WO2009047436A1 - Procédé, dispositif et kit de biologie moléculaire permettant l'extraction du matériel génétique amplifié - Google Patents

Procédé, dispositif et kit de biologie moléculaire permettant l'extraction du matériel génétique amplifié Download PDF

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Definitions

  • the present invention relates to a method, a device and a kit for molecular biology for extracting amplified genetic material from isolated cells on a filter and detecting mutations and levels of gene expression for sensitivity and resistance to targeted therapies. .
  • Some particular blood cells for example tumor cells or trophoblastic cells, are in very low concentration and must be concentrated for cytopathological analysis. However, compared to blood cells, they are larger.
  • the present invention aims to remedy these drawbacks and to respond to this need by making it possible to collect, in conditions compatible with routine laboratory tests, a large proportion of the cellular material, in particular, RNA and DNA, cells considered, in particular good condition.
  • the present invention provides a method for collecting cellular material from particular cells present in a liquid, characterized in that it comprises:
  • the method that is the subject of the present invention makes it possible to collect cellular material quickly and efficiently.
  • the cellular material recovered through the practice of the present invention is the genetic material of the cells.
  • the method which is the subject of the present invention thus makes it possible to recover, directly on the filter and with virtually no loss, the genetic material of rare cells, up to a single isolated cell. A large proportion of the genetic material of the cells in question is thus collected, in good condition, under conditions compatible with routine laboratory tests.
  • the process which is the subject of the present invention comprises, following the lysis step, a step of amplification of the DNA and / or RNA and, during the recovery step, amplified genetic material is recovered from the lysed cells.
  • a uniform amplification is carried out, preserving the quantitative aspect of the DNA and the RNA.
  • the method which is the subject of the present invention, as briefly described above, comprises, in in addition, a detection step, during which the amplified DNA is used as a template to detect at least one gene mutation of sensitivity or resistance to at least one targeted therapy.
  • the method which is the subject of the present invention furthermore comprises a detection step, during which the amplified DNA is used as a matrix to detect a variation in the level of d expression of genes of sensitivity or resistance to targeted therapies.
  • the method which is the subject of the present invention further comprises a detection step during which RNA is converted into cDNA and said cDNA is used to detect the cDNA.
  • a quantitative and real-time PCR (acronym for polymerase chain reaction) is used.
  • At least one pair of sense and antisense primer pairs are used to amplify a predetermined sequence of interest.
  • At least one pair of probes is implemented.
  • At least two probes of a pair of probes are coupled to two different fluorochromes and are defined so that one recognizes the mutated sequence and the other recognizes the normal sequence.
  • At least one pair of primers and a pair of probes are adapted to detect the G12D mutation of the K-ras gene of Erlotinib and Gefitinib resistance.
  • At least one primer comprises at least 80% of the sequence
  • At least one primer comprises at least 80% of the sequence
  • At least one probe comprises at least 80% of the TTGGAGCTGGTGGCGT sequence.
  • At least one probe comprises at least 80% of the TGGAGCTGATGGCGT sequence.
  • At least one pair of primers and a pair of probes are adapted to detect the G12V mutation of the K-ras Erlotinib and Gefitinib resistance gene.
  • At least one primer comprises at least 80% of the sequence
  • At least one primer comprises at least 80% of the sequence
  • At least one probe comprises at least 80% of the TTGGAGCTGGTGGCGT sequence.
  • At least one probe comprises at least 80% of the sequence TTGGAGCTGTTGGCGT.
  • At least one pair of primers and a pair of probes are adapted to detect the G13C mutation of the K-ras Erlotinib and Gefitinib resistance gene.
  • At least one primer comprises at least 80% of the sequence
  • At least one primer comprises at least 80% of the sequence
  • At least one probe comprises at least 80% of the TTGGAGCTGGTGGCGT sequence. According to particular characteristics, at least one probe comprises at least 80% of the sequence TTGGAGCTGGTTGCGT.
  • At least one pair of primers and a pair of probes are adapted to detect the L858R mutation of the EGFR gene of increased sensitivity to Erlotinib and Gefitinib.
  • At least one primer comprises at least 80% of the sequence GCAGCATGTCAAGATCACAGATTT.
  • At least one primer comprises at least 80% of the sequence
  • At least one probe comprises at least 80% of the sequence CAGTTTGGCCAGCCCA.
  • At least one probe comprises at least 80% of the sequence CAGTTTGGCCCGCCCA.
  • the process as briefly described above comprises, in advance of the filtration step, a step of applying a formaldehyde-free fixing buffer to the liquid containing the particular cells.
  • the particular cells sought are specifically hardened without altering the genetic material.
  • the compartment has the general shape of a syringe in which the filter is positioned between the two openings.
  • vacuum suction is applied below the filter. Thanks to these provisions, the filtration is more efficient and faster than in the absence of suction.
  • the compartment is placed on a tube of the Eppendorf type. There is thus a direct passage from the filter to an Eppendorf-type tube.
  • a piston is placed in the upper opening of the compartment, comprising a central punch movable inside the piston.
  • the mobile central punch has a pointed lower end.
  • the pointed lower end has a star shape.
  • pressure is applied to the upper part of the punch to perforate the filter with the tip of the punch.
  • the piston having a means for locking the punch longitudinally, during the recovery step, the punch is pivoted inside the piston to release it from said locking means, before applying a pressure on its upper part.
  • a downward vertical pressure is applied to the piston to pass the contents of the compartment into a tube placed below the compartment.
  • the cellular material of the particular cells can be extracted without deterioration through the perforation of the filter.
  • the contents of the compartment are isolated by plugging the lower opening with a membrane.
  • said membrane is positioned under a bar surrounding the lower opening of each compartment. This ensures the sealing and the maintenance of the lysis liquid above the filter.
  • said membrane is an adhesive membrane.
  • the filter is made of polycarbonate with a hydrophilic surface treatment.
  • the use of such a filter improves the retention rate of the particular cells and reduces the adhesion of the cellular material to be recovered.
  • the filter has a pore diameter centered on 7.5 ⁇ m.
  • the diameters due to the dispersion of the diameters, virtually no pore has a diameter greater than 8 microns.
  • this pore diameter which is less than the pore diameter traditionally used for the cytological analysis filters, makes it possible to remove them, which reduces the number of contiguous pores and avoids the loss of particular cells.
  • the present invention relates to a device for collecting genetic material from particular cells present in a liquid, characterized in that it comprises:
  • a compartment comprising an upper opening and a lower opening, between the two openings being positioned a filter whose micropores have a diameter intermediate between that of said particular cells and that of other cells,
  • a filtration means passing the principal of the liquid and said other cells through the filter
  • the present invention provides a molecular biology kit comprising at least two primers and / or two probes among the following sequences:
  • the kit object of the present invention further comprises a device object of the present invention, as briefly described above.
  • FIG. 1 schematically represents, in perspective, parts of two particular embodiments of the device that is the subject of the the present invention, implemented in a first phase of the process which is the subject of the present invention
  • FIG. 2 schematically represents, in section, parts of the two particular embodiments of the device that is the subject of the present invention, implemented in a first phase of the method that is the subject of the present invention
  • FIG. 3 schematically represents, in perspective, parts of a first particular embodiment of the device that is the subject of the present invention
  • FIG. 4 represents, schematically, in elevation, parts of the first particular embodiment of the device that is the subject of the present invention
  • FIG. 5 represents, schematically, in section, parts of the first particular embodiment of the device that is the subject of the present invention
  • FIG. 6 schematically represents, in perspective, parts of a second particular embodiment of the device that is the subject of the present invention.
