WO2003046047A1 - Polymeres medicaux et leur utilisation - Google Patents

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WO2003046047A1
WO2003046047A1 PCT/JP2002/012420 JP0212420W WO03046047A1 WO 2003046047 A1 WO2003046047 A1 WO 2003046047A1 JP 0212420 W JP0212420 W JP 0212420W WO 03046047 A1 WO03046047 A1 WO 03046047A1
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copolymer
side chain
peg
sugar
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PCT/JP2002/012420
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Toshinori Sato
Yoshiyuki Koyama
Tetsuji Yamaoka
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Keio University
Nof Corporation
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Definitions

  • the present invention relates to a medical polymer and its use, and more particularly, to a polyethylene daricol derivative having a saccharide residue-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain, and its use as a drug or gene carrier.
  • a drug delivery system is a therapeutic technology that controls the pharmacokinetics of a drug, selectively delivers the drug to a target site of action in a living body, and optimizes the therapeutic effect.
  • research on drug delivery systems has been rapidly developed, and many drug formulations utilizing drug delivery system technology have been marketed or the developed administration methods have been used in clinical settings.
  • Drugs targeted by the drug delivery system include a wide range of drugs, including anticancer drugs, cardiovascular drugs, and anti-inflammatory drugs. Recently, protein drugs have been put to practical use and gene therapy has been realized. However, drug delivery systems are considered an essential technology.
  • a typical viral vector a retrovirus vector
  • Adenovirus vectors can also be introduced into non-dividing cells, but have the disadvantages of strong immunogenicity and the production of antibodies.
  • Herpes virus vectors are excellent for introduction into nerve cells.
  • the cytotoxicity is strong.
  • Japanese Patent Application Laid-Open No. 3-198882 discloses a method for gene transfer using low molecular weight chitosan as a carrier, but this method is used for introducing a gene into cells.
  • the use of a drug that enhances the permeability of cell membranes has the problem of damaging cells.
  • the present inventors have solved the above-mentioned problems by using high-molecular chitosan, and have developed a carrier for gene transfer having a high expression level of the introduced gene and excellent safety (Japanese Patent Laid-open No.
  • Japanese Patent Laid-open No Japanese Patent Laid-open No.
  • the gene-chitosan complex is liable to aggregate, and the gene expression level is also high.
  • problems such as insufficient treatment.
  • An object of the present invention is to provide a material that can be used as a carrier for a drug delivery system and a method for producing the same.
  • the present invention also aims to provide a carrier for a drug delivery system.
  • Another object of the present invention is to provide a drug delivery preparation.
  • the present invention aims to provide a carrier for gene transfer.
  • Target Disclosure of the invention
  • the present inventors synthesized a poly (ethylene dalicol) derivative having a sugar residue-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain, and coated a complex comprising a gene and a cationic polymer with this polyethylene dalicol derivative. By administering it in vivo, the inventors succeeded in achieving higher gene expression than in the case of the gene-cationic polymer complex, thereby completing the present invention.
  • the first invention of the present application relates to a copolymer having a molecular weight of 100 to 2000 and containing a structural unit represented by the following general formulas (1), (II) and (III) or a salt thereof. provide.
  • R 1 and R 2 are a part of a spacer, and the part of the spacer may have a carboxyl group, a sugar residue, or the like.
  • sugar of the sugar residue examples include galactose, manoletoose, gnorecose, N-acetinolegnorecosamine, N-acetinolegalactosamine, fucose, sialic acid, mannose, lactose, cellobiose, and maltotriose. And the like.
  • R 1 may be, for example, a group represented by the following general formula (C) or (D).
  • R 2 may be, for example, a group represented by the following general formula (B), (D) or (E).
  • n is an integer of 2 to 8
  • p is an integer of 1 to 8.
  • tn is an integer of 2 to 8
  • p is an integer of 1 to 8.
  • R s is an amino group, It is a carboxy group or a sugar residue.
  • R 1 the following groups are preferred for synthesis
  • R 2 the following groups are preferred for synthesis.
  • sugar of the sugar residue of R s in the general formula (D) examples include galactose, maltose, gnorecose, N-acetinol regolecosamine, N-acetinolegalactosamine, fucose, sialic acid, mannose, and lactose. , Cellobiose or malt triose.
  • the unit the sum of the mole 0/0 mol% and units ([pi) of (I) is preferably 5-6 0 mol%, is properly more preferred 1 0 to 40 mole 0/0.
  • each mole 0 / o of the units (1), (II) and (III) is preferably from 3 to 58: 2 to 57: 40 to 95. And more preferably 6-36: 4-34: 60-90.
  • copolymer of the first invention of the present application may further contain another unit, for example, propylene oxide.
  • the copolymer of the first invention of the present application may be any of a random copolymer, a block copolymer, and a graft copolymer.
  • Examples of the salt of the copolymer of the first invention of the present application include a sodium salt and a potassium salt.
  • an amino group-containing compound is obtained by polymerizing acryl glycidyl ether and ethylene oxide, and then adding and reacting a mixture of mercaptoalkylamine and mercapto fatty acid to the obtained copolymer.
  • a copolymer having a side chain and a carboxyl group-containing side chain is obtained, and then the obtained copolymer having an amino group-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain is reacted with a sugar ratatone, Disclosed is a method for producing a copolymer having a molecular weight of 100 to 2000, having a sugar residue-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain.
  • the monol ratio of aryl glycidyl ether to ethylene oxide may be 1:99 to 70:30, preferably 5:95 to 50:50, and more preferably 10: 9. 0 to 40: 60.
  • the mercaptoalkylamines have the following general formula:
  • n is an integer of 1 to 8.
  • the compound is preferably represented by the following formula, and specific examples thereof include mercaptoethylamine.
  • n is an integer of 1 to 8.
  • the charge molar ratio of mercaptoalkylamine: mercapto fatty acid in the synthesis may be 1:99 to 70:30, preferably 5:95 to 40:60, more preferably 15:85 to 30:70. It is.
  • the molar ratio of the double bond in the copolymer obtained by polymerizing aryl glycidyl ether and ethylene oxide to the mixture of mercaptoalkylamine and mercapto fatty acid is 1: 1 to 1:80.
  • the ratio is preferably 1: 1.5 to 1:50, and more preferably 1: 2 to 1:30.
  • Sugar lactones include rata tonolactone, maltonolactone, darco nolatata ton, malto trionolata ton, cellobionolata ton, galata tonolactone, N-acetyldarcosaminolactone, N-asetylgalact tosaminolatone, manarorata ton And the like.
  • the molar ratio of the amino group to the sugar lactone in the copolymer having an amino group-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain is preferably 1: 1 to 1:20, and more preferably 1: 1. 1.3 to 1:10, more preferably 1: 1.5 to 1: 5.
  • the molecular weight of the copolymer having a sugar residue-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain produced by the above method is preferably 20000 to 20000, more preferably 4000 to 50000.
  • copolymer of the first invention of the present application can be produced by the method of the second invention of the present application.
  • the third invention of the present application is to provide a copolymer having a carboxyl group-containing side chain by polymerizing aryl glycidyl ether and ethylene oxide and then adding and reacting a mercapto fatty acid to the obtained copolymer. And then reacting the obtained copolymer having a carboxyl group-containing side chain with a sugar derivative having an amino group, characterized by reacting a sugar residue-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain.
  • the present invention provides a method for producing a copolymer having a molecular weight of from 1,000 to 200,000.
  • the molar ratio of arylglycidyl ether to ethylene oxide may be 1:99 to 70:30, preferably 5:95 to 50:50, and more preferably 10: 90-40: 60.
  • n is an integer of 1 to 8.
  • the molar ratio of the double bond to the mercapto fatty acid in the copolymer obtained by polymerizing aryl glycidyl ether and ethylenoxide is preferably 1: 1 to 1:80, and more preferably 1: 1. 5-1: 50, more preferably 1: 2 to 1:30.
  • sugar derivative having an amino group examples include those in which an amino group is bonded to the carbon at position 1 of hexose (for example, 1-amino-1-dexoxy-dulcose, 1-amino-1-doxy-).
  • hexose for example, 1-amino-1-dexoxy-dulcose, 1-amino-1-doxy-.
  • C-tose, 6-amino-6-doxy-mannose those in which P-aminophenol is bonded to a hydroxyl group bonded to the first carbon atom of hexose (for example, p-aminophenyl-darcoside, p-aminophenol) 2-galactoside, p-aminophenyl-1-mannoside) and the like.
  • the charged molar ratio of the carboxyl group and the saccharide derivative having an amino group in the copolymer having a carboxyl group-containing side chain in the reaction is preferably 1: 1 to 100: 1, and more preferably 3: 2. ⁇ 50: 1, more preferably 2: 1 ⁇ 10: 1.
  • the molecular weight of the copolymer having a sugar residue-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain produced by the above method is preferably from 2,000 to 20,000, more preferably from 4,000 to 50,000.
  • copolymer of the first invention of the present application can be produced by the method of the third invention of the present application.
  • a fourth invention of the present application is a drug containing the copolymer of the first invention of the present application or a salt thereof.
  • a carrier for an object delivery system is provided.
  • the fifth invention of the present application provides a drug delivery preparation containing a drug and the copolymer of the first invention of the present application or a salt thereof.
  • Examples of the drug include nucleic acids and nucleic acid derivatives such as genes, antisense nucleic acids, and ribozymes, as well as drugs such as polymeric immunostimulants, cAMP, prostaglandins, and daunomycin.
  • the sixth invention of the present application provides a carrier for introducing a gene, comprising the copolymer of the first invention of the present application or a salt thereof.
  • the carrier for drug delivery system, the carrier for gene transfer and the drug delivery preparation of the present invention may further contain a cationic polymer (hereinafter, referred to as “polycation”).
  • Polycations include high molecular weight chitosan (Biomaterials, Vol. 22, 2001, pp2075-2080, Biochim. Biophys. Acta, Vol. 1514, 2001, pp51-64) poly-L-lysine, polyamide amine dendrimer, DEAE — It may be selected from the group consisting of dextran (a review of these macromolecules, Non-Viral Vectors for Gene Therapy, Academic Press, Inc., 1999), polyethyleneimine and combinations thereof.
  • Nucleic acids electrostatically bind to polycations to form small folded complexes, which are usually taken up by cells in endocytosis, often in weakly acidic endosomes. Is digested by enzymes.
  • the polyethylenedaricol derivative having a sugar residue-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain of the present invention is considered to have a cell membrane destruction function under weak acidity because it is negatively charged. .
  • the endosomal membrane is broken before the nucleic acid is enzymatically degraded, the nucleic acid is transferred to the cell, and the gene expression efficiency is improved. it is conceivable that.
  • the polyethylene dalicol derivative of the present invention is hydrophilic, it is considered to prevent aggregation of the nucleic acid-polycation complex by serum proteins and the like.
  • the compounding ratio of the nucleic acid (or derivative thereof) to the polycation may be 1: 0.1 to 1:50, preferably 1: 1-1 to 1: 20 and more preferably 1: 2 to 1:10.
  • the compounding ratio of the polycation and the copolymer of the first invention of the present application is preferably 1: 0.01 to: L: 20, and more preferably 1: 0.1 to 1:16, more preferably 1: 0.2 to 1:10.
