WO2007061132A1 - テルペン化合物 - Google Patents

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WO2007061132A1
WO2007061132A1 PCT/JP2006/324036 JP2006324036W WO2007061132A1 WO 2007061132 A1 WO2007061132 A1 WO 2007061132A1 JP 2006324036 W JP2006324036 W JP 2006324036W WO 2007061132 A1 WO2007061132 A1 WO 2007061132A1
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pheromone
formula
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azuki
column
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French (fr)
Inventor
Kanju Ohsawa
Shunsuke Yajima
Kenji Shimomura
Satoshi Nojima
Original Assignee
Tokyo University Of Agriculture Educational Corporation
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Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C47/00Compounds having —CHO groups
    • C07C47/20Unsaturated compounds having —CHO groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C47/21Unsaturated compounds having —CHO groups bound to acyclic carbon atoms with only carbon-to-carbon double bonds as unsaturation
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N49/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, containing compounds containing the group, wherein m+n>=1, both X together may also mean —Y— or a direct carbon-to-carbon bond, and the carbon atoms marked with an asterisk are not part of any ring system other than that which may be formed by the atoms X, the carbon atoms in square brackets being part of any acyclic or cyclic structure, or the group, wherein A means a carbon atom or Y, n>=0, and not more than one of these carbon atoms being a member of the same ring system, e.g. juvenile insect hormones or mimics thereof

Definitions

  • the present invention relates to a novel terpene compound, a method for producing the same, and an attractant for azuki beetle containing the terpene compound as an active ingredient.
  • the azuki beetle Cal sobruchus chinensis belonging to the family Coleoptera is distributed throughout the world, including Southeast Asia, India, Australia, and Africa.
  • the body length is about 2 to 3 mm, and the beans that serve as the host include azuki bean (Vigna angular is), cowpea ungulculata, and soybean radiata).
  • Insecticide sprays and fumigants are used as control methods against azuki beetles, but they all target the nervous system and have limited safety.
  • the reproductive behavior of azuki beetles involves a chemical stimulus called a pheromone. It is said that there are two types of pheromones that are involved in the reproductive behavior of azuki beetles: a copulation-dissolving Hue-mouth and a sex attracting pheromone. Among them, the structure of the copulation-resolved pheromone has already been clarified (see Non-Patent Document 1). On the other hand, the sex-attracting pheromone has not yet been determined, although its existence is suggested.
  • Non-Patent Document 1 Tanaka, K. et al., J. Pesticide Sci. (1981) 6, 75-
  • an object of the present invention is to elucidate the chemical structure of the sex attractant pheromone of azuki beetle, which has not yet been determined, and to provide a novel compound. Another object of the present invention is to provide a method for producing the novel compound. Furthermore, an object of the present invention is to provide an attractant for adzuki beetle containing the novel compound as an active ingredient.
  • GC-E AD Gas Chromatographic-Electroantennographic Detector
  • the present invention also provides the following formula (I) A compound represented by the following formula (II):
  • C is a method for producing in ether base emissions compounds represented
  • FIG. 1 shows the procedure for synthesizing the compound represented by the formula (X) of the present invention.
  • the sex-attracting pheromone of the present invention can be isolated by collecting secretion from a non-mating female, purifying it, and screening by GC-EAD.
  • the secretions are collected by raising azuki beetles and collecting the sex attracting pheromone on filter paper.
  • Azuki beetle females are thought to release sex attracting fuemon only before the first mating, and azuki beetle needs to be sexed immediately after emergence.
  • Secreted material collected on filter paper is extracted with a solvent such as n-pentane, and then concentrated and purified. It can be performed by a column packed with silica gel or the like. Purified sa After installing the antennae of unmated males and screening them using GC-E AD and identifying the pheromone-containing fraction, the pheromone-containing fraction can be purified to obtain a pheromone derived from azuki beetle. It is preferable to repeat the identification and purification of pheromone-containing fractions by GC-EAD. Purification can be performed by HPLC, GC, or the like.
  • Isolated pheromones GC- EI- MS, GC- CI- MS and 1 H- NMR perform equipment analysis, conducted further dimethylhydrazone of by trace derivatives processing, ozone oxidation, it is possible to determine the structure.
  • the identified pheromone has the following formula (I) 7-Ethyl-3,11 1-dimethyl-2,6,10-methyl dodecatrienoate (Me thy 1 7- et hy 1-3, l ld ime t hy l -2, 6, 10- dode catrienoate) In the following formula (II)
  • the compound represented by the formula (I) is a compound described in Mori, K. et al, Agri. Biol. Che (1971) 35, 1116-1127.
  • the reduction can be performed using diisobutylaluminum hydride (DI BAL-H) or the like.
  • DI BAL-H diisobutylaluminum hydride
  • the oxidation can be carried out by using a active Mn_ ⁇ 2.
  • the compound represented by the formula (X) of the present invention can be synthesized non-stereoselectively by the procedure shown in FIG.
  • the azuki bean attractant of the present invention contains a terpene compound represented by the formula (X) as an active ingredient.
  • the attractant contains an effective amount of a terpene compound represented by the formula (X).
  • the attractant may contain a solvent, a dispersion medium, a carrier, an additive and the like as other components.
  • Adzuki beetles were bred using a container made of stainless steel on the upper surface of the tapper for air permeability.
  • Azuki beans V. angularis, Dainagon
  • the incubator was maintained at an air temperature of 27, humidity of 50%, and a dark period for 24 hours. Under this condition, azuki beetles emerged from adults about 25 days after eggs were laid on the surface of azuki bean. (Collection of sex attracting pheromones)
  • azuki beetle females Since azuki beetle females only mate once after emergence at the laboratory level, females are considered to release sex-induced pheromones only before the first mating. For this reason, azuki beetles were sexed immediately after their emergence. Separated female azuki beetles have one waist-high petri dish (outer diameter 90 mm, height 12 for every 300 to 400 individuals). 0mm). In the waist-high petri dish, filter paper (ADV ANTEC No. 2, 90mm) was attached to each of the upper and lower bases, and filter paper folded in a fold-like filter paper was placed on the pile to adsorb the target pheromone. . The ferromon was collected from each petri dish over a period of 14-20 days, collected from a total of 32,277 virgin females.