  • FIG. 7 schematically represents, in section, parts of the second particular embodiment of the device that is the subject of the present invention.
  • FIG. 8 schematically represents, in perspective, parts of the two particular embodiments of the device that is the subject of the present invention, used in a second phase of the method that is the subject of the present invention, and
  • FIG. 9 represents, in the form of a logic diagram, the steps implemented in a particular embodiment of the method that is the subject of the present invention.
  • the device for collecting cellular material here genetic, comprises (here four) syringe-shaped compartments 105 presenting, each , an upper opening 106 and a lower opening 107.
  • a washer or ring 118 placed in the lower opening 107 retains a filter 115.
  • the filters 115 are micro-perforated and glued on the washers or rings 118 and then inserted at the distal end, that is to say say, at the bottom, of the four syringe-shaped compartments 105.
  • the filter 115 is made of polycarbonate with a hydrophilic surface treatment.
  • the use of such a filter improves the retention rate of the particular cells and reduces the adhesion of the cellular material to be recovered.
  • the filter 115 has, for example, a pore diameter centered on 7.5 ⁇ m. Due to the dispersion of the diameters, practically no pore then has a diameter greater than 8 ⁇ m.
  • each compartment 105 At the small opening, or bottom opening, of each compartment 105 is placed, tightly, a tip (English "tip") 117 to avoid potential contamination of the end of the compartment 105 by splashing from the tank 112.
  • These compartments 105 are assembled by a bar 116, made of plastic, to constitute a single piece.
  • the assembly, consisting of the four compartments 105, the upper bar 116, the four pistons 140 and the bar-cap 120 (described below) is for single use.
  • the compartments 105 are supported by a plate 110 inserted into a drawer holder 111 having a compartment connected to a tank 112 under the lower surface of the plate 110 through which an aspiration can be carried out. performed.
  • An O-ring 113 seals the connection between a nozzle 117 and the plate 110.
  • An O-ring 114 seals the connection between the plate 110 and the slide gate 111. The seal provided by the O-rings 113 and 114 allows aspiration of the contents of the compartments.
  • the compartments 105 are removed from the portion of the device illustrated in FIGS. 1 and 2 and the tips 117 are removed from the lower openings of the compartments 105.
  • a cap strip 120 is inserted at the tip of the compartments 105 in the form of syringes. It is a bar with four perforations that receive the lower end of the compartments.
  • a plastic film is glued to the underside of this plug-bar 120, and constitutes a sealed membrane, preferably adhesive.
  • the contents of the compartment 105 are thus kept away from the environment until the recovery of the cellular material of the particular cells.
  • the bar 116 carrying the compartments 105, associated with the bar of plugs 120, is placed in abutment on a rack 133 made of plastic material. Then, in an oven, the lysis of the cells present in the compartment 105 is carried out in an oven. For this purpose, after the addition of the reagents for the lysis of the cell membranes of the desired cells and the uniform amplification of the DNA or the RNA, the rack 133, now the vertical compartments 105, is transported in an oven. At the outlet of the oven, after cooling, the Eppendorf-type tubes are positioned on the lower support 131 of the gantry 130. The bar 116 carrying the compartments 105, associated with the bar of plugs 120, is positioned on the gantry 130 and place the gantry 130 on the lower support 131.
  • a piston 140 provided with a central axial punch 141 ending in a tip 142.
  • this tip 142 has a star shape, for example to four branches, the point being cruciform.
  • each compartment 105 is positioned an Eppendorf tube 125 held in position by a shelf of the gantry 130.
  • Figures 3 and 4 illustrate the respective successive positions of the piston 140 and the punch 141 during the second phase of the process.
  • the piston 140 and the punch 141 are substantially entirely outside the compartment 106 and the upper part of the punch 141 protrudes vertically above the piston 140.
  • the punch is passed from a safety position in which the punch 141 can not slide longitudinally inside a piston 140 because of a mechanical stop, at a position activation device in which the punch can slide longitudinally inside the piston 140.
  • a vertical force is applied downward on the top of the punch 141, the tip 142 of the punch 141 is lowered into the body of the compartment 106, to the filter 115.
  • the tip 142 first pierces the filter 115 and the membrane 120 to penetrate slightly into the tube 125.
  • the punch 141 is then held in position by contact on the opening bottom of the compartment 105.
  • the Eppendorf type tubes 125 are then removed from the lower support 131, by withdrawing, upwardly from the gantry 130, the compartments 105 and the membrane 120, for analysis of the amplified genetic material, in particular the DNA or the RNA of the cells. of interest, collected in these tubes 125.
  • the plate 110, the rack 133, the gantry 130 and the support 131 are reusable.
  • a support 131 of the gantry 130 is replaced by a support 132 having eight openings instead of four.
  • the four tubes of Eppendorf type 125 are replaced by a bar of eight tubes of Eppendorf type 126 of lower capacity, typically 0.25 ml. Instead of 1, 5 ml.
  • These Eppendorf-type tubes are adapted to another mode of recovery of cellular material making it possible to extract the amplified genetic material directly on the filter but in a smaller volume. Such a volume can then be contained in Eppendorf type tubes directly adapted to a RT-PCR apparatus (acronym for "reverse transcription polymerase chain reaction" for reverse transcription and polymerase chain reaction) in real time. It is noted that when using eight Eppendorf-type tubes, four tubes are used to collect amplified genetic material and four tubes are used to make controls, positive or negative.
  • the method which is the subject of the present invention first comprises, in a known manner, a step 200 of sampling a sample of liquid to be analyzed, for example from blood to which, optionally, a dilution or filtration.
  • a formaldehyde-free fixing buffer is applied in order to fix, that is to say harden, specifically the particular cells sought, without altering their genetic material.
  • this binding buffer is composed of "PBS", a phosphate buffer, saponin for lysing red blood cells of BSA, bovine serum albumin to preserve the morphology of ETDA cells calcium chelating, sodium hydroxide (NaOH ) to adjust the pH to 7.2 and RCL2, a cell fixer that does not alter their genetic material. It is noted that formaldehyde is not used because it induces breaks in the genetic material.
  • step 210 the liquid resulting from step 205 is placed in a compartment 105 which ends with a filter whose micropores have an intermediate diameter between that of the desired cells and that of the other cells of the sample. liquid.
  • step 205 is fixed inside compartment 105 after step 210.
  • step 215 vacuum suction is applied below the filter.
  • the principal of the liquid as well as the cells of diameter smaller than that of the pores of the filter 115 then pass through the filter 115.
  • the desired cells of diameter smaller than that of the pores of the filter 115 are retained above the filter 115, in the compartment 105.
  • the compartments are removed from the plate 110, the tips 117 are removed from the compartments 105 and this remaining content is isolated in the compartment 105 by plugging the lower opening with a cap bar covered, in its lower part with an adhesive membrane 120.