  • the copolymer of the first invention of the present application has a polyethylenedaricol main chain, it can be expected that aggregation and activation of complement and the like in a solution and a body fluid such as blood are suppressed. .
  • having a sugar residue-containing side chain enables the delivery of a drug specific to cells that recognize sugar chains, such as cancer cells.
  • it can be expected to increase the water solubility of the drug product.
  • the seventh invention of the present application provides a carrier for gene transfer comprising an anionic polymer having a sugar residue in a side chain or a salt thereof, and a cationic polymer. It is preferable to use chitosan as the force-cationic polymer.
  • the copolymer of the first invention of the present application or a salt thereof a condensation product of a carboxyl vinyl polymer and a sugar derivative containing an amino group
  • examples thereof include acidic mucopolysaccharides such as hyaluronic acid.
  • Examples of the cationic polymer include chitosan, poly-L-lysine, polyamidoamine dendrimer, polyethyleneimine, protamine, DEAE-dextran, and polylysine dendrimer.
  • the anionic polymer having a sugar residue in the side chain or a salt thereof is from 1: 0.01 to 1: 1.
  • the compounding ratio of the nucleic acid (or derivative thereof) to the polycation is preferably 1: 0.1 to 1:50, and more preferably 1: 1 to 1: 20 and more preferably 1: 2 to 1:10.
  • An eighth invention of the present application relates to a gene transfer carrier comprising a copolymer having a molecular weight of 100 to 200,000 or a salt thereof containing structural units represented by the following general formulas (I) and (III), and chitosan: provide.
  • R 1 is a spacer part, and this spacer part may have a carboxyl group, a sugar residue, or the like.
  • sugar of the sugar residue include galactose, maltose, gnorecose, N-acetinolegnorecosamine, N-acetylgalatatosamine, fucose, cyanoleic acid, mannose, ratatoose, cellobiose, and maltotriose. can do.
  • R 1 may be, for example, a group represented by the following general formula (C) or (D). *-(CH 2 ) m -S- (CH 2 ) p- (C)
  • R s is an amino group
  • * may be a position bonding to either the ethylene oxide side or the opposite side (the carboxyl group side), It is preferable that the position is a position bonded to the ethylene oxide side.
  • the group represented by the general formula (D) includes one (CH 2 ) 3 -S-CH—
  • R 1 the following groups are preferred for synthesis.
  • the sugar of the sugar residue of R s in the general formula (D) includes galactose, maltose, Glucose, N-acetyldarcosamine, N-acetylgalactosamine, fucose, sialic acid, mannose, lactose, cellobiose and maltotriose can be exemplified.
  • copolymer used in the eighth invention of the present application may further contain another unit, for example, propylene oxide.
  • the copolymer used in the eighth invention of the present application may be any of a random copolymer, a block copolymer, and a graft copolymer.
  • Examples of the salt of the copolymer used in the eighth invention of the present application include sodium salts and potassium salts.
  • the compounding ratio of the chitosan and the copolymer or a salt thereof is 1: 0.01-1 to 1:20. And preferably 1: 0.1 to 1:16, more preferably 1: 0.2 to 1:10.
  • the compounding ratio of the nucleic acid (or derivative thereof) to the polycation may be 1: 0.1 to 1:50, preferably 1: 1-1 to 1: 20 and more preferably 1: 2 to 1:10.
  • One preferred embodiment of the present invention will be described below.
  • Diethylene glycol and lithium hydroxide (the molar ratio of diethylene glycol to hydroxide oxidation is 1: 0.3 to 1: 1).
  • Charge the reactor dehydrate at 0.5 to 3 hours at 70 to 95 ° C under a nitrogen atmosphere at about 20 to 7 OmmHg, and then mix a mixture of aryl glycidyl ether (AGE) and ethylenoxide (E0).
  • AGE aryl glycidyl ether
  • E0 ethylenoxide
  • Molar ratio of 3:97 to 50:50 is added dropwise at 100 to 120 ° C at a rate of about 50 to 600 g / h.
  • the amount of monomer added controls the molecular weight.
  • unreacted monomer is removed under reduced pressure (for example, 20 OmmHg).
  • After the polymer is neutralized with phosphoric acid, it is dried under reduced pressure at 80-120 for 0.5-3 hours and finally filtered at 60-95 ° C.
  • the molecular weight of the copolymer of arylidicidyl ether and ethylene oxide can be calculated by titration of hydroxyl groups (JIS K-1557 6.4 (1970)).
  • the composition of a polymer can be calculated by double bond titration (JIS K-1557 6.7 (1970)).
  • the molecular weight distribution can be determined by GPC (solvent THF).
  • a random copolymer can be obtained by the above method.However, in order to obtain a highly blockable copolymer or a block copolymer, it is necessary to add a monomer mixture at a time or to add each monomer sequentially. good.
  • the copolymer of aryl glycidyl ether and ethylene oxide obtained in (1) is dissolved in methanol, and the solution is added dropwise with stirring to a solution in which mercaptoalkylamine and mercapto fatty acid are previously dissolved in methanol.
  • the reaction is carried out at 20 to 60 for 8 to 72 hours. After dialysis with running water for 1 to 4 days and pure water for 0 to 2 days, freeze-dry or remove the solvent under reduced pressure to obtain a PEG derivative (PEG-A / C) having both amino and carboxyl groups in the side chain. obtain.
  • the charged molar ratio of mercaptoalkylamine and mercapto fatty acid in the reaction is preferably 1:99 to 70:30.
  • the molecular weight of the obtained PEG-A / C can be determined by quantifying the number of amino group side chains and carboxyl group side chains by NMR or the like to obtain the copolymer of (1) aryl glycidyl ether and ethylene oxide. It can be calculated based on the molecular weight. That is, copolymerization of arylglycidyl ether and ethylene oxide It can be calculated by adding the product of the molecular weight of the added mercaptoalkylamine and the number of addition to the molecular weight of the body, and the product of the molecular weight of the added mercapto fatty acid and the number of addition. The conversion was calculated as 100%.
  • the PEG-A / C obtained in (2) and the sugar ratatone are dissolved in dry DMF and reacted at 60 to 80 ° C for 1.5 to 4 hours. Gel filtration, lyophilization or removal of the solvent under reduced pressure yields a PEG derivative having a sugar residue-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain.
  • the molar ratio of sugar ratatones to PEG-A / C amino groups is preferably 1: 1 or more.
  • the molecular weight of the obtained Sugar-PEG-A / C can be calculated based on the molecular weight of PEG-A / C by quantifying the number of sugar side chains by NMR or the like. That is, the product of the number of added sugars and the molecular weight increased by adding one sugar can be calculated by adding the molecular weight of PEG-A / C.
  • the molecular weight of Sugar-PEG-A / C can also be estimated by an ordinary method using GPC in an appropriate solvent.
  • Sugar-PEG-A / C salt can be produced as follows.
  • the Sugar-PEG-A / C obtained in (3) is dissolved in water, and neutralized by adding a dilute NaOH or dilute KOH solution until the pH becomes 8 to 11.
  • the obtained aqueous solution is freeze-dried as it is, or the solvent is removed under reduced pressure.
  • the graft copolymers include commercially available polyethylene glycol having a reactive functional group (amino or carboxyl group) introduced at the terminal, a functional group of a polymer as a backbone, and dicyclohexylcarbodiimide. It can be synthesized by combining them.
  • a copolymer of arylglycidyl ether and ethylenoxide is produced by the method described in 1-1 (1).
  • PEG derivative having a carboxyl group on the side chain and the sugar derivative having an amino group synthesized in (2) in an appropriate solvent, and add hexylcarbodiimide or water-soluble carbodiimide to the mouth of the disc.
  • the reaction is carried out at room temperature at 40 ° C for 18 to 40 hours. If necessary, the reaction is stopped by adding an excess amount of sodium acetate, and the sugar side chain and the carboxyl group side chain are purified by gel filtration.
  • the molecular weight of the obtained Sugar-N-PEG-C can be calculated based on the molecular weight of the PEG derivative having a carboxyl group in the side chain (PEG-C).
  • PEG-C the ratio of sugar side chains to carboxyl side chains in the polymer is determined by NMR spectra, and the product of the number of added sugars and the molecular weight increased by the addition of one sugar is calculated as PEG-C
  • PEG-C Can be calculated by adding to the molecular weight of
  • the molecular weight of Sugar-N-PEG-C can also be estimated by a conventional method using GPC in an appropriate solvent.
  • a salt of Sugar-N-PEG-C is produced by the method described in 1-1 (4). (5) Production of graft copolymer
  • the graft copolymer can be synthesized by bonding a commercially available polyethylene glycol having an amino group introduced at the terminal to a carboxyl group of a polymer serving as a backbone, using dicyclohexylcarpoimide or the like.
  • a copolymer of aryl glycidyl ether and ethylenoxide is produced by the method described in 11 (1).
  • a PEG derivative (PEG-C) having a carboxyl group in the side chain is produced by the method described in 1-2 (2).
  • the molecular weight of the obtained PEG-C can be calculated by the method described in 1-2 (2).
  • a PEG-C salt is produced using PEG-C instead of Sugar-PEG-A / C.
  • a graft copolymer is produced by a method similar to the method described in 1-1 (5).
  • Chitosan deacetylates the acetamido group of chitin (a polysaccharide in which N-acetyl-1D-dalcosamine is 3-1-4 linked), which is mainly contained in shells of crustaceans such as shrimp. It is a polysaccharide obtained by
  • the polymer chitosan used in the present invention is a normal chitosan soluble in dilute acid
  • Any material having an intrinsic viscosity of 1.0 d 1 Zg or more may be used, and the origin, the degree of deacetylation, and the like are not particularly limited.
  • Low molecular weight chitosan having an intrinsic viscosity lower than the above has a problem that the introduction rate is extremely low.
  • intrinsic viscosity refers to, for example, JP-A-1-18585
  • a plasmid (recombinant vector) in which the DNA to be introduced is linked downstream of the promoter of the expression vector is preferably used.
  • a solvent for both sterilized ultrapure water, a buffer, and the like are preferably used.
  • the solvent for the plasmid solution is preferably adjusted to pH 5.5 to 7.5.
  • Cation Anion ratio (charge ratio of cation of chitosan and anion of Sugar-PEG-A / C or PEG-C) at 0 to 50 ° C for 5 minutes to 24 hours, preferably Mix for 10-60 minutes at 20-30 ° C.
  • the cation: aion ratio is preferably 1: 0.01-1: 20, preferably 1: 0.1-1: 16, and more preferably 1: 0.2-1: 1. It is 0.
  • the cation: annion ratio can be calculated as follows.
  • the solvent of the solution of Sugar-PEG-A / C or PEG-C is preferably water or a buffer, and is preferably a phosphate buffer.
  • the gene-chitosan complex prepared under the above conditions coated with Sugar-PEG-A / C or PEG-C is directly added to target cells in culture, After leaving the cells at the culture temperature for 1 to 12 hours to allow sufficient contact between the complex and the cells, replace the medium with serum and incubate for another 4 to 48 hours to introduce the gene into the cells. .
