WO1995016792A1 - Methode pour le diagnostic de cancers - Google Patents

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Maurice Stroun
Philippe Anker
Valeri Vasioukhin
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Maurice Stroun
Philippe Anker
Valeri Vasioukhin
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    • C12Q2600/156—Polymorphic or mutational markers

Definitions

  • the present invention relates to a method for diagnosing and / or monitoring the development of various types of cancer after a chemotherapy treatment or after an operation.
  • the aim of this invention therefore consists in providing a method for diagnosing cancers which is on the one hand more precise and more reliable and on the other hand which is easier to perform and does not involve an invasive test on patients.
  • the method for diagnosing and / or monitoring the development of cancers comprises the analysis of deoxyribonucleic acid (DNA) present in the blood plasma. It has now been shown that patients with various cancer diseases have increased levels of DNA in the blood plasma.
  • the diagnostic method according to the invention is therefore based on the detection of gene mutations in this plasma DNA, blood plasma being a human material much more easily accessible than biopsies of tumors for example. Thus, mutations of oncogenes are frequently demonstrated in many types of malignant tumors, and among them mutations in the ras gene are particularly significant.
  • the method can be applied to any gene modification specific to the DNA of cancer cells, such as mutations or deletions of ras, APC, DCC, P53 genes, etc. or any oncogene or antioncogen (tumor suppressing gene) or modifications of microsa ⁇ tellites. It has even been observed that different mutations of the ras genes detected in the DNA of the blood plasma could be absent in the DNA of the peripheral blood cells or in the case of certain leukemic patients of the bone marrow, which tends to confirm the greater reliability of the method according to the invention in comparison with known diagnostic methods.
  • the diagnostic method according to the invention consists in extracting DNA from the blood plasma, in purifying and amplifying this DNA, then in determining the gene mutations or deletions therein, this in principle. compares between the blood plasma of a presumed sick person and that of healthy people.
  • the scope of the present invention extends to any technique for extracting, purifying and amplifying DNA from blood plasma; similarly, any method of determining gene mutations can be used.
  • Example 1 Diagnosis of colon cancer by detection of mutations in the K-ras gene.
  • Blood samples (20-30 ml) from 15 patients with different stages of colorectal adenocarcinoma were taken from heparin, these patients having received no anti-cancer medication during this period. Thirteen of the 15 patients then underwent surgical removal of the tumor; similarly, a total of about 400 ml of blood was also taken from healthy people to isolate DNA from the plasma.
  • the DNA was extracted from tumors and blood cells using standard techniques which are well known.
  • the plasma is first subjected to treatments with phenol, ether and choloroform. After dialysis against SSC (0.15 M sodium chloride, 0.015 M trisodium citrate), the product is passed through a Concanavalin A-Sepharose column in order to remove the polysaccharides, then it is centrifuged in a gradient of CS2SO .
  • the DNA thus extracted and purified (10 to 100 ng) was then subjected to a PCR amplification of the first exon of the K-ras gene in a volume of 100 ⁇ l.
  • the amplimers were 5'-GACTGAATATAAACTTGTGGTAGT-3 'and 5' -CTATTGTTGGATCATATTCGTCC-3 '.
  • the amplifications were carried out in a buffer containing 50 mM of KC1, 10 mM of Tris-MCI at pH 0.3, 200 mM of each nucleotide, 1.8 mM of MgCl2 0, 2 ⁇ M of each precursor and 2.5 units of " AmpliTaq "DNA polymerase. 35 cycles were performed for DNA from tumors and blood cells and 45 cycles for DNA from plasma (94 ° C for 1 min., 59 ° C for 1.5 min., 72 ° C for 1 min., the last cycle being extended by 7 min at 72 ° C).
  • PCR products were placed in equal quantities on "Zeta-probe" membranes (Bio-Rad, Hercules, CA) and hybridized with specific oligonucleotides for mutant or wild-type K-ras.
  • the oligonucleotides were labeled with 32P ddATP (Amersham, GB).
  • the final washing of the membranes was carried out in a solution containing 3M tetramethylamonnium chloride, 50 mM Tris-HCl at pH 8.0 and 0.2 mM EDTA and 0.1 % SDS at 58 ° C for 1 hour.
  • the DNA is subjected to PCR amplification with amplimers complementary to the normal GLY sequences or mutated ALA, VAL, SER, ASP or CYS.
  • the amplifiers specific to the mutations have 3 ′ terminations complementary to the mutations at the specific point.
  • the Taq I polymerase enzyme Perkin-Elmer Cetus, CH, has no 3 'exonuclease activity and is therefore unable to amplify DNA if the mismatch of a single base is located at terminal 3 'to amplify it.
  • Each PCR was carried out in a volume of 40 ⁇ l of a solution containing 50 mM of KC1, 10 mM of Tris-HCl at pH 8.3, 2 mM of each nucleotide, 0.7 mM MgC12, 0.2 mM of each precursor and 1 unit of "AmpliTaq" DNA polymerase. Thirty-five cycles were performed (94 ° C for 1 min., Annealing at 55-62 ° C for 2 min., Extension at 72 ° C for 1 min,). The last cycle was extended by 7 min. at 72 ° C. Each reaction was initiated with the "hot-start" technique.
  • the amplimers used were: 5 '-ACTTGTGGTAGTTGGAGCTGG-3' for wild K-ras (recoration at 55 ° C), 5 '-ACTTGTGGTAGTTGGAGCTGC-3' for the mutant ALA 12 (renaturation at 62 ° C),
  • reaction products were analyzed by electrophoresis in a 0.8% polyacrylamide gel.
  • Example 2 Diagnosis of cancers due to myeloid disorders by detection of mutations in the N-ras gene.
  • MDS myelodysplastic syndrome
  • AML acute myeloblastic leukemia
  • the DNA of the blood cells and of the marrow was isolated by treatment with Proteinase K (Merck, DE) in the presence of SDS, then extraction with phenol, precipitation with ethanol and gradient of CS2SO4.
  • the plasma DNA was extracted as described in Example 1.
  • the DNA (10-100 ng) was amplified in a volume of 100 ⁇ l.
  • the amplimers used (Oncogene Science, NY, USA) were 5'-GACTGAGTACAAACTGGTGG-3 'and
  • the results of the analyzes obtained confirm that the DNA of sick patients had one or more mutations in codon 12 (GLY in CYS or ASP) or codon 13 (GLY in CYS) of the N-ras gene, whereas all of these mutations could not be identified in the DNA of blood cells, or even in that of the bone marrow.
  • the analysis of the DNA of the blood plasma can constitute a method of diagnosis and of monitoring the evolution of a cancerous disease which is more practical, less traumatic ( simple blood sampling from the patient) and sometimes even more reliable than known methods involving the taking of a biopsy.