  • the compartments 105 associated on the one hand with the bar of plugs 120 and the bar 116, are inserted into the rack 133, the bar 116 being held by this rack 133.
  • the cells retained on the filter are lysed according to known techniques.
  • the rack 133 maintaining the vertical compartments 105, is kept in an oven for a period of time. known duration.
  • each compartment 105 is placed above an Eppendorf type tube 125, or 126 by positioning this tube on the lower support, 131 or 132 respectively, then the gantry 130 is positioned with the bar 116 compartments 105 and the cap strip 120 on lower portion 131, or 132, respectively.
  • a piston 140 provided with a central axial punch 141 movable relative to the piston 140 and ending, inside the compartment 105, by a tip 142.
  • this tip 142 has a star shape, for example with four branches, the tip then being cruciform.
  • a pressure is applied on the upper part of the punch 141 to lower it along the longitudinal axis of the compartment 105, being guided by the piston 140.
  • the tip 142 of the punch 141 perforates , successively, the filter 115 and the plug or the adhesive membrane 120.
  • a pressure is applied on the rest of the piston 140 so that the remaining contents of the compartment 105 passes through the filter 115 and the plug or the membrane 120, and reaches the Eppendorf-type tube, by opening surrounding the tip 142 of the punch 141.
  • the genetic material of the particular cells is extracted without deterioration through the perforation of the filter.
  • the support, 131 or 132, and the Eppendorf type tubes, 125 or 126 are removed after removal, upwardly of the gantry 130, from the compartments 105 and the membrane 120.
  • steps 265 and 270 an analysis of the genetic material, in particular the DNA or RNA of the desired cells, is carried out in these tubes 125 or 126.
  • the amplified DNA is used as a template to detect the mutations of sensitivity or resistance to targeted therapies.
  • cDNA derived from RNA by RT conversion and amplified is used as a template to detect the level of expression of susceptibility genes. or resistance to targeted therapies.
  • a defined volume of the amplified genetic material, in particular DNA, is taken to detect mutations in sensitivity or resistance to targeted therapies using primer and antisense pairs of primers. pairs of probes and during a quantitative and real-time PCR (acronym for polymerase chain reaction).
  • the principle of the search for mutations of sensitivity or resistance to targeted therapies implemented in the embodiment shown is as follows.
  • the allele discrimination or "SNP genotyping assay” (SNP being the acronym for "single nucleotide polymorphism” for single nucleotide polymorphism) provides information on the presence or absence of a point mutation in a gene.
  • the first step, 265, of allelic discrimination is a real-time quantitative PCR reaction carried out with two primers to amplify the sequence of interest and two probes, for example of the TaqMan (registered trademark) type. One of the probes recognizes the mutated sequence and the other recognizes the normal sequence.
  • the two probes are associated with different fluorochromes, for example "VIC” for the probe hybridizing to the normal sequence and "FAM” for the probe hybridizing to the mutated sequence.
  • the second step, 270 uses an allelic discrimination program measuring the initial fluorescence and the final fluorescence emitted by the FAM or / and VIC fluorochromes. This program makes it possible to distinguish between the different sequences present in each sample:
  • sequences of the following primers and probes are used, for example:
  • a defined volume of the genetic material including RNA converted to cDNA by RT (acronym for "reverse transcription") and amplified is taken to detect the level of gene expression of sensitivity or resistance to targeted therapies using sense and antisense primer pairs and a probe and during a quantitative and real-time polymerase chain reaction (PCR), for example with 50 cycles.
  • PCR polymerase chain reaction
  • the method, the device and the kit object of the present invention make it possible to collect and amplify under a condition compatible with routine laboratory tests, a large proportion of the genetic material of the present invention. cells considered, in good condition, even if the sample has only one desired cell.

Abstract

Le procédé pour recueillir du matériel cellulaire de cellules particulières présentes dans un liquide comporte: une étape (210) d'insertion du liquide dans un compartiment (105) par l'intermédiaire d'une ouverture supérieure (106) du compartiment, ledit compartiment présentant une ouverture inférieure (107), entre les deux ouvertures étant positionné un filtre (115) dont les micropores ont un diamètre intermédiaire entre celui des dites cellules particulières et celui d'autres cellules; une étape (215) de filtration au cours de laquelle le principal du liquide et desdites autres cellules passe à travers le filtre; une étape (230) de lyse et d'amplification de l'ADNet/ou de l'ARN; et une étape (250) de récupération du matériel génétique amplifié des cellules lysées, sur le filtre.

Description

Procédé, dispositif et kit de biologie moléculaire permettant l'extraction du matériel génétique amplifié
La présente invention concerne un procédé, un dispositif et un kit de biologie moléculaire permettant l'extraction du matériel génétique amplifié de cellules isolées sur filtre et la détection de mutations et des niveaux de l'expression de gènes de sensibilité et de résistance aux thérapies ciblées.
Elle s'applique, en particulier à recueillir et à amplifier de façon uniforme l'ADN ou l'ARN de cellules particulières présentes dans un liquide, notamment le sang.
Certaines cellules particulières du sang, par exemple les cellules tumorales ou les cellules trophoblastiques, sont en très faible concentration et doivent être concentrées pour une analyse cytopathologique. Cependant, par rapport aux cellules sanguines, elles sont de plus grande taille.
Il est connu, par exemple du document PCT/FR 2006/000562, d'appliquer un tampon de fixation à base de formaldéhyde à un échantillon sanguin pour fixer les cellules recherchées, puis de faire passer le liquide résultant dans un filtre poreux. Ce filtre est ensuite analysé en laboratoire pour y rechercher les cellules sous microscope. On peut, par la suite, les prélever sur le filtre pour des analyses, par exemple par une analyse génétique. Cependant, cette procédure ne peut faire l'objet d'une reproduction à grande échelle et à un coût raisonnable, du fait du temps, des matériels et de la précision de travail qu'elle implique.
Cela permettrait la conduite d'analyses de biologie moléculaire à la fois sur des cellules tumorales et sur des cellules trophoblastiques.
La présente invention vise à remédier à ces inconvénients et à répondre à ce besoin en permettant de recueillir dans des conditions compatibles avec des examens de laboratoire de routine, une grande proportion du matériel cellulaire, en particulier, ARN et ADN, des cellules considérées, en bon état. A cet effet, selon un premier aspect, la présente invention vise un procédé pour recueillir du matériel cellulaire de cellules particulières présentes dans un liquide, caractérisé en ce qu'il comporte :
- une étape d'insertion du liquide dans un compartiment par l'intermédiaire d'une ouverture supérieure du compartiment, ledit compartiment présentant une ouverture inférieure, entre les deux ouvertures étant positionné un filtre dont les micropores ont un diamètre intermédiaire entre celui des dites cellules particulières et celui d'autres cellules,
- une étape de filtration au cours de laquelle le principal du liquide et des dites autres cellules passe à travers le filtre,
- une étape de lyse des cellules retenues sur le filtre et
- une étape de récupération de matériel cellulaire des cellules lysées, sur le filtre.
Le procédé objet de la présente invention permet de recueillir du matériel cellulaire rapidement et efficacement.
