WO2007132928A1 - 抗体希釈用組成物 - Google Patents
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- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
Definitions
- the present invention relates to an antibody dilution composition capable of improving the accuracy of immunological analysis, a method for producing and using the same, and an immunological analysis kit including the antibody dilution composition.
- Immunostaining is a method for investigating whether a target protein or target antibody is present in a sample (eg, blood or cell lysate). Research in a wide range of fields such as immunology and molecular biology It is used in. In addition, the amount of the target protein and the presence or absence of activation can be examined by the immunostaining.
- the experimental materials such as antibodies and serum used are diluted with buffer.
- the most important problem in detecting the target protein is the phenomenon that non-specific bands other than the Pand corresponding to the target protein appear. This phenomenon is also called “background goes up”.
- a blocking solution for example, Plocace (registered trademark) Catalog number: UK-B25 (manufactured by Sumitomo Dainippon Pharma Co., Ltd.)
- a method of diluting an antibody using a commercially available buffer for example, DAKO Antibody Diluent with Background Reducing Components Catalog number: S3022 (Dako Cytomation)
- pandas often appear in immunostaining even when these conventional methods are used.
- Patent Document 1 discloses a composition for promoting an immune reaction used for immunological measurement.
- Patent Document 2 discloses a buffer solution for stabilizing an antigen.
- Patent Document 3 discloses a stabilizing solution for proteins and peptides.
- Patent Document 1 International Publication No. 2005/121790 Pamphlet
- Patent Document 2 Special Table 2001-517799
- Patent Document 3 Japanese Patent Publication No. Hei 10-500704
- An object of the present invention is to provide an antibody dilution composition for improving the accuracy of immunological analysis and / or suppressing non-specific detection in immunological analysis in view of the above-described circumstances.
- the present invention includes the following.
- An antibody dilution composition for improving the accuracy of immunoassay and / or suppressing nonspecific detection in immunoassay comprising agar, carrageenan or a mixture thereof object.
- composition for diluting an antibody according to (1) further comprising sugar and gelatin.
- the antibody dilution composition according to (1) comprising one or more components selected from the group consisting of a salt, a chelating agent, a buffer and a nonionic surfactant.
- (1 0) concentration of the sugar is from 0.0017 to 0., Characterized in that 8 is 3 molar, (3) an antibody dilution composition.
- An immunological analysis method comprising using the antibody dilution composition according to any one of (1) to (19).
- An immunological analysis kit comprising the antibody dilution composition according to any one of (1) to (19) and an antibody.
- step (ii) incubating the mixture produced in step (i) under heating;
- a method for producing an antibody dilution composition is provided.
- step (iv) sugar is added together with carrageenan and stirred.
- FIG. 1 shows the results of Western plotting using the antibody dilution composition containing agar according to the present invention (left figure: conventional method, right figure: agar-containing antibody dilution composition according to the present invention). use).
- FIG. 2 shows the use of the antibody dilution composition containing carrageenan according to the present invention. Estan blotting results are shown.
- the left and right diagrams of A show the results of using the conventional method and the results of using the composition for diluting antibody containing carrageenan.
- the left and right diagrams of B show the results of using the conventional method and the results of using the carragionan-containing antibody dilution composition, respectively.
- C shows the result of using the antibody dilution composition of the present invention that does not contain carrageenan (left figure) and the result of using the antibody dilution composition of the present invention that contains carrageenan (right figure). Indicates.
- the left and right diagrams of D show the results using the conventional method and the results using the composition for diluting antibody containing carrageenan.
- FIG. 3 shows the results of immunohistochemical staining of lung tissue using an antibody dilution composition containing carrageenan according to the present invention
- A conventional method
- B composition for antibody dilution containing carrageenan
- C negative control using rabbit IgG as the primary antibody (use composition for dilution of antibody containing carrageenanane)
- D hematoxylin eosin staining
- FIG. 4 shows the results of immunohistochemical staining of kidney tissue using an antibody dilution composition containing carrageenan according to the present invention
- A conventional method
- B composition for antibody dilution containing carrageenan
- C negative control using goat IgG as the primary antibody (using carrageenan-containing antibody dilution composition)
- D hematoxylin eosin staining).
- the antibody dilution composition according to the present invention is a composition containing agar, carrageenan or a mixture thereof.
- the antibody dilution composition according to the present invention is used for diluting an antibody used for immunological analysis. If the antibody dilution composition according to the present invention is used, the accuracy of immunological analysis can be improved.
- non-specific detection of proteins other than the target protein (antigen) can be suppressed in immunological analysis.
- the antibody dilution composition according to the present invention in Western blotting or immunostaining, the appearance of non-specific panda can be suppressed.
- composition of the present invention in addition to agar or carrageenan, one or more components selected from the group consisting of salts, chelating agents, buffers and nonionic surfactants are particularly preferred. Or contains all these components. Others, for example, sodium azide, glycerol, glycerol, glycerol, glycerol, glycerol, glycerol, glycerol, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium azide, glycerol, sodium
- ushi serum albumin BSA
- 2-mercaptoethanol dithiothreitol
- gelatin sugar, etc.
- the sugar examples include sucrose and cellulose, and particularly preferably includes sucrose.
- the addition of sugar is effective in increasing the solubility of carrageenan.
- Addition of gelatin is effective for improving the versatility of the composition.
- the sugar concentration in the mixed solution is adjusted to 0.0001 to 0.83 molar concentration, preferably 0.005 to 0.33 molar concentration.
- the concentration of gelatin in the mixed solution is adjusted to be 0 ⁇ 01 to 2% by weight, preferably 0.05 to 1% by weight.
- water used for mixing the components of the composition of the present invention for example, double-distilled water (D2, distilled water, sterilized water, etc.) can be used.
- agar used examples include special grade powder agar, powder agar, powder agar, thread agar, square agar, etc. Special grade powder agar is particularly preferable.
- the concentration of agar in the mixture is adjusted to 0.1 to 5% by weight, preferably 0.2 to 3% by weight.
- the concentration of color Jinan in the mixed solution is from 0.01 to 5 weight 0/0, preferably from 0.03 to 2 wt%.
- the form of the salt is not limited, and examples thereof include sodium chloride (NaCl), potassium chloride, magnesium chloride, calcium chloride and the like, and NaCl is particularly preferable.
- the concentration of the salt in the mixed solution is adjusted to 10 mM to 2 M, preferably 100 mM to 1.5 M.
- chelating agents include: ethylene: diamintetraacetic acid (EDTA), hydroxyl acetylenic diamine triacetic acid (HEDTA), dihydroxyxetyl diethylenediamine diacetic acid (DHEDDA), diethylenetriaminepentaacetic acid (DTPA) EDTA metal salts and the like, and EDTA is particularly preferable.
- EDTA ethylene: diamintetraacetic acid
- HEDTA hydroxyl acetylenic diamine triacetic acid
- DHEDDA dihydroxyxetyl diethylenediamine diacetic acid
- DTPA diethylenetriaminepentaacetic acid
- EDTA metal salts and the like and EDTA is particularly preferable.
- EDTA it is preferable to use, for example, ⁇ 7.0 ⁇ 8.5 to 8.5, especially ⁇ 8.
- the concentration of the chelating agent in the mixture is lmM to 100mM, preferably 3mM to 50mM.
- buffers include tris (tris (hydroxymethyl) aminomethan; hereinafter referred to as “Ttis”), glycine, phthalic acid, citrate, succinate, acetic acid, Examples thereof include phosphoric acid, boric acid, carbonic acid, and a good buffer (MES, PIPES, MOPS, HEPES, Bistris, etc.), and Tris is particularly preferable.
- Tris it is preferable to use, for example, ⁇ 7 ⁇ 0 to 8.0, especially ⁇ 7.4.
- the concentration of the buffer in the mixed solution is adjusted to 10 mM to 1 M, preferably 30 mM to 600 mM.
- nonionic surfactants for example, Tween 20 (Polyoxyethylene Sorbitan Monolaurate), Triton X-100 (Octylphenolpoly (ethylene glycolether)) Chileen cornoreetenore))), Tween 80, Brij 35, Triton X-114, Nonidet P-40 (NP-40), Octyl b-glucoside, etc., especially Tween 20 or Triton X-100 are preferred.
