can be achieved.
  • a method in which various condensing agents are allowed to act under neutral conditions can be adopted.
  • the tetradepsipeptide is to be a repeating unit for the synthesis of cereulide, and, for ease of subsequent synthesis, for example, 2 of fragment A and fragment B in which a protecting group is added to each other position of the end It is also desirable to create a type.
  • an octadepsipeptide is synthesized by subjecting the fragments thus obtained to an amide bond, and a dodecadepsipeptide is further synthesized.
  • the linear dodecadepsipeptide thus obtained is preferably cyclized while preventing an intermolecular reaction to synthesize cereulide.
  • the intramolecular cyclization reaction can be efficiently advanced by optimizing various conditions such as a condensing agent, a solvent, and a temperature.
  • the condensing agent examples include, but are not limited to, organic phosphorus compounds such as diphenylphosphoryl azide (DPPA), diethylphosphoryl cyanidate, azidotris (dimethylamino) phosphonium hexafluorophosphate, N-ethoxycarbonyl- Quinoline based peptide condensing agent such as 2-ethoxy-1,2-dihydroquinoline (EEDQ), 1-isobutyl-2-isobutyl-1,2-dihydroxyquinoline, O- (7-azabenzotriazol-1-yl) -N, N, N ', N'-tetramethyluronium hexafluorophosphate (HATU), O- (benzotriazol-1-yl) -N, N, N', N'-tetramethyluronium hexafluoro Uronium condensation agents such as phosphate (HBTU), diisopropyl carbodiimide (DIC), dicyclo
  • the reaction solvent used at this time includes methylene chloride, dimethylformamide and the like.
  • the intramolecular reaction takes precedence over the intermolecular reaction, and it is possible to increase the isolation yield of the desired product. That is, it is preferable to suppress the formation of by-products and give priority to the intramolecular cyclization reaction.
  • the invention further has high applicability to the synthesis of derivatives of cereulide. That is, by appropriately changing the constituent amino acid or hydroxy acid in the repeating structural unit, simple derivative synthesis can be performed.
  • novel derivative syntheses can be performed, such as E-celeurid in which L-valine is replaced by L-glutamic acid, and EAHA-celeurid in which aminohexanoic acid is introduced into E-sereulide.
  • E-serouride is a derivative in which one L-valine in cereurido is replaced with L-glutamic acid
  • EAHA-serouride is one in which the omega carboxyl group of E-seleuride is modified with aminohexanoic acid.
  • These two derivatives have a reactive carboxyl group disposed via a carbon chain outside the 36-membered ring, which can be further chemically modified and can be used as a hapten molecule or a labeling molecule for producing an anti-cereulide antibody. It is possible to use.
  • Didepsi peptide may be synthesized under any conditions that can achieve esterification by dehydration reaction.
  • a particularly preferable reaction is a reaction performed by adding a strong base such as dimethylaminopyridine and dicyclohexylcarbodiimide to a solvent such as a dichloromethane solution.
  • the obtained didepsi peptide is coupled to synthesize a tetradepsi peptide.
  • any conditions may be used as long as an amide bond can be achieved.
  • a method in which various condensing agents are allowed to act under neutral conditions can be adopted. It is desirable to create two types of fragments C and D for ease of subsequent synthesis.
  • an octadepsipeptide is synthesized by subjecting the fragments thus obtained to an amide bond, and a dodecadepsipeptide is further synthesized.
  • the method of connecting tetradepsipeptides, the position of a protecting group, etc. can be changed suitably, and it is not limited to this.
  • 34 a, b having L-glutamic acid (Series a) or L-glutamic acid + aminohexanoic acid (Series b) are linked so as to be sandwiched between fragment A and fragment B.
  • the amino group end of Fragment 5 can also be linked to the carboxyl group end of 34a, b by changing the position of the protecting group appropriately.
  • the linear dodecadepsipeptide thus obtained is preferably cyclized to prevent the intermolecular reaction to synthesize a cereulide derivative.
  • Such cereulide derivatives can be easily modified and are useful for the production of antigens for the production of antibodies. Furthermore, it can be labeled to be a tool for elucidation of the physiological function of cereulide.
  • BSA bovine albumin
  • KLH kabutogani hemocyanin
  • Labeled cereulide which is a tool for elucidating physiological functions, can be achieved, for example, by covalently bonding a labeling substance such as biotin to the carboxyl group of a cereulide derivative.
  • the next process may be applied after the neutralization process and the purification process are appropriately performed.
  • Each product in each of the above steps may be isolated and purified or may be subjected to the next step as it is.
  • Means for isolation and purification include washing, extraction, recrystallization, various chromatography and the like.
  • Each product in each step can be carried out using these isolation and purification means alone or in combination of two or more kinds as appropriate.
  • cereulide and its derivative obtained by the method of the present invention have high yield and high purity, they are highly useful as a standard of cereulide.
  • a cereulide detection kit containing a preparation of cereulide.
  • Such a cereulide detection kit can be provided together with a solvent for dissolving cereulide, a medium, and the like.
  • it can be widely used as a potassium ion selective electrode utilizing the property of potassium ion uptake of cereulide, and application as a carcinostatic agent utilizing an apoptotic effect on cancer cells.
  • more specific cancer cell selectivity can be provided.
  • the cereulide derivative of the present invention can be used as it is or in the form of a pharmaceutically acceptable salt, or in the form of a formulation known to those skilled in the art mixed with them and a pharmaceutically acceptable carrier.
  • salts with inorganic bases include salts with inorganic bases, salts with organic bases, salts with inorganic acids, salts with organic acids, salts with basic or acidic amino acids, and the like.
  • salts with inorganic bases include, for example, alkali metal salts such as sodium salts and potassium salts; alkaline earth metal salts such as calcium salts and magnesium salts; and aluminum salts, ammonium salts and the like.
  • Preferred examples of the salts with organic bases include salts with trimethylamine, triethylamine, pyridine, picoline, ethanolamine, diethanolamine, triethanolamine, dicyclohexylamine, N, N'-dibenzylethylenediamine and the like.
  • Preferred examples of salts with inorganic acids include salts with hydrochloric acid, hydrobromic acid, nitric acid, sulfuric acid, phosphoric acid and the like.
  • Preferred examples of the salts with organic acids include, for example, formic acid, acetic acid, trifluoroacetic acid, fumaric acid, oxalic acid, tartaric acid, maleic acid, citric acid, succinic acid, malic acid, methanesulfonic acid, benzenesulfonic acid, p And salts with, for example, toluenesulfonic acid.
  • Preferred examples of salts with basic amino acids include salts with arginine, lysine, ornithine and the like, and preferred examples of salts with acidic amino acids include salts with aspartic acid, glutamic acid and the like Be
  • NMR spectrum JEOL JMTC-400 / 54 / SS 400 MHz (manufactured by JEOL Ltd.). Unless otherwise stated, liquid samples were measured as NaCl films, solid samples as KBr pellets, and absorption wavelengths are given in cm ⁇ 1 in the text. Furthermore, the following chemical shifts are indicated by ⁇ values. Melting point: Measured using BUCHI Melting point B-545 (all melting points are not corrected). IR: Measured using JASCO FT / IR-460 plus.
  • Examples 1 to 5 represent the synthesis of cereulide of the present invention
  • Examples 6 to 10 represent the synthesis of a cereulide derivative of the present invention.
  • Example 1 Synthesis of Boc amino acid (1) Boc-L-Valine (1) A commercial product (manufactured by Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.) was used without purification. ⁇ Mp; 78 ° C ⁇ [A] D -6.5 ° (c 1.0, AcOH)
  • the aqueous layer was adjusted to pH 3 by adding citric acid, and extracted three times with ethyl acetate.
  • the combined organic layer is washed once with saturated brine, and the organic layer is dried over anhydrous Na 2 SO 4 , concentrated under reduced pressure, and then the concentrated residue is recrystallized from ethyl acetate-hexane to give colorless crystals 2 (15.51 g, 91.3%).
  • LO-valine (5) was prepared in the same manner as in the synthesis of 3 using commercially available L-valine as a raw material. That is, under the ice-cooling, sodium nitrite (10.35 g, 150 mmol) aqueous solution (50 mL) is added dropwise to a solution of L-valine (11.71 g, 100 mmol) in 1 N sulfuric acid (150 mL). Stirring was continued for 3 hours under ice cooling and then for 6 hours at room temperature.
  • DO-leucine benzyl ester ⁇ benzyl (2R) -2-hydroxy-4-methylpentanoate ⁇ (4)
  • DO-leucine 3, 3.36 g, 25.4 mmol
  • benzyl alcohol 7.9 mL, 76.0 mmol
  • para-toluenesulfonic acid monohydrate 50 mg, 0.26 mmol
  • toluene 100 mL
  • the reaction solution was returned to room temperature, and washed with saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution and then with saturated brine.
  • the organic layer was dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated under reduced pressure with an evaporator.
  • the benzyl alcohol contained in the concentrated residue was distilled off under reduced pressure (8 mHg ⁇ ) using a glass tube oven (bulb to bulb distillation) apparatus.
  • the benzyl ester (6) was synthesized in the same manner as in 4 above.
  • the reaction mixture was heated to reflux for 7 hours in a reaction vessel equipped with a Dean-Stark apparatus, and subjected to the same treatment and purification to give 6 (4.57 g, 86.4%) of a pale yellow oil.
  • Example 2 Synthesis of didepsi peptides (7, 8) (7) Boc-L-Val-DO-Leu-OBn (7) Under ice-cooling, a solution of DO-leucine benzyl ester (4, 5.0 g, 22.5 mmol) and commercially available Boc-L-valine (1, 5.38 g, 24.8 mmol) in dichloromethane (80 mL) was added with dimethylaminopyridine (DMAP, 0.55 g, 4.50 mmol) and then N, N'-dicyclohexylcarbodiimide (DCC, 5.86 g, 28.4 mmol) were added.
  • DMAP dimethylaminopyridine
  • DCC N'-dicyclohexylcarbodiimide
  • the reaction solution was stirred overnight under ice cooling, and then the by-product DCurea was removed by suction filtration, and the filtrate was concentrated under reduced pressure.
  • the concentrated residue was dissolved in ethyl acetate, washed with saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution and then with saturated brine, and the organic layer was dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated under reduced pressure.
  • the concentrated residue was purified by silica gel column chromatography (hexane / ethyl acetate) to give 7 (9.30 g, 98%.) As a colorless solid.
  • Boc-L-Val-DO-Leu-OH (Hydrolyzing removal of benzyl group)
  • a mixture of Boc-L-Val-DO-Leu-OBn (7, 2.70 g, 6.40 mmol), methanol (30 mL), and 10% palladium carbon (135 mg) was added, and a hydrogen stream (3 The mixture was stirred at room temperature for 3 hours under atmospheric pressure. After confirming the progress of the reaction by TLC, the catalyst was filtered off and the filtrate was concentrated under reduced pressure to give 8 (2.14 g, quant) as a colorless solid. This was used for the next reaction without further purification.
  • Boc-D-Ala-LO-Val-OBn (9) was performed similarly to the synthesis of 7. That is, Boc-D-alanine (2, 4.46 g, 23.6 mmol), LO-valine benzyl ester (6, 4.10 g, 19.7 mmol) and dichloromethane (50 mL) were stirred under ice-cooling and DMAP (0.72) was added thereto. g, 5.90 mmol) and then DCC (5.07 g, 24.59 mmol) were added and stirred overnight under ice-cooling.
  • the by-product DCurea was filtered off with suction, the filtrate was concentrated under reduced pressure, and the concentrated residue was dissolved in ethyl acetate.
  • the ethyl acetate solution was washed with saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution and then with saturated brine, and the organic layer was dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated under reduced pressure.
  • the concentrated residue was purified by silica gel column chromatography (hexane / ethyl acetate) to give 9 (7.66 g, quant) as a colorless solid.
  • Example 4 Synthesis of octadepsipeptide and dodecadepsipeptide (14) Boc- (L-Val-DO-Leu-D-Ala-LO-Val) 2 -OBn (14) Under ice-cooling, N, N-diisopropylethylamine (DIPEA, 1.03 mL, 5.91 mmol) was added to a solution of fragment A • TFA salt (12, 1.75 g, 3.0 mmol) in acetonitrile (15 mL), and then fragment B (13, 13 1.49 g (3.0 mmol) of acetonitrile (5 mL) solution, O-benzotriazole-N, N, N ', N'-tetra methyl uronium hexafluorophosphate (HBTU, 1.41 g, 3.71 mmol) and 1-hydroxybenzotriazole (HOBt, 0.40) g, 3.0 mmol) was added.
  • DIPEA N-d
  • reaction solution was allowed to room temperature and stirred overnight, and then the solvent was evaporated under reduced pressure.
  • the residue was dissolved in ethyl acetate, and the ethyl acetate layer was washed successively with 10% aqueous citric acid solution, saturated sodium hydrogencarbonate and saturated brine, and dried over anhydrous sodium sulfate. This was concentrated under reduced pressure, and the residue was purified by silica gel column chromatography (hexane / ethyl acetate) to give 14 (2.90 g, quant) as a colorless solid.
  • Solution B was added dropwise to solution A over 1 hour using a microsyringe at room temperature, and stirring was continued at room temperature for 10 days.
  • the reaction mixture was concentrated under reduced pressure to remove N, N-dimethylformamide.
  • the residue was dissolved in ethyl acetate and washed successively with saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution, 1N hydrochloric acid and saturated brine.
  • 6-aminohexanoic acid (AHA) and L-glutamic acid derivative (1) 6-aminohexanoic acid benzyl ester (AHA-OBn, 20) ⁇ p-TosOH salt
  • a 6-aminohexanoic acid commercially available (AHA, 19) (6.56 g, 50.0 mmol), benzyl alcohol (15.6 mL, 150 mmol), p-TosOH monohydrate, contained in an eggplant-type flask equipped with a Dean-Stark apparatus. (11.41 g, 60.0 mmol) and toluene (150 mL) were added, and the mixture was heated under reflux for 7 hours to remove water generated by azeotropic separation.
  • reaction solution was transferred to a separatory funnel, excess Troc-Cl was removed by diethyl ether extraction, citric acid was added to the aqueous layer to adjust to pH 3, and the mixture was extracted three times with ethyl acetate.
  • the combined organic layer was washed once with saturated brine, dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated under reduced pressure to give 22a (3.95 g, 75.7%) of a colorless oil as a residue. This was used for the next reaction without purification.
  • L-OAc-valine (9) L-OAc-valine ⁇ (2R) -2-acetoxy-4-methylpentanoic acid ⁇ (30)
  • L-OAc-valine was synthesized in the same manner as D-OAc-leucine. That is, acetyl chloride (15.0 mL, 211 mmol) was added to LO-valine 5 (5.00 g, 42.3 mmol) from a dropping funnel under ice-cooling. After confirming the disappearance of the starting materials by TLC, the reaction solution was concentrated under reduced pressure. A small amount of toluene was added to the residue and concentrated under reduced pressure to remove remaining acetyl chloride by coevaporation with toluene.
  • L-OAc-valine tert-butyl ester (10) L-OAc-valine tert-butyl ester ⁇ tert-butyl (2S) -2-acetoxy-3-methylbutanoate ⁇ (31) L-OAc-valine tert-butyl ester was synthesized in the same manner as D-OAc-leucine tert-butyl ester. That is, a mixture of L-OAc-valine (6.73 g, 42.0 mmol), tert-butanol (40 mL) and Boc 2 O (9.17 g, 42.0 mmol) was stirred at room temperature and DMAP (1.03 g, 8.43) was added thereto. The mmol) was added slowly.
  • LO-valine tert-butyl ester ⁇ tert-butyl (2S) -2-hydroxy-3-methylbutanoate ⁇ (32)
  • LO-valine tert-butyl ester was synthesized similarly to LO-leucine tert-butyl ester. That is, potassium carbonate (20.83 g, 151.0 mmol) aqueous solution (60 mL) was added to a solution of L-OAc-valine tert-butyl ester (6.52 g, 30.1 mmol) in methanol (30 mL), and stirred at room temperature for 1 day .
  • the concentrated residue was dissolved in ethyl acetate, and the organic layer was washed with saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution and then with saturated brine, dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated under reduced pressure.