En général, le matériel cellulaire récupéré grâce à la mise en œuvre de la présente invention est le matériel génétique des cellules. Le procédé objet de la présente invention permet ainsi la récupération, directement sur filtre et pratiquement sans perte, du matériel génétique de cellules rares, jusqu'à une seule cellule isolée. On recueille ainsi une grande proportion du matériel génétique des cellules considérées, en bon état, dans des conditions compatibles avec des examens de laboratoire de routine.
Selon des caractéristiques particulières, le procédé objet de la présente invention, tel que succinctement exposé ci-dessus comporte, à la suite de l'étape de lyse, une étape d'amplification de l'ADN et/ou de l'ARN et, au cours de l'étape de récupération, on récupère du matériel génétique amplifié des cellules lysées.
Selon des caractéristiques particulières, au cours de l'étape de lyse et d'amplification, on effectue une amplification uniforme conservant l'aspect quantitatif de l'ADN et de l'ARN.
Selon des caractéristiques particulières, le procédé objet de la présente invention, tel que succinctement exposé ci-dessus, comporte, en outre, une étape de détection, au cours de laquelle l'ADN amplifié est utilisé comme matrice pour détecter au moins une mutation de gêne de sensibilité ou de résistance à au moins une thérapie ciblée.
Selon des caractéristiques particulières, le procédé objet de la présente invention, tel que succinctement exposé ci-dessus, comporte, en outre, une étape de détection, au cours de laquelle l'ADN amplifié est utilisé comme matrice pour détecter une variation de niveau d'expression de gènes de sensibilité ou de résistance aux thérapies ciblées.
Selon des caractéristiques particulières, le procédé objet de la présente invention, tel que succinctement exposé ci-dessus, comporte, en outre, une étape de détection au cours de laquelle on convertit de l'ARN en ADNc et on utilise ledit ADNc pour détecter le niveau d'expression de gène de sensibilité ou de résistance aux thérapies ciblées.
Selon des caractéristiques particulières, au cours de l'étape de détection, on met en œuvre une PCR (acronyme de « polymerase chain reaction ») quantitative et en temps réel.
Selon des caractéristiques particulières, au cours de l'étape de détection, on met en œuvre au moins un couple d'amorces sens et anti-sens pour amplifier une séquence d'intérêt prédéterminé.
Selon des caractéristiques particulières, au cours de l'étape de détection, on met en œuvre au moins un couple de sondes.
Selon des caractéristiques particulières, au moins deux sondes d'un couple de sondes sont couplées à deux fluorochromes différents et sont définis pour que l'une reconnaisse la séquence mutée et que l'autre reconnaisse la séquence normale.
Selon des caractéristiques particulières, au moins un couple d'amorces et un couple de sondes sont adaptés à détecter la mutation G12D du gène K-ras de résistance à l'Erlotinib et au Gefitinib.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une amorce comporte au moins 80 % de la séquence
AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT. Selon des caractéristiques particulières, au moins une amorce comporte au moins 80 % de la séquence
TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une sonde comporte au moins 80 % de la séquence TTGGAGCTGGTGGCGT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une sonde comporte au moins 80 % de la séquence TGGAGCTGATGGCGT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins un couple d'amorces et un couple de sondes sont adaptés à détecter la mutation G12V du gène K-ras de résistance à l'Erlotinib et au Gefitinib.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une amorce comporte au moins 80 % de la séquence
AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une amorce comporte au moins 80 % de la séquence
TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une sonde comporte au moins 80 % de la séquence TTGGAGCTGGTGGCGT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une sonde comporte au moins 80 % de la séquence TTGGAGCTGTTGGCGT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins un couple d'amorces et un couple de sondes sont adaptés à détecter la mutation G13C du gène K-ras de résistance à l'Erlotinib et au Gefitinib.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une amorce comporte au moins 80 % de la séquence
AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une amorce comporte au moins 80 % de la séquence
TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une sonde comporte au moins 80 % de la séquence TTGGAGCTGGTGGCGT. Selon des caractéristiques particulières, au moins une sonde comporte au moins 80 % de la séquence TTGGAGCTGGTTGCGT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins un couple d'amorces et un couple de sondes sont adaptés à détecter la mutation L858R du gène EGFR de sensibilité augmentée à l'Erlotinib et au Gefitinib.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une amorce comporte au moins 80 % de la séquence GCAGCATGTCAAGATCACAGATTT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une amorce comporte au moins 80 % de la séquence
CCTCCTTCTGCATGGTATTCTTTCT.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une sonde comporte au moins 80 % de la séquence CAGTTTGGCCAGCCCA.
Selon des caractéristiques particulières, au moins une sonde comporte au moins 80 % de la séquence CAGTTTGGCCCGCCCA.
Selon des caractéristiques particulières, le procédé tel que succinctement exposé ci-dessus comporte, préliminairement à l'étape de filtration, une étape d'application d'un tampon de fixation sans formaldéhyde au liquide contenant les cellules particulières.
Ainsi, on durcit spécifiquement les cellules particulières recherchées, sans altérer le matériel génétique.
Selon des caractéristiques particulières, au cours de l'étape d'insertion, le compartiment présente la forme générale d'une seringue dans laquelle le filtre est positionné entre les deux ouvertures.
Grâce à ces dispositions, on peut appliquer un piston dans l'ouverture supérieure sans modifier la position du filtre.
Selon des caractéristiques particulières, au cours de l'étape de filtration, on applique une aspiration par dépression en dessous du filtre. Grâce à ces dispositions, la filtration est plus efficace et plus rapide qu'en l'absence d'aspiration.
Selon des caractéristiques particulières, à la suite de l'étape de filtration et avant l'étape de récupération, on place le compartiment sur un tube du type Eppendorf. On réalise ainsi un passage direct depuis le filtre vers un tube du type Eppendorf.
Selon des caractéristiques particulières, avant l'étape de récupération, on positionne, dans l'ouverture supérieure du compartiment, un piston comportant un poinçon central mobile à l'intérieur du piston.
Selon des caractéristiques particulières, le poinçon central mobile présente une extrémité inférieure pointue.
Selon des caractéristiques particulières, l'extrémité inférieure pointue présente une forme en étoile.
Selon des caractéristiques particulières, au cours de l'étape de récupération, on applique une pression sur la partie haute du poinçon pour perforer le filtre avec la pointe du poinçon.
Selon des caractéristiques particulières, le piston comportant un moyen de blocage longitudinal du poinçon, au cours de l'étape de récupération, on fait pivoter le poinçon à l'intérieur du piston pour le dégager dudit moyen de blocage, avant d'appliquer une pression sur sa partie haute.
Selon des caractéristiques particulières, au cours de l'étape de récupération, on applique une pression verticale vers le bas sur le piston pour faire passer le contenu du compartiment dans un tube placé en dessous du compartiment.
Grâce à chacune de ces dispositions, le matériel cellulaire des cellules particulières peut être extrait sans détérioration à travers la perforation du filtre.
Selon des caractéristiques particulières, à la suite de l'étape de filtration et avant l'étape de récupération, on isole le contenu du compartiment en en bouchant l'ouverture inférieure par une membrane.
Selon des caractéristiques particulières, ladite membrane est positionnée sous une barrette entourant l'ouverture inférieure de chaque compartiment. On assure ainsi l'étanchéité et le maintien du liquide de lyse au dessus du filtre.