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Abstract

La méthode selon l'invention pour le diagnostic et/ou le suivi de l'évolution de cancers comprend l'analyse de l'acide désoxyribonucléique (ADN) présent dans le plasma sanguin. Cette analyse concerne plus particulièrement toute modification génique propre à l'ADN de cellules cancéreuses, par exemple la détection de mutations ou délétions d'oncogènes, ou bien de mutations ou délétions de gènes suppresseurs de tumeurs ou encore les modifications de microsatellites.

Description

METHODE POUR LE DIAGNOSTIC DE CANCERS
La présente invention concerne une méthode de diagnos¬ tic et/ou de suivi de l'évolution de divers types de can¬ cers après un traitement de chimiothérapie ou après une opération.
On sait que le diagnostic et le suivi de l'évolution des cancers sont effectués, à part l'observation et l'exa¬ men direct de tumeurs, par analyse de biopsies ou, dans le cas de cancers du sang, de la moelle osseuse, ce qui im¬ plique soit une intervention chirurgicale soit un test in- vasif du type biopsie ou aspiration médullaire avec ai¬ guille. Or, en plus du caractère désagréable voire dange¬ reux pour les patients de telles méthodes, il a été constaté qu'elles pouvaient en outre être peu précises. Dans le cas de certaines maladies leucémiques par exemple, l'analyse de l'échantillon de moelle prélevée n'a pas per¬ mis de retrouver toutes les variétés clonales malignes.
Le but de cette invention consiste donc à fournir une méthode de diagnostic de cancers qui soit d'une part plus précise et plus fiable et d'autre part qui soit plus facile à réaliser et n'impliquant pas de test invasif sur les patients.
La méthode de diagnostic et/ou suivi de l'évolution de cancers, objet de l'invention et visant à atteindre le but précité, comprend l'analyse de l'acide désoxyribonucléique (ADN) présent dans le plasma sanguin. Il a en effet maintenant pu être démontré que des pa¬ tients atteints de différentes maladies cancéreuses pré¬ sentaient des taux augmentés d'ADN dans le plasma sanguin. La méthode de diagnostic selon l'invention est donc basée sur la détection de mutations géniques dans cet ADN plas- mique, la plasma sanguin étant un matériau humain beaucoup plus facilement accessible que des biopsies de tumeurs par exemple. Ainsi, des mutations d'oncogènes sont fréquemment mises en évidence dans de nombreux types de tumeurs malignes, et parmi elles les mutations du gène ras sont particulièrement significatives. Toutefois, la méthode peut s'appliquer à n'importe quelle modification génique propre à l'ADN de cellules cancéreuses, telles les muta¬ tions ou délétions de gènes ras, APC, DCC, P53, etc. ou de n'importe quel oncogene ou antioncogène (gène de suppres¬ sion de tumeurs) ou encore les modifications de microsa¬ tellites. On a même observé que différentes mutations des gènes ras détectées dans l'ADN du plasma sanguin pouvaient être absentes dans l'ADN des cellules sanguines périphé¬ riques ou dans le cas de certains patients leucémiques de la moelle osseuse, ce qui tend à confirmer la plus grande fiabilité de la méthode selon l'invention en comparaison avec les méthodes de diagnostic connues.