  • the concentrated residue was purified by silica gel column chromatography (hexane / ethyl acetate) to obtain the desired didepsipeptide 33.
  • the aqueous layer was adjusted to pH 3 by addition of que BR> ⁇ and extracted three times with ethyl acetate.
  • the combined organic layer is washed once with saturated brine, and the organic layer is dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated under reduced pressure, and then the concentrated residue is recrystallized from ethyl acetate-hexane to give colorless crystals of ZD-alanine (13.77 g, I got 91.6%).
  • the concentrated residue was dissolved in ethyl acetate, and the organic layer was washed with saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution and then with saturated brine, dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated under reduced pressure.
  • the concentrated residue was purified by silica gel column chromatography (hexane / ethyl acetate) to give 35 (4.26 g, 78.3%) of a colorless oil.
  • the reaction solution was returned to room temperature and stirred overnight, and then the reaction solution was concentrated under reduced pressure.
  • the concentrated residue was dissolved in ethyl acetate, and the ethyl acetate layer was washed successively with 10% aqueous citric acid solution, saturated aqueous sodium hydrogencarbonate solution and saturated brine, dried over anhydrous sodium sulfate and concentrated under reduced pressure.
  • the residue was purified by silica gel column chromatography (hexane / ethyl acetate) to give 37 as a pale yellow oil.
  • E-Celeurid and EAHA-Celeurid (cyclization reaction) (22) E-cereulide-OBn (41a) and EAHA-cereulide-OBn (41b)
  • the cyclization reaction of precursor 40 was carried out in the same manner as in the synthesis of cereulide. That is, diphenyl phosphoryl azide (DPPA) (9.8 ⁇ L, 45.5 ⁇ mol) is dissolved in anhydrous N, N-dimethylformamide (12 mL), and then N, N-diisopropylethylamine (15.7 ⁇ L) in a reaction vessel purged with argon. , 90 ⁇ mol) was slowly added to prepare solution A.
  • DPPA diphenyl phosphoryl azide
  • precursor B (31 ⁇ mol) was dissolved in anhydrous N, N-dimethylformamide (8 mL) to prepare solution B.
  • Solution B was slowly added dropwise to solution A over 1 hour using a microsyringe at room temperature, and stirring was continued at room temperature for 10 days.
  • the reaction mixture was concentrated under reduced pressure to remove dichloromethane, and the residue was dissolved in ethyl acetate and washed successively with saturated aqueous sodium hydrogen carbonate solution, 1N hydrochloric acid and saturated brine.
  • the organic layer was dried over anhydrous sodium sulfate, concentrated under reduced pressure, and the residue was purified by silica gel column chromatography (hexane / ethyl acetate) to give 41 as a pale yellow solid.
  • E-serourid and EAHA-seleurid (removal of benzyl group by hydrogenolysis reaction)
  • a mixture of 41 (20 mg), methanol (5 mL) and 10% palladium carbon (2 mg) was placed in a hydrogenation flask, and stirred at room temperature for 3 hours under a hydrogen stream (3 atm).
  • the catalyst was removed by filtration, and the filtrate was concentrated under reduced pressure to obtain E-seleuride and EAHA-seleuride.

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Abstract

セレウリドおよびその誘導体の新たな製造方法、セレウリドの中間体および新規セレウリド誘導体を提供することを目的とする。 新規なジデプシペプチド、テトラデプシプチド、オクタデプシペプチド、およびドデカデプシペプチドを調製する。そして、それらの新規なデプシペプチドから構成されるセレウリドまたはその誘導体の線状前駆体の分子内アミド結合形成による環化反応を行わせる。

Description

セレウリドおよびその誘導体の製造方法、セレウリド製造の為の中間体ならびにセレウリド誘導体
　本発明は、セレウリドおよびその誘導体の製造方法に関する。本発明はまた、セレウリドの製造の為の中間体およびセレウリド誘導体に関する。
　土壌中に生息するバチルスセレウス（Bacillus cereus）菌は、米飯、ピラフ、スパゲティーなどの澱粉系食品中に繁殖して、ヒトなどの動物に対して嘔吐作用を惹起するセレウリドを産生する。全てのセレウス菌がセレウリドを産生するのではなく、セレウリド合成遺伝子を獲得したセレウス菌のみがこの毒性物質を作り出すことも知られている。
　現在、セレウリドによる食中毒が疑われた場合、その食品の抽出物中のセレウリドをＨＰＬＣやＬＣ／ＭＳで同定する方法が行われている。セレウリドの細胞空胞化作用を指標として、細胞を用いるバイオアッセイを行う方法もある。
　このようなセレウリドは、耐熱性、耐酸性、耐消化酵素抵抗性が高く、調理や消化の過程で失活せず、小腸神経系に作用して嘔吐現象を誘発することが知られており、さらに、肝臓障害、ミトコンドリア毒性、細胞の形態変化誘導、アポトーシス誘導等が報告されているが、嘔吐現象の分子機構やその他の毒性についての分子レベルでの研究は進展していない。
　食中毒の判定等のために、検体中の合成酵素遺伝子の検出による方法（特許文献１および２）も提案されている。
　しかしながら、高価な分析機器や熟練した技術を必要とする方法ではなく、簡便な分析方法の開発が望ましい。
　セレウリドによる食中毒の判定のための定性または定量分析や、さらには、細胞あるいは分子レベルでの毒性評価や機構の解明の為に、純粋なセレウリド標準品が必要とされることが多い。現在市販されているセレウリドは、セレウス菌の培養液から抽出され、メタノール溶液として入手できる。
　このようなセレウリドを得る方法として、セレウリドとその誘導体を合成する方法も提案されている（非特許文献１および２）。
国際公開３／０９７８２１号公報 特許公開２００６－６２５６号公報
Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters, Vol. 5, No. 23, 2855-2858 (1995) Synthesis 2009, No. 13, 2184-2204
　現在市販されているセレウリドは、非常に高価であり、培養液由来である為に純度もそれ程高くない。簡易に高純度のセレウリドを製造することが望まれている。
　そこで本発明の目的は、セレウリドおよびその誘導体の製造方法、ならびにセレウリド誘導体を提供することにある。
　本発明者らは、鋭意研究を重ねた結果、以下に示す、セレウリドおよびその誘導体の製造方法、その中間体ならびにセレウリド誘導体により上記目的を達成できることを見出し、本発明を完成するに到った。
　即ち、本発明は、以下の式： 
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000010
 および
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000011
 （ここで、Ｙは、ＯＨまたはＮＨ（ＣＨ２）５ＣＯＯＨを表わす）
　からなる群より選択される、セレウリドまたはその誘導体の前駆体、に関する。
　本発明はさらに、
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000012
 または
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000013
 （ここで、Ｘは、イソプロピル、（ＣＨ２）２ＣＯＯＨ、または（ＣＨ２）２ＣＯＮＨ（ＣＨ２）５ＣＯＯＨを表わす）で表わされるジデプシペプチド、に関する。
　本発明はさらに、以下に示すデプシペプチド
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000014
 （ここで、lは０～２の整数、ｎは０～２の整数、ｍは０または１の整数を示し、ここで、ｌ、ｍ、およびｎは同時に０にはならず、ｌ＋ｍ＋ｎは２以下である。）に関する。
　本発明はさらに、
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000015
 （ここで、Ｘは、イソプロピル、（ＣＨ２）２ＣＯＯＨ、または（ＣＨ２）２ＣＯＮＨ（ＣＨ２）５ＣＯＯＨを表わす）
に示すセレウリドまたはその誘導体を製造する方法であって、上記セレウリドまたはその誘導体の前駆体の分子内アミド結合形成による環化反応を含む、製造方法、に関する。
　上記製造方法において、さらに、上記ジデプシペプチドを調製する工程を含むことが好ましい。
　上記製造方法において、さらに、上記
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000016
 のデプシペプチドを調製する工程を含むことが好ましい。
　本発明はさらに、以下の式：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000017
 （ここで、Ｒは、（ＣＨ２）２ＣＯＯＨまたは（ＣＨ２）２ＣＯＮＨ（ＣＨ２）５ＣＯＯＨを表わす）で示されるセレウリド誘導体、に関する。
　本発明のセレウリドおよびその誘導体の製造方法によれば、簡易に純度の高いセレウリドまたはその誘導体を得ることができる。さらに、本発明のセレウリド誘導体は、セレウリド検出の為の抗体作成に有用である。
本発明のオクタデプシペプチドの１H－NMR（CDCl３）スペクトラムを示す図である。 本発明のドデカデプシペプチドの１H－NMR（CDCl３）スペクトラムを示す図である。 本発明のドデカデプシペプチドの１H－NMR（CDCl３）スペクトラムを示す図である。 本発明のドデカデプシペプチドの１H－NMR（CDCl３）スペクトラムを示す図である。 本発明のセレウリドの１H－NMR（CDCl３）スペクトラムを示す図である。
　セレウリドは，６個のアミノ酸と６個のヒドロキシ酸が、アミド結合とエステル結合で交互に連結した３６員環の大環状化合物 (マクロライド) であり、シクロドデカデプシペプチドとも呼ぶこともできる。セレウリドは、２種類のアミノ酸、L－バリン（L-Val）とD－アラニン（D-Ala）、および２種類のα－ヒドロキシ酸のD－ロイシン酸（D-O-Leu）とL－バリン酸（L-O-Val）から構成される以下のような構造を有している。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000018
　多くの場合、セレウリドは、Ｋ＋、Ｎａ＋、ＮＨ４ ＋のイオノフォアとして機能する。このような捕捉作用が生物活性の原因とも考えられる。
　発明者らは、セレウリドの全合成においては、直線状の前駆体を環化して３６員環構造を構築する工程が最も重要な鍵段階と考え、この環化反応を達成する為に、従来、エステル結合の形成による方法が取られていることに着目した。セレウリドと誘導体に関して、従来知られている合成方法は、全て以下の概略図に示すような環化工程を含む。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000019
　本発明では、セレウリドの繰り返し構造単位としての、テトラデプシペプチド L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Valに着目した。すなわち、セレウリドは、この繰り返し構造単位が３個連結して環状となったマクロライドであり、(L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Val)3 と書き表すこともできる。
　本発明は、従来法とは異なり、アミド結合形成による大環状の構築を鍵反応とする新規な製造方法に関するものである。本発明の製造方法における出発原料は全て市販されており、２つのヒドロキシ酸、すなわち、D-ロイシン酸（D-O-Leu）とL-バリン酸（L-O-Val）は、市販のD-ロイシンおよびL-バリンから文献既知の方法で調製し、以降のフラグメント合成に用いることができる。
　さらに、本発明では、デプシペプチド合成において、ペプチド鎖が長くなるにつれて立体障害が大きくなり、有機溶媒に対する溶解度が低下して反応収率の低下を招くという問題点に留意し、このような問題を回避するため、まず、繰り返し構造単位のテトラデプシペプチドを合成し、次いで、この構造単位を２つ結合させてオクタデプシペプチド（２ x 構造単位）を得た後、さらにテトラデプシペプチドと結合させて、３構造単位の直鎖状ドデカデプシペプチド（前駆体）を作成し、環化させるという手法を取ることとした。
　本発明におけるアミド結合構築による、前駆体の分子内環化反応は、縮合剤、溶媒、温度等の種々の反応条件を変えて行い、高い収率を実現するための最適化を図ることも可能である。
　本発明の方法によれば、セレウリドおよびその誘導体合成を市販の原料（アミノ酸）に求めることができる。すなわち、セレウリドの合成には、L-バリン、D-ロイシン、D-アラニンを、また、誘導体合成においては、これらに、L-グルタミン酸と6-アミノヘキサン酸を加えて行うことができる。
　以下、本発明の方法を、フラグメントの合成段階ごとに詳述する。なお、製造に使用する保護基としては、WILEY-Interscience 出版「Protective Groups in Organic Synthesis (1999)」に記載されている保護基等が適宜使用される。
　まず、合成に必要なアミノ酸として、Ｌ－バリンは、任意の保護基をつけて合成に供することもできるし、保護基をつけた状態での市販品をそのまま用いることもできる。市販品としては、例えば、東京化成製のtert-ブトキシカルボニル基で保護したBoc－L－バリンがある。
　次にD‐ロイシン酸およびL‐バリン酸は、それぞれ、D－ロイシンおよびL－バリンより合成することができる。D‐ロイシン酸やL‐バリン酸のようなヒドロキシ酸は、D‐ロイシン酸およびL‐バリン酸のアミノ基を水酸基に変換できる方法であればいかなる方法でも使用できる。
　代表的には、例えば、D－ロイシンまたはL－バリンを、亜硝酸塩と反応させる方法が挙げられる。この反応に先だって、D－ロイシンまたはL－バリンは、硫酸あるいは塩酸のような強酸中に溶解させて用いることが好ましい。
　さらに、このようにして得られたヒドロキシ酸を次の反応に備えて、保護基をつけておくこともできる。保護基としては、ベンジル基などが好ましく用いられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000020
　同様にD－アラニンに保護基を付加して次の反応に備えることもできる。
　次にこのようにして得られたアミノ酸およびヒドロキシ酸を用いて、ジデプシペプチドを合成する。
　ジデプシペプチドは、脱水反応によるエステル化を達成できる条件であれば、どのような条件で合成してもよい。限定はされないが、特に好ましいのは、ジクロロメタン溶液などの溶媒に、ジメチルアミノピリジンなどの強塩基とジシクロヘキシルカルボジイミドを加えて行う反応である。
　L‐バリンとD‐ロイシン酸とを結合させて、その後、カルボキシル基を保護する基を除去して、次のテトラデプシペプチドの合成に供することが好ましい。一方、D‐アラニンとD‐バリン酸とを結合させて、その後、アミノ基を保護する基を除去して、次のテトラデプシペプチドの合成に供することができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000021