Selon des caractéristiques particulières, ladite membrane est une membrane adhésive. Grâce à chacune de ces dispositions, le contenu du compartiment est maintenu à l'écart de l'environnement entre la filtration et la récupération du matériel cellulaire des cellules particulières.
Selon des caractéristiques particulières, au cours de l'étape de récupération, on applique une pression sur la partie haute du poinçon pour perforer la membrane isolant le contenu du compartiment.
Selon des caractéristiques particulières, le filtre est réalisé en polycarbonate avec un traitement de surface hydrophile. L'utilisation d'un tel filtre améliore le taux de retenu des cellules particulières et réduit l'adhérence du matériel cellulaire à récupérer.
Selon des caractéristiques particulières, le filtre possède un diamètre de pores centré sur 7,5 μm. Ainsi, du fait de la dispersion des diamètres, pratiquement aucun pore ne possède un diamètre supérieur à 8 μm.
La mise en œuvre de ce diamètre de pores, inférieur au diamètre de pores traditionnellement utilisé pour les filtres d'analyse cytologique, permet de les éloigner, ce qui réduit le nombre de pores jointifs et évite de perdre des cellules particulières.
Selon un deuxième aspect, la présente invention vise un dispositif pour recueillir du matériel génétique de cellules particulières présentes dans un liquide, caractérisé en ce qu'il comporte :
- un compartiment comportant une ouverture supérieure et une ouverture inférieure, entre les deux ouvertures étant positionné un filtre dont les micropores ont un diamètre intermédiaire entre celui des dites cellules particulières et celui d'autres cellules,
- un moyen d'insertion du liquide dans ledit compartiment par l'intermédiaire de l'ouverture supérieure,
- un moyen de filtration faisant passer le principal du liquide et des dites autres cellules à travers le filtre,
- un moyen de lyse des cellules retenues sur le filtre et
- un moyen de récupération de matériel cellulaire des cellules lysées, sur le filtre. Selon un troisième aspect, la présente invention vise un kit de biologie moléculaire comportant au moins deux amorces et/ou deux sondes parmi les séquences suivantes :
- AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT,
- TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- TTGGAGCTGGTGGCGT,
- TGGAGCTGATGGCGT,
- AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT,
- TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- TTGGAGCTGGTGGCGT,
- TTGGAGCTGTTGGCGT,
- AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT,
- TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- TTGGAGCTGGTGGCGT,
- TTGGAGCTGGTTGCGT,
- GCAGCATGTCAAGATCACAGATTT,
- CCTCCTTCTGCATGGTATTCTTTCT,
- CAGTTTGGCCAGCCCA et
- CAGTTTGGCCCGCCCA.
Selon des caractéristiques particulières, le kit objet de la présente invention, tel que succinctement exposé ci-dessus, comporte, en outre, un dispositif objet de la présente invention, tel que succinctement exposé ci- dessus.
Les avantages, buts et caractéristiques de ce dispositif et de ce kit étant similaires à ceux du procédé objet de la présente invention, tel que succinctement exposé ci-dessus, ils ne sont pas rappelés ici.
D'autres avantages, buts et caractéristiques de la présente invention ressortiront de la description qui va suivre, faite, dans un but explicatif et nullement limitatif en regard des dessins annexés, dans lesquels :
- la figure 1 représente, schématiquement, en perspective, des pièces de deux modes de réalisation particuliers du dispositif objet de la présente invention, mises en œuvre dans une première phase du procédé objet de la présente invention,
- la figure 2 représente, schématiquement, en coupe, des pièces des deux modes de réalisation particuliers du dispositif objet de la présente invention, mises en œuvre dans une première phase du procédé objet de la présente invention,
- la figure 3 représente, schématiquement, en perspective, des pièces d'un premier mode de réalisation particulier du dispositif objet de la présente invention,
- la figure 4 représente, schématiquement, en élévation, des pièces du premier mode de réalisation particulier du dispositif objet de la présente invention,
- la figure 5 représente, schématiquement, en coupe, des pièces du premier mode de réalisation particulier du dispositif objet de la présente invention,
- la figure 6 représente, schématiquement, en perspective, des pièces d'un deuxième mode de réalisation particulier du dispositif objet de la présente invention,
- la figure 7 représente, schématiquement, en coupe, des pièces du deuxième mode de réalisation particulier du dispositif objet de la présente invention
- la figure 8 représente, schématiquement, en perspective, des pièces des deux modes de réalisation particuliers du dispositif objet de la présente invention, utilisés dans une deuxième phase du procédé objet de la présente invention et
- la figure 9 représente, sous forme d'un logigramme, des étapes mises en œuvre dans un mode de réalisation particulier du procédé objet de la présente invention.
Comme on l'observe en regard des figures 1 et 2, dans les deux modes de réalisation illustrés dans les figures, le dispositif pour recueillir du matériel cellulaire, ici génétique, comporte des (ici quatre) compartiments en forme de seringue 105 présentant, chacun, une ouverture supérieure 106 et une ouverture inférieure 107. Une rondelle ou bague 118 placée dans l'ouverture inférieure 107 retient un filtre 115. Les filtres 115 sont micro perforés et collés sur les rondelles ou bagues 118 puis insérés à l'extrémité distale, c'est-à-dire au fond, des quatre compartiments en forme de seringue 105. Par exemple, le filtre 115 est réalisé en polycarbonate avec un traitement de surface hydrophile. L'utilisation d'un tel filtre améliore le taux de retenu des cellules particulières et réduit l'adhérence du matériel cellulaire à récupérer. Le filtre 115 présente, par exemple, un diamètre de pores centré sur 7,5 μm. Du fait de la dispersion des diamètres, pratiquement aucun pore ne possède alors un diamètre supérieur à 8 μm.
A la petite ouverture, ou ouverture inférieure, de chaque compartiment 105 est placé, de façon étanche, un embout (en anglais « tip ») 117 afin d'éviter de potentielles contaminations de l'extrémité du compartiment 105 par des éclaboussures provenant du réservoir 112. Ces compartiments 105 sont assemblés par une barrette 116, en matière plastique, pour constituer une pièce unique. L'ensemble, ainsi constitué des quatre compartiments 105, de la barrette supérieure 116, les quatre pistons 140 et la barrette-bouchon 120 (décrite plus loin) est à usage unique.
Dans la première phase du procédé pour recueillir du matériel cellulaire, les compartiments 105 sont supportés par une platine 110 insérée dans un porte-tiroir 111 comportant un compartiment relié à un réservoir 112 sous la surface inférieure de la platine 110 par laquelle une aspiration peut être effectuée. Un joint torique 113 assure l'étanchéité de la liaison entre un embout 117 et la platine 110. Un joint torique 114 assure l'étanchéité de la liaison entre la platine 110 et le porte tiroir 111. L'étanchéité offerte par les joints toriques 113 et 114 permet l'aspiration du contenu des compartiments.
