WO2012147978A1 - 安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン、これを用いたプローブ、ならびにその製造方法 - Google Patents

安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン、これを用いたプローブ、ならびにその製造方法 Download PDF

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直幸 守屋
▲祐▼生子 守屋
安弘 二川
岡部　満康
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株式会社アウレオサイエンス
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Definitions

  • the present invention relates to ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C, and a probe for observing the kinetics after absorption into the intestinal tract using the ⁇ -1,3-1,6 glucan And a method for producing ⁇ -1,3-1,6-glucan labeled with stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C.
  • ⁇ -glucan is a polysaccharide composed of D-glucose as a constituent sugar.
  • ⁇ -1,3-glucan is obtained by binding ⁇ -pyranose type cyclic D-glucose to carbon at the 1-position of glucose. It is configured such that a ⁇ -1,3 glucoside bond is formed by condensation between a hydroxyl group that is bonded to a hydroxyl group bonded to carbon at the 3-position of glucose, and a cyclic ⁇ -pyranose type D-glucose is polymerized.
  • Polysaccharide Polysaccharide.
  • Polysaccharides such as ⁇ -glucan exist in a wide variety of organisms in nature as storage molecules for sugars, which are energy sources, and structural molecules such as cell walls.
  • ⁇ -glucans contained in mushrooms such as Agaricus moth, Reishi, Maitake and Shiitake have various physiological activities to maintain and promote health.
  • Many attempts have been made to use it as a functional material or pharmaceutical for the purpose of enhancement.
  • a wide range of applications is expected as a functional material such as an intestinal agent for preventing and improving constipation using indigestibility or cosmetics using its moisturizing property.
  • ⁇ -glucan having beneficial activity includes ⁇ -1,3-1,6-glucan having a side chain of D-glucose from carbon at the 6-position of glucose in addition to a main chain composed of ⁇ -1,3-glucoside bonds It is a well-known substance called laminaran. However, although its branched structure is thought to affect the activity, its mechanism of action is not always clear, and ⁇ -glucan is a high molecular polymer obtained from natural products, so In addition to the structure such as degree, main chain length, and side chain length, the presence / absence and degree of modification of the D-glucose hydroxyl group by amination, phosphorylation, methylation, acetylation, etc. are not uniform. The effects of chemical modification on activity have not yet been elucidated. Therefore, so far, ⁇ -glucan derived from mushrooms has been used empirically, and ⁇ -glucan derived from other species has been rarely used.
  • ⁇ -1,3-1,6 glucan produced by a bacterium belonging to the genus Aureobasidium sp. Commonly known as black yeast, which is an imperfect bacterium widely present in nature, is a mushroom. It has become known to have a function equivalent to or higher than that of ⁇ -glucan derived from a variety of species, and various functions have been found.
  • a culture containing ⁇ -1,3-1,6 glucan produced by a bacterium belonging to the genus Aureobasidium by the inventors of the present application has a constipation improving function (Patent Document 1), a skin moisturizing function (patent Document 2) or an immunostimulatory function (Patent Document 3) has been found and provided as food and drink.
  • Patent Document 1 a constipation improving function
  • Patent Document 2 a skin moisturizing function
  • an immunostimulatory function Patent Document 3
  • ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with a stable isotope has not been reported so far, and ⁇ -1,3 labeled with a stable isotope 2 H or a stable isotope 13 C is not reported. The same applies to -1,6 glucan.
  • an isotope-labeled or fluorescent-labeled probe that is not stable is good and preferred, but an unstabilized isotope-labeled probe is concerned about the influence on the living body. There is a possibility that accurate tracing cannot be performed in vivo due to the influence.
  • the present invention relates to ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C, and a probe for observing the kinetics after absorption into the intestinal tract using the ⁇ -1,3-1,6 glucan
  • Another object of the present invention is to provide a method for producing ⁇ -1,3-1,6-glucan labeled with stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C.
  • the inventors have cultivated bacteria belonging to the genus Aureobasidium in a liquid nutrient medium containing the stable isotope 2 H and / or the stable isotope 13 C, thereby producing stable isotopes 2 H and / or Alternatively, ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with a stable isotope 13 C is produced, and furthermore, the produced stable isotope 2 H and / or ⁇ is labeled with a stable isotope 13 C. It was found that the dynamics of ⁇ -1,3-1,6 glucan after being absorbed in the small intestine can be observed by using -1,3-1,6 glucan, and the following inventions have been completed.
  • ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C according to the present invention, the dynamics of ⁇ -1,3-1,6 glucan in vivo
  • the dynamics after ⁇ -1,3-1,6 glucan is absorbed into the intestinal tract can be observed, which contributes to the discovery and creation of new functions of ⁇ -1,3-1,6 glucan be able to.
  • stable isotope 2 H and stable isotope 13 To obtain a ⁇ -1,3-1,6 glucan that is labeled with C but not labeled with a stable isotope, and a labeled ⁇ -1,3-1,6 glucan that is not inferior in physical properties Can do. Furthermore, according to the probe of the present invention, it is possible to accurately trace in the living body without concern about the influence on the living body.
  • in divided small intestine 3 is a diagram showing a stable isotope 2 H / 1 H ratio and stable isotope 13 C / 12 C ratio in appearance and lymph nodes harvested lymph node tissue.
  • Divided different positions definitive intestine 3 is a diagram showing a stable isotope 2 H / 1 H ratio and stable isotope 13 C / 12 C ratio in appearance and lymph nodes harvested lymph node tissue.
  • ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C according to the present invention a probe using the same, and stable isotope 2 H according to the present invention
  • a method for producing ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 13 C will be described in detail.
  • Stability and Isotopes unlike electrons and protons, and radioactive isotopes atomic number by emitting neutrons may transition a isotope that is stable with a certain percentage of in nature, for example 2 H or 13 C
  • 15 N, 17 O, 18 O, etc. can be mentioned.
  • labeled with is used interchangeably with “taken in” or “having as a constituent element”.
  • the ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C according to the present invention is contained in a liquid medium containing stable isotope 2 H or stable isotope 13 C.
  • a liquid medium containing stable isotope 2 H or stable isotope 13 C.
