WO2013062383A1 - 세포배양 어세이 - Google Patents

세포배양 어세이 Download PDF

Info

Publication number
WO2013062383A1
WO2013062383A1 PCT/KR2012/008917 KR2012008917W WO2013062383A1 WO 2013062383 A1 WO2013062383 A1 WO 2013062383A1 KR 2012008917 W KR2012008917 W KR 2012008917W WO 2013062383 A1 WO2013062383 A1 WO 2013062383A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
scaffold
channel
cell culture
culture assay
microfluidic channel
Prior art date
Application number
PCT/KR2012/008917
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
정석
한세운
신유진
변재영
Original Assignee
고려대학교 산학협력단
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 고려대학교 산학협력단 filed Critical 고려대학교 산학협력단
Priority to US14/354,423 priority Critical patent/US9523672B2/en
Priority to EP12842801.8A priority patent/EP2772530B1/en
Publication of WO2013062383A1 publication Critical patent/WO2013062383A1/ko

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
    • C12M1/34—Measuring or testing with condition measuring or sensing means, e.g. colony counters
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/02—Form or structure of the vessel
    • C12M23/16—Microfluidic devices; Capillary tubes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/34—Internal compartments or partitions
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00—Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C12M25/14—Scaffolds; Matrices
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M3/00—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
    • C12M41/30—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration
    • C12M41/36—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration of biomass, e.g. colony counters or by turbidity measurements
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
    • C12M41/46—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of cellular or enzymatic activity or functionality, e.g. cell viability
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00—Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/06—Fluid handling related problems
    • B01L2200/0647—Handling flowable solids, e.g. microscopic beads, cells, particles
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/502—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5027—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip
    • B01L3/502707—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip characterised by the manufacture of the container or its components

