WO2012053232A1 - 抗リーシュマニア化合物及び抗リーシュマニア薬 - Google Patents

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純二 木村
将平 堀江
春美 丸島
芳嗣 松本
千寿 三條場
康孝 長田
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Definitions

  • the present invention relates to an anti-leishmania compound and an anti-leishmania drug having high anti-leishmania activity.
  • Leishmaniasis is an infectious disease that develops due to infection with Leishmania protozoa, and has been designated as one of the six major tropical diseases by WHO. It is transmitted through the blood-sucking insect, butterfly flies, and Leishmania parasites infect the body when sucking blood. Although the symptoms of leishmaniasis range from mild to severe, pentavalent antimony used mainly as a therapeutic agent is known to cause strong side effects. Therefore, a new drug with a low risk of side effects is required. Amphotericin B ⁇ (AmBisome) is a drug that suppresses side effects, but there is a problem that the drug price is high.
  • the inventors of the present invention have found that the present invention has high anti-Leishmania activity as a result of fractionation of the extract, focusing on the brown algae Hivemata genus Sargassum yamadae. It came to be completed.
  • the anti-Leishmania compound according to the present invention is Formula (3) It is represented by
  • the anti-Leishmania drug according to the present invention is characterized by containing as an active ingredient a compound represented by the formula (3) and a pharmacologically acceptable salt thereof.
  • an anti-Leishmania compound and an anti-Leishmania drug exhibiting high anti-Leishmania activity can be provided.
  • the anti-Leishmania compound according to the present invention comprises at least one of the compounds represented by the formulas (1) to (6), and the anti-Leishmania drug according to the present invention is represented by the formulas (1) to (6). At least one of the represented compounds is contained as an active ingredient.
  • a metabolite is collected from algae such as brown algae in consideration of the physicochemical properties of the compound.
  • Any commonly used separation and purification means may be used as appropriate.
  • the algae is extracted with an organic solvent, preferably a mixed solvent of equal amounts of chloroform and methanol.
  • the compound may be further extracted from the obtained extract with an organic solvent such as dichloromethane, or the compound may be adsorbed and eluted using various types of chromatography. Further, if necessary, a purification operation can be performed to recover a compound having a desired purity.
  • conventional inorganic and organic carriers such as silica gel and polystyrene resin can be used as carriers.
  • the compounds represented by the formulas (1) to (6) are useful, for example, as antiprotozoal drugs in the pharmaceutical field, particularly as anti-leishmania drugs.
  • the compounds represented by any one of the formulas (1) to (6) may be used alone, or may be formulated by mixing with generally pharmaceutically acceptable additives.
  • the dosage form includes tablets, granules, capsules, pills, powders, liquids, suspensions, emulsions, syrups, elixirs, extracts, and other oral forms or injections, Examples include administration forms using parenteral agents such as liquids, suppositories, ointments, patches, poultices, lotions and the like, but there is no particular limitation, and it can be appropriately selected depending on the purpose of treatment.
  • additives such as excipients, binders, disintegrants, lubricants, and the like can be contained.
  • excipients include starch, carboxymethylcellulose, sucrose, dextrin, corn starch and the like.
  • binders crystalline cellulose, crystalline cellulose / carmellose sodium, methyl cellulose, hydroxypropyl cellulose, low-substituted hydroxypropyl cellulose, hydroxypropyl methylcellulose, hydroxypropylmethylcellulose phthalate, hydroxypropylmethylcellulose acetate succinate, carmellose sodium, ethylcellulose, Carboxymethylethylcellulose, hydroxyethylcellulose, wheat starch, rice starch, corn starch, potato starch, dextrin, pregelatinized starch, partially pregelatinized starch, hydroxypro-W pill starch, pullulan, polyvinylpyrrolidone, aminoalkyl methacrylate copolymer E, aminoalkyl methacrylate Examples include rate copolymer RS, methacrylic acid copolymer L, methacrylic acid copolymer, polyvinyl acetal diethylaminoacetate, polyvinyl alcohol, gum arabic, gum arabic powder,
  • Disintegrants include crystalline cellulose, methylcellulose, low-substituted hydroxypropylcellulose, carmellose, carmellose calcium, carmellose sodium, croscarmellose sodium, wheat starch, rice starch, corn starch, potato starch, partially pregelatinized starch, hydroxy Examples include propyl starch, carboxymethyl starch sodium, and tragacanth.