  • a liquid medium that can be appropriately prepared by those skilled in the art can be used, and is not particularly limited.
  • stable isotope 2 H-labeled D-glucose and / or stable isotope 13 C-labeled D-glucose is used.
  • stable isotopes 2 H and stable isotope 13 C-labeled D- glucose stable isotopes 2 H and / or stable isotopes, such as stable isotope 13 C-labeled L- glucose 2 H and / or stable isotope 13 C-labeled Monosaccharide, stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C labeled maltose, stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C labeled sucrose, stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C labeled lactose , stable isotopes 2 H and / or stable isotope 13 C-labeled cellobiose, stable isotopes 2 H and / or stable isotopes 13 C mark Trehalose, stable isotopes 2 H and / or stable isotope 13 C-labeled cyclodextrin, stable isotopes 2 H and
  • a liquid medium containing rice bran, lactic acid bacteria solution, and sodium ascorbate can be mentioned.
  • microorganisms examples include baker's yeast and black yeast (bacteria belonging to the genus Aureobasidium), but bacteria belonging to the genus Aureobasidium are preferred.
  • baker's yeast and black yeast bacteria belonging to the genus Aureobasidium
  • bacteria belonging to the genus Aureobasidium are preferred.
  • Pullulan M-2 (Aureobasidium pullulans M-2) is more preferable.
  • the pH of the liquid medium in the present invention is preferably in the range of 3.0 to 8.0, more preferably in the range of 3.5 to 7.5, still more preferably in the range of 4.0 to 7.0. A range of 0.5 to 7.0 is even more preferable.
  • the produced stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C-labeled ⁇ -1,3-1,6 glucan can be used after purification. it can.
  • purification can be performed using techniques and instruments that can be appropriately selected by those skilled in the art, and is not particularly limited. In this example, ethanol precipitation is used as a suitable purification method.
  • beta-1,3-1,6-glucan confirms whether or not it is labeled with a stable isotope 2 H, 13 C, for example, have not been labeled with a stable isotope 2 H, 13 C beta-
  • a method of measuring stable isotope 2 H / 1 H ratio or stable isotope 13 C / 12 C ratio can be confirmed by a method of measuring stable isotope 2 H / 1 H ratio or stable isotope 13 C / 12 C ratio.
  • an isotope microscope combined with a projection type secondary ion mass spectrometer or a two-dimensional solid-state imaging device can be used.
  • an isotope microscope is used in which a projection type secondary ion mass spectrometer and a two-dimensional solid-state imaging device originally developed by the inventors are combined.
  • ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C according to the present invention has been confirmed to be absorbed in the intestinal tract, It can be used as a probe for observing the dynamics of ⁇ -1,3-1,6 glucan, in particular the dynamics after ⁇ -1,3-1,6 glucan is absorbed into the intestinal tract, and is included in the present invention. Is done.
  • the probe according to the present invention can be used in mammals, and examples of such mammals include humans, monkeys (primates excluding humans), cows, horses, pigs, minipigs, ferrets, mice, rats, guinea pigs, Although hamsters, gerbils and the like can be mentioned, it is preferable to use them in mammals other than humans as long as metabolic tests in humans are possible but safety problems are not solved.
  • mammals do not have an enzyme capable of digesting ⁇ -1,3-1,6 glucan such as ⁇ amylase, so ⁇ -1,3-1,6 glucan is not present in the digestive organs of mammals.
  • the probe according to the present invention includes a degradation product of ⁇ -1,3-1,6-glucan labeled with the stable isotope 2 H and / or the stable isotope 13 C, although it is hardly decomposed. .
  • a method for detecting the probe according to the present invention incorporated into a living body for example, it can be detected by a method of measuring a stable isotope 2 H / 1 H ratio or a stable isotope 13 C / 12 C ratio.
  • an isotope microscope combined with a projection type secondary ion mass spectrometer or a two-dimensional solid-state imaging device can be used.
  • an isotope microscope is used in which a projection type secondary ion mass spectrometer and a two-dimensional solid-state imaging device originally developed by the inventors are combined.
  • the method for producing ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 2 H and / or stable isotope 13 C includes: (i) Stable Aureobasidium pullulans M-2 with deposit number FERM BP-10014 deposited at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (NITE-IPOD) Culturing in a liquid medium containing isotope 2 H and / or stable isotope 13 C and having a pH of 3.0 to 8.0 The above step (i) is included.
  • the stable isotope according to the present invention according to the present invention described above is used.
  • the description of the ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with the isomer 2 H and / or stable isotope 13 C and the configuration equivalent to or corresponding to the configuration of the probe using the same is omitted.
  • the required stable isotope 2 H and / or stable isotope are used.
  • a purification step, a freeze-drying step, a pulverizing step, a washing step, A step of confirming whether or not the label is labeled with stable isotope 2 H or stable isotope 13 C may be performed once or twice or more.
  • Example 1 Preparation of ⁇ -1,3-1,6-glucan labeled with stable isotope 2 H or stable isotope 13 C
  • Preparation of stable isotope 2 H-containing medium Dissolved in distilled water in a 300 mL Erlenmeyer flask to the following composition and final concentration This was used as a liquid nutrient medium (pH 3.0 to 8.0).
  • Aureobasidium pullulans M-2 After sterilization at 121 ° C for 15 minutes using an autoclave (LSX-700; Tommy Seiko Co., Ltd.), it was stored frozen at -80 ° C in advance.
  • Aureobasidium pullulans M-2 (Aureobasidium pullulans M-2; deposited at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (NITE-IPOD), deposit number FERM BP-10014) 0.5 mL, inoculated with shaking culture Using a device (BR-40LE; TAITEC), the cells were subjected to rotary shaking culture for 5 days under the conditions of a stirring rotational speed of 150 rpm and a culture temperature of 24.5 ° C. The culture results are shown below.
  • Ethanol (special grade; Kanto Chemical Co., Inc.) was added to the concentrated culture supernatant until it became 66% (v / v), and left overnight in a refrigerator at 6 ° C., and then a high-speed centrifuge (6930; Kubota). And a precipitate containing ⁇ -1,3-1,6-glucan was collected by centrifugation at 14500 rpm and 6 ° C. for 30 minutes. The resulting precipitate was dissolved in distilled water to prepare 40 mL of an aqueous precipitate solution.