　次に、得られたジデプシペプチドを結合させて、テトラデプシペプチドを合成する。この時、アミド結合を達成できる条件であれば、どのような条件で行ってもよい。好ましくは、中性条件下で、各種縮合剤を作用させる方法を採用することができる。テトラデプシペプチドは、セレウリドの合成の為の繰り返し単位になるものであり、次の合成のしやすさの為に、例えば、末端のそれぞれ別の箇所に保護基を付加したフラグメントＡおよびフラグメントＢの２種類を作成しておくことも望ましい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000022
　セレウリド合成の鍵中間体である保護された繰り返し構造単位フラグメントＡ (12)とフラグメントＢ (13)を上記の経路で合成した。
　さらに、このようにして得られたフラグメント同士をアミド結合させることによって、オクタデプシペプチドを合成し、さらに、ドデカデプシペプチドを合成する。
　このようにして得られる線状のドデカデプシペプチドを、分子間反応を防ぎつつ、環化させて、セレウリドを合成することが好ましい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000023
　より詳細には、分子内環化反応は、縮合剤、溶媒、温度等の種々の条件を最適化することで、効率よく進ませることが可能である。
　縮合剤としては、限定されるものではないが、例えば、ジフェニルホスホリルアジド（DPPA）、ジエチルホスホリルシアニデート、アジドトリス（ジメチルアミノ）ホスホニウムヘキサフルオロリン酸塩等の有機リン化合物、N-エトキシカルボニル-2-エトキシ-1,2-ジハイドロキノリン（EEDQ）、1-イソブチル-2-イソブチル-1,2-ジヒドロキシキノリン等のキノリン系ペプチド縮合剤、Ｏ－（７－アザベンゾトリアゾール－１－イル）－Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’－テトラメチルウロニウム ヘキサフルオロホスファート（HATU）、Ｏ－（ベンゾトリアゾール－１－イル）－Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’－テトラメチルウロニウムヘキサフルオロホスファート（HBTU）等のウロニウム系縮合剤、ジイソプロピルカルボジイミド（DIC）、ジシクロヘキシルカルボジイミド（DCC）、Ｎ－（３－ジメチルアミノプロピル）－Ｎ’－エチルカルボジイミド等のカルボジイミド類、（ベンゾトリアゾール－１－イルオキシ）トリス（ジメチルアミノ）ホスホニウム ヘキサフルオロホスファート、（ベンゾトリアゾール－１－イルオキシ）トリスピロリジノホスホニウム ヘキサフルオロホスファート、ブロモトリピロリジノホスホニウム ヘキサフルオロホスファート等のホスホニウム系縮合剤が挙げられる。さらに、これらの縮合剤を1-ヒドロキシ-7-アザベンゾトリアゾール(HOAt)や１－ヒドロキシベンゾトリアゾール（HOBt）のような添加剤と共に使用することもできる。
　この時に用いられる反応溶媒には、塩化メチレン、ジメチルホルムアミド等が挙げられる。
　環化反応においては、通常の状態では分子間結合が起こる可能性もあることから、高度希釈法により環化反応を行うことが好ましい。
　本環化反応では、分子内反応が分子間反応に優先し、目的物の単離収率を高くすることが可能である。すなわち、副産物の生成を抑え、分子内環化反応を優先することが好ましい。
　本発明は、さらに、セレウリドの誘導体（誘導体）合成に高い応用性を有している。すなわち、繰り返し構造単位中の構成アミノ酸あるいはヒドロキシ酸を適宜変更することにより、簡便な誘導体合成が可能となる。
　例えば、L-バリンをL-グルタミン酸で置き換えたE-セレウリド、およびE-セレウリドにアミノヘキサン酸を導入したEAHA-セレウリド等の新規な誘導体合成を行うことができる。
　これらの新しい化合物は、抗セレウリド抗体の作製をはじめ、不明な部分の多いセレウリドの生理活性機構解明の有用なツール分子になると期待される。 
　すなわち、E-セレウリドは、セレウリド中の一つのL-バリンをL-グルタミン酸に替えた誘導体であり、EAHA-セレウリドはE-セレウリドのオメガカルボキシル基がアミノヘキサン酸で修飾されたものである。これら２つの誘導体は、３６員環の外側に炭素鎖を介して反応性に富むカルボキシル基が配置されていて、さらなる化学修飾が可能であり、抗セレウリド抗体作製のためのハプテン分子や標識分子として用いることが可能である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000024
　このようなセレウリド誘導体の合成は、セレウリドの繰り返し単位である、３つのテトラデプシペプチド L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Valの１つを、L-バリンの代わりにL-グルタミン酸{R= (CH2)2COOH}またはL-グルタミン酸＋アミノヘキサン酸{R= (CH2)5COOH}として作成することで、行うことができる。
　すなわち、具体的には以下のような方法で行うことが可能である。例えば市販の保護Ｌ-グルタミン酸誘導体等を出発物質として、合成できる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000025
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000026
　ジデプシペプチドは、脱水反応によるエステル化を達成できる条件であれば、どのような条件で合成してもよい。限定はされないが、特に好ましいのは、ジクロロメタン溶液などの溶媒に、ジメチルアミノピリジンなどの強塩基とジシクロヘキシルカルボジイミドを加えて行う反応である。
　その後、カルボキシル基を保護する基を除去して、次のテトラデプシペプチドの合成に供することが好ましい。一方、D‐アラニンとD‐バリン酸とを結合させて、その後、アミノ基を保護する基を除去して、次のテトラデプシペプチドの合成に供することができる。
　得られたジデプシペプチドを結合させて、テトラデプシペプチドを合成する。この時、アミド結合を達成できる条件であれば、どのような条件で行ってもよい。好ましくは、中性条件下で、各種縮合剤を作用させる方法を採用することができる。次の合成のしやすさの為に、フラグメントＣおよびフラグメントＤの２種類を作成しておくことが望ましい。
　さらに、このようにして得られたフラグメント同士をアミド結合させることによって、オクタデプシペプチドを合成し、さらに、ドデカデプシペプチドを合成する。その一例を以下に示すが、テトラデプシペプチド同士をつなげる方法、保護基の位置などは適宜変更することができ、これに限定されない。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000027
　ここで、デプシペプチドを合成する際に、L-グルタミン酸（Series a）またはL-グルタミン酸＋アミノヘキサン酸（Series b）を有する34a, bは、フラグメントＡとフラグメントＢとに挟まれるように結合させてもよく、さらに、保護基の位置を適宜変えることで、34a, bのカルボキシル基末端にフラグメント５のアミノ基末端を結合させることもできる。
　このようにして得られる線状のドデカデプシペプチドは、分子間反応を防ぎつつ、環化させてセレウリド誘導体を合成することが好ましい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000028
　（ここで、Ｒは、（ＣＨ２）２ＣＯＯＨ、または（ＣＨ２）２ＣＯＮＨ（ＣＨ２）５ＣＯＯＨを表わす）
　このようなセレウリド誘導体は、容易に修飾が可能であり、抗体の製造の為の抗原の製造に有用である。さらには、セレウリドの生理機能解明のツールとする為に、標識化することも可能である。
　抗体の製造の為の抗原とするには、セレウリド誘導体のカルボキシル基部分に、ウシアルブミン（BSA）やカブトガニヘモシアニン（KLH）などの高分子を結合させることが好ましい。
　生理機能解明のツールとなる標識化セレウリドは、例えば、セレウリド誘導体のカルボキシル基部分に、ビオチンなどの標識物質を共有結合させることで達成され得る。
　セレウリドの生理活性を分子レベルで明らかにするためのツールとして、E-セレウリドの側鎖にビオチンを導入した光標識体を合成した。
　以上の合成の各工程では、いずれも、適宜に、中和工程、精製工程を施した後に、次工程が施されてもよい。上記各工程における各生成物は、単離精製されても、そのまま次の工程に供してもよい。単離精製手段は、洗浄、抽出、再結晶法、各種クロマトグラフィーなどが包含される。各工程における各生成物は、これらの単離精製手段を単独で、あるいは適宜２種以上を組み合わせて使用して行うこともできる。
　本発明の方法で得られるセレウリドおよびその誘導体は、高収率でかつ純度が高い為、セレウリドの標品として、有用性が高い。本発明において、セレウリドの標品を含むセレウリド検出キットを提供することもできる。このようなセレウリド検出キットは、セレウリドを溶解する溶媒、培地等とともに提供され得る。さらに、セレウリドのカリウムイオン取り込みの性質を利用したカリウムイオン選択電極、癌細胞へのアポトーシス作用を利用した制癌剤としての応用など幅広く使用することができる。さらに、ドラッグデリバリーシステムなどと組み合わせて、より特異的な癌細胞選択性を持たせることも可能である。
　本発明のセレウリド誘導体は、そのまま、あるいは薬学的に許容できる塩の形態で、あるいはそれらと薬学的に許容できるキャリアーと混合して当業者に公知の製剤の形で、用いられうる。
　薬学的に許容できる塩には、無機塩基との塩、有機塩基との塩、無機酸との塩、有機酸との塩、塩基性または酸性アミノ酸との塩などが挙げられる。無機塩基との塩の好適な例としては、例えばナトリウム塩、カリウム塩などのアルカリ金属塩;カルシウム塩、マグネシウム塩などのアルカリ土類金属塩;ならびにアルミニウム塩、アンモニウム塩などが挙げられる。有機塩基との塩の好適な例としては、例えばトリメチルアミン、トリエチルアミン、ピリジン、ピコリン、エタノールアミン、ジエタノールアミン、トリエタノールアミン、ジシクロヘキシルアミン、Ｎ,Ｎ'－ジベンジルエチレンジアミンなどとの塩が挙げられる。無機酸との塩の好適な例としては、例えば塩酸、臭化水素酸、硝酸、硫酸、リン酸などとの塩が挙げられる。有機酸との塩の好適な例としては、例えばギ酸、酢酸、トリフルオロ酢酸、フマール酸、シュウ酸、酒石酸、マレイン酸、クエン酸、コハク酸、リンゴ酸、メタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、p－トルエンスルホン酸などとの塩が挙げられる。塩基性アミノ酸との塩の好適な例としては、例えばアルギニン、リジン、オルニチンなどとの塩が挙げられ、酸性アミノ酸との塩の好適な例としては、例えばアスパラギン酸、グルタミン酸などとの塩が挙げられる。
　以下に、本発明のセレウリドおよびその誘導体の製造の具体例を実施例の態様で示すが、本発明はこれに限定されない。
　下記実施例において、化合物の分析および分離精製は、以下の機種や試薬を用いて行った。
・ＮＭＲスペクトル：日本電子　ＪＭＴＣ－４００／５４／ＳＳ　４００　ＭＨｚ（日本電子社製）。特に明記しない限り、液体試料はNaClフィルム，固体試料はKBrペレットとして測定し、文中には吸収波長をcm-1で示した。）また、下記ケミカルシフトはδ値で示した。
・融点：BUCHI Melting point B-545を用いて測定した（すべての融点は補正していない）。
・ＩＲ：JASCO FT/IR-460 plusを用いて測定した。(特に明記しない限り、液体試料はNaClフィルム，固体試料はKBrペレットとして測定し、文中には吸収波長をcm-1で示した。)
・質量分析：BRUKER DALTONICS社製  MALDI-TOF-MSを用いて測定した。
・薄層クロマト (TLC)：MACHEREY-NAGEL DC-Fertigplatten SIL G-25 UV254プレートを用い，次の溶媒系を用いて展開した。本文中では以下の記号で示した。
(A) n-ヘキサン：酢酸エチル＝3 ： 1
(B) クロロホルム：メタノール＝ 9 ：1
(C) クロロホルム：メタノール：酢酸＝ 85 ： 15 ： 3
(D) クロロホルム：メタノール：トリエチルアミン ＝90 ： 10 ： 3
(E) トルエン：酢酸エチル＝ 1 ：1
(F) n-ヘキサン：酢酸エチル＝ 1 ： 1
　なお、以下、実施例１から５は、本発明のセレウリドの合成を表わし、実施例６から１０は、本発明のセレウリド誘導体の合成を表わす。
（実施例１）
Boc アミノ酸の合成
（１） Boc-L-バリン ( 1 )
市販 (東京化成製) 品を精製することなく用いた。
・mp ; 78℃　
・[a]D -6.5°(c 1.0, AcOH)
（２）Boc-D-アラニン ( 2 )
　氷冷下、炭酸ナトリウム (19.1 g, 179.6 mmol) 水溶液 (150 mL) にD-アラニン ( 11, 8.0 g, 89.8 mmol) を溶解し、ここに二炭酸ジdi-tert-ブチル(Boc2O, 21. 6 g, 98.8 mmol) のTHF (20 mL) 溶液を滴下した。滴下終了後、反応液を室温に戻し一晩攪拌を続けた。反応液を分液ロートに移し、過剰のBoc2Oをジエチルエーテル抽出して除去した。水層にクエン酸を加えてpH 3に調整した後、酢酸エチルで3回抽出した。合した有機層を飽和食塩水で１回洗浄し、有機層を無水Na2SO4で乾燥、減圧濃縮した後、濃縮残渣を酢酸エチル－ヘキサンより再結晶化して無色結晶の2 (15.51 g, 91.3 %)を得た。
・TLC ; Rf = 0.48 (C)
・mp ; 83.5℃
・1H-NMR (CDCl3); 1.40-1.45 (12H, m), 4.24-4.38 (1H, m, CHCH3), 4.98-5.10 (1H, br s, NH)
・[a]D +25.1 (AcOH, c 2.02 , 26.6℃)
・IR ; 3378, 2995, 2639, 2569, 1736, 1161
ヒドロキシ酸 ( 3, 5 ) とそのベンジルエステル ( 4, 6 )の合成
（３） D-O-ロイシン {(2R)-2-ヒドロキシ-4-メチルペンタン酸} ( 3 ) 1)
　氷冷下、D-ロイシン (13.11 g, 100 mmol) を1N 硫酸（150 mL）に溶解し、ここに亜硝酸ナトリウム (10.35 g, 150 mmol) の水溶液（50 mL）を滴下ロートから滴下した。反応液を氷冷下で３時間攪拌した後、室温下でさらに６時間攪拌して酢酸エチルで３回抽出した。合した有機層を飽和食塩水で1回洗浄、無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮した。濃縮残渣を酢酸エチル－ヘキサンから再結晶して、無色結晶のD-O-ロイシン 3 (9.60 g, 72.7 %)を得た。
・TLC ; Rf = 0.33 (C)
・mp ; 80.1℃ (lit.1) 78℃)
・1H-NMR (DMSO); 0.36 (3H, d, J = 6.34 Hz, CH(CH 3 )2), 0.38 (3H, d, J = 6.34 Hz, CH(CH 3 )2), 0.85-0.98 (2H, m, CH 2 ), 1.17-1.32 (1H, m, CH(CH3)2), 3.43 (1H, dd J1 = 8.78, J2 = 4.88, CHCH2)
・13C-NMR (DMSO); 21.55, 23.24, 23.97, 42.98, 68.22, 176.41
・[a]D + 11.7°(MeOH, c 1.03 , 22.5 ℃）{lit.1) +11.8°(MeOH, c 1.03)}
・IR ; 3424, 2911, 1713
（４） L-O-バリン { (2S)-2-ヒドロキシ-3-メチルブタン酸} ( 5 )
　L-O-バリン ( 5 ) は、市販のL-バリンを原料として、3 の合成と同様の方法で調整した。すなわち、氷冷下、L-バリン (11.71 g, 100 mmol) の1 N 硫酸 (150 mL)溶液に、亜硝酸ナトリウム (10.35 g, 150 mmol) 水溶液 (50 mL) を滴下し、滴下終了後、氷冷下で３時間、次いで室温下で６時間攪拌を続けた。反応液を酢酸エチルで３回抽出し、合した有機層を飽和食塩水で1回洗浄して、混在する微量の硫酸を除き、無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮した。濃縮残渣を酢酸エチル－ヘキサンから再結晶して、5 (7.07 g, 59.9 %) を無色結晶として得た。
・TLC ; Rf = 0.37 (C)
・mp ; 64.1 ℃ (lit.2) 66 - 68 ℃)
・1 H-NMR (DMSO); 0.80 (3H, d, J = 3.17 Hz, CH(CH 3 )2), 0.87(3H, d, J = 3.17 Hz, CH(CH 3 )2), 1.85-1.95 (1H, m, CH(CH3)2), 3.72 (1H, d, J = 4.63Hz, CHCH(CH3)2), 5.02 (1H, br, COOH)
・13C-NMR (DMSO); 16.89, 19.05, 31.55, 74.64, 175.51
・[a]D +16.8°(CHCl3, c 1.01 , 23.5 ℃) { lit.2); + 20°(CHCl3, c 4)}
・IR ; 3433, 2970, 2186, 1714
（５）D-O-ロイシン ベンジル エステル {ベンジル (2R)-2-ヒドロキシ-4-メチルペンタノエート} ( 4 )
　D-O-ロイシン ( 3, 3.36 g, 25.4 mmol)、ベンジルアルコール (7.9 mL, 76.0 mmol)、パラトルエンスルホン酸・１水和物 (50 mg, 0.26 mmol)、およびトルエン(100 mL)の混合物をDean-Stark装置を取り付けたナス型フラスコ中で７時間加熱還流し、共沸分離により発生した水を除いた。TLCで原料の消失を確認した後、反応液を室温に戻し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、次いで飽和食塩水で洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥、エバポレ－タで減圧濃縮した。濃縮残渣中に含まれるベンジルアルコールをガラスチューブオーブン (bulb to bulb蒸留) 装置を用いて、減圧下 (8 mHg ＜) で留去した。この残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー (ヘキサン：酢酸エチル＝90：10) により精製して、淡黄色油状物4 (4.95 g, 80.8 %) を得た。
・TLC ; Rf = 0.38 (A)
