WO2013030940A1 - 培養シート、培養器材、及び製造方法 - Google Patents

培養シート、培養器材、及び製造方法 Download PDF

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culture
identification mark
sheet
region
culture sheet
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山本　治朗
板橋　直志
拓 齊藤
明子 久田
亮介 高橋
浩 園田
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株式会社日立製作所
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    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/02—Form or structure of the vessel
    • C12M23/12—Well or multiwell plates
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B29—WORKING OF PLASTICS; WORKING OF SUBSTANCES IN A PLASTIC STATE IN GENERAL
    • B29C—SHAPING OR JOINING OF PLASTICS; SHAPING OF MATERIAL IN A PLASTIC STATE, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; AFTER-TREATMENT OF THE SHAPED PRODUCTS, e.g. REPAIRING
    • B29C59/00—Surface shaping of articles, e.g. embossing; Apparatus therefor
    • B29C59/02—Surface shaping of articles, e.g. embossing; Apparatus therefor by mechanical means, e.g. pressing
    • B29C59/022—Surface shaping of articles, e.g. embossing; Apparatus therefor by mechanical means, e.g. pressing characterised by the disposition or the configuration, e.g. dimensions, of the embossments or the shaping tools therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M25/00—Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/04—Plant cells or tissues

Definitions

  • the present invention relates to a technique for culturing animal and plant cells using a culture device to form a granular tissue (three-dimensional tissue) and a single-layered tissue (two-dimensional planar tissue).
  • Non-patent Document 1 Non-patent Document 1
  • a sheet for culturing (nano pillar sheet) formed on the surface of a sheet in which very fine uniform protrusions are regularly arranged has been developed.
  • the three-dimensional structure is highly peelable from the equipment (Patent Document 1), and there is a problem that it is lost during the medium exchange process.
  • Patent Document 1 since the particle size of the formed three-dimensional structure cannot be controlled, the size is not uniform, and the performance of each three-dimensional structure varies. It is.
  • Patent Document 2 In order to form a three-dimensional structure having a uniform particle size, a method as shown in Patent Document 2 has been devised.
  • a multiwell plate type cell culture device with a culture sheet attached thereto will be described in relation to the culture device of Patent Document 2 described above.
  • a frame body called a well 111 is formed in a culture vessel 110 that is a multi-well plate type culture equipment.
  • the culture sheet 100 is affixed to the bottom surface of this frame.
  • the surface of the culture sheet 100 to which the cells adhere has a local culture region 103 in which protrusions, that is, pillars 105 having a three-dimensional concavo-convex structure are installed, and holes 101 separated from each other by a partition wall 102 higher than the protrusions. Is formed.
  • the optimal values for the diameter, pitch, and height of the protrusions are determined depending on the cell type to form a three-dimensional aggregate called a spheroid. Therefore, by setting the optimal values, only the local culture region 103 is used. It becomes possible to fix the cells. Furthermore, by dividing the culture area by holes, the seeded cells can be limited within the holes, so that the cells move to agglomerate while the number of cells is limited to some extent, and one spheroid is formed. . By limiting the number of cells, the size of the spheroids is expected to be uniform and homogeneous and effective in cell assays.
  • This culture equipment is produced by batch-transferring a mold such as polystyrene having a predetermined shape formed on a silicon substrate.
  • the defect inspection it is necessary to specify the defect location and its location.
  • the defect coordinates are obtained from relative coordinates with respect to a specific hole or the absolute coordinates of the apparatus.
  • there is no reference coordinate information and the location of the defect cannot be determined.
  • the cells cultured on the cell culture sheet with and without the drug may be collected in a separate container and evaluated with an analyzer.
  • the cultured cells may generate partially inactive dead cells, but in this case, noise is generated during drug screening, and sensitivity is reduced. For this reason, noise cells should be removed in advance, but in this case as well, it is essential to specify the location.
  • an active cell absorbs oxygen and discharges carbon dioxide. Therefore, by measuring the carbon dioxide concentration of each hole, the viability of the cell is judged. Is possible.
  • Patent Document 3 describes that an identification mark is transferred to the bottom of the microwell.
  • the cell feels and adsorbs the structure of the mark portion and is shielded by the cell, so that the mark cannot be read.
  • the height of the bottom of the hole into which the cell is dropped and the identification mark are greatly different, it was impossible to observe the cell shape and the mark with the same focus and read them simultaneously.
  • An object of the present invention is to provide a culture sheet, a culture device, and a method for manufacturing the same that can solve the above-described problems and can simultaneously read a three-dimensional structure and an identification mark.
  • a culture sheet for culturing cells a partition wall, a hole separated by the partition wall, and a part of the bottom surface of the hole having a height higher than that of the partition wall.
  • a culture region in which a plurality of low protrusions are formed a culture sheet having an identification mark formed on a bottom surface of a hole at a position different from the culture region, and a culture device using the culture sheet.