- the concentration of the nonionic surfactant in the mixture is 0.01 to 1% by volume, and preferably 0.03 to 0.6% by volume.
- a method for producing the antibody dilution solution of the present invention is provided.
- the method for producing an antibody dilution composition of the present invention containing agar first, the mixture containing agar is stirred.
- the temperature is, for example, 10 to 30 ° C, preferably 15 to 20 ° C.
- the stirring speed is, for example, 200 to 1500 rpm, preferably 600 to 800 rpm.
- the stirring time is, for example, 1 to 6 hours, preferably 1 to 2 hours.
- the mixed solution after stirring is incubated.
- the temperature is, for example, 35-40 ° C, preferably 37 ° C.
- the incubation time is, for example, 5-24 hours, preferably 8-12 hours.
- the method for producing the antibody dilution composition of the present invention containing carrageenan comprises (i) one or more components selected from the group consisting of a salt, a chelating agent, a buffer solution and a nonionic surfactant. Stirring the mixed solution in water containing: (ii) incubating the mixed solution produced in step (i) under heating; (ii i) cooling the mixed solution; and (iv) Adding carrageenan and stirring.
- step (i) in water containing all components (eg, gelatin, salt, chelating agent, buffer, nonionic surfactant, etc.) except for force radinan and sugar (if included) Stir the mixture.
- the temperature during stirring is, for example, 10-30 ° C, preferably 15-20 ° C.
- the stirring speed is, for example, 200 to 1500 rpm, preferably 600 to 800 rpm.
- Ma The stirring time is, for example, 1 to 6 hours, preferably 1 to 2 hours.
- the mixture is cooled to 4 ° C to 30 ° C, preferably 4 ° C to 20 ° C, most preferably 4 ° C to 12 ° C, and then the carrageenan is added in step (iv).
- the stirring speed in the step (iv) is, for example, 200 to 1500 rpm, preferably 600 to 800 rpm, and the stirring time is, for example, 1 to 6 hours, preferably 1 to 2 hours.
- the mixed solution in the step (i) contains gelatin. At that time, the concentration of gelatin contained in the mixed solution is 0.01-2% by weight, preferably 0.05-! weight. / Adjust to 0 . This improves the versatility of the composition liquid.
- step (iv) sugar is added together with carrageenan and stirred.
- the amount of sugar added is from 0.0019 to 0.83 molar, preferably from 0.005 to 0.33 molar.
- the antibody dilution composition of the present invention containing a mixture of agar and carrageenan is produced in the same manner as above except that agar is added and stirred with carrageenan in the step (iv). Can do.
- quantities of ingredients can be added at this time is as follows: Karaji one Nan, 0.001 to 5 wt%, preferably from 0.005 to 1 weight 0/0; agar, from 0.001 to 3 wt%, preferably 0.015 to 1 weight 0/0; gelatin, 0.005 to 2 wt%, preferably from 0.01 to 1% by weight;. sugar, 0.00017 to 0 83 molar, preferably 0.00083 to 0.165 molarity.
- the antibody dilution composition according to the present invention is used in immunological analysis, for example, D2W, distilled water, sterilized water, or the like that is appropriately diluted may be used.
- concentration of agar or carrageenan in the antibody dilution composition at the time of use is, for example, 0.1 to 0.5% by weight, preferably 0.2 to 0.3% by weight, particularly preferably 0.28% by weight.
- the salt concentration in the antibody dilution composition at the time of use is, for example, 50 mM to 200 mM, Preferably it is 100 mM-150 mM, Most preferably, it is 120 mM.
- the concentration of the chelating agent in the antibody dilution composition at the time of use is, for example, ImM to 8 mM, preferably 3 raM to 5 mM, particularly preferably 4 mM.
- the concentration of the buffer in the antibody dilution composition at the time of use is, for example, 10 mM to 80 mM, preferably 30 mM to 60 mM, and particularly preferably 50 mM.
- the concentration of the nonionic surfactant in the antibody dilution composition at the time of use is, for example, 0.01 to 1% by volume, preferably 0.03 to 0.06% by volume, particularly preferably 0.05% by volume. %.
- the composition for antibody dilution according to the present invention is used for dilution of an antibody used for immunological analysis.
- the antibody to be diluted with the antibody dilution composition according to the present invention is not particularly limited.
- monoclonal antibody, polyclonal antibody, antibody fragment (for example, Fab, F (ab ′) 2 ), antiserum and ascites Including monoclonal antibodies.
- the antibody dilution composition according to the present invention can be used for diluting a labeled antibody (for example, fluorescently labeled antibody, enzyme-labeled antibody).
- Examples of the antibody dilution rate include 2 times, 5 times, 10 times, 50 times, 100 times, 200 times, 500 times, 1000 times, 5000 times, and 10,000 times.
- immunological analysis examples include immunostaining, immune cell staining, immunohistochemical staining, enzyme immunoassay (for example, ELISA, EIA), radioimmunoassay, fluorescent antibody method, and flow cytometry.
- enzyme immunoassay for example, ELISA, EIA
- radioimmunoassay for example, fluorescent antibody method
- flow cytometry for example, the primary antibody and / or the secondary antibody diluted with the composition for antibody dilution of the present invention against the membrane after completion of Western plotting or in the immunological analysis of a biological tissue or cell.
- Non-specific detection can be suppressed by using color development or immunostaining.
- the antibody dilution composition according to the present invention can also be used for antibody storage.
- the antibody dilution composition according to the present invention can be provided as an immunological analysis kit together with the antibody.
- the kit the antibody dilution composition according to the present invention and the antibody can be provided in the same container or in separate containers.
- the antibody includes the antibodies exemplified above.
- Example 1 Western blotting using an antibody dilution composition containing agar according to the present invention
- protein A 1 ⁇ 10 8 C0S-1 cell lysate
- IX 10 8 MCF-7 cell lysate hereinafter referred to as “protein B”.
- a mouse monoclonal anti-Phospho-Estrogen Receptor a (Serl8) antibody (# 2511) manufactured by Cell Signaling was used.
- An antibody dilution composition containing agar according to the present invention was prepared as follows.
- the mixture was then stirred at 17 ° C for 1 hour at 700 rpm.
- the mixed solution after stirring was incubated at 37 ° C for 10 hours to prepare a 10-fold concentration antibody dilution composition at the time of use.
- the same composition was diluted 1-fold with D2W to prepare an antibody dilution composition.
- Electrophoresis, Western plotting and color development were performed as follows. 3-1. Electrophoresis and Western blotting
- Protein A 10 i l and Protein B 10 i l were mixed with 10 / l sample buffer (20% glycerol, 6% SDS, 10% 2-mercaptoethanol), respectively, and incubated at 95 ° C for 10 minutes.
- the membrane obtained after Western blotting in Section 3-1 was washed with TBS (containing 0.1% Tween-20), and then subjected to color development.
- the washed membrane was immersed in a blocking buffer (Block Ace: manufactured by Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd.) and incubated at 37 ° C for 1 hour (blocking).
- a blocking buffer (Block Ace: manufactured by Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd.) and incubated at 37 ° C for 1 hour (blocking).
- the membrane was washed with TBS (containing 0.1% Tween-20), followed by primary antibody reaction.
- TBS containing 0.1% Tween-20
- primary antibody reaction a mouse monoclonal anti-Phospho-Estrogen Receptor a (Serll8) antibody diluted 1000 times with Dako Cytomation DAKO Antibody Diluent with Background Reducing Components (Catalog number: S3022) was used.
- the primary antibody reaction was performed by incubation at 4 ° C for 10 hours.
- the membrane was washed with TBS (containing 0.1% Tween-20), and a secondary antibody reaction was performed.
- TBS containing 0.1% Tween-20
- an HRP-labeled anti-mouse IgG antibody (Amersham) diluted 1000-fold with Dako Cytomation's Secret Antibody Diluent with Background Reducing Components was used.
- the secondary antibody reaction was performed by incubation at 20 ° C for 15 minutes.