  • the gene expression rate can be increased by adding serum to the medium.
  • the serum component used in the present invention may be any one suitable for cell culture, and for example, fetal bovine serum (FBS) is preferably used.
  • FBS fetal bovine serum
  • the amount of the serum component added to the medium is preferably 0.1 to 50% by weight, and more preferably 2 to 20% by weight.
  • pullulan has a brain tumor-directing property (Drug Delivery System, Vol.5, No.4, 1990, pp.261-265), and ratatose has an affinity for many types of cancer cells (Biol Cell, Vol. 47, 1983, pp95-110), that galactose peratose has a particularly high affinity for hepatoma (J. Biol. Chem., Vol. 256, 1981, pp8878_8881), melanoma Also recognize manoleose (NaturBiben Vol.
  • the carrier for a drug delivery system of the present invention may contain spermine, a peptide, a cationic lipid, a cationic cholesterol derivative, folic acid, and the like, in addition to the polycation such as the above-mentioned high molecular weight chitosan.
  • the carrier for gene transfer of the present invention may contain spermine, peptide, cationic lipid, thiothionic cholesterol derivative, folic acid, and the like, in addition to the polycation such as the above-mentioned high molecular weight chitosan.
  • the copolymer of the present invention has a higher gene expression activity than conventional gene-chitosan complexes and can achieve cell-specific gene delivery. Further, by using the copolymer of the present invention, aggregation in a solution of the gene-chitosan complex and in body fluids such as blood can be suppressed, and the water solubility of the preparation can be increased. In monkey.
  • the drug delivery system of the present invention is a technology that can be applied to not only genes but also many nucleic acid derivatives such as antisense nucleic acids and ribozymes, it can be used not only in gene therapy but also in the biotechnology field.
  • FIG. 1 is a graph showing the effect of the anion / force ratio on PEG-C.
  • FIG. 2 is a graph showing the effect of anion cation ratio on Lac-PEG-A / C.
  • FIG. 3 is a graph showing the influence of the anion / force ratio on Mai-PEG-A / C.
  • FIG. 4 is an NMR spectrum of a copolymer of aryl glycidyl ether and ethylene oxide.
  • FIG. 5 is an NMR spectrum of PEG-A / C.
  • FIG. 6 is an NMR spectrum of Lac-PEG-A / C.
  • FIG. 7 is an NMR spectrum of Mai-PEG-A / C.
  • Fig. 8 shows the NMR spectrum of PEG-C9000.
  • FIG. 9 is a graph showing the effect of anion Z cation ratio on Lac-PEG-A / C.
  • FIG. 10 is a graph showing the effect of the anion / thion ratio on Mal-PEG-A / C.
  • Fig. 11 shows the NMR spectrum of Gul-N-PEG-C.
  • Figure 12 shows the NMR spectrum of Gal-N-PEG-C.
  • FIG. 13 is an NMR spectrum of Man-N-PEG-C. BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
  • Diethylene glycol (56 g) and potassium hydroxide (1.2 g) were charged to a reactor in advance, and dehydrated at 85 ° C for 1 hour at about 50 Hg under a nitrogen atmosphere. After that, a mixture of aryl glycidyl ether (AGE) and ethylene oxide (E0) (molar ratio: 15:85) was added at about 100 to 120 ° C at about 400 g / h. It was dropped at a rapid rate. The molecular weight is controlled by the amount of monomer added. After adding 300 g of aryl glycidyl ether (AGE) and ethylene oxide (E0) in total, the unreacted monomer was immediately removed under reduced pressure ( 20 mtnHg).
  • AGE aryl glycidyl ether
  • E0 ethylene oxide
  • FIG. 4 shows the NMR spectrum of the obtained copolymer of arylglycidyl ether and ethylenoxide.
  • FIG. 5 shows the NMR spectrum of PEG-A / C.
  • ratatonorataton or maltonolatatone was synthesized according to the literature (Polymer J., Vol. 17, 1985, 567 ppl985). 200 mg of these lactones and 200 mg of PEG-A / C were dissolved in 3 ml of dry DMF and reacted at 70 ° C for 2.5 hours. Gel filtration and lyophilization yielded a PEG derivative having a sugar residue-containing side chain and a carboxyl group-containing side chain.
  • the polymer was purified by (Sephadex G-50). Finally, it was freeze-dried to obtain PEG-C9000 (2.3 g) in a syrup form.
  • Figure 8 shows the awakening vector of PEG-C9000.
  • Chitosan hydroacetate (manufactured by Yaizu Fisheries Co., Ltd.) was placed in a bottle, and 12N HC1 was added thereto while stirring with a magnetic stirrer until the solution became transparent. The obtained powder was freeze-dried.
  • the average molecular weight of the obtained chitosan hydrochloride was 40,84 and 110 kDa. The degree of deacetylation was about 85%.
  • a complex consisting of a gene, chitosan, and PEG derivative The body was allowed to interact with mouse melanoma cell B16 melanoma, and luciferase gene expression was confirmed.
  • this cell lysate was used as it was.
  • the Protein Assay was performed using a Bio-Rad Protein assay kit.
  • PEG-C9000 greatly improved the expression in a manner dependent on the Anion Z cation ratio.
  • Example 4 Gene expression in polyethyleneimine / PEG derivative / plasmid complex A three-component complex of the gene and polyethylenimine PEG derivative was prepared, and this complex was allowed to interact with human hepatoma cell HepG2, and the expression of the luciferase gene was confirmed.
  • HepG2 cells were seeded on a 96-well multiplate with 1 ⁇ 10 4 cels / well and incubated for 24 hours.
  • Example 2 To (2), a solution of the PEG derivative (Mal-PEG-A / C, Lac-PEG-A / C) produced in Example 1 was added so that the desired anion: cation ratio was obtained. It was left still at 37 ° C for 0 minutes.