  • the present invention provides a method for producing a culture sheet for culturing cells, wherein the partition wall, a hole separated by the partition wall, and a part of the bottom surface of the hole are partitioned. An identification mark that is formed at a position different from the culture area on the bottom surface of the hole, where a plurality of protrusions lower in height than the wall are formed.
  • a method for producing a culture sheet comprising a step of forming a mold substrate of a culture sheet having regions, and a step of pressing the culture sheet material while heating the mold substrate.
  • the three-dimensional tissue formation of the cultured cells can be realized, and the identification mark can be read without being shielded by the three-dimensional tissue.
  • seat which has a structure which partitions a culture
  • Example 1 shows an example in which a culture sheet is applied to a culture device for a 24-well multiwell plate which is a culture sheet holding member.
  • This culture sheet is formed of a substance that does not adversely affect the cells, but the culture sheet in this example uses polystyrene.
  • the material is not limited to polystyrene.
  • a 24-well multi-well plate is used as the holding member, but other multi-well plates having different numbers of holes, chamber slides, or the like may be used.
  • the culture sheet 100 is joined to the bottom of a cylindrical hole called a well 111 having a diameter of about 16 mm by a method such as ultrasonic welding.
  • the culture sheet 100 has a plurality of holes per sheet, and the holes 101 are individually separated by a partition structure 102.
  • the hole 101 is a minimum unit of the culture region, and further includes a local culture region 103 in which protrusions, that is, pillars are locally arranged inside the hole, and an identification mark region 104.
  • the local culture region 103 on the bottom surface of the hole 101 is composed of a plurality of pillars. Further, the pillars in the local culture region 103 in the hole 101 are referred to as local culture region pillars 105, and the pillars in the identification mark region 104 are referred to as identification mark pillars 106.
  • the diameter of each hole 101 partitioned by the partition wall 102 which is a partition structure on the culture sheet 100 is 200 ⁇ m
  • the pitch between the holes is 220 ⁇ m
  • the diameter of the local culture region 103 is 80 ⁇ m
  • the local culture region pillar A culture sheet 100 having a height of 105, a pillar diameter, and a pillar pitch of 1 ⁇ m, 2 ⁇ m, and 4 ⁇ m, respectively, and a height, a pillar diameter, and a pillar pitch of the identification mark pillar 106 of 0.1 ⁇ m, 0.5 ⁇ m, and 1 ⁇ m, respectively.
  • the partition wall 102, the hole 101 separated by the partition wall 102, and the local culture region 103 and the identification mark region 104 formed in the hole 101 are integrally made of the same material. Is formed.
  • FIGS. 5A, 5B, and 5C An example of the method for producing the culture sheet of this example will be described with reference to FIGS. 5A, 5B, and 5C.
  • holes 502, 503, and 504 corresponding to the partition wall 102, the local culture region 103 including the local culture hole, and the identification mark region 104 including the identification mark hole are formed in the same silicon substrate 500.
  • the pattern is transferred to the silicon substrate 500 by a so-called thermal imprint method in which the polystyrene sheet 505 is pressed while being heated. Thereby, the cell culture sheet 100 shown in FIG. 5C is formed.
  • the partition wall hole 502, the local culture hole 503, and the identification mark hole 504, which are the reversal patterns of the cell culture sheet, are formed in advance on the silicon substrate that serves as a mold, so that the cell culture sheet of this embodiment is formed at a time. Can be formed. Note that this forming method is an example, and it goes without saying that pattern transfer can be performed at the same time even if nickel electroforming or quartz is used as the mold material instead of silicon.
  • the identification mark area 104 is a two-digit number on the left and right of the local culture area 103.
  • the number on the left indicates the hole arrangement row, and the step on the right indicates the position of the hole.
  • all the holes are serially provided with two-digit numbers.
  • the local culture region 103 holds the spheroid, which is a three-dimensional tissue having a uniform particle size, at the center of the culture region and can be held at the target position.
  • region may be a square and a polygonal shape.
  • the identification mark area 104 is arranged in a position different from the local culture area 103 in the same hole 101 area, but it is necessary to prevent adhesion of spheroids in the identification mark area. Two spheroids are formed in the local cell culture region 103 and the identification mark region 104 so that the desired size cannot be obtained, or the identification mark cannot be visually recognized when the spheroid adheres to the identification mark region 104 and is shielded. This is to prevent this.
  • the identification mark area pillar 106 of the identification mark area 104 of this embodiment is lower than the height of the cell culture area pillar, or / and has a smaller diameter and / or smaller pitch, thereby moving to the identification mark area. Cell adhesion can be prevented.
  • hepatocytes in the case of hepatocytes, it is optimal at a pillar diameter of 2 ⁇ m (pillar pitch of 4 ⁇ m) and a pillar height of 1 ⁇ m, and it has been confirmed by experiments by the inventors that cell adhesion becomes weak just by halving even this value. It was done. Therefore, it is possible to suppress the adhesion of cells to the identification mark area by increasing the difference from the identification mark area pillar 106 as compared to the cell culture area pillar 105.