  • Lubricants include wheat starch, rice starch, corn starch, stearic acid, calcium stearate, magnesium stearate, hydrous silicon dioxide, light anhydrous silicic acid, synthetic aluminum silicate, dry aluminum hydroxide gel, talc, aluminum aluminometasilicate Examples thereof include magnesium acid calcium, calcium hydrogen phosphate, anhydrous calcium hydrogen phosphate, sucrose fatty acid ester, waxes, hydrogenated vegetable oil, and polyethylene glycol.
  • coloring agents, flavoring agents, flavoring agents, etc. are added in addition to generally used inert diluents such as water and vegetable oils. You may make it contain as an agent.
  • additives such as suspensions, emulsions, and solubilizers for use can be contained.
  • fat, fatty oil, lanolin, petrolatum, paraffin, wax, resin, plastic, base, glycols, higher alcohol, water, emulsifier, suspending agent, etc. Can be included.
  • a poultice, glycerin, water, water-soluble polymer, water-absorbing polymer and the like can be added as additives.
  • a lotion agent a solvent, an emulsifier, a suspending agent, etc. can be contained as an additive.
  • the anti-Lyusmania compound of the present invention can be added to foods, chewing gums, beverages, etc., and can be contained in so-called foods for specific health (for example, anti-Lyusmania foods) and supplements.
  • the compounds represented by the above formulas (1) to (6) are concepts including pharmacologically acceptable salts of these compounds. That is, the present invention includes biochemical precursors that change to the above compounds and amides by being metabolized in the human or animal body and exhibit pharmacological activity.
  • the pharmacologically acceptable salt refers to a salt obtained by treating the above compound with an acid or a base, and has no significant toxicity and can be used as a medicine.
  • acid addition salts include addition salts with inorganic acids such as hydrochloric acid, hydrobromic acid, sulfuric acid, phosphoric acid, and organic acids such as maleic acid, fumaric acid, tartaric acid, citric acid, and the like.
  • salts based on alkali metal hydroxides such as sodium hydroxide and potassium hydroxide, alkaline earth metal hydroxides such as calcium hydroxide and magnesium hydroxide, and salts based on organic bases such as guanidine, triethylamine and dicyclohexylamine. can give.
  • fractions E, K, N, and O were further analyzed by open column chromatography, thin layer chromatography, and HPLC using a mixed eluate of ethyl acetate-hexane. Of the compound was isolated.
  • fraction E was subjected to thin layer chromatography to obtain several types of fractions.
  • the compound represented by Formula (5) was obtained from the fraction f. Further, the fraction e was subjected to HPLC to obtain a compound represented by the formula (5) at a retention time of 18 minutes.
  • the mass (mg) of the obtained fraction is shown in the lower part of the fraction name.
  • the formula number of the compound is shown in bold.
  • the fractions obtained when HPLC was performed showed the retention time, the mass (mg) of the obtained compound in order from the top, and further the compounds represented by the above formulas (1) to (6). In either case, the formula number of the compound is shown in bold.
  • HPLC was performed on fraction K using a 20% ethyl acetate-hexane eluent, and sargaquinoic acid was retained at a retention time of 28 minutes, and formula (1) at a retention time of 31 minutes.
  • the compound represented was obtained.
  • fraction N was subjected to HPLC using thin layer chromatography and 20% ethyl acetate-hexane eluent, and the compound represented by formula (2) (HREIMS) at a retention time of 28 minutes in HPLC.
  • HREIMS formula (2)
  • fraction C ′ and fraction D ′ were combined and extracted with Sep-Pak.
  • the fraction extracted using a 0.5% ethyl acetate-hexane mixed eluate was subjected to HPLC using a 1% ethyl acetate-hexane eluent to obtain a compound represented by the formula (6) at a retention time of 182 minutes.
  • the fraction extracted using 1% ethyl acetate-hexane mixed eluate was subjected to HPLC using 7% ethyl acetate-hexane eluent to obtain the compound represented by formula (5) at a retention time of 108 minutes. .
