WO2001051644A2 - ANTI-CD3-EINZELKETTEN-ANTIKÖRPER MIT HUMANEN Cν3- und Cν4- DOMÄNEN - Google Patents

ANTI-CD3-EINZELKETTEN-ANTIKÖRPER MIT HUMANEN Cν3- und Cν4- DOMÄNEN Download PDF

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    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide

Definitions

  • the present invention relates to a single chain antibody which is characterized in that it (a) contains a variable domain (scFv) which specifically binds to human CD3, and (b) the constant domains are derived from a human IgM molecule and the C ⁇ 3 domain and C i 4 domain, but do not include the C ⁇ l domain and C ⁇ 2 domain.
  • the antibody according to the invention contains a human IgG 3 joint region between the variable and constant domain.
  • the present invention also relates to DNA sequences encoding this antibody and expression vectors containing these DNA sequences, and finally to medicaments containing the above compounds, preferably for the prevention of acute rejection reactions after organ transplantation.
  • 0KT3 is a monoclonal murine IgG2a antibody against the ⁇ chain of the CD3 complex on human lymphocytes, which has been successfully used in the clinic for the prevention of acute rejection rations after organ transplants for several years.
  • OKT3 is often the only way to control acute rejection reactions.
  • In vivo administration of OKT3 induces a large decrease in circulating CD3 + cells, since it modulates TCR.
  • serious side effects may occur during the first few days of treatment. These include, for example, chills and fever, and the patients occasionally suffer from nausea, vomiting, diarrhea, shortness of breath, wheezing and serum meningitis. Many of these side effects are attributed to the release of cytokines, especially T cells. With prolonged administration there also occurs strong immune response against the constant domain of the murine OKT3 antibody.
  • the present invention addresses the technical problem of providing anti-CD3 antibodies, when administered, e.g. B. to avoid tissue rejection reactions, the side effects described so far do not occur.
  • the single chain antibodies according to the invention bind selectively to T cells and inhibit the binding of monoclonal OKT3 antibodies. Functional studies also showed that the single-chain antibodies according to the invention do not induce T cell proliferation and also do not produce IL-2, TNF- ⁇ and INF- ⁇ , but are comparable with monoclonal 0KT3 antibodies in terms of CD3 modulation and inhibition of the immune response are.
  • the Single-chain antibodies according to the invention because of their smaller size compared to a complete IgM molecule, have improved tissue penetration, which can lead, for example, to the fact that the desired effects occur even at lower doses or these effects occur to a greater extent.
  • tissue penetration can lead, for example, to the fact that the desired effects occur even at lower doses or these effects occur to a greater extent.
  • "clearance" from the bloodstream will occur more quickly.
  • the lack of the C11 domain and C ⁇ 2 domains contributes to a further reduction in the number of possible non-specific reactions.
  • Another advantage can be seen in the fact that single chain antibodies are easier to produce recombinantly.
  • the present invention thus relates to a single-chain antibody, characterized in that it contains (a) a variable domain (scFv) which specifically binds to human CD3, and (b) the constant domains are derived from a human IgM molecule and the C 3 -Domain and C u 4 domain, but not the C u "l and C u" 2 domain include.
  • scFv variable domain
  • the constant domains are derived from a human IgM molecule and the C 3 -Domain and C u 4 domain, but not the C u "l and C u" 2 domain include.
  • variable domain specifically binding to human CD3 is the scFv of the murine monoclonal antibody OKT3.
  • the single chain antibody according to the invention has a human IgG 3 joint region between the variable domain and the constant domains. This provides additional stability and mobility between the antigen binding site and the constant domain.
  • the introduction of this joint region can be carried out by methods known to the person skilled in the art, for example as described in Example 1 below and shown in the diagram in FIG.
  • An even more preferred embodiment of the single chain antibody according to the invention contains a C ⁇ 3 and a C ⁇ 4 domain which originate from the C575 or VAEVD mutant. These mutants differ from the wild type in terms of the tail piece ( ⁇ tp). It has previously been shown that the mutation of the cysteine at position 575 in the IgM Tail piece prevents the incorporation of the J chain. No J chain was found in the mutant IgM VAEVD either. It can therefore be assumed that the scOKT3- ⁇ lgM constructs with the mutants C575 or VAEVD are even less immunogenic than the construct scOKT3- ⁇ lgM-wt.
  • the single-chain antibody according to the invention is in polymeric form, for example as di er, tetramer, pentamer, hexamer or a mixture thereof. These forms are characterized by a higher avidity than the monomeric ones, the pentameric forms furthermore leading to a stronger inhibition of T cell proliferation.
  • the polymeric forms of the antibody can be obtained by generally known methods, e.g. by means of the fractionation of the culture supernatant via gel filtration described in Example 1 below, for example with Superdex-200.
  • Another preferred embodiment of the present invention relates to DNA sequences encoding the single chain antibody according to the invention.
  • DNA sequences encoding the single chain antibody according to the invention.
  • the DNA sequences according to the invention can also be inserted into a vector or expression vector.
  • the present invention thus also includes vectors or expression vectors containing these DNA sequences.
  • vector refers to a plasmid (pUCl ⁇ , pBR322, pBlueScript, etc.), a virus or another suitable vehicle.
  • the DNA molecule according to the invention is functionally linked in an expression vector to regulatory elements which allow its expression in prokaryotic or eukaryotic host cells.
  • Such vectors contain, in addition to the regulatory elements, for example a promoter, typically an origin of replication and specific genes which the allow phenotypic selection of a transformed host cell.
  • the regulatory elements for expression in prokaryotes for example E.
  • coli include the lac, trp promoter or T7 promoter, and for expression in eukaryotes the AOX1 or GALl promoter in yeast and the CMV, SV40 , RVS-40 promoter, CMV or SV40 enhancer for expression in animal cells. Further examples of suitable promoters are the metallothionein I and the polyhedrin promoter.
  • Suitable expression vectors for E. coli include, for example, pGEMEX, pUC derivatives and pGEX-2T. Vectors suitable for expression in yeast include pYlOO and Ycpadl, pMSXND, pKCR, pEFBOS, cDM8 and pCEV4 for expression in mammalian cells. The expression vector pLNOH2 is particularly preferred.
  • DNA sequences according to the invention can also be inserted in connection with a DNA coding for another protein or peptide, so that the DNA sequences according to the invention can be expressed, for example, in the form of a fusion protein.
  • the present invention also relates to host cells containing the vectors described above.
  • host cells include bacteria (for example the E. coli strains HB101, DHI, X1776, JM101, JM109, BL21 and SG13009), yeast, preferably S. cerevisiae, insect cells, preferably sf9 cells, and animal cells, preferably mammalian cells.
  • Preferred mammalian cells are myeloma cells, the mouse myeloma cell line Ag8 K2 / k being particularly preferred.
  • Process for transforming these host cells, for phenotypic selection of Transformants and for expression of the DNA molecules according to the invention using the vectors described above are known in the art.
  • the present invention further relates to methods for the recombinant production of the single chain antibody according to the invention using the expression vectors according to the invention.
  • the method according to the invention comprises the cultivation of the host cells described above under conditions which allow expression of the protein (or fusion protein) (preferably stable expression), and the extraction of the protein from the culture or from the host cells.
  • the skilled worker is familiar with conditions for culturing transformed or transfected host cells.
  • Suitable purification methods e.g. preparative chromatography, affinity chromatography, immunoaffinity chromatography, e.g. using anti-human IgM-Sepharose, HPLC etc. are also generally known.
  • the present invention allows therapeutic measures to be carried out, ie can be used, for example, to prevent acute rejection reactions after organ transplants.
  • the present invention thus also relates to a medicament which contains the single chain antibodies, DNA sequences or expression vectors described above according to the invention.
  • This drug may also contain a pharmaceutically acceptable carrier.
  • Suitable carriers and the formulation of such medicaments are known to the person skilled in the art. Suitable carriers include, for example, phosphate-buffered saline solutions, water, emulsions, for example oil / water emulsions, wetting agents, sterile solutions, etc.
  • the medicaments can be administered orally or parenterally.
  • Methods for parenteral administration include topical, intra-arterial, intramuscular, subcutaneous, intramedullary, intrathecal, intraventricular, intravenous, intraperitoneal, or intranasal administration.
  • the appropriate dosage is determined by the attending doctor and depends depending on various factors, for example on the age, gender, weight of the patient, type of administration etc.
  • the DNA sequences described above are preferably inserted into a vector suitable for gene therapy, for example under the control of a tissue-specific promoter, and introduced into the cells.
  • the vector containing the DNA sequences described above is a virus, for example an adenovirus, vaccinia virus or adeno-associated virus.
  • Retroviruses are particularly preferred. Examples of suitable retroviruses are MoMuLV, HaMuSV, MuMTV, RSV or GaLV.
  • the DNA sequences according to the invention can also be transported to the target cells in the form of colloidal dispersions. These include, for example, liposomes or lipoplexes (Mannino et al., Biotechniques 6 (1988), 682).
  • the present invention relates to the use of the single chain antibody according to the invention, the DNA sequence encoding it or the expression vector containing this DNA sequence for immunosuppression, e.g. for the treatment of colorectal carcinoma, HIV infection and autoimmune diseases.
  • the use for immunosuppression for the prevention of acute rejection reactions after organ transplantation is preferred.