  • the anion: cation ratio is, specifically, a molar ratio of the charges of polyethyleneimine and the PEG derivative.
  • FIGS. 9 and 10 The results are shown in FIGS. Here, the value of _ / + in the figure is the ratio of anion to cation, specifically, the molar ratio of the charge of the PEG derivative to polyethyleneimine.
  • protein Means all proteins contained in the cell. "Relative luciferase activity per mg of protein” is a value indicating how much of the protein produced by cells is due to this gene.
  • Fig. 9 shows the results for Lac-PEG-A / C, where the expression activity was highest at an anion / cation ratio of 4, which was about three times that of the case without Lac_PEG_A / C. Expression increased.
  • Fig. 10 shows the results for Mai-PEG-A / C.
  • the expression was increased about 2-fold.
  • the obtained syrup was dissolved again in pure water, ion-exchanged with Amberlite B-120, and freeze-dried to obtain a PEG derivative having a dalcoside side chain and a carboxyl side chain. Yield The ratio of sugar side chains to carboxyl side chains in the polymer as calculated by 45 mg go NMR spectrum was 19:81.
  • FIGS. 11, 12, and 13 show NMR spectra of GuI-N-PEG-C, Gal-N-PEG-C, and Man-N-PEG-C, respectively. All publications, patents and patent applications cited herein are hereby incorporated by reference in their entirety. Industrial applicability
  • gene expression activity is higher than that of a conventional gene-chitosan complex, and cell-specific gene delivery can be achieved.
  • gene expression activity is higher than that of a conventional gene-polyethyleneimine complex, and cell-specific gene delivery can be achieved.

Description

明 細 書 医用高分子及びその用途 技術分野
本発明は、 医用高分子及びその用途に関し、 より詳細には、 糖残基含 有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つポリエチレンダリ コール誘導 体及び薬物や遺伝子の運搬体としてのその用途に関する。 背景技術
薬物送達システムは、 薬物の体内動態を制御し、 生体内の目的とする 作用部位に選択的に薬物を送り込み、 治療効果の最適化の実現を図る治 療技術である。 近年、 薬物送達システムの研究は急速に発展し、 薬物送 達システム技術を利用した多くの医薬品製剤が市販され、 あるいは開発 された投与法が臨床の現場で利用されるようになってきている。
薬物送達システムの対象となる薬物としては、 抗がん薬を始めと して 、 循環器用薬、 抗炎症薬など幅広い医薬品がとりあげられており、 最近 では、 タンパク質医薬品の実用化や遺伝子治療の実現にも薬物送達シス テムは不可欠の技術であると考えられている。
現在、 実用化されている遺伝子治療法は大きくわけて 2つある。 1つ は、 先天性免疫不全症や先天性代謝異常症等の先天的な遺伝病において 、 その欠損した遺伝子を外部から導入して補うという治療法であり、 も う 1つはガン細胞や A I D Sなどのよ うな細胞やウィルスをターゲッ トにして、 それらの増殖を抑制したり、 それらを死滅させるための遺伝 子を導入する治療法である。 上記どちらの治療法においても、 目的とす る遺伝子を細胞内に導入し、 発現させることが重要であることが知られ ている。
しかしながら、 D N Aと細胞膜は共にァニオン性を示し、 電気的に反 発してしまうため、 遺伝子 （D N A ) を単独で直接細胞内に導入するこ とは非常に困難である。
そこで、 これまでにも D N Aキャリアーとして様々な物質が検討され てきたが、 安全性や導入効率等の面で問題があり、 実用化の妨げとなつ ている。 例えば、 代表的なウィルスベクターであるレ トロウイルスべク ターは、 導入効率が高いという利点がある一方で、 （ 1 ) 大きなサイズ の D N Aを使えない、 （ 2 ) 非分裂細胞に導入できない、 （ 3 ) 発現レべ ルが低いなどの欠点がある。 また、 アデノウイルスベクターは、 非分裂 細胞にも導入可能だが、 免疫原性が強く、 抗体ができてしまうという欠 点があり、 ヘルぺスウィルスベクターは、 神経細胞への導入に優れてい るが、 細胞毒性が強いという欠点がある。 その他ウィルスベクター以外 のキャリア一としてカチオン性リボソーム、 脂質、 ポリマーなどが研究 されているが、 導入効率や細胞特異性が低くなるという問題があった。 また、 特開平 3 - 1 9 8 7 8 2号公報において、 低分子キトサンをキ ャリア一と した遺伝子導入の方法が開示されているが、 この方法は、 遺 伝子を細胞に導入する際に、 細胞膜の透過性を増強する薬剤を使用する ため、 細胞にダメージを与えてしまうという問題があった。
本発明者らは、 高分子キトサンを用いることにより、 上記の問題を解 決し、 導入した遺伝子の発現レベルが高く、 しかも安全性に優れた遺伝 子導入用キヤリア一を開発した （特開 2 0 0 0— 1 5 7 2 7 0号公報） しかし、 高分子キトサンを遺伝子導入用キヤリア一と して用いた場合 でも、 遺伝子一キトサン複合体は凝集が起こりやすいこと、 また、 遺伝 子の発現レベルが治療には十分でないことなどの問題点があった。
本発明は、 薬物送達システム用キヤリア一と して利用可能な材料及び その製造方法を提供することを目的とする。
また、 本発明は、 薬物送達システム用キャリアーを提供することも目 的とする。
さらに、 本発明は、 薬物送達製剤を提供することも目的とする。
さらにまた、 本発明は、 遺伝子導入用キャリアーを提供することも目 的とする。 発明の開示
本発明者らは、 糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つポリ エチレンダリ コール誘導体を合成し、 遺伝子とカチオン性高分子とから なる複合体をこのポリエチレンダリ コール誘導体で被覆して、 生体内に 投与することにより、 遺伝子一カチオン性高分子複合体の場合より も高 い遺伝子発現を達成することに成功し、 本発明を完成させるに至った。 本願の第 1発明は、 下記の一般式（1)、 （II)及び（III)で表される構造 単位を含む分子量 1 0 0 0 ~ 2 0 0 0 0 0の共重合体又はその塩を提 供する。
R1— COOH
0
CH2
(I)
-{■ CHCH20 -) -
-(CHCH20-)-
CH2
O (H)
R2— R3
- CH2CH20-)-
(ただし、 一般式（I)中の R1および一般式（Π)中の R2はスぺーサ一部分で あり、 一般式（Π)中の R3は糖残基を表し、 単位（1)、 （Π)及び（ΠΙ)のそ れぞれのモル0 /0は、 （I)= l〜 9 8、 （Π)= 1〜 9 8、 （ΙΠ)= 1〜 9 8 である。） R1および R2はスぺ一サ一部分であり、 このスぺーサ一部分はカルボキ シル基、 糖残基などを有してもよい。 糖残基の糖と しては、 ガラク トー ス、 マノレ トース、 グノレコース、 N—ァセチノレグノレコサミ ン、 N—ァセチノレ ガラク トサミン、 フコース、 シアル酸、 マンノース、 ラク トース、 セロ ビオースあるいはマルト トリオースなどを例示することができる。
R1は、例えば、下記の一般式（C)または（D)で表される基であるとよい。 R2は、 例えば、 下記の一般式（B)、 （D)または（E)で表される基であると よい。
* - (CH2)n-S- (CH2)p-NH- (B)
(ここで、 nは、 2〜 8の整数であり、 pは 1〜 8の整数である。）
*-(CH2)m-S-(CH2)p - (0
(ここで、 tnは 2〜 8の整数であり、 pは 1〜 8の整数である。）
*-(CHz)m-S— (CH2)t— CH-iCH — (d)
(CHz)s-Rs
(ここで、 mは 2〜 8の整数であり、 rは 0〜 7の整数であり、 sは 0〜 7の整数であり、 tは 0〜 4の整数であり、 Rsはァミノ基、 カルボキシノレ 基または糖残基である。）
* -(CH2) m -S-CH -(CH2)r - H— (E) CHZ— (CH2)s-COOH
(ここで、 mは 2〜 8の整数であり、 rは 0〜 7の整数であり、 sは 0 7の整数である。） 一般式（B)、 （C)、 （D)および（E)において、 *はエチレンォキシド側ま たはその反対側 （R1の場合はカルボキシル基側、 R2の場合は R3側） のどち らに結合する位置であってもよいが、 エチレンォキシド側に結合する位 置であることが好ましい。
一般式（B)で表される基としては、
Figure imgf000007_0001
などを例示することができる。
一般式（C)で表される基としては、
— (CH2) 3— S— (CH2) 2—
などを例示することができる。
一般式（D)で表される基としては、
一 (CH2)3 -S-CH—
CH2 -COOH
一 (CH2)3 -S-CH2 -CH—
I
NH2 などを例示することができる。 一般式（E)で表される基としては、
-(CH2) 3-S-CH-NH— CH2-COOH などを例示することができる。
R1としては、 以下の基が合成上好ましい
一（CH2) 3— S— CH2—
— (CH2) 3— S _ (CH2) 2— 一（CH2)3— S— CH—
CH2-COOH
R2としては、 以下の基が合成上好ましい。
― (CH2) 3— S— (CH2)2-NH- - (CH2) 3— S— CH2— NH-
Figure imgf000008_0001
一般式（D)中の Rsの糖残基の糖としては、 ガラク トース、 マルトース、 グノレコース、 N—ァセチノレグノレコサミ ン、 N—ァセチノレガラク トサミ ン、 フコース、 シアル酸、 マンノース、 ラク トース、 セロビオースあるいは マルト トリオースなどを例示することができる。
R3の糖残基の糖と しては、 ガラク トース、 マルトース、 グルコース、 N ーァセチルダノレコサミ ン、 N—ァセチノレガラク トサミ ン、 フコース、 シ ァノレ酸、 マンノース、 ラク トース、 セロビオースあるいはマルト ト リオ ースなどを例示することができる。
本願の第 1発明の共重合体における、 単位（I)のモル％と単位（Π)の モル0 /0を合計したものは、 好ましくは 5 ~ 6 0モル％であり 、 より好ま しくは 1 0〜40モル0 /0である。
また、 本願の第 1発明の共重合体における、 単位（1)、 （II)及び（III) のそれぞれのモル0 /oは、 好ましくは 3〜 5 8 ： 2〜 5 7 ： 40〜 9 5で あり、 より好ましくは 6〜 3 6 ： 4〜 34 ： 60〜 90である。
本願の第 1発明の共重合体は、 さらに、 他の単位、 たとえば、 プロピ レンォキシドなどを含んでもよい。