  • the fraction E ′ was subjected to thin layer chromatography, and further subjected to HPLC using a 20% ethyl acetate-hexane mixed eluate.
  • a compound represented by formula (5) at a retention time of 40 minutes and a compound represented by formula (4) at a retention time of 76 minutes (EIMS m / z 408 C 27 H 36 O 3 [M +], m / z 175 [M ⁇ C 15 H 25 O]) were obtained respectively.
  • the obtained compound was analyzed for molecular structure by 1 H- and 13 C-NMR.
  • the NMR spectrum data is shown in the table below.
  • the NMR data of the compound represented by the formula (1) is shown together with the NMR data published in Bull. Chem. Soc. Jpn., 2008, 81 (9) 1125-1130, and represented by the formula (4).
  • the NMR data of the compound is shown together with the NMR data of the structurally similar sargachromenol, and the NMR data of the compounds represented by the formulas (5) and (6) are shown together with the NMR data of the sargaquinoic acid. It was.
  • Measurement of anti-leishmania activity Measurement of in vitro anti-leishmania activity Physiological activity of the compounds represented by formulas (1) to (6) isolated by the above-described procedure was measured under the following conditions. As a Leishmania protozoa, Leishmania.major promastigotes was selected, and using L.major / egfp promastigotes into which the fluorescent protein egfp gene was introduced, the growth inhibition rate was determined under the following conditions using the above compound as a sample.
  • L. major / egfp promastigotes cultured in 199 medium (Nissui Pharmaceutical) supplemented with 25% 10% fetal bovine serum and Hepes Buffer (ICN Biomedeivals Inc., Aurora, OH) using a 96-well plate at 25 ° C did.
  • 100 ⁇ L of L. major / egfp protozoa (1 ⁇ 10 6 cell / mL) and 100 ⁇ L of sample solution (dissolved in DMSO) were added to each well of a 96-well plate, and cultured at 25 ° C. for 72 hours. Thereafter, the fluorescence signal of L.
  • FIG. 9 shows the growth inhibition rate obtained as a result of the measurement.
  • mice Femaleb / C, male, 6 per group were infected with cultured promastigotes of Leishmania parasite L. major PM2 strain 1 ⁇ 10 7 . From the day after the infection, 200 ⁇ g of the compound represented by the formula (3) was administered to each specimen by intraperitoneal inoculation. The administration schedule was once a day for 3 consecutive weeks. In addition, as a control, measurement was also performed on the treatment group to which Amphotericin B was administered and the treatment group to which nothing was administered.
  • FIG. 11 shows the change in antibody titer in mouse blood.
  • FIG. 12 shows the result of electrophoresis of a DNA product amplified by PCR performed using DNA extracted from mouse blood as a template and targeting the protozoan gene. That is, FIG. 12 shows the result of detection of protozoan DNA in blood.
  • a PCR product is observed at a position of 310 bp.
  • the darker the white color the higher the concentration of protozoan DNA.
  • 310 bp is black, it indicates that there is no protozoan DNA.