- the membrane was washed with TBS (containing 0.1% Tween-20).
- TBS containing 0.1% Tween-20
- the membrane was developed with an Amersham ECL-plus kit. After color development, the membrane was exposed to Hyperfilm ECL manufactured by Amersham and analyzed.
- Phospho-Estrogen Receptor CK (Serll 8 ) antibody was used. Primary antibody reaction at 4 ° C
- the membrane was washed with TBS (containing 0.1% T Ween -20) and subjected to a secondary antibody reaction.
- TBS containing 0.1% T Ween -20
- an HRP-labeled anti-mouse IgG antibody (Amersham) diluted 1000 times with the antibody dilution composition prepared in Section 2 was used.
- the secondary antibody reaction was performed by incubation at 20 ° C for 15 minutes.
- the membrane was washed with TBS (containing 0.1% Tween-20), and the membrane was developed using an Amersham ECL-plus kit. After color development, the membrane was exposed to Hyperfilm ECL manufactured by Amersham and analyzed.
- FIG. 1 M represents a molecular weight marker (kDa).
- the band indicated by the arrow is the band of the target protein (Phospho-Estrogen Receptor (Serl8)).
- Example 2 Wet stamping using an antibody dilution composition containing carrageenan according to the present invention
- proteins A and 8 As the antigen, the above proteins A and 8, and 1 ⁇ 10 8 THP-1 cell lysate (hereinafter referred to as “proteins”) were used.
- proteins A and B the mouse monoclonal antibody anti-Phospho-Estrogen Receptor (Serl l8) antibody (# 2511) manufactured by Cell Signaling is used, and for protein C, a rabbit polyclonal anti-DDR1 antibody is used. (Santa-Cruz sc-532) was used.
- composition for dilution of antibody containing carrageenan according to the present invention '
- FIG. 2 shows the results of Western blotting using the carrageenanan-containing antibody dilution composition produced as described above.
- FIGS. 2A-B The Western plotting shown in FIGS. 2A-B was performed according to the method described in Example 1.
- a rabbit polyclonal anti-DDR1 antibody diluted 150-fold was used as the primary antibody.
- FIG. 2C shows a comparison between Western blotting results using the antibody dilution composition of the present invention containing carrageenanan and Western blotting results using the antibody dilution composition of the present invention not containing carrageenan. Indicates.
- the method using the composition for diluting a carrageenan-containing antibody was performed in the same manner as described above except that the composition for diluting an antibody containing a carrageenan was used instead of the composition for diluting an antibody containing no carrageenan. .
- Human brain lysate (IMGENEX Corporation. # 40141) and Human Spinal Cord lysate (GENETX, Inc. # GTX15 372 ) were mixed in an amount of 10 ⁇ g, and electrophoresis to transfer were carried out by the method described in Example 1. After transfer, use conventional methods After washing with the method described in Example 1, blocking is performed, and serum obtained from a patient with Satoyoshi disease (antibodies to the brain and spinal cord are produced in the serum in this disease)
- FIGS. 2A, 2B, and 2D Western plotting using an antibody dilution composition containing carrageenan according to the present invention shows a much more non-specific band than the conventional method. I was holding it down. Further, FIG. 2C shows that the above-described effect of the antibody dilution composition according to the present invention is significantly related to the presence of carrageenan.
- Example 3 Immunohistochemical staining of lung tissue using an antibody dilution composition containing carrageenan according to the present invention
- Organized pneumonia lung tissue was dehydrated after formalin fixation according to standard protocols, then embedded in paraffin, sliced into a preparation with a thickness of 4 and deparaffinized using xylene. went. The preparation of 2% 0 2 and Inkyubeto methyl ether 10 minutes was de Peruokishidaze reaction. Thereafter, it was washed with PBS.
- the prepared slide is washed with PBS containing 4% BSA and 1% horse serum.
- Biotin labeled anti-rabbit diluted 1000 times with Background Deducing Components Perform secondary antibody reaction with IgG antibody (VECTOR BA-1000), wash with PBS, perform tertiary reaction with VECTOR VECTASTAIN ABC Kit Standard (PK6100), and develop color with 3,3'-diaminobenzidine tetrahydrochloride I let you.
- the rabbit polyclonal anti-DDR1 diluted 150-fold with the composition for diluting the antibody containing carrageenan without performing the procking after washing.
- the primary antibody reaction was performed by incubating with the antibody (Santa-Cruz sc-532) at 4 ° C for 10 hours.
- a secondary antibody reaction was performed with a biotin-labeled anti-rabbit IgG antibody (VECTOR BA-1000) diluted 1000-fold with a composition for diluting antibody containing radinan.
- VECTOR Tertiary reaction was performed with VECTASTAIN ABC Kit Standard (PK6100), and color was developed with 3,3-diaminobenzidine tetrahydrochloride.
- FIG. 3 the results of immunohistochemical staining performed by the conventional method and the results of immunohistological staining using the composition for diluting antibody containing carrageenan according to the present invention are shown in FIG. 3 (A: conventional method, B : Carrageenannan-containing antibody dilution composition, C: Negative control using rabbit IgG as the primary antibody (Carraginanin-containing antibody dilution composition), D: Hematoxylin eosin staining).
- A conventional method
- B Carrageenannan-containing antibody dilution composition
- C Negative control using rabbit IgG as the primary antibody (Carraginanin-containing antibody dilution composition)
- D Hematoxylin eosin staining
- the browned area is positive.
- the whole is stained brown and difficult to determine
- the antibody dilution composition of the present invention the positive part is very clear. Recognize.
- Example 4 Immunohistochemical staining of renal tissue using the antibody dilution composition containing carrageenan according to the present invention
- Fig. 4 shows the results of immunohistochemical staining performed by the conventional method and the results of immunohistochemical staining using the carrageenan-containing antibody dilution composition according to the present invention
- A conventional method
- B one Using the Nan-containing antibody dilution composition
- C (using Karaji one nan-containing antibody dilution composition) negatives
- Control Using catcher formic I g G primary antibody
- D the Ma Toki cylinder E O Jin staining
- the browned area is positive.
- the positive portion is clearly cleared by the method using the antibody dilution composition of the present invention, compared to the method using a normal diluent.
- non-specific detection can be suppressed, thereby improving the accuracy of immunological analysis.