本願の第 1発明の共重合体は、 ランダム共重合体、 ブロック共重合体 、 グラフ ト共重合体のいずれであってもよい。
本願の第 1発明の共重合体の塩と しては、 ナトリウム塩、 カリ ウム塩 などを例示することができる。 本願の第 2発明は、 ァリルグリシジルエーテル及びエチレンォキシド を重合させた後、 得られた共重合体にメルカプトアルキルァミンとメル カプト脂肪酸の混合物を添加して反応させることにより、 アミノ基含有 側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体を得、 次いで、 得られた ァミノ基含有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体を糖ラタ トンと反応させることを特徴とする、 糖残基含有側鎖とカルボキシル基 含有側鎖を持つ、 分子量 1 0 0 0〜 2 0 0 0 0 0の共重合体の製造方法 を提供する。
ァリルグリシジルエーテルとエチレンォキシドのモノレ比は、 1 : 9 9 〜 7 0 ： 3 0であるとよく、 好ましくは 5 ： 9 5〜 5 0 ： 5 0であり、 より好ましくは 1 0 ： 9 0〜4 0 ： 6 0である。
メルカプトアルキルァミンとしては、 下記の一般式：
HS- (CH2)n-NH2
(式中、 nは 1〜 8の整数である。）
で表される化合物であるとよく、 具体的には、 メルカプトェチルァミン などを例示することができる。
メルカプト脂肪酸としては、 下記の一般式：
HS - (CH2)n-C00H
(式中、 nは 1〜 8の整数である。）
で表される化合物であるとよく、 具体的には、 メルカプト酢酸、 メルカ ブトプロピオン酸などを例示することができる。
合成におけるメルカプトアルキルァミン： メルカプト脂肪酸の仕込み モル比は、 1 ： 99〜70： 30であるとよく、 好ましくは 5 ： 95〜40： 60であ り、 より好ましくは 15： 85〜30： 70である。
ァリルグリシジルエーテル及びエチレンォキシドを重合させて得ら れた共重合体中の 2重結合と、 メルカプトアルキルァミンとメルカプト 脂肪酸の混合物とのモル比は、 1 ： 1〜 1 ： 8 0であるとよく、 好まし くは 1 ： 1. 5〜 1 ： 5 0であり、 より好ましくは 1 ： 2〜 1 ： 3 0で ある。 糖ラク トンとしては、 ラタ トノラク トン、 マルトノラク トン、 ダルコ ノラタ トン、 マルト ト リオノラタ トン、 セロビオノラタ トン、 ガラタ ト ノラク トン、 N—ァセチルダルコサミノラク トン、 N—ァセチルガラク トサミノラタ トン、 シアロラタ トン、 マンノラタ トンなどを例示するこ とができる。
ァミノ基含有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体中のァ ミノ基と糖ラク トンとのモル比は、 1 ： 1〜 1 ： 2 0であるとよく、 好 ましくは 1 ： 1. 3〜 1 ： 1 0であり、 より好ましくは 1 ： 1. 5〜 1 ： 5である。
上記の方法により製造される糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有 側鎖を持つ共重合体の分子量は、 好ましくは 2 00 0〜 2 0 000 0で あり、 より好ましくは 4000〜50000である。
本願の第 2発明の方法により、 本願の第 1発明の共重合体を製造する ことができる。
本願の第 3発明は、 ァリルグリシジルエーテル及びエチレンォキシド を重合させた後、 得られた共重合体にメルカプト脂肪酸を添加して反応 させることにより、 カルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体を得、 次い で、 得られたカルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体を、 アミノ基を有 する糖誘導体と反応させることを特徴とする、 糖残基含有側鎖とカルボ キシル基含有側鎖を持つ、 分子量 1 000〜 2 00 00 0の共重合体の 製造方法を提供する。
ァリルグリシジルエーテノレとエチレンォキシドのモル比は、 1 : 9 9 〜 7 0 ： 3 0であるとよく、 好ましくは 5 ： 9 5〜 5 0 ： 5 0であり、 より好ましくは 1 0 ： 90〜40 ： 60である。
メルカプト脂肪酸としては、 下記の一般式：
HS- (CH2)n-C00H
(式中、 nは 1 ~ 8の整数である。）
で表される化合物であるとよく、 具体的には、 メルカプト酢酸、 メルカ プトプロピオン酸などを例示することができる。 ァリルグリシジルエーテル及びェチレンォキシドを重合させて得ら れた共重合体中の 2重結合とメルカプト脂肪酸とのモル比は、 1 ： 1〜 1 : 8 0であるとよく、 好ましくは 1 ： 1. 5〜 1 ： 5 0であり、 より 好ましくは 1 ： 2〜 1 ： 30である。
ァミノ基を有する糖誘導体と しては、 へキソースの 1位の炭素にアミ ノ基が結合しているもの （例えば、 1-ァミノ- 1 -デォキシ-ダルコ ース、 1—ァミノ— 1ーデォキシ-ガラク トース、 1— ァミノ— 1—デ ォキシ—マンノース、 1—ァミノ— 1—デォキシ—グルシトール、 1— ァミノ— 1-デォキシーガラクシトール、 1_アミノ— 1—デォキシ— マンノシトール）、 へキソースの 2位の炭素にァミノ基が結合したもの
(例えば、 2—ァミノ— 2—デォキシ—グルコース、 2—ァミノ- 2- デォキシ—ガラク トース、 2—ァミノ— 2—デォキシーマンノース）、 へキソースの 6位の炭素にァミノ基が結合しているもの （例えば、 6- 了ミノ— 6 -デォキシ—グルコース、 6—ァミノ— 6—デォキシ—ガラ
ク トース、 6—ァミノ- 6—デォキシ—マンノース）、 へキソースの 1 位の炭素に結合した水酸基に P—ァミノフエノールが結合しているも の （例えば、 p—ァミノフエニル一ダルコシド、 p—ァミノフエ二ルー ガラク トシド、 p—アミノフエニル一マンノシド） などを例示すること ができる。
反応におけるカルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体中のカルボキ シル基とァミノ基を有する糖誘導体との仕込みモル比は、 1 ： 1〜 1 0 0 ： 1であるとよく、 好ましくは 3 ： 2〜 50 ： 1であり、 より好まし くは 2 ： 1〜 1 0 ： 1である。
上記の方法により製造される糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有 側鎖を持つ共重合体の分子量は、 好ましくは 2 000〜 2 0000 0で あり、 より好ましくは 4000〜50000である。
本願の第 3発明の方法により、 本願の第 1発明の共重合体を製造する ことができる。
本願の第 4発明は、 本願の第 1発明の共重合体又はその塩を含む、 薬 物送達システム用キヤリァーを提供する。
本願の第 5発明は、 薬剤及び本願の第 1発明の共重合体又はその塩を 含む薬物送達製剤を提供する。
薬剤としては、 遺伝子、 アンチセンス核酸、 リボザィムなどの核酸や 核酸誘導体の他、 高分子性免疫賦活剤、 c A M P , プロスタグランジン 、 ダウノマイシンなどの薬剤を例示することができる。
本願の第 6発明は、 本願の第 1発明の共重合体又はその塩を含む、 遺 伝子導入用キヤリァ一を提供する。
本発明の薬物送達システム用キヤリァー及び遺伝子導入用キヤ リァ 一並びに薬物送達製剤は、 さらに、 カチオン性の高分子 （以下、 「ポリ カチオン」 という） を含んでもよい。 ポリカチオンは、 高分子キトサン (Biomaterial s, Vol . 22, 2001 , pp2075 - 2080, Biochim. Biophys. Acta, Vo l . 1514, 2001 , pp51-64) ポリ L—リ ジン、 ポリアミ ドアミンデンド リマー、 D E A E —デキス トラ ン（これらの高分子に関する総説、 Nonvira l Vectors for Gene Therapy, Academi c Press, I nc.， 1999)、 ポリエチレンイ ミンおよびそれらの組み合わせからなる群より選択す るとよい。
核酸 （またはその誘導体） はポリカチオンと静電的に結合して小さく 折り畳まれた複合体を形成し、 通常はエンドサイ トシスで細胞に取り込 まれるため、 その多くは弱酸性となったェンドソーム内で酵素により分 解されてしまう。 これに対して、 本発明の糖残基含有側鎖とカルボキシ ル基含有側鎖を持つポリエチレンダリ コール誘導体は、 マイナスに帯電 しているために、 弱酸性下で細胞膜破壊機能を持つと考えられる。 この ようなァニオン性の高分子で核酸一ポリカチオン複合体を被覆するこ とにより、 核酸が酵素分解される前にエンドソーム膜を壊し、 核酸を細 胞質に移行させ、 遺伝子発現効率を向上させると考えられる。 また、 本 発明のポリエチレンダリ コール誘導体は親水性であるために、 血清タン パクなどによる核酸一ポリカチオン複合体の凝集を阻止すると考えら れる。 核酸 （またはその誘導体） とポリカチオンの配合比 （各荷電基のモル 比、 ァニオン ： カチオン比） は、 1 ： 0. 1〜 1 ： 5 0であるとよく、 好ましくは 1 ： 1〜 1 ： 20であり、 より好ましくは 1 ： 2〜 1 ： 1 0 である。
ポリカチオンと本願の第 1発明の共重合体の配合比 （各荷電基のモル 比、 カチオン ： ァニオン比） は 1 : 0. 0 1〜 ： L : 2 0であるとよく、 好ましくは 1 ： 0. 1〜 1 ： 1 6であり、 より好ましくは 1 ： 0. 2〜 1 ： 1 0である。
本願の第 1発明の共重合体は、 ポリエチレンダリ コール主鎖を持つこ とにより、 溶液中や血液を始めとする体液中での凝集や補体などの活性 化が抑制されることが期待できる。 また、 糖残基含有側鎖を持つことに より、 癌細胞などの糖鎖を認識する細胞に特異的な薬剤の送達を可能と する。 その他に、 製剤の水溶性を高めることも期待できる。
本願の第 7発明は、 糖残基を側鎖に持つァニオン性高分子又はその塩 と、 カチオン性の高分子を含む遺伝子導入用キャ リアーを提供する。 力 チオン性の高分子としてはキトサンを用いるとよい。
糖残基を側鎖に持つァニオン性高分子又はその塩として、 本願の第 1 発明の共重合体又はその塩、 カルボキシルビ二ルポリマーとアミノ基を 含む糖誘導体との縮合生成物、 側鎖ではないがヒアルロン酸などの酸性 ムコ多糖類を例示することができる。
カチオン性の高分子としては、 キトサンの他、 ポリ- L-リジン、 ポ リアミ ドアミンデン ドリマー、 ポリエチレンィ ミン、 プロタ ミン、 DEAE -デキス トラン、 ポリ リジンデンドリマーなどを例示することができる カチオン性の高分子と糖残基を側鎖に持つァニオン性高分子又はそ の塩の配合比 （各ポリマー中に含まれる荷電基のモル比、 カチオン： ァ 二オン比） は、 1 : 0. 0 1〜 1 ： 20であるとよく、 好ましくは 1 ： 0. 1〜 1 ： 1 6であり、 より好ましくは 1 ： 0. 2〜 1 ： 1 0である 核酸 （またはその誘導体） とポリカチオンの配合比 （各荷電基のモル 比、 ァニオン ： カチオン比） は、 1 ： 0. 1〜 1 ： 5 0であるとよく、 好ましくは 1 ： 1 ~ 1 ： 20であり、 より好ましくは 1 ： 2〜 1 ： 1 0 である。
本願の第 8発明は、 下記の一般式（I)及び（III)で表される構造単位を 含む分子量 1 0 00〜 200000の共重合体又はその塩と、 キトサン とを含む遺伝子導入用キヤリァーを提供する。
R1-COOH
0
f口2 (I)
- CHCH20-)-
- CH2CH20-)- (B∑)
(ただし、 一般式（I)中の R1はスぺーサ一部分であり、 単位（I)及び（III) のそれぞれのモル0 /0は、 （I)= l〜80、 （III) = 20〜 9 9である。）
R1はスぺーサ一部分であり、 このスぺーサ一部分はカルボキシル基、 糖残基などを有してもよい。 糖残基の糖と しては、 ガラク トース、 マル トース、 グノレコース、 N—ァセチノレグノレコサミン、 N—ァセチルガラタ ト サミン、 フコース、 シァノレ酸、 マンノース、 ラタ トース、 セロビオース あるいはマルト トリオースなどを例示することができる。
R1は、例えば、下記の一般式（C)または（D)で表される基であるとよい。 * - (CH2)m-S- (CH2)p- (C)