  • Figure 1 Cloning scheme of the scOKT3- ⁇ qM constructs A stable OKT3 scFv mutant, the ⁇ 3 joint region and the C ⁇ 3 / C ⁇ 4 domain of the C ⁇ wild type, the C ⁇ C575S and C ß VAEVD variant were amplified by PCR from various plasmids, generating restriction sites for cloning into the expression vector pLNOH2, which contains gene cassettes for V and C genes.
  • Figure 2 Cloning scheme of the scOKT3- ⁇ qM constructs A stable OKT3 scFv mutant, the ⁇ 3 joint region and the C ⁇ 3 / C ⁇ 4 domain of the C ⁇ wild type, the C ⁇ C575S and C ß VAEVD variant were amplified by PCR from various plasmids, generating restriction sites for cloning into the expression vector pLNOH2, which contains gene cassettes for V and C genes.
  • Figure 2 Cloning scheme of the
  • IgA wt ( ⁇ tp wt) and the three IgM variants ( ⁇ tp wt, C575S and VAEVD)
  • FIG. 3 Polymerization patterns of scOKT3- ⁇ lqM constructs Deglycosylated scOKT3- ⁇ lgM samples of cell lysates (cl) and supernatants (sn) were analyzed using a non-reducing composite 4% SDS acrylamide / agarose gel. After electroblotting on nitrocellulose membranes and incubation with an HRP-conjugated goat anti-hu anes IgM detection antibody, the blots were developed by means of chemiluminescence and an autoradiography film was exposed to them for 3 hours.
  • PBMC Human peripheral blood mononuclear cells
  • FIG. 6 Inhibition of T cell proliferation by OKT3 antibodies (scOKT3- ⁇ lgM antibodies and monoclonal OKT3 antibodies) HLA B7 + "responder” (r) cells were used with HLA B7 ⁇ "stimulator” (s) cells in a 2: 1 ratio incubated with different dilutions of OKT3 antibodies. After 72 hours, the cells were pulse-labeled with [ 3 H] thymidine and the incorporation of radioactivity was measured. In addition, “responder” and irradiated “stimulator” cells were incubated both alone and together without OKT3 antibodies. "Responder" cells treated with 5 ⁇ g / ml Concavalin A were used as a positive control.
  • OKT3 antibodies scOKT3- ⁇ lgM antibodies and monoclonal OKT3 antibodies
  • DNA constructs DNA coding for the region of a modified OKT3 scFv (Kipriyanov et al., Protein Eng. 10 (4) (1997), 445) was derived from the plasmid pHOG21-dmOKT3 (Kipriyanov, SM et al. , Prot. Eng.
  • the PCR reactions were carried out with the primers P 5 (C ⁇ 3, 4 - primer 5 '- CATCTCTTCCTCAGATCAAGACACAGCCATCCG-3') and P6 (C "3, 4-primer 5'-ACTCAGGATCCGTATCTTTTGAATGG-3 '; the BamHI site is underlined), a BamHI restriction site was introduced at the 3 'end of each gene for the C variants.
  • the ⁇ 3 and C ⁇ fragments were amplified using PCR splicing by overlapping extension reactions with the primers P3 and P6.
  • Each ⁇ 3 -tIgM construct was then cloned separately into the expression vector pLNOH2-CD3 scFv cut with BsiWI / BamHI (FIG. 1).
  • the resistant transf ectants were screened for the secretion of recombinant protein by ELISA using an anti-human IgM-HRP detection antibody. Positive transfectants were subcloned by the limit dilution method. The three best producing scOKT3- ⁇ lgM clones eder Variants were then expanded.
  • (E) Isolation of polymer fractions The polymer mixture of culture supernatants containing IgM mutants was separated into different fractions by gel filtration using Superdex-200.
  • the intensity of the fluorescence was determined by means of FACS analysis.
  • Human CD3 "JOK-1 cells human B cell lymphoma line
  • ScOKT3- ⁇ lgM polymer fractions were analyzed by FACS analysis using the same method.
  • PBMC Human peripheral blood mononuclear cells
  • the PBMC were resuspended in modified Iscov medium supplemented with an autologous serum and aliquoted (4 x 10 5 cells / well) in round bottom microtiter wells (96 well plates each).
  • the induction of T cell proliferation was analyzed with a saturation concentration of soluble and plastic-immobilized OKT3 antibodies (scOKT3- ⁇ lgM antibodies and monoclonal OKT3 antibodies).
  • the PBMC was incubated with the OKT3 antibodies for 72 hours.
  • the cells were then pulse-labeled with 1 ⁇ Ci [ 3 H] thymidine / well.
  • the cells were harvested 18 hours later and the incorporation of radioactivity was determined with a liquid scintillation ß counter. The ability of the polymer fractions to activate was also determined. Native IgM was used as a control. T cell activation was carried out in the presence of the co-stimulating substrates IL-2 (25 U / ml) and monoclonal anti-CD28 antibodies (10 ⁇ g / well).
  • PBMC peripheral blood mononuclear cells
  • OKT3 antibodies scOKT3- ⁇ lgM antibodies and monoclonal OKT3 antibodies
  • the PBMC of each group were harvested and stained with the following substances: (1) goat anti-mouse FITC (fluorescein isothiocyanate) (anti-Mig-FITC), (2) 30 min 10 ⁇ g / ml OKT3 and then anti-Mig-FITC or (3) OKT3-FITC.
  • Each FITC-conjugated antibody was used at a 1: 100 dilution.
  • the fluorescein-stained cells were counterstained with anti-human CD5-PE (dilution 1: 100) and analyzed by FACS.
  • the CD3 coverage and modulation calculations were performed using the following by Woodle et al. (Transplantation 52 (2) (1991), 354) carried out:
  • Group CD3 -bedeckt mAb-treated cells MC anti MIJ .. _ F - r ⁇ - control cells MC anti _ _ FTT MIJ:
  • CD3 unmodulated fraction mAb-treated cells MC 10 ⁇ g o- ⁇ . ' - mt i mg ⁇ ITC ⁇ control cells MC n ⁇ _.
  • Control cells MC 10 ⁇ g 0 ⁇ 3 / ant i- M i g - F i ⁇ c - control cells MC ar ⁇ ti _ MIg _ FITC (4)% modulated CD3 100% - (fraction CD3 unmodulated x 100)
  • MC represents the middle channel along the x-axis. Isolated polymer fractions were tested separately.
  • Example 2 To generate recombinant IgM miniantibodies of OKT3, a gene was constructed as in Example 1, which for a leader sequence derived from a VH gene of an anti-NIP hybridoma, a stable OKT3 scFv mutant, a human ⁇ 3- joint exon and Exons of the human IgM C ⁇ 3 and C ⁇ 4 Fc domains (Wt, C575S and VAEVD mutants) are encoded.
  • the gene construct has a size of approximately 3.0 kbp.
  • the correctness of the sequence was determined by means of sequence analysis after ligation into the expression vector pLNOH2, the restriction sites for the cassette cloning of any intact V region followed by one contains any C region.
  • An IgM miniantibody is shown schematically in FIG. 2.
  • the expression constructs were transfected into the Ag8 K2 / k myeloma cells. To detect antibody expression, the clones were screened after selection via ELISA. Stably transfected Ag8 K2 / k clones produced about 1-2 ⁇ g / ml scOKT3- ⁇ lgM with the exception of the wild-type clones, whose antibody secretion was only about a tenth (Table 1).
  • scOKT3- ⁇ lgM antibodies were isolated as described in Example 1. The antibody concentration was determined via the OD (OD at 280 nm corresponds to 0.7 mg / ml, according to the "DNA Gene Inspector” software). The mean values of 3 experiments are given and the standard deviations are given in brackets.
  • the culture supernatants and cell lysates of the selected Ag8 K2 / k clones were analyzed by immunoblots under reducing conditions with and without glycosides using an HRP (Merrettich Peroxidase) conjugated anti-human IgM antibody.
  • HRP Moleth Generation Peroxidase conjugated anti-human IgM antibody.
  • Deglycosilated scOKT3- ⁇ lgM constructs showed a band at the expected size of 60 kDa, while the mobility of the glycosylated products was about 67 in size kDa corresponded.
  • the manipulated IgM constructs appeared as a mixture of monomers and polymers (Figure 3).
  • scOKT3- ⁇ lgM-WT secreted polymers that included hexamers, pentamers and tetramers
  • the scOKT3- ⁇ lgM-VAEVD mutant secreted polymers that were mainly intermediates such as pentamers, tetramers and dimers.
  • the scOKT3- ⁇ lgM-C575S construct only secreted monomers into the supernatant.
  • the cell lysates showed a slightly different antibody polymerization pattern. No hexamers or more intermediate polymers were found in the scOKT3- ⁇ lgM-WT lysate.
  • the cell lysate of the scOKT3- ⁇ lgM-VAEVD mutant contained a higher amount of monomers compared to the supernatant. Both monomers and dimers were found in the scOKT3- ⁇ lgM-C575S lysate.
  • the supernatants were separated on a Superdex 200 gel filtration column and the concentrations of the protein fractions were analyzed using the OD. The results are shown in Table 2. The monomer concentration in the polymer fractions was below 5%. Pentamers and hexamers could not be separated and were eluted as one fraction.
  • T cell proliferation in response to OKT3 monoclonal antibodies and scOKT3- ⁇ lgM was tested on human PBMC.
