WO2003076925A1 - Procede de purification de nucleocide guanine blesse par oxydation, procede de mesure d'un tel nucleocide et dispositif d'analyse destine a ce mode de realisation - Google Patents

Procede de purification de nucleocide guanine blesse par oxydation, procede de mesure d'un tel nucleocide et dispositif d'analyse destine a ce mode de realisation Download PDF

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Definitions

  • the present invention relates to a method for purifying an oxidatively damaged guanine nucleoside, particularly 8-hydroxyhydroxyguanosine (hereinafter abbreviated as 8-OH-dG), a method for measuring the same, And an analyzer for performing these.
  • 8-OH-dG 8-hydroxyhydroxyguanosine
  • Background Art In recent years, a great deal of research has been conducted on the effects of active oxygen in living bodies ( active oxygen usually acts as a defense system when foreign substances enter a living body. However, food additives (carcinogenesis) If active oxygen is generated excessively due to stress, etc., they cause DNA damage and produce 8- ⁇ H-dG, a type of oxidative DNA damage product. This 8- ⁇ ⁇ H-dG induces mutations and is thought to play an important role in the carcinogenesis process, and active oxygen is not only a cause of carcinogenesis but also a potential cause of various diseases and aging. Have been.
  • the method (1) has a low recovery rate, so it is necessary to use a radioactive internal standard to calculate the urine concentration.
  • the method (2) requires complicated pre-processing. Also, it is difficult to determine the timing of valve switching, and contaminants near the peak of 8-OH-dG It often comes out. In addition, not only a large amount of eluent and washing solution are required, but also a large amount of toxic waste liquid is generated, which is not preferable from an environmental point of view. In addition, the method (3) has a problem in specificity and has poor reproducibility.
  • the measurement equipment is expensive and economically unfavorable, and the recovery rate is unstable, so that internal standard substances are required. It is.
  • the present invention provides a method for purifying oxidatively damaged guanine nucleosides, particularly 8-0 HdG, which is highly accurate, reproducible, and economical and environmentally friendly, and a method for measuring the same. It is intended to provide an analyzer.
  • the present inventors have proposed the use of an anion exchange column to oxidize 8-OH-dG, 8-hydroxyguanosine (ribonucleoside) (hereinafter abbreviated as 8- ⁇ H-rGuo) and the like. It was found that specifically damaged guanine nucleosides can be specifically adsorbed and recovered. In addition, for 8-0 H-d G, it is possible to accurately collect 8 - ⁇ H_d G by using 8 - ⁇ H-rG uo as an internal standard marker. The present inventors have found that G can be measured with high accuracy and high reproducibility, and that it is excellent in economical efficiency and environmental aspects, and completed the present invention.
  • the method for purifying oxidatively damaged guanine nucleosides of the present invention is a method for purifying oxidatively damaged guanine nucleosides resulting from damage to guanine in DNA or RNA, and comprises the steps of: It has a first purification step of purifying guanine nucleotides by anion exchange chromatography. Further, it is preferable that the oxidatively damaged guanine nucleotide is 8-OH-dG.
  • the method for purifying 8-OH-dG of the present invention is a method for purifying 8-hydroxydoxyguanosine (8-OH-dG) contained in a sample, wherein the sample is previously prepared with 8-H-dG.
  • the method for purifying 8-H-dG is a method for purifying 8-hydroxyhydroxyguanosine (8-OH-dG) contained in a sample, wherein the sample is previously prepared with 8-H-dG.
  • a first purification step in which droxyguanosine (ribonucleoside) (8-OH-rGu0) is added and the sample is purified by anion exchange chromatography, and a sample obtained in the first purification step.
  • the sample is preferably urine.
  • the sample is urine.
  • the method for measuring oxidatively damaged guanine nucleoside according to the present invention further comprises a measuring step for measuring the purified oxidatively damaged guanine nucleoside obtained by the above-mentioned purification method.
  • the method for measuring 8-OH-dG of the present invention is characterized by further comprising a measuring step for measuring purified 8-0HdG obtained by the above-mentioned purification method.
  • the method of measuring 8-OH-dG according to the present invention is characterized in that the measurement of the purified 8-hydroxyhydroxyguanosine (8-OH-dG) is carried out by the method described in (1) Ribonu in anion exchange chromatography. Peak 8 -0 H-rGu0 peak recognition, (2)-start of 8-0 H-d G fractionation after a fixed time, (3)-8-.0 H after a fixed time -dG fractionation is completed, and (4) mixing of 8-OH-dG fraction is performed as appropriate, followed by injection into a reversed-phase column.
  • the analyzer of the present invention is an apparatus for purifying and measuring 8-hydroxydoxyguanosine (8-OH-dG),
  • HPLC-1 An anion exchange column (HPLC-1), which specifically adsorbs 8-OH-dG contained in the sample,
  • UV detector that detects the elution position of 8-hydroxyguanosine (liponucleoside) (8-OH-rGu0) and 8-H- obtained from anion exchange column (HPL C-1)
  • a reversed-phase column (HPL C-2) for further purifying the fraction containing dG and a detector for measuring the purified 8-OH-dG obtained from the reversed-phase column (HPL C-2) It is characterized by having.
  • the control program according to the present invention is a program for controlling a process of recovering 8-hydroxyhydroxyguanosine (8-OH-dG) contained in a sample by column chromatography, and is added to the sample in advance.
  • the peak signal of the marker (8-OH-rGuo) placed is received from the UV detector, and a signal is output after opening the valve connected to the sampler when 8-OH-dG elutes after a certain period of time. After a certain period of time, a signal indicating the completion of preparative separation is output, and then a signal for injecting the obtained 8-OH-dG fraction into the second purification column is output, and elution is performed from the column.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing an embodiment of an apparatus for purifying and measuring 8-OH-dG.
  • FIG. 2 is a schematic diagram showing an embodiment of an apparatus for performing purification and measurement of 8H-dG.
  • Figure 3 shows an example of the separation pattern of urine and a mixture of 8-OH-dG and 8-OH-rGuo using an anion exchange column (HPL C-1). 1 shows a localization.
  • FIG. 4 shows an example of a human urine separation pattern using an anion exchange column (HPLC-1).
  • FIG. 5 shows an example of a separation pattern of human urine using a reversed-phase column (HPLC-2).
  • FIG. 6 shows an example of separation of human urine using an anion exchange column (HPLC-1).
  • FIG. 7 shows an example of a human urine separation pattern using a reversed-phase column (HPLC-2).
  • FIG. 8 shows an example of a separation pattern of rat urine using a reversed-phase column (HPLC-2).
  • FIG. 9 shows an example of a separation pattern of rat urine using a reversed-phase column (HPLC-2). Explanation of reference numerals
  • the best mode for carrying out the invention provides a method for evaluating the amount of oxidatively damaged guanine nucleoside, particularly 8-0H-dG, which serves as an index, for evaluating the amount of active oxygen in a living body.
  • Oxidatively damaged nucleosides including 8-OH-dG, are the result of DNA or RNA damage caused by active oxygen (oxygen radicals) in the body and are used as indicators of active oxygen .
  • Oxidatively damaged nucleosides other than 8- --dG include 2-hydroxydoxyadenosine (2-0HdA) and 5-hydroxydoxycytidine (5-OH-dC) 5-formyl Deoxyduridine (5-CH Od U), 8-OH-l-Guo and the like. These oxidatively damaged nucleosides are excreted out of the body as urine by urine.
  • oxidatively damaged guanine nucleosides such as 8-OH-dG and 8-OH-rGuo have a negative charge, so that they can be easily purified using an anion exchange column described later. Can be collected.
  • an index of active oxygen especially 8-Hd It is preferable to use G.
  • oxidatively damaged guanine nucleoside is a result of guanine in DNA or RNA being damaged by active oxygen, and oxidatively damaged is oxidized or hydrolyzed.
  • Samples used in the method for purifying and measuring the oxidatively damaged guanine nucleosides (including 8-OH-dG) of the present invention include urine, serum, cerebrospinal fluid, saliva, medium after cell culture, etc. Biological sample. Among these, urine is particularly preferred because urine is easily collected and oxidatively damaged guanine nucleoside is stable in urine.
  • An apparatus for purifying and measuring 8-0HdG includes: an anion exchange column (HPLC-1) that specifically adsorbs 8-HdG; -Contains a UV detector that senses 8-OH-rGuo, which is an indicator of the elution position of dG, and contains 8 - ⁇ H-dG obtained from an anion exchange column (HPL C-1) It is provided with a reversed phase column (HPL C-2) for further purifying the fraction and a detector for measuring the purified 8- ⁇ H-dG obtained from the reversed phase column (HPL C-2).
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing an example of the analyzer.