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Abstract

　式（３）で表される抗リーシュマニア化合物。

Description

抗リーシュマニア化合物及び抗リーシュマニア薬
　本発明は、高い抗リーシュマニア活性を有する抗リーシュマニア化合物及び抗リーシュマニア薬に関するものである。
　リーシュマニア症は、リーシュマニア原虫に感染することを原因として発症する感染症であり、ＷＨＯにより六大熱帯病の１つに指定されている。吸血昆虫であるサシチョウバエを媒介とし、サシチョウバエの吸血時に体内にリーシュマニア原虫が侵入することにより感染する。リーシュマニア症の症状は軽いものから重いものまであるが、主に治療薬として用いられている５価のアンチモンは強い副作用を引き起こすことが知られている。従って、副作用のリスクの低い新薬が求められる。また、副作用を抑制した薬として、AmphotericinB （AmBisome）があるが、薬価が高いという問題があった。
　一方で、海藻由来の代謝物は、抗リーシュマニア活性を示すことが報告されている（例えば、非特許文献１参照）。しかし、この文献においては海藻由来のどの化合物が抗リーシュマニア活性を有するかについて化合物の特定は行われていない。
Y.Freile-Pelegrin, D. Robledo, M. J. Chan-Bacab, B. O. Orrtega-Morales, "Antileishmanial propertie of tropical marine algae extract", Fitoterapia ,(Holland) ,Elsevier, 2008, 79, p. 374-377
　本発明者らは、鋭意検討の結果、褐藻類ヒバマタ目ホンダワラ科アズマネジモク（Sargassum yamadae）に着目し、抽出物の分画を行ったところ高い抗リーシュマニア活性を有することを発見し、本発明を完成するに至った。
　即ち、本発明に係る抗リーシュマニア化合物は、
　式（３）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
 で表される。
　また、本発明に係る抗リーシュマニア薬は、式（３）で表される化合物及びその薬理上許容される塩を有効成分として含有することを特徴とする。
　本発明によれば、高い抗リーシュマニア活性を示す抗リーシュマニア化合物及び抗リーシュマニア薬を提供することができる。
本発明の実施例に係る化合物の分離操作（１回目）の手順を示す図である。 本発明の実施例に係る化合物の分離操作（１回目）の手順を示す図である。 本発明の実施例に係る化合物の分離操作（１回目）の手順を示す図である。 本発明の実施例に係る化合物の分離操作（１回目）の手順を示す図である。 本発明の実施例に係る化合物の分離操作（１回目）の手順を示す図である。 本発明の実施例に係る化合物の分離操作（２回目）の手順を示す図である。 本発明の実施例に係る化合物の分離操作（２回目）の手順を示す図である。 本発明の実施例に係る化合物の分離操作（２回目）の手順を示す図である。 本発明の実施例に係るin vitro抗リーシュマニア活性測定の結果を示すグラフである。 本発明の実施例に係るin vivo抗リーシュマニア活性測定の結果を示すグラフである。 本発明の実施例に係るin vivo抗リーシュマニア活性測定の結果を示す図である。 本発明の実施例に係るin vivo抗リーシュマニア活性測定の結果を示す図である。
　以下、図面を参照して本発明の実施の形態に係る抗リーシュマニア化合物及び抗リーシュマニア薬について説明する。本発明に係る抗リーシュマニア化合物は式（１）～（６）で表される化合物のうちの少なくとも１つからなり、本発明に係る抗リーシュマニア薬は、式（１）～（６）で表される化合物のうち少なくとも１つを有効成分として含有する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
　式（１）～（６）で表される化合物のうちの何れかを回収するには、褐藻等の藻に対して、当該化合物の理化学的性質を考慮して、代謝物を採取するのに通常用いられる分離、精製の手段を適宜利用すればよい。例えば、藻に対して有機溶剤、好ましくはクロロホルム－メタノールの等量混合溶媒で抽出操作を行う。次に得られた抽出液からさらにジクロロメタン等の有機溶剤で化合物を抽出してもよいし、各種のクロマトグラフィーを用いて化合物を吸着、溶出させてもよい。さらに必要に応じてさらに精製操作を行って、所望の純度を有する化合物を回収することができる。クロマトグラフィーにおいては、慣用の無機及び有機の担体、例えばシリカゲル、ポリスチレン樹脂などを担体として用いることができる。