  • FIG. 6 shows the results of simulations for the reflectance of polystyrene having a wavelength of 550 nm, a pitch of 1000 nm, and a pattern width of 500 nm.
  • the reflection intensity at each height is R
  • the pattern height is 0 nm, that is, the reflection intensity when there is no pattern is normalized by R 0 .
  • the reflection intensity is low until the pattern height h is 140 nm, that is, it is darker than the surroundings. If there is a difference of 10%, it is possible to read with a machine. Therefore, if the intensity ratio is 90% or less, that is, the pattern height is 25 nm or more, it is possible to read characters sufficiently.
  • the identification mark area can also be reduced, thereby making it possible to reduce the area of the identification mark area that is not directly related to cell culture.
  • visibility by an optical microscope or the like can be improved by reducing the pillar diameter / pitch.
  • an optical microscope is used as an inspection method, but it goes without saying that it may be performed by an optical or electro-optical technique such as a laser microscope or an electron beam microscope.
  • the height of the identification mark pillar is the same as or lower than that of the cell culture area pillar as in this embodiment, even if the height of the cell culture area pillar and the identification mark pillar is different, it is about several ⁇ m at most. The difference.
  • ⁇ light source wavelength
  • F eyepiece field of view
  • M objective lens magnification
  • NA numerical aperture
  • the light source wavelength ( ⁇ ) is 0.55 ⁇ m
  • the magnification (M) of the objective lens is x20
  • the numerical aperture (NA) is 0.46.
  • the real field of view is 1.3 mm and the focal depth is ⁇ 1.3 ⁇ m.
  • the range actually used for observation at one time is from about 1 to about 10 in one field of view, the observed depth of focus is from sub ⁇ m to several tens of ⁇ m or less. Therefore, spheroid observation and mark identification can be performed by moving the focus position of spheroid observation and the focus position of the identification mark simultaneously or slightly.
  • Example 2 shows an example in which a culture sheet is applied to a culture device of a chamber plate that is a culture sheet holding member, and shows a case where the culture sheet is produced by a line instead of a pillar as an identification mark of the culture sheet.
  • the diameter of each hole 101 partitioned by the partition wall 102 which is a partition structure on the culture sheet 100 is 130 ⁇ m
  • the pitch of the holes is 150 ⁇ m
  • the diameter of the local culture region 103 is 60 ⁇ m
  • the local culture region pillar 104 is used.
  • the height, pillar diameter, and pillar pitch were 2 ⁇ m, 1 ⁇ m, and 2.5 ⁇ m, respectively.
  • Example 1 As a result, it was possible to suppress cell adhesion by lowering the height of the pillar as in Example 1. Furthermore, by using a line as in this embodiment instead of an aggregate of fine patterns such as pillars, it became possible to further suppress cell adhesion.
  • Example 3 shows a cell culture sheet in which each hole 101 has a matrix number indicating the position of the hole in the identification mark area 104 and alignment marks 108 arranged every five rows and columns. Here, every five holes, but every hundreds or all holes may be attached. As with the identification mark region pillar, it is desirable that the alignment mark has a pillar diameter, pillar pitch, pillar height, or all values smaller than the local culture region pillar.
  • the pillar of the alignment mark 108 enables position alignment of the defect inspection apparatus or the observation microscope. Furthermore, it is possible to adjust the alignment mark more easily and more quickly by making the alignment mark 108 into a shape that can be easily read by an automatic alignment device such as the defect device, registering the image in the device, and performing a comparative inspection. Become.
  • the identification mark lower than the height of the pillar for cell culture, it becomes possible to suppress trapping of the cell at the identification mark and read the identification mark.
  • the identification mark has a pillar shape for cell culture that is smaller and / or lower than the pillar, the optical refraction at the pillar will be different, and the contrast in optical observation will be improved. The reading of the identification mark can be further facilitated.
  • the height of the identification mark is 0.025 ⁇ m or more and 0.5 ⁇ m or less, it becomes possible to suppress trapping of cells at the identification mark while improving the visibility of optical observation or the like.
  • an identification mark it is possible to facilitate automatic alignment and automatic focus adjustment by producing a shape that can be easily read by an automatic reader in each hole or in a specific hole.
  • this invention is not limited to the above-mentioned Example, Various modifications are included.
  • the above-described embodiments have been described in detail in order to explain the present invention in an easy-to-understand manner, and are not necessarily limited to those having all the configurations described.
  • a part of the configuration of one embodiment can be replaced with the configuration of another embodiment, and the configuration of another embodiment can be added to the configuration of one embodiment.