  • reference numeral 11 denotes an anion exchange ram (HPL C-1), which is connected to the reversed-phase column (HPL C-2) 12 via a UV detector 14 and a column switching valve 16. .
  • HPLC-1 reversed-phase column
  • HPLC-1 anion exchange ram
  • the eluent used for eluting the molecules adsorbed on the column (the eluent used for the anion exchange column (HPLC-1) 11) is used for the liquid A, and the eluent used for the reverse phase column (HPL C-2) 12 is used.
  • the eluent is liquid B), and the guard column (filled with the same anion exchange resin as the anion exchange column (HPL C-1) 11) connected to the above-mentioned column switching valve 15 is used for washing.
  • Pumps 21, 22, and 23 are provided to feed the washing liquid (C solution) to each column.
  • Pump 21 is an autosampler 17
  • pump 22 is a power ram switching valve 16
  • pump 23 is a column switch. Each is connected to a switching valve 15.
  • a sampling injector ( ⁇ 2 3 1 XLJ) having a function of automatically operating the column switching valve 16 by detecting the peak of 8- ⁇ H-rGuo is used. And Gilson).
  • the program consists of (1) peak recognition of liponucleoside 8-OH-rGuo, (2) —start of 8-OH-dG fractionation after a fixed time, and (3) —8-OH after a fixed time. 0 Hd G fractionation completed, (4) Inject into HPLC-2 (see Fig. 6). More specifically, the functions are realized by the following flow. (1) Inject the sample into HPLC-1 using 2 3 1 XL.
  • the system waits for the set time (T2), then outputs a contact signal to the valve and starts sorting in the loop.
  • a contact signal is output to the valve to terminate the fractionation and simultaneously inject the fraction in the loop into the HPLC-2.
  • the fractionation of 8_ ⁇ H-dG is automatically performed based on the relative position to 8-OH-rGuo. Since the range (time) is determined, it is not necessary to set the fractionation range (time) of 8-OH-dG in advance.
  • the anion exchange column (HPLC-1) 11 specifically adsorbs 8- 8HdG contained in the sample, it has a very high recovery rate and can remove most contaminants. A fraction with less impurities can be obtained. Further, as described above, according to the anion exchange column (HPLC-1) 11, oxidatively damaged guanine nucleosides such as 8- ⁇ H-l-Guo having a negative charge can be easily prepared. It can be purified and recovered.
  • the anion exchange column (HPLC-1) 11 is not particularly limited as long as the column is made of an anion exchange resin.
  • the filler include those in which a quaternary ammonium group is bonded to a styrene divinylbenzene polymer and those in which a quaternary ammonium group is bonded to a polyhydroxymethacrylate polymer.
  • Aminex HP X-72S manufactured by BioRad
  • Shodex column packing manufactured by Showa Denko KK
  • MCI GEL CA08F manufactured by Mitsubishi Kasei Corporation, Hamilton RCX
  • the particle size of the anion exchange resin is preferably about 7 to 12 m.
  • the inner diameter of the force ram filled with the anion exchange resin is not particularly limited, but is preferably about lmm to 1.5 mm. If the inner diameter of the column is 2.0 to 4.6 mm, as shown in Fig. 2, the sampling injector 27 connected to the column switching valve 16 ("233 XL", manufactured by Gilson, etc.) It is preferable to automatically inject the fraction containing 8-HdG into a reversed-phase column (HPLC-2) 12 by using the method. In order to implement this method, a new program was installed in the 233XL and the measurement was performed.
  • This program consists of (1) peak recognition of liponucleoside 8- ⁇ H-rGu0, (2) —start of 8-OH-dG fractionation after a fixed time, (3) — 8-OH-dG fractionation after a fixed time, (4) mixing of 8-OH-dG fraction, and (5) injection into HPLC-2. Realizes the function by the following flow.
  • the length of the column filled with the anion exchange resin is not particularly limited. Depending on the particle size and exchange capacity of the anion exchange resin, it is possible to shorten the column and shorten the analysis time. Can be.
  • the UV detector 14 monitors the fraction eluted from the anion exchange column (HPL C-1) 11 and detects the elution position of 8_ ⁇ H-rGuo contained in the sample. . In this way, by monitoring the elution position of 8-OH-rGuo with the UV detector 14, the exact elution time of 8-OH-dG can be ascertained, and the column switching valve can be adjusted accordingly. By operating 16, the fraction containing 8-0H-dG can be reliably collected.
  • the reverse-phase column (HPL C-2) 12 is for further purifying the fraction containing 8-OH-dG obtained from the anion exchange column (HPLC-1) 11; There is no particular limitation as long as it has the properties of a phase column.
  • Commercially available products include YMC-Pack ODS-AM (S-5 ⁇ m) (YMC), Shiseido Capcel 1 Pac C18 MG (S-5 ⁇ m) (Shiseido Co., Ltd.) and the like.
  • the detector 13 measures the purified 8-H-dG obtained from the reversed-phase column (HPL C- 2), and is located downstream of the reversed-phase column (HPL C- 2) 12. Is provided.
  • an electrochemical detector (ECD) As the detector 13, an electrochemical detector (ECD), a liquid chromatography mass spectrometer (LCMS), or the like can be used.
  • the peak of 8-OH-dG is expressed by a specific ratio by selecting two types of setting voltages, and the peak is expressed by 8-OH-dG. I can confirm that
  • the analyzer for purifying and measuring 8-OH-dG processes a large amount of sample by performing continuous operation. It is possible.
  • the sample contains the 8 -OH-dG anion exchange column (HPL C-1) 11. Can be specifically adsorbed and most of the impurities contained in the sample can be removed at once.
  • the UV detector 14 can reliably purify the purified 8-0H-dG based on the elution position of the 8- ⁇ H-rGuo, which means that the recovery and reproducibility are excellent.
  • a large number of samples can be processed by continuous operation.
  • the above-described analyzers are relatively inexpensive and therefore have excellent economic efficiency.
  • the method for purifying 8-OH-dG of the present invention is characterized by having a first production step of purifying a sample by anion exchange chromatography.
  • a first production step of purifying a sample by anion exchange chromatography not only 8-OH-dG but also oxidatively damaged guanine nucleosides having a negative charge such as 8-OH-rGuo can be easily purified by anion exchange chromatography. , Can be collected.
  • the column temperature is preferably from 60 to 65 ° C., and in the case of a column having an inner diameter of l mm, the flow rate is preferably lYSOzlZmin.
  • purification may be performed by adding 8-0H-rGuo to a sample in advance as an internal standard marker of 8-HdG. preferable. If 8-OH-rGuo is added to the sample beforehand, 8-OH-rGuo is eluted, and after a certain period of time, 8-OH-dG is eluted. By monitoring the elution position of HrGuo with a UV detector 14, the exact elution position (time) of 8-OH-dG can be ascertained, and the fraction containing 8-H-dG can be confirmed with certainty. Can be collected.
  • the method for purifying 8-OH-dG of the present invention comprises the steps of adding 8-OH-rGuo to the sample in advance as an internal standard marker of 8- ⁇ H-dG, and performing anion exchange chromatography. It is preferable to perform the first purification step and further purify the fraction containing 8-OH-dG obtained in the first purification step (second purification step). '
  • the second purification step it is preferable to purify by reverse phase chromatography.
  • the eluent (solution B), temperature conditions, and the like used for reversed-phase chromatography differ depending on the reversed-phase column (HPLC-2) 12 used, and thus are appropriately determined.
  • HPLC-2 reversed-phase column
  • the column temperature should be about 40 ° (and the flow rate should be 0. It is preferably about 9 ml / min.
  • the measuring method of the present invention has a measuring step of measuring the amount of purified 8-HdG obtained by the above-described purification method, and comprises the above-described electrochemical detector (ECD), liquid chromatography mass spectrometer (L
  • ECD electrochemical detector
  • L liquid chromatography mass spectrometer
  • the amount of purified 8-H-dG can be measured using CM S).
  • the above measurement method can be applied to the measurement of not only 8-OH-clG but also purified oxidatively damaged guanine nucleosides such as 8-OH-rGuo.
  • the apparatus equipped with the autosampler 17 as shown in FIG. 1 and the apparatus equipped with the sampling injector 27 as shown in FIG. It is preferable to check the elution position of G.
  • a purified oxidatively damaged guanine nucleoside can be obtained with a high recovery rate. Furthermore, since the flow rate of the anion exchange column (HPLC-1) in the first purification step is very small, the consumption of eluent (solution A, solution B) and washing solution (solution C) is extremely low, and the waste solution after purification Since only a small amount is required, it is preferable from the viewpoint of environmental protection. According to the method for purifying 8-OH-dG of the present invention, it is possible to reliably collect purified 8-H-dG, and to obtain a fraction substantially free of contaminants near the peak of 8-H-dG.