・1H-NMR (CDCl3); 0.91(3H, d, J = 4.39 Hz, CH(CH 3 )2), 0.94(3H, d, J = 4.39 Hz,CH(CH 3 )2), 1.56-1.62 (2H, m, d, CH 2 ), 2.60-2.65 (1H, m, OH),4.18-4.26 (1H, m, CHCH2), 5.19 (2H, ABq, CH 2 Ph), 7.30-7.40 (5H, m, ArH)
・13C-NMR (CDCl3); 21.52, 23.21, 24.39, 67.25, 69.15, 128.30, 128.30, 128.52, 128.64, 135.21, 175.71)
・[a]D + 15.4°(CHCl3, c 1.02 , 26.8 ℃) 
・IR ; 3475, 2956, 2872, 1736, 1607, 1497, 1140
（６）L-O-バリン ベンジル エステル{ ベンジル (2S)-2-ヒドロキシ-3-メチルブタノエート} ( 6 ) 
　ベンジルエステル ( 6 ) は上記 4 と同様の方法で合成した。
　L-O-バリン ( 5，3.0 g, 25.4 mmol )、ベンジルアルコール (7.9 mL, 76.0 mmol)、 p-トルエンスルホン酸・１水和物 (50 mg, 0.26 mmol)、およびトルエン (100 mL)、の混合物をDean-Starkの装置を取り付けた反応容器中で７時間加熱還流し，同様の処理と精製を行って，淡黄色油状物の6 (4.57 g, 86.4 %) を得た。
・TLC ; Rf = 0.44 (A)
・1H-NMR (CDCl3); 0.83( 3H, d, J = 6.09 Hz, CH(CH 3 )2 ), 1.01( 3H, d, J = 6.09 Hz, CH(CH 3 )2 ), 2.02-2.14(1H, m, CH(CH3)2), 2.69 (1H, d, J = 6.09, OH), 4.06-4.11(1H, m, CHCH), 5.22 (2H, ABq, CH 2 Ph), 7.31-7.60 (5H, m, ArH)
・13C-NMR (CDCl3); 15.82, 18.77, 32.14, 67.29, 74.98, 128.41, 128.56, 128.64, 135.16, 174.82
・[a]D －9.60°（CHCl3, c 2.19 , 26.0℃） 
・IR ; 3505, 3065, 3034, 2965, 2934, 2876, 1733, 1497, 1460, 1137
（実施例２）
　ジデプシペプチド ( 7, 8 )の合成
（７）Boc-L-Val-D-O-Leu-OBn ( 7 ) 
　氷冷下、D-O-ロイシン ベンジル エステル ( 4, 5.0 g, 22.5 mmol) および市販のBoc-L-バリン ( 1, 5.38 g, 24.8 mmol) のジクロロメタン (80 mL) 溶液に、ジメチルアミノピリジン (DMAP, 0.55 g, 4.50 mmol)、次いでN,N'-ジシクロヘキシルカルボジイミド (DCC, 5.86 g, 28.4 mmol) を加えた。この反応液を氷冷下で一晩攪拌した後、副成したDCureaを吸引濾過して除き、濾液を減圧濃縮した。濃縮残渣を酢酸エチルに溶かして、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、次いで飽和食塩水で洗浄し、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮した。この濃縮残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン／酢酸エチル）より精製して、無色固体の 7 (9.30 g, 98 %.) を得た。
・TLC ; Rf = 0.56 (A)
・1H-NMR (CDCl3); 0.78-0.92 (12H, m, CH(CH 3 )2), 1,37 (9H, s, tert-Bu), 1.50-1.82(3H, m), 2.02-2.20 (1H, m, CH(CH3)2), 4.18-4.32 (1H, m,  CHCH2CH(CH3)2), 4.91 (1H, d, J = 8.78 Hz, NH), 5.04 (1H, dd, J1 = 10.0 Hz, J2 = 3.66 Hz), 5.10 (2H, ABq, CH 2 Ph), 7.28-7.36 (5H, m, ArH) 
・13C-NMR (CDCl3); 17.31, 19.04, 21.27, 23.04, 24.49, 28.30, 31.23, 39.62, 58.62, 67.04, 71.59, 79.72, 128.22, 128.41, 128.59, 135.22, 155.49, 170.12, 171.78
・[a]D + 15.58°(CHCl3, c 0.40 , 16.6 ℃）
・IR ; 3384, 2964, 2875, 1746, 1717, 1501, 1462, 1177
（８）Boc-L-Val-D-O-Leu-OH ( 8 )   (加水素分解によるベンジル基の除去)
　水素添加用フラスコに、Boc-L-Val-D-O-Leu-OBn (7, 2.70 g, 6.40 mmol)、メタノール (30 mL)、および10% パラジウム炭素 (135 mg) の混合物入れ、水素気流（３気圧）下、室温で３時間攪拌した。TLCで反応の進行を確認した後、触媒を濾去し、濾液を減圧濃縮して無色固体の8 (2.14 g, quant) を得た。これは、これ以上精製することなく次の反応に用いた。
・TLC ; Rf = 0.55 (C)
・mp ; 95.8℃
・1H-NMR (CDCl3); 0.86-1.06 (12H, m, CH(CH 3 )2), 1.44 (9H, s, tert-Bu), 1.72-1.80(2H, m, CH 2 CH(CH3)2), 1.80-1.86 (1H, m, CHCH(CH3)2),　2.14-2.28 (1H, m, CH2CH(CH3)2), 4.22-4.33 (1H, m, CHCH2), 5.00-5.06 (1H, m, NH), 5.06-5.14 (1H, m, CHCH(CH3)2)
・13C-NMR (CDCl3); 17.49, 19.06, 21.17, 23.06, 24.54, 28.28, 30.93, 39.62, 52.49, 58.86, 69.99, 71.19, 80.19, 113.79, 121.42, 155.84, 174.30
・IR ; 3516, 3396, 3093, 2961, 2606, 1726, 1520, 1463, 1409, 1178
（９）Boc-D-Ala-L-O-Val-OBn ( 9 )4)
　ジデプシペプチド( 9 ) は、7 の合成と同様に行った。すなわち、Boc-D-アラニン ( 2, 4.46 g, 23.6 mmol)、L-O-バリン ベンジル エステル ( 6, 4.10 g, 19.7 mmol) およびジクロロメタン (50 mL) を氷冷下に撹拌し、ここにDMAP (0.72 g, 5.90 mmol) 、次いで DCC (5.07 g, 24.59 mmol) を加え、氷冷下で一晩攪拌した。副成したDCureaを吸引濾去、濾液を減圧濃縮して、濃縮残渣を酢酸エチルに溶かした。この酢酸エチル溶液を飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、次いで飽和食塩水で洗浄し、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮した。濃縮残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン／酢酸エチル）より精製して、無色固体の9 (7.66 g, quant) を得た。
・TLC ; Rf = 0.56 (A)
・mp ; 63.4℃
・1H-NMR (CDCl3); 0.94 (3H, d, J = 6.83 Hz, CH(CH 3 )2), 0.98 (3H, d, J = 6.83 Hz,CH(CH 3 )2), 1.41 (3H, d, J = 7.07 Hz, CHCH 3 ), 1.45 (9H, s, tert-Bu), 2.22-2.34 (1H, m, CH(CH3)2), 4.43-4.50 (1H, m, CHCH3), 4.93 (1H, d, J = 4.39, CHCHCH3), 5.03 (1H, br, NH), 5.18 (2H, ABq, CH 2 Ph), 7.28-7.40 (5H, m, ArH)
・13C-NMR (CDCl3); 17.01, 18.59, 18.70, 28.31, 30.12, 49.33, 66
.97, 79.76, 128.32, 128.43, 135.22, 154.91, 169.06, 172.74 
・IR ; 3396, 2976, 1741, 1688, 1509, 1459, 1161
・[a]D - 10.70°(CHCl3, c 1.02, 27.0℃) 
（１０）H2N-D-Ala-L-O-Val-OBn・TFA ( 10 )   (Boc基の除去)
　氷冷下、Boc-L-Val-D-O-Leu-OBn ( 9 ) (2.43 g, 6.40 mmol) のジクロロメタン (7.5 mL) 溶液に、トリフルオロ酢酸 (TFA, 7.5 mL) を加えた。この反応液を氷冷下で30分間、次いで室温下で30分間攪拌した。TLCでBoc基が除去されたことを確認した後、減圧濃縮して淡黄色油状物の10 (2.41 g, quant) をTFA塩として得た。これは、これ以上精製することなく次の反応に用いた。
・TLC ; Rf = 0.51 (B)
・1H-NMR (CDCl3); 0.82 (3H, d, J = 6.83 Hz, CH(CH 3 )2), 0.87 (3H, d, J = 6.83 Hz, CH(CH 3 )2), 1.54 (3H, d, J = 7.32 Hz, CHCH 3 ), 2.12 (1H, m, CH(CH3)2), 4.12 (1H, q, J = 7.32 Hz, CHCH3), 4.91 (1H, d, J = 4.15, CHCH(CH3)2), 5.06(2H, ABq, CH 2  Ph), 7.20-7.30(5H, m, ArH)
・13C-NMR (CDCl3); 15.54, 16.77, 18.40, 30.05, 49.01, 67.39, 78.35, 128.45, 128.57, 128.60, 134.96, 168.69, 169.70
・IR ; 3420, 3035, 2970, 1742, 1674, 1527, 1461, 1141
（実施例３）
（１１）テトラデプシペプチド、フラグメントＡおよびフラグメントＢの合成（１１）Boc-L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Val-OBn ( 11 ) 氷冷下，ジデプシペプチドH2N-D-Ala-L-O-Val-OBn・TFA塩( 10, 2.41 g, 6.40 mmol) のアセトニトリル (10 mL) 溶液に、N,N-diisopropylethylamine (DIPEA, 1.12 mL, 6.43 mmol) を加えて中和した後、Boc-L-Val-D-O-Leu-OH ( 8, 2.14 g，6.40 mmol) のアセトニトリル溶液 (5 mL) を加え、次いで1-ethyl-3-(3-diメチルaminopropyl)carbodiimide (EDC) 塩酸塩 (1.35 g, 7.04 mmol) を加えた。氷冷バスを取り除いて、室温下で一晩攪拌した後、溶媒を減圧留去した。この残渣を酢酸エチルに溶解して、有機層を10%クエン酸水溶液、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、および飽和食塩水で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮した。この残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン／酢酸エチル）により精製して、無色油状物の11 (3.56 g, 94 %)を得た。
・TLC ; Rf = 0.33 (A)
・1H-NMR (CDCl3); 0.84-1.04 (18H, m, CH(CH 3 )2), 1.41 (9H, s, tert-Bu), 1.64-1.84 (3H, m), 2.06-2.15 (1H, m, , CHCH(CH3)2), 2.18-2.30 (1H, m, CH2 CH(CH3)2), 4.06-4.17 (1H, m, CHCH3), 4.52- 4.63 (1H, m, CHCH2CH(CH3)2), 4.86-4.94 (1H, m, CHCH(CH3)2), 5.00-5.05 (1H, m, NH), 5.08-5.27 (2H, m, CH 2 Ph), 5.26-5.34 (1H, m, CHCH(CH3)2), 7.09-7.14 (1H, br, NH), 7.28-7.38 (5H, m, ArH)
・13C-NMR (CDCl3); 16.97, 17.24, 18.06, 18.68, 19.17, 21.38, 23.20, 24.33, 28.25, 30.10, 30.44, 34.54, 40.51, 48.53, 59.53, 63.52, 66.96, 72.66, 80.24, 100.55, 128.36, 128.40, 128.55, 135.27, 155.89, 169.11, 169.79, 170.43, 171.77
・[a]D + 16.03（CHCl3, c 0.62 , 23.5 ℃）
・IR ; 3344, 2968, 2878, 1756, 1681, 1530, 1462, 1056
（１２）H2N-L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Val-OBn・TFA（ 12 ）( フラグメント A )
　保護された繰り返し構造単位 ( 11, 2.43 g, 6.40 mmol）をジクロロメタン (7.5 mL) に溶解し、氷冷下にTFA (7.5 mL) を加え30分間攪拌した後、室温で30分間攪拌した。TLCで反応の終了を確認した後、反応液を減圧濃縮した。この残渣に少量のトルエンを加え、減圧濃縮して残存するTFAをトルエンとのコエバポレーションにより除いた。この操作を３回繰り返し、淡黄色油状物の12 (2.42 g, quant) を得た。これは、これ以上の精製すること無く次の反応に用いた。
・TLC ; Rf = 0.59 (C)
・1H-NMR (CDCl3); 0.88-1.16 (18H, m, CH(CH 3 )2), 1.52 (3H, d, J = 7.32 Hz, CHCH 3 ), 1.70-1.85 (6H, m), 2.18-2.30 (1H, m, CH2 CH(CH3)2), 2.38- 2.51 (1H, m, CH2 CH(CH3)2), 4.09-4.15 (1H, m, CHCH3), 4.58- 4.67 (1H, m, CHCH2CH(CH3)2), 4.86-4.94 (1H, m, CHCH(CH3)2), 5.00-5.05(1H, m, NH), 5.08-5.27(2H, m, CH 2 Ph), 5.26-5.34 (1H,m, CHCH(CH3)2), 7.09-7.14 (1H, br, NH), 7.28-7.38(5H, m, ArH)
・13C-NMR (CDCl3); 17.04, 17.08, 18.22, 18.35, 18.61, 21.52, 22.98, 24.30, 29.94, 30.14, 40.74, 48.47, 58.90, 67.02, 74.32, 128.32, 128.40, 128.54, 135.16, 168.33, 169.25, 169.40, 172.25
・IR ; 3221, 2964, 1748, 1675, 1531, 1461, 1156
（１３）Boc-L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Val-OH ( 13 )  (フラグメントB)
　保護された繰り返し構造単位( 11, 2.70 g, 6.40 mmol) のメタノール溶液 (20 mL) および10% パラジウム炭素 (135 mg) の混合物を中圧水添用フラスコに入れ、水素気流 (３気圧) 下、室温で４時間攪拌した。TLCで反応の進行を確認した後、溶媒を減圧留去して無色油状物の 13 (2.12 g, quant) を得た。これは、精製すること無く次の反応に用いた。
・TLC ; Rf = 0.18 (C)
・1H-NMR (CDCl3); 0.87-1.04 (18H, m, CH(CH 3 )2), 1.42-1.50(12H, m), 1.60-1.81 (3H, m), 2.09-2.18 (1H, m, , CHCH(CH3)2), 2.25-2.35 (1H, m, CH2 CH(CH3)2), 4.13-4.23 (1H, m, CHCH3), 4.52-4.62 (1H, m, CHCH2CH(CH3)2), 5.04-5.12(2H, m), 5.32-5.38 (1H, m, CHCH(CH3)2), 7.34-7.39 (1H, d, J = 7.56 Hz, NH)
・13C-NMR (CDCl3); 16.78, 16.83, 17.87, 18.78, 19.12, 21.20, 23.20, 24.30, 28.21, 29.93, 30.39, 40.60, 48.28, 59.40, 72.80, 77.21, 80.64, 156.33, 170.45, 171.82, 171.94
・IR ; 3341, 2968, 2882, 1748, 1688, 1531, 1464, 1371, 1249, 1162, 1057, 1016, 757
（実施例４）
オクタデプシペプチド、およびドデカデプシペプチドの合成
（１４）Boc-(L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Val)2-OBn ( 14 ) 
　氷冷下、フラグメントA・TFA 塩 ( 12, 1.75 g, 3.0 mmol) のアセトニトリル (15 mL) 溶液に、N,N-diisopropylethylamine (DIPEA, 1.03 mL, 5.91 mmol) を加え、次いでフラグメントB ( 13, 1.49 g，3.0 mmol) のアセトニトリル( 5 mL) 溶液、O-benzotriazole-N,N,N’,N’-tetraメチルuronium hexafluorophosphate (HBTU, 1.41 g, 3.71 mmol) および 1-ヒドロキシbenzotriazole (HOBt, 0.40 g, 3.0 mmol) を加えた。反応液を室温に戻して一晩攪拌した後、溶媒を減圧留去した。この残渣を酢酸エチルに溶解し、酢酸エチル層を10%クエン酸水溶液、飽和炭酸水水素ナトリウムおよび飽和食塩水で、順次、洗浄して無水硫酸ナトリウムで乾燥した。これを減圧濃縮して、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(ヘキサン／酢酸エチル) によって精製し、無色固体の14 (2.90 g, quant) を得た。