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Abstract

　仕切りにより領域をホールに分離された培養シートの多数個あるホールの中で、培養する細胞がどの位置にあるのかがわからなくなり、観察者の作業効率を大幅に制限していた。培養シートを、仕切り１０２と、仕切りにより分離されたホール１０１と、ホールの底面の一部に、仕切りより高さの低い複数の局所培養領域ピラー１０５が形成された局所培養領域１０３と、ホールの底面の、培養領域とは異なる識別マーク領域１０４に形成された識別マークピラー１０６で構成する。識別マークピラーの径、高さを、局所培養領域ピラー１０５の径、高さよりも小さくすることにより、識別マーク領域１０４にスフェロイドが接着することによって識別マークが視認できなくなるのを防ぐ。

Description

培養シート、培養器材、及び製造方法
　本発明は、培養器材を用いて動植物細胞を培養し、細胞の粒状組織(三次元組織)、および単層組織(二次元平面組織)を形成する技術に関する。
　医療品開発プロセスにおいて、動物実験に代わり、細胞を利用したイン・ビトロ(in vitro)アッセイが求められている。特に、薬物候補物質のスクリーニング、毒性・代謝試験に応用する動きが活発になっている。
　このような背景のもと、従来の動物実験に代わる、細胞を利用した代替法のアプローチは盛んに試みられてきたが、臨床反応を予測するには限界があるものが多い。これは、これらの培養法では、細胞が実際の生体内の構造を模擬した構造をとっていないためであると考えられている（非特許文献１）。そこで、より生態に近い機能を発揮する三次元組織の形成がこれまでに試みられており、様々な細胞種で三次元組織を形成することに成功している。
　細胞の三次元構造を形成するための器材として、ごく微細な均一突起が規則的に配列されたシート表面に形成された培養のためのシート（ナノピラーシート）が開発されているが、形成された三次元組織は、器材からの剥離性が高く（特許文献１）、培地交換の過程で失われるという問題がある。また形成された三次元組織の粒径を制御することができないため、大きさが均一ではなく、それぞれの三次元組織の性能がばらつく、といった問題点をはらんでおり実用的な形成法として未熟である。
　そこで、粒径のそろった三次元組織を形成するために、特許文献２に示されるような方法が考え出されている。
特開２００５-３１２３４３号公報 ＷＯ２０１０/１５０５２１号公報 特表２０００－５０４２９９号公報
"The Use of 3-D Cultures for High-Throughput Screening: The Multicellular Spheroid Model" Leoni A. Kunz-Schughartm James P. Freyer, Ferdinand Hofsteadter, and Reinhard Ebner J Biomol Screen, 9: 273-285(2004)
　上述の特許文献２の培養器材に関連し、培養シートが貼り付けられたマルチウェルプレートタイプの細胞培養器材を、図２を用いて説明する。図２に示すようにマルチウェルプレートタイプの培養器材となる培養容器１１０にウェル１１１と呼ばれる枠体が形成されている。さらにこの枠体の底面には培養シート１００が貼り付けられる。細胞が接着する培養シート１００表面は、突起、すなわち三次元的な凹凸構造となるピラー１０５が設置された局所培養領域１０３を有し、突起より高い仕切り壁１０２により各々が分離されたホール１０１が形成されている。
　突起の径、ピッチ、高さは細胞種によってスフェロイドと呼ばれる三次元凝集体が形成されるのに最適な値が決まっているため、その最適な値にすることにより、その局所培養領域１０３にのみ細胞を固定化することが可能となる。さらに培養領域をホールにより仕切ることにより、播種された細胞をホール内に限定することができることから、細胞数がある程度制限された中で細胞が運動することによって凝集化し、一つのスフェロイドが形成される。細胞数が制限されることによってスフェロイドの大きさが均一で、均質となり、細胞アッセイに有効であることが期待される。この培養器材はたとえばポリスチレンのような樹脂を、シリコン基板上に作成された所定形状の金型を一括転写することによって作製される。
　このように培養された細胞の評価方法として、例えば薬物の添加前後による細胞の反応を、光学顕微鏡を用いた観察により行われる。細胞培養は通常数日、あるいは数週間にわたり行われることになるが、その細胞の形態は時々刻々と変化する。その結果、細かく区分けされた培養領域、つまりホールのピッチを例えば２２０um、ウェルの直径８mmとした場合、１つのウェルに約８０００個ものホールがあることになり、特定の場所を瞬時に見つけ出すことは困難であった。さらに上記のように８０００個もの区分けされた培養領域がある場合には、写真等で記録を残していたとしても、あとでその記録を見た場合どこの場所であったかを特定することが困難となる。なおウェルの大きさ、ホールの大きさにより１ウェルあたりのホールの個数は変化するが、特定箇所を見つけ出す困難さの程度が異なるだけであり、本質的にその困難さが変わることはない。