  • the fraction containing 8 - ⁇ H_d G can be reliably identified by detecting the 8 - ⁇ H-rGuo peak and responding to the difference in the sampling range for each sample. Can be taken.
  • the measurement method of the present invention measures highly purified oxidatively damaged guanine nucleoside such as purified 8-H-dG or 8-OH-rGuo obtained by the above-described purification method, so that the measurement method is extremely accurate. , With reproducibility.
  • the method for measuring oxidatively damaged guanine nucleosides includes, for example, the evaluation of cancer risk in individuals, Prediction '' Can be used for diagnosis, aging, or general health evaluation.As a method of evaluating the results obtained by the above measurement method, for example, in the case of 8-OH-dG, 8-0H-dG standard solution At any time, inject it into the analyzer in addition to the urine sample, and divide the 8-OH-dG concentration in the sample calculated by comparison with the peak area by the concentration of a standard substance such as creatinine, or Calculate as the amount of 8-OH-dG in urine for 4 hours. Examples Hereinafter, the present invention will be described specifically with reference to Examples, but the present invention is not limited thereto.
  • Human urine was transferred to two Eppendorf tubes, each with 1 ml, and frozen at -20 ° C. After thawing the frozen urine to make a uniform solution, take 1001 of it and dilute it twice with a slightly acidic solution (composition: 96m1 of 0.6 mM sulfuric acid, 4 ml of acetonitrile). , 8 -0 H-dG and 8 - ⁇ H-1-Guo were added in each case 12 ⁇ g. Further, 6.71 of 2 M sodium acetate (pH 4.5) was added to lower the pH to 7 or less. After thoroughly stirring the mixture, centrifugation was performed at 1500 rpm for 5 minutes, and the supernatant was used as urine sample 1.
  • the urine sample 1 prepared as described above was used as an anion exchange column (filler (manufactured by Bio Rad)) with a particle size of 12 xm, an inner diameter of 1 mm, a guard column length of 4 cm, and a column length of 1 2 cm).
  • Figure 3 shows this separation pattern.
  • the separation pattern was detected using a UV detector (“UV-820”, manufactured by Tosoh I) (absorption wavelength: 254 nm).
  • 8-OH_dG was eluted with a certain time difference from the elution of 8-OH-rGuo. Therefore, by monitoring the elution of 8- ⁇ H-rGuo, the exact elution position of 8-OH-dG can be ascertained, and the fraction having 8- ⁇ H-dG can be reliably obtained. It is possible.
  • Human urine was placed in two Eppendorf tubes, 1 ml each, and frozen at -20 ° C. After thawing the frozen urine to make a homogeneous solution, take 1001 of it and dilute it twice with a slightly acidic solution (composition: 96 mM sulfuric acid, 96 ml, 4 ml of acetonitrile). 8-OH-rGuol2 / zg. Further, 6.7 l of 2 M sodium acetate (pH 4.5) was added to lower the pH to 7 or less. After stirring this well, centrifugation was performed at 1500 rpm for 5 minutes. The supernatant was used as urine sample 2.
  • Figure 6 shows another example of separation from human urine sample 2.
  • Human urine sample 2 was injected at 20 I. Separation conditions were as follows: Column MCI GEL CA08F (7 m); ID 1.5 mm, length (guard column) 5 cm, (this column) 15 cm; temperature, 65 ° C; flow rate, 361 / min Eluent, 0.3 mM sulfuric acid, 2% acetonitrile (solution A), which was detected using a UV detector ("UV-8020", manufactured by Tosoh Corporation) (absorption wavelength: 254 nm).
  • UV-8020 manufactured by Tosoh Corporation
  • FIG. 7 shows another example in which the fraction containing 8- ⁇ H-dG obtained by anion exchange chromatography was analyzed by reversed-phase chromatography.
  • YMC-Pack 0DS-AM S-5m
  • 10 mM phosphate buffer ⁇ ⁇ 7.2
  • the pH was slightly different Using 5% Me ⁇ H eluent (Solution B) 0 and the flow rate was 0.9 m 1 / min.
  • This separation pattern is based on the electrochemical detector (“ESA”)
  • Coulochem II ", esa company (voltage: 350 mV for guard cell; channel 1, 150 mV; channel 2, 300 mV).
  • the urine of the rat was placed in two Eppendorf tubes, each with 1 ml, and frozen at ⁇ 20 ° C. After the frozen urine is thawed to obtain a homogeneous solution, take 1001 of the solution and double it with a slightly acidic solution (composition: 96 mM sulfuric acid, 96 ml, 4 ml of acetonitrile). And 8 g of 0-0H-rGuo was added. Further, 6.7 lQ of 2 M sodium acetate (pH 4.5) was added to lower the pH to 7 or less. After thoroughly stirring the mixture, centrifugation was performed at 1500 rpm for 5 minutes, and the supernatant was used as urine sample 3.
  • the urine sample 3 of the rat was purified using an anion exchange column, and a fraction containing 8-OH-dG was obtained.
  • the column temperature was 65 ° C and the flow rate was 17 ⁇ 1 / min using 0.3 mM sulfuric acid and 2% acetonitrile eluent (Solution A).
  • the anion exchange column is packed with Aminex HP X-72S column (BioRad) (300 x 7.8 mm, particle size 12 m, degree of crosslinking 8%, sulfate type).
  • the reagent was packed in a column with an inner diameter of 1 mm (guard column length 5 cm, length of this column 15 cm).
  • FIG. 8 shows the separation pattern.
  • YMC-Pack 0DS-AM S-5 m
  • 10 mM phosphate buffer pH 7.2
  • a 1 M phosphate buffer pH 7.2
  • the separation pattern is an electrochemical detector (“ESA Coulochem II”, esa) (voltage: 350 mV guard cell; channel 1, 150 mV; channel 2.300 mV ).
  • Fig. 9 shows another example of the fraction containing 8-OH-dG obtained by anion exchange chromatography (MCI, 7-m particles) of rat urine, which was analyzed by reversed-phase chromatography.
  • MCI anion exchange chromatography
  • a reversed-phase column Shiseido Capce 11 Pak C18 MG (S-5 m) (250 x 4.6 mm) was used and lOmM phosphate buffer (pH 6.0; this was 0.1 M PH buffer solution (pH 6.0) was diluted, pH was slightly different), 2% MeOH solution was used, the column temperature was 46 ° C, and the flow rate was 0.75 ml / min. did.
  • ESA electrochemical detector
  • the purification method by anion exchange chromatography of the present invention is a method for purifying oxidatively damaged guanine nucleosides such as 8-OH-dG and 8-OH-rGuo in good yield. Can be collected.
  • the measurement method of the present invention measures a purified oxidatively damaged guanine nucleoside such as purified 8-OH_dG or 8-OH-rGuo obtained by the above-described purification method, it has extremely high accuracy. , With reproducibility.
  • the anion exchange column (HPL C-1) specifically adsorbs 8-OH-dG contained in the sample, so that the recovery rate is extremely high. It is high and can remove impurities contained in the sample at once. In addition, continuous operation enables large-scale processing. In addition, since this analyzer is relatively inexpensive, it is also economical.