・TLC ; Rf = 0.14 (A)
・mp ; 57～59 ℃
・1H-NMR (CDCl3); 0.84-1.07 (36H, m), 1.43 (9H, s), 1.47 (3H, d, J = 7.56 Hz), 1.49 (3H, d, J = 7.32 Hz), 1.65-1.84 (6H, m), 1.97-2.05 (1H, m), 2.29-2.37 (1H, m), 2.37-2.38 (1H, m), 3.88 (3H, t, J = 6.59 Hz), 4.08-4.13 (1H, m), 4.38 (1H, t, J= 7.81 Hz), 4.58-4.63 (1H, m), 4.85 (1H, d, J= 4.39 Hz), 5.03 (1H, d, J = 5.85 Hz), 5.09-5.20 (4H, m), 5.37 (1H, dd, J = 3.17, 10.0 Hz), 5.04-5.12(2H, m), 7.30-7.37 (5H, m), 7.68 (1H, d, J = 7.32 Hz), 7.68 (1H, d, J = 7.32 Hz), 7.68 (1H, d, J = 6.10 Hz)
・13C-NMR (CDCl3) ; 14.17, 16.43, 16.97, 17.51, 18.64, 18.93, 18.98, 19.31, 19.45, 20.80, 21.05, 21.10, 23.14, 23.36, 24.22, 24.34, 28.22, 29.82, 30.04, 30.09, 40.35, 40.99, 48.25, 49.52, 58.74, 60.34, 60.39, 66.73, 72.41, 72.73, 77.21, 78.68, 80.93, 128.24, 128.28, 128.49, 135.36, 156.45, 169.12, 170.00, 170.42, 170.67, 171.65, 171.91, 172.44
・IR ; 3319, 2966,2876, 1751, 1656, 1537, 1463, 1185
・[a]D+ 12.7°(CHCl3, c 1.01 , 26.5 ℃) 
（１５）Boc-(L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Val)2-OH ( 15 ) 
　保護されたオクタデプシペプチド 14 (1.00 g, 1.02 mmol)、メタノール (30 mL) および10% パラジウム炭素（50 mg）の混合物を水添用フラスコ中に入れ、水素気流 (３気圧)下、室温で４時間攪拌した。TLCで反応の進行を確認した後、パラジウム触媒を濾去し減圧濃縮して無色油状物の15 (0.88 g, 97 %)を得た。これは、精製すること無く次の反応に用いた。
・TLC ; Rf = 0.67 (C)
・mp ; 85～87 ℃
・1H-NMR (CDCl3); 0.80-1.06 (36H, m), 1.43 (9H, s), 1.47 (3H, d, J = 7.07 Hz), 1.52 (3H, d, J= 7.07 Hz), 1.62-1.84 (6H, m), 1.96-2.08 (1H, m), 2.19-2.38 (3H, m), 3.93 (1H, t, J = 6.83 Hz), 4.12-4.22 (1H, m), 4.22-4.31 (1H, m), 4.44-4.61 (1H, m), 4.94-5.02 (2H, m), 5.09 (1H, d, J = 6.09 Hz), 7.65 (1H, d, J = 6.83 Hz), 7.74 (1H, d, J = 5.85 Hz), 7.83 (1H, d, J = 7.32 Hz)
スペクトラムを図１に示す。
・13C-NMR (CDCl3); 16.28, 16.65, 16.87, 18.74, 19.01, 19.21, 19.26, 21.04, 23.22, 23.26, 24.35, 28.23, 29.53, 29.93, 30.18, 30.35, 40.41, 40.65, 48.00, 49.37, 59.28, 60.12, 72.69, 77.21, 78.82, 80.84, 156.46, 170.62, 170.71, 170.88, 171.12, 171.22, 171.53, 171.75, 172.33
・IR ; 3060, 2966, 2876, 1751, 1658, 1535, 1465, 1389, 1370, 1301, 1241, 1155, 1058, 1010, 931, 877, 838, 782, 628
（１６）Boc-L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Val)3-OBn ( 16 )
　氷冷下、フラグメントB ( 13 )・TFA塩・(479 mg, 0.81 mmol) のアセトニトリル( 5 mL) 溶液を入れ、DIPEA (0.14 mL, 0.81 mmol) を加えて中和した後、 オクタデプシペプチド 15 (720 mg, 0.81 mmol) のアセトニトリル (5 mL) 溶液を加えた。次いで、O-(7-アザベンゾトリアゾール-1-yl)-N,N,N',N'-tetraメチルウロニウムヘキサフルオロフォスフェート ( HATU, 334 mg, 0.88 mmol)を加えた。反応液を室温に戻して一晩攪拌した後、減圧濃縮して、残渣を酢酸エチルに溶解し、酢酸エチル層を10%クエン酸水溶液、飽和炭酸水素水ナトリウム水溶液および飽和食塩水で、順次、洗浄した。この有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥、次いで減圧濃縮して、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー
（ヘキサン／酢酸エチル＝7：3）により精製し、無色固体の16 (905 mg, 82 %) を得た。
・TLC ; Rf = 0.33（F）
・mp ; 71～73 ℃
・1H-NMR (CDCl3); スペクトラムを図２に示す。
・13C-NMR (CDCl3) ; 14.06, 16.27, 16.34, 16.41, 16.53, 17.09, 17.15, 17.68, 18.57, 18.94, 18.98, 19.05, 19.17, 19.20, 19.31, 19.40, 20.69, 20.81, 21.12, 23.03, 23.15, 23.31, 24.20, 24.35, 28.23, 29.74, 30.02, 30.11, 30.15, 30.38, 40.53, 40.90, 41.18, 48.17, 49.36, 49.62, 58.27, 58.73, 60.40, 66.62, 72.41, 72.74, 77.21,
 78.88, 79.09, 80.91, 128.20, 128.45, 135.41, 156.56, 169.22, 169.71, 169.96, 170.36, 170.51, 170.56, 170.81, 171.90, 172.45
・[a]D + 6.12 ° (CHCl3, c 1.02 , 25.9 ℃) 
・IR; 3320, 2965, 2876, 1751, 1655, 1538, 1466, 1370, 1336, 1242, 1184, 1153, 1058, 1006, 933, 876, 747, 697
（１７）Boc-(L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Val)3-OH ( 17 )
　保護されたドデカデプシペプチド 16 (133 mg，97.7 μmol)、メタノール( 5 mL) 10% パラジウム炭素（7 mg）の混合物を水添添加用の反応容器に入れ、水素気流 (3 気圧) 下、室温で３時間攪拌した。TLCで反応の進行を確認した後、溶媒を減圧留去し、無色固体の17 (120.2 mg, 97 %) を得た。これは、精製すること無く次の反応に用いた。
・TLC ; Rf = 0.33（B）
・mp ; 97～99 ℃
・1H-NMR (CDCl3); スペクトラムを図３に示す。
・13C-NMR (CDCl3) ; 16.33, 16.39, 16.48, 16.60, 16.78, 16.88, 18.78, 18.84, 18.94, 19.03, 19.18, 19.24, 19.26, 19.31, 20.92, 21.09, 23.18, 23.34, 24.32, 24.39, 28.28, 29.51, 29.86, 29.92, 30.21, 30.22, 40.52, 40.82, 48.26, 49.35, 49.54, 58.82, 59.06, 60.30, 72.77, 72.82, 73.02, 77.23, 77.58, 78.99, 79.04, 80.89, 156.55, 170.46, 170.65, 170.84, 170.97, 171.21, 171.55, 172.11, 172.36, 172.53
・IR ; 3319, 3068, 2965, 2938, 2876, 1751, 1658, 1536, 1467, 1389, 1370, 1335, 1308, 1249, 1185, 1154, 1128, 1109, 1058, 1008, 933, 877, 755
（１８）H-( L-Val-D-O-Leu-D-Ala-L-O-Val)3-OH ( 18 )・TFA 塩氷冷下、17 (181 mg，142 μmol) のジクロロメタン (2 mL) 溶液に、TFA ( 2 mL) を加え、１時間、氷冷下で攪拌を続けた。TLCで反応の進行を確認した後、反応液にトルエンを加え減圧濃縮した。TFAを完全に取り除くために、濃縮残渣にトルエンを加え共沸留去した。この操作を３回繰り返して行い、無色固体の18 (181 mg, quant) を得た。これは、精製すること無く次の環化反応に用いた。
・TLC ; Rf = 0.45 (B)
・mp ; 118～121 ℃
・1H-NMR (CDCl3); スペクトラムを図４に示す。
・IR; 3310, 3060, 2965, 2882, 2360, 1749, 1659, 1542, 1466, 1389, 1208, 1154, 1059, 1007
（実施例５）
セレウリドの合成（環化反応）
（１９）セレウリド
　アルゴン置換した反応容器に、ジフェニルホスホリルアジド(DPPA) (9.8 μL, 45.5 μmol)を、無水N,N- ジメチルホルムアミド( 12 mL )に溶解し、次いで、N,N-ジイソプロピルエチルアミン (15.7 μL, 90 μmol) を加えて、Ａ液を調製した。別途、前駆体 18 (40 mg, 31.5 μmol) を，無水N,N- ジメチルホルムアミド(8 mL) に溶解したＢ液を調整した。室温下、マイクロシリンジを用いて、Ａ液にＢ液を１時間以上かけて滴下し、10日間、室温下で攪拌を続けた。反応液を減圧濃縮してN,N- ジメチルホルムアミドを留去し、残渣を酢酸エチルに溶解して、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、1N 塩酸および飽和食塩水で、順次洗浄した。この有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮して、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー (ヘキサン／酢酸エチル＝7：3)より精製し、淡黄色固体のセレウリド (5.2 mg, 14%) を得た。これを熱 n-ヘキサンより再結晶して、純粋なセレウリドを無色結晶として得た。
・TLC ; Rf = 0.23 (F)
・mp ;200℃ (lit.5) 196-199 ℃)
・1H-NMR (CDCl3) ; 0.85-1.02 (m, 45 H), 1.06 (d, J = 6.59 Hz, 9H), 1.46 (d, J = 7.07 Hz, 9H), 1.59-1.85 (m, 9H), 2.24-2.39 (m, 6H), 4.10 (dd, J = 9.27, 7.81 Hz, 3H), 4.37-4.42 (m, 3H), 5.01 (d, J = 3.17 Hz, 3H), 5.32 (dd, J = 7.81, 5.12 Hz, 3H), 7.81 (d, J = 6.83 Hz, 6H)
スペクトラムを図５に示す。
・13C-NMR (CDCl3) ; 15.75, 16.85, 18.55, 19.28, 21.20, 23.34, 24.37, 28.62, 30.48, 40.54, 48.78, 9.45, 72.69, 78.62, 170.49, 171.07, 171.49, 171.87
・[a]D ＋10.5℃（CHCl3, c 0.78,  25℃），｛lit.5) +3.37°(CHCl3, c 1.03)} 
・IR; 3303, 2963, 2875, 1744, 1656, 1539, 1467, 1246, 1190, 1149, 1057, 1008
・MALDI/TOFMS; 1175.576 [M + Na]+, 1191.561 [M + K]+ 
（実施例６）
 6-アミノヘキサン酸 (AHA) および L-グルタミン酸誘導体
（１）6-アミノヘキサン酸 ベンジルエステル (AHA-OBn, 20 )・p-TosOH塩
Dean-Stark装置を取り付けたナス型フラスコに、市販の6-アミノヘキサン酸 (AHA, 19) (6.56 g, 50.0 mmol)、ベンジルアルコール (15.6 mL, 150 mmol)、 p-TosOH・1水和物 (11.41 g, 60.0 mmol)、およびトルエン (150 mL) を入れ、７時間、加熱還流して発生する水を共沸分離により除いた。TLCで原料の消失を確認した後、反応液を室温に戻してヘキサンを加え、析出した結晶を吸引濾取した。結晶を冷酢酸エチルでよく洗浄して、無色固体の20 ( 18.71 g, 95.1 % ) を得た。
・TLC ; Rf = 0.35 (D)
・mp ; 107.9 ℃   
・1H-NMR (CD3OD) ; 1.29-1.44 (2H, m), 1.54-1.69 (4H, m), 2.33-3.34 (5H, m), 2.80-2.90 (2H, m), 3.26-3.34 (2H, m), 5.11 (2H, s), 7.22 (2H, d, J= 7.81), 7.28-7.37 (5H, m), 7.66-7.72 (2H, m)
・13C-NMR (CD3OD) ; 21.31, 25.37, 26.79, 28.17, 34.60, 40.50, 67.21, 126.92, 129.92, 129.23, 129.26, 129.55, 129.85, 137.65, 141.75, 143.45, 174.86
・IR ; 3050, 2945, 2634, 2042, 1730, 1622, 1476, 1248
（２）Troc-L-グルタミン酸 g-ベンジルエステル ( 22a )
　氷冷下，炭酸水素ナトリウム (3.19 g, 38.0 mmol) 水溶液 (60 mL) に市販 (渡辺化学工業製) のL-グルタミン酸 g-ベンジルエステル 21 (3.00 g, 12.6 mmol) を溶解し，ここに2,2,2-trichloroethyl chloroformate (Troc-Cl) (2.20 mL, 16.0 mmol) のジエチルエーテル (10 mL) 溶液を滴下した。滴下終了後，反応液を室温に戻して，一晩攪拌を続けた。反応液を分液ロートに移し，過剰のTroc-Clをジエチルエーテル抽出により除き，水層にクエン酸を加えてpH３に調整した後，酢酸エチルで３回抽出した。合した有機層を飽和食塩水で１回洗浄し，無水硫酸ナトリウムで乾燥，減圧濃縮して残渣に無色油状物の22a (3.95 g, 75.7 %) を得た。これは，精製すること無く次の反応に用いた。
・TLC ; Rf = 0.56 (A)
・1H-NMR (CDCl3) ; 2.07-2.19 (1H, m), 2.18-2.29 (1H, m), 2.31-2.43 (1H, m), 2.46-2.65 (2H, m), 4.54-4.63 (1H, m), 4.66-4.78 (2H, m,), 5.14 (2H, s), 5.72 (1H, d,
 J = 8.05Hz), 7.30-7.40 (5H, m, ArH)
・IR ; 3328, 3035, 2955, 2629, 1732, 1452, 1391, 1214
（３）Troc-L-グルタミン酸 a-tert-ブチルエステル ( 24 )
　氷冷下，市販 (渡辺化学工業製) のL-グルタミン酸 tert-ブチルエステル 23 ( 1.00 g, 4.92 mmol ) を炭酸水素ナトリウム (827 mg, 9.84 mmol) 水溶液 (10 mL) に溶解し，ここにTroc-Cl (0.80 mL, 5.97 mmol) のジエチルエーテル (3 mL ) 溶液を滴下した。22aと同様の反応処理を行って、無色油状物の24 (1.61 g, 86.4 %) を得た。これは，精製すること無く次の反応に用いた。
・TLC ; Rf = 0.56 (A)
・1H-NMR (CDCl3) ; 1.49 (9H, s), 1.92-2.08 (1H, m), 2.18-2.30 (1H, m), 2.36-2.56
 (2H, m), 4.27-4.36 (1H, m), 4.64-4.81 (2H, m), 4.73 (1H, d, J = 7.81 Hz)
・13C-NMR (CDCl3) ; 27.51, 27.93, 29.79, 53.79, 74.61, 83.03, 95.29, 154.21, 170.52, 178.12
・IR ; 3336, 2980, 1720, 1528, 1452, 1395, 1370, 1230
（４）Troc-L-グルタミン酸(AHA-OBn) a-tert-ブチルエステル ( 25 )
　氷冷下，20 p-Tos-OH塩 (1.83 g, 4.65 mmol) のアセトニトリル (7 mL) 溶液に，DIPEA (1.84 mL, 10.6 mmol) を加えて中和した後，ここに 24 (1.60 g, 4.23 mmol) のアセトニトリル溶液 (3 mL) を加え，次いでEDC 塩酸塩 (972 mg, 5.04 mmol) およびHOBt (571 mg, 4.23 mmol ) を加えた。氷冷バスを取り去って，反応液を室温下で一晩攪拌した後，溶媒を減圧留去した。この残渣を酢酸エチルに溶解して，有機層を10% クエン酸水溶液，飽和炭酸水素ナトリウム水溶液，および飽和食塩水で洗浄し，無水硫酸ナトリウムで乾燥，減圧濃縮した。この残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(クロロホルム) より精製して，無色油状物の 25 (1.82 g, 74 %) を得た。
・TLC ; Rf = 0.69 (B)