Definitions

  • the present invention relates to a cell culture assay, and more particularly, to a cell culture assay having a structure that can be easily mass-produced and more accurately observe the culture process of the cells.
  • Cell migration refers to the movement of organisms or individual cells by various physical, chemical, and biological stimuli, and infections such as AIDS, germs, and bacteria, arteriosclerosis, arthritis, periodontitis, psoriasis, cancer, and multiple It is deeply linked to various diseases and biological phenomena in the human body, including sclerosis, male infertility, asbestos poisoning, and ozone poisoning.
  • ECM extracellular matrix
  • the microfluidic technology can give a microenvironment around the cell, enable real-time observation and accurate quantification of the cell, reduce the amount of cells or samples used, and evaluate various experimental conditions. There is this.
  • the technique of integrating the scaffold can induce the cells in three dimensions, and can culture the cells using various directions, such as the inside and both sides of the scaffold, it is possible to culture a variety of cells at once, It is possible to study the interaction of cells and to study the interaction between the cells and the scaffold itself, which can be utilized to develop medical materials. Furthermore, the effects of various materials on cells, including nanomaterials, drugs, and proteins, can be evaluated in three dimensions.
  • the microfluidic platform according to the prior art requires a pillar array having a size of several tens to several hundreds of micrometers for fixing between channels of the scaffold, and if there is no pillar, the scaffold may leak into the channel and thus cannot be utilized.
  • the scaffold is hardened after being injected into a specific position in the channel, mostly in the form of a liquid, and a pillar is needed to lock the injected scaffold to a specific position before hardening.
  • the microfluidic platform described above has a limitation in the area in which the cells react due to the pillar preventing the scaffold from leaking, and there is a serious problem in mass production.
  • the pillars continue to be seen during the observation process, which interferes with quantification, and that cells preferentially react with the pillars rather than the scaffolds.
  • an object of the present invention is to solve the problems of the prior art as described above, a cell culture assay having a structure in which cells do not preferentially react with the scaffold and at the same time can be fixed between the scaffold channels. It is to provide.
  • the present invention is a substrate; A scaffold channel formed along an inner center of the substrate, at least one of which is disposed continuously, and in which a scaffold flows; And microfluidic channels respectively formed on both sides or one side of the scaffold channel, and inside which cells flow, and at least one of the ceiling surface and the bottom surface of the boundary between the microfluidic channel and the scaffold channel is the scaffold. It is characterized in that the leakage preventing portion is formed to prevent the folds from leaking into the microfluidic channel.
  • the upper portion of the microfluidic channel and the scaffold channel is formed in a semicircular shape, the upper portion of the semicircular shape is in contact with each other is characterized in that the leakage preventing portion is formed in the boundary portion.
  • the leak prevention part is characterized in that the front end is pointed and has a cross section having a curved shape on both sides.
  • the leak prevention portion is characterized in that the front end is formed round.
  • the leakage preventing portion is characterized in that the front end is formed to have a rectangular cross section.
  • the leakage preventing part is formed to occupy 5 to 95% of the height of the scaffold channel and the microfluidic channel.
  • the scaffold channel and the microfluidic channel are alternately arranged alternately with each other.
  • Both ends of the microfluidic channel extend in a direction away from the scaffold channel.
  • the leakage preventing portion is extended to the ceiling surface or the bottom surface of the boundary between the scaffold channel and the microfluidic channel, so that the cells do not react first with other structures, thereby enabling accurate quantification during observation and reaction of the cell culture.
  • research on cell interactions is also possible.
  • FIG. 1 is a plan view showing a cell culture assay according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is a cross-sectional view taken along the line I-I of FIG.
  • Figures 3a and 3b is an illustration showing that the scaffold is injected into the cell culture assay according to an embodiment of the present invention to harden.
  • FIG 4 and 5 are cross-sectional view of another example of the channel shape of the cell culture assay according to the present invention.
  • 6a to 6c is a perspective view showing a process in which the scaffold is injected into the cell culture assay according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 7A and 7B are cross-sectional perspective views showing another example of the channel structure of the cell culture assay according to the present invention.
  • Figure 8 is a photograph showing the state of cell culture in the conventional cell culture assay.
  • Figure 9 is a photograph showing the state of cell culture in the cell culture assay according to the present invention.
  • FIG. 1 is a plan view showing a cell culture assay according to an embodiment of the present invention
  • Figure 2 is a cross-sectional view taken along the line I-I of FIG.
  • the scaffold channel 20 and the microfluidic channel 30 are formed on the substantially rectangular parallelepiped substrate 10, respectively.
  • the substrate 10 may be made of a material capable of realizing a microfluidic structure capable of transporting a small flow rate of any material.
  • the microfluidic channel 30 into which cells are introduced is located at both sides of the substrate 10, and the scaffold channel 20 is disposed therebetween. As will be described below, a plurality of scaffold channels 20 may be continuously arranged between the microfluidic channels 30.
  • the scaffold channel 20 is installed in a straight line across the center of the substrate 10.
  • a scaffold inlet 22 is formed at the front end (upstream) of the scaffold channel 20, and a scaffold outlet 24 is formed at the rear end (downstream), respectively.
  • the microfluidic inlet 32 and the microfluidic outlet 24 are formed at the front end and the rear end of the microfluidic channel 30, respectively.
  • the scaffold channel 20 flows through the scaffold channel 20.
  • the scaffold 50 which forms the extracellular matrix (ECM), maintains all the advantages of the microfluidic technology.
  • ECM extracellular matrix