  • assays were carried out with soluble and immobilized OKT3 antibodies (Table 3). Soluble scOKT3- ⁇ lgM antibodies induced minimal proliferation. In contrast to immobilized monoclonal OKT3 antibodies, plastic-immoblized scOKT3- ⁇ lgM antibodies showed only a low T cell activation. No difference was found after stimulation with monomers or higher polymers. This indicates that multivalent TCR / CD3 cross-linking did not induce proliferation.
  • Table 3 Induction of T cell activation by anti-CD3 antibodies (monoclonal OKT3 antibodies and scOKT3- ⁇ lgM-
  • PBMC cultured with OKT3 monoclonal antibodies and scOKT3- ⁇ lgM antibodies were examined for viability with the "trypan blue exclusion" test. The majority of the cells were found to be viable after each induction.
  • VAEVD monomers scOKT3- ⁇ lgM, 72 (+/- 17) 154 (+/- 65) 198 (+/- 49)
  • the immunosuppressive properties of the different Ak were examined in vitro by examining their capacity to suppress an immune response induced in an MLC.
  • the scOKT3- ⁇ lgM antibodies efficiently inhibited T cell proliferation at concentrations corresponding to those achieved with OKT3 mAbs ( Figure 6). This effect was slightly increased when using the scOKT3- ⁇ lgM pentamer fractions.

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Abstract

Beschrieben wird ein Einzelketten-Antikörper, der dadurch gekennzeichnet ist, dass er (a) eine an humanes CD3 spezifisch bindende variable Domäne (scFv) enthält, und (b) seine konstanten Domänen von einem humanen IgM-Molekül stammen und die Cν3-Domäne und Cν4-Domäne, jedoch nicht die Cν1-Domäne und Cν2-Domäne umfassen. In einer bevorzugten Ausführungsform enthält der erfindungsgemässe Antikörper eine humane IgG3-Gelenkregion zwischen der variablen und konstanten Domäne. Beschrieben werden ausserdem diesen Antikörper codierende DNA-Sequenzen und diese DNA-Sequenzen enthaltende Expressionsvektoren und schliesslich die vorstehenden Verbindungen enthaltende Arzeimittel, vorzugsweise zur Prävention akuter Abstossungsreaktionen nach Organtransplantation.

Description

Anti-CD3-Einzelketten-Antikörper mit humanen C„3- und C„4-
Domänen
Die vorliegende Erfindung betrifft einen Einzelketten- Antikörper, der dadurch gekennzeichnet ist, daß er (a) eine an humanes CD3 spezifisch bindende variable Domäne (scFv) enthält, und (b) die konstanten Domänen von einem humanen IgM- Molekül stammen und die Cμ3-Domäne und Ci4-Domäne, jedoch nicht die C^l-Domäne und Cμ2-Domäne umfassen. In einer bevorzugten Ausführungsform enthält der erfindungsgemäße Antikörper eine humane IgG3-Gelenkregion zwischen .der variablen und konstanten Domäne. Die vorliegende Erfindung betrifft außerdem diesen Antikörper codierende DNA-Sequenzen und diese DNA-Sequenzen enthaltende Expressionsvektoren und schließlich die vorstehenden Verbindungen enthaltende Arzneimittel, vorzugsweise zur Prävention akuter Abstoßungsreaktionen nach Organtransplantation.
Bei 0KT3 handelt es sich um einen monoclonalen murinen IgG2a- Antikörper gegen die ε-Kette des CD3 -Komplexes auf menschlichen Lymphozyten, der bereits seit einigen Jahren zur Prävention akuter A b s t o ß u g s r a t i o n e n nach Organtransplantationen in der Klinik erfolgreich eingesetzt wird. Vor allem bei Patienten mit einer Resistenz gegenüber konventionellen Immunsuppressiva (z.B. Corticosteroiden) stellt die Verwendung von OKT3 oft die einzige Möglichkeit zur Beherrschung akuter Abstoßungsreaktionen dar. In vivo induziert die Verabreichung von OKT3 eine große Abnahme zirkulierender CD3+-Zellen, da es TCR herabmoduliert. Während der ersten Behandlungs tage können allerdings ernste Nebenwirkungen auftreten. Dazu zählen beispielsweise Schüttelfrost und Fieber und die Patienten leiden gelegentlich an Brechreiz, Erbrechen, Durchfall, Atemnot, pfeifendem Atmen und Serummeningitis . Viele dieser Nebenwirkungen werden auf die Freisetzung von Zytokinen, insbesondere von T-Zellen, zurückgeführt. Bei längerer Verabreichung tritt außerdem eine starke Immunantwort gegen die konstante Domäne des murinen OKT3-Antikörpers ein.
Somit liegt der vorliegenden Erfindung das technische Problem zugrunde, Anti-CD3-Antikörper bereitzustellen, bei deren Verabreichung , z . B . zur Vermeidung von Gewebeabstoßungsreaktionen, die bisher beschriebenen Nebenwirkungen nicht auftreten.
Die Lösung dieses technischen Problems erfolgt durch die Bereitstellung der in den Patentansprüchen gekennzeichneten Ausführungsformen.
In der vorliegenden Erfindung konnte gezeigt werden, daß die vorstehend beschriebenen klinischen Nebenwirkungen dadurch vermieden werden können, daß ein chimärer OKT3 scFv IgM- Miniantikörper verwendet wird, der die codierenden Sequenzen für die variablen leichten Ketten (VL) und variablen schweren Ketten (VH) einer stabilen OKT3 scF-Mutante (Kipriyanov et al . , Protein Eng. 10 (4) (1997), 445) und anstelle der murinen IgG Fc-Domänen des OKT3-Antikörpers die Cμ3- und Cμ4 Domänen von drei verschiedenen schweren humanen IgM-Ketten, nämlich IgM wt, IgM C575S und IgM VAEVD (Sorensen et al . , J.Immunol. 156 (8) (1996), 2858) enthält. Diese drei Spezies unterscheiden sich strukturell lediglich hinsichtlich des Schwanzstücks (μtp) . Es konnte in der vorliegenden Erfindung gezeigt werden, daß diese Unterschiede zwar eine deutliche Auswirkung auf das Polymerisationsmuster und die Antikörper-Produktion haben, nicht jedoch die Bindung an CD3 und die immunsuppressiven Eigenschaften wesentlich beeinflussen. Die erfindungsgemäßen Einzelketten-Antikörper binden selektiv an T-Zellen und hemmen die Bindung von monoclonalen OKT3-Antikörpern. Funktionelle Studien zeigten außerdem, daß die erfindungsgemäßen Einzelketten-Antikörper keine T-Zellproliferation und auch keine Produktion von IL-2, TNF-α und INF-γ induzieren, jedoch hinsichtlich der CD3-Modulation und der Hemmung der Immunantwort mit monoclonalen 0KT3-Antikörpern vergleichbar sind. Darüber hinaus kann davon ausgegangen werden, daß die erfindungsgemäßen Einzelketten-Antikörper auf Grund ihrer geringeren Größe im Vergleich zu einem vollständigen IgM- Molekül eine verbesserte Gewebedurchdringung aufweisen, was beispielsweise dazu führen kann, daß auch bereits bei geringeren Dosierungen die erwünschten Wirkungen auftreten bzw. diese Wirkungen in stärkerem Maß auftreten. Darüber hinaus kann auch erwartet werden, daß es schneller zu einer "clearance" aus dem Blutkreislauf kommt. Das Fehlen der C„l- Domäne und Cμ2-Domänen trägt zu einer weiteren Reduzierung der Zahl der möglichen unspezifischen Reaktionen bei. Schließlich ist ein weiterer Vorteil darin zu sehen, daß Einzelketten- Antikörper leichter rekombinant herzustellen sind.
Somit betrifft die vorliegende Erfindung einen Einzelketten- Antikörper, dadurch gekennzeichnet, daß er (a) eine an humanes CD3 spezifisch bindende variable Domäne (scFv) enthält, und (b) die konstanten Domänen von einem humanen IgM-Molekül stammen und die C„3-Domäne und Cμ4-Domäne, jedoch nicht die C μ„l- und C μ„2-Domäne umfassen.
Verfahren zur Herstellung eines Antikörpers mit diesen Eigenschaften bzw. der einen solchen Antikörper codierenden DNA, deren Expression in geeigneten Wirten und deren Gewinnung und Reinigung sind dem Fachmann bekannt und z.B. auch beschrieben in WO 89/09622, WO 89/01783, EP-Al 0 239 400, WO 90/07861 und Colcher et al . , Cancer Research 49 (1989), 1732- 1745. Der Fachmann ist auch in der Lage die entsprechenden Immunglobulin-Ketten weiter zu modifizieren, z.B. mittels Aminosäure-Deletionen, -Insertionen, -Substitutionen und/oder Rekombinationen. Verfahren zur Einführung solcher Modifikationen in die die Immunglobulinkette codierende DNA- Sequenz sind dem Fachmann bekannt; siehe z.B. Sambrook, Molecular Cloning - A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1989), N.Y. Zum Erhalt einer den variablen Teil des Antikörpers darstellenden Domäne (scFv; verkürztes Fab- Frag ent, das aus der variablen Region einer schweren Kette und der variablen Region einer leichten Kette besteht, die durch ein künstliches Peptidstück verknüpft sind) , die an humanes CD3 spezifisch bindet , codierenden DNA kann der Fachmann von bereits publiz ierten Sequenzen ausgehen, bei spielswei s e der Sequenz des murinen monoc lonalen Antikörpers OKT3 gemäß den in dem nachstehenden Beispiel 1 beschriebenen Verfahren. Zum Erhalt einer die konstante Domäne des Antikörpers mit Deletion der C μ.,1- und C μ.,2 -Domäne codierenden DNA kann der Fachmann ebenfalls von bereits publizierten Sequenzen ausgehen, beispielsweise gemäß der in dem nachstehenden Beispiel 1 beschriebenen Verfahren. Dem Fachmann ist auch bekannt, was er bei der Verknüpfung dieser diese Domänen codierenden DNAs beachten muß, und welche zusätzlichen Elemente die den Einzelketten-Antikörper codierende DNA enthalten muß, beispielsweise das "Schwanzstück" (μtp) , die "leader"Sequenz der VH-Kette und Gelenkregion. Es wird z.B. auf Olafsen, T. et al . , Immunotech 4 (1998), 141-153 und Norderhang, L. et al . , J. Immuno1. Method (1997) , 77-87 verwiesen.