・1H-NMR (CDCl3) ; 1H-NMR (CDCl3) ; 1.30-1.40 (2H, m), 1.43-1.56 (11H, m), 1.62-1.70 (2H, m), 1.91-2.03 (1H, m), 2.17-2.30 (3H, m), 4. 37 (2H, t, J = 7.32 Hz), 3.17-3.31 (2H, m), 4.17-4.27 (1H, m), 4.63-4.81 (2H, m), 5.11 (2H, s), 5.90 (1H,
 d, J = 7.56 Hz), 7.31-7.39 (5H, m)
・13C-NMR (CDCl3) ; 24.36, 26.25, 27.91, 28.71, 29.06, 32.42, 34.00, 39.31, 54.15, 66.13, 74.54, 82.71, 95.33, 128.16, 128.18, 128.51, 135.91, 154.56, 170.61,171.68, 173.39
・IR ; 3322, 3034, 2938, 2867, 1734, 1651, 1537, 1454, 1369, 1229
（５）Troc-L-グルタミン酸 (AHA-OBn) ( 22b )
　氷冷下、25 (913 mg, 1.57 mmol) のジクロロメタン (5.0 mL) 溶液に、トリフルオロ酢酸 (5.0 mL) を加えて30分間撹拌し、次いで室温下で2.5時間攪拌した。TLCで反応終了を確認した後、減圧濃縮して淡黄色油状物の22b・TFA 塩 (825 mg, quant.) を得た。これは、精製すること無く次の反応に用いた。
・TLC ; Rf = 0.50 (C)
・1H-NMR (CDCl3) ; 1.30-1.39 (2H, m, CH2), 1.46-1.57 (2H, m, CH2), 1.59-1.70 (2H, m, CH 2 ), 2.06-2.14 (1H, m, CHCH 2 CH2CO), 2.18-2.29 (1H, m, CHCH 2 CH2CO), 2.34-2.46 (4H, m, CH2), 3.20-3.30 (2H, m, CH2), 4.32-4.39 (1H, m, CHCH2CH2CO), 4.64-4.90 (2H, m, CH 2 CCl3), 5.12 (2H, s, CH 2 Ph), 6.28 (1H, d, J = 7.32, NH), 6.36-6.41 (1H, m, NH), 7.30-7.40 (5H, m, ArH)
・13C-NMR (CDCl3) ; 24.24, 26.15, 28.68, 28.99, 32.43, 33.98, 39.71, 54.43, 66.35, 74.65, 95.32, 128.22, 128.30, 128.60, 135.88, 154.52, 172.92, 173.73, 173.76
・[a]D+ 8.57°(CHCl3, c 0.46, 16.4 ℃)
・IR ; 3341, 2942, 2602, 1733, 1626, 1541, 1450, 1230, 736
D-ロイシン酸および D-バリン酸 tert-ブチルエステル
（６）D-OAc-ロイシン {(2R)-2-アセトキシ-4-メチルペンタン酸} ( 27 )氷冷下、D-O-ロイシン 26 ( 3, 3.36 g, 25.4 mmol ) に、塩化アセチル（13.4 mL，154 mmol）を，滴下ロートを用いて加えた。 TLCで原料の消失を確認した後、反応液を減圧濃縮した。この濃縮残渣中の塩化アセチルを完全に取り除くために、少量のトルエンとのコエバポレーション操作を３回繰り返して行い、無色油状物の27 (6.52 g，quant.) を得た。これは精製すること無くの反応に用いた。
・TLC ;Rf= 0.61 (C)
　・1H-NMR (CDCl3); 0.94 (3H, d, J= 6.34, CH(CH 3 )2), 0.97 (3H, d, J= 6.34, CH(CH 3 )2) 1.64-1.72 (1H, m, CH(CH3)2), 1.75-1.86 (2H, m, CH 2 CH(CH3)2),　2.15(3H, s, COCH 3 ), 5.01-5.07 (1H, m, CH CH2)
・13C-NMR (CDCl3); 20.53, 21.41, 22.91, 24.57, 39.50, 70.55, 170.79, 176.70
（７） D-OAc-ロイシン tert-ブチルエステル {tert-ブチル (2R)-2-アセトキシ-4-メチル-ペンタノエート} (28)
　室温下で27 (6.52 g, 37.4 mmol)、tert-ブタノール (40 mL), およびBoc2O (8.26 g, 37.8 mmol）の混合物に、DMAP ( 0.92 g, 7.53 mmol ) をゆっくりと加えた。室温で5時間攪拌した後、反応液を減圧濃縮し、濃縮残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン/酢酸エチル）より精製して無色油状物の28 (6.56 g, 70.1 %) を得た。
・TLC ;Rf = 0.54 (A)
・1H-NMR (CDCl3); 0.92 (3H, d, J= 6.83, CH(CH 3 )2), 0.96 (3H, d, J= 6.58 Hz, CH(CH 3 )2), 1.46 (9H, s, tert-Bu), 1.55-1.64 (1H, m, CH(CH3)2), 1.69-1.82 (2H, m, CH 2 CH(CH3)2), 2.12(3H, s, COCH 3 ), 4.85-4.92 (1H, m, CH CH2)
・13C-NMR (CDCl3); 20.70, 21.56, 22.99, 24.62, 27.91, 39.71, 71.52, 81.89, 169.94, 170.64
・IR ; 2963, 2875, 1746, 1465, 1372
（８）D-O-ロイシン tert-ブチルエステル {tert-ブチル (2R)-2-ヒドロキシ-4-メチルペンタノエート} (29)
D-OAc-ロイシン tert-ブチルエステル (6.56 g, 28.5 mmol) のメタノール (30 mL) 溶液に、炭酸カリウム (19.68 g, 142.4 mmol) 水溶液 (60 mL )を加え、室温で1日間激しく攪拌した。反応終了後、メタノールを減圧留去し、残渣を分液ロートに移して、ジエチルエーテルで３回抽出した。合した有機層を、飽和食塩水で洗浄した後、無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮して無色油状物のD-O-ロイシン tert-ブチルエステル（4.35 g, 81.1
 %）を得た。これは、精製すること無く次の反応に用いた。
・TLC ;Rf= 0.52 (A)
・1H-NMR (CDCl3); 0.94 (3H, d, J = 2.68 Hz, CH(CH 3 )2), 0.96 (3H, d, J = 2.44 Hz,
 CH(CH 3 )2), 1.49-1.53 (11H, m, tert-Buand CHCH 2 CH), 1.81-1.95 (1H, m, CH(CH3)2),
 2.74 (1H, d, J = 5.85 Hz, OH), 4.00-4.09 (1H, m, CH CH 2(CH3)2)
・13C-NMR (CDCl3); 21.59, 23.32, 24.49, 27.99, 43.59, 69.20, 82.23, 175.23
・[a]D- 6.90°(CHCl3, c 1.06, 14.7 ℃)
・IR; 3493, 2959, 2873, 1729, 1465, 1273
（９） L-OAc-バリン {(2R)-2-アセトキシ-4-メチルペンタン酸 } ( 30 )
　L-OAc-バリンは、D-OAc-ロイシンと同様の方法で合成した。すなわち、氷冷下でL-O-バリン 5 (5.00 g, 42.3 mmol ) に、塩化アセチル (15.0 mL，211 mmol) を滴下ロートから加えた。 TLCで原料の消失を確認した後、反応液を減圧濃縮した。この残渣に少量のトルエンを加え、減圧濃縮して残存する塩化アセチルをトルエンとのコエバポレーションにより除いた。この操作を３回繰り返して、濃縮残渣に無色油状物の 30 (6.73 g，quant) を得た。これは精製すること無く次の反応に用いた。
・TLC ;Rf = 0.63 (C)
・1H-NMR (CDCl3); 1.00-1.06 (6H, m, CH(CH 3 )2), 2.16 (3H, s, CH 3 CO), 2.20-2.33 (1H, m, CH(CH3)2), 4.89 (1H, d, J = 4.39 Hz, CHCH(CH3)2), 10.64 (1H, br, COOH)
・13C-NMR (CDCl3); 17.03, 18.70, 20.48, 29.86, 170.92, 175.61
（１０）L-OAc-バリン tert-ブチルエステル {tert-ブチル (2S)-2-アセトキシ-3-メチルブタノエート} ( 31 )
L-OAc-バリン tert-ブチルエステルは，D-OAc-ロイシン tert -ブチルエステルと同様の方法で合成した。すなわち、L-OAc-バリン (6.73 g, 42.0 mmol)、tert-ブタノール ( 40 mL )、 Boc2O (9.17 g, 42.0 mmol) の混合物を室温下で攪拌し、ここにDMAP (1.03 g, 8.43 mmol) をゆっくりと加えた。室温で2時間攪拌した後、反応液を減圧濃縮し、濃縮残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(ヘキサン/酢酸エチル)より精製して無色油状物のL-OAc-バリン tert-ブチルエステル (6.52 g, 71.8 %) を得た。
・TLC ; Rf = 0.57 (A)
・1H-NMR (CDCl3); 0.95-1.01 (6H, m, CH(CH 3 )2), 1.47 (9H, s, tert-Bu), 2.17 (3H, s, CH 3 CO), 2.16-2.24 (1H, m, CH(CH3)2), 4.72 (1H, d, J = 4.39 Hz, CHCH(CH3)2)
・13C-NMR (CDCl3); 17.12, 18.71, 20.64, 27.96, 29.93, 60.37, 81.83, 168.78, 170.77
・IR ; 2975, 2938, 2880, 1744, 1238
（１１）L-O-バリン tert-ブチルエステル {tert-ブチル (2S)-2-ヒドロキシ-3-メチルブタノエート} ( 32 )
L-O-バリン tert-ブチルエステルは，L-O-ロイシン tert-ブチルエステルと同様に合成した。すなわち、L-OAc-バリン tert-ブチルエステル (6.52 g, 30.1 mmol) のメタノール (30 mL）溶液に、炭酸カリウム ( 20.83 g, 151.0 mmol ) 水溶液( 60 mL ) を加え、室温で1日間攪拌した。反応終了後、メタノールを減圧留去して、水層をジエチルエーテルで3回抽出した。合した有機層を飽和食塩水で洗浄、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、減圧濃縮して無色油状物のL-O-バリン tert-ブチルエステル (3.87 g, 73.7 %) を得た。これは、これ以上精製すること無く次の反応に用いた。
・TLC ;Rf = 0.54 (A)
・1H-NMR (CDCl3); 0.86(3H, d, J = 6.83 Hz, CH(CH 3 )2), 1.02 (3H, d, J = 7.07 Hz, CH(CH 3 )2), 1.50(9H, s, tert-Bu), 3.92 (1H, d, J = 3.41, CHCH(CH3)2)
・13C-NMR (CDCl3); 15.72, 18.80, 25.58, 28.02, 32.08, 74.88, 82.31, 174.22
・[a]D+ 3.60°(MeOH, c 1.04, 15.1 ℃)
・IR ; 3518, 2970, 2879, 1726, 1465, 1259
（実施例７）
ジデプシペプチドの合成
（１２）Troc-L-グルタミン酸(OBn / AHA-OBn)-D-O-ロイシン tert-ブチルエステル ( 33)
　氷冷下、N-保護L-グルタミン酸誘導体22 (1.12 mmol) およびD-ロイシン tert-ブチルエステル 29 (1.35 mmol) のジクロロメタン (10 mL) 溶液に、DMAP ( 0.34 mmol )、次いでDCC (1.68 mmol) をゆっくり加えた。この反応液を氷冷下で一晩攪拌した後、副成したDCUreaを吸引濾去して除き、濾液を減圧濃縮した。この濃縮残渣を酢酸エチルに溶かし、有機層を飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、次いで飽和食塩水で洗浄して、無水硫酸ナトリウムで乾燥，減圧濃縮した。濃縮残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー (ヘキサン／酢酸エチル) より精製して、目的とするジデプシペプチド 33 を得た。
33a (R = OBn) ; 
・収率；35 ％
・TLC ; Rf = 0.60 (F)
・1H-NMR (CDCl3); 0.91 (3H, d, J = 6.59 Hz), 0.94 (3H, d, J = 6.34 Hz), 1.45 (9H, s), 1.57-1.67 (2H, m), 1.70-1.81 (1H, m), 2.04-2.18 (1H, m,), 2.28-2.43 (1H, m), 2.47-2.61 (2H, m), 4.51-4.60 (1H, m), 4.67-4.76 (2H, m), 4.89-4.94 (1H, m), 5.13 (2H, s), 5.69 (1H, d, J = 8.29 Hz), 7.30-7.40 (5H, m)
・13C-NMR (CDCl3); 21.40, 23.01, 24.62, 26.97, 27.32, 27.88, 29.99, 39.46, 53.53, 66.59, 72.69, 74.45, 74.62, 82.43, 95.24, 128.22, 128.31, 128.57, 135.62, 154.04, 168.94, 172.38
・IR ; 3340, 2959, 1739, 1525, 1453, 1389, 1370, 1259, 1206
33b (R = NH(CH2)5COOBn) ;
・収率；93 % 
・TLC ; Rf= 0.42 (F)
・1H-NMR (CDCl3); 0.89-0.95 (6H, m, CH(CH 3 )2), 1.30-1.40 (2H, m, CH2), 1.46 (9H,
 s, tert-Bu), 1.47-1.55 (2H, m, CH2), 1.59-1.80 (6H, m), 2.06-2.16 (1H, m, CHCH 2 CH2CO), 2.28-2.48 (5H, m), 3.16-3.28 (2H, m, CH2), 4.39-4.47 (1H, m, CHCH2CH(CH3)2), 4.66-4.77 (2H, m, CH 2 CCl3), 4.90-4.95 (1H, m, NH), 5.11 (2H, s, CH2Ph), 6.07-6.11 (2H, m, NH), 7.33-7.37 (5H, m, ArH)
・13C-NMR (CDCl3); 14.18, 21.05, 21.40, 23.03, 24.41, 24.55, 26.32, 27.90, 28.01, 29.07, 32.23, 34.04, 39.38, 39.57, 54.11, 60.39, 66.17, 72.49, 74.61, 82.57, 95.29, 128.20, 128.54, 129.01, 135.96, 154.37, 169.54, 170.86, 171.97, 173.38
・IR ; 3322, 2956, 2871, 1741, 1653, 1537, 1239, 735
（１３）Troc-L-グルタミン酸(OBn / AHA-OBn)-D-O-ロイシン ( 34 )
　氷冷下、33 (0.85 mmol) のジクロロメタン (3.0 mL) 溶液に、TFA (3.0 mL) をゆっくり加え、氷冷下で30分間、次いで室温下で1.5時間攪拌した。TLCで反応の終了を確認した後、反応液を減圧濃縮して淡黄色油状物の34 (quant.) を得た。これは、精製すること無く次の反応に用いた。
34a (R = OBn) 
・収率；quant
・TLC ; Rf = 0.56 (C)
・1H-NMR (CDCl3); 0.92 (3H, d, J = 6.10 Hz), 0.95 (3H, d, J = 6.34 Hz), 1.65-1.78 (2H, m), 1.80-1.91 (1H, m), 2.02-2.16 (1H, m,), 2.26-2.38 (1H, m), 2.41-2.60 (2H, m), 4.49-4.58 (1H, m), 4.62-4.78 (2H, m), 5.06-5.12 (1H, m), 5.13 (2H, s), 5.74 (1H, d, J = 8.05 Hz), 7.29-7.40 (5H, m)
・13C-NMR (CDCl3); 21.29, 22.96, 24.62, 27.11, 29.97, 39.34, 53.54, 66.70, 71.61, 74.70, 95.19, 128.26, 128.36, 128.60, 135.55, 154.19, 170.84, 172.50
・IR ; 3419, 2959, 1736, 1643, 1521, 1452, 1391, 1210, 1099
34b ( R = NH(CH2)5COOBn) 
・収率；quant
・TLC ; Rf = 0.52 (C)
・1H-NMR (CDCl3); 0.88-0.99 (6H, m, CH(CH 3 )2), 1.29-1.40 (2H, m, CH2), 1.44-1.56
 (2H, m, CH2), 1.60-1.67 (2H, m, CH2), 1.68-1.79 (2H, m, CH2), 1.82-1.88 (1H, m, CH(CH3)2), 2.10-2.19 (1H, m, CHCH 2 CH2CO), 2.19-2.30 (1H, m, CHCH 2 CH2CO), 2.35-2.42 (4H, m, CH2), 3.19-3.28 (2H, m, CH2), 4.39-4.47 (1H, m, CHCH2CH(CH3)2), 4.67-4.77 (2H, m, CH 2 CCl3), 5.09-5.11 (1H, m, NH), 5.12 (2H, s, CH2Ph), 6.29 (1H, d,
 J = 7.56 Hz, NH), 6.45-6.52 (1H, m, NH), 7.33-7.39 (5H, m, ArH), 8.77 (1H, br, COOH)