  • the three-dimensional response of the cells can be simulated during migration assessment.
  • This scaffold 50 should flow inside the scaffold channel 20 and should not leak towards the microfluidic channel 30.
  • the scaffold 50 hardens after being injected into a specific position within the scaffold channel 20 in liquid form.
  • the scaffold 50 may be made of a material which is injected in a fluid form to solidify or gelize, to harden, to increase viscosity, or to form a piper.
  • solidifying the scaffold 50 there are methods such as applying heat, chemically mixing, watching for a predetermined time or applying light (especially ultraviolet rays).
  • various materials such as alginate, collagen, peptide, fibrin, hyaluronic acid, agarose, and PEG may be used.
  • general gel, agarose gel, tissue, protein can be utilized in various matrix materials.
  • the scaffold 50 may be made of a material extracted directly from a living body such as cells, cell masses, biological tissues, or a mixture thereof.
  • the scaffold channel 20 The leakage preventing part 40 is placed at the boundary where the microfluidic channel 30 meets the gap. That is, the leak prevention portion 40 is formed to extend by a predetermined length on the ceiling surface or the bottom surface of the boundary between the scaffold channel 20 and the microfluidic channel 30 by removing the conventional pillar array.
  • FIGS. 3A and 3B the process of injecting the scaffold 50 in a state where the leakage preventing part 40 is formed is well illustrated in FIGS. 3A and 3B.
  • both sides may have a concave shape inward due to the cohesive force of the scaffold 50 itself as shown in FIG.
  • the fold 50 may be open to both sides and have a convex shape as shown in FIG. 3B. This shape depends on the surface contact angle of the channel and can be manipulated in a particular form.
  • the scaffold 50 may be prevented from leaking into the microfluidic channel 30 by the surface tension with the leak prevention part 40.
  • the leakage preventing part 40 may be formed on the ceiling surface or the bottom surface of the boundary between the scaffold channel 20 and the microfluidic channel 30 as described above. In FIG. . Most preferably, as shown in FIG. 2, the leakage preventing part 40 has a cross section of which both sides are curved while the tip is sharp. The upper part of the scaffold channel 20 and the microfluidic channel 30 may be formed in a semicircular shape and arranged to contact each other.
  • the tip may not be sharply formed as shown in FIG. 2 but may be rounded as shown in FIG. 4.
  • the leakage preventing portion 40 may be formed to have a rectangular cross section.
  • the leak prevention part 40 described above should be extended by a predetermined length from the ceiling surface or the bottom surface of the boundary between the scaffold channel 20 and the microfluidic channel 30, the shape is not particularly limited. .
  • the leakage preventing part 40 may be formed to occupy 5 to 95% of the height of the scaffold channel 20 and the microfluidic channel 30. At this time, if the leak-proof portion 40 is formed to less than 5% of the height of the scaffold channel 20 and the microfluidic channel 30, capillarity is difficult to maintain, if more than 90% drug / molecule The smooth delivery of can be a difficult problem.
  • the leak prevention part 40 may be formed under various ranges such as 20 to 80%, 30 to 70%, and 40 to 60% of the height of the scaffold channel 20 and the microfluidic channel 30.
  • the microfluidic channel 30 extends in various directions or in a direction away from the scaffold channel 20 as shown in Fig. 1, respectively.
  • substantially the scaffold 50 and fluid meet between upstream and downstream.
  • the cells may be cultured using various directions such as inside and both sides of the scaffold 50 channel, and various cells may be cultured at once.
  • it is possible to study the interaction of the cells using this, and also to study the interaction between the cells and the scaffold itself can be utilized in the development of medical materials.
  • Figures 6a to 6c is a perspective view showing a process in which the scaffold is injected into the cell culture assay according to an embodiment of the present invention.
  • the scaffold 50 is introduced through the scaffold inlet 22 and flows along the scaffold channel 20.
  • the scaffold 50 may be fixed on the scaffold channel 20 without being leaked toward the microfluidic channel 30 by the leak prevention part 40 even though the scaffold 50 is introduced as shown in FIG. 6C.
  • Figures 7a and 7b is a cross-sectional perspective view showing another example of the channel structure of the cell culture assay according to the present invention.
  • the scaffold channel 20 and microfluidic channel 30 of the cell culture assay may be arranged in various forms.
  • the microfluidic channel 30 is disposed on both sides, and one scaffold channel 20 is disposed therebetween.
  • the arrangement of the scaffold channel 20 and the microfluidic channel 30 is not necessarily limited to the above-described embodiment, and a plurality of scaffold channels 20 may be continuously arranged as shown in FIG. 4. As in 5, the scaffold channel 20 and the microfluidic channel 30 may be alternately arranged alternately. Such a variety of arrangements have the advantage of allowing simultaneous identification of various cell cultures.
  • Figure 8 shows the culture of vascular endothelial cells through a conventional cell culture assay. Looking at the portion shown in yellow in Figure 8, it can be seen that conventionally endothelial cells grow on the column array and the wall surface. That is, there is a limit in the area where the cells react, and there is a problem in that the pillars are seen during the observation process, thus preventing quantification and the cells reacting with the column array first. In addition, the area marked in red should be wider to see the interaction between cells and cells, cells and gels, and chemical factors, but it is difficult to make them wider to maintain surface tension.
  • vascular endothelial cells grow stably. Therefore, according to the cell culture assay according to the present invention, it is easy to observe the interaction caused by the cells and the cells, the cells and the gel, and chemical factors, and there is an advantage that the production of the substrate is easy.
  • the cell culture assay according to the present invention can be used for various cells including vascular endothelial cells.
  • the cell culture assay described above is generally used for evaluation of cell migration under various environmental conditions.
  • new drug development development of disease models such as cancer and Alzheimer's disease, construction of tissue and organ models, simulation of biological environment, toxicity evaluation, It can be used for various purposes such as drug evaluation, pollutant evaluation, protein and other substance evaluation, biocompatibility evaluation, and stem cell research.