In einer bevorzugten Ausführungsform ist die an humanes CD3 spezifisch bindende variable Domäne das scFv des murinen monoclonalen Antikörpers OKT3.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform weist der erfindungsgemäße Einzelketten-Antikörper zwischen der variablen Domäne und den konstanten Domänen eine humane IgG3- Gelenkregion auf. Dadurch wird eine zusätzliche Stabilität und Beweglichkeit zwischen Antigenbindungungsstelle und konstanter Domäne erreicht. Die Einführung dieser Gelenkregion kann durch dem Fachmann bekannte Verfahren durchgeführt werden, z.B. wie in dem nachstehenden Beispiel 1 beschrieben und in dem Schema der Figur 1 dargestellt.
Eine noch bevorzugtere Ausführungsform des erfindungsgemäßen Einzelketten-Antikörpers enthält eine Cμ3- und eine Cμ4-Domäne, die von der C575- oder VAEVD-Mutante stammen. Diese Mutanten unterscheiden sich im Vergleich zum Wildtyp hinsichtlich des Schwanzstücks (μtp) . Es konnte bereits früher gezeigt werden, daß die Mutation des Cysteins an Position 575 in dem IgM- Schwanzstück die Inkorporation der J-Kette verhindert. In der Mutante IgM VAEVD konnte ebenfalls keine J-Kette nachgewiesen werden. Deshalb kann davon ausgegangen werden, daß die scOKT3- γΔlgM-Konstrukte mit den Mutanten C575 bzw. VAEVD noch weniger immunogen sind als das Konstrukt scOKT3-γΔlgM-wt .
In einer noch stärker bevorzugten Ausführungsform liegt der erfindungsgemäße Einzelketten-Antikörper in polymerer Form vor, beispielsweise als Di er, Tetramer, Pentamer, Hexamer oder einem Gemisch daraus. Diese Formen zeichnen sich gegenüber den monomeren durch eine höhere Avidität aus, wobei die pentameren Formen darüber hinaus zu einer stärkeren Hemmung der T-Zellproliferation führen. Die Gewinnung der olymeren Formen des Antikörpers kann durch allgemein bekannte Verfahren erfolgen, z.B. mittels der in dem nachstehenden Beispiel 1 beschriebenen Fraktionierung des Kulturüberstands über Gelfiltration, beispielsweise mit Superdex-200.
Eine weitere bevorzugte Ausführungsform der vorliegenden Erfindung betrifft den erfindungsgemäßen Einzelketten- Antikörper codierende DNA-Sequenzen. Bezüglich der Herstellung dieser DNA-Sequenzen wird auf die vorstehenden in Zusammenhang mit dem Einzelketten-Antikörper selbst offenbarten Ausführungen verwiesen.
Die erfindungsgemäßen DNA-Sequenzen können auch in einen Vektor bzw. Expressionsvektor inseriert werden. Somit umfaßt die vorliegende Erfindung auch diese DNA-Sequenzen enthaltende Vektoren bzw. Expressionsvektoren. Die Bezeichnung "Vektor" bezieht sich auf ein Plasmid (pUClδ, pBR322, pBlueScript etc . ) , auf ein Virus oder ein anderes geeignetes Vehikel . In einer bevorzugten Ausführungsform ist das erfindungsgemäße DNA-Molekül in einem Expressionsvektor mit regulatorischen Elementen funktioneil verknüpft, die dessen Expression in prokaryotischen oder eukaryotischen Wirtszellen erlauben. Solche Vektoren enthalten neben den regulatorischen Elementen, beispielsweise einem Promotor, typischerweise einen Replikationsursprung und spezifische Gene, welche die phänotypische Selektion einer transformierten Wirtszelle erlauben. Zu den regulatorischen Elementen für die Expression in Prokaryoten, beispielsweise E.coli, zählen der lac-, trp- Promotor oder T7-Promotor, und für die Expression in Eukaryoten der AOX1- oder GALl-Promotor in Hefe und der CMV- ,SV40-,RVS-40-Promotor, CMV- oder SV40-Enhancer für die Expression in tierischen Zellen. Weitere Beispiele für geeignete Promotoren sind der Metallothionein I- und der Polyhedrin-Promotor. Zu geeigneten Expressionsvektoren für E.coli zählen beispielsweise pGEMEX, pUC-Derivate und pGEX-2T. Zu den für die Expression in Hefe geeigneten Vektoren zählen pYlOO und Ycpadl, für die Expression in Säugerzellen pMSXND, pKCR, pEFBOS, cDM8 und pCEV4. Besonders bevorzugt ist der Expressionsvektor pLNOH2.
Allgemeine, auf dem Fachgebiet bekannte Verfahren können zur Konstruktion von Expres s ionsvektoren , welche die e r f i ndung s g emäß en DNA- S e qu en z en und geeignete Kontrollsequenzen enthalten, verwendet werden. Zu diesen Verfahren zählen beispielsweise in vitro- Rekombinationstechniken, synthetische Verfahren, sowie in vivo-Rekombinationsverfahren, wie sie beispielsweise in Sambrook et al. , supra, beschrieben sind. Die erfindungsgemäßen DNA-Sequenzen können auch in Verbindung mit einer für ein anderes Protein bzw. Peptid codierenden DNA inseriert werden, so daß die erfindungsgemäßen DNA-Sequenzen beispielsweise in Form eines Fusionsproteins exprimiert werden können.
Die vorliegende Erfindung betrifft auch die vorstehend beschriebenen Vektoren enthaltende Wirtszellen. Zu diesen Wirtszellen zählen Bakterien (beispielsweise die E.coli-Stämme HB101, DHl, X1776, JM101, JM109, BL21 und SG13009), Hefe, vorzugsweise S. cerevisiae, Insektenzellen, vorzugsweise sf9- Zellen, und Tierzellen, vorzugsweise Säugerzellen. Bevorzugte Säugerzellen sind Myelomzellen, wobei die Mausmyelom-Zellinie Ag8 K2/k besonders bevorzugt ist. Verfahren zur Transformation dieser Wirtszellen, zur phänotypischen Selektion von Transformanten und zur Expression der erfindungsgemäßen DNA- Moleküle unter Verwendung der vorstehend beschriebenen Vektoren sind auf dem Fachgebiet bekannt.
Die vorliegende Erfindung betrifft ferner Verfahren zur rekombinanten Herstellung des erfindungsgemäßen Einzelketten- Antikörpers unter Verwendung der erfindungsgemäßen Expressionsvektoren. Das erfindungsgemäße Verfahren umfaßt die Kultivierung der vorstehend beschriebenen Wirtszellen unter Bedingungen, welche die Expression des Proteins (bzw. Fusionsproteins) erlauben (vorzugsweise stabile Expression) , und die Gewinnung des Proteins aus der Kultur oder aus den Wirtszellen. Dem Fachmann sind Bedingungen bekannt, transformierte bzw. transfizierte Wirtszellen zu kultivieren. Geeignete Rei igungsverfahren (z.B. präparative Chromatographie , Affinitätschromatographie , Immunaffinitätschromatographie, z.B. mittels anti-humanes IgM- Sepharose, HPLC etc.) sind ebenfalls allgemein bekannt.
Die vorliegende Erfindung erlaubt die Durchführung therapeutischer Maßnahmen, d.h. kann z.B. zur Prävention akuter Abstoßungsreaktionen nach Organtransplantationen verwendet werden. Somit betrifft die vorliegende Erfindung auch ein Arzneimittel, das die erfindungsgemäßen vorstehend beschriebenen Einzelketten-Antikörper, DNA-Sequenzen oder Expressionsvektoren enthält. Dieses Arzneimittel enthält gegebenenfalls zusätzlich einen pharmazeutisch verträglichen Träger. Geeignete Träger und die Formulierung derartiger Arzneimittel sind dem Fachmann bekannt. Zu geeigneten Trägern zählen beispielsweise Phosphat-gepufferte Kochsalzlösungen, Wasser, Emulsionen, beispielsweise Öl/Wasser-Emulsionen, Netzmittel, sterile Lösungen etc. Die Verabreichung der Arzneimittel kann oral oder parenteral erfolgen. Zu den Verfahren für die parenterale Verabreichung gehören die topische, intra-arterielle , intramuskuläre, subkutane, intramedulläre, intrathekale, intraventrikuläre, intravenöse, intraperitoneale oder intranasale Verabreichung. Die geeignete Dosierung wird von dem behandelnden Arzt bestimmt und hängt von verschiedenen Faktoren ab, z.B. von dem Alter, dem Geschlecht, dem Gewicht des Patienten, der Art der Verabreichung etc..