(ここで、 mは 2〜8の整数であり、 pは 1〜 8の整数である。） * -(CH2) m -S— (CH2)t― 9H一 (Ch —
(D)
(CH2)S - Rs
(ここで、 tnは 2〜 8の整数であり、 rは 0 ~ 7の整数であり、 sは 0〜 7の整数であり、 tは 0〜 4の整数であり、 Rsはァミノ基、 カルボキシル 基または糖残基である。） 一般式（C)または（D)において、 *はエチレンォキシド側またはその反 対側 （カルボキシル基側） のどちらに結合する位置であってもよいが、 エチレンォキシド側に結合する位置であることが好ましい。
一般式（C)で表される基としては、
— (CH2) 3— S— (CH2) 2—
などを例示することができる。
一般式（D)で表される基としては、 一（CH2)3 -S-CH—
CH2 -COOH
— (CH2)3 -S-CH2-CH一
NH2 などを例示することができる。
R1としては、 以下の基が合成上好ましい。
― (CH2) 3— S— CH2—
— (CH2) 3—S— (CH2) 2— 一 (CH2)3 -S— CH—
CH2 -COOH 一般式（D)中の Rsの糖残基の糖としては、 ガラク トース、 マルトース、 グルコース、 N—ァセチルダルコサミン、 N—ァセチルガラク トサミン、 フコース、 シアル酸、 マンノース、 ラク トース、 セロビオースあるレ、は マルト トリオースなどを例示することができる。
本願の第 8発明に使用される共重合体における、 単位（I)及び（III)の それぞれのモル0 /0は、 好ましくは 1〜 8 0 ： 9 9〜 2 0であり、 より好 ましくは 3〜6 0 ： 9 7〜 40である。
本願の第 8発明に使用される共重合体は、 さらに、 他の単位、 たとえ ば、 プロピレンォキシドなどを含んでもよい。
本願の第 8発明に使用される共重合体は、 ランダム共重合体、 プロッ ク共重合体、 グラフト共重合体のいずれであってもよい。
本願の第 8発明に使用される共重合体の塩と しては、 ナトリ ゥム塩、 力リゥム塩などを例示することができる。
本願の第 8発明の遺伝子導入用キヤリァ一において、 キトサンと共重 合体又はその塩の配合比 （各荷電基のモル比、 カチオン ： ァニオン比） は、 1 ： 0. 0 1〜 1 ： 2 0であるとよく、 好ましくは 1 ： 0. 1〜 1 ： 1 6であり、 より好ましくは 1 : 0. 2〜 1 : 1 0である。
核酸 （またはその誘導体） とポリカチオンの配合比 （各荷電基のモル 比、 ァニオン ： カチオン比） は、 1 ： 0. 1〜 1 ： 5 0であるとよく、 好ましくは 1 ： 1〜 1 ： 2 0であり、 より好ましくは 1 ： 2〜 1 ： 1 0 である。 本発明の好ましい実施態様の一つについて以下に説明する。
1. ポリエチレングリコール誘導体の製造
1一 1 糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体の 製造 （第 1法）
( 1 ) ァリルダリシジルエーテルとエチレンォキシドとの共重合体の製 造
ジエチレングリコールと水酸化力リ ウム （ジエチレングリ コールと水 酸化力リ ゥムのモル比は、 1 ： 0. 3〜 1 ： 1 とするとよレ、。） を予め リアクターに仕込み、 窒素雰囲気下、 約 2 0〜 7 OmmHgで 0. 5〜 3時 間、 7 0〜 9 5°Cで脱水した後、 ァリルグリシジルエーテル（AGE)とェ チレンォキシド（E0)の混合物 （モル比 3 ： 9 7〜 5 0 ： 5 0) を 1 00 〜 1 2 0°Cで、 約 5 0〜 6 0 0 g/h の速さで滴下する。 モノマーを加 える量により、 分子量が制御される。 所定のモノマーを添加後、 すぐに 未反応モノマーを減圧下 （例えば、 2 0 OmmHg) で除去する。 ポリマー をリン酸で中和した後、 減圧下、 8 0〜 1 20でで0. 5〜 3時間乾燥 させ、 最後に 60〜9 5°Cでろ過する。
ァリルダリ シジルエーテルとエチレンォキシドとの共重合体の分子 量は、 水酸基の滴定 （JIS K-1557 6.4 (1970)) で計算できる。 ポリマ 一の組成は 2重結合の滴定 （JIS K-1557 6.7 (1970)) で計算できる。 分子量分布は、 GPC (溶媒 THF) で調べることができる。
以上の方法で得られるのはランダム共重合体であるが、 ブロック性の 高い共重合体、 ブロック共重合体を得るには、 それぞれモノマー混合物 を一時に加える力 、 あるいはそれぞれのモノマーを順次加えると良い。
( 2 ) ァミ ノ基とカルボキシル基の両方を側鎖に持つ PEG 誘導体
(PEG-A/C) の製造
( 1 ) で得られたァリルグリシジルエーテルとエチレンォキシドとの 共重合体をメタノールに溶かし、 あらかじめ、 メルカプトアルキルアミ ンとメルカプト脂肪酸をメタノールに溶かしておいた溶液に攪拌しな がら滴下し、 20〜 6 0でで 8〜 7 2時間反応させる。流水で 1〜 4 日、 純水で 0〜 2日透析後、 凍結乾燥し、 または溶媒を減圧除去し、 ァミノ 基とカルボキシル基の両方を側鎖に持つ PEG誘導体 （PEG-A/C) を得る。 反応におけるメルカプトアルキルァミンとメルカプト脂肪酸の仕込み モル比は、 1 : 9 9〜 70 : 30とするとよい。
得られた PEG-A/Cの分子量は、 NMR等でアミノ基側鎖とカルボキシル 基側鎖の数を定量することにより、 （ 1 ) のァリルグリシジルエーテル とエチレンォキシドとの共重合体の分子量を元に計算することができ る。 すなわち、 ァリルグリシジルェ一テルとエチレンォキシドの共重合 体の分子量に付加したメルカプトアルキルァミンの分子量とその付加 した数の積、 および、 付加したメルカプト脂肪酸の分子量とその付加し た数の積、 をそれぞれ足して計算できる。 反応率は 1 0 0 %として計算 した。
( 3 ) 糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つポリエチレング リコール誘導体 （Sugar- PEG- A/C) の製造
( 2 ) で得られた PEG- A/C と糖ラタ トンを乾燥 DMFに溶かし、 6 0〜 8 0 °Cで 1 . 5〜4時間反応させる。 ゲルろ過、 凍結乾燥または溶媒の 減圧除去によって、 糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つ PEG誘導体が得られる。 糖ラタ トンの PEG- A/Cのァミノ基に対するモル 比は、 1 ： 1以上とするとよい。
得られた Sugar- PEG- A/Cの分子量は、 NMR等で糖側鎖の数を定量する ことにより PEG - A/C の分子量を元に計算することができる。 すなわち、 付加した糖の数と、 糖が一つ付加することによって増える分子量との積 を、 PEG-A/Cの分子量に足して計算できる。
また、 Sugar- PEG- A/Cの分子量は、 適当な溶媒の GPCを用いて、 常法 により、 見積もることも出来る。
Sugar- PEG- A/Cの塩を製造するには、 以下のようにすればよい。
( 4 ) Sugar- PEG-A/Cの塩の製造
( 3 ) で得られた Sugar- PEG- A/Cを水に溶解し、 p Hが 8〜 1 1にな るまで希 N a O Hまたは希 K O H水溶液を加えて中和する。 得られた水 溶液をそのまま凍結乾燥するか、 溶媒を減圧除去する。
( 5 ) グラフト共重合体の製造
グラフ ト共重合体は、 市販の末端に反応性の官能基 （ァミノ基または カルボキシル基） を導入したポリエチレングリ コールなどを、 幹となる ポリマーの官能基と、 ジシクロへキシルカルボジイミ ドなどを用いて結 合させることによって合成できる。
1一 2 糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体の 製造 （第 2法）
( 1 ) ァリルグリシジルエーテルとエチレンォキシドとの共重合体の製 造
1— 1の （ 1 ) に記載した方法でァリルグリシジルエーテルとェチレ ンォキシドとの共重合体を製造する。
( 2 ) カルボキシル基を側鎖に持つ PEG誘導体 （PEG- C) の製造
1 — 1の （ 1 ) で得られたァリルグリシジルエーテルとエチレンォキ シドとの共重合体をメタノールに溶かし、 あらかじめメルカプト脂肪酸 をメタノールに溶かしておいた溶液に攪拌しながら滴下し、 2 0〜 6 0 °Cで 8〜 7 2時間反応させる。 水で希釈後、ゲルろ過によって精製し、 凍結乾燥してカルボキシル基を側鎖に持つ PEG誘導体 （PEG-C) を得る。 得られた PEG-C の分子量は、 （ 1 ) のァリルグリシジルエーテルとェ チレンォキシドとの共重合体の分子量を元に計算することができる。 す なわち、 ァリルグリシジルエーテルとエチレンォキシドの共重合体の分 子量に、 付加したメルカプト脂肪酸の分子量とその付加した数の積、 を それぞれ足して計算できる。
( 3 ) 糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つポリエチレング リコール誘導体 （Sugar- N- PEG- C) の製造
( 2 ) で合成したカルボキシル基を側鎖に持つ PEG 誘導体 （PEG- C) とアミノ基を持つ糖誘導体を適当な溶媒に溶かし、 ジシク口へキシルカ ルボジィミ ド、 または水溶性カルボジィミ ドを加えて、 室温一 4 0 °Cで 18— 40時間反応させ、必要に応じて過剰量の酢酸ナトリ ゥムを加えて反 応を停止させ、 ゲルろ過で精製することにより、 糖側鎖とカルボキシル 基側鎖を持つ PEG誘導体が得られる。
得られた Sugar- N-PEG-Cの分子量は、カルボキシル基を側鎖に持つ PEG 誘導体 （PEG- C) の分子量を元に計算することができる。 すなわち、 NMR スぺク トノレによりポリマー中の糖側鎖とカルボキシル側鎖の割合を定 量し、 付加した糖の数と、 糖が一つ付加することによって増える分子量 との積を、 PEG- Cの分子量に足して計算できる。 また、 Sugar- N- PEG- Cの分子量は、 適当な溶媒の GPCを用いて、 常法 により、 見積もることも出来る。
Sugar-N-PEG-Cの塩を製造するには、 以下のようにすればよい。
( 4 ) Sugar-N-PEG-Cの塩の製造
1一 1の （4) に記載した方法で Sugar-N- PEG- Cの塩を製造する。 (5) グラフト共重合体の製造
グラフ ト共重合体は、 市販の末端にアミノ基を導入したポリエチレン グリ コールなどを、 幹となるポリマーのカルボキシル基と、 ジシクロへ キシルカルポジィミ ドなどを用いて結合させることによって合成でき る。
1一 3 カルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体の製造
( 1 ) ァリルダリシジルエーテルとエチレンォキシドとの共重合体の製 造
1一 1の （ 1) に記載した方法でァリルグリシジルエーテルとェチレ ンォキシドとの共重合体を製造する。
(2) カルボキシル基を側鎖に持つ PEG誘導体 （PEG- C) の製造
1 _ 2の （ 2) に記載した方法でカルボキシル基を側鎖に持つ PEG誘 導体 （PEG-C) を製造する。
得られた PEG-Cの分子量は、 1— 2の （2) に記載した方法で計算す ることができる。
( 3 ) PEG- Cの塩の製造
1— 1の （4) に記載した方法において、 Sugar- PEG-A/C の代わりに PEG- Cを用いて PEG- Cの塩を製造する。
(4) グラフ ト共重合体の製造
1— 1の （5) に記載した方法と同様の方法により、 グラフ ト共重合 体を製造する。
2. 薬物送達システム ここでは、 遺伝子と高分子キトサンの複合体を Sugar-PEG- A/C 又は PEG-C で被服した遺伝子治療用の薬物送達システムを例にとって説明す る。
キ トサンは、 主にェビゃ力二などの甲殻類の甲羅に含まれるキチン ( N—ァセチル一 D—ダルコサミンが ]3— 1 , 4結合した多糖） のァセ トアミ ド基を脱ァセチル化して得られる多糖類である。
本発明で使用する高分子キトサンは、 希酸に可溶な通常のキトサンで,
1 . 0 d 1 Z g以上の固有粘度を有するものであればよく、 起源、 脱ァ セチル化度等は特に限定されるものではない。 固有粘度が上記より も低 い低分子キトサンでは、 導入率が著しく低くなるという問題がある。
なお、 本明細書において 「固有粘度」 とは、 例えば特開平 1— 1 8 5
3 0 1号に記載された方法に従って測定することができる。 すなわち、 キトサンをこれと同量の酢酸を用いて水に溶解し、 この溶液と同量の 0 .