  • ADV ANTEC No. 2, 90mm filter paper
  • the filter paper adsorbing the sex-attracting pheromone was finely crushed and packed in cylindrical filter paper (ADVANTE C No. 84, 40 X 150 mm) and extracted with a Soxhlet extractor.
  • the solvent was n-pe tan ane HPLC g rade (A 1 d r i c h), and the extraction time was 24 hours.
  • the obtained crude extract was adjusted to an amount equivalent to about 1,500 animals per sample, and a total of 20 samples S1 to S20 were obtained.
  • Each sample was concentrated with a Kuderna-Danisch concentrator. Concentrate to approximately 5 ml and stock at 1-30 until use.
  • Each sample was concentrated on ice to 1 ml with nitrogen and purified by an open column using silica gel as the packing material.
  • the column was a 2 ml pipette and the packing was Wakog e l C-200 (W a k o) 1 g.
  • GC—EAD (Gas Chromatograph) Electroant ennog aphic Detector (HP 5890 series II (Ag ilent)) was used, and the column was DB-5 (3 OmX 0.25 mm, 0. 25; J & W).
  • the injection was performed by the splitless method, and the sampling time was 1 minute.
  • the GC condition is set to 25 O on the injection side (inj), FID and EAD on the detector side (det) at 280, and the column oven is held at 60 for 3 minutes and then up to 280 at 10 Zm in. Warmed and held for 10 minutes.
  • the carrier gas was N 2 and the column head pressure was 145 kPa.
  • the column was split at the outlet on the detector side using a fused Siri force universal three-way connector (J & W).
  • a TCD capillary pipe with a make-up gas line (Agilent) was connected, and N 2 was added at 30 m 1 / min.
  • the line is discharged to the FID port and the other is discharged from the column oven via the NPD port using an inert-treated fused-silica silica ram (lmx 0.25 mm; A 1 1 tech).
  • 300 ml / min air was flowed. This air was passed through activated carbon, and was humidified by publishing and cooling with ice.
  • TL 082 CP (TEXAS I N S TRUME NT S) was used for the operational amplifier, and a 0.5 Hz hi gh pa s s fi l ter was used. A constant voltage DC power supply of ⁇ 15 V was used for the amplifier.
  • Ag—C 1 plating was performed by energizing the Ag electrode in a 0.2M Na C 1 solution for 30 minutes. A drop of 0.5% NaC 1 solution was placed on top of it, and the antennae of unmated males cut just before the assembly were installed.
  • the second fraction (S Only 1 -2, S 2-2, S 3-2, ⁇ , S 20-2) showed activity.
  • the degree of purification was low, there were many contaminants, and it was impossible to identify which peak originated from pheromone on the FID side.
  • S 1-2 which was active for sample S 1, was further purified by HPLC.
  • the solvent in the fraction was completely distilled off with nitrogen on ice, and then dissolved in pentan eOlOl.
  • the equipment used was LC-5A (Shi ma dz U).
  • the detector was SPD-2A and the detection wavelength was 254 nm.
  • the total flow rate was lml, and each lml was collected.
  • ferromons A and B Due to the increased purity due to HPLC purification, it is possible to identify two peaks derived from the ferromon on the FID obtained by subjecting fractions 21-23 of each sample to the GC, and separate each into separate fractions. I was able to. (Hereafter referred to as ferromons A and B from the earlier retention time on the GC FID).
  • GC-EI-MS analysis of pheromone A and B fractions was performed.
  • the apparatus used was QP 5000 (Shi ma dzu Corporation).
  • DB-5 (30mX 0.25 mm, 0.25 ⁇ ; J & W) was used as the column.
  • the temperatures of j and det were 250 and 280, respectively, and the oven temperature was 60 and held for 3 minutes, and then the temperature increasing program was used up to 280 with 1 O ⁇ Zmin.
  • the carrier gas was He, and the column head pressure was 100 kPa.
  • the injection method was a splitless method with a sampling time of 1 minute. As a result, no significant molecular ion peak (M +) could be detected in either pheromone.
  • GC-CI-MS analysis of each fraction was performed to determine the molecular weight.
  • the instrument was measured according to Q P 2010 (Sh imadz u Corporatio).
  • the column was DB-5 (3 OmX 0.25 mm, 0.25 urn; J & W).
  • the temperatures of i n j and de t were 250 and 280, respectively.
  • the oven temperature was 60, and after holding for 3 minutes, a temperature increase program of 1 O ⁇ Zm i n to 280 ° C was used.
  • the carrier gas was He, and the column head pressure was 100 kPa.
  • the reaction gas was iso-bu tane.
  • the column was pulled up at the desired retention time, covered with a sheath cooled with ice, held on the column, and eluted with a solvent.
  • the GC condition was set to 250 V on the inj side and 150 ° C on the det side, and the column oven was held at 60 for 3 minutes, then heated to 2 80 at 1 O ⁇ Zmin and held for 10 minutes.
  • the carrier gas was N 2 and the column head pressure was 2 psi.
  • the fractions containing pheromone A the fractions with few impurities were selected in the vicinity of the pheromone-derived peak on the chromatogram obtained from F ID and collected into one fraction.
  • the solvent was distilled off during the work, so the solvent was replaced with distilled n—he X ane (A 1 d r i c h).