・13C-NMR (CDCl3); 21.30, 23.03, 24.34, 24.58, 26.17, 28.01, 28.67, 32.07, 34.05, 39.36, 39.53, 54.08, 66.47, 71.82, 74.64, 95.22, 128.21, 128.31, 128.58, 135.66, 154.56, 170.81, 172.67, 173.18, 174.17
・IR ; 3351, 3062, 2957, 2871, 1734, 1630, 1539, 1453, 1386, 1211, 1099
（１４）カルボベンジルオキシ-D-アラニン (Z-D-Ala) 
　氷冷下、炭酸ナトリウム (21.45 g, 202 mmol) 水溶液 (225 mL) に市販のD-アラニン (6.00 g, 73.5 mmol) を溶解し、ここにbenzyl chloroformate (Z-Cl ) (10.5 mL, 73.5 mmol) のジオキサン (60 mL) 溶液をゆっくり滴下した。滴下終了後、反応液を室温に戻し一晩攪拌を続けた。反応液を分液ロートに移し、過剰のZ-Clをジエチルエーテル抽出で除去した。水層にクエ  BR>梼_を加えてpH 3に調整した後、酢酸エチルで3回抽出した。合した有機層を飽和食塩水で１回洗浄し、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮した後、濃縮残渣を酢酸エチル－ヘキサンより再結晶化して無色結晶のZ-D-アラニン (13.77 g, 91.6 %) を得た。
・TLC ; Rf = 0.51 (C)
・mp ; 82.9 ℃
・1H-NMR (CDCl3); 1.47(3H,d, J = 7.32 Hz, CH 3 ), 4.38-4.48(1H, m, CHCH3), 5.13(2H, s, CH 2 Ph), 5.29(1H, br, NH), 7.30-7.38 (5H, m, ArH)
・13C-NMR (CDCl3); 18.36, 49.52, 67.22, 128.10, 128.25, 128.53, 136.05, 155.92, 177.45
・IR ; 3349, 3046, 1719, 1539, 1252
（１５） Z-D-アラニン-L-O-バリン tert-ブチルエステル ( 35 )
氷冷下、L-O-バリン tert-ブチルエステル 32 (2.50 g, 14.3 mmol) およびZ-D-アラニン
 (3.52 g, 15.8 mmol) のジクロロメタン (30 mL) 溶液に、DMAP (0. 35 g，2.9 mmol)、次いでDCC (3.70 g，17.9 mmol) をゆっくり加えた。この反応液を氷冷下で一晩攪拌した後、副成したDCUreaを吸引濾過により除き、濾液を減圧濃縮した。この濃縮残渣を酢酸エチルに溶かし、有機層を飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、次いで飽和食塩水で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮した。この濃縮残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー (ヘキサン／酢酸エチル) より精製して、無色油状物の35 (4.26 g, 78.3 %) を得た。
・TLC ; Rf = 0.36 (A)
・1H-NMR (CDCl3); 0.92-1.02 (6H, m, CH(CH 3 )2), 1.46 (9H, s, tert-Bu), 1.47 (3H, d, J =7.07 Hz, CHCH 3 ), 2.18-2.29 (1H, m, CH(CH3)2), 4.46-4.57 (1H, m, CHCH3), 4.75 (1H, d, J = 4.15 Hz, CHCH(CH3)2), 5.11 (2H, s, CH 2 Ph), 5.35 (1H, d, J = 7.07 Hz, NH), 7.29-7.40 (5H, m, ArH) 
・13C-NMR (CDCl3); 16.93, 18.73, 27.93, 30.00, 49.74, 66.84, 82.22, 128.11, 128.13, 128.50, 136.23, 155.46, 168.05, 172.34 
・IR ; 3342, 2974, 2937, 2879, 1734, 1528, 1254
・[a]D－18.04°(CHCl3, c 0.875, 15.7 ℃)
（１６） D-アラニン-L-O-バリン tert-ブチルエステル ( 36 )・TFA 塩
　水素添加用フラスコに、35 (1.96 g, 5.17 mmol)、メタノール (30 mL)、TFA (0.46 mL, 6.2 mmol) および10% パラジウム炭素 (100 mg) の混合物を入れ、水素気流（３気圧）下、室温で３時間攪拌した。TLCで反応の進行を確認した後、触媒を濾去、濾液を減圧濃縮し、濃縮残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー (クロロホルム／メタノール) より精製して、淡褐色油状物の 36 (1.65 g, 93.3 %) を得た。
・TLC ; Rf = 0.34 (B)
・1H-NMR (CDCl3); 0.96-1.04 (6H, m, CH(CH 3 )2), 1.36 (3H, d, J =8.54 Hz, CHCH 3 ),1.47 (9H, s, tert-Bu), 2.20-2.29 (1H, m, CH(CH3)2), 3.66 (1H, q,J = 7.07 Hz, CHCH3), 4.76 (1H, d, J = 4.39 Hz, CHCH(CH3)2)
・13C-NMR (CDCl3); 16.99, 18.80, 20.29, 27.97, 28.01, 30.02, 32.07, 49.97, 82.01, 168.52, 176.24
・IR ; 3445, 2977, 1747, 1677, 1537, 1464, 1432, 1395, 1371, 1330, 1204
（実施例８）
テトラデプシペプチドの合成
（１７）Troc-L-グルタミン酸(OBn / AHA-OBn)-D-O-ロイシン-D-アラニン-L-O-バリン tert-ブチルエステル ( 37 )
氷冷下、N末端が保護されたジデプシペプチド36・TFA塩 (289 mg、 0.84 mmol) のアセトニトリル (5 mL) 溶液に、DIPEA (0.15 mL、 0.84 mmol) を加えて中和した後、C末端が保護されたジデプシペプチド34 (0.84 mmol) のアセトニトリル (5 mL) 溶液を加え、次いでHBTU (352 mg、 0.93 mmol) および HOBt (114 mg、 0.84 mmol) を加えた。反応液を室温に戻して一晩攪拌した後、反応液を減圧濃縮した。この濃縮残渣を酢酸エチルに溶解し、酢酸エチル層を10%クエン酸水溶液、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、および飽和食塩水で、順次、洗浄して無水硫酸ナトリムで乾燥、減圧濃縮した。これをシリカゲルカラムクロマトグラフィー (ヘキサン／酢酸エチル) より精製して淡黄色油状の37を得た。
37a ( R = OBn) ; 
・収率；75 ％
・TLC ; Rf = 0.64 (F)
・1H-NMR (CDCl3); 0.85-1.00 (12H, m), 1.45 (9H, s), 1.48 (3H, d, J = 7.32 Hz), 1.60-1.83 (3H, m), 1.99-2.15 (1H, m), 2.15-2.36 (2H, m), 2.41-2.62 (2H, m), 4.43-4.52 (1H, m), 4.60-4.81 (4H, m), 5.14 (2H, s), 5.27 (1H, dd, J = 5.61 Hz, J = 7.56 Hz), 5.98 (1H, d, J = 7.56 Hz), 6.83 (1H, d, J = 7.56 Hz), 7.30-7.40 (5H, m)
・13C-NMR (CDCl3); 16.88, 17.72, 18.69, 21.42, 23.09, 24.47, 26.52, 27.94, 30.02, 40.50, 47.95, 53.69, 66.73, 73.49, 74.74, 82.33, 95.18, 128.28, 128.38, 128.59, 135.49, 154.50, 168.28, 169.22, 170.47, 171.91, 172.37
・IR ; 3421, 2964, 1739, 1674, 1538, 1455, 1391, 1370, 1256
37b ( R = NH(CH2)5CO2Bn) ;
・収率 55 %
・TLC ; Rf= 0.31 (F)
・1H-NMR (CDCl3); 0.85-1.00 (12H, m),1.30-1.40 (2H, m), 1.45 (9H, s), 1.49 (3H, d, J = 7.32 Hz), 3.19-3.29 (1H, m), 4.39-4.46 (1H, m), 4.62-4.80 (4H, m), 5.11 (2H, s), 5.23 (1H, dd, J = 4.88 Hz, J = 9.02 Hz), 6.03-6.11 (1H, m), 6.59 (1H, d,
 J = 7.07 Hz), 7.00 (1H, d, J = 7.56 Hz), 7.30-7.40 (5H, m)
・13C-NMR (CDCl3); 16.89, 17.59, 18.69, 21.39, 23.12, 24.33, 24.41, 26.25, 26.92, 27.92, 28.96, 30.00, 31.97, 33.99, 39.45, 40.46, 48.12, 54.22, 66.17, 73.24, 74.66, 77.68,　82.28, 95.27, 128.17, 128.22, 128.54, 128.55, 135.90, 154.72, 168.24, 169.68, 170.68, 171.96, 172.26, 173.44
・IR ; 3335, 2962, 1757, 1680, 1538, 1455, 1108, 736
（１８） L-グルタミン酸(OBn / AHA-OBn)-D-O-ロイシン-D-アラニン-L-O-バリンtert-ブチルエステル ( 38 )
CおよびN-末端が保護されたテトラデプシペプチド 37 (0.24 mmol) の90％酢酸溶液 (3 mL ) に、亜鉛 (310.6mg、 4.74 mmol) を加えて、室温で一日攪拌した。反応終了後、反応液に多量の水を加え、酢酸エチルで３回抽出した。合した有機層を水、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、および飽和食塩水で洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮して38 を得た。
38a (R = OBn) ; 淡黄色油状物
・収率 ; quant
・TLC ; Rf = 0.53 (B)
・1H-NMR (CDCl3); 0.78-1.03 (12H, m), 1.40-1.50 (12H, m), 1.60-1.82 (3H, m), 2.05-2.32 (3H, m), 2.31-2.59 (2H, m), 4.33-4.45 (1H, m), 4.65-4.81 (2H, m), 5.13 (2H, s)、 5.18-5.25 (1H, m), 6.57 (1H, d, J = 7.56 Hz), 6.88 (1H, d, J = 7.32 Hz), 7.29-7.38 (5H, m)
・13C-NMR (CDCl3); 16.94, 18.20, 18.74, 21.53, 23.13, 24.53, 27.96, 27.97, 30.05, 40.64, 47.72,　55.22, 66.39, 72.93, 77.24, 77.83, 82.38, 126.99, 128.20, 128.57, 135.83,168.13, 168.97, 169.65, 172.22, 172.89
・IR ; 3346, 2965, 2938, 2875, 1740, 1679, 1538, 1455, 1391, 1370
38b (R = NH(CH2)5COOBn) ; 淡黄色アモルファス状固体
・収率 96 %
・TLC ; Rf = 0.42 (C)
・1H-NMR (CDCl3); 0.82-1.02 (12H, m), 1.30-1.39 (2H, m), 1.42-1.55 (15H, m), 1.58-1.84 (5H, m), 1.87-1.99 (1H, m), 2.14-2.29 (2h, m), 2.29-2.42 (4H, m), 3.13-3.29 (2H, m), 3.63-3.76 (1H, m), 4.70 (1H, d, J = 7.56 Hz), 4.73 (1H, d, J =4.39 Hz), 5.11 (2H, s), 5.23 (1H、 dd, J = 3.90 Hz, J = 9.51 Hz), 6.12-6.24 (1H, m), 7.04 (1H, d, J = 7.56 Hz), 7.29-7.38 (5H, m)
・13C-NMR (CDCl3); 14.16, 16.96, 18.00, 18.69, 21.47, 23.10, 24.42, 24.45, 26.32, 27.90, 29.14, 30.01, 32.42, 34.02, 39.25, 40.64, 47.76, 60.39, 66.14, 73.02, 82.39, 128.17、 128.20, 128.53, 135.91, 168.19, 169.73, 172.15, 172.29, 173.41
・IR ; 3317, 3068, 2962, 2873, 1739, 1663, 1637, 1545, 1456, 1370, 1163
（実施例９）
ドデカデプシペプチド（前駆体）の合成
（１９） Boc-L-バリン-D-O-ロイシン-D-アラニン-L-O-バリン-L-バリン- D-O-ロイシン-D-アラニン-L-O-バリン- L-グルタミン酸(OBn / AHA-OBn)-D-O-ロイシン-D-アラニン-L-O-バリン tert-ブチルエステル ( 39 ) 
氷冷下、C末端が保護されたテトラデプシペプチド38 (0.155 mmol) および N末端が保護されたオクタデプシペプチド 15 (137 mg、 0.155 mmol) のアセトニトリル(5 mL) 溶液を入れ、ここに、DIPEA (27.0 μL、 0.155 mmol)、HOAt（21.1 mg、 0.155 mmol）および HATU (88.2 mg、 0.232 mmol) を加えた。反応液を室温に戻して一晩攪拌した後、減圧濃縮して、残渣を酢酸エチルに溶解し、酢酸エチル層を10%クエン酸水溶液、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液および飽和食塩水で、順次、洗浄した。この有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮し、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー（ヘキサン／酢酸エチル＝3：2）より精製して無色油状物の 39 を得た。
39a (R = OBn) ;
・収率 40 ％
・TLC ; Rf = 0.64 (F)
・1H-NMR (CDCl3); 0.74-1.09 (48H, m), 1.32-1.53 (27H, m), 1.60-1.86 (9H, m), 1.92-2.04 (1H, m), 2.13-2.26 (2H, m), 2.27-2.44 (4H, m), 2.45-2.52 (2H, m), 3.84 (1H, dd, J = 5.85 Hz, J = 7.56 Hz), 4.01-4.16 (2H, m), 4.27 (1H, t, J = 7.56 Hz), 4.48-4.56 (1H, m), 4.60 (1H, t, J = 7.56 Hz), 4.65 (1H, d, J = 4.15 Hz), 4.97 (1H, d, J = 2.93 Hz), 5.07 (1H, d, J = 2.68 Hz), 5.27 (1H, dd, J = 3.90 Hz, J = 8.87 Hz), 7.28-7.37 (5H, m), 7.74 (1H, d, J = 7.32 Hz), 7.87 (1H, d, J = 7.32 Hz), 7.96 (1H, d, J = 5.85 Hz), 8.10 (1H, d, J = 7.81 Hz), 8.25 (1H, d, J = 6.10 Hz)
・13C-NMR (CDCl3); 13C-NMR (CDCl3); 16.18, 16.34, 16.56, 17.02, 17.57, 18.67, 18.95, 19.00, 19.06, 19.22, 19.30 20.78, 20.89, 21.17, 23.12, 23.13, 23.36, 24.29, 24.39, 24.42, 26.20, 27.93, 28.26, 29.66, 29.80, 29.98, 30.08, 30.19, 30.41, 40.53, 40.65, 40.76, 48.25, 49.43, 49.63, 52.06, 58.97, 60.40, 66.31, 72.69, 72.75, 73.04, 77.56, 78.65, 79.00, 81.00, 81.79, 128.09, 128.24, 128.47, 135.93, 156.56, 168.44, 169.99, 170.15, 170.44, 170.90, 170.93, 171.92, 172.19、 172.26, 172.44, 172.50
・IR ; 3316, 2965, 2876, 1748, 1658, 1538, 1460, 1369, 1158
38b (R = NH(CH2)5COOBn) ;
・収率 73.5 %
・TLC ; Rf= 0.58 (B)
・1H-NMR (CDCl3); 0.82-1.09 (48H, m), 1.39-1.53 (33H, m), 1.53-1.89 (11H, m), 1.93-2.05 (1H, m), 2.10-2.44 (9H, m), 3.09-3.28 (2H, m), 3.84 (1H, dd, J = 5.85 Hz, J = 7.56 Hz), 4.03-4.19 (2H, m), 4.30 (1H, t, J = 7.56 Hz), 4.37-4.48 (1H, m), 4.59-4.67 (2H, m), 4.97 (1H, d, J= 3.17 Hz), 5.02 (1H, d, J = 2.93 Hz), 5.07-5.15 (4H, m), 5.20-5.30 (1H, m), 6.53 (1H, s), 7.28-7.40 (5H, m), 7.66 (1H, d, J = 7.32 Hz,), 7.87 (1H, d, J = 7.56 Hz,), 7.94-8.01 (2H, m), 8.29 (1H, d, J = 6.10 Hz)