  • the obtained precipitate containing ⁇ -1,3-1,6 glucan was dissolved in distilled water, 150 mL of an aqueous precipitate solution was prepared, and the aqueous precipitate solution was adjusted to 30 mL using a rotary evaporator (RE111; Shibata Chemical Co., Ltd.). Concentrated under reduced pressure and the remaining ethanol was removed. 30 mL of a precipitate aqueous solution concentrated using an autoclave (LSX-700; Tommy Seiko Co., Ltd.) was sterilized at 90 ° C. for 30 minutes to obtain a purified ⁇ -1,3-1,6 glucan.
  • ⁇ -1,3-1,6 glucan obtained in Examples (1) and (2) were allowed to stand at room temperature for 48 hours to lose fluidity and suppress charging due to ion irradiation.
  • ⁇ -1,3-1,6 glucan that lost fluidity was subjected to gold deposition with a thickness of 30 nm, and then mounted on a 1-inch sample holder to prepare a sample. Three samples were prepared for each. Subsequently, the stable isotope 2 H and stable isotope were prepared for the prepared sample using an isotope microscope in which a projection type secondary ion mass spectrometer (IMS 1270; CAMEA) and a uniquely developed two-dimensional solid-state imaging device were combined.
  • IMS 1270 projection type secondary ion mass spectrometer
  • the two-dimensional distribution of the body 13 C was observed for 19 cycles, and the stable isotope 2 H / 1 H ratio and the stable isotope 13 C / 12 C ratio, and their average and standard deviation values were calculated for each sample. Furthermore, from the average value and standard deviation value of the stable isotope 2 H / 1 H ratio and stable isotope 13 C / 12 C ratio for each sample, ⁇ obtained in the control, Examples (1) and (2) The average value and the standard deviation value of the stable isotope 2 H / 1 H ratio and stable isotope 13 C / 12 C ratio for each of the three samples of -1,3-1,6 glucan were calculated for each cycle.
  • ⁇ -1,3-1,6 glucan prepared by culturing Aureobasidium pullulans M-2 in a medium containing stable isotope 2 H (2Hglucan in FIG. 1) Shows a stable isotope 13 C-containing medium in which the value of the stable isotope 2 H / 1 H ratio ( 2 H / 1 H in FIG. 1) is significantly increased compared to the control (control in FIG. 1).
  • ⁇ -1,3-1,6 glucan prepared by culturing Aureobasidium pullulans M-2 in FIG. 1 ( 13 Cglucan in FIG. 1) has a stable isotope ratio of 13 C / 12 C compared to the control.
  • the yield of the stable isotope 2 H from the stable isotope 2 H-labeled D-glucose and the stable isotope 13 C-labeled D-glucose were obtained.
  • the yield of stable isotope 13 C was calculated from the results, and the yield of stable isotope 2 H was 42.13% and the yield of stable isotope 13 C was 34.66%.
  • Example 2 Confirmation of physical properties of ⁇ -1,3-1,6-glucan labeled with stable isotope 2 H or stable isotope 13 C
  • Measurement of pH pH meter (model 744; Metronome Japan) ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with the stable isotope 2 H and ⁇ -1,3-1,6 labeled with the stable isotope 13 C.
  • the pH of the glucan was measured. The results are shown below.
  • ⁇ -1,3-1,6 glucan prepared by culturing Aureobasidium pullulans M-2 in a medium containing stable isotope 2 H or a medium containing stable isotope 13 C is stable isotope 2 H or Despite being labeled with the stable isotope 13 C, the physical properties of the ⁇ -1,3-1,6-glucan not labeled with the stable isotope produced by Aureobasidium pullulans M-2 are comparable.
  • the ⁇ -1,3-1,6 glucan shown and labeled with stable isotope 2 H or stable isotope 13 C was absorbed, for example, to determine whether it is absorbed in the intestine and It has been shown to serve as a probe to observe the subsequent kinetics of the case.
  • Example 3 Kinetic observation after absorption of ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 2 H or stable isotope 13 C in the small intestine ⁇ -1,3-1,6 glucan in the small intestine ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 2 H prepared in Example 1 and ⁇ -1,3 labeled with stable isotope 13 C were used to investigate the kinetics after absorption of Observation was performed using -1,6 glucan.
  • mice ⁇ -1,3-1,6-glucan labeled with stable isotope 2 H or stable isotope 13 C mice ⁇ -1,3-1, labeled with stable isotope 2 H
  • Mice were administered 6 glucan and ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 13 C, respectively.
  • Five 13-week-old male C57BL-6 mice (CLEA Japan, Inc.) were prepared and ⁇ -labeled with the liquid stable isotope 2 H having viscosity obtained in Examples 1 (1) and (2).
  • -1,3-1,6 glucan and the same amount of ⁇ -1,3-1,6 glucan labeled with stable isotope 13 C were mixed with 200 ⁇ L per mouse every other hour using a thanke. Was administered orally five times in total.
  • lymph node tissue is collected in the divided small intestine 3 is shown in the left and center views of FIGS. 4 and 5.
  • the collected tissue was immersed in the prepared PLP fixative and allowed to stand for 24 hours.
  • the tissue was lightly washed with tap water, and then paraffin-substituted using a paraffin substitute (Tissue-Tek UIP 5 Jr; SAKURA).
  • a block in which the tissue was embedded in paraffin was prepared using a paraffin embedding device (Tissue-Tek TEC Jr; SAKURA), and the tissue was thickened using a section preparation device (Tissue-Tek Crosstom Jr; SAKURA).
  • the slice was sliced to 4 ⁇ m.
  • the sliced tissue was placed on a glass slide and allowed to stand overnight at 42 ° C. using a warmer (Tissue-Tek Slide Warmer Jr; SAKURA).
  • Example 2 a sample was prepared by mounting on a 1-inch size sample holder based on the same method as in Example 1 (3), and then the projection type secondary ion mass spectrometer (IMS 1270; CAMCA) and its own
  • IMS 1270 projection type secondary ion mass spectrometer
  • the two-dimensional distribution of stable isotope 2 H and stable isotope 13 C was measured using an isotope microscope combined with the two-dimensional solid-state imaging device developed in the above, and the stable isotope 2 H / 1 H ratio and stable isotope 13 were measured.