　また工業的に培養シートの生産を行う場合には、培養シートあるいは金型の欠陥検査が必要となる。欠陥検査では、欠陥箇所とその場所を特定する必要がある。その場合、被検査物と測定装置との直行性を調整したのちに、ある特定のホールを基準にしてそれに対する相対座標、あるいは装置の絶対座標から欠陥座標を求めることになる。しかしいったん検査装置から取り外してしまうと、基準となる座標情報がなくなり、欠陥の場所がわからなくなる。また最終的にはその欠陥を人が画像で確認し、欠陥として修正を行うべきか、修正不能のキラー欠陥として廃棄するかの判断をする必要があることを考慮すると、単なる座標ではなく画像として容易に欠陥箇所を特定するための工夫が必要となる。
　さらに薬物に対する反応を見るために、薬物添加有/無で細胞培養シート上に培養された細胞を別容器に集め、分析装置にて評価を行うことがある。培養される細胞は、部分的に非活性な死細胞が発生することがあるが、その場合薬物スクリーニングの際にノイズとなり、感度を低下させることになる。そのため予めノイズとなる細胞は除去すべきであるが、この場合にも場所を特定することが必要不可欠である。この細胞の活性度を測定する方法の一例としては、活性な細胞は酸素を吸収し二酸化炭素を排出することから、各ホールの二酸化炭素濃度を測定することにより、その細胞の生死を判断することが可能となる。
　一方この座標を特定する方法としては特許文献３に、マイクロウェルの底部に識別マークを転写するといった記述がある。しかし単純にプレートにマークをつけた場合、そのマーク箇所の構造を細胞が感じて吸着し、細胞に遮蔽されてそのマークを読み取ることができない。あるいは細胞を落とし込むホール底部と識別マーク部とでは、高さが大きく異なることから細胞形状とマークとを同じフォーカスで観察し、同時に読み込むことが不可能であった。
　本発明の目的は、上記の問題点を解決し、三次元組織と、識別マークを同時に読み取ることを可能とした培養シート、培養器材、及びその製造方法を提供することにある。
　上記の目的を達成するため、本発明においては、細胞を培養する培養シートであって、仕切り壁と、仕切り壁により分離されたホールと、ホールの底面の一部に、仕切り壁より高さの低い複数の突起が形成された培養領域と、ホールの底面の、培養領域とは異なる位置に形成された識別マークを備えた培養シート、更にはそれを利用する培養器材を提供する。
　また、上記の目的を達成するため、本発明においては、細胞を培養する培養シートの製造方法であって、仕切り壁と、仕切り壁により分離されるホールと、ホールの底面の一部に、仕切り壁より高さの低い複数の突起が形成される培養領域と、ホールの底面の培養領域とは異なる位置に形成された、培養領域の突起より高さの低い複数の突起が形成される識別マーク領域を備える培養シートの金型基板を形成する工程と、金型基板に、培養シート材料を加熱しながらプレスする工程からなる培養シートの製造方法を提供する。
　本発明を適用することにより、培養細胞の三次元組織形成を実現することができるとともに、この三次元組織に遮蔽されることなく、識別マークを読み取ることが可能となることから、三次元組織さらには二次元平面組織の評価・管理をすることが可能となる。
第一の実施例に係る、培養シートと培養シート内のホール構造を示す図である。 従来の培養器材、培養シートと培養シート内のホール構造を示す図である。 第二の実施例に係る、培養シートと培養シート内のホール構造を示す図である。 第三の実施例に係る、培養シートと培養シート内のホール構造を示す図である。 第一の実施例に係る、培養シートの製法の一例を説明するための図である。 第一の実施例に係る、培養シートの製法の一例を説明するための図である。 第一の実施例に係る、培養シートの製法の一例を説明するための図である。 第一の実施例に係る、培養シートの効果を説明するための図である。
　以下、培養シートを用いて細胞を培養し、細胞塊である三次元組織、あるいは二次元平面組織においてもその形成を実現するための種々の実施の形態について、図面を用いて詳細に説明する。なお、本明細書においては、従来のナノピラーシートに対し、培養領域を仕切る構造を有し、当該仕切り構造の内部に突起が複数形成されたシートを培養シートと称する。
　実施例１では、培養シートを培養シート保持部材である２４穴のマルチウェルプレートの培養器材に適用した例を示す。この培養シートは細胞に悪影響のない物質で形成されるが、本実施例における培養シートは、ポリスチレンを用いている。ただし、材質はポリスチレンに限らないことは言うまでもない。また本実施例では保持部材として２４穴のマルチウェルプレートを用いたが、他の穴数の異なるマルチウェルプレート、あるいはチャンバースライド等であってもかまわない。