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Description

明細書 酸化的損傷グァニンヌクレオシドの精製方法、 その測定方法、
及びこれらを実施するための分析装置 技術分野 本発明は、 酸化的損傷グァニンヌクレオシド、 特に 8 -ヒドロキシデ ォキシグアノシン (以下、 8 -OH- d Gと略す) の精製方法、 その測定 方法、 及びこれらを実施するための分析装置に関する。 背景技術 近年、 生体内での活性酸素の作用について多くの研究がなされている ( 通常、 活性酸素は生体内に異物が侵入した際、 防御システムとして働い ている。 しかしながら、 食品添加物 (発ガン性物質) 、 大気汚染、 喫煙. ストレス等によって過剰に活性酸素が発生すると、 それらは D N Aの損 傷を引き起こし、 酸化的 D N A損傷産物の一種である 8 -〇H- d Gを生 成する。 この 8 -〇H- d Gは突然変異を誘発し、 発癌過程で重要な役割 を演じていると考えられている。 また、 活性酸素は、 発癌だけでなく 様々な疾患や老化の原因として注目されている。
そのため、 生体内における活性酸素量を知ることにより、 個人個人の 発癌リスク評価や、 活性酸素関連の様々な疾患の予測 · 診断、 老化度、 あるいは一般健康の評価を行うことができる。
しかしながら、 生体内における活性酸素は不安定であり、 それらを直 接検出するのは困難である。 そのため、 活性酸素の指標として活性酸素 によって生成される 8 - OH-d Gを測定することが提案されている。
これまでに報告されている 8- OH-d Gの分析方法は 6種類に大別で きる? ( 1 ) 8 -O H-d Gに対する抗体を結合させたァフィ二ティ -力 ラムで精製した分画を H P L C- E C Dで分析する方法、 ( 2 ) 3本又 は 4本のカラムを接続してカラムスイッチング法により、 最終的に 8 - 〇H- d Gを H P L C- E C Dにより検出する方法、 ( 3 ) E L I S A法 により尿を直接分析する方法、 ( 4 ) G C- M S (内部標準物質が必 要) による方法、 ( 5 ) L C-M S-M S (内部標準物質が必要) による 方法、 ( 6 ) サンプリングインジェク夕一 (一定分画を分取し、 攪拌後, 一定量をカラムに注入する装置) を介してマルチファンクショ ンカラム (逆相カラム、 陽イオン交換カラムの機能を併せ持つゲル濾過カラム) と、 逆相カラムを接続し E CDにより検出する方法が挙げられる。
しかしながら、 ( 1 ) の方法は回収率が低いため、 尿中濃度を計算す るのに放射性の内部標準物質を用いる必要がある。
また、 ( 2 ) の方法は前処理が煩雑である。 また、 バルブ切り替えの タイミングの決定が困難であり、 8 - OH-d Gのピーク付近に夾雑物が 出る場合が多い。 また、 多量の溶離液、 洗浄液が必要となるだけではな く、 多量の有毒の廃液が生じるため環境面においても好ましくない。 また、 ( 3 ) の方法は、 特異性に問題があり、 再現性がよくない。
また、 ( 4) および ( 5 ) の方法は、 測定機器が高価であり経済的に 好ましくなく、 さ らに回収率が不安定なため内部標準物質を必要とする が、 それらは入手困難なものである。
また、 ( 6 ) の方法は、 一検体あたりの分析時間が 1 6 5分と長く、 連続運転による大量処理が困難である。 さらに、 クロマ トグラフィーに よる分析の際、 8 -〇H- d Gのピークに重なるような夾雑物が検出され る確率が高い。 そのため、 いずれの方法においても測定の精度が不十分 である。 本発明は、 高精度で、 再現性があり、 且つ経済性および環境面 に配慮した酸化的損傷グァニンヌクレオシド、 特に 8 -0 H-d Gの精製 方法、 その測定方法、 及びこれらを実施するための分析装置を提供する ことを目的とする。 発明の開示 本発明者は、 陰イオン交換カラムを用いることにより 8 - OH- d G、 8 -ヒ ドロキシグアノシン (リボヌクレオシド) (以下、 8 -〇H- r G u oと略す) 等の酸化的損傷グァニンヌクレオシドを特異的に吸着 · 回 収できることを見出した。 更に、 8 - 0 H- d Gにおいては、 8 -〇H- r G u oを内部標準マーカ一として用いることにより 8 -〇H_d Gを正確 に分取できること、 その結果、 8 -〇H- d Gを高精度で、 且つ再現性よ く測定でき、 さらに経済性および環境面にも優れていることを見出し、 本発明を完成した。
即ち、 本発明の酸化的損傷グァニンヌクレオシドの精製方法は、 D N A又は R N A中のグァニンが損傷を受けた結果生じる酸化的損傷グァニ ンヌクレオシドの精製方法であって、 試料中に含まれる酸化的損傷グァ ニンヌク レオシ ドを陰イオン交換クロマ トグラフィーによって精製する 第 1の精製工程を有することを特徴とする。 また、 上記酸化的損傷グァ ニンヌク レオシ ドが 8 - OH- d Gであることが好ましい。 本発明の 8 - OH-d Gの精製方法は、 試料中に含まれる 8 -ヒ ドロキシデォキシグァ ノシン ( 8 - OH- d G) の精製方法であって、 予め、 試料に 8 -ヒ ドロ キシグアノシン (リポヌクレオシド) ( 8 -〇H- r G u o) を 8 -〇H- d Gの内部標準マ一力一として加えて、 精製を行う ことを特徴とする。 本発明の 8 -〇H- d Gの精製方法は、 試料中に含まれる 8 -ヒ ドロキシ デォキシグアノシン ( 8 -OH- d G) の精製方法であって、 予め、 試料 に 8 -ヒ ドロキシグアノ シン (リボヌク レオシ ド) ( 8 -OH- r G u 0 ) を加えて、 該試料を陰イオン交換クロマ トグラフィーによって精製 する第 1 の精製工程と、 第 1の精製工程で得られた 8 -〇H-d Gを含有 する画分を逆相クロマ トグラフィーによって更に精製する第 2の精製ェ 程とを有することを特徴とする。 また、 上記酸化的損傷グァニンヌクレ オシドの精製方法において、 試料が尿であることが好ましい。 また、 上 記 8 -〇H- d Gの精製方法において、 試料が尿であることが好ましい。 本発明の酸化的損傷グァニンヌクレオシドの測定方法は、 更に、 上記精 製方法によって得られた精製酸化的損傷グァニンヌク レオシドを測定す る測定工程を有することを特徴とする。 本発明の 8 - OH-d Gの測定方 法は、 更に、 上記精製方法によって得られた精製 8 -0 H-d Gを測定す る測定工程を有することを特徴とする。 また本発明の 8 -OH-d Gの測 定方法は、 前記精製 8 -ヒ ドロキシデォキシグアノ シン ( 8 - O H - d G) の測定が、 陰イオン交換クロマ トグラフィーにおいて ( 1 ) リボヌ ク レオシ ド 8 -0 H- r G u 0のピ一ク認識、 ( 2 ) —定時間後の 8 -0 H - d G分取開始、 ( 3 ) —定時間後の 8 - .0 H- d G分取終了、 ( 4 ) 適宜、 8 -OH- d G分画のミキシング、 の順序で行われ、 ついで、 逆相 カラムへ注入して行われることを特徴とするものである。
本発明の分析装置は、 8 -ヒ ドロキシデォキシグアノシン ( 8 - OH- d G) の精製および測定を実施するための装置であって、
試料中に含まれる 8 - OH-d Gを特異的に吸着する陰イオン交換カラ ム (H P L C— 1 ) と、
8 -ヒ ドロキシグアノ シン (リポヌク レオシ ド) ( 8 -OH- r G u 0 ) の溶出位置を感知する UV検出器と、 陰イオン交換カラム (H P L C- 1 ) から得られた 8 -〇H- d Gを含有する画分を更に精製する逆相 カラム (H P L C-2 ) と、 逆相カラム (H P L C- 2 ) から得られた精 製 8 -OH- d Gを測定する検出器とを具備することを特徴とする。
本発明の制御プログラムは、 試料中に含まれる 8 -ヒ ドロキシデォキ シグアノ シン ( 8 - OH-d G) をカラムクロマトグラフィーにより回収 する処理を制御するためのプログラムであって、 予め試料中に加えてお いたマーカ一 ( 8 - OH- r Guo) のピークシグナルを UV検出器より受け、 一定時間後の 8 -OH-d G溶出時にサンプラーに接続されたバルブを開 く シグナルを出力し、 分取を開始し、 更に一定時間後に分取終了シグナ ルを出力し、 次いで、 得られた 8 -OH-d G分画を第二の精製カラムへ 注入するためのシグナルを出力し、 カ ラムから溶出する被検出物質 ( 8 -0 H-d G) を精製 ' 回収する処理をコンピュータに行わせること を特徴とする。 図面の簡単な説明 図 1は、 8 - OH- d Gの精製、 測定を実施するための装置の一実施形 態を示す模式図である。