  • the C / 12 C ratio was measured. The results are shown in FIG. 4 and FIG.
  • the collected tissue is lymph node tissue, and as shown in the right side of FIGS. 4 and 5, stable isotope 2 H / 1 H ratio and stable isotope 13 C / 12 C ratio in the lymph node.
  • stable isotope 2 H / 1 H ratio and stable isotope 13 C / 12 C ratio in the lymph node.

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Abstract

【課題】　本発明は、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン、これを用いた腸管に吸収された後の動態を観察するためのプローブならびに安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの製造方法を提供する。 【解決手段】　安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン。本発明によれば、β－１，３－１，６グルカンの新たな機能の発見や創出に寄与することができる。

Description

安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン、これを用いたプローブ、ならびにその製造方法
　本発明は、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン、これを用いた腸管に吸収された後の動態を観察するためのプローブならびに安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの製造方法に関する。
　βグルカンは、Ｄ－グルコースを構成糖として構成される多糖類であり、例えば、β－１，３グルカンとは、β－ピラノース型の環状Ｄ－グルコース同士がグルコース１位の炭素に結合している水酸基部位とグルコース３位の炭素に結合している水酸基部位との間で縮合してβ－１，３グルコシド結合を形成し、環状β－ピラノース型のＤ－グルコースが重合するように構成されている多糖類である。
　βグルカンのような多糖類は、エネルギー源である糖の貯蔵分子や細胞壁などの構造分子として自然界の生物中に多種多様に存在している。例えば、キノコ類であるアガリクス茸や霊芝（レイシ）、舞茸（マイタケ）、椎茸（シイタケ）などが含有するβグルカンは、健康を維持増進するための様々な生理活性を有していることが知られており、免疫増強作用や抗腫瘍活性、ガン細胞増殖抑制作用、抗アレルギー作用、抗炎症作用、コレステロール低下作用、抗血栓作用、食物繊維作用、血圧降下作用、血糖降下作用、肝機能亢進などを目的とする機能性素材や医薬品などとして利用する試みが数多くなされている。また、難消化性を利用した便秘の予防・改善のための整腸剤、あるいはその保湿性を利用した化粧品などの機能性素材としても幅広い応用が期待されている。
　有益な活性を有するβグルカンとして、β－１，３グルコシド結合からなる主鎖に加えて、グルコース６位の炭素からのＤ－グルコースの側鎖を有するβ－１，３－１，６グルカンがよく知られており、ラミナランともいわれている物質である。しかしながら、その枝分かれ構造が活性に影響を与えていると考えられているものの、その作用機序は必ずしも明らかではなく、また、βグルカンは天然物から得られる高分子ポリマーであることから、分岐の度合や主鎖の長さ、側鎖の長さなどの構造の他、アミノ化やリン酸化、メチル化、アセチル化などによるＤ－グルコース水酸基における修飾の有無や度合は均一ではないため、その構造や化学修飾が活性に与える影響についても未だ解明されていない。そのため、これまでは経験的にキノコ類由来のβグルカンが好んで用いられ、他の生物種由来のβグルカンが利用されることは少なかった。
　近年、自然界に広く存在する不完全菌である、通称、黒酵母と呼ばれているアウレオバシジウム属（Ａｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｓｐ．）に属する菌が産生するβ－１，３－１，６グルカンが、キノコ類由来のβグルカンと同等またはそれ以上の機能を有することが知られるようになり、様々な機能が見出されている。例えば、本願発明者らにより、アウレオバシジウム属に属する菌が産生するβ－１，３－１，６グルカンを含有する培養物などが、便秘改善機能（特許文献１）、皮膚保湿機能（特許文献２）、あるいは免疫賦活機能（特許文献３）を有することが見出され、飲食物などとして提供されている。
　このように、β－１，３－１，６グルカンについて様々な機能が見出されるに伴い、生体内におけるβ－１，３－１，６グルカンの動態を観察したい、特に、腸管に吸収された後の動態を観察したいというニーズが生じていた。なお、生体内における物質の動態を観察したいというニーズは、β－１，３－１，６グルカンに限らず様々な物質について存在し、例えば、安定同位体標識アミノ酸（特許文献４）や安定同位体標識酵母（特許文献５）、安定同位体標識オリゴヌクレオチド（特許文献６）、安定同位体標識抗体（特許文献７）などが開発されている。
特開２００４－２６９４０７号公報 特開２００４－２６９４０８号公報 特開２００５－２２００６５号公報 国際公開ＷＯ２００３／０５３９１０号パンフレット 特開平６－２６１７４３号公報 特開２０００－２９０２９１号公報 特開２００３－９６０９８号公報
　しかしながら、安定同位体で標識されたβ－１，３－１，６グルカンはこれまでに報告がされておらず、安定同位体２Ｈや安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンも同様である。一方、プローブとしては、従来、安定性ではない同位体標識や蛍光標識のものの感度が良く、好まれてはいるが、安定性ではない同位体標識のプローブは生体への影響が懸念され、この影響により生体内において正確なトレースができない可能性がある。また、蛍光標識については、標識物質の分だけ分子量が異なるため、生体内での動向が異なり、同位体標識のプローブと同様、生体内において正確なトレースができない可能性がある。これらのことから、生体内における正確なトレースを実現するためには、安定性同位体標識のプローブが有効であるいえる。
　本発明は、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン、これを用いた腸管に吸収された後の動態を観察するためのプローブならびに安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの製造方法を提供することを目的とする。
　本発明者らは、鋭意研究の結果、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃを含む液体栄養培地においてアウレオバシジウム属に属する菌を培養することにより、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンが産生されること、さらには、産生された安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンを用いることにより小腸に吸収された後のβ－１，３－１，６グルカンの動態を観察することができることを見出し、下記の各発明を完成した。
（１）安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン。
（２）独立行政法人産業技術総合研究所　特許微生物センター（ＮＩＴＥ－ＩＰＯＤ）に寄託された寄託番号ＦＥＲＭ ＢＰ－１００１４のアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２（Ａｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓ Ｍ－２）を、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃを含む液体培地中で培養することにより得られる、（１）に記載の安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン。