　図１における２４穴のマルチウェルプレートの培養容器１１０は、ウェル１１１と呼ばれる径１６ｍｍ程度の筒状の穴の底面に、培養シート１００が超音波溶着等の方法により接合されている。培養シート１００は１枚当たりに複数個ホールが存在し、ホール１０１は仕切り構造１０２により個々に分離されている。当該ホール１０１が培養領域の最小単位であり、さらにホールの内部に局所的に突起、すなわちピラーが配置された局所培養領域１０３と、識別マーク領域１０４で構成されている。
　ホール１０１の底面にある局所培養領域１０３は複数のピラーからなる。また、このホール１０１内の局所培養領域１０３にあるピラーを局所培養領域ピラー１０５、さらに識別マーク領域１０４のピラーを識別マークピラー１０６とする。
　本実施例では、培養シート１００上の仕切り構造である仕切り壁１０２によって仕切られた各ホール１０１の直径を２００μｍ、ホール間のピッチを２２０μｍ、局所培養領域１０３の直径を８０μｍとし、局所培養領域ピラー１０５の高さ、ピラー径、ピラーピッチをそれぞれ１μm、２μｍ、４μｍとし、さらに識別マークピラー１０６の高さ、ピラー径、ピラーピッチをそれぞれ０．１μm、０．５μｍ、１μｍとする培養シート１００を用いた。
　当該培養シート１００において、上記の仕切り壁１０２、及びそれにより分離されているホール１０１と、当該ホール１０１の内部に形成されている局所培養領域１０３、識別マーク領域１０４とは同一材料で一体的に形成されている。
　図５Ａ、図５Ｂ、図５Ｃを用いて、本実施例の培養シートの製法の一例を説明する。まず、図５Ａに示すように、仕切り壁１０２、局所培養ホールからなる局所培養領域１０３、識別マークホールからなる識別マーク領域１０４にそれぞれ対応するホール５０２、５０３、５０４が同一シリコン基板５００に形成されている。そして、図５Ｂに示すように、シリコン基板５００に、ポリスチレンシート５０５を加熱しながらプレスする、いわゆる熱インプリント方法によりパターン転写する。これによって、図５Ｃに示す細胞培養シート１００が形成される。
　このように予め金型となるシリコン基板に細胞培養シートの反転パターンとなる仕切り壁ホール５０２、局所培養ホール５０３、識別マークホール５０４を形成しておくことによって、一度に本実施例の細胞培養シートを形成することが可能となる。なお、この形成方法は一例であり、金型材料としてシリコンではなくニッケル電鋳や石英を使用しても同様に一度にパターン転写できることはいうまでもない。
　また、図１に示したように、本実施例においては、識別マーク領域１０４は、局所培養領域１０３の左右２桁の数字とした。左側の数字がホール配列の列を示し、右側に段を示し、この数字によりホールの位置を読み取ることが可能となる。本実施例ではシリアルに全てのホールに２桁の数字をつけているが、必ずしも２桁ある必要はなく、また複数個おきでもよく、また数字ではなく文字、例えばアルファベット、あるいは、記号であってもよいことは言うまでもない。
　局所培養領域１０３により、粒径のそろった三次元組織であるスフェロイドが培養領域の中心部に保持され、目的の位置に保持させることができることは特許文献２に示されている通りである。
　なお、本実施例では、培養領域内の中心近傍に局所培養領域ピラーを配列した例を示すが、必ずしも中心を含む必要はなく、培養領域内の所望とする領域にピラーを配列させればよいことはいうまでもない。また、局所培養領域として、円形ピラー領域を形成する例を示したが、ピラー領域は、四角形、多角形状であってもよいことはいうまでもない。
　識別マーク領域１０４は同一ホール１０１領域内でかつ局所培養領域１０３とは異なる位置に配置されるが、この識別マーク領域でのスフェロイドの接着を防ぐ必要がある。局所細胞培養領域１０３と識別マーク領域１０４で２つのスフェロイドが形成され所望の大きさのものが得られないこと、あるいは識別マーク領域１０４にスフェロイドが接着し、遮蔽することによって識別マークが視認できなくなることを防ぐためである。
　これに対し、本実施例の識別マーク領域１０４の識別マーク領域ピラー１０６は、細胞培養領域ピラーの高さより低い、あるいは/かつ直径、あるいは/かつピッチを小さくしており、それによって識別マーク領域への細胞付着防止を行うことが可能となる。
　例えば肝細胞においてはピラー径２μｍ（ピラーピッチ４μｍ）、ピラー高さ１μmにおいて最適であり、この値を一つでも半減させただけで細胞の接着性が弱くなることが発明者らの実験により確認された。したがって細胞培養領域ピラー１０５に比して識別マーク領域ピラー１０６との差を大きくすることで識別マーク領域への細胞の付着を抑止することが可能となる。
　また識別マーク領域ピラー１０６の高さを低くすることにより、細胞の吸着を抑止することが可能であるが、本発明の目的の一つである光学的な手法、例えば光学顕微鏡にて人が視認できることが必要であり、ピラーの高さの下限値がある。
　図６にポリスチレン、波長５５０ｎｍにて、１０００ｎｍピッチ、５００ｎｍのパターン幅の反射率をシミュレーションで求めた結果を示す。図６ではそれぞれの高さのときの反射強度をＲとして、パターン高さが０ｎｍ、つまりパターンがないときの反射強度をＲ0で規格化を行っている。図に示すようにパターン高さｈが140nmまでは反射強度が低くなり、つまり周りと比較し暗くなる。１０％の差異があれば機械で読み取ることが可能となることから可能となることから、強度比が９０％以下つまりパターン高さが２５ｎｍ以上あれば十分に文字を読み取ることが可能となる。