D'une manière générale, la méthode de diagnostic selon l'invention consiste à extraire l'ADN du plasma sanguin, à purifier et amplifier cet ADN, puis à déterminer les muta¬ tions ou délétions géniques dans celui-ci, ceci en prin¬ cipe de manière comparative entre le plasma sanguin d'une personne présumée malade et celui de personnes en bonne santé. La portée de la présente invention s'étend à toute technique d'extraction, purification et amplification d'ADN du plasma sanguin; de même, n'importe quelle méthode de détermination des mutations géniques peut être utili¬ sée.
La méthode de diagnostic selon l'invention sera main¬ tenant illustrée plus en détails en référence aux deux exemples qui suivent :
Exemple 1 : Diagnostic du cancer du colon par détection de mutations du gène K-ras.
Dans cette première application de la méthode selon l'invention, on a utilisé la détermination de mutations dans le codon 12 des gènes K-ras contenus dans des adéno- carcinomes du colon. Ces mutations apparaissent générale¬ ment lors de la transition du stade adénome I en adénome II, avant la délétion ou la mutation du gène P53, c'est-à- dire relativement tôt dans l'évolution de la tumeur.
Des échantillons de sang (20-30 ml) de 15 patients présentant différents stades d'adénocarcinome colorectal ont été prélevés sur héparine, ces patients n'ayant reçu durant cette période aucun médicament anti-cancéreux. Treize des 15 patients ont ensuite subi une ablation chi¬ rurgicale de la tumeur; de même, on a également prélevé environ 400 ml de sang au total sur des personnes saines afin d'en isoler l'ADN du plasma.
L'ADN a été extrait des tumeurs et des cellules san¬ guines selon des techniques usuelles bien connues.
Quant à l'extraction de l'ADN du plasma sanguin, elle peut être effectuée de la manière suivante : le plasma est d'abord soumis à des traitements par du phénol, de l'éther et du choloroforme. Après dialyse contre la SSC (chlorure de sodium 0,15 M, citrate de trisodium 0,015M), on fait passer le produit à travers une colonne Concanavaline A-Sépharose afin d'éliminer les polysaccharides, puis on le centrifuge dans un gradient de CS2SO .
L'ADN ainsi extrait et purifié (10 à 100ng) a ensuite été soumis à une amplification par PCR du premier exon du gène K-ras dans un volume de lOOμl.
Les amplimers étaient le 5'-GACTGAATATAAACTTGTGGTAGT-3' et le 5 '-CTATTGTTGGATCATATTCGTCC-3 ' .
Les amplifications ont été effectuées dans un tampon contenant 50 mM de KC1, 10 mM de Tris-MCI à pH 0,3, 200mM de chaque nucléotide, 1,8 mM de MgCl2 0, 2μM de chaque précurseur et 2,5 unités de "AmpliTaq" ADN polymérase. 35 cycles ont été réalisés pour l'ADN des tumeurs et des cel¬ lules sanguines et 45 cycles pour l'ADN du plasma (94°C pendant 1 min. , 59°C pendant 1,5 min., 72°C pendant 1 min., le dernier cycle étant prolongé de 7 min. à 72°C) .
En ce qui concerne la détection des mutations , elle peut être effectuée par n'importe quelle méthode connue et appropriée. Dans le présent exemple, elle a été réalisée de deux manières différentes pour chaque échantillon testé.
(a) Hybridisation de produits PCR avec sondes oligonu- cléotiques spécifiques aux mutations (selon Verlaan de Vries et al.. Gène 50, 313-320, 1986):
Les produits PCR ont été disposés en quantités égales sur des membranes "Zeta-probe" (Bio-Rad, Hercules, CA) et hybridisées avec les oligonucleotides spécifiques pour des K-ras mutants ou sauvages. Les oligonucleotides étaient marqués avec 32P ddATP (Amersham, GB) . Afin de séparer les hybrides parfaits des "mismatchs", le lavage final des membranes a été effectué dans une solution contenant du chlorure de tétraméthylamonnium 3M, 50 mM de Tris-HCl à pH 8,0 et 0,2 mM EDTA et 0,1 % SDS à 58°C pendant 1 heure.