  • n—he X ane A 1 d r i c h
  • a triplet (3H) derived from a terminal methyl proton was detected when it had an ethyl side chain at the 0-position or 1-position at 0.95 p pm, and a triplet (2H derived from a methylene proton at the a-position at 2.60 ppm. ) was detected. Then, the multiplet (2H) derived from the 6th and 10th position vinyl protons was detected at 5. 05—5.14 p pm, and the doublet (1H) derived from the 2nd position vinyl proton was detected at 5. 87 p pm. Detected.
  • the estimated structure of pheromone A is 3, 7, 11- tr ime thy 1-2, 6, 10- tri de catriena or 7- ethyl- 3, 11- di ime t hy l- 2, 6 , 10—dode catrie na 1
  • Derivative treatment was performed on pheromone A purified by GC and analyzed by GC-E I -MS. GC-E I-MS conditions were measured as described above.
  • the pheromone was added to 100 1 BSA (TV, O-b i s (t ime t yl s i yl yl) ac te ami de) and incubated at 60 for 12 hours. As a result, no reaction occurred. From the results of acetylation and TMS, it was found that the structure of pheromone A does not have 1 OH.
  • the terminal structure of pheromone A is an ⁇ , 3-unsaturated aldehyde and has a methyl side chain at the j8 position.
  • the pheromone structure does not have one OH and has only one CHO, the number of ⁇ in the molecule is expected to be one, and the molecular weight is 234. Then it becomes 4, and it turns out that there are 4 unsaturated bonds in the structure.
  • the compound represented by the formula (X) was synthesized by the following procedure.
  • the compound of the formula (I I), the compound of the formula (I), and the compound of the formula (X) are as follows.
  • the compound represented by the formula (I) was prepared by referring to the method of Mori et al. (Mori, K. et al., Agri. Biol. Chem. (1971) 35, 1116-1127.).
  • the compound represented by the formula (I) was reduced by the following procedure. That is, 1.6 g (6.1 mm o 1) of the compound represented by the formula (I) is dissolved in 20 ml of dryhexane and cooled in a dryic eZacet on bath (-78 ° C) with 1 M 16 ml (16 mmo 1) of a solution of diisobutylaluminum hydride (DI BAL—H) in he x an e was added dropwise. After dropping, the mixture was stirred for 10 minutes. The reaction was performed in an Ar atmosphere. Me thanol 4m 1 was added to stop the reaction.
  • DI BAL—H diisobutylaluminum hydride
  • the terpene compound of the present invention is easily decomposed and has no harm to the human body. Using the terpene compound of the present invention, a large amount of adult males can be captured, and male and female mating behavior can be disturbed. Industrial applicability
  • the terpene compound of the present invention can be used for the prediction of occurrence of azuki beetle, and can be used as a communication disrupter.

Abstract

本発明は、アズキゾウムシの性誘引フェロモン、その製造方法並びに該フェロモンを有効成分として含むアズキゾウムシの誘引剤を提供することを目的とする。本発明は、下記式(X)で表されるテルペン化合物、その製造方法並びに式(X)で表されるテルペン化合物を有効成分として含むアズキゾウムシの誘引剤である。

Description

明 細 書 テルペン化合物 技術分野
本発明は、 新規なテルペン化合物、 その製造方法および該テルペン化合物を有 効成分として含むァズキゾゥムシの誘引剤に関する。 背景技術