Lors de l'aspiration par le réservoir 112, certaines cellules particulières du liquide présent dans le compartiment 105, de plus fort diamètre, sont retenues par le filtre 115 alors que le principal du liquide et des cellules de petites dimensions sont aspirées en dehors du compartiment 105, à travers le filtre 115. A la fin de la première phase du procédé pour recueillir du matériel cellulaire, les compartiments 105 sont retirés de la partie du dispositif illustrée en figures 1 et 2 et les embouts 117 sont retirés des ouvertures inférieures des compartiments 105. Puis, une barrette-bouchon 120 est insérée à l'embout des compartiments 105 en forme de seringues. Il s'agit d'une barrette avec quatre perforations qui reçoivent l'embout inférieur des compartiments. Un film- plastique est collé à la face inférieure de cette barrette-bouchon 120, et constitue une membrane étanche, préférentiellement adhésive.
Le contenu du compartiment 105 est ainsi maintenu à l'écart de l'environnement jusqu'à la récupération du matériel cellulaire des cellules particulières.
Lors de la deuxième phase du procédé, la barrette 116, portant les compartiments 105, associés à la barrette de bouchons 120, est mise en appui sur un portoir 133 en matière plastique. Puis, on réalise, en étuve, la lyse des cellules présentes dans le compartiment 105. A cet effet, après l'addition des réactifs pour la lyse des membranes cellulaires des cellules recherchées et l'amplification uniforme de l'ADN ou de l'ARN, le portoir 133, maintenant les compartiments 105 verticaux, est transporté dans une étuve. A la sortie de l'étuve, après refroidissement, on positionne les tubes de type Eppendorf sur le support inférieur 131 du portique 130. On positionne la barrette 116 portant les compartiments 105, associés à la barrette de bouchons 120 sur le portique 130 et on place le portique 130 sur le support inférieur 131.
Ensuite, par l'ouverture supérieure 106 de chaque compartiment 105, est inséré un piston 140 muni d'un poinçon axial central 141 se finissant par une pointe 142. Préférentiellement, en coupe, cette pointe 142 présente une forme en étoile, par exemple à quatre branches, la pointe étant alors cruciforme.
En dessous de chaque compartiment 105 est positionné un tube de type Eppendorf 125 retenu en position par une étagère du portique 130.
Les figures 3 et 4 illustrent les positions respectives successives du piston 140 et du poinçon 141 au cours de la deuxième phase du procédé. A gauche de chacune de ces figures 3 et 4, le piston 140 et le poinçon 141 sont pratiquement intégralement en dehors du compartiment 106 et la partie supérieure du poinçon 141 dépasse verticalement au dessus du piston 140.
Puis, par application d'une rotation, on fait passer le poinçon d'une position de sécurité dans laquelle le poinçon 141 ne peut pas coulisser longitudinalement à l'intérieur d'un piston 140 du fait d'une butée mécanique, à une position d'activation dans laquelle le poinçon peut coulisser longitudinalement à l'intérieur du piston 140. Ensuite, on applique une force verticale vers le bas sur le sommet du poinçon 141 , on fait descendre la pointe 142 de ce poinçon 141 dans le corps du compartiment 106, vers le filtre 115. En poursuivant cette descente, la pointe 142 perce d'abord le filtre 115 puis la membrane 120 jusqu'à pénétrer légèrement dans le tube 125. Le poinçon 141 est alors maintenu en position par contact sur l'ouverture inférieure du compartiment 105. Enfin, comme représenté à droite des figures 3 et 4, en maintenant en place le poinçon 141 , on applique une force vers le bas sur le piston 140 afin qu'il repousse le contenu du compartiment 105 vers le tube 125, par l'intermédiaire du trou formé dans le filtre 115 et dans la membrane 120 par la pointe du poinçon 142.
Les tubes de type Eppendorf 125 sont ensuite retirés du support inférieur 131 , par retrait, vers le haut du portique 130, des compartiments 105 et de la membrane 120, pour analyse du matériel génétique amplifié, notamment l'ADN ou l'ARN des cellules d'intérêt, recueillis dans ces tubes 125.
On note que la platine 110, le portoir 133, le portique 130 et le support 131 sont réutilisables.
Dans le deuxième mode de réalisation, illustré en regard des figures 1 , 2, 6 et 7, un support 131 du portique 130 est remplacé par un support 132 présentant huit ouvertures au lieu de quatre. Les quatre tubes de type Eppendorf 125 sont remplacés par une barrette de huit tubes de type Eppendorf 126 de capacité inférieure, typiquement de 0.25 ml. Au lieu de 1 ,5 ml. Ces tubes de type Eppendorf sont adaptés à un autre mode de récupération de matériel cellulaire permettant d'extraire le matériel génétique amplifié directement sur le filtre mais dans un plus petit volume. Un tel volume peut alors être contenu dans des tubes de type Eppendorf directement adaptés à un appareil de RT-PCR (acronyme de « reverse transcription polymerase chain reaction » pour transcription reverse et réaction en chaîne à la polymerase) en temps réel. On note que, lors de l'utilisation de huit tubes de type Eppendorf, quatre tubes servent à recueillir du matériel génétique amplifié et quatre tubes servent à réaliser des témoins, positifs ou négatifs.
Comme on l'observe en figure 9, le procédé objet de la présente invention comporte d'abord, de manière connue, une étape 200 de prélèvement d'un échantillon de liquide à analyser, par exemple de sang auquel on applique, éventuellement, une dilution ou une filtration.
Au cours d'une étape 205, on applique un tampon de fixation sans formaldéhyde afin de fixer, c'est-à-dire durcir, spécifiquement les cellules particulières recherchées, sans altérer leur matériel génétique.
Par exemple, ce tampon de fixation est composé de « PBS », un tampon de phosphate, de saponine pour lyser les globules rouges de BSA, sérum albumine bovine pour préserver la morphologie des cellules de l'ETDA chélateur de calcium, de soude (NaOH) pour ajuster le pH à 7,2 et de RCL2, un fixateur de cellules n'altérant pas leur matériel génétique. On note que le formaldéhyde n'est pas utilisé car il induit des cassures dans le matériel génétique.
Au cours d'une étape 210, on place le liquide résultant de l'étape 205 dans un compartiment 105 qui se termine par un filtre dont les micropores ont un diamètre intermédiaire entre celui des cellules recherchées et celui des autres cellules de l'échantillon de liquide. En variante, on effectue la fixation de l'étape 205 à l'intérieur du compartiment 105, après l'étape 210.
Au cours d'une étape 215, on applique une aspiration par dépression en dessous du filtre. Le principal du liquide ainsi que les cellules de diamètre inférieur à celui des pores du filtre 115 traversent alors le filtre 115. En revanche, les cellules recherchées de diamètre inférieur à celui des pores du filtre 115 sont retenues au dessus du filtre 115, dans le compartiment 105.
Au cours d'une étape 220, on retire les compartiments de la platine 110, on retire les embouts 117 des compartiments 105 et on isole ce contenu restant dans le compartiment 105 en bouchant l'ouverture inférieure par une barrette-bouchon recouverte, dans sa partie inférieure d'une membrane adhésive 120.
Au cours d'une étape 225, les compartiments 105, associés d'une part à la barrette de bouchons 120 et à la barrette 116, sont insérés dans le portoir 133, la barrette 116 étant maintenue par ce portoir 133.
Au cours d'une étape 230, on lyse les cellules retenues sur le filtre, selon des techniques connues. A cet effet, après l'addition des réactifs pour la lyse des membranes cellulaires des cellules recherchées et l'amplification uniforme du matériel génétique conservant l'aspect quantitatif, le portoir 133, maintenant les compartiments 105 verticaux, est maintenu dans une étuve pendant une durée connue.