・13C-NMR (CDCl3); 16.22, 16.33, 16.52, 17.07, 17.62, 18.63, 18.90, 18.96, 19.05, 19.20, 20.77, 20.85, 21.14, 23.06, 23.11, 23.33, 24.29, 24.37, 24.56, 26.46, 27.46, 27.90, 27.93, 28.24, 29.28, 29.69, 29.78, 29.97, 30.03, 30.16, 32.48, 34.13, 39.36, 40.50, 40.66, 40.75, 48.04, 49.28, 49.63, 52.21, 58.84, 60.39, 66.05, 72.70, 72.77, 73.06, 77.20, 77.54, 77.77, 78.82, 78.98, 80.96, 81.93, 128.13, 128.18, 128.50, 136.03, 156.51, 168.31, 169.85, 170.35, 170.59, 170.86, 170.91, 170.98, 171.87, 172.14, 172.23, 172.47, 173.45
・IR ; 3319, 2965, 2875, 1748, 1656, 1539, 1460, 1370, 1158, 747
（２０）L-バリン-D-O-ロイシン-D-アラニン-L-O-バリン-L-バリン- D-O-ロイシン-D-アラニン-L-O-バリン- L-グルタミン酸(OBn / AHA-OBn)-D-O-ロイシン-D-アラニン-L-O-バリン ( 40 )
　氷冷下、39 (69 μmol) のジクロロメタン (2 mL) 溶液に、TFA ( 2 mL) をゆっくり加え、１時間、氷冷下で攪拌を続けた。TLCで反応の進行を確認した後、反応液にトルエンを加え減圧濃縮した。TFAを完全に取り除くために、濃縮残渣にトルエンを加え共沸留去した。この操作を３回繰り返して行い、淡黄色固体の40を得た。これは、精製すること無く次の環化反応に用いた。
40a (R = OBn) ;
・収率；94 ％
・TLC ; Rf = 0.43 (B)
・1H-NMR (CDCl3); 0.83-1.09 (48H, m), 1.39 (3H, d, J = 7.32 Hz), 1.47 (3H, d, J = 7.07 Hz), 1.51 (3H, d, J = 7.56 Hz), 1.58-1.84 (9H, m), 2.10-2.41 (9H, m), 4.10-4.25 (2H, m), 4.26-4.38 (2H, m), 4.57-4.66 (1H, m), 4.73-4.79 (1H, m), 4.86 (1H, d, J = 3.42 Hz), 4.93 (1H, d, J = 2.93 Hz), 5.02 (1H, s), 5.05-5.17 (3H, m),　5.27 (1H, dd, J = 4.39 Hz, J = 7.56 Hz), 7.31-7.41 (5H, m), 7.64 (2H, d, J = 8.54 Hz), 7.74 (1H, d, J= 3.17 Hz), 7.77 (1H, d, J = 7.81 Hz), 8.32 (1H,d, J = 5.61 Hz), 8.64 (1H, d, J = 5.85 Hz)
・13C-NMR (CDCl3); 14.98, 15.63, 16.31, 16.70, 17.05, 17.23, 17.44, 17.71, 18.41, 18.54, 18.66, 18.93, 19.12, 19.58, 20.95, 21.11, 21.62, 22.99, 23.10, 23.16, 23.22, 24.33, 24.48, 24.52, 27.84, 29.66, 30.35, 30.54, 40.03, 40.14, 40.38, 50.09, 53.42, 58.74, 66.56, 73.94, 75.13, 78.02, 79.18, 79.24, 82.03, 128.23, 128.58, 128.95, 135.53, 169.15, 170.45, 171.34, 171.54, 171.82, 171.94, 172.12, 172.36, 173.42
・IR ; 3296, 3068, 2965, 2870, 1749, 1661, 1543, 1466, 1372, 1202
40b (R = NH(CH2)５COOBn) ;
・収率；quant
・TLC ; Rf = 0.36 (B)
・1H-NMR (CDCl3); 0.80-1.09 (48H, m), 1.24-1.33 (11H, m), 1.36-1.42 (4H, m), 1.43-1.52 (3H, m), 1.55 (2H, d, J = 7.32 Hz), 1.58-1.88 (9H, m), 2.12-2.40  (9H, m), 3.00-3.14 (2H, m), 3.16-3.30 (1H, m), 3.97 (1H, d, J = 4.63 Hz), 4.05 (1H, dd, J = 7.07 Hz, J = 10.49 Hz), 4.60 (1H, t, J = 7.56 Hz), 4.65-4.79 (4H, m), 4.83 (1H, d, J = 3.41 Hz), 4.88 (1H, d, J = 2.68 Hz), 5.02-5.09 (2H, m), 5.11 (2H, s), 5.33 (1H, dd, J = 3.41 Hz, J = 9.02 Hz), 6.25 (1H, s), 7.29-7.39 (5H, m), 7.54-7.66 (2H, m), 7.82 (1H, d, J= 7.56 Hz), 8.58 (1H, d, J = 7.32 Hz), 9.27 (1H, s)
・13C-NMR (CDCl3); 15.37, 15.74, 16.60, 16.74, 16.86, 17.02, 17.39, 17.84, 18.39, 18.46, 18.86, 19.18, 19.38, 20.99, 21.17, 21.28, 22.94, 23.00, 23.24, 24.38, 24.44, 24.49, 26.29, 28.47, 29.04, 29.60, 29.65, 29.83, 30.53, 32.26, 34.00, 39.60, 40.13, 40.40, 47.67, 49.33, 53.17, 58.71, 66.22, 73.03, 75.19, 77.21, 78.90, 128.18, 128.21, 128.24, 128.55, 129.01, 135.89, 169.18, 170.62, 170.78, 171.03, 171.59, 171.63, 172.24, 172.69, 173.26, 173.46
・IR ; 3300, 3081, 2965, 2876, 1748, 1657, 1545, 1462, 1374, 1203
（実施例１０）
E-セレウリドおよびEAHA-セレウリド（環化反応）
（２２）E-セレウリド-OBn ( 41a ) および EAHA-セレウリド-OBn ( 41b ) 
前駆体 40 の環化反応は、セレウリド合成の場合と同様の方法で行った。すなわち、アルゴン置換した反応容器に、ジフェニルホスホリルアジド(DPPA) (9.8 μL, 45.5 μmol)を、無水N,N- ジメチルホルムアミド( 12 mL )に溶解し、次いで、N,N-ジイソプロピルエチルアミン (15.7 μL, 90 μmol) をゆっくり加えて、Ａ液を調製した。
別途、前駆体 40 (31 μmol) を、無水N,N- ジメチルホルムアミド (8 mL) に溶解したＢ液を調整した。
室温下、マイクロシリンジを用いて、Ａ液にＢ液を１時間以上かけてゆっくり滴下し、10日間、室温下で攪拌を続けた。反応液を減圧濃縮してジクロロメタンを留去し、残渣を酢酸エチルに溶解して、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、１N 塩酸および飽和食塩水で、順次、洗浄した。この有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥、減圧濃縮して、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー (ヘキサン／酢酸エチル)より精製し、淡黄色固体の 41 を得た。
41a (R = OBn) ;
・TLC ; Rf = 0.69 (F)
・1H-NMR (CDCl3); 0.78-1.03 (48H, m), 1.40-1.48 (9H, m), 1.58-1.84 (11H, m), 2.10-2.60 (9H, m), 4.00-4.10 (2H, m), 4.25-4.60 (3H, m), 4.91-5.01 (2H, m), 5.02 (1H, d, J = 3.17 Hz), 5.10-5.14 (3H, m), 5.23 (1H, dd, J = 3.90 Hz, J = 5.37 Hz), 5.26-5.33 (2H, m), 7.31-7.37 (5H, m), 7.62 (1H, d, J = 6.59 Hz), 7.74-7.80 (3H, m), 7.84 (1H, d, J= 5.85 Hz), 7.96 (1H, d, J = 7.56 Hz)
・13C-NMR (CDCl3); 15.72, 15.80, 16.77, 16.89, 18.46, 18.52, 18.65, 19.26, 19.32, 21.11, 21.20, 21.73, 23.01, 23.32, 24.32, 24.36, 24.51, 28.52, 28.72, 30.28, 30.39, 30.47, 30.57, 40.39, 48.57, 48.79, 49.03, 51.78, 59.41, 59.55, 66.42, 72.58, 72.78, 73.30, 78.47, 78.64, 78.77, 128.20, 128.23, 128.53, 169.92, 170.42, 170.63, 171.02, 171.06, 171.33, 171.43, 171.53, 171.74, 171.84, 172.04, 172.18
・IR ; 3433, 3310, 2964, 2872, 1742, 1654, 1538, 1463, 1389, 1371, 1198, 1160
・[a]D ＋ 7.17°(CHCl3, c 1.20 , 25 ℃)
・MALDI/TOFMS; 1295 [M + Na]+, 1311 [M + K]+
41b (R = NH(CH2)5COOBn) 
・TLC ; Rf= 0.23 (F)
・mp ; 64.7 ℃
・1H-NMR (CDCl3); 0.82-1.01 (42H, m), 1.04 (3H, d, J = 6.34 Hz), 1.06 (3H, d, J = 6.10 Hz), 1.29-1.39 (2H, m), 1.40-1.54 (11H, m), 1.60-1.72 (6H, m), 1.72-1.82 (4H, m), 1.90-2.00 (1H, m), 2.03-2.14 (2H, m), 2.15-2.42 (9H, m), 3.09-3.19 (1H,
 m), 3.21-3.33 (1H, m), 4.03-4.12 (2H, m), 4.26-4.40 (2H, m), 4.41-4.53 (2H, m), 4.97 (1H, d, J = 3.17 Hz), 5.02-5.05 (2H, m), 5.11 (2H, s), 5.15-5.22 (1H, m), 5.25-5.33 (2H, m), 6.42-6.47(1H, m), 7.29-7.40 (5H, m), 7.63-7.77 (3H, m), 7.84 (1H, d, J = 7.32 Hz), 7.91 (1H, d, J = 7.07 Hz)
・13C-NMR (CDCl3); 15.91, 16.70, 16.99, 18.47, 18.56, 19.07, 19.21, 19.30, 19.35, 21.04, 21.36, 21.50, 23.07, 23.27, 23.34, 24.34, 24.52, 26.41, 28.61, 28.74, 29.29, 30.29, 30.35, 30.49, 32.51, 34.09, 39.34, 40.27, 40.53, 48.31, 48.62, 48.90, 52.38, 59.10, 59.59, 66.11, 72.82, 73.17, 78.20, 78.61, 78.89, 128.16, 128.52, 135.97, 170.31, 170.43, 170.62, 170.89, 171.06, 171.25, 171.53, 171.68, 171.76, 173.36
・IR ; 3298, 2963, 1744, 1657, 1538, 1461
・MALDI/TOFMS; 1409 [M + Na]+, 1425 [M + K]+
（２２）E-セレウリド およびEAHA-セレウリド (加水素分解反応によるベンジル基の除去)
　水素添加用フラスコに、41 (20 mg)、メタノール (5 mL)および10% パラジウム炭素 (2 mg) の混合物を入れ、水素気流（３気圧）下、室温で３時間攪拌した。TLCで反応の進行を確認した後、触媒を濾去、濾液を減圧濃縮しE-セレウリドおよびEAHA-セレウリドを得た。
E-セレウリド ;
・収率；quant
・TLC ; Rf = 0.39 (B)
・1H-NMR (CDCl3); 0.78-1.12 (48H, m), 1.40-1.54 (9H, m), 1.60-1.90 (8H, m), 2.06-2.16 (1H, m), 2.17-2.42 (6H, m), 2.42-2.63 (3H, m), 4.06-4.15 (2H, m), 4.25-4.35 (1H, m), 4.35-4.43 (1H, m), 4.43-4.56 (2H, m), 4.70-4.82 (1H, m), 4.92-5.04 (1
H, m), 5.13-5.31 (1H, m), 6.82(1H, s), 7.60-7.92 (6H, m), 5.07 (1H, d, J = 3.17 Hz), 5.09-5.15 (1H, m), 5.17-5.25 (1H, m), 5.25-5.33 (1H, m), 7.34 (1H, d, J = 5.85 Hz), 7.43-7.50 (1H, m), 7.60-7.82 (4H, m), 8.03 (1H, s)
・13C-NMR (CDCl3); 16.28, 16.48, 16.65, 16.85, 16.94, 18.52, 18.56, 18.73, 19.05, 19.17, 19.24, 21.08, 21.34, 21.40, 21.52, 23.08, 23.22, 23.29, 24.39, 24.61, 24.64, 27.93, 28.73, 29.70, 30.12, 30.48, 40.44, 40.50, 48.26, 48.46, 48.57, 52.4
8, 59.42, 72.71, 72.88, 73.57, 77.22, 77.92, 78.22, 78.53, 170.00, 170.11, 170.84, 171.16, 171.22, 171.34, 171.45, 171.54, 171.95
・IR ; 3435, 3316, 2964, 1742, 1654, 1538, 1466, 1383, 1198
・MALDI/TOFMS; 1205 [M + Na]+, 1221 [M + K]+
EAHA-セレウリド ; 
・収率 ; quant
・TLC ; Rf= 0.32 (B)
・1H-NMR (CDCl3); 0.75-1.00 (42H, m), 1.06 (6H, d, J = 5.85 Hz), 1.34-1.58 (13H,
 m), 1.58-1.86(11H, m), 1.95-2.10 (1H, m), 2.17-2.42 (10H, m), 3.09-3.26 (1H, m), 3.26-3.44 (1H, m), 4.00-4.12 (1H, m), 4.12-4.22 (1H, m), 4.27-4.40 (2H, m),4.40-4.50 (2H, m), 4.97 (1H, d, J = 3.17 Hz), 4.99-5.08 (2H, m), 5.13-5.31 (1H, m), 6.82(1H, s), 7.60-7.92 (6H, m)
・IR ; 3304, 2963, 2938, 2875, 1743, 1655, 1539, 1466, 1373, 1197
・MALDI/TOFMS ; 1319 [M + Na]+, 1335 [M + K]+

Claims (7)

  1. 　以下の式： 
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
     および
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
     （ここで、Ｙは、ＯＨ、またはＮＨ（ＣＨ２）５ＣＯＯＨを表わす）
    　からなる群より選択される、セレウリドまたはその誘導体の前駆体。
  2. Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
     または
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
     （ここで、Ｘは、イソプロピル、（ＣＨ２）２ＣＯＯＨ、または（ＣＨ２）２ＣＯＮＨ（ＣＨ２）５ＣＯＯＨを表わす）で表されるジデプシペプチド。
  3. 　以下に示すデプシペプチド
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
     （ここで、Ｙは、ＯＨまたはＮＨ（ＣＨ２）５ＣＯＯＨを表わし、lは０～２の整数、ｎは０～２の整数、ｍは０または１の整数を示し、但し、ｌ、ｍ、およびｎは同時に０にはならず、ｌ＋ｍ＋ｎは２以下である。）
  4. Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
     （ここで、Ｘは、イソプロピル、（ＣＨ２）２ＣＯＯＨ、または（ＣＨ２）２ＣＯＮＨ（ＣＨ２）５ＣＯＯＨを表わす）に示すセレウリドまたはその誘導体を製造する方法であって、請求項１記載のセレウリドまたはその誘導体の前駆体の分子内アミド結合形成による環化反応を含む、製造方法。
  5. 請求項２記載のジデプシペプチドを調製する工程を含む、請求項４記載の製造方法。
  6. 　さらに、請求項３記載のデプシペプチドを調製する工程を含む、請求項５記載の製造方法。
  7. 　以下の式：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
     （ここで、Ｒは、（ＣＨ２）２ＣＯＯＨ、または（ＣＨ２）２ＣＯＮＨ（ＣＨ２）５ＣＯＯＨを表わす）
    で示されるセレウリド誘導体。
     
PCT/JP2013/052870 2012-02-08 2013-02-07 セレウリドおよびその誘導体の製造方法、セレウリド製造の為の中間体ならびにセレウリド誘導体 WO2013118823A1 (ja)

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