Abstract

본 발명은 세포배양 어세이에 관한 것이다. 본 발명은 기판; 기판의 내부 중앙을 따라 형성되고, 적어도 하나 이상이 연속적으로 배치되며, 내부에는 스캐폴드가 유동하는 스캐폴드 채널; 및 스캐폴드 채널의 양측 또는 일측에 각각 형성되고, 내부에는 세포가 유동하는 미세유체 채널을 포함하고, 미세유체 채널 및 스캐폴드 채널의 경계부의 천장면 및 바닥면 중 적어도 어느 하나에는 스캐폴드가 미세유체 채널로 누출되는 것을 방지하기 위한 누출방지부가 형성된다. 이와 같은 본 발명에 의하면, 스캐폴드 채널과 미세유체 채널의 경계부의 천장면 또는 바닥면에 누출방지부가 연장되도록 함으로써, 세포가 다른 구조물과 먼저 반응하지 않도록 하여 세포배양의 관찰 및 반응시에 정확한 정량화가 가능하고 세포의 상호작용에 대한 연구도 가능한 효과가 있다.

Description

세포배양 어세이
본 발명은 세포배양 어세이에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 양산이 용이하고 세포의 배양과정을 보다 정확하게 관찰할 수 있는 구조를 가진 세포배양 어세이에 관한 것이다.
세포이동(cell migration)이란, 다양한 물리, 화학, 생물학적 자극에 의하여 생물 또는 개개의 세포가 이동하는 것을 의미하며, AIDS, 병균, 박테리아 등의 감염, 동맥경화, 관절염, 치주염, 건선, 암, 다발성 경화증, 남성 불임, 석면 중독, 오존 중독 등 인체 내부의 다양한 질병과 생물학적 현상에 깊게 연관되어 있다.
그러나, 기존의 세포이동 평가 어세이는 대부분 2차원 세포이동을 대상으로 하며, 세포가 바닥에 기어가는 것을 관찰할 수 밖에 없었다. 이때, 실제 세포는 3차원으로 존재하기 때문에 실제 현상과는 다른 결과를 보이는 경우가 많았다.
3차원 세포이동이나, 조직형성, 형태변화, 세포 분화 등을 분석하는 어세이들은 해외에서 개발된 바 있으나, 세포를 특정 조건에 노출시키거나, 생물 내부에 일어나는 실제 3차원 이동을 모사하기에는 한계가 많았고, 실험결과를 효과적으로 평가하고 수치화 할 수 없는 문제가 있었다.
이때, 미세유체 채널 사이에 세포외기질(ECM)을 이루는 스캐폴드를 도입할 경우, 미세유체기술의 장점을 모두 유지하면서 세포이동 및 형태변화, 조직형성, 세포 분화 등의 평가 환경에서 세포의 반응을 3차원으로 모사할 수 있는 장점이 있다.
이와 같은 장점을 반영한 종래기술로서, 국제특허 WO2009/126524호가 있다. 본 종래기술은 미세유체 채널 사이에 세포외기질(ECM) 중 하나인 콜라겐(collagen) 스캐폴드를 도입하여 혈관의 신생을 3차원으로 모사하는 데 성공하였으며, 혈관 내피세포와 암세포의 반응, 간세포와 혈관내피세포의 반응, 신경세포의 반응 연구 결과를 포함하고 있다.
여기에서, 미세유체기술은 세포 주변에 미세환경을 줄 수 있고, 세포의 실시간 관찰 및 반응의 정확한 정량화가 가능하며, 사용되는 세포나 시료의 양을 줄일 수 있고, 다양한 실험조건을 평가할 수 있는 장점이 있다.
또한, 스캐폴드를 통합하는 기술은 세포를 3차원으로 유도할 수 있고, 스캐폴드의 내부, 양쪽 등 다양한 방향을 이용하여 세포를 배양할 수 있어, 다양한 세포를 한꺼번에 배양이 가능하며, 이를 이용하여 세포의 상호작용에 대한 연구가 가능하며, 세포와 스캐폴드 자체의 상호작용의 연구도 가능하여, 의료용 물질을 개발하는 데에도 활용이 가능하다. 더욱이, 나노물질, 약물, 단백질을 포함한 다양한 물질이 세포에 미치는 영향을 3차원으로 평가할 수 있다.
그러나, 종래기술에 의한 미세유체 플랫폼은 스캐폴드의 채널 사이 고정을 위해 수십 내지 수백 ㎛ 크기의 기둥 어레이가 필요하며, 기둥이 없을 경우 스캐폴드가 채널로 새어나갈 수 있어 활용이 불가능한 문제점이 있다. 참고로, 스캐폴드는 대부분 액체의 형태로 채널 내 특정 위치로 주입된 후 굳어지고, 이렇게 주입된 스캐폴드를 굳어지기 전에 특정 위치에 가두어 놓기 위해 기둥이 필요한 것이다.
그러나, 상술한 미세유체 플랫폼은 스캐폴드의 누출을 방지하는 기둥으로 인해 세포가 반응하는 면적에 제한이 생기며, 양산에 심각한 문제가 있다. 또한, 관찰 과정에서 기둥이 계속 보여 정량화를 방해하는 요인이 되고, 세포가 스캐폴드보다는 기둥과 우선적으로 반응하는 핵심적인 문제가 있다.
따라서, 본 발명의 목적은 상기한 바와 같은 종래 기술의 문제점을 해결하기 위한 것으로, 세포가 스캐폴드와 우선적으로 반응하지 않으면서, 이와 동시에 스캐폴드 채널 사이에 고정이 가능한 구조를 가진 세포배양 어세이를 제공하기 위한 것이다.
본 발명이 이루고자 하는 기술적 과제들은 이상에서 언급한 기술적 과제들로 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 기술적 과제들은 아래의 기재로부터 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.
상기한 바와 같은 목적을 달성하기 위한 본 발명의 특징에 따르면, 본 발명은 기판; 상기 기판의 내부 중앙을 따라 형성되고, 적어도 하나 이상이 연속적으로 배치되며, 내부에는 스캐폴드가 유동하는 스캐폴드 채널; 및 상기 스캐폴드 채널의 양측 또는 일측에 각각 형성되고, 내부에는 세포가 유동하는 미세유체 채널을 포함하고, 상기 미세유체 채널 및 스캐폴드 채널의 경계부의 천장면 및 바닥면 중 적어도 어느 하나에는 상기 스캐폴드가 미세유체 채널로 누출되는 것을 방지하기 위한 누출방지부가 형성되는 것을 특징으로 한다.
상기 미세유체 채널 및 스캐폴드 채널의 상부는 반원형으로 이루어지고, 반원형의 상부는 서로 접하여 경계부에 상기 누출방지부가 형성되는 것을 특징으로 한다.