（３）培地のｐＨが３．０～８．０である、（２）に記載の安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン。
（４）安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されていないβ－１，３－１，６グルカンと物性に差がない、（１）から（３）のいずれかに記載の安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン。
（５）（１）から（４）のいずれかに記載の安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンを用いた腸管吸収された後の動態を観察するためのプローブ。
（６）独立行政法人産業技術総合研究所　特許微生物センター（ＮＩＴＥ－ＩＰＯＤ）に寄託された寄託番号ＦＥＲＭ ＢＰ－１００１４のアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２（Ａｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓ Ｍ－２）を、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃを含むｐＨが３．０～８．０の液体培地中で培養する工程を有する安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの製造方法。
　本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンによれば、生体内におけるβ－１，３－１，６グルカンの動態、特に、β－１，３－１，６グルカンが腸管に吸収された後の動態を観察することができ、β－１，３－１，６グルカンの新たな機能の発見や創出に寄与することができる。また、本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの製造方法によれば、安定同位体２Ｈや安定同位体１３Ｃで標識されたにもかかわらず、安定同位体で標識されていないβ－１，３－１，６グルカンと物性に遜色がない標識されたβ－１，３－１，６グルカンを得ることができる。さらに、本発明に係るプローブによれば、生体への影響が懸念されない、生体内において正確なトレースが可能性となる。
コントロール、安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよび安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの各３試料についてのサイクルごとの安定同位体２Ｈ／１Ｈ比および安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比の平均値および標準偏差値を示す図である。 マウスから採取した小腸および大腸を分割する様子を示す図である。 ＨＥ染色したリンパ節を示す図である。 分割した小腸３における、リンパ節組織を採取する様子とリンパ節における安定同位体２Ｈ／１Ｈ比および安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比を示す図である。 分割した小腸３の異なる位置おける、リンパ節組織を採取する様子とリンパ節における安定同位体２Ｈ／１Ｈ比および安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比を示す図である。
　以下、本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン、これを用いたプローブ、ならびに本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの製造方法について詳細に説明する。
　安定同位体とは、電子や陽子、中性子を放出して原子番号が変遷し得る放射性同位体とは異なり、自然界で一定の割合をもって安定に存在する同位体であり、例えば２Ｈや１３Ｃの他、１５Ｎや１７Ｏ、１８Ｏなどを挙げることができる。
　本発明における「で標識された」は、「が取り込まれた」、「を構成元素として有する」と交換可能に用いられる。
　本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンは、安定同位体２Ｈないし安定同位体１３Ｃを含有する液体培地中で微生物を培養し、産生させることができる。そのような液体培地は、当業者によって適宜調製可能な液体培地を用いることができ、特に限定されないが、例えば、安定同位体２Ｈ標識Ｄ－グルコースおよび／または安定同位体１３Ｃ標識Ｄ－グルコース、安定同位体２Ｈおよび安定同位体１３Ｃ標識Ｄ－グルコース、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識Ｌ－グルコースなどの安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識単糖、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識マルトースや安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識スクロース、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識ラクトース、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識セロビオース、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識トレハロース、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識シクロデキストリン、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識グリコーゲン、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識アミロペクチン、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識アミロース、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識デンプン、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識セルロースなどの安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識多糖、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識エタノールなどの安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識アルコール、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃ標識アミノ酸、安定同位体２Ｈ標識Ｈ２Ｏ、安定同位体１３Ｃ標識ＣＯ２などのうちから選択される１または２以上の他、米糠、乳酸菌溶液、アスコルビン酸ナトリウムを含む液体培地を挙げることができる。また、そのような微生物もまた、パン酵母や黒酵母（アウレオバシジウム属に属する菌）などを挙げることができるが、アウレオバシジウム属に属する菌が好ましく、独立行政法人産業技術総合研究所　特許微生物センター（ＮＩＴＥ－ＩＰＯＤ；茨城県つくば市東１丁目１番地１　中央第６、郵便番号３０５－８５６６、日本）に、２００４年４月２２日に寄託された寄託番号ＦＥＲＭ ＢＰ－１００１４のアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２（Ａｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓ Ｍ－２）がより好ましい。
　なお、本発明における液体培地のｐＨは３．０～８．０の範囲が好ましいが、３．５～７．５の範囲がより好ましく、４．０～７．０の範囲がさらに好ましく、４．５～７．０の範囲がよりさらに好ましい。