図 2は、 8 〇H- d Gの精製、 測定を実施するための装置の一実施形 態を示す模式図である。
図 3は、 陰イオン交換カラム (H P L C- 1 ) による尿と 8 -OH - d Gと 8 - OH- r G u oとの混合物の分離パターンの一例であり、 マーカ 一の位置確認を示す。
図 4は、 陰イオン交換カラム (H P L C- 1 ) によるヒ ト尿の分離パ ターンの一例を示す。
図 5は、 逆相カラム (H P L C- 2 ) によるヒ ト尿の分離パターンの 一例を示す。
図 6は、 陰イオン交換カラム (H P L C- 1 ) によるヒ ト尿の分離パ 夕一ンの一例を示す。
図 7は、 逆相カラム (H P L C-2 ) によるヒ ト尿の分離パターンの 一例を示す。
図 8は、 逆相カラム (H P L C-2 ) によるラッ ト尿の分離パターン の一例を示す。
図 9は、 逆相カラム (H P L C- 2 ) によるラッ ト尿の分離パターン の一例を示す。 符号の説明
1 1 陰イオン交換カラム (H P L C- 1 )
1 2 逆相力ラム (H P L C-2 )
1 3 検出器
1 4 UV検出器
1 5 スィッチングバルブ
1 6 スィツチングバルブ
1 7 オートサンプラー
2 7 サンプリングインジェクター 発明を実施するための最良の形態 本発明は、 生体内における活性酸素量を評価するために、 その指標と なる酸化的損傷グァニンヌクレオシド、 特に 8 -0 H - d Gを精度よく測 定するための精製方法、 その測定方法およびこれらを実施するための分 析装置である。
8 - OH- d Gをはじめ酸化的損傷ヌクレオシドとは、 生体内の活性酸 素 (酸素ラジカル) 等によって D NAや RNAが損傷を受けた結果生じ るものであり、 活性酸素の指標として用いられる。 8 - ΟΗ-d G以外の 酸化的損傷ヌクレオシドとしては、 2 -ヒ ドロキシデォキシアデノシン ( 2 -0 H-d A) 、 5 -ヒ ドロキシデォキシシチジン ( 5 - OH - d C) 5 -ホルミルデォキシゥリジン ( 5 -C H O-d U) 、 8 - OH - l- G u o 等が挙げられる。 これら酸化的損傷ヌクレオシドは、 不要物として尿に より生体外へ排出される。 また、 これらのうち 8 -OH- d G、 8 - OH- r G u o等の酸化的損傷グァニンヌクレオシドは負の電荷を帯びている ため、 後段で説明する陰イオン交換カラムにより容易に精製、 回収する ことができる。 これらの中でも活性酸素の指標として、 特に 8 -〇H-d Gを用いることが好ましい。 なお、 本明細書における酸化的損傷グァニ ンヌクレオシドとは、 D N A又は R N A中のグァニンが活性酸素によつ て損傷を受けた結果生じるものであり、 酸化的損傷とはヒ ドロキシ,ル化 されることを示す。
本発明の酸化的損傷グァニンヌク レオシド ( 8 -OH- d Gを含む) の 精製方法、 及び測定方法に使用される試料としては、 尿、 血清、 髄液、 唾液、 細胞培養後の培地等、 全ての生体試料を挙げることができる。 こ れらの中でも、 尿は採取し易く、 また尿中で酸化的損傷グァニンヌクレ オシドは安定であるため、 特に尿が好ましい。
以下、 本発明の精製方法、 測定方法、 及びこれらを実施するための分 析装置について、 8 - OH- d Gに則して説明する。
本発明の実施形態に係る 8 -0 H-d Gの精製及び測定を実施するため の装置は、 8 -〇H-d Gを特異的に吸着する陰イオン交換カラム (H P L C - 1 ) と、 8 - O H- d Gの溶出位置の指標となる 8 - O H- r G u o を感知する UV検出器と、 陰イオン交換カラム (H P L C- 1 ) から得 られた 8 -〇H- d Gを含有する画分を更に精製する逆相力ラム (H P L C- 2 ) と、 逆相カラム (H P L C- 2 ) から得られた精製 8 -〇H- d G を測定する検出器を具備する。 図 1は、 分析装置の一例を示す模式図で ある。 図中符号 1 1は陰ィオン交換力ラム (H P L C- 1 ) であり、 U V検出器 1 4、 カラムスイ ッチングバルブ 1 6 を介して、 逆相カラム (H P L C-2 ) 1 2 と接続している。 また、 陰イオン交換カラム (H P L C - 1 ) 1 1の上流には、 試料を注入するォー 1、サンプラー 1 7が 接続された力ラムスィツチングバルブ 1 5が接続している。
また、 カラムに吸着した分子を溶出するための溶離液 (陰イオン交換 カ ラム (H P L C - 1 ) 1 1 に用いられる溶離液を A液、 逆相カラム (H P L C- 2 ) 1 2に用いられる溶離液を B液とする) 、 上記カラム スイ ツチングバルブ 1 5に接続されたガードカラム (陰イオン交換カラ ム (H P L C- 1 ) 1 1 と同一の陰イオン交換樹脂を充填) を洗浄する ための洗浄液 (C液) を各カラムに送り込むためのポンプ 2 1、 2 2、 2 3が設けられ、 ポンプ 2 1はオー トサンプラー 1 7、 ポンプ 2 2は力 ラムスイ ッチングバルブ 1 6、 ポンプ 2 3はカラムスイ ッチングバルブ 1 5に各々接続されている。
なお、 図 1 において、 オートサンプラー 1 7の代わりに、 8 -〇H - r G u oのピーク感知により、 カラムスイッチングバルブ 1 6を自動的に 作動させる機能を持つサンプリ ングイ ンジェクター ( Γ 2 3 1 X L J 、 ギルソン製) 等を用いることができる。
なお、 この方法を実施するために'、 2 3 1 XLに新たなプログラムを搭 載して測定を行った。 このプログラムは、 ( 1 ) リポヌク レオシ ド 8 - O H - r G u oのピーク認識、 ( 2 ) —定時間後の 8 - O H - d G分取開 始、 ( 3 ) —定時間後の 8 -0 H-d G分取終了、 ( 4 ) H P L C- 2へ の注入を行う ものである (図 6を参照) 。 より詳しくは、 以下のフロー により機能を実現している。 ( 1 ) 2 3 1 XLにより試料を HPLC-1に注入する。
( 2 ) 設定時間 (T1) だけシステムを待機させる。
( 3 ) 2 3 1 XLが UV検出器シグナルのモニタ一を開始する。
( 4 ) 設定 UVレベルを超える (ピーク感知) まで、 システムを待機させ る。
( 5 ) ピーク感知後、 設定時間 (T2) だけシステムを待機させた後、 バ ルブへ接点信号を出力し、 ループ内に分取を開始する。
( 6 ) 設定時間 (T3) 後、 バルブへ接点信号を出力し、 分取を終了させ ると同時にループ内の分画を HPLC- 2に注入する。
後段でも説明するが、 サンプリングインジェクター ( 「 2 3 1 X L」 、 ギルソン製) によれば、 8 - O H- r G u oとの相対的位置により自動的 に 8 _〇 H- d Gの分取範囲 (時間) が決定されるため、 予め、 8 - O H - d Gの分取範囲 (時間) を設定しておく必要がない。
上記陰イオン交換カラム (H P L C - 1 ) 1 1 は、 試料中に含まれる 8 -〇H-d Gを特異的に吸着するので回収率が非常に高く、 且つほとん どの夾雑物を取り除く ことができるため、 不純物の少ない画分を得るこ とができる。 また、 上述したように、 陰イオン交換カラム (H P L C - 1 ) 1 1 によれば、 負の電荷を帯びている 8 -〇H - l- G u o等の酸化的 損傷グァニンヌクレオシドにおいても、 容易に精製、 回収することがで きる。 陰イオン交換カラム (H P L C - 1 ) 1 1 としては、 陰イオン交 換樹脂を充填剤としたものであれば、 特に制限はない。 具体的な充填剤 としては、 スチレンジビニルベンゼン系ポリマ一に 4級アンモニゥム基 が結合したもの、 ポリヒ ドロキシメタクリレート系ポリマーに 4級アン モニゥム基が結合したもの等が挙げられる。 また、 市販品の充填剤とし ては、 アミネックス H P X- 7 2 S (BioRad製) 、 S h o d e xカラム 充填剤 (昭和電工 (株) 製) 、 MCI GEL CA08F (三菱化成 (株) 製、 ハミルトン RCX- 10) 等を挙げることができる。
また、 陰イオン交換樹脂の粒子径としては、 7 ~ 1 2 m程度である ことが好ましい。