　式（１）～（６）で表される化合物は、例えば医薬品分野の抗原虫薬、特に抗リーシュマニア薬として有用である。式（１）～（６）の何れかで表される化合物は、単独で用いてもよいし、又は一般に製剤上許容される添加剤と共に混和し、製剤化してもよい。また、投与形態としては、錠剤、顆粒剤、カプセル剤、丸剤、散剤、液剤、懸濁剤、乳剤、シロップ剤、エリキシル剤、エキス剤等の経口剤を用いた投与形態または、注射剤、液剤、坐剤、軟膏剤、貼付剤、パップ剤、ローション剤等の非経口剤を用いた投与形態等が挙げられるが、特に制限はなく、治療目的等に応じて適宜選択することができる。
　また、錠剤、顆粒剤、丸剤、カプセル剤、散剤の場合には、賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤等の添加剤を含有させることができる。賦形剤としては、デンプン、カルボキシメチルセルロース、白糖、デキストリン、コーンスターチ等を挙げることができる。
　結合剤としては、結晶セルロース、結晶セルロース・カルメロースナトリウム、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート、ヒドロキシプロピルメチルセルロースアセテートサクシネート、カルメロースナトリウム、エチルセルロース、カルボキシメチルエチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、コムギデンプン、コメデンプン、トウモロコシデンプン、バレイショデンプン、デキストリン、アルファー化デンプン、部分アルファー化デンプン、ヒドロキシプロＷ ピルスターチ、プルラン、ポリビニルピロリドン、アミノアルキルメタクリレートコポリマーＥ 、アミノアルキルメタクリレートコポリマーＲＳ、メタクリル酸コポリマーＬ 、メタクリル酸コポリマー、ポリビニルアセタールジエチルアミノアセテート、ポリビニルアルコール、アラビアゴム、アラビアゴム末、寒天、ゼラチン、白色セラック、トラガント、精製白糖、マクロゴールが挙げられる。
　崩壊剤としては、結晶セルロース、メチルセルロース、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース、カルメロース、カルメロースカルシウム、カルメロースナトリウム、クロスカルメロースナトリウム、コムギデンプン、コメデンプン、トウモロコシデンプン、バレイショデンプン、部分アルファー化デンプン、ヒドロキシプロピルスターチ、カルボキシメチルスターチナトリウム、トラガントが挙げられる。
　滑沢剤としては、コムギデンプン、コメデンプン、トウモロコシデンプン、ステアリン酸、ステアリン酸カルシウム、ステアリン酸マグネシウム、含水二酸化ケイ素、軽質無水ケイ酸、合成ケイ酸アルミニウム、乾燥水酸化アルミニウムゲル、タルク、メタケイ酸アルミン酸マグネシウム、リン酸水素カルシウム、無水リン酸水素カルシウム、ショ糖脂肪酸エステル、ロウ類、水素添加植物油、ポリエチレングリコールが挙げられる。
　また、液剤、シロップ剤、懸濁剤、乳剤、エリキシル剤の場合には、水や植物油等の一般的に用いられる不活性な希釈剤の他、着色剤、矯味剤、着香剤等を添加剤として含有させてもよい。
　また、注射剤の場合には、懸濁液、乳濁液、用時溶解剤等の添加剤を含有させることができる。また、軟膏剤、坐剤の場合には、脂肪、脂肪油、ラノリン、ワセリン、パラフィン、ろう、樹脂、プラスチック、基剤、グリコール類、高級アルコール、水、乳化剤、懸濁化剤等を添加剤として含有させることができる。また、パップ剤の場合にはグリセリン、水、水溶性高分子、吸水性高分子等を添加物として含有させることができる。また、ローション剤の場合には、溶剤、乳化剤、懸濁化剤等を添加剤として含有させることができる。
　本発明の抗リューシュマニア化合物は、食品、チューインガム、飲料等に添加して、いわゆる特定保健用食品（例えば、抗リューシュマニア食品）やサプリメント等に含有させることもできる。
　なお、上述の式（１）～（６）で表される化合物は、これらの化合物の薬理上許容される塩を含む概念である。すなわち、本発明は、ヒト又は動物の体内で代謝されることによって上記化合物及びアミドに変化して薬理活性を示す生化学的前駆物質を含む。本発明において、薬理上許容される塩とは、上記の化合物を酸または塩基で処理することにより得られる塩であって、著しい毒性を有さず、医薬として使用され得る塩をいう。このような酸付加塩の例としては、塩酸、臭化水素酸、硫酸、リン酸等の無機酸、マレイン酸、フマル酸、酒石酸、クエン酸等の有機酸等による付加塩があげられ、塩基による塩としては、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等のアルカリ金属水酸化物、水酸化カルシウム、水酸化マグネシウム等のアルカリ土類金属水酸化物、グアニジン、トリエチルアミン、ジシクロヘキシルアミン等の有機塩基による塩があげられる。