Après la sortie de l'étuve, au cours d'une étape 232, on retire du portoir 133, la barrette 116, les compartiments 105 et la barrette de bouchons 120 et on les place sur le portique 130.
Au cours d'une étape 235, on place chaque compartiment 105 au dessus d'un tube du type Eppendorf 125, ou 126 en positionnant ce tube sur le support inférieur, 131 ou 132 respectivement, puis on positionne le portique 130 avec la barrette 116, les compartiments 105 et la barrette de bouchons 120 sur la partie inférieure 131 , ou 132, respectivement.
Au cours d'une étape 240, par l'ouverture supérieure 106 de chaque compartiment 105, est inséré un piston 140 muni d'un poinçon axial central 141 mobile par rapport au piston 140 et se finissant, à l'intérieur du compartiment 105, par une pointe 142. Préférentiellement, en coupe transversale, cette pointe 142 présente une forme en étoile, par exemple à quatre branches, la pointe étant alors cruciforme.
Au cours d'une étape 245, on tourne le poinçon pour le sortir de sa position de sécurité. Puis, on applique une pression sur la partie haute du poinçon 141 pour le faire descendre le long de l'axe longitudinal du compartiment 105, en étant guidé par le piston 140. Au cours de ce déplacement longitudinal, la pointe 142 du poinçon 141 perfore, successivement, le filtre 115 et le bouchon ou la membrane adhésive 120. Au cours d'une étape 250, on applique une pression sur le reste du piston 140 pour que le contenu restant du compartiment 105 passe à travers le filtre 115 et le bouchon ou la membrane 120, et atteigne le tube de type Eppendorf, par l'ouverture entourant la pointe 142 du poinçon 141.
Ainsi, le matériel génétique des cellules particulières est extrait sans détérioration à travers la perforation du filtre.
Au cours d'une étape 255, le support, 131 ou 132, et les tubes de type Eppendorf, 125 ou 126, sont retirés après retrait, vers le haut du portique 130, des compartiments 105 et de la membrane 120.
Au cours d'étapes 265 et 270, on effectue une analyse du matériel génétique, notamment l'ADN ou l'ARN des cellules recherchées, recueilli dans ces tubes 125 ou 126. L'ADN amplifié est utilisé comme matrice pour détecter les mutations de sensibilité ou de résistance aux thérapies ciblées. De plus, ou alternativement, l'ADNc (en anglais « cDNA », « c » signifiant « complémentaire ») provenant de l'ARN par conversion par RT et amplifié est utilisé comme matrice pour détecter le niveau d'expression de gènes de sensibilité ou de résistance aux thérapies ciblées.
Un volume défini du matériel génétique amplifié, notamment l'ADN, est prélevé pour détecter les mutations de sensibilité ou de résistance aux thérapies ciblées à l'aide de couples d'amorces (en anglais « primers ») sens et anti-sens et de couples de sondes et au cours d'une PCR (acronyme de « polymerase chain reaction ») quantitative et en temps réel.
Le principe de la recherche de mutations de sensibilité ou de résistance aux thérapies ciblées mis en œuvre dans le mode de réalisation représenté est le suivant. La discrimination allélique ou « SNP genotyping assay » (SNP étant l'acronyme de « single nucleotide polymorphism » pour polymorphisme nucleotide simple) permet de renseigner sur la présence ou l'absence d'une mutation ponctuelle au niveau d'un gène. La première étape, 265, d'une discrimination allélique est une réaction de PCR quantitative en temps réel réalisée avec deux amorces pour amplifier la séquence d'intérêt et deux sondes, par exemple de type TaqMan (marque déposée). L'une des sondes reconnaît la séquence mutée et l'autre reconnaît la séquence normale. Les deux sondes sont associées à des fluorochromes différents, par exemple « VIC » pour la sonde s'hybridant à la séquence normale et « FAM » pour la sonde s'hybridant à la séquence mutée. La seconde étape, 270, fait appel à un programme de discrimination allélique mesurant la fluorescence initiale et la fluorescence finale émise par les fluorochromes FAM ou/et VIC. Ce programme permet de faire la distinction entre les différentes séquences présentes dans chaque échantillon :
- une augmentation de la fluorescence uniquement en VIC indique un profil homozygote pour la séquence normale,
- une augmentation de la fluorescence uniquement en FAM indique un profil homozygote pour la séquence mutée,
- une augmentation de la fluorescence à la fois en VIC et en FAM indique un profil hétérozygote.
Pour la détection de mutations, on met en œuvre, par exemple, les séquences des amorces et sondes suivantes (sens et anti-sens, 5' à 3') :
Pour la mutation G12D du gène K-ras de résistance à l'Erlotinib et au Gefitinib :
- amorce sens (ou « forward ») AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT, amorce anti-sens (ou « reverse »)
TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- sondes « sauvage », couleur « VIC » TTGGAGCTGGTGGCGT,
- sonde « muté », couleur « FAM » TGGAGCTGATGGCGT.
Pour la mutation G12V (codant « 12 ») du gène K-ras de résistance à l'Erlotinib et au Gefitinib :
- amorce sens (ou « forward ») AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT, amorce anti-sens (ou « reverse »)
TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- sondes « sauvage », couleur « VIC » TTGGAGCTGGTGGCGT,
- sonde « muté », couleur « FAM » TTGGAGCTGTTGGCGT.
Pour la mutation G13C du gène K-ras de résistance à l'Erlotinib et au Gefitinib :
- amorce sens (ou « forward ») AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT, amorce anti-sens (ou « reverse »)
TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- sondes « sauvage », couleur « VIC » TTGGAGCTGGTGGCGT,
- sonde « muté », couleur « FAM » TTGGAGCTGGTTGCGT.
Pour la mutation L858R du gène EGFR de sensibilité augmentée à l'Erlotinib et au Gefitinib :
- amorce sens (ou « forward ») GCAGCATGTCAAGATCACAGATTT,
- amorce anti-sens (ou « reverse ») CCTCCTTCTGCATGGTATTCTTTCT,
- sondes « sauvage », couleur « VIC » CAGTTTGGCCAGCCCA,
- sonde « muté », couleur « FAM » CAGTTTGGCCCGCCCA.
La signification de « sens » et « anti-sens », et « 5' à 3' » est bien connue de l'homme du métier. Les sondes s'apparient entre les deux amorces et révèlent la présence ou l'absence d'une mutation du fait de leur couleur de fluorescence associée. Pour mémoire, la couleur « FAM » est dans les bleus et la couleur « VIC » est dans les verts. Une mesure de l'intensité de la fluorescence dans chacune de ces couleurs, par l'appareil de PCR, permet de discriminer les gènes normaux, les gènes homozygotes mutés et les gènes hétérozygotes mutés. Par exemple, on réalise 50 cycles d'amplification.
Dans d'autres modes de réalisation, un volume défini du matériel génétique notamment l'ARN converti en ADNc par RT (acronyme de « reverse transcription ») et amplifié est prélevé pour détecter le niveau d'expression de gène de sensibilité ou de résistance aux thérapies ciblées à l'aide de couples d'amorces sens et anti-sens et d'une sonde et au cours d'une PCR (acronyme de « polymerase chain reaction ») quantitative et en temps réel, par exemple avec 50 cycles.