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Abstract
免疫学的分析の精度を上げることができる抗体希釈用組成物を提供する。 抗体希釈用組成物に寒天、カラジーナン又はそれらの混合物を含有する。
Description
明 細 書 抗体希釈用組成物 . 技術分野
本発明は、 免疫学的分析の精度を上げることができる抗体希釈用組成物、 その 製造方法及び使用方法、 並びに抗体希釈用組成物を含む免疫学的分析用キットに 関する。 背景技術
免疫染色は、 検体(例えば、 血液や細胞の溶解液等)中に目的のタンパク質又は 目的の抗体が存在するか否かを調べる方法であり、 免疫学や分子生物学等の幅広 い分野の研究で用いられている。 また、 当該免疫染色により、 目的のタンパク質 の量や活性化の有無を調べることもできる。
免疫染色では、 使用する抗体や血清等の実験材料をバッファーで希釈して使用 する。 免疫染色において、 目的のタンパク質を検出する上で最も問題となること は、 目的のタンパク質に対応するパンド以外の非特異的なバンドが出現する現象 である。 この現象は、 「バックグラウンドがあがる」 とも呼ばれる。
そこで、 従来より、 このような非特異的なパンドの出現を防ぐべく、 例えばブ 口ッキング溶液(例えば、プロックエース(登録商標) Catalog number : UK- B25 (大日 本住友製薬株式会社製))を使用する方法、 あるいは市販のバッファー(例えば、 DAKO Antibody Diluent with Background Reducing Components Catalog number : S3022 (Dako Cytomation社製))を使用して抗体を希釈する方法がある。
しかしながら、 免疫染色において、 これら従来の方法を用いても、 非特異的な パンドが出現することが多い。
そこで、 免疫染色における非特異的なバンドの出現を抑制する方法や試薬が望 まれている。 ·
一方、 特許文献 1には、 免疫学的測定に用いる免疫反応を促進するための組成 物が開示されている。
また、 特許文献 2には、 抗原を安定化するための緩衝液が開示されている。 さらに、 特許文献 3には、 タンパク及ぴペプチドのための安定化溶液が開示さ れている。
しかしながら、 これまでに、寒天又はカラジ一ナン(carrageenan)を含有する抗 体希釈用組成物の、免疫分析の精度を向上させる目的及び/又は免疫分析における 非特異的な検出を抑制する目的での使用は知られていなかった。
特許文献 1 国際公開第 2005/121790号パンフレツト
特許文献 2 特表 2001- 517799号公報
特許文献 3 特表平 10-500704号公報 発明の開示
本発明は、上述した実情に鑑み、免疫学的分析の精度を向上させるための及び/ 又は免疫学的分析における非特異的な検出を抑制するための抗体希釈用組成物を 提供することを目的とする。
上記課題を解決するため鋭意研究を行った結果、 寒天又はカラジ一ナンを含有 する抗体希釈用組成物を使用することで、 免疫学的分析の精度を上げることがで きることを見出し、 本発明を完成するに至った。
本発明は以下を包含する。
( 1 ) 寒天、 カラジ一ナン又はそれらの混合物を含有することを特徴とする、 免疫分析の精度を向上させるための及び/又は免疫分析における非特異的な検出 を抑制するための抗体希釈用組成物。
( 2 ) 上記カラジ一ナンが λカラジ一ナンであることを特徴とする、 (1 ) 記载 の抗体希釈用組成物。
( 3 ) さらに糖及びゼラチンを含有することを特徴とする、 (1 ) 記載の抗体希 釈用組成物。
( 4 ) 塩、 キレート剤、 緩衝液及び非イオン系界面活性剤から成る群より選択 される 1以上の成分を含有することを特徴とする、( 1 )記載の抗体希釈用組成物。
( 5 ) 上記寒天の濃度が 0. 1〜5重量%であることを特徴とする、 (1 ) 記載の 抗体希釈用組成物。
6
(6) 上記寒天の濃度が 0.2〜3重量%であることを特徴とする、 (1) 記載の 抗体希釈用組成物。
( 7 )上記力ラジーナンの濃度が 0.01〜5重量%であることを特徴とする、( 1 ) 記載の抗体希釈用組成物。
(8)上記カラジ一ナンの濃度が 0.03〜2重量%であることを特徴とする、(1) 記載の抗体希釈用組成物。
( 9 )上記糖がショ糖であることを特徴とする、( 3 )記載の抗体希釈用組成物。
(1 0) 上記糖の濃度が 0.0017〜0.83モル濃度であることを特徴とする、 (3) 記載の抗体希釈用組成物。
(1 1) 上記ゼラチンの濃度が 0.01〜2重量%であることを特徴とする、 (3) 記載の抗体希釈用組成物。
(1 2) 上記塩が塩化ナトリゥムであることを特徴とする、 (4) 記載の抗体希 釈用組成物。
(1 3) 上記塩の濃度が 10mM〜2Mであることを特徴とする、 (4) 記載の抗体 希釈用組成物。
(14) 上記キレート剤がエチレンジァミン四酢酸であることを特徴とする、 (4) 記載の抗体希釈用組成物。
(1 5) 上記キレート剤の濃度が lmM〜100mMであることを特徴とする、 (4) 記載の抗体希釈用組成物。
(1 6) 上記緩衝液がトリスであることを特徴とする、 (4) 記載の抗体希釈用 組成物。
(1 7) 上記緩衝液の濃度が 10mM〜lMであることを特徴とする、 (4) 記載の 抗体希釈用組成物。
(1 8) 上記非ィオン系界面活性剤が Tween 20又は Triton X- 100であること を特徴とする、 (4) 記載の抗体希釈用組成物。
(1 9) 上記非イオン系界面活性剤の濃度が 0.01〜1容量%であることを特徴 とする、 (4) 記載の抗体希釈用組成物。
(20) (1) 〜 (1 9) のいずれかに記載の抗体希釈用組成物を使用すること を特徴とする免疫学的分析方法。
(21) 上記免疫学的分析がウェスタンブロッテイング又は免疫染色であるこ とを特徴とする、 (20) 記載の方法。
(22) (1) 〜 (19) のいずれかに記載の抗体希釈用組成物と抗体とを含む 免疫学的分析用キット。
(23) 上記免疫学的分析がウェスタンプロッティング又は免疫染色であるこ とを特徴とする、 (22) 記載の免疫学的分析用キット。
(24) 以下の工程:
(i)塩、キレート剤、緩衝液及び非イオン系界面活性剤からなる群より選択される 1以上の成分を含む水中の混合液を攪拌する工程:
(ii)工程(i)で生じた混合液を加温下でィンキュペートする工程;
(iii)前記混合液を冷却する工程;及び
(iv)カラジ一ナンを添加して攪拌する工程;
を含む、 抗体希釈用組成物の製造方法。
(25)上記工程(i)の水中の混合液がさらにゼラチンを含むことを特徴とする、 (24)記載の方法。
(26) 上記工程(ii)において、 インキュベーションの温度を 35°C〜40°Cとす ることを特徴とする、 (24) 記載の方法。
(27) 上記工程(iii)において、 混合液を 4°C〜30°Cに冷却することを特徴と する、 (24) 記載の方法。
(28) 上記工程(iv)において、 カラジ一ナンと共に糖を添加して攪拌するこ とを特徴とする、 (24) 記載の方法。
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願 2007-24437 号及ぴ 2006- 135032号の明細書および/または図面に記載される内容を包含する。 図面の簡単な説明
図 1は、 本発明に係る、 寒天を含有する抗体希釈用組成物を用いたウェスタン プロッティングの結果を示す (左図:従来方法、 右図:本発明に係る寒天含有抗 体希釈用組成物を使用)。
図 2は、 本発明に係る、 カラジ一ナンを含有する抗体希釈用組成物を用いたゥ
エスタンブロッテイングめ結果を示す。 A の左図と右図は、 それぞれ従来方法を 使用した結果と、 カラジ一ナン含有抗体希釈用組成物を使用した結果を示す。 B の左図と右図は、 それぞれ従来方法を使用した結果と、 カラジ一ナン含有抗体希 釈用組成物を使用した結果を示す。 C は、 それぞれカラジ一ナンを含まない本発 明の抗体希釈用組成物を使用した結果 (左図) と、 カラジ一ナンを含む本発明の 抗体希釈用組成物を使用した結果 (右図) を示す。 D の左図と右図は、 それぞれ 従来方法を使用した結果と、 カラジ一ナン含有抗体希釈用組成物を使用した結果 を示す。