Vorzugsweise werden die vorstehend beschriebenen DNA-Sequenzen in einen für die Gentherapie geeigneten Vektor inseriert, beispielsweise unter Kontrolle eines gewebespezifischen Promotors, und in die Zellen eingeschleust. In einer bevorzugten Ausführungsform ist der die vorstehend beschriebenen DNA-Sequenzen enthaltende Vektor ein Virus, beispielsweise ein Adenovirus, Vaccinia-Virus oder Adeno- assoziiertes Virus. Besonders bevorzugt sind Retroviren. Beispiele für geeignete Retroviren sind MoMuLV, HaMuSV, MuMTV, RSV oder GaLV. Für Zwecke der Gentherapie können die er indungsgemäßen DNA-Sequenzen auch in Form von kolloidalen Dispersionen zu den Zielzellen transportiert werden. Dazu zählen beispielsweise Liposomen oder Lipoplexe (Mannino et al., Biotechniques 6 (1988), 682).
Schließlich betrifft die vorliegende Erfindung die Verwendung des erfindungsgemäßen Einzelketten-Antikörpers, der diesen codierenden DNA-Sequenz bzw. der diese DNA-Sequenz enthaltenden Expressionsvektors zur Immunsuppression, z.B. zur Behandlung von kolorektalem Carcinom, einer HIV-Infektion und von Autoimmun-Erkrankungen. Bevorzugt ist die Verwendung zur Immunsuppression zur Prävention akuter Abstoßungsreaktionen nach Organtransplantation.
Die Figuren zeigen:
Figur 1: ClonierungsSchema der scOKT3-γΔ qM-Konstrukte Eine stabile OKT3 scFv-Mutante, die γ3-Gelenkregion und die Cμ3/Cμ4-Domäne von der Cμ Wildtyp, der Cμ C575S- und Cß VAEVD- Variante wurden mittels PCR von verschiedenen Plasmiden amplifiziert, wobei Restriktionsschnittstellen für die Clonierung in den Expressionsvektor pLNOH2 erzeugt wurden, der Genkassetten für V- und C-Gene enthält. Figur 2 :
(a) Schema eines OKT3 scFv IgM Miniantikörper-Monomers scOKT3-γΔlgM-Konstrukte lagern sich über Disulfibrücken zu bivalenten Strukturen zusammen, die einem typischen monomeren IgM-Molekül gleichen.
(b) Aminosäuresecruenzen verschiedener Schwanzstücke
IgA wt (αtp wt) und die drei IgM-Varianten (μtp wt, C575S und VAEVD)
Figur 3: Polvmerisationsmuster von scOKT3-γΔlqM-Konstrukten Deglycosylierte scOKT3-γΔlgM-Proben von Zellysaten (cl) und Überständen (sn) wurden mittels eines nicht-reduzierenden zusammengesetzten 4% SDS Acrylamid/Agarose-Gels analysiert. Nach Elektroblotten auf Nitrozellulose-Membranen und Inkubation mit einem HRP-konjugierten Ziege-anti-hu anes-IgM- Nachweisantikörper wurden die Blots mittels Chemilumineszenz entwickelt und ein Autoradiographiefilm wurde damit 3 Stunden belichtet.
Figur 4: OKT3 "displacement"-Assay
Humane CD3+ Jurkat-Zellen wurden mit verschiedenen Verdünnungen von jedem OKT3 -Antikörper ( scOKT3-γΔlgM-Antikörper und monoclonale OKT3-Antikörper) eine Stunde inkubiert. Eine absättigende Menge von 10 μg/ml OKT3-PE (OKT3-Phycoerythrin) wurde zugegeben. Nach einer weiteren Stunde wurden die Zellen gewaschen und gebundener OKT3-PE wurde über FACS-Analyse quantifiziert. Werte sind als Prozent Hemmung der maximalen Fluoreszenz-Intensität ausgedrückt, was durch Zugabe von OKT3- PE in Abwesenheit blockierender Antikörper bestimmt wurde. Durchschnittswerte von zwei Experimenten wurden erstellt und die Standardabweichung wurde quantifiziert.
Figur 5: CD3-Modulation und -Bedeckung
Humane mononucleäre Zellen des peripheren Bluts (PBMC) wurden für zwölf Stunden mit verschiedenen Verdünnungen von OKT3- Antikörpern (scOKT3-γΔlgM-Antikörper und monoclonale OKT3- Antikörper) inkubiert. Die CD3-Modulation und -Bedeckung wurde mittels FACS analysiert. Die Daten stellen den Prozentsatz an Oberflächen-CD3 auf Zellen dar, die mit OKT3-Antikörpern behandelt worden waren, exprimiert als eine Fraktion des von Kontrollzellen exprimierten Oberflächen-CD3.
Figur 6: Hemmung der T-Zellproliferation durch OKT3-Antikörper (scOKT3-γΔlgM-Antikörper und monoclonale OKT3-Antikörper) HLA B7+ " responder "( r ) -Zellen wurden mit HLA B7~ "stimulator" (s) -Zellen bei einem Verhältnis von 2:1 mit verschiedenen Verdünnungen von OKT3-Antikörpern inkubiert. Nach 72 Stunden wurden die Zellen mit [3H]Thymidin pulsmarkiert und der Einbau von Radioaktivität wurde gemessen. Außerdem wurden "responder"- und bestrahlte "stimulator"-Zellen sowohl allein als auch zusammen ohne OKT3-Antikörper inkubiert. Als positive Kontrolle wurden mit 5 μg/ml Concavalin A behandelte "responder"-Zellen verwendet.
Die nachstehenden Beispiele erläutern die Erfindung.
Beispiel 1: Allgemeine Verfahren
(A) DNA-Kons trukte : Für den Bereich eines modifizierten OKT3 scFv codierende DNA (Kipriyanov et al . , Protein Eng. 10 (4) (1997), 445) wurde aus dem Plasmid pHOG21-dmOKT3 (Kipriyanov, S.M. et al., Prot. Eng. 10(4), (1997), 445-453) unter Verwendung der PCR-Primer Pl (scFv-Primer 5 ' - GGTGTGCATTCCCAGGTGCAGCTGCAGCAGTC-3 ' ; die BsmI-Stelle ist un t e r s t r i c h en ) und P 2 ( s c Fv - P r i m er 5 ' - GACGTACGACTCACCCCGGTTTATTTCCAACTTTGTC-3 ' ; die BsiWI-Stelle ist unterstrichen) isoliert, mit denen Restriktionsstellen BsiWI und Bsml eingeführt wurden. Dieses Fragment wurde dann in den mit BsiWI/Bsml geschnittenen Vektor pLN0H2 (Norderhaug et al . , J.Immunol .Methods 204 (1) (1997) , 77) in einer VH-VL- Orientierung cloniert. Zur Hinzufügung der γ3-Cμ3Cμ4 -Region wurde das in dem Plasmid pUC19 Cγ3 (Olafsen, T. et al . , Cancer Immunol. Immuno ther . 48, (1999) , 411-418) enthaltene IgG3 Gelenk-Wildtypgen zuerst mit den PCR-Primern P3 ("hinge"- Primer 5 ' -GGCCAGCGTACGGAGGGAGGGTGTCT-3 ' ; die BsWI-Stelle ist unters tri chen) und P4 ( "hinge " - Primer 5 ' - GTGTTCTTGATCTGAGGAAGAGATGGAGGCAGATG-3 ' ) amplif i ziert . Die zur Clonierung erforderliche Restriktionsstelle BsWI-Stelle wurde durch ortsgerichtete Mutagenese mit dem Primer P3 erzeugt. Danach wurden die aus pUCl9 Cμ wt, pUCl9 Cμ VAEVD und pSV2 Cμ C575S (humane IgM C„3- und C„4-Domänen vom WT und den VAEVD- und C575S-Mutationen) (Störensen, V. et al . , J. Immuno 1. 156, (1996), 2853-2865) bestehenden Matrizen zur Amplif ikation der Cμ3- und Cμ4-Regionen verwendet. Die PCR-Reaktionen wurden mit d e n P r i m e r n P 5 ( C μ 3 , 4 - P r i m e r 5 ' - CATCTCTTCCTCAGATCAAGACACAGCCATCCG-3 ' ) und P6 (C„3 , 4-Primer 5'- ACTCAGGATCCGTATCTTTTGAATGG-3 ' ; die BamHI-Stelle ist unterstrichen) durchgeführt, wobei eine BamHI- Restriktionsstelle am 3 ' -Ende jedes Gens für die C -Varianten eingeführt wurde. Im folgenden Schritt wurden mit einem PCR- Splicing durch überlappende Verlängerungsreaktionen mit den Primern P3 und P6 die γ3- und Cμ-Fragmente amplif iziert . Jedes γ3-tIgM-Konstrukt wurde dann getrennt in den mit BsiWI/BamHI geschnittenen Expressionsvektor pLNOH2- CD3 scFv cloniert (Figur 1) . Die drei erhaltenen Genkons trukte scOKT3-γΔlgM (0KT3 scFv-γ3 "hinge" -verkürz tes IgM) wurden durch Sequenzierung verifiziert.