Comme on le comprend à la lecture de la description, le procédé, le dispositif et le kit objets de la présente invention permettent de recueillir et d'amplifier dans des conditions compatibles avec des examens de laboratoire de routine, une grande proportion du matériel génétique des cellules considérées, en bon état, même si l'échantillon ne comporte qu'une seule cellule recherchée.

Claims

REVENDICATIONS
1 - Procédé pour recueillir du matériel cellulaire de cellules particulières présentes dans un liquide, caractérisé en ce qu'il comporte :
- une étape (210) d'insertion du liquide dans un compartiment (105) par l'intermédiaire d'une ouverture supérieure (106) du compartiment, ledit compartiment présentant une ouverture inférieure (107), entre les deux ouvertures étant positionné un filtre (115) dont les micropores ont un diamètre intermédiaire entre celui des dites cellules particulières et celui d'autres cellules,
- une étape (215) de filtration au cours de laquelle le principal du liquide et des dites autres cellules passe à travers le filtre,
- une étape (230) de lyse des cellules retenues sur le filtre et
- une étape (245, 250) de récupération de matériel cellulaire des cellules lysées, sur le filtre.
2 - Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce qu'il comporte, à la suite de l'étape de lyse, une étape d'amplification de l'ADN et/ou de l'ARN et, au cours de l'étape de récupération, on récupère du matériel génétique amplifié des cellules lysées.
3 - Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que, au cours de l'étape d'amplification, on effectue une amplification uniforme conservant l'aspect quantitatif de l'ADN ou de l'ARN.
4 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il comporte, en outre, une étape (265, 270) de détection, au cours de laquelle l'ADN amplifié est utilisé comme matrice pour détecter au moins une mutation de gêne de sensibilité ou de résistance à au moins une thérapie ciblée.
5 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il comporte, en outre, une étape (265, 270) de détection, au cours de laquelle l'ADN amplifié est utilisé comme matrice pour détecter une variation de niveau d'expression de gènes de sensibilité ou de résistance aux thérapies ciblées.
6 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il comporte, en outre, une étape (265, 270) de détection, au cours de laquelle on convertit de l'ARN en ADNc et on utilise ledit ADNc pour détecter le niveau d'expression de gène de sensibilité ou de résistance aux thérapies ciblées.
7 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 4 à 6, caractérisé en ce que, au cours de l'étape (265, 270) de détection, on met en œuvre une PCR (acronyme de « polymerase chain reaction ») quantitative et en temps réel.
8 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 4 à 7, caractérisé en ce que, au cours de l'étape (265, 270) de détection, on met en œuvre au moins un couple d'amorces sens et anti-sens pour amplifier une séquence d'intérêt prédéterminé.
9 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 4 à 8, caractérisé en ce que, au cours de l'étape (265, 270) de détection, on met en œuvre au moins un couple de sondes.
10 - Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'au moins deux sondes d'un couple de sondes sont couplées à deux fluorochromes différents et sont définis pour que l'une reconnaisse une séquence mutée et que l'autre reconnaisse une séquence normale.
11 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 7 ou 8 et une des revendications 8 ou 9, caractérisé en ce qu'au moins un couple d'amorces et un couple de sondes sont adaptés à détecter l'une des mutations suivantes :
- la mutation G12D du gène K-ras de résistance à l'Erlotinib et au Gefitinib,
- la mutation G12V du gène K-ras de résistance à l'Erlotinib et au Gefitinib,
- la mutation G13C du gène K-ras de résistance à l'Erlotinib et au Gefitinib et - la mutation L858R du gène EGFR de sensibilité augmentée à l'Erlotinib et au Gefitinib.
12 - Procédé selon la revendication 11 , caractérisé en ce qu'au moins deux amorces et/ou deux sondes sont parmi les séquences suivantes :
- AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT,
- TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- TTGGAGCTGGTGGCGT,
- TGGAGCTGATGGCGT,
- AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT,
- TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- TTGGAGCTGGTGGCGT,
- TTGGAGCTGTTGGCGT,
- AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT,
- TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- TTGGAGCTGGTGGCGT,
- TTGGAGCTGGTTGCGT,
- GCAGCATGTCAAGATCACAGATTT,
- CCTCCTTCTGCATGGTATTCTTTCT,
- CAGTTTGGCCAGCCCA et
- CAGTTTGGCCCGCCCA.
13 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 12, caractérisé en ce que, avant l'étape (245, 250) de récupération, on positionne, dans l'ouverture supérieure (106) du compartiment (105), un piston (140) comportant un poinçon (141 ) central mobile à l'intérieur du piston.
14 - Procédé selon la revendication 13, caractérisé en ce que le poinçon (141 ) central mobile présente une extrémité inférieure (142) pointue présentant une forme en étoile.
15 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, caractérisé en ce que, à la suite de l'étape (215) de filtration et avant l'étape (245, 250) de récupération, on isole le contenu du compartiment (105) en en bouchant l'ouverture inférieure (107) par une membrane, ladite membrane étant positionnée sous une barrette (120) entourant l'ouverture inférieure (107) de chaque compartiment (105).
16 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, caractérisé en ce que le filtre (115) est réalisé en polycarbonate traité avec un traitement de surface hydrophile.
17 - Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 16, caractérisé en ce que le filtre (115) possède un diamètre de pores centré sur 7,5 μm.
18 - Dispositif pour recueillir du matériel génétique de cellules particulières présentes dans un liquide, caractérisé en ce qu'il comporte :
- un compartiment (105) comportant une ouverture supérieure (106) et une ouverture inférieure (107), entre les deux ouvertures étant positionné un filtre (115) dont les micropores ont un diamètre intermédiaire entre celui des dites cellules particulières et celui d'autres cellules,
- un moyen d'insertion du liquide dans ledit compartiment par l'intermédiaire de l'ouverture supérieure,
- un moyen (111 , 112) de filtration faisant passer le principal du liquide et des dites autres cellules à travers le filtre,
- un moyen de lyse des cellules retenues sur le filtre et
- un moyen de récupération de matériel cellulaire des cellules lysées, sur le filtre.
19 - Kit de biologie moléculaire pour mise en œuvre dans un dispositif selon la revendication 18, caractérisé en ce qu'il comporte au moins deux amorces et/ou deux sondes parmi les séquences suivantes :
- AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT,
- TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- TTGGAGCTGGTGGCGT,
- TGGAGCTGATGGCGT,
- AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT,
- TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- TTGGAGCTGGTGGCGT,
- TTGGAGCTGTTGGCGT, - AGGCCTGCTGAAAATGACTGAATAT,
- TCGTCCACAAAATGATTCTGAATTAGCT,
- TTGGAGCTGGTGGCGT,
- TTGGAGCTGGTTGCGT,
- GCAGCATGTCAAGATCACAGATTT,
- CCTCCTTCTGCATGGTATTCTTTCT,
- CAGTTTGGCCAGCCCA et
- CAGTTTGGCCCGCCCA.
20 - kit selon la revendication 19, caractérisé en ce qu'il comporte,n dispositif selon la revendication 18.
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