図 3は、 本発明に係る、 カラジ一ナンを含有する抗体希釈用組成物を用いた肺 組織の免疫組織染色の結果を示す (A :従来方法、 B.:カラジ一ナン含有抗体希釈用 組成物を使用、 C :一次抗体にラビット IgGを使用した negative control (カラジ 一ナン含有抗体希釈用組成物を使用)、 D :へマトキシリンェォジン染色)。
図 4は、 本発明に係る、 カラジ一ナンを含有する抗体希釈用組成物を用いた腎 組織の免疫組織染色の結果を示す (A :従来方法、 B :カラジ一ナン含有抗体希釈用 組成物を使用、 C :一次抗体にャギ IgGを使用した negative control (カラジーナ ン含有抗体希釈用組成物を使用)、 D :へマトキシリンェォジン染色)。 発明を実施するための最良の形態
以下、 本発明を詳細に説明する。
本発明に係る抗体希釈用組成物は、 寒天、 カラジ一ナン又はそれらの混合物を 含有する組成物である。 本発明に係る抗体希釈用組成物は、 免疫学的分析に使用 する抗体を希釈するために使用する。 本発明に係る抗体希釈用組成物を使用すれ ば、 免疫学的分析の精度を上げることができる。
具体的には、 免疫学的分析において、 目的のタンパク質 (抗原)以外のタンパク 質の非特異的な検出を抑制することができる。 例えば、 ウェスタンブロッテイン グ又は免疫染色において本発明に係る抗体希釈用組成物を使用することで、 非特 異的なパンドの出現を抑制することができる。
本発明の組成物には、 寒天又はカラジ一ナン以外に、 塩、 キレート剤、 緩衝液 及び非イオン系界面活性剤から成る群より選択される 1以上の成分、 特に好まし
くはこれら全ての成分を含有する。 その他、 例えば、 アジ化ナトリウム、 グリセ
'ロール、 ゥシ血清アルブミン(BSA)、 2 -メルカプトエタノール、 ジチオスレィ トー ル、 ゼラチン、 糖等を混合液中に含有させてもよい。 ゼラチン及ぴ糖を含有する ことが特に好ましい。 本発明に使用し得る糖は、 例えばショ糖、 セルロースが挙 げられ、 特にショ糖を含むことが好ましい。 糖の添加は、 カラジ一ナンの溶解性 を高めるのに有効である。 また、 ゼラチンの添加は本組成物の汎用性の向上に効 果的である。 その際、 混合液中の糖の濃度は 0. 0017〜0. 83モル濃度、 好ましくは 0. 005〜0. 33モル濃度となるように調整する。 混合液中のゼラチンの濃度は 0· 01 〜2重量%、 好ましくは 0. 05〜1重量%となるように調整する。 また、 本発明の 組成物の成分類の混合に使用する水として、 例えば、 2 回蒸留水(D2 、 蒸留水、 滅菌水等を使用することができる。
使用する寒天としては、 例えば、 特級粉末寒天、 粉末寒天、 粉寒天、 糸寒天、 角寒天等が挙げられ、特に特級粉末寒天が好ましい。混合液中の寒天の濃度は 0. 1 〜5重量%、 好ましくは 0. 2〜3重量%となるように調製する。
使用するカラジ一ナンは、 κカラジ一ナン、 tカラジ一ナン及び λカラジーナ ンが挙げられ、 特にえカラジ一ナンを使用することが好ましい。 混合液中のカラ ジーナンの濃度は 0. 01〜5重量0 /0、 好ましくは 0. 03〜2重量%である。
一方、塩としては、その形態は限定されないが、例えば塩化ナトリゥム(NaCl)、 塩化カリゥム、 塩化マグネシウム、 塩化カルシウム等が挙げられ、 特に NaClが好 ましい。 混合液中の塩の濃度は 10mM〜2M、 好ましくは 100mM〜l. 5Mとなるように 調製する。
キレート剤としては、 例えば、 エチレン:ジァミン四酢酸(EDTA)、 ヒ ドロキシェ チルェチレンジアミン三酢酸(HEDTA)、ジヒ ドロキシェチルェチレンジァミン二酢 酸(DHEDDA)、 ジエチレントリアミン五酢酸(DTPA)、 EDTA金属塩等が挙げられ、 特 に EDTAが好ましい。 EDTAを使用する際は、 例えば ρΗ7· 0〜8. 5、 特に ρΗ8のもの を使用することが好ましい。 混合液中のキレート剤の濃度は lmM〜100mM、 好まし くは 3mM〜50mMとなる.ように調製する。
また、 緩衝液としては、 例えばト リス(ト リス(ヒ ドロキシメチル)ァミノメタ ン;以下、 「Tti s」 という)、 グリシン、 フタル酸、 クェン酸、 コノヽク酸、 酢酸、
リン酸、 ホウ酸、 炭酸、 グッドバッファー(MES、 PIPES, MOPS, HEPES、 ビストリ ス等)等が挙げられ、 特に Trisが好ましい。 Trisを使用する際は、 例えば ρΗ7· 0 〜8. 0、特に ρΗ7. 4のものを使用することが好ましい。混合液中の緩衝液の濃度は 10mM〜lM、 好ましくは 30mM〜600mMとなるように調製する。
さらに、 非イオン系界面活性剤としては、 例えば Tween 20 (Polyoxyethylene Sorbitan Monolaurate (ポリォキシエチレンソルビタンモノラゥレー卜) )、 Triton X - 100 (Octylphenolpoly (ethylene glycolether) (オタチノレフエノーノレポリ(ェチ レングリ コーノレエーテノレ)))、 Tween 80、 Brij 35、 Triton X— 114、 Nonidet P-40 (NP-40)、 Octyl b-glucoside等が挙げられ、 特に Tween 20又は Triton X - 100 が好ましい。 混合液中の非イオン系界面活性剤の濃度は 0. 01〜1容量%、 好まし くは 0. 03〜0. 6容量%となるように調製する。
本発明の別の態様では、 本発明の抗体希釈用溶液の製造方法が提供される。 寒天を含有する本発明の抗体希釈用組成物の製造方法では、 先ず寒天を含有す る混合液を撹拌する。 撹拌においては、 温度は、 例えば 10〜30°C、 好ましくは 15 〜20°Cとする。 撹拌速度は、 例えば 200〜1500rpm、 好ましくは 600〜800rpmとす る。 また撹拌時間は例えば 1〜6時間、 好ましくは 1〜2時間とする。 次いで、 撹 拌後の混合液をインキュベートする。 インキュベーショ ンにおいて、 温度は例え ば 35〜40°C、 好ましくは 37°Cとする。 また、 インキュベーション時間は、 例えば' 5〜24時間、 好ましくは 8〜12時間とする。 以上に説明した方法により、 本発明 に係る、 寒天を含有する抗体希釈用組成物を製造することができる。
カラジ一ナンを含有する本発明の抗体希釈用組成物の製造方法は、 (i)塩、キレ 一ト剤、 緩衝液及ぴ非イオン系界面活性剤からなる群より選択される 1以上の成 分を含む水中の混合液を攪拌する工程:(i i)工程(i)で生じた混合液を加温下でィ ンキュベートする工程;(ii i)前記混合液を冷却する工程;及び(iv)カラジ一ナン を添加して攪拌する工程を含む。
上記工程(i)で、先ず力ラジーナン及び糖 (含有する場合)を除く全ての成分(例 えば、'ゼラチン、 塩、 キレート剤、.緩衝液、 非イオン系界面活性剤等) を含む水 中の混合液を攪拌する。 攪拌時の温度は、例えば 10〜30°C、好ましくは 15〜20°C とする。 攪拌速度は、 例えば 200〜1500rpm、-好ましくは 600〜800rpmとする。 ま
た攪拌時間は例えば 1〜6時間、 好ましくは 1〜2時間とする。 次いで、 上記工程
(ii)で攪拌後の混合液をインキュベートする。 インキュベーションにおいて、 温 度は例えば 35〜40°C、好ましくは 37°Cとする。また、ィンキュベーション時間は、 例えば 5〜24時間、 好ましくは 8〜12時間とする。 インキュベーション後、 工程
(iii)でこの混合液を 4°C〜30°C、 好ましくは 4°C〜20°C、 最も好ましくは 4°C〜 12°Cまで冷却し、 次いで工程(iv)でカラジ一ナンを加えて攪拌する。 工程(iv)の 攪拌速度は、 例えば 200〜1500rpm、 好ましくは 600〜800rpmとし、 攪拌時間は、 例えば 1〜6時間、 好ましくは 1〜2時間とする。 以上に説明した方法により、 本 発明に係る、カ ジーナンを含有する抗体希釈用組成物を製造することができる。 本発明の好ましい態様では、 上記工程(i)の混合液はゼラチンを含む。 その際、 混合液中に含まれるゼラチンの濃度は 0. 01〜2重量%、好ましくは 0. 05〜:!重量。 /0 となるように調整する。 これによつて、 本組成液の汎用性が向上する。