상기 누출방지부는 선단이 뾰족하고 양측이 곡면형상을 가진 단면을 가지는 것을 특징으로 한다.
상기 누출방지부는 선단이 라운드지게 형성되는 것을 특징으로 한다.
상기 누출방지부는 선단이 사각형상의 단면을 가지도록 형성되는 것을 특징으로 한다.
상기 누출방지부는 상기 스캐폴드 채널 및 미세유체 채널의 높이의 5 내지 95%를 차지하도록 형성되는 것을 특징으로 한다.
상기 스캐폴드 채널 및 미세유체 채널은 서로 교대로 반복하여 배치되는 것을 특징으로 한다.
상기 미세유체 채널의 양단부는 상기 스캐폴드 채널에서 멀어지는 방향으로 연장되는 것을 특징으로 한다.
본 발명에 의하면, 스캐폴드 채널과 미세유체 채널의 경계부의 천장면 또는 바닥면에 누출방지부가 연장되도록 함으로써, 세포가 다른 구조물과 먼저 반응하지 않도록 하여 세포배양의 관찰 및 반응시에 정확한 정량화가 가능하고 세포의 상호작용에 대한 연구도 가능한 효과가 있다.
또한, 스캐폴드 채널과 미세유체 채널을 다양한 구조로 배치함으로써, 다양한 세포를 동시에 관찰하여 실험 기간을 단축할 수 있는 효과가 있다.
도 1은 본 발명의 일 실시예에 따른 세포배양 어세이를 보인 평면도.
도 2는 도 1의 선 Ⅰ-Ⅰ에 따른 단면도.
도 3a 및 도 3b는 본 발명의 일 실시예에 따른 세포배양 어세이에 스캐폴드가 주입되어 굳어지는 것을 보인 예시도.
도 4 및 도 5는 본 발명에 의한 세포배양 어세이의 채널 형상의 다른 예를 단면도.
도 6a 내지 도 6c는 본 발명의 일 실시예에 따른 세포배양 어세이에 스캐폴드가 주입되는 과정을 보인 사시도.
도 7a 및 도 7b는 본 발명에 의한 세포배양 어세이의 채널 구조의 다른 예를 보인 단면 사시도.
도 8은 종래의 세포배양 어세이에서의 세포배양 상태를 보인 사진.
도 9는 본 발명에 의한 세포배양 어세이에서의 세포배양 상태를 보인 사진.
이하에서는 본 발명에 의한 세포배양 어세이의 일 실시예를 첨부된 도면을 참고하여 상세하게 설명한다.
도 1은 본 발명의 일 실시예에 따른 세포배양 어세이를 보인 평면도이고, 도 2는 도 1의 선 Ⅰ-Ⅰ에 따른 단면도이다.
이에 도시된 바에 따르면, 대략 직육면체 형상의 기판(10)에 스캐폴드 채널(20) 및 미세유체 채널(30)이 각각 형성된다. 기판(10)은 어떠한 물질의 미소 유량의 수송이 가능한 미세유체 구조를 구현할 수 있는 소재로 제조될 수 있다.
세포가 유입되는 미세유체 채널(30)은 기판(10)에서 양측에 위치하고, 그 사이에는 스캐폴드 채널(20)이 배치된다. 이하에서 설명하겠지만, 스캐폴드 채널(20)은 미세유체 채널(30)의 사이에 다수개가 연속하여 배치될 수도 있다.
스캐폴드 채널(20)은 기판(10)의 중앙을 가로질러 일직선으로 설치된다. 스캐폴드 채널(20)의 전단(상류)에는 스캐폴드 유입구(22)가 형성되고, 후단(하류)에는 스캐폴드 유출구(24)가 각각 형성된다. 또한, 미세유체 채널(30)의 전단 및 후단에도 각각 미세유체 유입구(32) 및 미세유체 유출구(24)가 형성된다.
본 실시예에서 스캐폴드 채널(20)에는 스캐폴드(50, 도 3a 참조)가 유동하게 되는데, 세포외기질(ECM)을 이루는 스캐폴드(50)를 통해 미세유체기술의 장점을 모두 유지하면서 세포이동 평가 과정에서 세포의 3차원 반응을 모사할 수 있다. 이러한 스캐폴드(50)는 스캐폴드 채널(20)의 내부에서 유동하여야 하고 미세유체 채널(30) 쪽으로 누출되지 않아야 한다. 또한, 스캐폴드(50)는 액체 형태로서 스캐폴드 채널(20) 내의 특정 위치로 주입된 후에 굳어진다.
본 실시예에서 스캐폴드(50)는 유체형태로 주입되어 고체화 또는 젤(Gel)화 젤화되거나, 경화되거나, 점도가 높아지거나, 파이퍼 형태가 되는 물질로 이루어질 수 있다. 스캐폴드(50)를 고체화할 때에는 열을 가하거나, 화학적으로 혼합하거나, 일정 시간 이상 지켜보거나, 빛(특히, 자외선)을 가하는 등의 방법이 있다. 그리고, 고체화 또는 젤화되는 스캐폴드(50)로는 알지네이트(Alginate), 콜라겐(Collagen), 펩타이드(Peptide), 피브린(Fibrin), 히알루론산(Hyaluronic Acid), 아가로즈(Agarose), PEG 등 다양한 재질이 있으며, 이외에도 하이드로젤, 일반 젤, 아가로스 젤, 조직, 단백질, 실제 매트릭스 재질 등을 다양하게 활용할 수 있다. 또한, 스캐폴드(50)는 세포나, 세포 덩어리, 생체 조직 등 생체에서 직접 추출한 물질 또는 그 혼합물질로 이루어질 수도 있다.
여기에서, 종래와 같이 스캐폴드(50)를 기둥 어레이를 통해 특정 위치에 가두어 놓게 되면 세포가 스캐폴드(50)보다 기둥 어레이와 우선적으로 반응하는 문제가 있어 본 실시예에서는 스캐폴드 채널(20)과 미세유체 채널(30)이 만나는 경계부에 누출방지부(40)를 두어 이를 해결하고자 하였다. 즉, 종래의 기둥 어레이를 없애고 스캐폴드 채널(20)과 미세유체 채널(30)의 경계부의 천장면 또는 바닥면에 소정 길이만큼 누출방지부(40)가 연장되도록 형성한 것이다.
이와 같이 누출방지부(40)가 형성된 상태에서 스캐폴드(50)가 주입되는 과정이 도 3a 및 도 3b에 잘 도시되어 있다. 이를 참조하면, 최초에 스캐폴드(50)가 스캐폴드 채널(20)로 유입되면 도 3a에서와 같이 스캐폴드(50) 자체의 응집력 때문에 양측이 내측으로 오목한 형상을 가질 수 있고, 시간이 지나면 스캐폴드(50)가 양측으로 벌어지면서 도 3b에서와 같이 볼록한 형상을 가질 수 있다. 이 형상은 채널의 표면 접촉각에 따라 다르며, 특정 형태로 조작도 가능하다. 이러한 과정으로 스캐폴드(50)는 누출방지부(40)와의 표면장력에 의하여 미세유체 채널(30)로 누출되는 것이 방지될 수 있다.