　本発明において、生成された安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン（培養物の形態を含む）は、精製して用いることができる。そのような精製は、当業者によって適宜選択可能な手法や器具を用いて行うことができ、特に限定されないが、本実施例においては、エタノール沈殿法を好適な精製方法として用いている。
　β－１，３－１，６グルカンが安定同位体２Ｈ，１３Ｃで標識されているか否かを確認する方法としては、例えば、安定同位体２Ｈ，１３Ｃで標識されていないβ－１，３－１，６グルカンとの比較により、安定同位体２Ｈ／１Ｈ比ないし安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比を測定する方法により確認することができる。そのような方法には、投影型二次イオン質量分析装置や二次元固体撮像素子を組み合わせた同位体顕微鏡を用いることができる。なお、本実施例においては、投影型二次イオン質量分析装置と発明者らが独自に開発した二次元固体撮像素子を組み合わせた同位体顕微鏡が用いられている。
　本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンは、腸管に吸収されることが確認されていることから、生体内におけるβ－１，３－１，６グルカンの動態、特に、β－１，３－１，６グルカンが腸管に吸収された後の動態を観察するためのプローブとして用いることができ、本発明に包含される。
　本発明に係るプローブは、哺乳動物において用いることができ、そのような哺乳動物としては、ヒト、サル（ヒトを除く霊長目）、ウシ、ウマ、ブタ、ミニブタ、フェレット、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、スナネズミなどを挙げることができるが、ヒトにおける代謝試験は可能であるものの安全性の問題が解決しない限り、ヒトを除く哺乳動物において用いるのが好ましい
　なお、一般に哺乳動物は、βアミラーゼなどのβ－１，３－１，６グルカンを消化し得る酵素を有していないため、β－１，３－１，６グルカンは哺乳動物の消化器官ではほとんど分解されないが、本発明に係るプローブには、本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの分解産物が含まれる。
　生体内に取り込まれた本発明に係るプローブを検出する方法としては、例えば、安定同位体２Ｈ／１Ｈ比ないし安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比を測定する方法により検出することができる。そのような方法には、投影型二次イオン質量分析装置や二次元固体撮像素子を組み合わせた同位体顕微鏡を用いることができる。なお、本実施例においては、投影型二次イオン質量分析装置と発明者らが独自に開発した二次元固体撮像素子を組み合わせた同位体顕微鏡が用いられている。
　また、本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの製造方法は、
　(i)独立行政法人独立行政法人産業技術総合研究所　特許微生物センター（ＮＩＴＥ－ＩＰＯＤ）に寄託された寄託番号ＦＥＲＭ ＢＰ－１００１４のアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２（Ａｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓ Ｍ－２）を、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃを含むｐＨが３．０～８．０の液体培地中で培養する工程
上記(i)の工程を有している。なお、本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの製造方法において、上述した本発明に係る本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよびこれを用いたプローブの構成と同等または相当する構成については再度の説明を省略する。
　本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの製造方法においては、必要とする安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの純度や態様などに応じて、上述の(i)の工程の他に、精製工程、凍結乾燥工程、粉砕工程、洗浄工程、安定同位体２Ｈや安定同位体１３Ｃで標識されているか否かの確認工程などを１または２回以上行ってもよい。
　以下、本発明に係る安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン、これを用いたプローブならびにその製造方法について、実施例に基づいて説明する。なお、本発明の技術的範囲は、これらの実施例によって示される特徴に限定されない。
＜実施例１＞安定同位体２Ｈまたは安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの調製
（１）安定同位体２Ｈ含有培地においてアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２を培養することによるβ－１，３－１，６グルカンの調製
［１－１］安定同位体２Ｈ含有培地の調製
　３００ｍＬ三角フラスコに、下記の組成および終濃度となるように蒸留水に溶解し、これを液体栄養培地（ｐＨ３．０～８．０）とした。
　安定同位体２Ｈ標識Ｄ－グルコース｛Ｄ－Ｇｌｕｃｏｓｅ－１，２，３，４，５，６，６－ｄ７（９８％）；和光純薬社｝１．５％（ｗ／ｖ）
　微細化米糠（オリザジャームＤＬＳ；オリザ油化社）０．２％（ｗ／ｖ）
　乳酸菌溶液１．０％（ｖ／ｖ）
これにアスコルビン酸ナトリウムが０．１５％（ｗ／ｖ）かつｐＨが３．０～８．０、好ましくは４．５～７．０となるように１０％アスコルビン酸ナトリウム溶液を添加した。
［１－２］アウレオバシジウム プルランス Ｍ－２の培養
　オートクレーブ（ＬＳＸ－７００；トミー精工社）を用いて１２１℃の条件下で１５分間滅菌した後、あらかじめ－８０℃で凍結保存しておいたアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２（Ａｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓ Ｍ－２；独立行政法人産業技術総合研究所　特許微生物センター（ＮＩＴＥ－ＩＰＯＤ）に寄託、寄託番号ＦＥＲＭ ＢＰ－１００１４）０．５ｍＬを植菌し、振盪培養装置（ＢＲ－４０ＬＥ；ＴＡＩＴＥＣ社）を用いて攪拌回転数１５０ｒｐｍ、培養温度２４．５℃の条件下で５日間、回転振盪培養した。下記に培養結果を示す。
＜安定同位体２Ｈ含有培地における培養結果＞
　　　　　　　　　全糖濃度　０．９３ｇ／ｄＬ
　　Ｄ－グルコース残糖濃度　０
　　　　　　　　　多糖濃度　０．９３ｇ／ｄＬ
β－１，３－１，６グルカン　０．６５ｇ／ｄＬ
［１－３］β－１，３－１，６グルカンの精製
　培養物３０ｍＬを回収し、蒸留水で１０倍希釈した後、高速遠心分離機（６９３０；久保田商事社）を用いて回転数１４５００ｒｐｍ、６℃の条件下で３０分間、遠心分離を行い、培養物上清約３００ｍＬを回収した。続いて、ロータリーエバポレーター（ＲＥ１１１；柴田化学社）を用いて、回収した培養物上清を１００ｍＬに減圧濃縮した。以下、エタノール沈殿法を用いて濃縮した培養物上清に含まれるβ－１，３－１，６グルカンを精製した。
　濃縮した培養物上清にエタノール（特級；関東化学社）を６６％（ｖ／ｖ）になるまで添加し、一晩６℃の冷蔵庫内に静置した後、高速遠心分離機（６９３０；久保田商事社）を用いて回転数１４５００ｒｐｍ、６℃の条件下で３０分間、遠心分離を行い、β－１，３－１，６グルカンを含む沈殿物を回収した。得られた沈殿物を蒸留水に溶解し、沈殿物水溶液を４０ｍＬ調製した。前述したエタノール添加工程～冷蔵庫内静置工程～遠心分離工程～沈殿物回収工程～４０ｍＬ沈殿物水溶液の調製工程～エタノール添加工程～冷蔵庫内静置工程～遠心分離工程～沈殿物回収工程の各工程を経て、β－１，３－１，６グルカンを含む沈殿物を得た。
　得られたβ－１，３－１，６グルカンを含む沈殿物を蒸留水に溶解し、沈殿物水溶液を１５０ｍＬ調製し、ロータリーエバポレーター（ＲＥ１１１；柴田化学社）を用いて沈殿物水溶液を３０ｍＬに減圧濃縮するとともに残存するエタノールを除去した。オートクレーブ（ＬＳＸ－７００；トミー精工社）を用いて濃縮した沈殿物水溶液３０ｍＬを９０℃の条件下で３０分間滅菌し、β－１，３－１，６グルカン精製物を得た。