本発明の別の好ましい態様では、 工程(iv)においてカラジ一ナンと共に糖を添 加して攪拌する。 添加する糖の量は、 0. 0017〜0. 83モル濃度、 好ましくは 0. 005 〜0. 33モル濃度である。 これにより、 本発明の溶解速度が増し、 混合液中での力 ラジーナンの十分な溶解を達成することができる。
また、寒天及びカラジ一ナンの混合物を含有する本発明の抗体希釈用組成物は、 上記工程(iv)においてカラジ一ナンと共に寒天を添加して攪拌することを除き、 上記と同様に製造することができる。 なお、 その際に添加することができる成分 量は以下の通りである :カラジ一ナン、 0. 001〜5 重量%、 好ましくは 0. 005〜1 重量0 /0 ;寒天、 0. 001〜3重量%、好ましくは、 0. 015〜1重量0 /0;ゼラチン、 0. 005 〜2重量%、 好ましくは 0. 01〜1重量%;糖、 0. 00017〜0. 83モル濃度、 好ましく は 0. 00083〜0. 165モル濃度。
なお、 本発明に係る抗体希釈用組成物を免疫学的分析で使用する際には、 例え ば、 D2W、 蒸留水、 滅菌水等の水を使用して適宜希釈したものを使用してもよい。 使用時の抗体希釈用組成物における寒天又はカラジ一ナンの濃度は、 例えば 0· 1〜0. 5重量%、 好ましくは 0· 2〜0· 3重量%、 特に好ましくは 0. 28重量%とす る。
また、 使用時の抗体希釈用組成物における塩の濃度は、 例えば 50mM〜200mM、 ·
好ましくは 100mM〜150mM、 特に好ましくは 120mMとする。
さらに、 使用時の抗体希釈用組成物におけるキレート剤の濃度は、 例えば ImM 〜8mM、 好ましくは 3raM〜5mM、 特に好ましくは 4mMとする。
使用時の抗体希釈用組成物における緩衝液の濃度は、 例えば 10mM〜 80mM、 好ま しくは 30mM〜60mM、 特に好ましくは 50mMとする。
また、 使用時の抗体希釈用組成物における非イオン系界面活性剤の濃度は、 例 えば 0. 01〜1容量%、好ましくは 0. 03〜0. 06容量%、特に好ましくは 0. 05容量% とする。
本発明に係る抗体希釈用組成物は、 免疫学的分析に使用する抗体の希釈に使用 する。 本発明に係る抗体希釈用組成物を用いて希釈する抗体としては、 特に限定 されないが、 例えばモノクローナル抗体、 ポリクローナル抗体、 抗体フラグメン ト(例えば、 Fab、 F (ab' ) 2)、 抗血清及び腹水(モノクローナル抗体含有)等が挙げ られる。 また、 標識抗体(例えば、 蛍光標識抗体、 酵素標識抗体)の希釈にも、 本 発明に係る抗体希釈用組成物を使用することができる。 抗体希釈倍率としては、 例えば、 2倍、 5倍、 10倍、 50倍、 100倍、 200倍、 500倍、 1000倍、 5000倍、 10000倍等が挙げられる。
このように希釈された抗体を使用することで、 免疫学的分析の精度を上げるこ とができる。 ここで、 免疫学的分析としては、 例えば免疫染色、 免疫細胞染色、 免疫組織染色、 酵素免疫測定(例えば、 ELISA、 EIA)、 放射免疫測定、 螢光抗体法 及びフローサイ トメ トリ一が挙げられる。 例えば、 ウェスタンプロッティング終 了後のメンプレンに対して、 あるいは生物学的組織又は細胞の免疫学的分析にお いて、本発明の抗体希釈用組成物で希釈した一次抗体及び/又は二次抗体を用いて 発色又は免疫染色することで、 非特異的な検出を抑制することができる。 また、 本発明に係る抗体希釈用組成物で希釈した抗体を用いて免疫学的に発色又は染色 するときには、 従来より使用されるブロッキング溶液を使用する必要がない。 さ らに、 本発明に係る抗体希釈用組成物は、 抗体保存に使用することもできる。 さらに、 本発明に係る抗体希釈用組成物は、 抗体と共に免疫学的分析用キット として提供することができる。 当該キットでは、 本発明に係る抗体希釈用組成物 と抗体とは、 同じ容器又は別々の容器に入れて提供することができる。 またその
際、 抗体は上記例示の抗体を含む。
以下、 実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、 本発明の技術的範囲は これら実施例に限定されるものではない。
実施例 1 :本発明に係る、 寒天を含有する抗体希釈用組成物を用いたウェスタン ブロッテイング
〔材料及び方法〕 '
1. 抗原及び抗体
抗原には、 1 X 108個の C0S-1細胞 lysate (以下、 「タンパク A」 という)及び I X 108個の MCF- 7細胞 lysate (以下、 「タンパク B」 という) を使用した。
抗体には、 Cell Signal ing 社製マウスモノクローナル抗 Phospho- Estrogen Receptor a (Serl l8)抗体(#2511)を使用した。
2. 本発明に係る寒天含有抗体希釈用組成物の作製
以下のようにして、 本発明に係る、 寒天を含有する抗体希釈用組成物を作製し た。
先ず、 5M NaC1 240ml、 0. 5M EDTA (pH8) 80ml , 1M Tris (pH7. 4) 500ml, Tween 20 5ml及び特級粉末寒天(和光純薬工業株式会社製) 28gを混合し、 D2Wで合訐 1Lと した。
次いで、 この混合液を 17°Cにおいて 700rpmの速度で 1時間攪拌した。 攪拌後 の混合液を、 37°Cで 10時間ィンキュベートし、 使用時の 10倍濃度の抗体希釈用 組成物を作製した。 さらに、 同組成物を D2Wにて 1倍濃度に薄め、 抗体希釈用組 成物とした。
3. 電気泳動、 ウェスタンブロッテイング及ぴ発色
以下のようにして電気泳動、 ウェスタンプロッティング及び発色を行った。 3-1. 電気泳動及ぴウェスタンブロッテイング
タンパク A 10 i l及ぴタンパク B 10 i lを、 それぞれサンプルバッファー(20% グリセロール、 6%SDS、 10% 2-メルカプトエタノール) 10 / lと混合し、 10分間 95°Cでィンキュベートした。
冷却後、 これら 2種のサンプル 20 μ 1を、 10%Tri s- Glycineポリアクリルアミ ドゲル(Invitrogen社製)にアプライして、 電気泳動を 15mAで 90分間行った。
電気泳動後、 電気泳動を行ったゲルから Hybond- ECL Membrane (Amersham社製) へタンパク質をトランスファーした。 トランスファ一は、 膜の面積 X lmAで 60分 間行った。
3-2. 従来方法を用いたウェスタンプロッティング
第 3-1 節のウェスタンブロッテイング後に得られた膜を、 TBS (0. l%Tween - 20 含有)で洗浄し、 その後、 発色に供した。
従来方法を用いた場合では、 洗浄後の膜をブロッキングバッファー (ブロック エース :大日本住友製薬株式会社製) 中に浸し、 37°Cで 1時間インキュベートし た(ブロッキング)。 '
ブロッキング後、膜を TBS (0. l%Tween- 20含有)で洗浄し、続いて一次抗体反応 を行った。 一次抗体として、 Dako Cytomation社製 DAKO Antibody Diluent with Background Reducing Components (Catalog number: S3022) で 1000倍に希釈した マウスモノクローナル抗 Phospho- Estrogen Receptor a (Serll8)抗体を用いた。 一次抗体反応は、 4°Cで 10時間のィンキュベーションにより行った。
一次抗体反応後、膜を TBS (0. l%Tween- 20含有)で洗浄し、二次抗体反応を行つ た。二次抗体として、 Dako Cytomation社製匿 0 Antibody Diluent with Background Reducing Componentsで 1000倍希釈した HRP標識抗マウス IgG抗体 (Amersham 社製) を用いた。 二次抗体反応は、 20°Cで 15分間のインキュベーションにより行 つた。
二次抗体反応後、 膜を TBS (0. l % Tween- 20 含有).で洗浄し、 Amersham 社製 ECL-plus キットを用いて、 膜を発色させた。 発色後、 膜を Amersham 社製の Hyperfi lmECLに露光して解析した。
3-3. 本発明に係る抗体希釈用組成物を用いたウェスタンブロッテイング