鞘翅目マメゾゥムシ科に属するァズキゾゥムシ Cal sobruchus chinensis) は、 東南アジア、 インド、 オーストラリア、 アフリカ等、 世界各地に分布してい る。 体長は 2〜 3 mm程度で、 宿主となる豆にはァズキ ( Vigna angular is)、 サ サゲ ungulculata 、綠豆 radiata) などがある。
ァズキゾゥムシの雌成虫は宿主となる豆の表面に産卵し、 孵化した幼虫は豆の 内部へ摂食しながら進入する。 幼虫期を豆の内部で過ごし、 羽化すると豆から脱 出、 再び交尾し別の豆に卵を産み付けるというサイクルを繰り返す。 摂食の被害 にあった豆は栄養価の変性等商品としての価値を失う。 このような被害は特に豆 類を主要なタンパク源としている国にとっては深刻で、 ァズキゾゥムシをはじめ とするマメゾゥムシ科に属する害虫による貯蔵豆のロスは 2 0〜6 0 %にまで及 ぶという報告もある。
ァズキゾゥムシに対する防除法として、 殺虫剤の散布および燻蒸剤が使用され ているがいずれも神経系をターゲットとしているため安全性には限界がある。 ま た、 環境に対する残留性や薬剤耐性虫を生み出すなどデメリットも多く、 必ずし もニーズにあっているとは言えない。
近年、 これら害虫を直接殺すことなくその行動を制御することにより作物の被 害を防止する手法が開発されている。 すなわち、 害虫による寄主の発見や摂食行 動を人為的に制御できれば食害を防ぐことができる。 また交尾にいたる一連の配 偶行動や、 産卵行動を制御することができれば、 次世代の生育密度を低く抑える ことができる。
ァズキゾゥムシの生殖行動には、 フェロモンと言われる化学的刺激が関与して いる。 ァズキゾゥムシの生殖行動に関与するフェロモンとして、 交尾解発フエ口 モンと性誘引フェロモンの 2種類のフェロモンが存在すると言われている。 その うち交尾解発フェロモンは、 既にその構造が明らかにされている(非特許文献 1 参照)。 一方、 性誘引フェロモンは、 その存在が示唆されながら現在まで構造の 決定に至っていない。
(非特許文献 1 ) Tanaka, K. et al. , J. Pesticide Sci. (1981) 6, 75-
82. 発明の開示
そこで、 本発明は、 現在まで構造の決定に至っていない、 ァズキゾゥムシの性 誘引フェロモンの化学構造を明らかにし、 新規^合物を提供することを目的とす る。 また本発明は、 該新規化合物の製造方法を提供することを目的とする。 さら に本発明は、 該新規化合物を有効成分として含むァズキゾゥムシの誘引剤を提供 することを目的とする。
本発明者は、 ァズキゾゥムシの分泌物を、 高度に精製し、 G C— E A D (Gas Chromatographic - El ectroantennographic Detector)によりスクリ一ニング^:行 うことにより、 性誘引フェロモンを効率的に分離できることを見出し本発明を完 成した。 ここで、 G C— E ADとは、 活性物質を感知したとき、 触角に発生する 生物電位を測定するための触角電位検出器を装着したガスクロマトグラフィーの ことをいう(Noj ima, S. et al. , J. C em Ecol. (2003) 29, 321-336. ) 0 即ち本発明は、 下記式 (X)
Figure imgf000003_0001
で表されるテルペン化合物である
また本発明は、 下記式 (I )
Figure imgf000004_0001
で表される化合物を還元し、 下記式 (I I)
Figure imgf000004_0002
で表される化合物とした後、 酸化することからなる
下記式 (X)
Figure imgf000004_0003
で表されるテルべン化合物の製造方法である c
さらに本発明は、 下記式 (X)
Figure imgf000004_0004
で表されるテルペン化合物を有効成分として含むァズキゾゥムシの誘引剤を包含 する。 図面の簡単な説明
図 1は、 本発明の式 (X) で表される化合物の合成の手順を示す。
(符号の説明)
(1) Cyclopropyl methyl ketone (シクロプロピルメチルケトン)
(2) Ethyl 3-cyclopropyl-3-oxopropanoate ( 3—シクロプロピル— 3— ォキソプロパン酸ェチル)
( 3 ) Ethyl - (3-methyl-2-butenyl) - β -oxo-cyclopropylpropanoate (α-(3—メチルー 2—ブテニル ォキソ -シクロプロピルプロパン酸ェチ ル)
(4) Cyclopropyl 4-methyl-3-pentenyl ketone (シクロプロピ Jレ 4—メ チルー 3—ペンテ二ルケトン)
(5) 3-Cyc lop ropy l-7-methyl-6-octen-3-ol (3—シクロプロピル— 7— メチルー 6—ォクテン一 3—オール)
(6) 9-B r omo-6-e t hy 1 -2-me t hy 1 -2, 6-nonad i ene (9一ブロモ—6—ェチ ルー 2—メチルー 2, 6—ノナジェン)
(7) 5-Ethyl-9-methyl-4, 8-decadienenitrile (5—ェチル—9一メチル 一 4, 8—デカジエンニトリル)
(8) 6-Ethy卜 10- methy卜 5, 9-undecadien- 2- one (6—ェチルー 10—メ チル— 5, 9—ゥンデカジエン— 2—オン)
(I) Methyl 7-ethyl-3, ll-dimethyl-2, 6, 10-dodecatrienoate (7—ェチル -3, 1 1—ジメチルー 2, 6, 10—ドデカトリェン酸メチル)
(I I) 7-Ethyl-3, ll-dimethyl-2, 6, 10-dodecatrien-l-ol (7—ェチルー 3, 1 1一ジメチルー 2, 6, 10—ドデカトリェンー 1—オール)
(X) 7-Ethyl-3, ll-dimethyl-2, 6, 10-dodecatrienal (7—ェチルー 3, 1 1ージメチル— 2, 6, 10—ドデカトリェナール) 発明を実施するための最良の形態
(性誘引フェロモンの単離)
本発明の性誘引フェロモンは、 未交尾雌から分泌物を捕集し、 精製し、 GC- EADによりスクリーニングを行うことにより、 単離することができる。
分泌物の捕集は、 ァズキゾゥムシを飼育し、 性誘引フェロモンをろ紙などに捕 集することにより行う。 ァズキゾゥムシの雌は最初の交尾前にしか性誘引フエ口 モンを放出しないと考えられ、 ァズキゾゥムシは羽化直後に雌雄分別する必要が ある。