上記陰ィオン交換樹脂を充填する力ラムの内径は、 特に制限はないが、 約 l mm〜 l . 5 mm程度であることが好ましい。 また、 カラムの内径 が 2 . 0 〜 4. 6 mmの場合は、 図 2に示すように、 カラムスィッチン グバルブ 1 6に接続したサンプリングインジェクター 2 7 ( 「 2 3 3 X L」 、 ギルソン製等) を用いて 8 -〇H-d Gを含有する画分を自動的に 逆相カラム (H P L C - 2 ) 1 2に注入することが好ましい。 なお、 こ の方法を実施するために、 2 3 3 XLに新たなプログラムを搭載して測定 を行った。 このプログラムは、 ( 1 ) リポヌクレオシド 8 -〇 H- r G u 0のピーク認識、 ( 2 ) —定時間後の 8 -O H- d G分取開始、 ( 3 ) — 定時間後の 8 - O H- d G分取終了、 ( 4) 8 - O H- d G分画のミキシン グ、 ( 5 ) H P L C- 2への注入を行うものであるが、 より詳しくは以 下のフローにより機能を実現している。
( 1 ) 2 3 3 XLにより試料を HPLC-1に注入する。
( 2 ) 設定時間 (T1)だけシステムを待機させる。
( 3 ) 2 3 3 XLが UV検出器シグナルのモニターを開始する。
( 4 ) 設定 UVレベルを超える (ピーク感知) まで、 システムを待機させ る。
( 5 ) ピーク感知後、 設定時間 (T2) だけシステムを待機させた後、 2 3 3 XLバイアルチューブ内に分取を開始する。
( 6 ) 設定時間 (T3) 後、 分取を終了させる。
( 7 ) 得られた分画を吸引、 吐出により撹拌する。
( 8 ) 分画の一部を HPLC- 2に注入する。
上記陰イオン交換樹脂を充填するカラムの長さは、 特に制限はないが. 陰イオン交換樹脂の粒子径、 交換容量等によって、 カラムを短くするこ とが可能であり、 分析時間を短縮することができる。
上記 UV検出器 1 4は、 陰イオン交換カラム (H P L C- 1 ) 1 1か ら溶出される画分をモニターし、 試料中に含まれる 8 _〇H- r G u oの 溶出位置を感知する。 このように、 8 - O H- r G u oの溶出位置を U V 検出器 1 4でモニタ一することによって、 正確な 8 - OH-d Gの溶出時 間が把握でき、 それに合わせてカラムスイッチングバルブ 1 6 を作動さ せることにより、 確実に 8 -0 H- d Gを含有する画分を分取することが できる。
上記逆相カラム (H P L C- 2 ) 1 2は、 陰イオン交換カラム (H P L C - 1 ) 1 1から得られた 8 -OH-d Gを含有する画分を更に精製す るものであり、 逆相カラムの性質を有するものであれば、 特に制限はな い。 市販品としては、 YMC-Pack ODS-AM (S- 5 ^ m) (YMC社) 、 Shise ido Capcel 1 Pac C18 MG (S- 5 ^ m) ( (株) 資生堂製) 等が挙 げられる。
上記検出器 1 3は、 逆相カラム (H P L C- 2 ) から得られた精製 8 - 〇H- d Gを測定するものであり、 逆相カラム (H P L C- 2 ) 1 2の下 流に設けられている。 上記検出器 1 3 としては、 電気化学検出器 (E C D) 、 液体クロマトグラフィー質量分析装置 (L CM S ) 等を用いるこ とができる。 また、 上記電気化学検出器 (E C D) に関しては、 2種類 の設定電圧を選ぶことにより、 8 - OH- d Gのピークは固有の比率で表 れるため、 そのピークが 8 -OH-d Gであることを確認できる。
また、 本発明の実施形態に係る 8 -OH-d Gの精製及び測定を実施す るための分析装置は、 連続運転を行うことにより大量の試料を処理する ことが可能である。 その場合、 ガードカラム 3 5の洗い洗浄液 (C液) は、 0. 5 M硫酸アンモニゥム : ァセトニトリル = 7 : 3程度の組成で あることが好ましい。
以上説明したように、 本発明の実施形態に係る 8 -0 H-d Gの分析装 置によれば、 陰イオン交換カラム (H P L C- 1 ) 1 1が試料中に含ま れる 8 -OH- d Gを特異的に吸着し、 試料中に含まれる夾雑物の大半を 一度に取り除く ことができる。 また、 UV検出器 1 4によって、 8 -〇 H- r G u oの溶出位置に基づき、 確実に精製 8 -0 H-d Gを分取でき、 回収率、 再現性に優れているといえる。 また、 連続運転を行うことによ り大量の試料を処理することができる。 また、 上述した分析装置は比較 的安価なため経済性にも優れている。
以下、 図 1 に示す分析装置を用いて 8 -〇H- d Gの精製方法及び測定 方法の説明をする。 (分取範囲 (時間) の決定) 8 -〇H-d Gと 8 - O H- r G u oと尿との混合物を図 1示す分析装置に注入し、 予め、 8 -〇 H-cl Gの分取範囲を決定しておく。 図 3は、 8 -〇 H- d Gと 8 -〇 H- r G u oと尿との混合物の分離パターンの一例であり、 8 -〇H- d Gの 内部標準マ一カーとなる 8 -〇H- r G u oの位置確認を示す。 このよう に、 分取範囲を予め決定しておく ことにより、 8 -〇H-d Gの正確な溶 出時間が把握でき、 それに合わせて力ラムスィツチングバルブ 1 6を作 動させるように設定することで、 確実に 8 - OH-d Gを含有する画分を 分取することができる。 なお、 上述したように、 図 1 において、 オート サンプラー 1 7の代わりに、 サンプリングインジェクター ( 2 3 1 XL) を用いた場合は、 ピーク感知により 8 -OH-r G u oとの相対的位置に より自動的に 8 -OH- d Gの分取範囲 (時間) が決定されるため、 分取 範囲 (時間) の設定をしておく必要がない。
(精製方法)
本発明の 8 - OH- d Gの精製方法は、 試料を陰イオン交換クロマトグ ラフィ一によって精製する第 1の ίき製工程を有することを特徴とする。 また、 上述したように、 8 - OH- d Gのみならず、 8 - OH- r G u o等 の負の電荷を有する酸化的損傷グァニンヌクレオシドにおいても、 陰ィ オン交換クロマトグラフィーによって容易に精製、 回収することができ る。
第 1 の精製工程における溶出条件としては、 カラム温度は 6 0〜 6 5 °C、 内径 l mmのカラムの場合、 流速が l Y S O z l Zminとする ことが好ましい。
また、 本発明の 8 - OH-d Gの精製方法は、 予め、 試料に 8 -0 H - r G u oを 8 -〇H-d Gの内部標準マ一カーとして加えて、 精製を行うこ とが好ましい。 8 -OH- r G u oを試料中に予め添加しておく と、 8 - O H- r G u oが溶出された後、 一定時間後に 8 - O H - d Gが溶出され るため、 8 -〇H-r G u oの溶出位置を UV検出器 1 4でモニターする ことによって、 正確な 8 - OH- d Gの溶出位置 (時間) が把握でき、 確 実に 8 -〇H- d Gを含有する画分を分取することができる。 また、 本発明の 8 -OH-d Gの精製方法は、 予め、 試料に 8 - OH-r G u oを 8 -〇H- d Gの内部標準マーカ一として加えて、 陰イオン交換 クロマトグラフィーによる第 1の精製工程を行い、 第 1の精製工程で得 られた 8 - OH- d Gを含有する画分を更に精製すること (第 2の精製ェ 程) が好ましい。 '
上記第 2の精製工程としては、 逆相ク口マトグラフィ一により精製す ることが好ましい。 逆相クロマ トグラフィーに用いられる溶出液 ( B 液) 、 温度条件等は、 使用する逆相カラム (H P L C- 2 ) 1 2 によつ て異なるため、 それらは適宜決定される。 例えば、 逆相カラムとして、 YMC-Pack ODS-AM (S- 5 u rn) (YMC社) を用いてヒ ト尿を分析する場 合は、 カラム温度が約 4 0 ° ( 、 流速が 0. 9 ml/min程度とすることが 好ましい。
(測定方法)
本発明の測定方法は、 上述した精製方法によって得られた精製 8 -〇 H-d Gの量を測定する測定工程を有し、 上述した電気化学検出器 (E C D) 、 液体クロマトグラフィー質量分析装置 (L CM S ) 等を用いて 精製 8 -〇H- d G量を測定できる。 なお、 上記測定方法は、 8 - OH-cl Gのみならず、 8 -OH- r G u o等の精製酸化的損傷グァニンヌクレオ シドの測定にも適用できる。
また、 連続運転を行う場合、 図 1 に示すようなオートサンプラー 1 7 を具備した装置においても、 図 2に示すようなサンプリングインジェク ター 2 7 を具備した装置においても、 定期的に 8 -0 H-d Gの溶出位置 をチェックすることが好ましい。