　さらに径・ピッチを小さくすることにより識別マーク領域も小さくでき、これにより直接細胞培養とは関係のない識別マーク領域の面積を小さくすることが可能となる。あるいはピラー径・ピッチを小さくすることにより、光学顕微鏡等による視認性を向上することが可能となる。
　本実施例では検査方法として光学顕微鏡を用いたが、レーザー顕微鏡、電子線顕微鏡等、光学的あるいは電子光学的な手法で行うものであればよいことはいうまでもない。
　本実施例のように細胞培養領域ピラーと比して識別マークピラーの高さが同じあるいは低くなっているが、細胞培養領域ピラーと識別マークピラーの高さが違っていたとしてもたかだか数μｍ程度の差となる。
　ここで、一度に観察できる領域、視野と、同一フォーカスで見ることが可能な焦点の深さ焦点深度の関係を説明する。光源波長（λ）を０.５５μm、接眼レンズの視野数（Ｆ）２６、倍率（m）ｘ１０を使用し、対物レンズの倍率（Ｍ）をｘ１０、開口数（ＮＡ）を０.３のレンズを用いた場合、一度に観察できる実視野はＦ/Ｍとなることから２.６mmとなる。ホールのピッチは０.２２ｍｍであることから対角で約１２個のホールを一度にみることが可能である。ここのときの焦点深度はλ/（２ｘ(ＮＡ)2）であらわすことができることから±３μm程度になる。さらに光源波長（λ）を０.５５μm、接眼レンズの視野数（Ｆ）２６、倍率（m）ｘ１０を使用し、対物レンズの倍率（Ｍ）をｘ２０、開口数（ＮＡ）を０．４６のレンズを用いた場合、実視野は１.３ｍｍ、焦点深度は±１.３μｍとなる。このように焦点深度はレンズ性能によっても変化するものの、視野を大きく変化させることがない限りにおいて、桁で変化することはない。実際に一度に観察に使用する範囲は一視野内に１個から１０数個程度までであることから、観察される焦点深度はサブμｍから数１０μｍ以下ということになる。従って、スフェロイド観察のフォーカス位置と識別マークのフォーカス位置を同時あるいはわずかに動かすだけでスフェロイド観察・マーク識別が可能となる。
　このように本実施例の構造を備えた培養シートを形成することにより、培養効率が高く、かつ使用しやすい培養器材を実現することが可能となる。
　実施例２では、培養シートを培養シート保持部材であるチャンバープレートの培養器材に適用した例を示しており、培養シートの識別マークとしてピラーではなくラインで作製した場合を示す。
　本実施例では、培養シート１００上の仕切り構造である仕切り壁１０２によって仕切られた各ホール１０１の直径を１３０μｍ、ホールのピッチを１５０μｍ、局所培養領域１０３の直径が６０μｍとし、局所培養領域ピラー１０４の高さ、ピラー径、ピラーピッチがそれぞれ２μm、１μｍ、２。５μｍとした。識別マークライン１０８の高さ、パターン幅がそれぞれ０．２５μm、５μｍとなる培養シート１００を用いた。
　　結果として実施例１と同様にピラーの高さより低くすることによって細胞の接着を抑止することが可能となった。さらにピラーのような細かいパターンの集合体ではなく、本実施例のようにラインとすることによって、細胞の接着性をより抑止することが可能となった。
　実施例３では個々のホール１０１に識別マーク領域１０４にホールの位置を示す行列番号と、行・列５個おきに配置されたアライメントマーク１０８を有する細胞培養シートを示す。ここでは５個毎としているが、数１００個毎でも、あるいは各ホール全てにつけてもよい。このアライメントマークは識別マーク領域ピラーと同様に、局所培養領域ピラーよりピラー径、ピラーピッチ、ピラー高さのいずれか、あるいは全ての値を小さくすることが望ましい。
　このアライメントマーク１０８のピラーにより、欠陥検査装置、あるいは観察用顕微鏡の位置アライメントを行うことが可能となる。さらに、このアライメントマーク１０８を前記欠陥装置等の自動アライメント装置で読み取りやすい形状にし、その画像を装置に登録し、比較検査することで、より容易に、より迅速にアライメントを調整することが可能となる。
　以上説明した種々の実施例によれば、単一素材のみを用い、細胞本来の機能である細胞運動を促して活性を維持したままストレスの少ない環境下での三次元組織形成を実現することができるとともに、この三次元組織に遮蔽されることなく、識別マークを読み取ることが可能となることから、三次元組織さらには二次元平面組織の評価・管理をすることが可能となる。
　また、識別マークを、細胞培養を行うピラーの高さよりも低くすることにより、識別マークでの細胞のトラップを抑止し、識別マークの読み取ることが可能となる。
　あるいは、識別マークを、細胞培養を行うピラー径を小さい、あるいは/かつピラーよりも低いピラー形状とすることにより、ピラーでの光学的な屈折が異なるものとなり、光学観察でのコントラストが向上して、識別マークの読み取りをさらに容易とすることが可能となる。
　あるいは、識別マークの高さを０．０２５μm以上０．５μｍ以下とすることにより光学観察等の視認性を高くしつつ、識別マークでの細胞のトラップを抑止することが可能となる。