(B) Zellkulturen und Transf ektionen: Alle Zellinien wurden bei 37°C bei einer feuchtgehaltenen 5% C02 enthaltenden Atmosphäre kultiviert. Die Zellen wurden in RPMI 1640 gehalten, das mit 10% fötalem Kälberserum (FCS) , 100 E/ml Penicillin, 100 μg/ml Strepto ycin und 2 mM L-Glutamin supplementiert war. Die drei sc0KT3-γΔlgM-Konstrukte wurden getrennt in die Maus- Myelomzellen Ag8 K2/k (Deutsches Krebs forschungs Zentrum, Heidelberg, Deutschland) durch Elektroporation eingeführt. Nach 72 Stunden wurde Selektivmedium bis zu einer Endkonzentration von 500 μg/ml G418 zugegeben. Drei Wochen später wurden die resistenten Transf ektanten mittels ELISA unter Verwendung eines anti-humanes IgM-HRP- Nachweisantikörpers hinsichtlich der Sezernierung von rekombinantem Protein gescreent. Positive Transf ektanten wurden durch das Grenzverdünnungsverf ahren subcloniert . Die drei am besten produzierenden scOKT3-γΔlgM-Clone eder Variante wurden dann expandiert.
(C) Reinigung von scOKT3-γΔlgM-Proteinen: Die exprimierten Proteine wurden mittels anti-humanes-IgM-Sepharose gereinigt. Die Säule wurde mit Auftragspuffer (50 mM Na-Phosphat, pH-Wert 7,0) gewaschen bis die OD280nm des Durchflusses unter 0,01 lag. scOKT3-γΔlgM-Antikörper wurde mit 0,1 M Essigsäure eluiert. Die gesammelten Fraktionen wurden sofort mit 1,0 M Tris-HCl, pH-Wert 9,0, neutralisiert und gegen PBS dialysiert.
(D) Zellyse, Deqlvcosylierung und Western-Blot-Analysen: Für die Western-Blots wurden 1 x 106 Zellen von jedem ausgewählten Clon verwendet. Die Überstände wurden nach 24 Stunden gesammelt und die Zellen zweimal mit eiskaltem PBS gewaschen. Diese wurden dann in 50 mM Tris-HCl, pH-Wert 7,5, 150 mM NaCl, 1% NP-40 (supplementiert mit einem Protease-Inhibitor bis zu einer Endkonzentration von 4 mM) 30 min bei 4°C inkubiert. Die rekombinanten Antikörper der Zellysate und Überstände wurden wie vorstehend beschrieben gereinigt und mit PNGase F unter nichtreduzierenden Bedingungen 4 Stunden lang deglycosyliert . Proben der Zellysate und Überstände wurden mittels einer 10% SDS-PAGE unter reduzierenden Bedingungen analysiert. Zur Bestimmung der Polymerbildung wurden die Proben auch unter nichtreduzierenden Bedingungen auf einem 4% SDS- Acrylamid/Agarose-Mischgel wie kürzlich beschrieben (Sorensen et al., J.Immunol. 156 (8) (1996), 2858) aufgetrennt. Beide Gele wurden auf Nitrozellulose-Membranen elektrogeblottet . Die Membranen wurden mit 2% Milchpulver aus entrahmter Milch/PBS blockiert und mit HRP-konjugiertem Ziegen-anti-humanes IgM inkubiert (Verdünnung 1:2000) . Nach gründlichem Waschen wurden die Blots mittels Chemilumineszenz entwickelt und eine Exposition eines Autoradiographie-Films durchgeführt.
(E) Isolierung von Polvmerfraktionen: Das Polymergemisch von IgM-Mutanten enthaltenden Kulturüberständen wurde mittels Gelfiltration unter Verwendung von Superdex-200 in verschiedene Fraktionen aufgetrennt. (F) "Dislacement"-Assay: Pro Probe wurden 1 x 106 CD3+ Jurkat Zellen (humane T-Zell-Lymphom-Linie) in PBS gewaschen und mit unterschiedlichen Konzentrationen der jeweiligen scOKT3-γΔlgM- Antikörper und monoclonalen OKT3-Antikörpern eine Stunde bei 4°C inkubiert. Nach dem Waschen wurde eine sättigende Menge (10 μg/τal ) an OKT3-PE zugegeben und die Zellen wurden 1 Stunde bei 4°C inkubiert und dann gewaschen. Die Intensität der Fluoreszenz wurde mittels FACS-Analyse bestimmt. Humane CD3" JOK-1 Zellen (humane B-Zell-Lymphom-Linie) wurden als negative Kontrolle verwendet. scOKT3-γΔlgM-Polymerfraktionen wurden mittels einer FACS-Analyse unter Verwendung des gleichen Verfahrens analysiert.
(G) Proliferationsassay: Humane mononucleäre Zellen des peripheren Bluts ( PBMC ) wurden mittels Dichtegradientenzentrifugation über einen "Ficoll-Hypaque"- Gradienten (Sigma) aus dem Blut eines gesunden Spenders (26 Jahre, weiblich) isoliert. Die PBMC wurden in modifiziertem Iscov-Medium resuspendiert, das mit einem autologen Serum Supplementiert war, und in Mikrotiterplatten-Vertiefungen mit rundem Boden (Platten mit jeweils 96 Vertiefungen) aliquotiert (4 x 105 Zellen/Vertiefung) . Die Induktion der T- Zellproliferation wurde mit einer Sättigungskonzentration von löslichen und Kunststoff-immobilisierten OKT3-Antikörpern (scOKT3-γΔlgM-Antikörper und monoclonale OKT3 -Antikörper) analysiert. Die PBMC wurden zusammen mit den OKT3-Antikörpern 72 Stunden inkubiert. Anschließend wurden die Zellen mit 1 μCi [3H]Thymidin/Vertiefung pulsmarkiert. 18 Stunden später wurden die Zellen geerntet und der Einbau der Radioaktivität wurde mit einem Flüssig-Scintillations-ß-Zähler bestimmt. Die Fähigkeit der Polymerfraktionen zur Aktivierung wurde ebenfalls bestimmt. Natives IgM wurde als Kontrolle verwendet. Die T-Zell-Aktivierung wurde in Gegenwart der co- stimulierenden Substrate IL-2 (25 E/ml) und monoclonalen anti- CD28-Antikörpern (10 μg/Vertiefung) durchgeführt.
.(H) Bestimmung von IL-2 , TNF- und INF-γ: PBMC wurden ausplattiert und die Antikörper wurden wie für die T- Zellproliferation beschrieben immobilisiert. Die Induktion der Produktion von IL-2 , TNF-α und INF-γ wurde bei einer Sättigungskonzentration der 0KT3-Antikörper (scOKT3-γΔlgM- Antikörper und monoclonale OKT3 -Antikörper ) bestimmt. Überstände wurden nach 24 Stunden (für die Bestimmung von IL- 2), 36 Stunden (für TNF-α) und 72 Stunden (für INF-γ) gesammelt. Zur Quantifizierung der Konzentrationen der in das Medium sezernierten Zytokine wurden im Handel erhältliche ELISA-Kits verwendet. Als Kontrolle wurde natives IgM verwendet .
(I) Quantifizierung der CD3-Bedeckung und -Modulation: PBMC wurden bei einer Konzentration von 1 x 106 Zellen/ml 12 Stunden in Platten mit 24 Vertiefungen bei verschiedenen Konzentrationen der OKT3-Antikörper (scOKT3-γΔlgM-Antikörper und monoclonale OKT3-Antikörper) inkubiert. Die PBMC jeder Gruppe wurden geerntet und mit folgenden Substanzen gefärbt: (1) Ziegen-anti-Maus FITC (Fluoresceinisothiocyanat) (anti- Mig-FITC) , (2) 30 min 10 μg/ml OKT3 und danach anti-Mig-FITC oder (3) OKT3-FITC. Jeder FITC-konjugierte Antikörper wurde bei einer Verdünnung von 1:100 verwendet. Zur Identifizierung der T-Lymphozyten wurden die Fluorescein-gefärbten Zellen mit anti-humanes CD5-PE (Verdünnung 1:100) gegengefärbt und mittels FACS analysiert. Die Berechnungen für die CD3- Bedeckung und Modulation wurden unter Verwendung der folgenden von Woodle et al . (Transplantation 52 (2) (1991), 354) beschriebenen Formel durchgeführt:
(1) Fraktion CD3 -bedeckt = mAk-behandelte Zellen MCanti..MIJ_F- - Kontrollzellen MCanti_MIJ_FTT,:
Kontrol lzellen MC10 μg 0KT3 /anti.MIg_FITC - Kontrollzellen MCanti_MIg_FITC
(2) % CD3-Bedeckung = 100% x Fraktion CD3-Bedeckung
(3) CD3unmoduliert-Fraktion = mAk-behandelte Zellen MC10 μg o-^.'-mti mg ΓITC ~ Kontrollzellen MCn^_.
Mlq-FITC
Korrtrollzellen MC10 μg 0κτ3/anti-Mig-Fiτc - Kontrollzellen MCarιti_MIg_FITC (4) % moduliertes CD3 = 100% - (Fraktion CD3unmoduliert x 100)
MC stellt den mittleren Kanal entlang der x-Achse dar. Isolierte Polymer-Fraktionen wurden getrennt getestet.