以上説明したように、 本発明の酸化的損傷グァニンヌクレオシドの精 製方法によれば、 精製酸化的損傷グァニンヌクレオシドを回収率良く得 られる。 更に、 第 1 の精製工程における陰イオン交換カラム (H P L C - 1 ) の流速が微量であるため、 溶離液 (A液、 B液) 、 洗浄液 (C 液) の消費が極めて少なく、 精製後の廃液量も少量で済むため、 環境保 全の面からも好ましい。 本発明の 8 - OH-d Gの精製方法によれば、 確 実に精製 8 -〇H- d Gを分取でき、 8 -〇H- d Gのピーク付近において 夾雑物がほとんどない画分を得ることができる。 また、 連続運転を行つ ても、 8 -〇H- r G u oピーク感知により、 サンプル毎の分取範囲のズ レに対応して、 確実に 8 -〇H_d Gを含有する画分を分取することがで きる。 また、 本発明の測定方法は、 上記精製方法によって得られた精製 8 -〇H- d G又は 8 - OH-r G u o等の精製酸化的損傷グァニンヌクレ オシドを測定するので、 非常に精度が高く、 再現性を有する。
なお、 本発明の技術範囲は、 上記実施形態に限定されるものではなく . 本発明の趣旨を逸脱しない範囲において種々の変更を加えることが可能 である。 例えば、 溶離液 (A液、 B液) 、 洗浄液 (C液) の組成等は、 使用するカラム (充填剤) により適宜変更可能である。
本発明の酸化的損傷グァニンヌクレオシドの測定方法は、 例えば、 個 人個人の発癌リスクの評価、 活性酸素関連の様々な疾患 (糖尿病等) の 予測 ' 診断、 老化度、 あるいは一般的健康の評価に用いることができる 上記測定方法により得られた結果の評価方法として、 例えば 8 - O H - d Gの場合、 8 -0 H- d G標準溶液を随時、 尿試料の他に分析装置に注 入し、 そのピーク面積との比較により算出された試料中の 8 -OH-d G 濃度をクレアチニンなどの標準物質の濃度で割った値、 あるいは 2 4時 間分の尿中の 8- OH-d G量として算出する。 実施例 以下、 実施例により本発明を具体的に説明するが、 本発明はこれに限 定されるものではない。
(実施例 1 )
〈尿試料 1の調製〉
ヒ トの尿を l m 1 ずつ 2本のエツペン ドルフチューブに取り、 - 2 0 °Cで凍結した。 凍結した尿を解凍して均一な液とした後、 その 1 0 0 1 を取り、 微酸性溶液 (組成 ; 0. 6 mM硫酸を 9 6 m 1 、 ァセトニ トリル 4 m l ) で 2倍に希釈し、 8 -0 H- d G及び 8 -〇 H- 1- G u oを 各 1 2 ^ g加えた。 更に 2 M酢酸ナトリウム ( pH4. 5 ) を 6. 7 1 加え、 pHを 7以下にした。 これをよく攪拌した後、 1 5 0 0 0回転、 5分間遠心分離を行い、 その上清を尿試料 1 とした。
上記のように調製した尿試料 1 を 1 0 1 陰イオン交換カラム (充填 剤 (Bio Rad製) の粒径 1 2 xm、 内径 1 mm、 ガードカラムの長さ 4 c m、 本カラムの長さ 1 2 c m) によって精製した。 この分離パターン を図 3に示す。 なお、 この分離パターンは、 UV検出器 ( 「UV- 8 0 2 0」 、 東ソ一製) (吸光波長 2 5 4 nm) を用いて検出した。
図 3に示すように、 8 - OH_d Gは、 8 -OH-r G u oの溶出から一 定の時間差を置いて溶出された。 そのため、 8 -〇 H- r G u oの溶出を モニターすることにより、 正確な 8 - OH- d Gの溶出位置を把握でき、 確実に 8 -〇H- d Gを有する画分を得ることが可能である。
(実施例 2 )
〈尿試料 2の調製〉
ヒ 卜の尿を 1 m 1 ずつ 2本のエツペン ドルフチューブに取り、 - 2 0 °Cで凍結した。 凍結した尿を解凍して均一な液とした後、 その 1 0 0 1 を取り、 微酸性溶液 (組成 ; 0. 6 mM硫酸を 9 6 m 1、 ァセトニ トリル 4 m l ) で 2倍に希釈し、 8 - OH- r G u o l 2 /z g加えた。 更 に 2 M酢酸ナトリウム ( pH4. 5 ) を 6. 7 l 加え、 pHを 7以下に した。 これをよく攪拌した後、 1 5 0 0 0回転、 5分間遠心分離を行い. その上清を尿試料 2とした。
〈陰イオン交換クロマトグラフィ一による精製〉
陰イオン交換カラムを用いて、 ヒ トの尿試料 2の精製を行い、 8 - 0 H-d Gを含有する画分 ( 3 4〜 4 1分) を得た。 なお、 0. 3 mM硫 酸、 2 %ァセトニトリル溶離液 ( A液) を用い、 カラム温度は 6 5 °C、 3007
11 流速は 1 7 1 /m i nとした。 このときの分離パターンを図 4に示す c なお、 上記陰イオン交換カラムは、 アミネックス H P X- 7 2 Sカラム
(Bio Rad製) ( 3 0 0 X 7. 8 mm、 粒径 1 2 /i m、 架橋度 8 %、 su lfate型) の充填剤を内径 l mmのカラム (ガー ドカラムの長さ 4 c m、 本カラムの長さ 1 2 c m) に詰めかえて作製したものである。 また、 こ の分離パターンは、 UV検出器 ( 「UV- 8 0 2 0」 、 東ソー製) (吸 光波長 2 5 4 n m) を用いて検出した。
〈逆相クロマ トグラフィ一による精製〉
陰イオン交換クロマ トグラフィーにより得た 8 -OH-d Gを含有する 画分 ( 3 4〜 4 1分) 1 1 9 1 を自動的に逆相クロマトグラフィーに 注入した。 なお、 逆相カラムとして、 Shiseido Capcel 1 Pak C18 M G ( S - 5 m) ( 2 5 0 X 4. 6 mm) を用い、 l O mMリ ン酸緩衝液
( H 6. 7 ; これは 0. 1 Mリ ン酸緩衝液 ( pH6. 7 ) を希釈して調 製したものであり、 pHは多少異なる) 、 5 %M e OH溶離液 ( B液) を用い、 カラム温度は 4 0 ° (:、 流速 0. 8 m 1 Z m i nとした。 その分 離パターンを図 5 に示す。 なお、 この分離パターンは、 電気化学検出器
( TESA Coulochem II」 、 e s a社) (電圧 : ガー ドセル 3 5 0 m V ; チャ ンネル 1 、 1 5 0 m V; チャンネル 2、 3 0 O mV)を用いて検 出した。'
(実施例 3 )
< イオン交換クロマトグラフィ一による精製〉
ヒ ト尿試料 2のほかの分離例を図 6 に示す。 ヒ ト尿試料 2 を 2 0 I 注入した。 分離条件は、 カラム MCI GEL CA08F ( 7 m) ; 内径 1 . 5 mm、 長さ (ガー ドカラム) 5 c m、 (本カラム) 1 5 c m ; 温度、 6 5 °C ; 流速、 3 6 1 /分 ; 溶離液、 0. 3 mM硫酸、 2 %ァセ トニト リ ル (A液) であり、 UV検出器 ( 「UV- 8020」 、 東ソー製) (吸光波長 254 nm) を用いて検出した。
(実施例 4)
く逆相ク口マトグラフィ一による精製〉
陰イオン交換クロマ トグラフィーにより得た 8 -〇H-d Gを含有する 画分を逆相ク口マ トグラフィ一により分析した他の例を図 7 に'示す。 な お、 逆相カラムとして、 YMC- Pack 0DS-AM ( S - 5 m) ( 2 5 0 X 4. 6 mm) を用い、 1 0 mMリ ン酸緩衝液 ( ρ Η 7. 2 ; これは 0 . 1 M リ ン酸緩衝液 ( ΡΗ7. 2 ) を希釈して調製したものであり、 pHは多少 異なる) 、 5 %M e〇H溶離液 (B液) を用い、 力ラム温度は 4 0 、 流速 0. 9 m 1 /m i n とした。 なお、 この分離パターンは、 電気化学 検出器 ( 「ESA
Coulochem II」 、 e s a社) (電圧 : ガ一 ドセル 3 5 0 m V ; チャン ネル 1、 1 5 0 mV; チャンネル 2、 3 0 0 mV)を用いて検出した。
図 5及び図 7から明らかなように、 上述した方法によれば、 精製 8 - 〇H- d Gのピーク付近には夾雑物がなく、 8 -〇 H-d Gの測定の精度 に (実施例 5 )
〈尿試料 3の調製〉
ラッ トの尿を l m 1 ずつ 2本のエツペン ドルフチューブに取り、 - 2 0 °Cで凍結した。 凍結した尿を解凍して均一な液とした後、 その 1 0 0 1 を取り、 微酸性溶液 (組成 ; 0. 6 mM硫酸を 9 6 m 1 、 ァセ トニ トリル 4 m 1 ) で 2倍に希釈し、 8 -0 H- r G u o 1 2 g加えた。 更 に 2 M酢酸ナト リ ウム ( pH4. 5 ) を 6. 7 l ilQえ、 pHを 7以下に した。 これをよく攪拌した後、 1 5 0 0 0回転、 5分間遠心分離を行い, その上清を尿試料 3 とした。