　あるいは識別マークとして、自動読取装置で読み取りが容易な形状を、各ホール内あるいは特定のホール内に作製することにより、自動アライメントや自動フォーカス調整を容易とすることが可能となる。
　さらに、識別マークとして数字あるいは文字、例えばアルファベット、あるいは記号とすることにより、より直接的に人が座標を認識することが容易となる。
　なお、本発明は上記した実施例に限定されるものではなく、様々な変形例が含まれる。例えば、上記した実施例は本発明を分かりやすく説明するために詳細に説明したのであり、必ずしも説明の全ての構成を備えるものに限定されものではない。また、ある実施例の構成の一部を他の実施例の構成に置き換えることが可能であり、また、ある実施例の構成に他の実施例の構成を加えることが可能である。また、各実施例の構成の一部について、他の構成の追加・削除・置換をすることが可能である。
　１００　　細胞培養シート
　１０１　　ホール
　１０２　　仕切り壁
　１０３　　局所培養領域
　１０４　　識別マーク領域
　１０５　　局所培養領域ピラー
　１０６　　識別マークピラー
　１０７　　識別マークライン
　１０８　　アライメントマーク
　１１０　　培養容器
　１１１　　ウェル
　５００　　シリコン基板
　５０２　　仕切り壁ホール
　５０３　　局所培養ホール
　５０４　　識別マークホール
　５０５　　ポリスチレンシート。

Claims (15)

  1. 細胞を培養する培養シートであって、
    仕切り壁と、
    前記仕切り壁により分離されたホールと、
    前記ホールの底面の一部に、前記仕切り壁より高さの低い、複数の突起が形成された培養領域と、
    前記ホールの底面の、前記培養領域とは異なる位置に形成された識別マークを備えた、
    ことを特徴とする培養シート。
  2. 請求項１に記載の培養シートであって、
    前記識別マークは、複数の突起により形成されている、
    ことを特徴とする培養シート。
  3. 請求項２に記載の培養シートであって、
    前記識別マークの突起の径が、前記培養領域の前記突起の径よりも小さい、
    ことを特徴とする培養シート。
  4. 請求項２に記載の培養シートであって、
    前記識別マークの突起の高さが、前記培養領域の前記突起の高さよりも低い、
    ことを特徴とする培養シート。
  5. 請求項４に記載の培養シートであって、
    前記識別マークの前記突起の高さが、０．０２５μｍから０．５μｍの間にある、
    ことを特徴とする培養シート。
  6. 請求項１に記載の培養シートであって、
    前記識別マークは、前記培養シートにおける前記ホールの位置を表す、
    ことを特徴とする培養シート。
  7. 請求項６に記載の培養シートであって、
    前記識別マークは、数字、あるいは文字を形成することにより、前記ホールの位置を表す、
    ことを特徴とする培養シート。
  8. 請求項１に記載の培養シートを用いる培養器材であって、
    複数のウェルが形成された培養容器を備え、
    前記培養容器の底部に前記前記培養シートを保持する、
    ことを特徴とする培養器材。
  9. 請求項８に記載の培養器材であって、
    前記識別マークは、複数の突起により形成されている、
    ことを特徴とする培養器材。
  10. 請求項９に記載の培養器材であって、
    前記識別マークの突起の径が、前記培養領域の前記突起の径よりも小さい、
    ことを特徴とする培養器材。
  11. 請求項１０に記載の培養器材であって、
    前記識別マークの突起の高さが、前記培養領域の前記突起の高さよりも低い、
    ことを特徴とする培養器材。
  12. 請求項１１に記載の培養器材であって、
    前記識別マークの前記突起の高さが、０．０２５μｍから０．５μｍの間にある、
    ことを特徴とする培養器材。
  13. 細胞を培養する培養シートの製造方法であって、
    仕切り壁と、前記仕切り壁により分離されるホールと、前記ホールの底面の一部に、前記仕切り壁より高さの低い複数の突起が形成される培養領域と、前記ホールの底面の、前記培養領域とは異なる位置に形成された、前記培養領域の前記突起より高さの低い複数の突起が形成される識別マーク領域を備える培養シートの金型基板を形成する工程と、
    前記金型基板に、前記培養シート材料を加熱しながらプレスする工程からなる、
    ことを特徴とする培養シートの製造方法。
  14. 請求項１３に記載の培養シートの製造方法であって、
    前記金型基板としてシリコン基板、ニッケル電鋳、或いは石英を用いる、
    ことを特徴とする培養シートの製造方法。
  15. 請求項１３に記載の培養シートの製造方法であって、
    前記培養シート材料としてポリスチレンシートを用いる、
    ことを特徴とする培養シートの製造方法。
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