　以下、本発明について実施例を用いてより具体的に説明する。
１．式（１）～（６）で表される化合物の分離操作
（１）脂質成分の抽出
　褐藻類ヒバマタ目ホンダワラ科アズマネジモク（Sargassum yamadae）（294.4g）をメタノールとクロロホルムの等量混合溶媒（1.4L）に１日浸漬し、吸引濾過により残渣を除き脂質成分を抽出した。さらに、この残渣についてメタノールとクロロホルムの等量混合溶媒（1.4L）に１日浸漬し、吸引濾過を行うことにより脂質成分を抽出した。溶媒を減圧下で除去し、得られた抽出物（31.2g）を水とクロロホルムにより二層分配し、脂質成分（23.8g）を得た。なお、ネジモクは採取後人工海水により洗浄して恒温除湿室で乾燥し、粉砕後実験に使用するまで－２０℃で保存した。
（２）分離操作１回目
　（１）に示す操作により得られた脂質成分のうち、5.14gを分別し、図１に示すように酢酸エチルーヘキサン系の溶媒の割合を変えながらオープンカラムクロマトグラフィー（φ7×45cm）によりＡ～Ｐの１６の画分に分けた。
　これらのうち、図２～５に示すように画分Ｅ、Ｋ、Ｎ及びＯについて、さらにオープンカラムクロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィー、及び酢酸エチル－ヘキサン混合溶出液を用いたＨＰＬＣにより、数種の化合物を分離した。
　図２に示すように画分Ｅについて薄層クロマトグラフィーを行い、数種の画分を得た。
このうち、画分ｆから式（５）で表される化合物を得た。また、画分ｅについてＨＰＬＣを行い保持時間１８分に式（５）で表される化合物を得た。なお、図２～８においては画分名の下段に、得られた画分の質量（mg）を示す。また、上述の式（１）～（６）で表される化合物の何れかである場合にはその化合物の式の番号を太字で示している。また、ＨＰＬＣを行った際に得られた画分については上から順に保持時間、得られた化合物の質量（mg）を示し、更に上述の式（１）～（６）で表される化合物の何れかである場合にはその化合物の式の番号を太字で示している。
　また、図３に示すように画分Ｋについて20％酢酸エチル－ヘキサン溶出液を用いてＨＰＬＣを行い、保持時間２８分にサルガキノン酸（sargaquinoic acid）を、保持時間３１分に式（１）で表される化合物を得た。また、図４に示すように画分Nについて薄層クロマトグラフィー及び20％酢酸エチル－ヘキサン溶出液を用いたＨＰＬＣを行い、ＨＰＬＣにおいて保持時間２８分に式（２）で表される化合物(HREIMS m/z 440.2560 [M+]. C27H36O5 (△－0.3 mmu) を得た。また、図５に示すように画分Ｏについて55％酢酸エチル－ヘキサン溶出液を用いてＨＰＬＣを行い、保持時間２８分に式（３）で表される化合物(HREIMS m/z 440.2934 [M+]. C28H40O4 (△ +0.8 mmu)を得た。
（３）分離操作２回目
　上述の脂質成分の抽出操作により得られた脂質成分のうち分離操作１回目で使用しなかった残りの18.6gについて酢酸エチル－ヘキサン系の溶媒の割合を変えながら図６に示すようにオープンカラムクロマトグラフィー（φ7×45cm）によりＡ’～Ｏ’の１５の画分に分けた。
　図７に示すように得られた画分のうち画分Ｃ’及び画分Ｄ’を合わせSep-Pakによる抽出を行った。0.5％酢酸エチルーヘキサン混合溶出液を用いて抽出した画分について１％酢酸エチル－ヘキサン溶出液を用いてＨＰＬＣを行い保持時間１８２分に式（６）で表される化合物を得た。また、１％酢酸エチル－ヘキサン混合溶出液を用いて抽出した画分について７％酢酸エチル－ヘキサン溶出液を用いてＨＰＬＣを行い保持時間１０８分に式（５）で表される化合物を得た。
　また、図８に示すように画分Ｅ’について薄層クロマトグラフィーを行い、さらに２０％酢酸エチルーヘキサン混合溶出液を用いてＨＰＬＣを行った。保持時間４０分に式（５）で表される化合物を、保持時間７６分に式（４）で表される化合物（EIMS m/z 408 C27H36O3 [M+],　m/z 175[ M－C15H25O]）をそれぞれ得た。