ろ紙などに捕集した分泌物は、 n—ペンタンなどの溶媒に抽出した後、 濃縮し、 精製する。 シリカゲルなど充填したカラムにより行うことができる。 精製したサ ンプルについて、 未交尾のォスの触角を設置し GC— E ADを用いてスクリー二 ングし、 フェロモン含有フラクションを特定した後、 フェロモン含有フラクショ ンを精製しァズキゾゥムシ由来のフェロモンを得ることができる。 GC—EAD によるフェロモン含有フラクションの特定と精製を繰り返すこと力好ましい。 精 製は HPLC、 GCなどにより行うこと出来る。
(構造決定)
単離したフェロモンは、 GC— E I— MS、 GC— C I— MSおよび1 H— N M Rによる機器分析を行い、 さらに微量誘導体処理によるジメチルヒドラゾン化、 オゾン酸化を行い、 構造を決定することができる。
その結果、 ァズキゾゥムシの性誘引フェロモンは、 下記式 (X)
Figure imgf000006_0001
で表される 7—ェチルー 3, 1 1—ジメチル— 2, 6, 10 ドデカ卜リエナー ル (7— e t hy l— 3, 11一 d ime t hy l— 2, 6 10— dode c a t r i e n a 1 ) であることが確認された。
(合成)
同定したフェロモンは、 下記式 (I)
Figure imgf000006_0002
で表される 7—ェチルー 3, 11一ジメチルー 2, 6, 10—ドデカトリェン酸 メチル (Me t hy 1 7— e t hy 1— 3, l l-d ime t hy l -2, 6, 10— dode c a t r i e n o a t e ) を還元し、 下記式 (I I)
Figure imgf000006_0003
で表される 7—ェチルー 3, —ジメチルー 2, 6, 10—ドデカトリェンー 1—オール (7— e t h y 1— 3, 1 1 - d i me t h y 1 - 2 , 6, 10— d od e c a t r i e n- l -o l) とした後、 酸化して製造することができる。 式 (I) で表される化合物は、 Mori, K. et al , Agri. Biol. Che (1971) 35, 1116-1127. に記載の化合物である。 還元は水素化ジイソブチルアルミニウム (D I BAL-H) などを用いて行うことができる。 また酸化は、 活性 Mn〇2 などを用いて行うことができる。 本発明の式 (X) で表される化合物は、 図 1に 示すような手順で非立体選択的合成することができる。
(誘引剤)
本発明のァズキゾゥムシの誘引剤は、 式 (X) で表されるテルペン化合物を有 効成分として含む。 該誘引剤は、 式 (X) で表されるテルペン化合物を有効量含 有する。 該誘引剤は、 他の成分として、 溶媒、 分散媒、 担体、 添加剤などを含有 してもよい。 実施例
実施例 1
以下の手順で、 ァズキゾゥムシの性誘引フェロモンを捕集、 精製し、 その構造 を同定した。
(ァズキゾゥムシの飼育)
ァズキゾゥムシは、 タッパーの上面にステンレス網をかけ通気性を持たせた容 器を用い飼育した。 容器中に、 一度水洗いし一晩乾燥させた小豆 (V. angularis, Dainagon)を二層になるくらい引きつめ飼育した。 飼育中はインキュベータ内を 気温 27で、 湿度 50%、 24時間暗期に維持した。 本条件下においてァズキゾ ゥムシはァズキの表面に卵が産卵されてからおよそ 25日で成虫が羽化した。 (性誘引フェロモンの捕集)
ァズキゾゥムシの雌は、 実験室レベルにおいて羽化後一度しか交尾行動を示さ ないため、 雌は最初の交尾前にしか性誘引フェロモンを放出しないと考えられる。 そのため、 ァズキゾゥムシを羽化直後に雌雄分別した。 分別した雌のァズキゾゥ ムシは 300〜400個体ごとに一つの腰高シャーレ (外径 90mm, 高さ 12 0mm) の中に入れた。 腰高シャーレ内には上底と下底それぞれにろ紙 (ADV ANTEC No. 2, 90mm) をはりつけ、 さらにひだ付ろ紙状に折ったろ 紙をパイル上に積み上げたものを設置し、 目的フェロモンを吸着した。 フエロモ ンは各シャーレについて 14〜 20日間に亘つて捕集し、 計 32, 277匹のバ 一ジン雌から捕集した。
(抽出)
性誘引フェロモンを吸着したろ紙を細かく破砕し、 円筒ろ紙 (ADVANTE C No. 84, 40 X 150 mm) に詰め込みソックスレー抽出器により溶 媒抽出した。 溶媒は n— p e n t a n e HPLC g r ade (A 1 d r i c h) を用い、 抽出時間は 24時間とした。 得られた粗抽出液を 1サンプルあた り約 1, 500匹相当量分になるように調整し、 計 20本のサンプル S 1〜S 2 0を得た。
(濃縮)
各サンプルをクデルナ—ダニッシュ濃縮器により濃縮した。 約 5mlまで濃縮 し、 使用するまで一 30ででストックした。
(オープンカラムによる精製)
各サンプルを氷上で窒素により 1mlまで濃縮し、 シリカゲルを充填剤に用い たオープンカラムにより精製した。 カラムは 2m 1のピペットを用い、 充填剤は Wakog e l C- 200 (W a k o ) 1 gを用いた。 溶媒は n— p e n t a n e , d i e t hy l e t h e r残留農薬試験 g r a d e (K o k u s an c hemi c a l) を用い、 ステップワイズ法で p en t an e/e t h e r = 1 Oml/Oml , 9. 5ml/0. 5ml , 9m 1 /1ml , 8ml/ 2ml, 5ml/5ml , 0 m 1 10 m 1で溶出させた。 S 1について、 各フ ラクシヨン 10m 1ずつ分取し、 S 1— 1, S 1 -2, S 1 - 3, S 1— 4, S 1-5, S 1— 6の計 6本のフラクションを得た。 他のサンプル S 2〜S 20に ついても同様にフラクションを得た。
(GC— EADによるスクリーニング)
各フラクションから約 1. 5匹雌相当量の試料を GCにインジェクションし、 GC— EADによるスクリーニングを行った。
GC— EAD (Ga s Ch r oma t og r aph i c— E l e c t r o a n t ennog r aph i c De t e c t o r) は、 HP 5890 s e r i e s I I (Ag i l e n t) を用い、 カラムは DB— 5 (3 OmX 0. 25 mm, 0. 25 ; J &W) を用いた。 インジェクションはスプリットレス法 で行い、 サンプリングタイムは 1分とした。 GCコンディションはインジェク夕 —側 ( i n j ) が 25 O , 検出器側 (d e t) は F I D, EADとも 280で に設定し、 カラムオーブンは 60 で 3分保持後、 10 Zm i nで 280でま で昇温させ 10分間保持した。 キャリアガスには N2を用い、 カラムヘッドプレ ッシヤーは 145 k P aとした。