4 N酢酸 + 0 . 2 N酢酸ナトリ ウムとを混合して測定に用いる溶液を調 製し、 希釈には 0 . 2 N酢酸 + 0 . 1 N酢酸ナトリ ウムを用い、 3 0 °C の条件でウベローデ粘度計を用いて測定された値が固有粘度である。
本発明において、 遺伝子は、 導入する D N Aが発現ベクターのプロモ 一ター下流に連結されているプラスミ ド （組み換えベクター） が好まし く用いられる。
遺伝子ーキトサン複合体の形成は、 両者の溶液を 0〜 5 0 °Cで 1 0分 〜 2 4時間、 好ましくは 2 0〜 3 0 °Cで 1〜 4時間混合することにより 得ることができる。 この時の両者の混合の比率は、 遺伝子 （例えば、 プ ラスミ ド） 1塩基 ： キトサン中のダルコサミン単位 = 1 ： 1〜 1 ： 2 0 とすることが好ましく、 1 ： 2〜1 ： 1 0とすることがより好ましい。 なお、 両者の溶媒としては、 滅菌された超純水、 緩衝液等が好ましく用 いられる。 プラスミ ド溶液用の溶媒は、 p H 5 . 5〜7 . 5に調整して おく ことが好ましい。
遺伝子—キトサン複合体を Sugar- PEG- A/C又は PEG- Cで被覆するには, 遺伝子ーキトサン複合体の溶液に Sugar- PEG- A/C又は PEG- Cの溶液を目 的のカチオン ： ァニオン比 （キトサンのカチオンと Sugar-PEG- A/C又は PEG- C のァニオンの電荷比） になるように、 0〜 5 0°Cで 5分〜 2 4時 間、 好ましくは 20〜 30°Cで 1 0〜 6 0分間混合する。 カチオン ： ァ ユオン比は、 1 : 0. 0 1〜 1 ： 2 0であるとよく、 好ましくは 1 ： 0. 1〜 1 ： 1 6であり、 より好ましくは 1 ： 0. 2〜 1 ： 1 0である。
カチオン ： ァニオン比は以下のようにして計算することができる。
((キトサンの重量 キトサン一繰り返し単位当たりの平均分子量） X 脱ァセチル化度） ： （（Sugar-PEG_A/C又は PEG-Cの重量 （ポリマーの分 子量 ポリマ 分子当たりのカルボキシル基の数））
なお、 Sugar- PEG-A/C又は PEG-Cの溶液の溶媒は、 水または緩衝液で あるとよく、 好ましくはリン酸緩衝液である。
本発明の好ましい態様においては、 上記条件で調製した遺伝子一キト サン複合体を Sugar- PEG- A/C又は PEG- Cで被覆したものを培養中の目的 の細胞にそのまま添加して、 細胞の培養温度で 1〜 1 2時間静置して上 記複合体と細胞を十分接触させた後、 血清を添加した培地に交換して更 に 4〜48時間培養することにより遺伝子を細胞に導入する。 培地中に 血清を加えることにより、 遺伝子発現率を高めることができる。
本発明で使用する血清成分は、 細胞培養に適したものであればよく、 例えば牛胎児血清 （F B S) などが好ましく用いられる。 血清成分の培 地中への添加量は、 0. 1〜 5 0重量％が好ましく、 2〜 2 0重量％が 更に好ましい。
本発明の共重合体の糖の種類を変えれば、 体内の様々な組織を標的と して、 治療用の遺伝子を始めとする薬剤を運ぶキヤリァーを設計するこ とができる。 例えば、 プルランには脳腫瘍指向性があること （Drug Delivery System, Vol.5, No.4， 1990， pp.261— 265)、 ラタ トースは多 種類の癌細胞に親和性がある こ と （Biol. Cell, Vol. 47, 1983, pp95- 110)、 ガラク トースゃラタ ト一スは特にへパトーマに親和性が高 いこと （J. Biol. Chem. , Vol. 256, 1981， pp8878_8881)、 メラノーマ はマノレ ト ース も認識すること (Naturwissenschaften Vol. 74, 1987, S. 37 )、 マクロファージなどの免疫細胞はマンノースを認識すること (Prog. Lipid. Res. , Vol. 31， 1992, ρρ345- 372)などが知られており、 これらの情報を薬物送達システム用キヤリァーおよび遺伝子導入用キ ャリァ一の設計に利用することができる。
さらに、 本発明の薬物送達システム用キャリア一は、 上記の高分子キ トサンのようなポリカチオンの他、 スペルミン、 ペプチド、 カチオン性 脂質、 カチオン性コレステロール誘導体、 葉酸などを含んでもよい。
また、 本発明の遺伝子導入用キャリア一は、 上記の高分子キトサンの ようなポリカチオンの他、 スペルミン、 ペプチド、 カチオン性脂質、 力 チオン性コレステロール誘導体、 葉酸などを含んでもよい。
本発明の共重合体により、 従来の遺伝子ーキトサン複合体と比較して、 遺伝子発現の活性が高く、 しかも細胞特異的な遺伝子のデリバリーを達 成することが可能となった。 また、 本発明の共重合体を用いることによ り、 遺伝子ーキトサン複合体の溶液中および血液を始めとする体液中で の凝集を抑制することができ、 さらに、 製剤の水溶性を高めることもで さる。
本発明の薬物送達システムは、 遺伝子のみならず、 アンチセンス核酸 ゃリボザィムなどの多くの核酸誘導体にも応用できる技術であること から、 遺伝子治療のみならず、 バイオテクノロジー分野での利用が考え られる。
本明細書は、 本願の優先権の基礎である 日本国特許出願、 特願 2001-362482号および特願 2002-343256号の明細書および または図面 に記載される内容を包含する。 図面の簡単な説明
図 1は、 PEG-Cにおけるァニオン/力チオン比の影響を示すグラフで ある。
図 2は、 Lac- PEG- A/Cにおけるァニオン カチオン比の影響を示すグ ラフである。 図 3は、 Mai- PEG- A/Cにおけるァニオン/力チオン比の影響を示すグ ラフである。
図 4は、 ァリルグリシジルエーテルとエチレンォキシドとの共重合体 の NMRスぺク トルである。
図 5は、 PEG- A/Cの NMRスぺク トルである。
図 6は、 Lac-PEG- A/Cの NMRスぺク ト,レである。
☆を付した Hのスぺク トルは、 糖残基の- i(OH) -の下線部の Hのスぺク トルと一部重なっている。
図 7は、 Mai- PEG- A/Cの NMRスぺク トルである。
☆を付した Hのスぺク トルは、 糖残基の- Qi(OH) -の下線部の Hのスぺク トルと一部重なっている。
図 8 ίま、 PEG— C9000の NMRスぺク トノレである。
図 9は、 Lac- PEG- A/C におけるァニオン Zカチオン比の影響を示すグ ラフである。
図 1 0は、 Mal-PEG- A/C におけるァニオン/力チオン比の影響を示す グラフである。
図 1 1は、 Gul— N— PEG— Cの NMRスぺク トノレである。
図 1 2は、 Gal— N— PEG— Cの NMRスぺク トノレである。
図 1 3は、 Man-N- PEG-Cの NMRスぺク トルである。 発明を実施するための最良の形態
以下、 本発明を実施例によって具体的に説明する。 なお、 これらの実 施例は、 本発明を説明するためのものであって、 本発明の範囲を限定す るものではない。
[実施例 1 ] 糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つ PEG誘導 体 （Mal-PEG- A/C, Lac- PEG- A/C) の製造
ジエチレングリ コール （56 g ) と水酸化カリ ウム （1. 2 g ) を予めリ アクターに仕込み、 窒素雰囲気下、 約 5 0 画 Hgで 1時間、 8 5 °Cで脱水 した後、 ァリルグリシジルエーテル（AGE)とエチレンォキシド（E0)の混 合物 （モル比 1 5 : 8 5 ) を 1 0 0〜 1 2 0 °Cで、 約 4 0 0 g /h の速 さで滴下した。 モノマーを加える量により、 分子量が制御される。 ァリ ルグリシジルエーテル（AGE)とエチレンォキシド（E0)を合わせて 3 0 0 0 g添加後、すぐに未反応モノマーを減圧下（ 2 0 O mtnHg)で除去した。 ポリマーをリ ン酸で中和した後、 減圧下、 1 0 0 °Cで 1時間乾燥させ、 最後に 8 0 °Cでろ過した。 得られたァリルグリシジルエーテルとェチレ ンォキシドとの共重合体の NMRスぺク トルを図 4に示す。 得られたァリルグリシジルエーテルとエチレンォキシドとの共重合 体 （Mn ： 7060、 Mw / Mn = 1. 05、 ァリノレグリ シジルエーテル ： ェ チレンォキシド = 13. 4 ： 86. 6) 2 gを 4 mlのメタノールに溶かし、 あ らかじめ、 アミノエタンチオール 1 g (関東化学株式会社） とメルカプ トプロピオン酸 3 g (和光純薬工業株式会社） を 6 ml のメタノールに溶 かしておいた溶液に攪拌しながら滴下し、 30°Cで 50 時間反応させた。 流水で 3 日、 純水で 1 日透析後、 凍結乾燥し、 ァミノ基とカルボキシル 基の両方を側鎖に持つ PEG誘導体 （PEG- A/C) を得た。 収量 l . l g。 ァセ チル化した生成物の NMRスぺク トルにより計算したポリマー中のァミノ 基とカルボキシル基の割合は 29 ： 71であった。 PEG-A/Cの NMRスぺク トノレを図 5に示す。 次に、 ラタ トノラタ トンまたはマルトノラタ トンは文献に従って合成 した （Po lymer J. , Vo l. 17， 1985, 567 pp l985)。 これらラク トン 200 mg を PEG-A/C 200 mg とを乾燥 DMF 3 ml に溶かし 70°Cで 2時間半反応さ せた。 ゲルろ過、 凍結乾燥によって、 糖残基含有側鎖とカルボキシル基 含有側鎖を持つ PEG誘導体を得た。 収量 146 〜 152 mgo 蘭 Rスぺク ト ルによりすべてのアミノ基に糖鎖が結合した誘導体（ c-PEG-A/C 及び Mai- PEG-A/C)であることが確認された。 分子量 10450、 ポリマー 1 分子 あたりの糖鎖 5. 1個、 C00H 12. 6個。 Lac- PEG-A/C及ぴ Mai- PEG-A/Cの NMRスぺク トルをそれぞれ図 6及び 7に示す。 ァリルダリシジノレエーテルとエチレンォキシドとの共重合体の分子 量は、 水酸基の滴定 （JIS K-1557 6.4 (1970)) で計算した。 ポリマー の組成は 2重結合の滴定 （JIS K-1557 6.7 (1970)) で計算した。 分子 量分布は、 GPC (溶媒 THF) で調べた。 その後の生成物の分子量は、 すべ てそれを元にした計算値である。
[参考例 1 ] カルボキシル基を側鎖に持つ PEG 誘導体（PEG- C9000)の製 造
ァリルグリシジゾレエーテルとエチレンォキシドとの共重合体 （Mn = 3260, Mw/ n =1.05， 8.28 C=C group I polymer molecule) 2 gを 4m
1のメタノールに溶かしたものを、 3—メルカプトプロピオン酸（4 g ) をメタノール 2 m 1 に溶かした溶液に室温で滴下した。 40でで 70時 間放置後、 メタノール/エーテル系で再沈を繰り返し、 さらにゲルろ過
(セフアデックス G- 5 0) によりポリマーを精製した。 最後に凍結乾 燥し、 シロップ状の PEG-C9000 ( 2. 3 g)を得た。 PEG-C9000の醒ス ぺク トルを図 8に示す。
[実施例 2] キトサンの製造
キトサンヒ ドロアセテート （焼津水産 （株） 製） をビンに入れ、 マグ ネチックスターラーで攪拌しながら、 溶液が透明になるまで、 12N HC1 を添加した。 得られた粉末を凍結乾燥した。 得られた塩酸キトサンの平 均分子量は、 40,84 および 110 kDa であった。 脱ァセチル化度は約 85% であった。
[実施例 3] キトサン / PEG誘導体 /プラスミ ド複合体 における遺伝 子発現
遺伝子 · キトサン · PEG 誘導体の 3成分の複合体を作製し、 この複合 体をマウス黒色腫細胞 B16メラノーマと相互作用させ、 ルシフェラーゼ 遺伝子の発現を確認した。
操作手順
(1) 複合体を導入する前日に、 2 4穴マルチプレー トに 5 X 1 04 cells/well で B16細胞 （JCRB細胞バンク） をまき、 2 4時間インキュ ベートした。
(2) PBS (-)を I N HC 1 を用いて、 p H6.5に調整した。