　得られた化合物については1Ｈ－及び13Ｃ－ＮＭＲ等により分子構造の解析を行った。ＮＭＲスペクトルのデータを下表に示す。なお、式（１）で表される化合物のＮＭＲデータは、Ｂull. Chem. Soc. Jpn., 2008, 81(9) 1125-1130に発表したＮＭＲデータと共に示し、式（４）で表される化合物のＮＭＲデータは、構造類似のサルガクロメノール（sargachromenol）のＮＭＲデータと共に示し、式（５）及び式（６）で表される化合物のＮＭＲデータはサルガキノン酸（sargaquinoic acid）のＮＭＲデータと共に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　これらのＮＭＲデータから、得られた化合物はそれぞれ上述の式（１）～式（６）で表されることが分かった。
２．抗リーシュマニア活性測定
（１）in vitro抗リーシュマニア活性測定
　上述した手順により単離した式（１）～（６）で表される化合物について下記に示す条件の下、生理活性測定を行った。リーシュマニア原虫として、Leishmania.major promastigotesを選択し、蛍光蛋白egfp遺伝子を導入したL.major／egfp promastigotesを用いて、上記化合物をサンプルとして下記の条件で成長阻害率を求めた。
（測定手順）
　25℃において96-穴プレートを用いて10 ％ウシ胎児血清25 mMおよびHepes Buffer（ICN Biomedeivals Inc., Aurora, OH）を添加した199培地（日水製薬）中でL.major／egfp　promastigotesを培養した。次に、96穴プレートの各ウェルにL.major／egfp 原虫100 μL（1×106 cell／ｍＬ）及びサンプル溶液100 μL（DMSOに溶解）を加え、25℃で72時間培養を行った。その後、蛍光マイクロプレート読み取り装置（Fluoroscan Ascent FL, 大日本製薬）を用いて励起光485 nm、放射光538 nmでL.major／egfp promastigotesの蛍光シグナルを測定した。また、標準物質としてAmphotericin Bを用いた場合の成長阻害率を100％として、各試料の阻害率を示した。
　図９には測定の結果、求められた成長阻害率を示す。これらの結果により、式（１）～（６）で表される化合物はリーシュマニア原虫の成長を阻害する生理活性特性を有することが示された。特に、式（３）で表される化合物の成長阻害率はAmphotericin Bの成長阻害率と略同等であった。
（２）in vivo抗リーシュマニア活性測定
　上述の手順により単離した式（３）で表される化合物についてin vivoにおける抗リーシュマニア活性を評価するためにリーシュマニア症マウスモデルを用いて治療効果を調べた。
　６週令のマウス（Balb/C, male, １群６頭）にリーシュマニア原虫L.major PM2株　１×１０７の培養promastigotesを感染させた。感染の次の日からマウスに腹腔接種により式（３）で表される化合物を各検体に２００μgずつ投与した。投与スケジュールは１日１回、３週間連続投与とした。また、コントロールとしてAmphotericin Bの投与を行った治療群、何も投与を行わない治療群についても測定を行った。
　マウスの潰瘍サイズを計測した結果を図１０に示す。また、図１１にはマウスの血中の抗体価の変動を示す。また、図１２にはマウスの血液から抽出したＤＮＡを鋳型として用い、原虫遺伝子を標的として実施したＰＣＲにより増幅したＤＮＡ産物を電気泳動した結果を示す。即ち、図１２は、血中における原虫ＤＮＡの検出結果を示し、原虫ＤＮＡが存在する場合には310bpの位置にＰＣＲ産物が観察される。図１２において白色が濃くなるほど原虫ＤＮＡが高い濃度で存在することを示している。一方、310bpが黒色の場合には原虫ＤＮＡが存在しないことを示している。
　これらの結果から式（３）で示される化合物はin vivoにおいてもAmphotericin Bと同様の抗リーシュマニア活性を示すことが分かった。 

Claims (2)

  1. 　式（３）
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     で表される抗リーシュマニア化合物。
  2. 　請求項１記載の抗リーシュマニア化合物またはその薬理上許容される塩を有効成分として含有することを特徴とする抗リーシュマニア薬。
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