カラムは検出器側の出口においてヒューズドシリ力ユニバーサル三方コネク夕 一 (J&W) を用い、 ラインをスプリットした。 また、 コネクター直前において キヤリァーガスを追加するために、 T C Dキヤピラリー用ァダブ夕メークアップ ガスライン付 (Ag i l en t) を接続し、 N2を 30 m 1 /m i n追加した。 スプリット後のラインは不活性処理済溶融シリカキヤビラリ一力ラム (lmx 0. 25mm; A 1 1 t e c h) により一方を F I Dポートに、 もう一方をカラ ムオーブンから N P Dポートを経由して外に出し、 流出物が触角に受容するよう にした。 カラム出口から流出物を触角上まで運ぶために、 300ml /mi nの 空気を流した。 この空気は活性炭を通し、 パブリング、 氷による冷却により、 湿 度を持たせた。
オペアンプには TL 082 CP (TEXAS I N S TRUME NT S ) を 使い、 0. 5Hzの h i gh p a s s f i l t e rを用いた。 そしてアンプ 用に ± 15 Vの定電圧直流電源を用いた。 電極は Ag電極を 0. 2M Na C 1溶液中で 30分通電させ Ag— C 1メツキした。 その上に 0. 5% NaC 1 溶液のドロップをのせ、 アツセィ直前に切断した未交尾のォスの触角を設置した。 なお、 GC— EAD用の GCの改造は Noj ima, S. et ah, J. Chem. Ecol. (2003) 29, 321-336.を参照した。
その結果、 サンプル S 1〜S 20いずれにおいても 2番目のフラクション (S 1 -2, S 2 - 2, S 3— 2, · · · ·, S 20 - 2) にのみ活性がみられた。 また、 一回のアツセィでわずかにリテンションタイムの異なる 2回の脱分極を検 出した。 しかしながら精製度が低いため夾雑物が多く、 F I D側でどのピークが フエロモン由来のピ一クであるか同定できなかつた。
(H i gh Pe r f o rman c e L i qu i d Ch r oma t og r a phy (HPLC) による精製)
GC— E ADによるスクリーニングの結果、 サンプル S 1について活性のあつ た S 1—2をさらに HPLCにより精製した。 あらかじめフラクション中の溶媒 を氷上で窒素により完全に留去させた後、 pen t an e l O O lで溶解させ ておいた。 装置は LC— 5 A (S h i ma d z U) を用いた。 検出器は S PD— 2 Aを用い検出波長は 254nmとした。 溶媒は n— p en t a n e, d i e t hy l e t he rを用レ 、 p e n t a n e 100 %から 1 %/m i nで p e n t a n e/e t he r = 50%/50 %までグラジェント法で溶出させた。 トー タル流量は lmlで、 各 lmlずつ分取した。
S 1—2について、 S 1— 2— 1から S 1— 2— 50までの 50本のフラクシ ョンを分取し、 各フラクションを GC— EADによりスクリーニングにかけた。 その結果 S 1— 2— 21〜23付近に活性が集中していた。 サンプル S 2— 2〜 S 20— 2についても同様に精製とスクリーニングを行なった結果、 各サンプル の 21〜23のフラクションに活性が集中していた。
HPLC精製により精製度が上がったため、 各サンプルのフラクション 21〜 23を GCにかけて得られる F I D上において EADシグナルと比較しフエロモ ン由来の 2つのピークを同定でき、 それぞれを別のフラクションに分取すること ができた。 (以下 GCの F I D上でリテンションタイムの早いほうからフエロモ ン A, Bとする)。
(GC— E I— MSによる解析)
フェロモン A, Bの各フラクションの GC— E I— MS解析を行った。 装置は QP 5000 (S h i ma d z u Co r po r a t i on) を用いた。 カラム は DB— 5 (30mX 0. 25 mm, 0. 25 μπι ; J &W) を用いた。 i n j , d e tの温度はそれぞれ 250で, 280でとし、 オーブン温度は 60でで 3分保持後、 1 O^Zmi nで 280でまでの昇温プログラムを用いた。 キヤリ ァガスは Heを用い、 カラムヘッドプレッシャーは 100 kP aとした。 インジ ェクシヨン法はスプリツトレス法を用い、 サンプリングタイムは 1分とした。 その結果、 どちらのフェロモンにおいても顕著な分子イオンピーク (M+) を 検出することができなかった。 フラグメントイオンのパターンについてもフエ口 モン A, B間におけるパターンに顕著な差は見られなかった。 また、 NI STラ イブラリにおいてシミラリティ一検索を行った結果、 f a rne s o lや c i t r a 1といったテルペン系の化合物に高い類似度を示した。 以上よりフェロモン がテルペン系化合物であることが示唆された。
(GC-C I一 MSによる解析)
次に分子量を決定するために各フラクションの GC— C I—MS解析を行った。 装置は Q P 2010 (Sh imadz u Co r po r a t i on) により測 定した。 カラムは DB— 5 (3 OmX 0. 25mm, 0. 25 urn; J &W) を用いた。 i n j , d e tの温度はそれぞれ 250で, 280でとし、 オーブン 温度は 60で、 3分保持後、 1 O^Zm i nで 280°Cまでの昇温プログラムを 用いた。 キャリアガスは Heを用い、 カラムヘッドプレッシャーは 100 k P a とした。 反応ガスは i s o— bu t aneを用いた。
その結果どちらのフェロモンにおいても mZz == 235に M++ 1の分子ィォ ンピークを検出した。 また mZz = 217に M+— H20と予想される顕著なフ ラグメントピークを検出した。 以上の結果から、 フェロモン A, Bの分子量が 2 34であることがわかり、 その構造中に一〇Hもしくは—CHO、 もしくはその 両方を有することが推定された。 以上 GC— C I—MS, GC— E I—MSの結 果からフェロモン Aと Bは異性体であることが推定されたので、 以下フェロモン Aについて解析を行った。
(GCによる精製)