〈陰イオン交換クロマ トグラフィ一による精製〉 陰イオン交換カラムを 用いて、 ラッ トの尿試料 3の精製を行い、 8 - O H- d Gを含有する画分 を得た。 なお、 0. 3 mM硫酸、 2 %ァセトニトリル溶離液 (A液) を 用い、 カラム温度は 6 5 °C、 流速は 1 7 〃 1 / m i nとした。 また、 上 記陰イオン交換カラムは、 アミネックス H P X- 7 2 Sカラム (Bio Ra d製) ( 3 0 0 X 7. 8 mm、 粒径 1 2 m、 架橋度 8 %、 sulfate型) の充填剤を内径 1 mmのカラム (ガードカラムの長さ 5 c m、 本カラム の長さ 1 5 c m) に詰めかえて作製したものである。
〈逆相ク口マトグラフィ一による精製〉
上記陰イオン交換クロマ トグラフィーにより得た 8 -〇H-d Gを含有 する画分を自動的に逆相力ラムに注入し分析した。 その分離パターンを 図 8 に示す。 なお、 逆相カラムとして、 YMC- Pack 0DS-AM ( S - 5 m) ( 3 0 0 X 4. 6 mm) を用い、 1 0 mMリ ン酸緩衝液 ( p H 7. 2 ; これは 0. 1 Mリ ン酸緩衝液 ( pH7. 2 ) を希釈して調製したもの であり、 pHは多少異なる) 、 5 %M e OH溶離液 (B液) を用い、 力 ラム温度は 4 0 °C、 流速 0. 9 m l /m i nとした。 なお、 この分離パ ターンは、 電気化学検出器 ( 「ESA Coulochem II」 、 e s a社) (電 圧 : ガー ドセル 3 5 0 m V ; チャンネル 1、 1 5 0 mV; チャンネル 2. 3 0 0 m V)を用いて検出した。
(実施例 6 )
ラッ ト尿の陰イオン交換クロマ トグラフィー (MCI、 7 m粒子) に より得た 8 - OH-d Gを含有する画分を逆相クロマ トグラフィーにより分 析したほかの例を図 9に示す。 尚、 逆相カラムとして、 Shiseido Capce 11 Pak C18 MG (S-5 m) (250 X 4. 6 mm) を用い、 l O mMリ ン酸 緩衝液 ( pH6. 0 ; これは 0. 1 Mリ ン酸緩衝液 ( pH6. 0 ) を希釈 して調製したものであり、 pHは多少異なる) 、 2 %MeOH溶液を用い、 カラム温度は、 4 6 °C、 流速 0. 7 5 m l /分とした。 なお、 この分離 パターンは、 電気化学検出器 (ESA Coulochem II, ESA社) (電圧 : ガ —ドセル 4 0 0 mV ; チャンネル 1、 2 8 0 mV ; チャンネル 2、 3 5 0 mV) を用いて検出した。
図 8及び図 9から明らかなように、 ラッ トの尿試料 3 においても、 8 -〇 H - d Gの測定が可能であった。 TJP03/03007
13 産業上の利用性 本発明の陰イオン交換クロマトグラフィーによる精製方法は、 8 - O H - d G、 8 -O H- r G u o等の酸化的損傷グァニンヌクレオシドを回 収率良く、 精製 · 回収できる。
また、 特に 8 - O H-d Gの精製においては、 予め、 試料に 8 - OH - r G u 0を 8 -OH- d Gの内部標準マーカ一として加えることにより、 正 確な 8 -〇 H - d Gの溶出時間が把握でき、 確実に 8 -〇 H - d Gを含有す る画分を分取することができる。 更に、 第 1の精製工程における陰ィォ ン交換カラム (H P L C- 1 ) の流速が微量であるため、 溶離液 (A 液) 、 洗浄液 (C液) の消費が極めて少なく、 精製後の廃液量も少量で 済むため、 環境保全の面からも好ましい。 また、 本発明の測定方法は、 上記精製方法によって得られた精製 8 -OH_d G、 又は 8 - OH- r G u o等の精製酸化的損傷グァニンヌクレオシドを測定するので、 非常に精 度が高く、 再現性を有する。 本発明の 8 - OH- d Gの分析装置によれば 陰イオン交換カラム (H P L C- 1 ) が、 試料中に含まれる 8 -OH - d Gを特異的に吸着するため回収率が非常に高く、 試料中にふくまれる夾 雑物を一度に取り除く ことができる。 また、 連続運転を行うことによつ て大量処理が可能である。 また、 この分析装置は比較的安価なため、 経 済性にも優れている。

Claims

請求の範囲
1. D N A又は R N A中のグァニンが損傷を受けた結果生じる酸化的損 傷グァニンヌクレオシドの精製方法であって、 試料中に含まれる酸化的 損傷グァニンヌク レオシドを陰イオン交換クロマ トグラフィ一によって 精製する第 1の精製工程を有することを特徴とする酸化的損傷グァニン ヌクレオシドの精製方法。
2. 前記酸化的損傷グァニンヌクレオシドが、 8 -ヒ ドロキシデォキシ グアノシン ( 8 - OH-d G) であることを特徴とする請求項 1記載の酸 化的損傷グァニンヌクレオシドの精製方法。
3. 試料中に含まれる 8 -ヒ ドロキシデォキシグアノシン ( 8 - OH-d G) の精製方法であって、 予め、 試料に 8 -ヒ ドロキシグアノシン (リ ポヌク レオシド) ( 8 - OH-r G u o ) を 8 -0 H- d Gの内部標準マ一 カーとして加えて、 精製を行うことを特徴とする 8 -〇H-d Gの精製方 法。
4. 試料中に含まれる 8 -ヒ ドロキシデォキシグアノシン ( 8 -〇H - d G) の精製方法であって、 予め、 試料に 8 -ヒ ドロキシグアノシン (リ ボヌク レオシ ド) ( 8 - O H - r G u o ) を加えて、 該試料を陰イオン交 換クロマ トグラフィ一によって精製する第 1の精製工程と、 第 1の精製 工程で得られた 8 -OH-d Gを含有する画分を逆相ク口マトグラフィー によって更に精製する第 2の精製工程とを有することを特徴とする 8 - OH-d Gの精製方法。
5. 前記試料が尿であることを特徴とする請求項 1又は 2に記載の酸 化的損傷グァニンヌクレオシドの精製方法。
6. 前記試料が尿であることを特徴とする請求項 3又は 4に記載の 8 - ヒ ドロキシデォキシグアノシン ( 8- OH-d G) の精製方法。
7. 更に、 請求項 1、 2又は 5記載の精製方法によって得られた 酸化的損傷グァニンヌク レオシドを測定する測定工程を有することを特 徴とする酸化的損傷グァニンヌクレオシドの測定方法。
8. 請求項 3、 4又は 6記載の精製方法によって得られた精製 8 -ヒ ド 口キシデォキシグアノシン ( 8 - OH- d G) を測定する測定工程を有す ることを特徴とする 8- OH-d Gの測定方法。
9. 前記精製 8 -ヒ ドロキシデォキシグアノシン ( 8 -〇H- d G) の測 定が、 陰イオン交換クロマトグラフィ一において ( 1 ) リポヌクレオシド 8 - OH- r G u oのピーク認識、
( 2 ) —定時間後の 8 -OH- d G分取開始、
( 3 ) 一定時間後の 8 - OH- d G分取終了、
( 4) 適宜、 8 - OH- d G分画のミキシング、
の順序で行われ、 ついで、
逆相カラムへ注入して行われることを特徴とする請求項 8に記載の 8 - 〇H-d Gの測定方法。
1 0. 8 -ヒ ドロキシデォキシグアノシン ( 8 -〇H- d G) の精製およ び測定を実施するための装置であって、
試料中に含まれる 8 -OH-d Gを特異的に吸着する陰イオン交換カラ ム (H P L C— 1 ) と、
8 -ヒ ドロキシグアノ シン (リ ポヌク レオシ ド) ( 8 - O H - r G u o ) の溶出位置を感知する UV検出器と、 陰イオン交換カラム (H P L C - 1 ) から得られた 8 -〇H- d Gを含有する画分を更に精製する逆相 カラム (H P L C- 2 ) と、 逆相カラム (H P L C- 2 ) から得られた精 製 8 -〇H- d Gを測定する検出器とを具備することを特徴とする分析装
1 1. 試料中に含まれる 8 -ヒ ドロキシデォキシグアノシン ( 8 - 0 H - d G) をカラムクロマ トグラフィーにより回収する処理を制御するため のプログラムであって、
予め試料中に加えておいたマーカ一 ( 8 _〇H- r Guo) のピ一クシグ ナルを UV検出器より受け、 一定時間後の 8 -〇H- d G溶出時にサンブラ 一に接続されたバルブを開く シグナルを出力し、 分取を開始し、 更に一 定時間後に分取終了シグナルを出力し、
次いで、 得られた 8 - O H- d G分画を第二の精製力ラムへ注入するた めのシグナルを出力し、 カラムから溶出する被検出物質 ( 8 - OH-d G) を精製 · 回収する処理
をコンピュータに行われるための制御プログラム。
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