한편, 누출방지부(40)는 상술한 바와 같이 스캐폴드 채널(20)과 미세유체 채널(30)의 경계부의 천장면 또는 바닥면에 형성될 수 있는데, 도 2에서는 천장면에 형성된 것으로 도시하였다. 가장 바람직하게는 도 2에서와 같이 누출방지부(40)가 선단이 뾰족하면서 양측면이 곡면 형상인 단면을 가지는 것이 바람직하다. 이는 스캐폴드 채널(20)과 미세유체 채널(30)의 상부를 반원형으로 형성하고 서로 접하도록 배치하면 형상 구현이 가능하다.
다만, 실제 본 기판(10)을 제조하는 과정에서 선단이 도 2에서와 같이 뾰족하게 형성되지 않고 도 4에서와 같이 라운드지게 형성될 수도 있다. 또한, 도 5에서와 같이 누출방지부(40)는 사각형상의 단면을 가지도록 형성될 수도 있다.
결과적으로, 이상에서 설명한 누출방지부(40)는 스캐폴드 채널(20)과 미세유체 채널(30)의 경계부의 천장면 또는 바닥면에서 소정 길이만큼 연장되면 되는 것이고, 그 형상에는 특별한 제한이 없다.
또한, 누출방지부(40)는 스캐폴드 채널(20) 및 미세유체 채널(30)의 높이의 5 내지 95%를 차지하도록 형성될 수 있다. 이때, 누출방지부(40)가 스캐폴드 채널(20) 및 미세유체 채널(30)의 높이의 5% 미만으로 형성되면 모세관 현상(capillarity)이 유지되기 어렵고, 90% 초과로 형성되면 약물/분자의 원활한 전달이 어려운 문제점이 있을 수 있다. 예를 들어, 누출방지부(40)는 스캐폴드 채널(20) 및 미세유체 채널(30)의 높이의 20 내지 80%, 30 내지 70%, 40 내지 60% 등 다양한 범위 하에서 형성될 수 있다.
한편, 미세유체 채널(30)은 양단부가 각각 도 1에서와 같이 스캐폴드 채널(20)에서 멀어지는 방향이나 기타 다양한 방법으로 연장된다. 이와 같이 형성됨으로써 실질적으로 스캐폴드(50)와 유체는 상류와 하류 사이에서 만나게 된다. 그리고, 스캐폴드(50) 채널의 내부, 양쪽 등 다양한 방향을 이용하여 세포를 배양할 수 있어, 다양한 세포를 한꺼번에 배양할 수 있다. 또한, 이를 이용하여 세포의 상호작용에 대한 연구가 가능하며, 세포와 스캐폴드 자체의 상호작용의 연구도 가능하여 의료용 물질을 개발하는 데에도 활용이 가능하다.
한편, 도 6a 내지 도 6c에는 본 발명의 일 실시예에 따른 세포배양 어세이에 스캐폴드가 주입되는 과정을 보인 사시도가 도시되어 있다.
이에 도시된 바에 따르면, 스캐폴드(50)는 스캐폴드 유입구(22)를 통해 유입되어 스캐폴드 채널(20)을 따라 유동하게 된다. 그리고, 스캐폴드(50)는 도 6c에 도시된 만큼 유입되어도 누출방지부(40)에 의해 미세유체 채널(30) 쪽으로 누출되지 않고 스캐폴드 채널(20) 상에 고정될 수 있다.
다음으로, 도 7a 및 도 7b에는 본 발명에 의한 세포배양 어세이의 채널 구조의 다른 예를 보인 단면 사시도가 도시되어 있다.
이에 도시된 바에 따르면, 세포배양 어세이의 스캐폴드 채널(20) 및 미세유체 채널(30)은 다양한 형태로 배치될 수 있다. 상술한 실시예에서 도 2를 참조하면, 미세유체 채널(30)이 양측에 배치되고, 그 사이에 하나의 스캐폴드 채널(20)이 배치되어 있다.
하지만, 스캐폴드 채널(20) 및 미세유체 채널(30)의 배치는 반드시 상술한 실시예에 한정되는 것은 아니고, 도 4에서와 같이 다수개의 스캐폴드 채널(20)이 연속적으로 배치될 수도 있고 도 5에서와 같이 스캐폴드 채널(20) 및 미세유체 채널(30)은 서로 교대로 반복하여 배치될 수도 있다. 이와 같이 다양하게 배치됨으로써 다양한 종류의 세포 배양을 동시에 확인할 수 있는 장점이 있다.
이하에서는 도 8 및 도 9를 참조하여 종래와 본 발명의 세포배양 실시예를 사진을 통해 비교해 보도록 한다.
도 8은 종래의 세포배양 어세이를 통해 혈관내피세포를 배양한 것을 도시한 것이다. 도 8에서 노란색으로 표시한 부분을 살펴보면, 종래에는 기둥 어레이 및 벽면을 타고 혈관내피세포가 자라는 것을 확인할 수 있다. 즉, 세포가 반응하는 면적에 제한이 생기며 관찰 과정에서도 기둥이 보여 정량화를 방해하고 세포가 기둥 어레이와 먼저 반응하는 문제가 있다. 또한, 빨간색으로 표시한 부분은 세포와 세포, 세포와 겔, 화학적 요인(chemical factors) 등과의 상호 작용을 보기 위해 넓어지면 좋은데, 표면장력을 유지하려면 더 넓게 만들기도 어려운 문제가 있다.
반면에, 도 9를 참조하면, 혈관내피세포가 안정적으로 잘 자라는 것을 확인할 수 있다. 따라서, 본 발명에 의한 세포배양 어세이에 의하면 세포와 세포, 세포와 겔, 화학적 요인에 의한 상호 작용을 관찰하기 쉽고 기판의 제작도 용이한 장점이 있다.
또한, 도 8 및 도 9에서는 혈관내피세포를 예로 들어 설명하였으나, 본 발명에 의한 세포배양 어세이는 혈관내피세포를 비롯한 다양한 세포들에 사용할 수 있음은 당연하다.
한편, 이상에서 설명한 세포배양 어세이는 다양한 환경조건에서의 세포 이동평가에 사용되는 것이 일반적이나, 신약개발,　암,　알츠하이머　등의　질병모델　구축, 조직　및　장기　모델　구축,　생물환경　모사,　독성　평가,　약물　평가,　오염물　평가,　단백질　및　기타　물질　평가,　생체적합성　평가,　줄기세포　연구　등　다양한　용도로 활용이 가능하다.
본 발명의 권리범위는 위에서 설명된 실시예에 한정되지 않고 청구범위에 기재된 바에 의해 정의되며, 본 발명의 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자가 청구범위에 기재된 권리범위 내에서 다양한 변형과 개작을 할 수 있다는 것은 자명하다.