誘導体化、 NMR等更なる解析を行っていくために、 GCにより精製を行った。 装置は HP 5890 s e r i e s I I (Ag i l e n t) を用い、 カラムは Z B— l ( 3 0 mx 0. 5 3 mm, 1. 5 0 / m ; P h e n ome n e x) を 用いた。 インジェクションはスプリットレス法で行ったが、 インジェクションボ リュームを増やすために、 容量 900 1の注入口ライナを用いた。 サンプリン グタイムは 2分とした。 カラムは検出器側にヒューズドシリカユニバーサル二方 コネクタ一 (J &W) を接続し、 コレクター用に不活性処理済溶融シリカキヤピ ラリーカラム (40 cmx 0. 5 3 mm; Ag i l e n t) を接続した。 そし て目的のリテンションタイムでカラムを引き上げ、 氷により冷却した鞘を被せて カラム上に保持させ、 溶媒により溶出させた。 GCコンディションは i n j側が 2 50V, d e t側は 1 50°Cに設定し、 カラムオーブンは、 60でで 3分保持 後、 1 O^Zm i nで 2 80 まで昇温させ 1 0分保持した。 キャリアガスには N2を用い、 カラムヘッドプレッシャーは 2 p s iとした。 なお、 GCによる分 取の手法は Noj ima, S. et al. , J. Chem Ecol. (2004) 30, 2153-2161.を参照 した。
フェロモン Aを含むフラクションのうち、 F I Dより得られたクロマトグラム 上でフェロモン由来のピーク付近に夾雑物の少ないフラクションを選抜し、 一つ のフラクションにまとめた。 その際、 p e n t an e, e t h e rでは作業中に 溶媒が留去してしまうため、 溶媒を蒸留した n— h e X a n e (A 1 d r i c h) に置換した。 フェロモン Aについてあらかじめ測定しておいたリテンション タイムに合わせてサンプリングを行った結果、 ほぼフェロモン単一のピークを得 ることができた。
— NMRによる解析)
GCにより精製したフェロモン Aを1 H— NMRによる解析を行った。 装置は J NM-ECA 400 MHz (J EOL) を用いて測定した。 ミクロ試料管 を用い溶媒は CD C 1 3を用いた。 その結果 9. 90 p pmにホルミル基プロト ン由来のダブレット (1 H) を検出した。 しかしながら解析にまわすことができ たフェロモン量自体がおよそ数 gと少ないことから特に高磁場側において夾雑 物由来のシグナルが多くなり、 単独でのシグナルの帰属はこれ以上困難であった。 そのため、 これまでに得られた情報から構造が類似すると予想できたテルペン 系の他種由来のフェロモンや、 幼若ホルモン等の文献から1 H— NMRの解析デ —夕を集積し、 考察した。 その結果今回得られたシグナルを次のように帰属した。
0. 95 p pmに 7位もしくは 1 1位にェチル側鎖を有する場合の末端メチル プロトン由来のトリプレット (3H) を検出し、 2. 60 ppmにァ位のメチレ ン基プロトン由来のトリプレット (2H) を検出した。 そして 5. 05— 5. 1 4 p pmに 6位と 10位のビニルプロトン由来のマルチプレット (2H) を検出 し、 5. 87 p pmに 2位のビニルプロトン由来のダブレット ( 1 H) を検出し た。 これらの結果から、 フェロモン Aの推定構造は、 3, 7, 11— t r ime t h y 1 - 2, 6, 10- t r i de c a t r i e n a もしくは 7— e t h y l— 3, 11— d ime t hy l— 2, 6, 10— dode c a t r i e na 1であると推定された。
(誘導体化による解析)
GCにより精製したフェロモン Aに対し、 誘導体処理を行い GC— E I -MS により解析を行った。 GC— E I—MSの条件は上述と同様に測定した。
ァセチル化
2 \11 ac e t i c anhyd r i de i n 100 1 b e n z e neと l O On l py r i d i ne i n 100 1 benz eneを 混ぜ、 フェロモンを加え、 6 Ot:で 12時間インキュベートした。 その後 be n z en e 200/z lと d i s t i l l e d wa t e r 200 1を加え攪 拌し、 水層を除去した (2回繰り返した)。 その結果、 全く反応が起こらなかつ た。
TMS化
100 1 B S A (TV, O-b i s (t r ime t hy l s i l y l) a c e t ami de) 中にフェロモンを加え、 60でで 12時間インキュベートし た。 その結果、 全く反応が起こらなかった。 ァセチル化および TMS化の結果よ り、 フェロモン Aの構造中には一 OHを有しないことがわかった。
ジメチルヒドラゾン化
次に構造中の—CHOの有無を確認するために、 50 n g N, T — d ime t hy l hydo r a z i n e i n 50 n 1 he x an e中にフエロモ ン Aを加え、 撹枠しジメチルヒドラゾン化を行った。 その結果、 m/z = 276 に M++ 42の分子イオンピークを検出した。 この結果、 フェロモン Aの構造中 には一 CHOを有することがわかった。 また、 mノ z = 125に顕著なフラグメ ントピークを検出した。
直鎖のひ, 3—不飽和アルデヒドにおいてァリル位での開裂により mZz = 1 1 1に顕著なフラグメントピーク力検出されることが報告されていたため、 ひ, )8—不飽和アルデヒドで ι6位にメチル側鎖を有する c i t r a 1を用いて同様の 処理を行った。 その結果、 同様にァリル位での開裂により直鎖の a, jS—不飽和 アルデヒドによる mZz = 1 1 1より 14多い m/z = l 25に顕著なフラグメ ントピークを検出した。 この結果から、 フェロモン Aの末端構造は α, 3—不飽 和アルデヒドで j8位にメチル側鎖を有すると推定された。 また、 フェロモンの構 造中に一 OHをもたず、 一 CHOのみ有することから分子中の〇の数は 1つであ ると予想し、 さらに分子量が 234であることから不足水素指標を計算すると 4 となり、 構造中の不飽和結合は 4つであるとわかった。
オゾン酸化
フェロモン Aを含有する 50 _i lの he x an eを d r y i c e/a c e t o n e浴中で— 78でに冷却しながら酸素ガスを 3m 1ノ分で吹き込み、 テス ラ 'ランプチェッカー HF—20 (信光電気) を用いて 10〜15 kVの高電圧 を 20秒かけた。 その後、 1; 1" 1 011 1 1 1 03 1 111€の€1 1 (: 111 o r om e t han e溶液 (1 ii g/ 1) を 1 1加え攪拌し、 オゾン酸化を 行った。