(3) ルシフェラーゼプラスミ ド 7.5μ L (Promega社、 lmg/mL) を先の P B S (-) 135// Lに希釈し、 15分間室温で放置した。
(4) (3)に実施例 2で製造したキトサン塩酸塩 （平均分子量 40kDa) の 水溶液 （2.95mg/mL) を 7.5μ ί加え、 数回ピペッティングした後、 15 分間室温で静置した。
(5) (4)に、 参考例 1 (PEG-C9000) および実施例 1 (Mai- PEG- A/C, Lac-PEG-A/C) で製造した PEG誘導体の溶液 （PEG誘導体 40 mgを MilliQ または P B S (-) 1 mL に溶かしたもの） を目的のカチオン ： ァニオン 比になるように加えて 15 分間静置した。 ここではカチオン ： ァニオン 比 =1 : 0.5、 1 : 1、 1 : 2、 1 ： 4 とした。 ここで、 カチオン ： ァニオン比 とは、 具体的には、 キトサンと PEG誘導体の電荷のモル比である。 カチ オン： ァニオン比は以下のようにして計算した。
((キトサンの重量ノキトサン一繰り返し単位当たりの平均分子量） X 脱ァセチル化度） ： （（Sugar- PEG-A/C又は PEG- C9000の重量ノ （ポリマー の分子量/ポリマ 分子当たりのカルボキシル基の数））
(6) 静置している間に、 I N HC 1 で p H6.5に調整した培地 （10mM PIPES (SIGMA社） または MOPS (SIGMA社）、 および 10%血清 （SIGMA社） を含む） を用意し、 各ゥエル 500/i L入れておいた。
(7) 作成した複合体溶液をよく ピペッティングした後、 3 ゥエルに加え た。
(8) 4時間、 37°C、 5%C02- 95% air下でインキュベートした。 (9) 複合体を含んだ培地を除き、 P B S (-) で 2〜3 回細胞表面を洗 い、 新たな培地を加えた。
(10) 24時間のインキュベート後、 P B S (-) で 3回細胞表面を洗つ た後、 細胞溶解液 （Promega社、 Lucif erase Assay Kit中の試薬） を 100 μ Lずつ各ゥエルに加えた。 15分ほど放置してから、 セルスクレーパー を用いて細胞を剥がし、 エツペンに回収した。
(11) 遠心 （12000rpm, 1 min) にかけてから、 上清を用いて Lucif erase Assay を frつ 7こ (Promega社、 Lucif erase Assay Kitを使用 )。
なお、 Protein Assay を行う場合は、 この細胞溶解液をそのまま用い た。 Protein Assay は、 Bio-Rad 社の Protein assay kitを用レヽて打つ た。
比較のために、 PEG誘導体を添加しなかったものについても遺伝子発 現を調べた。 ロ
結果を図 1〜 3に示す。 ここで、 図中の- /+の値はァニオン Zカチォ ン比であり、 具体的には、 PEG誘導体のキトサンに対する電荷のモル比 である。
図 1について、 PEG-C9000は、 ァニオン Zカチオン比依存的に発現を 大きく向上させた。
図 2については、 Lac- PEG- A/C の結果であり、 発現活性はァニオン Z カチオン 比 = 4において、発現が一番高くなり、 Lac- PEG- A/Cを加えて いない場合と比較して約 1 2倍近く発現が上がった。
図 3については、 Mai- PEG- A/C の結果であり、 発現活性はァニオン/ カチオン 比 = 2において、 発現が一番高くなり、 Mai -PEG-A/C を加え ていない場合と比較して約 8 5倍近く発現が上がった。
[実施例 4] ポリエチレンィ ミン / PEG 誘導体 / プラスミ ド コンプ レックス における遺伝子発現 遺伝子.ポリエチレンィミン ' PEG誘導体の 3成分の複合体を作製し、 この複合体をヒ ト肝癌細胞 HepG2 と相互作用させ、 ルシフェラーゼ遺伝 子の発現を確認した。
操作手順
(1) コンプレックスを導入する前日に、 9 6穴マルチプレートに 1 X 1 0 4 cel ls/wel lで HepG2細胞をまき、 2 4時間ィンキュベートした。
(2) ルシフェラーゼプラスミ ド 1 0 O ngを DMEM培地 (-) 4 5 /z Lに 溶解した溶液に、 直鎖状ポリエチレンィ ミ ン （Polysci ence ; 平均分子 量 25 kDa) の DMEM培地 （-） 溶液を 5 /z L加え、 3 0分間 3 7 °Cで静 置した。 この時ポリエチレンィミンの溶液の濃度は、 ァニオン ： カチォ ン比が 1 ： 4になるように調整した。
(3) (2) に、 実施例 1 で製造 した PEG 誘導体 （ Mal-PEG-A/C, Lac-PEG-A/C) の溶液を目的のァニオン：カチオン比になるように加え、 さらに 3 0分間 3 7 °Cで静置した。 ここで、ァニオン：カチオン比とは、 具体的には、 ポリエチレンィミンと PEG誘導体の電荷のモル比である。
(4) 各ゥエルに、 作成したコンプレックス溶液 5 5 μ Lを加え、 さら にクロ口キンの DMEM溶液を、 クロ口キンの最終濃度が 2 X 1 0— 4 M に なるように加えた。
(5) 1 0時間、 37°C、 5%C02- 95% air下でィンキュベートした。
(6) コンプレックスを含んだ培地を除き、 P B S (-) で 2〜3 回細胞 表面を洗い、 新たな培地を加えた。
(7) 4 0時間のインキュベート後、 P B S (-) で 3回細胞表面を洗つ た後、 l wt- %の tritonX- 100溶液で細胞を溶解し、 Luc iferase Assayを 行った。
結果を図 9、 1 0に示す。 ここで、 図中の _/+の値はァニオン カチ オン比であり、 具体的には、 PEG 誘導体のポリエチレンィミンに対する 電荷のモル比である。 また、 図 9および 1 0において、 「タンパク質」 とは、 細胞に含まれるすべてのタンパク質を意味する。 「タンパク質 1 m g当たりの相対ルシフェラーゼ活性」 は、 細胞が生産するタンパク質 のうちどれだけがこの遺伝子によるものかを表す値である。 図 9については、 Lac- PEG- A/C の結果であり、 発現活性はァニオン/ カチオン 比 = 4において、 発現が一番高くなり、 Lac_PEG_A/Cを加えて いない場合と比較して約 3倍発現が上がった。
図 1 0については、 Mai- PEG-A/C の結果であり、 発現活性はァニオン Zカチオン 比 = 8において、 発現が一番高くなり、 Mal-PEG-A/Cを加え ていない場合と比較して約 2倍発現が上がった。
[実施例 5 ] アミノ基を持つ糖誘導体を用いた糖側鎖とカルボキシル基 側鎖を持つ PEG 誘導体 （Gul- N-PEG-C, Gal- N- PEG- C, Man-N-PEG-C) の 製造
[参考例 1 ] と同様にして合成したカルボキシル基を側鎖に持つ PEG 誘導体（PEG- C9000) (分子量 8940、 ポリマー 1分子あたりの C00H 17. 7 個） 100 mg と p-ァミノフエニルダルコシド 1 5 mgを 1 mlの純水に溶か し、水溶性カルボジィミ ド 4 O mgを加えた。 さらに純水 2 mlを加えて、 室温で 24時間反応させた。 150 mgの酢酸ナトリ ゥムを加えて反応を停 止させ、 Sephacryl S-200 でゲルろ過したのち凍結乾燥した。 得られた シロップを再び純水に溶解し、 アンバーライ ト B- 120 でイオン交換し、 凍結乾燥して、 ダルコシド側鎖とカルボキシル基側鎖を持つ PEG誘導体 を得た。 収量 45 mgo NMR スぺク トルにより計算したポリマー中の糖側 鎖とカルボキシル側鎖の割合は 19： 81であった。
同様にして、 p -ァミノフエニルダルコシドの代わりに p-ァミノフエ二 ルガラタ トシドを用いて、 ガラク トシド側鎖とカルボキシル基側鎖を持 つ PEG誘導体を得た。 収量 14 mg。 NMR スペク トルにより計算したポリ マー中の糖側鎖とカルボキシル側鎖の割合は 26： 74であった。
また、 同様に、 p-ァミノフエニルダルコシドの代わりに P-ァミノフエ 二ルマンノシドを用いて、 マンノシド側鎖とカルボキシル基側鎖を持つ PEG誘導体を得た。 収量 52mg。 NMRスペク トルにより計算したポリマー 中の糖側鎖とカルボキシル側鎖の割合は 23 ： 77であった。
ダルコシド側鎖とカルボキシル基側鎖を持つ PEG誘導体の删 Rスぺク トルを図 1 1 〜 1 3に示す。 図 1 1 、 1 2および 1 3は、 それぞれ、 Gu l— N— PEG—C、Gal— N— PEG一 Cおよび Man一 N— PEG— Cの NMRスぺク トノレを示す。 本明細書で引用した全ての刊行物、 特許および特許出願をそのまま参 考として本明細書にとり入れるものとする。 産業上の利用可能性
本発明により、 従来の遺伝子—キトサン複合体と比較して、 遺伝子発 現の活性が高く、 しかも細胞特異的な遺伝子のデリバリーを達成するこ とができる。
また、 本発明により、 従来の遺伝子 -ポリエチレンイミン複合体と比 較して、 遺伝子発現の活性が高く、 しかも細胞特異的な遺伝子のデリバ リーを達成することができる。

Claims

請 求 の 範 囲
1. 下記の一般式（1)、 （II)及び（III)で表される構造単位を含む分子 量 1000〜 200000の共重合体又はその塩。
R1-C00H
I
0
CH2
(I)
- CHCH20-)-
-(CHCH20-)-
CH2
0
R2— R3
- CH2CH20^-
(ただし、 一般式（I)中の R1および一般式（II)中の R2はスぺーサ一部分で あり、 一般式（II)中の R3は糖残基を表し、 単位（1)、 （II)及び（III)のそ れぞれのモル％は、 （I)= l〜9 8、 （Π)= 1〜 9 8、 （ΠΙ)= 1〜 9 8 である。）
2. ァリルグリシジルエーテル及びエチレンォキシドを重合させた後 、 得られた共重合体にメルカプトアルキルァミンとメルカプト脂肪酸の 混合物を添加して反応させることにより、 アミノ基含有側鎖とカルボキ シル基含有側鎖を持つ共重合体を得、 次いで、 得られたアミノ基含有側 鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体を糖ラク トンと反応させ ることを特徴とする、 糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有側鎖を持つ 、 分子量 1 000〜 200000の共重合体の製造方法。
3. ァリルグリシジルエーテル及びエチレンォキシドを重合させた後 、 得られた共重合体にメルカプト脂肪酸を添加して反応させることによ り、 カルボキシル基含有側鎖を持つ共重合体を得、 次いで、 得られた力 ルポキシル基含有側鎖を持つ共重合体を、 ァミノ基を有する糖誘導体と 反応させることを特徴とする、 糖残基含有側鎖とカルボキシル基含有側 鎖を持つ、 分子量 1 000~200000の共重合体の製造方法。
4. 請求項 1記載の共重合体又はその塩を含む、 薬物送達システム用 キヤリァー。
5. さらに、 カチオン性の高分子を含む請求項 4記載の薬物送達シス テム用キヤリァー。
6. 薬剤及び請求項 1記載の共重合体又はその塩を含む、 薬物送達製 剤。
7. さらに、 カチオン性の高分子を含む請求項 6記載の薬物送達製剤
8. 請求項 1記載の共重合体又はその塩を含む、 遺伝子導入用キヤリ ァー。
9. さらに、 カチオン性の高分子を含む請求項 8記載の遺伝子導入用 キヤリァー。
1 0. 糖残基を側鎖に持つァニオン性高分子又はその塩と、 カチオン 性の高分子を含む遺伝子導入用キヤリァー。
1 1. カチオン性の高分子がキトサンである請求項 1 0記載の遺伝子 導入用キヤリァー。
1 2. 下記の一般式（I)及び（III)で表される構造単位を含む分子量 1 000〜 2 0 00 00の共重合体又はその塩と、 キトサンとを含む遺伝 子導入用キヤリァー。
R1— COOH
0
f H2 (I)
- CHCH20 -) - -( CH2CH20-)- (HI)
(ただし、 一般式（I)中の Riはスぺーサ一部分であり、 単位（I)及び（ΠΙ) のそれぞれのモル0 /0は、 （Ι)= ΐ〜80、 （ΠΙ)= 20〜 9 9である ）
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