Claims (10)

  1. 기판;
    상기 기판의 내부 중앙을 따라 형성되고, 적어도 하나 이상이 연속적으로 배치되며, 내부에는 스캐폴드가 유동하는 스캐폴드 채널; 및
    상기 스캐폴드 채널의 양측 또는 일측에 각각 형성되고, 내부에는 세포가 유동하는 미세유체 채널을 포함하고,
    상기 미세유체 채널 및 스캐폴드 채널의 경계부의 천장면 및 바닥면 중 적어도 어느 하나에는 상기 스캐폴드가 미세유체 채널로 누출되는 것을 방지하기 위한 누출방지부가 형성되는 것을 특징으로 하는 세포배양 어세이.
  2. 제 1 항에 있어서,
    상기 미세유체 채널 및 스캐폴드 채널의 상부는 반원형으로 이루어지고, 반원형의 상부는 서로 접하여 경계부에 상기 누출방지부가 형성되는 것을 특징으로 하는 세포배양 어세이.
  3. 제 1 항에 있어서,
    상기 누출방지부는 선단이 뾰족하고 양측이 곡면형상을 가진 단면을 가지는 것을 특징으로 하는 세포배양 어세이.
  4. 제 1 항에 있어서,
    상기 누출방지부는 선단이 라운드지게 형성되는 것을 특징으로 하는 세포배양 어세이.
  5. 제 1 항에 있어서,
    상기 누출방지부는 선단이 사각형상의 단면을 가지도록 형성되는 것을 특징으로 하는 세포배양 어세이.
  6. 제 1 항에 있어서,
    상기 누출방지부는 상기 스캐폴드 채널 및 미세유체 채널의 높이의 5 내지 95%를 차지하도록 형성되는 것을 특징으로 하는 세포배양 어세이.
  7. 제 1 항에 있어서,
    상기 스캐폴드 채널 및 미세유체 채널은 서로 교대로 반복하여 배치되는 것을 특징으로 하는 세포배양 어세이.
  8. 제 1 항에 있어서,
    상기 미세유체 채널의 양단부는 상기 스캐폴드 채널에서 멀어지는 방향으로 연장되는 것을 특징으로 하는 세포배양 어세이.
  9. 제 1 항에 있어서,
    상기 스캐폴드는 유체 형태로 주입되어 젤화되거나, 경화되는 물질로 이루어지는 것을 특징으로 하는 세포배양 어세이.
  10. 제 1 항에 있어서,
    상기 스캐폴드는 알지네이트(Alginate), 콜라겐(Collagen), 펩타이드(Peptide), 피브린(Fibrin), 히알루론산(Hyaluronic Acid), 아가로즈(Agarose), PHEMA(Polyhydroxyethylmethacrylate),　PVA(Polyvinyl alcohol),　PEG(Poly(ethylene glycol)), PEO(Poly(ethylene oxide)),　PEGDA(Polyethylene (glycol) diacrylate), 젤라틴(Gelatin), 매트리젤(Matrigel),　PLLA(poly(L-lactic acid)),　카복시메틸셀룰로오스(Carboxymethylcellulose),　SAP,　PHEMA-MMA, 덱스트란(Dextran), 키토산(Chitosan)　중 어느 하나의 재질 또는, 이들 중 둘 이상이 혼합된 재질로 이루어지는 것을 특징으로 하는 세포배양 어세이.
PCT/KR2012/008917 2011-10-28 2012-10-29 세포배양 어세이 WO2013062383A1 (ko)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US14/354,423 US9523672B2 (en) 2011-10-28 2012-10-29 Cell culture assay
EP12842801.8A EP2772530B1 (en) 2011-10-28 2012-10-29 Cell culture assay

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR10-2011-0111302 2011-10-28
KR1020110111302A KR101322798B1 (ko) 2011-10-28 2011-10-28 세포배양 어세이

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2013062383A1 true WO2013062383A1 (ko) 2013-05-02

Family

ID=48168114

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/KR2012/008917 WO2013062383A1 (ko) 2011-10-28 2012-10-29 세포배양 어세이

Country Status (5)

Country Link
US (1) US9523672B2 (ko)
EP (1) EP2772530B1 (ko)
JP (2) JP2014530635A (ko)
KR (1) KR101322798B1 (ko)
WO (1) WO2013062383A1 (ko)

Families Citing this family (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101322798B1 (ko) * 2011-10-28 2013-10-29 고려대학교 산학협력단 세포배양 어세이
CN105713835B (zh) * 2014-12-05 2018-11-09 中国科学院大连化学物理研究所 一种基于微流控芯片的多功能区域细胞三维共培养方法
KR101896618B1 (ko) * 2015-12-07 2018-09-07 서울대학교산학협력단 세포외소포체 추적 관찰 시스템
KR20170074503A (ko) * 2015-12-22 2017-06-30 고려대학교 산학협력단 세포 배양 어세이를 이용한 약물 평가 방법
US10767149B2 (en) * 2016-06-13 2020-09-08 Massachusetts Institute Of Technology Microfluidic device for three dimensional and compartmentalized coculture of neuronal and muscle cells, with functional force readout
US11794184B2 (en) 2016-09-29 2023-10-24 Nanyang Technological University Three-dimensional (3D) hydrogel patterning in microfluidic vascular models
KR101949612B1 (ko) * 2016-11-29 2019-02-19 고려대학교 산학협력단 미세 유체칩
IT201600131735A1 (it) * 2016-12-28 2018-06-28 Milano Politecnico Costrutti tridimensionali multistrato in microcanali
KR101848201B1 (ko) * 2017-01-04 2018-05-24 고려대학교 산학협력단 조직을 구성하는 이기종 세포 간의 반응 연구를 위한 반응 연구 칩
WO2018236901A1 (en) * 2017-06-19 2018-12-27 Curiochips MICROFLUIDIC DEVICE HAVING PARTIALLY CLOSED MICROFLUIDIC CHANNEL AND USE THEREOF
KR20190088354A (ko) 2018-01-18 2019-07-26 포항공과대학교 산학협력단 세포친화성 물질로 피복된 나노 섬유상 기저 막과 제조 방법
KR20190088337A (ko) 2018-01-18 2019-07-26 포항공과대학교 산학협력단 나노 섬유 기저 막을 생체 모사 조직 표면에 형성시키는 방법
KR20230004683A (ko) * 2020-04-22 2023-01-06 더 보드 오브 트러스티스 오브 더 리랜드 스탠포드 쥬니어 유니버시티 미세유체 칩 및 그를 사용하는 미세생리학적 시스템
WO2023145208A1 (ja) * 2022-01-31 2023-08-03 株式会社エンプラス 流体取扱装置、その製造方法、および流体取扱装置への流動性媒体の導入方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20070099294A1 (en) * 2005-11-02 2007-05-03 The Ohio State University Research Foundation Materials and methods for cell-based assays
KR100733914B1 (ko) * 2005-09-22 2007-07-02 한국과학기술원 미세유체 기술을 이용한 3차원 세포배양 시스템
WO2009126524A2 (en) 2008-04-08 2009-10-15 Massachusetts Institute Of Technology Three-dimensional microfluidic platforms and methods of use thereof