第 2節で作製した抗体希釈用組成物を使用する場合には、 第 3-1節のウェスタ ンブロッテイング後に得られた膜を、 TBS (0. l%Tween-20含有)で洗浄した後、 ブ ロッキングを行わずに、 一次抗体反応を直接行った。 一次抗体として、 第 2節で 作製した抗体希釈用組成'物で 1000 倍希釈したマウスモノ クローナル抗
Phospho- Estrogen Receptor CK (Serll8)抗体を使用した。 一次抗体反応は、 4°Cで
10時間のインキュベーションにより行った。
一次抗体反応後、膜を TBS (0. l %TWeen- 20含有)で洗浄し、二次抗体反応を行つ た。 二次抗体として、 第 2節で作製した抗体希釈用組成物で 1000倍希釈した HRP 標識抗マウス IgG抗体 (Amersham社製) を用いた。 二次抗体反応は、 20°Cで 15 分間のィンキュベーションにより行った。
二次抗体反応後、 膜を TBS (0. l % Tween- 20 含有)で洗浄し、 Amersham 社製 ECL-plus キットを用いて、 膜を発色させた。 発色後、 膜を Amersham 社製の Hyperfi lmECLに露光して解析した。
〔結果〕 '
上記のように、 従来方法で行ったウェスタンプロッティング(第 3-2節)の結果 と本発明に係る抗体希釈用組成物を用いたウェスタンブロッテイング(第 3 - 3節) の結果を図 1に示す。 図 1において、 Mは分子量マーカー(kDa)を示す。 また、 矢 印で示すバンドは、 目的のタンパク質(Phospho— Estrogen Receptor (Serl l8) ) のバンドである。
図 1に示すように本 §明に係る抗体希釈用組成物を使用したウェスタンプロッ ティングでは、 従来方法に比べてはるかに非特異的パンドの出現を抑えていた。 実施例 2 :本発明に係る、 カラジ一ナンを含有する抗体希釈用組成物を用いたゥ エスタンプロッティング
〔材料及び方法〕
1. 抗原及ぴ抗体
抗原には、 上記タンパク質 A及ぴ8、 並びに 1 X 108個の THP-1細胞 lysate (以 下、 「タンパク質お とレ、う) を使用した。
抗体には、タンパク質 A及ぴ Bについては Cell Signal ing社製マウスモノク口 一ナル抗 Phospho-Estrogen Receptor ひ (Serl l8)抗体(#2511)を使用し、 タンパ ク質 Cについてはラビットポリクローナル抗 DDR1抗体(Santa - Cruz社 sc-532)を 使用した。
2. 本発明に係るカラジ一ナン含有抗体希釈用組成物の作製'
以下のようにして、 本発明に係る、 カラジ一ナンを含有する抗体希釈用組成物 を作製した。
先ず、 200raM NaCl 11· 7g、 40mM EDTA (pH8. 0) 80ml, 500mM Tri s (pH7. 4) 500ml ,
0. 05% Tween 20 0. 5ml、 0. 1%ゼラチン lgを混合し、 D2Wで総量 1Lとした。 こ の混合液を 800rpmで 2時間、 16°Cで攪拌し、 その後、 37°Cで 10時間インキュべ ートした。 次いで、 この混合液を室温まで冷やし、 0. 3 重量。 /0のショ糖に続いて 0. 1 重量%のぇカラジ一ナン (和光純薬工業株式会社 035-09693) を添加して 800rpmで 2時間攪拌することにより、カラジーナンを含有する抗体希釈用組成物 を完成させた。
3. 電気泳動、 ウェスタンブロッテイング及ぴ免疫染色
図 2は、 上記のようにして製造したカラジ一ナン含有抗体希釈用組成物を用い たウェスタンブロッティングの結果を示す。
図 2A〜Bに示されるウェスタンプロッティングは、 実施例 1に記載の方法に従 つて行った。タンパク質 Cに関するウェスタンプロッティング(図 2B)については、 一次抗体としてラビットポリクローナル抗 DDR1抗体を 150倍に希釈したものを用 いた。
図 2Cは、カラジ一ナンを含む本発明の抗体希釈用組成物を用いたウェスタンブ ロッティング結果と、 カラジ一ナンを含まない本発明の抗体希釈用組成物を用い たウェスタンブロッティング結果との比較を示す。
図 2Cに示される実験において、電気泳動からトランスファーまでは実施例 1に 記載される方法で行った。カラジーナン無含抗体希釈用組成物を用いる方法では、 トランスファー後、 カラジ一ナン無含抗体希釈用組成物でマウスモノクローナル 抗ァクチン抗体(Santa - Cruz社 sc- 8432)を 200倍に希釈し、 4°Cで 10時間のィン キュベーシヨン後に洗浄し、カラジ一ナン無含抗体希釈用組成物で 1000倍に希釈 した HRP標識抗マウス IgG抗体で二次抗体反応を行い、 実施例 1に記載の方法で 発色させた。 カラジ一ナン含有抗体希釈用組成物を用いる方法では、 カラジーナ ン無含抗体希釈用組成物に代えてカラジ一ナン含有抗体希釈用組成物を用いる点 を除いて、 上記と同様の方法で行った。
図 2D. に示される実験では、 実施例 1 に記載のサンプルバッファー 20 /i 1に
Human brain lysate (IMGENEX Corporation .#40141)、 Human Spinal Cord lysate (GENETX, Inc. #GTX15372)を 10 μ gずつ混合し、 実施例 1に記載される方 法で電気泳動からトランスファーまで行った。 トランスファー後、 従来の方法で
は、 実施例 1に記載の方法で洗浄した後にブロッキングを行い、 里吉病 (この病 気では脳や脊髄に対する抗体が血清中に産生される) の患者から取得した血清を
Dako社の Antibody Diluent with Background Deducing Components (#S3022)で 2 倍に希釈し、 4°Cで 10 時間インキュベーションした後に洗浄し、 Dako 社の Antibody Diluent with Background Deducing Componentsで 1000 {¾■に希釈した HRP標識抗ヒ ト IgG抗体で二次抗体反応を行い、 実施例 1に記載の方法で発色さ せ解析した。 一方、 カラジ一ナン含有抗体希釈用組成物を用いた方法では、 上記 トランスファーの後、 プロッキングは行わずカラジ一ナン含有抗体希釈用組成物 で患者血清を 2倍に希釈し、 4°Cで 10時間ィンキュベーションした後に洗浄し、 カラジ一ナン含有抗体希釈用組成物で 1000倍に希釈した HRP標識抗ヒ ト IgG抗体 によって二次抗体反応を行い、 実施例 1に記載の方法で発色させ解析した。
[結果]
図 2A、 B及び Dに示すように、 本発明に係る、 カラジ一ナンを含有する抗体希 釈用組成物を使用したウェスタンプロッティングでは、 従来方法に比べてはるか に非特異的バンドの出現を抑えていた。 また図 2Cから、本発明に係る抗体希釈用 組成物の上記効果が、 カラジ一ナンの存在と有意に関連していることがわかる。 実施例 3 :本発明に係る、 カラジ一ナンを含有する抗体希釈用組成物を使用した 肺組織の免疫組織染色
器質化肺炎の肺組織を、 標準的なプロトコールに従って、 ホルマリン固定後に 脱水処理を行い、 その後パラフィンにて包埋し、 4 の厚さでプレパラートに 薄切し、それをキシレンを用いて脱パラフィンを行った。そのプレパラートを 2% 02メチルエーテルで 10分間ィンキュベートし脱ペルォキシダーゼ反応を行った。 その後、 PBSで洗浄した。
従来の方法では、洗浄後のプレパラートを 4%BSA及ぴ 1%馬血清入りの PBSで
10 分間ブロッキング反応を行い、 その後 Dako 社の Antibody Diluent with
Background Deducing Componentsで 150倍に希釈したラビッ卜ポジクローナノレ抗
DDR1抗体 (Santa- Cruz社 S C- 532) と共に 4°Cで 10時間インキュベーションして 一次抗体反応を行った。 その後、 PBSで洗浄し Dako社の Antibody Diluent with
Background Deducing Componentsで 1000倍に希釈したビォチン標識抗ラビット
IgG抗体(VECTOR社 BA- 1000)で二次抗体反応を行い、 PBSで洗浄した後、 VECTOR 社の VECTASTAIN ABC Kit Standard (PK6100)で三次反応を行い 3, 3' -ジァミノべ ンジジンテトラヒ ドロクロライドで発色させた。