(J) Gemischte Lymphozyten-Kultur (MLC) : Zur Bestimmung des immunosuppressiven Potentials der scOKT3-γΔlgM-Antikörper und monoclonalen OKT3-Antikörper hinsichtlich der Hemmung der T- Zellproliferation wurden PBMC von zwei gesunden Spendern
("responder": 30 Jahre, männlich, HLA B7+; "stimulator" : 31 Jahre, männlich, HLA B7") isoliert und wie für den Proliferationsassay beschrieben gehalten. Die "stimulator"- Zellen wurden mit 30 Gy γ-bestrahlt und in Mikrotiter-platten mit 96 Vertiefungen bei einer Dichte von 105 Zellen/Vertiefung ausplattiert. Zu jeder Vertiefung wurden dann 2 x 105 "responder"-Zellen gegeben. Nach 72 Stunden Inkubation mit unterschiedlichen Verdünnungen von OKT3-Antikörpern wurden die Zellen mit 3 μCi [3H] -Thymidin/Vertiefung pulsmarkiert. Die Ernte der Zellen erfolgte 12 Stunden später und der Einbau der Radioaktivität wurde in einem Flüssig-Scintillations-ß-Zähler bestimmt. Zur Bestimmung der Hintergrundproliferation wurden bestrahlte "stimulator"-Zellen und "responder"-Zellen getrennt analysiert. Als positive Kontrolle wurde die T- Zellproliferation von "responder"-Zellen gemessen, die mit Concavalin A bei einer Endkonzentration von 5 μg/ml behandelt worden waren.
Beispiel 2: Expression und Reinigung von scOKT3-γΔIgM
Zur Erzeugung rekombinanter IgM-Miniantikörper von OKT3 wurde ein Gen wie in Beispiel 1 konstruiert, das für eine von einem VH-Gen eines anti-NIP-Hybridom stammende Leadersequenz , eine stabile OKT3 scFv-Mutante, ein humanes γ3-Gelenk-Exon und Exons der humanen IgM Cμ3- und Cμ4 Fc-Domänen (Wt, C575S- und VAEVD- Mutanten) codiert. Das Genkonstrukt besitzt eine Größe von etwa 3,0 kbp . Die Korrektheit der Sequenz wurde mittels Sequenzanalyse nach Ligation in den Expressionsvektor pLNOH2 bestimmt, der Restriktionsstellen für die Kassettenclonierung einer beliebigen intakten V-Region gefolgt von einer beliebigen C-Region enthält. Ein IgM-Miniantikörper ist schematisch in Figur 2 dargestellt.
Die Expressionskonstrukte wurden in die Myelomzellen Ag8 K2/k transfiziert . Zum Nachweis einer Antikörperexpression wurden die Clone nach Selektion über ELISA gescreent. Stabil transfizierte Ag8 K2/k-Clone produzierten etwa 1-2 μg/ml scOKT3-γΔlgM mit Ausnahme der Wildtyp-Clone, deren Antikörper- Sezernierung etwa nur ein Zehntel betrug (Tabelle 1) .
Tabelle 1: Antikörperproduktion stabiler Ag8 K2/k-
Transfektanten
Antikörper Antikörperproduktion scOKT3-γΔlgM, WT 0,1 (+/- 0,08) scOKT3-γΔlgM, C575S 2,3 (+/- 0,8) scOKT3-γΔlgM, VAEVD 1,1 (+/- 0,6)
Die Zellkulturüberstände wurden nach 24 Stunden gesammelt. scOKT3-γΔlgM-Antikörper wurden wie in Beispiel 1 beschrieben isoliert. Die Antikörperkonzentration wurde über die OD bestimmt (OD bei 280 nm entspricht 0,7 mg/ml, gemäß der "DNA Gene Inspector" Software) . Die Mittelwerte von 3 Experimenten sind angegeben und die Standardabweichungen in Klammern angeben.
Eine Untersuchung der Zellysate zeigte, daß die geringe Produktion von scOKT3-γΔlgM-WT-Antikörpern nicht auf einer höheren intrazellulären Zurückhaltung des nicht-degradierten Proteins beruhte. Die scOKT3-γΔlgM-C575S-Mutante sezernierte etwa doppelt soviel Antikörper im Vergleich zu der scOKT3- γΔlgM-VAEVD-Mutante . Die drei am meisten produzierenden Clone jeder IgM-Variante wurden expandiert.
Die Kulturüberstände und Zellysate der ausgewählten Ag8 K2/k- Clone wurden durch I munblots unter reduzierenden Bedingungen mit und ohne Glycoside unter Verwendung eines HRP (Merrettich- Peroxidase) -konjugierten anti-humanes-IgM-Antikörpers analysiert. Deglycosilierte scOKT3-γΔlgM-Konstrukte zeigten eine Bande bei der erwarteten Größe von 60 kDa, während die Mobilität der glycosilierten Produkte einer Größe von etwa 67 kDa entsprach. Unter nicht-reduzierenden Bedingungen traten die manipulierten IgM-Konstrukte als ein Gemisch aus Monomeren und Polymeren auf (Figur 3). scOKT3-γΔlgM-WT sezernierte Polymere, die Hexamere, Pentamere und Tetramere umfaßten, während die scOKT3-γΔlgM-VAEVD-Mutante Polymere sezernierte, bei denen es sich hauptsächlich um Intermediate wie Pentamere, Tetramere und Dimere handelte. Im Gegensatz dazu sezernierte das scOKT3-γΔlgM-C575S-Konstrukt nur Monomere in den Überstand. Die Zellysate zeigten ein etwas anderes Antikörper- Polymerisationsmuster. Im scOKT3-γΔlgM-WT-Lysat konnten keine Hexamere und mehr Intermediat-Polymere gefunden werden. Das Zellysat der scOKT3-γΔlgM-VAEVD-Mutante enthielt eine höhere Menge an Monomeren im Vergleich zum Überstand. Im scOKT3- γΔlgM-C575S-Lysat waren sowohl Monomere als auch Dimere anzutreffen. Um die relativen Mengen an sezernierten polymeren Formen von scOKT3-γΔlgM-Antikörpern zu messen, wurden die Überstände auf einer Superdex-200-Gelfiltrationssäule aufgetrennt und die Konzentrationen der Proteinfraktionen anhand der OD analysiert. Die Ergebnisse sind in Tabelle 2 dargestellt. Die Mon ome r - Kon t ami n a t i on in den Polymerfraktionen lag unter 5%. Pentamere und Hexamere konnten nicht voneinander getrennt werden und wurden als eine Fraktion eluiert .
Tabelle 2: Polymerisationsverhältnis bei den scOKT3-γΔIgM-
Konstrukten scOKT3-γΔlgM, scOKT3-γΔlgM, scOKT3-γΔlgM, WT C575S VAEVD
24,6% (+/- 95,5% (+/- 27,4% (+/- Dimere, 240
3,4%) 2,6%) 2,8%) kDa
6,1% (+/- 0,7%) n.b. 18,2% (+/- Trimere, 360
2,5%) kDa
2,7% (+/- 0,8%) n.b. 5,4% (+/- 1,2%) Tetramere, 480 kDa
16,4% (+/- n.b. 23,7% (+/- 0,9) Pentamere/Hexam 1,2%) ere 600 kDa/720 kDa
44,3% (+/- 3,7) n.b. 20,5%(+/- 2,1%)
Die Ergebnisse aus drei Experimenten wurden gemittelt und Standardabweichungen sind in Klammern angegeben. In der ersten Spalte sind ungefähre Molekulargewichte angegeben, n.b. : nicht bestimmt.
Beispiel 3: Spezifität und Affinität von scOKT3-γΔIgM
Als einleitender Schritt zur Bestimmung der funktioneilen Integrität der scOKT3-γΔlgM-Antikörper wurde deren Fähigkeit zur Hemmung der Bindung von OKT3-PE an den TCR/CD3-Komplex überprüft (Figur 4) . Die Effizienz der Hemmung der Bindung von OKT3-PE an T-Zellen durch die monoclonalen OKT3-Antikörper und die OKT3-Miniantikörper wurde in einem "Displacement"-Assay quantifiziert. Die Ergebnisse zeigen, daß die scOKT3-γΔlgM- Konstrukte nicht nur an T-Zellen binden, sondern auch die Bindung der monoclonalen OKT3-Antikörper kompetitiv hemmen. Außerdem zeigten diese Studien, daß scOKT3-γΔlgM-Antikörper Bindungsaffinitäten besitzen, die denen der parentalen murinen Antikörper gleichen. Um bei den Polymerfraktionen der scOKT3- γΔlgM-Antikörper Unterschiede hinsichtlich der Befähigung zur Bindung nachweisen zu können, wurden diese getrennt mit Jurkat-Zellen inkubiert. Wie erwartet zeigten Antikörper mit höherem Polymerisationsgrad eine höhere Affinität zu CD3 als die Monomere. Fast 80% der Jurkat-Zellen zeigten mit scOKT3- γΔlgM-Monomeren eine positive Färbung und über 90% der Jurkat- Zellen mit scOKT3-γΔlgM-Pentameren und den monoclonalen OKT3- Antikörpern.