それぞれの推定構造をオゾン酸化処理した場合に期待される生成物のうち比較 的分子量の大きい 2種の生成物に着目した。 3, 7, 1 1一 t r ime t hy l — 2, 6 , 10— t r i de c a t r i e n a l力 らは 4_oxop e n t an a 1 (MW100) のみ生成するが、 7— e t hy l— 3, 1 1— d ime t h y 1— 2 , 6, 10— dod e c a t r i e n a l力、らは 4一 oxop e n t a n a lと 4一 oxohe xan a l (MW1 14) の両化合物が生成する。 この 差が生じることを期待してフェロモン Aをオゾン酸化処理したところ、 mZz = 100の 4— oxo pe n t an a lはサンプル量が少なく検出できなかったが、 m/z =1 14の 4— oxohe xan a 1は検出した。 この 4— ox ohe x an a lは 3, 7, 1 1 - t r i me t hy l - 2, 6, 10- t r i de c a t r i e n a 1からは生成せず、 7— e t hy l— 3, 1 1— d ime t hy l 一 2, 6, 10— d od e c a t r i e n a 1からのみ生成する。 以上の結果か らフェロモン Aの構造は式 (X) で表される 7 _e t hy l—3, 1 1— d im e t hy l— 2, 6, 10— d o d e c a t r i e n a 1であることがわかった。 実施例 2
以下の手順で、 式 (X) で表される化合物を合成した。 式 (I I) の化合物、 式 (I) の化合物、 式 (X) の化合物はそれぞれ以下の通りである。
式 ( I ) で表される化合物: me t hy 1 7— e t hy l— 3, 1 1— d im e t hy l— 2, 6, 10— dod e c a t r i e no a t e
式 ( I I ) で表される化合物: 7— e t hy l— 3, 1 1— d ime t hy l— 2 , 6, 10— dode c a t r i e n— 1— o 1
式 (X) で表される化合物: 7— e t hy l— 3, 1 1— d ime t hy l— 2, 6, 10— dode c a t r i e n a l
(式 (I) で表される化合物の合成)
式 (I) で表される化合物は、 森らの手法を参照し調製した (Mori, K. et al. , Agri. Biol. Chem. (1971) 35, 1116—1127.)。
(式 (I I) で表される化合物の合成)
式 (I) で表される化合物を以下の手順で還元した。 即ち、 式 (I) で表され る化合物 1. 6 g (6. 1 mm o 1 ) を d r y h e x a n e 20mlに溶解 させ、 d r y i c eZa c e t on e浴中 (—78° C) で冷却しながら 1 Mの水素化ジイソブチルアルミニウム (D I BAL—H) の he x an e溶液 1 6ml (16mmo 1) を滴下した。 滴下後、 10分撹枠した。 反応は Ar雰囲 気下で行った。 Me t h ano l 4m 1を加え反応を停止した。 その後、 5% HC 1水溶液を加え室温まで戻し、 e t h e rにて抽出を行った。 抽出液は、 水、 飽和 NaHC03水溶液、 飽和 Na C 1水溶液で洗い、 Mg S〇4で乾燥後、 溶 媒をエバポレー夕で留去、 残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー (h e x a n e/e t hy \ a c e t a t e) で精製し、 式 ( I I ) で表される化合物 を合成した。 収量 1. 4 g (5. 9mmo 1 ; 97%)。
(式 (X) で表される化合物の合成)
式 ( I I ) で表される化合物 1. 4 g (5. 9mmo 1) を h ex an e 1 0 Om 1に溶解し、 水浴中 Ot:で活性 Mn〇2 16. 5 gを加え、 8時間攪拌 し酸化した。 ろ過後、 エバポレー夕で溶媒を留去し式 (X) で表される化合物を 得た。 収量 1. 2 g (5. lmmo 1 ; 86%)0
(GC— EADによる確認)
合成した式 (X) で表される化合物について GC— EADによるアツセィを行 つたところ、 触角上で脱分極が生じ、 ァズキゾゥムシの性誘引フェロモンである ことが確認された。 発明の効果
本発明のテルペン化合物は分解されやすく人体に対する害もない。 本発明のテ ルペン化合物を用いて大量の雄成虫を捕獲したり、 雌雄の配偶行動を撹乱したり することができる。 産業上の利用可能性
本発明のテルペン化合物は、 ァズキゾゥムシの発生予測調査へ利用したり、 交 信撹乱剤などに利用することができる。

Claims

下記式 (X)
Figure imgf000017_0001
で表されるテルペン化合物。 の
2. 下記式 ( I )
Figure imgf000017_0002
で表される化合物を還元し、 下記式 (I I)
Figure imgf000017_0003
で表される化合物とした後、 酸化することからなる 下記式 (X)
Figure imgf000017_0004
で表されるテルべン化合物の製造方法。
3. 下記式 (X)
Figure imgf000018_0001
で表されるテルペン化合物を有効成分として含むァズキゾゥムシの誘引剤。
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Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS60222434A (ja) * 1984-04-17 1985-11-07 Kuraray Co Ltd (2e,6e)−3,7,11−トリメチル−2,6,10−ドデカトリエン−1−ア−ルの製造方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
RAWAT D.S. ET AL.: "Synthesis of 7-Substituted Farnesyl Diphosphate Analogues", ORGANIC LETTERS, vol. 4, no. 18, 2002, pages 3027 - 3030, XP003013356 *
SEN S.E. ET AL.: "Natural and Unnatural Terpenoid Precursors of Insect Juvenile Hormone", JOURNAL OF ORGANIC CHEMISTRY, vol. 62, no. 11, 1997, pages 3529 - 3536, XP003013357 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2012502922A (ja) * 2008-09-22 2012-02-02 ザ プロクター アンド ギャンブル カンパニー 特定のポリ分枝状アルデヒド、アルコール、界面活性剤及びそれらに基づく消費者製品

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