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP5061408B2 (ja) * 2001-05-01 2012-10-31 日産自動車株式会社 固体電解質型燃料電池用スタック及び固体電解質型燃料電池
US6943008B1 (en) 2002-08-21 2005-09-13 Florida State University Research Foundation, Inc. Bioreactor for cell culture
US20090155877A1 (en) 2004-07-06 2009-06-18 Agency For Science Technology And Research Biochip for sorting and lysing biological samples
JP4619728B2 (ja) * 2004-09-02 2011-01-26 株式会社エンプラス 試料分析装置
US20080233607A1 (en) * 2004-11-11 2008-09-25 Hanry Yu Cell Culture Device
WO2009061392A1 (en) * 2007-11-05 2009-05-14 President And Fellows Of Harvard College Forming gel structures using microfluidic channels
US9261496B2 (en) * 2010-09-29 2016-02-16 Massachusetts Institute Of Technology Device for high throughput investigations of multi-cellular interactions
KR101322798B1 (ko) * 2011-10-28 2013-10-29 고려대학교 산학협력단 세포배양 어세이

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100733914B1 (ko) * 2005-09-22 2007-07-02 한국과학기술원 미세유체 기술을 이용한 3차원 세포배양 시스템
US20070099294A1 (en) * 2005-11-02 2007-05-03 The Ohio State University Research Foundation Materials and methods for cell-based assays
WO2009126524A2 (en) 2008-04-08 2009-10-15 Massachusetts Institute Of Technology Three-dimensional microfluidic platforms and methods of use thereof
KR20110003526A (ko) * 2008-04-08 2011-01-12 메사추세츠 인스티튜트 오브 테크놀로지 3차원 미세유체 플랫폼 및 이의 사용 방법

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHUNG, S. ET AL.: "Cell migration into scaffolds under co-culture conditions in a microfluidic platform", LAB CHIP, vol. 9, October 2008 (2008-10-01), pages 269 - 275, XP055066343 *
JEONG, G. S. ET AL.: "Microfluidic assay of endothelial cell migration in 3D interpenetrating polymer semi-network HA-Collagen hydrogel", BIOMEDICAL MICRODEVICES, vol. 13, April 2011 (2011-04-01), pages 717 - 723, XP019921912 *

Also Published As

Publication number Publication date
KR101322798B1 (ko) 2013-10-29
EP2772530A4 (en) 2015-07-15
KR20130046750A (ko) 2013-05-08
US20140302594A1 (en) 2014-10-09
EP2772530B1 (en) 2019-04-03
JP2014530635A (ja) 2014-11-20
JP2016146851A (ja) 2016-08-18
US9523672B2 (en) 2016-12-20
EP2772530A1 (en) 2014-09-03
JP6457434B2 (ja) 2019-01-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2013062383A1 (ko) 세포배양 어세이
Janmey et al. Stiffness sensing by cells
CN103477222B (zh) 用于高通量研究细胞相互作用的装置
US10202569B2 (en) Radial microfluidic devices and methods of use
US9617520B2 (en) Device and method of 3-dimensionally generating in vitro blood vessels
EP2526978B1 (en) Device and method of generating in vitro blood vessels
WO2015016471A1 (ko) 미세 세포 배양장치
WO2014127250A1 (en) Cell culture device with an array of microfluidic networks
US10017724B2 (en) Engineering of a novel breast tumor microenvironment on a microfluidic chip
EP3584010A1 (de) Untersuchungsverfahren an und/oder mit einem biologischen probenmaterial
US20180141047A1 (en) Microfluidic device for in vitro 3d cell culture experimentation
WO2017070542A1 (en) Systems and methods for producing micro-engineered models of the human cervix
Ahmed et al. Engineering fiber anisotropy within natural collagen hydrogels
KR20210024342A (ko) 약물의 심장 효능 및 독성 시험을 위한 심근내막 수준 생체모방 심장칩
CN103981085A (zh) 一种自设度梯度药物筛选器官芯片及其制备方法
Tevlek et al. Spheroid engineering in microfluidic devices
Comelles et al. Versatile gradients of covalently bound proteins on microstructured substrates
JP7413644B2 (ja) バイオウォール、ビーズ床、及びバイオインターフェースを含む細胞を培養するためのマイクロ流体デバイス、並びにマイクロ流体デバイスのバイオインターフェースをモデル化する方法
WO2013131088A1 (en) Porous structure with independently controlled surface patterns
CN206512226U (zh) 一种细胞培养装置
KR20200008688A (ko) 3차원 세포 배양 에세이
WO2022260436A1 (ko) 종양 스페로이드를 포함하는 미세유체칩
US20210363477A1 (en) System and Method for Screening Therapeutic Agents
Vafai Evaporative Edge Lithography: A New Method for Assaying the Effect of Lipophilic Drugs on Migration and Outgrowth of Cells over Patterned Surfaces
WO2022235210A1 (en) Micropatterned 3d hydrogel microarray in fluidic channels for spheroid-in-gel culture

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 12842801

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 14354423

Country of ref document: US

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2014538717

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2012842801

Country of ref document: EP