（２）安定同位体１３Ｃ含有培地においてアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２を培養することによるβ－１，３－１，６グルカンの調製
　安定同位体２Ｈ標識Ｄ－グルコース｛Ｄ－Ｇｌｕｃｏｓｅ－１，２，３，４，５，６，６－ｄ７（９８％）；和光純薬社｝の代わりに安定同位体１３Ｃ標識Ｄ－グルコース｛Ｄ－ｇｌｕｃｏｓｅ－Ｕ－１３Ｃ６（９９％）；和光純薬社｝を同量用いた他は、本実施例（１）［１－１］～［１－３］の手法に基づいてβ－１，３－１，６グルカン精製物を得た。なお、アウレオバシジウム プルランス Ｍ－２の培養結果を下記に示す。
＜安定同位体１３Ｃ含有培地における培養結果＞
　　　　　　　　　全糖濃度　１．１３ｇ／ｄＬ
　　Ｄ－グルコース残糖濃度　０
　　　　　　　　　多糖濃度　１．１３ｇ／ｄＬ
β－１，３－１，６グルカン　０．７９ｇ／ｄＬ
（３）β－１，３－１，６グルカンが安定同位体２Ｈ，１３Ｃで標識されているか否かの確認
　本実施例（１）または（２）で得られたβ－１，３－１，６グルカンについて、安定同位体２Ｈまたは安定同位体１３Ｃで標識されているか否かを確認した。安定同位体２Ｈ標識Ｄ－グルコース｛Ｄ－Ｇｌｕｃｏｓｅ－１，２，３，４，５，６，６－ｄ７（９８％）；和光純薬社｝の代わりにＤ－グルコースを同量用いた他は、本実施例（１）［１－１］～［１－３］の手法に基づいてβ－１，３－１，６グルカン精製物を得、これをコントロールとした。
　コントロール、本実施例（１）および（２）で得られたβ－１，３－１，６グルカンをそれぞれ室温下で４８時間静置して流動性を失わせ、イオン照射による帯電を押さえるために、流動性を失ったβ－１，３－１，６グルカンに厚さ３０ｎｍの金蒸着を施した後、１インチサイズの試料ホルダにマウントして試料を作成した。試料はそれぞれ３つずつ作成した。続いて、投影型二次イオン質量分析装置（ＩＭＳ １２７０；ＣＡＭＥＣＡ社）と独自に開発した二次元固体撮像素子を組み合わせた同位体顕微鏡を用いて、作成した試料について安定同位体２Ｈおよび安定同位体１３Ｃの二次元分布を各々１９サイクル観察し、安定同位体２Ｈ／１Ｈ比および安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比ならびにそれらの平均値および標準偏差値を試料ごとに算出した。さらにこれら試料ごとの安定同位体２Ｈ／１Ｈ比および安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比の平均値および標準偏差値から、コントロール、本実施例（１）および（２）で得られたβ－１，３－１，６グルカンの各３試料についての安定同位体２Ｈ／１Ｈ比および安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比の平均値ならびに標準偏差値をサイクルごとに算出した。
　試料ごとの安定同位体２Ｈおよび安定同位体１３Ｃの二次元分布１９サイクルの値、安定同位体２Ｈ／１Ｈ比および安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比ならびにそれらの平均値および標準偏差値を表１～９に、コントロール、本実施例（１）および（２）で得られたβ－１，３－１，６グルカンの各３試料についてのサイクルごとの安定同位体２Ｈ／１Ｈ比および安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比の平均値および標準偏差値を図１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　表１～９および図１に示すように、安定同位体２Ｈ含有培地においてアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２を培養することにより調製したβ－１，３－１，６グルカン（図１中の２Ｈｇｌｕｃａｎ）は、コントロール（図１中のｃｏｎｔｒｏｌ）と比較して安定同位体２Ｈ／１Ｈ比の値（図１中の２Ｈ／１Ｈ）が顕著に上昇し、安定同位体１３Ｃ含有培地においてアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２を培養することにより調製したβ－１，３－１，６グルカンは（図１中の１３Ｃｇｌｕｃａｎ）、コントロールと比較して安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比の値（図１中の１３Ｃ／１２Ｃ）が顕著に上昇していることが明らかとなった。このことから、安定同位体２Ｈ含有培地あるいは安定同位体１３Ｃ含有培地においてアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２を培養することにより、安定同位体２Ｈまたは安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンを調製することができることが示された。
　なお、上述したアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２の培養結果に基づき、精製物について、安定同位体２Ｈ標識Ｄ－グルコースからの安定同位体２Ｈの収率および安定同位体１３Ｃ標識Ｄ－グルコースからの安定同位体１３Ｃの収率を算出したところ、安定同位体２Ｈの収率が４２．１３％、安定同位体１３Ｃの収率が３４．６６％であった。
＜実施例２＞安定同位体２Ｈまたは安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの物性の確認
（１）ｐＨの測定
　ｐＨ計（７４４型；メトロノームジャパン社）を用いて、実施例１で作成したコントロール、安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよび安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンのｐＨを測定した。その結果を下記に示す。
＜ｐＨ測定結果＞
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　コントロール　６．６２
 安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカン　６．６４
安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン　６．６９
（２）粘度の測定
　振動式粘度計（ＶＭ－１０Ａ；セコニック社）を用いて、実施例１で作成したコントロール、安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよび安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの粘度を測定した。その結果を下記に示す。
＜粘度測定結果（ｍＰａ・ｓ）＞
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　コントロール　４１．３
 安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカン　４７．８
安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン　４１．４
　上述したｐＨおよび粘度の測定結果より、コントロール、安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよび安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンのいずれも物性に差がないことが明らかとなった。すなわち、安定同位体２Ｈ含有培地あるいは安定同位体１３Ｃ含有培地においてアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２を培養することにより調製したβ－１，３－１，６グルカンは、安定同位体２Ｈまたは安定同位体１３Ｃで標識されたにもかかわらず、アウレオバシジウム プルランス Ｍ－２が産生する安定同位体で標識されていないβ－１，３－１，６グルカンと物性に遜色がないことが示され、安定同位体２Ｈまたは安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンは、例えば、腸管で吸収されるか否かを調べるため、および腸管で吸収された場合のその後の動態を観察するためのプローブとして役立つことが示された。