本発明に係る、 カラジ一ナン含有抗体希釈用組成物を使用する方法では、 洗浄 後プロッキングは行わず、 カラジ一ナン含有抗体希釈用組成物で 150倍に希釈し たラビットポリクロ一ナル抗 DDR1抗体 (Santa - Cruz社 sc - 532) と共に 4°Cで 10 時間インキュベーションして一次抗体反応を行った。 その後、 PBS で洗浄し、 力 ラジーナン含有抗体希釈用組成物で 1000 倍に希釈したビォチン標識抗ラビット IgG抗体(VECTOR社 BA- 1000)で二次抗体反応を行い、 PBSで洗浄した後、 VECTOR 社の VECTASTAIN ABC Kit Standard (PK6100)で三次反応を行い 3, 3 -ジァミノベン ジジンテトラヒドロクロライドで発色させた。
[結果]
上記のように、 従来方法で行った免疫組織染色の結果と本発明に係るカラジ一 ナン含有抗体希釈用組成物を用いた免疫組織染色の結果を図 3に示す (A :従来方 法、 B :カラジ一ナン含有抗体希釈用組成物を使用、 C :一次抗体にラビット IgGを 使用した negative control (カラジ一ナン含有抗体希釈用組成物を使用)、 D :へ マトキシリンェォジン染色)。図 3において、茶色に染まっている部分が陽性であ る。 図 3からわかるように、 通常の希釈液を使用すると全体が茶色に染まって判 断し辛いのに対し、 本発明の抗体希釈用組成物を用いると陽性部分が非常にクリ ァであることがわかる。
実施例 4 :本発明に係る、 カラジ一ナンを含有する抗体希釈用組成物を使用した 腎組織の免疫組織染色
急性進行性糸球体腎炎の腎組織について、 一次抗体にャギポリクローナル抗 TRAILレセプター 3抗体 (R&DSystem社、 AF630)、 二次抗体にビォチン標識抗ャギ IgG抗体(VECTOR社 BA- 5000)を用いて実施例 3と同様にして免疫組織染色を行つ た。
[結果] '
従来方法で行つた免疫組織染色の結果と本発明に係るカラジーナン含有抗体希 釈用組成物を用いた免疫組織染色の結果を図 4に示す (A :従来方法、 B :カラジ一
ナン含有抗体希釈用組成物を使用、 C :一次抗体にャギ IgG を使用した negative control (カラジ一ナン含有抗体希釈用組成物を使用)、 D :へマトキシリンェォジン 染色)。 図 4において、茶色に染まっている部分が陽性である。 図 4からわかるよ うに、 通常の希釈液を使用する方法に比べ、 本発明の抗体希釈用組成物を用いた 方法により、 陽性部が顕著にクリァになることが分かる。 産業上の利用可能性
本発明に係る抗体希釈用組成物によれば、 非特異的な検出を抑制し、 それによ つて免疫学的分析の精度を上げることができる。
本明細書で引用した全ての刊行物、 特許および特許出願をそのまま参考として 本明細書にとり入れるものとする。
Claims
1. 寒天、 カラジ一ナン又はそれらの混合物を含有することを特徴とする、 免疫分析の精度を向上させるための及び/又は免疫分析における非特異的な検出 を抑制するための抗体希釈用組成物。
2. 上記カラジ一ナンがえカラジ一ナンであることを特徴とする、 請求項 1 記載の抗体希釈用組成物。
3. さらに糖及びゼラチンを含有することを特徴とする、 請求項 1記載の抗 体希釈用組成物。
4. 塩、 キレート剤、 緩衝液及び非イオン系界面活性剤から成る群より選択 される 1以上の成分を含有することを特徴とする、 請求項 1記載の抗体希釈用組 成物。.
5. 上記寒天の濃度が 0.1〜5重量%であることを特徴とする、請求項 1記載 の抗体希釈用組成物。
6. 上記寒天の濃度が 0.2〜3重量%であることを特徴とする、請求項 1記載 の抗体希釈用組成物。
7. 上記カラジーナンの濃度が 0.01〜5重量%でぁることを特徴とする、 請 求項 1 ^載の抗体希釈用組成物。
8. 上記カラジーナンの濃度が 0.03〜2重量%でぁることを特徴とする、 請 求項 1記載の抗体希釈用組成物。
9. 上記糖がショ糖であることを特徴とする、 請求項 3記載の抗体希釈用組 成物。
1 0. 上記糖の濃度が 0.0017〜0.83モル濃度であることを特徴とする、請求 項 3記載の抗体希釈用組成物。
1 1. 上記ゼラチンの濃度が0.01〜2重量%でぁることを特徴とする、 請求 項 3記載の抗体希釈用組成物。
1 2. 上記塩が塩化ナトリウムであることを特徴とする、 請求項 4記載の抗 体希釈用組成物。
1 3. 上記塩の濃度が 10mM〜2Mであることを特徴とする、請求項 4記載の抗
体希釈用組成物。
1 4 . 上記キレート剤がエチレンジァミン四酢酸であることを特徴とする、 請求項 4記載の抗体希釈用組成物。
1 5 . 上記キレート剤の濃度が lmM〜100raMであることを特徴とする、請求項 4記載の抗体希釈用組成物。
1 6 . 上記緩衝液がトリスであることを特徴とする、 請求項 4'記載の抗体希 釈用組成物。
1 7 . 上記緩衝液の濃度が 10mM~ lMであることを特徴とする、請求項 4記載 の抗体希釈用組成物。
1 8 . 上記非イオン系界面活性剤が Tween 20又は Triton X- 100であること を特徴とする、 請求項 4記載の抗体希釈用組成物。
1 9 . 上記非イオン系界面活性剤の濃度が 0. 01〜1容量%であることを特徴 とする、 請求項 4記載の抗体希釈用組成物。
2 0 . 請求項 1〜19のいずれか 1項記載の抗体希釈用組成物を使用すること を特徴とする免疫学的分析,方法。
2 1 . 上記免疫学的分析がウェスタンプロッティング又は免疫染色であるこ とを特徴とする、 請求項 20記載の方法。
2 2 . 請求項 1〜19のいずれか 1項記載の抗体希釈用組成物と抗体とを含む 免疫学的分析用キット。
2 3 . 上記免疫学的分析がウェスタンブロッテイング又は免疫染色であるこ とを特徴とする、 請求項 22記載の免疫学的分析用キット。
2 4 . 以下の工程:
(i)塩、キレート剤、緩衝液及び非イオン系界面活性剤からなる群より選択される 1以上の成分を含む水中の混合液を攪拌する工程;
(i i)工程(i)で生じた混合液を加温下でインキュベートする工程;
(ii i)前記混合液を冷却する工程;及び
(iv)カラジ一ナンを添加して攪拌する工程;
を含む、 抗体希釈用組成物の製造方法。
2 5 . 上記工程(i)の水中の混合液がさらにゼラチンを含むことを特徴とする
請求項 24記載の方法。
2 6 . 上記工程(ii)において、 インキュベーションの温度を 35°C〜40°Cとす ることを特徴とする、 請求項 24記載の方法。
2 7 . 上記工程(iii)において、 混合液を 4° (:〜 30°Cに冷却することを特徴と する、 請求項 24記載の方法。 ·
2 8 . 上記工程(iv)において、 カラジ一ナンと共に糖を添加して攪拌するこ とを特徴とする、 請求項 24に記載の方法。
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| JP2003344410A (ja) * | 2002-05-23 | 2003-12-03 | Sekisui Chem Co Ltd | 免疫測定試薬及び免疫測定法 |
| JP2006047255A (ja) * | 2003-08-20 | 2006-02-16 | Seikagaku Kogyo Co Ltd | 安定化剤及びブロッキング剤 |
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- 2007-02-02 JP JP2007024437A patent/JP2007333723A/ja active Pending
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| JPH02108969A (ja) * | 1988-10-18 | 1990-04-20 | Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd | リポソームを用いる免疫測定法 |
| JP2003344410A (ja) * | 2002-05-23 | 2003-12-03 | Sekisui Chem Co Ltd | 免疫測定試薬及び免疫測定法 |
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