Beispiel 4: T-Zellaktivierung durch scOKT3-γΔIgM
Die T-Zellproliferation als Antwort auf monoclonale OKT3- Antikörper und scOKT3-γΔlgM wurde an humanen PBMC getestet. Zur Bestimmung des Einflusses der TCR/CD3-Quervernetzung auf die T-Zellproliferation wurden Assays mit löslichen und immobilisierten OKT3-Antikörpern durchgeführt (Tabelle 3) . Lösliche scOKT3-γΔlgM-Antikörper induzierten eine minimale Proliferation. Kunsts toff-immoblis ierte scOKT3-γΔlgM- Antikörper zeigten im Gegensatz zu immobilisierten monoclonalen OKT3 -Antikörpern nur eine geringe T- Zellaktivierung. Kein Unterschied konnte nach Stimulation mit Monomeren oder höheren Polymeren festgestellt werden. Dies deutet darauf hin, daß multivalente TCR/CD3-Quervernetzung keine Proliferation induzierte. Tabelle 3: Induktion der T-Zellaktivierung durch anti-CD3- Antikörper (monoclonale OKT3-Antikörper und scOKT3-γΔlgM-
Antikörper) lösliche Ak [cpm x immobi .lisierte Ak
103] [cpm x 103]
OKT3 mAk 9,5 ( +/- 1,5) 12,5 (+/- 1,9) scOKT3-γΔlgM, WT 2,6 ( + /- 0,5) 4,6 (+/- 0,8) scOKT3-γΔlgM, C575S 1,9 ( + /- 0,3) 3,3 (+/- 0,7) scOKT3-γΔlgM, VAEVD 2,3 (+/- 0,8) 3,7 (+/- 1,1) scOKT3-γΔlgM, WT 1,8 (+/- 0,4) 4,0 (+/- 0,7)
Monomere scOKT3-γΔlgM, WT 2,1 ( + /- 0,4) 3,5 (+/- 0,4)
Pentamere/Hexamere scOKT3-γΔlgM, C575S 2,4 ( +/- 0,5) 3,7 (+/- 0,9)
Monomere scOKT3-γΔlgM, VAEVD 2,9 ( + /- 1,1) 4,1 (+/- 0,2)
Monomere scOKT3-γΔlgM, VAEVD 3,2 (+/- 0,7) 4,4 (+/- 1,0)
Pentamere
Die Daten +/- Standardabweichung wurden durch Subtraktion der cpm von PBMC-Kulturen ohne Antikörper korrigiert. Die Ergebnisse aus drei Experimenten wurden gemittelt und Standardabweichungen sind in Klammern angegeben.
Die T-Zellcostimulation mit humanem IL-2 und monoclonalen anti-CD28-Antikörpern führte zu einem Ansteigen der Proliferation mit allen anti-CD3-Antikörpern. Dies bestätigt, daß die sezernierten scOKT3-γΔlgM-Konstrukte an TCR/CD3 ohne eine starke Aktivierung binden.
Der Einfluß der Antikörperkonzentration auf die Produktion von IL-2, TNF-α und INF-γ wurde mittels ELISA bestimmt. Humane PBMC wurden bei einer Sättigungskonzentration von 10 μg/τal mit jedem anti-CD3-Antikörper 24 Stunden (IL-2), 36 Stunden (TNF- α) oder 72 Stunden (INF-γ) inkubiert und die Gewebeüberstände gesammelt. Im Vergleich zu ihrem parentalen Pendant induzierten die scOKT3-γΔlgM-Antikörper keine signifikante Zytokin-Freisetzung. Bei der Verwendung von scOKT3-γΔlgM- Monomeren bzw. -Polymeren wurden nur sehr geringe Unterschiede hinsichtlich der Produktion von IL-2, TNF-α und INF-γ beobachtet (Tabelle 4) . Zum Zeitpunkt der Ernte des Überstands wurden mit monoclonalen OKT3-Antikörpern und scOKT3-γΔlgM- Antikörpern kultivierte PBMC bezüglich Lebensfähigkeit mit dem "Trypanblau-Ausschluß"-Tests untersucht. Es zeigte sich, daß die Mehrzahl der Zellen nach jeder Induktion lebensfähig war.
Tabelle 4: Induktion der Zytokin-Freisetzung durch OKT3- Antikörper (OKT3-mAk und scOKT3-γΔIgM)
IL-2-Produktion TNF-α- INF-γ- tpg/ l] Produktion Produktion
[pg/ml] [pg/ml]
OKT3 mAk 467 (+/- 129) 960 (+/- 157) 1381 (+/- 89) scOKT3-γΔlgM, 47 (+/- 32) 167 (+/- 23) 244 (+/- 78)
WT scOKT3-γΔlgM, 65 (+/- 26) 149 (+/- 43) 202 (+/- 95)
C575S scOKT3-γΔlgM, 79 (+/- 12) 157 (+/- 47) 194 (+/- 28)
VAEVD scOKT3-γΔlgM, 52 (+/- 37) 166 (+/- 13) 222 (+/- 56)
WT
Monomere scOKT3-γΔlgM, 42 (+/- 22; 158 (+/- 24! 232 (+/- 47)
WT
Pentamere/Hexam ere scOKT3 -γΔlgM, 73 (+/- 31) 169 (+/- 38) 189 (+/- 67)
C575S, Monomere scOKT3-γΔlgM, 67 (+/- 11) 143 (+/- 69 ) 224 (+/- 28)
VAEVD, Monomere scOKT3-γΔlgM, 72 (+/- 17) 154 (+/- 65) 198 (+/- 49)
VAEVD,
Pentamere
Die Daten +/- Standardabweichung wurden durch Subtraktion der cpm von PBMC-Kulturen ohne Antikörper korrigiert. Die Ergebnisse aus drei Experimenten wurden gemittelt und Standardabweichungen sind in Klammern angegeben. Beispiel 5: CD3-Bedeckung und -Modifikation
Um das immunsuppressive Potential der scOKT3-γΔlgM-Antikörper im Vergleich zu dem der 0KT3-mAk untersuchen zu können, wurde die Bedeckung und Modulation von CD3 quantifiziert (Figur 5) . Obwohl zwar die Gesamtmenge von durch die IgM-Miniantikörper bedecktem oder moduliertem CD3 ähnlich der mit den mAk beobachteten war, war die durch die Miniantikörper induzierte maximale CD3-Modulation bei jeder untersuchten Konzentration im Vergleich zu der mit den mAk induzierten etwas geringer. Der geringste Effekt auf die CD3-Modulation wurde bei Verwendung der scOKT3-γΔlgM-Konstrukte beobachtet, die nur als Monomere produziert worden waren. Daneben wurden keine signifikanten Unterschiede hinsichtlich des Ausmaßes der von scOKT3-γΔlgM-Pentameren oder dem mAk induzierten CD3- Modulation gefunden. Dies deutet darauf hin, daß die rekombinanten Konstrukte mit höherer Valenz genauso wirksam sind hinsichtlich der CD3-Modulation wie ihre monoclonalen Pendants .
Beispiel 6: Immunsuppression
Die immunsuppressiven Eigenschaften der unterschiedlichen Ak wurden in vitro durch Untersuchung ihrer Kapazität hinsichtlich der Unterdrückung einer in einer MLC induzierten Immunantwort untersucht. Die scOKT3-γΔlgM-Antikörper hemmten die T-Zellproliferation effizient bei Konzentrationen, die denen entsprachen, die mit OKT3-mAk erreicht wurden (Figur 6) . Dieser Effekt war bei Verwendung der scOKT3-γΔlgM-Pentamer- Fraktionen leicht erhöht.

Claims

Patentansprüche
1. Einzelketten-Antikörper, dadurch gekennzeichnet, daß er a) eine an humanes CD3 spezifisch bindende variable Domäne (scFv) enthält, und b) seine konstanten Domänen von einem humanen IgM- Molekül stammen und die C μ„3-Domäne und C μ„4-Domäne, jedoch nicht die Cμl-Domäne und Cμ2 -Domäne umfassen.
2. Einzelketten-Antikörper nach Anspruch 1, wobei die an humanes CD3 spezifisch bindende variable Domäne das scFv des murinen monoclonalen OKT3 ist.
3. Einzelketten-Antikörper nach Anspruch 1 oder 2, der zwischen der variablen Domäne und den konstanten Domänen eine humane IgG3 Gelenkregion aufweist.
Einzelketten-Antikörper nach einem der Ansprüche 1 bis 3 3 ,, wwoobbeeii ddiiee CC μ„„33 DDoommäännee uunnd C μ„4 Domäne von der C575S- oder VAEVD-Mutante stammen.
5. Einzelketten-Antikörper nach einem der Ansprüche 1 bis 5, der in polymerer Form vorliegt.
6. DNA-Sequenz, codierend den Einzelketten-Antikörper nach einem der Ansprüche 1 bis 5.
7. Expressionsvektor, enthaltend die DNA-Sequenz nach Anspruch 6 funktionell verknüpft mit einem Promotor.
8. Expressionsvektor nach Anspruch 7, der pLN0H2 ist.
9. Zellinie, enthaltend den Expressionsvektor nach Anspruch 7 oder 8.
10. Zellinie nach Anspruch 9, die eine Maus-Myelomzellinie ist .
11. Zellinie nach Anspruch 10, die Ag8 K2/k ist.
12. Arzneimittel, enthaltend den Einzelketten-Antikörper nach einem der Ansprüche 1 bis 5, die DNA-Sequenz nach Anspruch 6 oder den Expressionsvektor nach Anspruch 7 oder 8.
13. Verwendung des in den vorstehenden Ansprüchen definierten Antikörpers, der DNA-Sequenz oder des Expressionsvektors zur Immunsuppression.
14. Verwendung nach Anspruch 13, wobei die Immunsuppression die Prävention akuter Abstoßungsreaktionen nach Organtransplantation betrifft.
15. Verfahren zur Herstellung des Antikörpers nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, daß
(a) eine Zellinie nach einem der Ansprüche 9 bis 11 mit dem Expressionsvektor nach Anspruch 7 oder 8 transfiziert und unter geeigneten Bedingungen gezüchtet wird, und
(b) das exprimierte Protein aus der Zellinie oder der Kultur gewonnen und gereinigt wird.
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