＜実施例３＞小腸における安定同位体２Ｈまたは安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの吸収後の動態観察
　小腸におけるβ－１，３－１，６グルカンの吸収後の動態を調べるために、実施例１で作成した安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよび安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンを用いて観察した。
（１）安定同位体２Ｈまたは安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンのマウスへの投与
　安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよび安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンをそれぞれマウスに投与した。１３週齢の雄のＣ５７ＢＬ－６マウス（日本クレア社）を５匹用意し、実施例１（１）および（２）で得られた粘性を有する液状の安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよび安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンを同量混ぜたものを、ゾンテを用いて１匹当たり２００μＬずつ、１時間おきに計５回経口投与した。
（２）観察用切片の作成
　最初の投与から６時間後にマウスを解剖し、洗浄を行わないままで大腸および小腸を採取し、採取した小腸は図２に示すように２～５の４つに分割した。続いて、β－１，３－１，６グルカンは小腸組織であるパイエル板に存在するＭ細胞から取り込まれると発明者らは考え、分割した小腸２～５から、小腸組織に存在するリンパ節組織をそれぞれ採取した。ヘマトキシリン・エオジン（Ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ－Ｅｏｓｉｎ；ＨＥ）染色したリンパ節を図３に矢印で示す。図３において、左下方向の部分が小腸管内を示している。また、分割した小腸３における、リンパ節組織を採取する様子を図４および図５の左側図および中央図に示す。左側図からの矢印で示された中央図において四角で囲まれた枠内の組織が、採取されたリンパ節組織を示している。
　続いて、１００ｍＬの蒸留水にＰａｒａｆｏｒｍａｌｄｅｈｙｄｅ（ＰＦＡ）８ｇを溶解して得られた８％（ｗ／ｖ）ＰＦＡ水溶液３０ｍＬに、０．０５ｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液に０．１ｍｏｌ／ＬのＬ－ｌｙｓｉｎｅを加えて得られた溶液（ｐＨ７．４）を９０ｍＬ加え、さらにメタ過ヨウ素酸ナトリウム（ＮａＩＯ４）を０．２５７ｇ加えて攪拌することにより、ＰＬＰ固定液を調製した。下記にＰＬＰ固定液の最終濃度を示す。
＜ＰＬＰ固定液＞
　０．０１ｍｏｌ／Ｌ　ＮａＩＯ４
０．０７５ｍｏｌ／Ｌ　Ｌ－ｌｙｓｉｎｅ
０．０７５ｍｏｌ／Ｌ　リン酸緩衝液
　　　　２％（ｗ／ｖ）ＰＦＡ
　調製したＰＬＰ固定液に採取した組織を浸漬し、２４時間静置した後、組織を水道水で軽く洗浄した後、パラフィン置換器（Ｔｉｓｓｕｅ－Ｔｅｋ ＵＩＰ ５ Ｊｒ；ＳＡＫＵＲＡ社）を用いてパラフィン置換した。その後、パラフィン包埋器（Ｔｉｓｓｕｅ－Ｔｅｋ ＴＥＣ Ｊｒ；ＳＡＫＵＲＡ社）を用いて組織をパラフィンで包埋したブロックを作成し、切片作成器（Ｔｉｓｓｕｅ－Ｔｅｋ Ｃｒｏｓｓｔｏｍｅ Ｊｒ；ＳＡＫＵＲＡ社）を用いて組織を厚さ４μｍにスライスした。スライスした組織をスライドガラス上に載せ、ウォーマー（Ｔｉｓｓｕｅ－Ｔｅｋ Ｓｌｉｄｅ Ｗａｒｍｅｒ Ｊｒ；ＳＡＫＵＲＡ社）を用いて４２℃で一晩静置した。続いて、実施例１（３）と同様の手法に基づいて、１インチサイズの試料ホルダにマウントして試料を作成した後、投影型二次イオン質量分析装置（ＩＭＳ １２７０；ＣＡＭＥＣＡ社）と独自に開発した二次元固体撮像素子を組み合わせた同位体顕微鏡を用いて安定同位体２Ｈおよび安定同位体１３Ｃの二次元分布を測定し、安定同位体２Ｈ／１Ｈ比および安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比を測定した。その結果を図４および図５に示す。
　上述の通り、採取された組織はリンパ節組織であり、図４および図５の右側図に示すように、リンパ節において安定同位体２Ｈ／１Ｈ比および安定同位体１３Ｃ／１２Ｃ比の値が極めて高いことから、安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよび安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンがリンパ節に取り込まれていることが示された。
　以上の結果から、安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよび安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン、すなわちβ－１，３－１，６グルカンは、パイエル板を通じて腸管に点在するリンパ組織に取り込まれることが明らかとなった。また、パイエル板の近傍には腸間膜リンパ節が存在しており、β－１，３－１，６グルカンによる免疫細胞の刺激がパイエル板や腸間膜リンパ節で起こっている可能性が示唆された。なお、パイエル板以外の小腸上皮では、安定同位体２Ｈで標識されたβ－１，３－１，６グルカンおよび安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンはいずれも検出されなかった（図示しない）。

Claims (6)

  1. 　安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン。
  2. 　独立行政法人産業技術総合研究所　特許微生物センター（ＮＩＴＥ－ＩＰＯＤ）に寄託された寄託番号ＦＥＲＭ ＢＰ－１００１４のアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２（Ａｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓ Ｍ－２）を、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃを含む液体培地中で培養することにより得られる、請求項１に記載の安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン。
  3. 　培地のｐＨが３．０～８．０である、請求項２に記載の安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン。
  4. 　安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されていないβ－１，３－１，６グルカンと物性に差がない、請求項１から請求項３のいずれかに記載の安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカン。
  5. 　請求項１から請求項４のいずれかに記載の安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンを用いた腸管吸収された後の動態を観察するためのプローブ。
  6. 　独立行政法人産業技術総合研究所　特許微生物センター（ＮＩＴＥ－ＩＰＯＤ）に寄託された寄託番号ＦＥＲＭ ＢＰ－１００１４のアウレオバシジウム プルランス Ｍ－２（Ａｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ ｐｕｌｌｕｌａｎｓ Ｍ－２）を、安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃを含むｐＨが３．０～８．０の液体培地中で培養する工程を有する安定同位体２Ｈおよび／または安定同位体１３Ｃで標識されたβ－１，３－１，６グルカンの製造方法。
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