(b) Amplification PCR avec amplimers spécifiques de mutations ponctuelles ou amplification PCR pour allèles spécifiques (PASA) (selon Sommer et al. Biotechnique 12, 82-87, 1992):
Dans cette méthode plus sensible, l'ADN est soumis à une amplification PCR avec des amplimers complémentaires aux séquences normales GLY ou mutées ALA, VAL, SER, ASP ou CYS. Les amplimers spécifiques aux mutations ont des ter¬ minaisons 3 ' complémentaires aux mutations au point spéci¬ fiques. L'enzyme Taq I polymérase (Perkin-Elmer Cetus, CH), n'a pas d'activité exonucléasique en 3 ' et est donc incapable d'amplifier l'ADN si le mismatch d'une seule base est situé à la terminaison 3' de l'amplimer.
Chaque PCR a été effectué dans un volume de 40μl d'une solution contenant 50 mM de KC1, 10 mM de Tris-HCl à pH 8,3, 2 mM de chaque nucléotide, 0,7 mM MgC12, 0,2 mM de chaque précurseur et 1 unité de "AmpliTaq" ADN polymérase. Trente-cinq cycles ont été effectués (94°C pendant 1 min., recuit à 55-62°C pendant 2 min., extension à 72°C pendant 1 min,). Le dernier cycle a été étendu de 7 min. à 72°C . Chaque réaction a été amorcée avec la technique "hot- start". Les amplimers utilisés étaient les suivants : 5 ' -ACTTGTGGTAGTTGGAGCTGG-3 ' pour le K-ras sauvage (re- naturation à 55°C), 5 ' -ACTTGTGGTAGTTGGAGCTGC-3 ' pour le mutant ALA 12 (renaturation à 62°C),
5'-ACTTGTGGTAGTTGGAGCTGT-3' pour le mutant VAL 12 (renatu¬ ration à 61 °C), 5'-ACTTGTGGTAGTTGGAGCTA-3' pour le mutant SER 12 (renaturation à 59°C), 5'-ACTTGTGGTAGTTGGAGCTGA-3 ' pour le mutant ASP 12 (renaturation à 60°C), 5'-ACTTGTGGTAGTTGGAGCTT-3' pour le mutant CYS 12 (renatu¬ ration à 59°C) et dans chaque cas l'amplimer "antisense" 5 '-CTATTGTTGGATCATATTCGTCC-3 ' .
Après amplification, les produits de la réaction ont été analysés par électrophorèse dans un gel de polyacryla- mide 0,8 %.
En utilisant la première technique (a) décrite ci- dessus, il s'est avéré qu'il n'était pas possible de mettre en évidence les mêmes mutations dans l'ADN du plas¬ ma que celles détectées dans l'ADN des tumeurs prélevées (GLY en VAL, GYS en ALA); cette technique ne semble pou¬ voir être appliquée ici que si environ 10 % au moins de l'ADN total présente une mutation ponctuelle. Par contre, les mutations précitées ont pu être identifiées dans l'ADN du plasma avec la seconde technique (b) décrite précédem¬ ment; il apparaît que cette technique permet d'identifier les mutations dans un échantillon d'ADN du plasma mélangé avec un excès de 104 à 10*^ d'ADN normal non muté. D'autre part, avec la même technique, il n'a pas été possible de détecter les mêmes mutations sur les échantillons d'ADN de cellules sanguine.
Enfin, tous les échantillons de contrôle provenant de personnes en bonne santé se sont révélés négatifs, c'est- à-dire ne présentant pas de mutations de l'ADN du plasma.
Exemple 2 : Diagnostic de cancers dus à des désordres myéloïdes par détection de mutations du gène N-ras.
On sait qu'une prédominance de mutations N-ras ont été observées dans l'ADN de la moelle osseuse de patients pré¬ sentant un syndrome myelodysplasique (MDS) ou une leucémie myéloblastique aiguë (AML).
On a prélevé 20 à 30 ml de sang sur dix patients at¬ teints de AML ou MDS, ce sang étant recueilli sur héparine et centrifugé sur gradient "Ficoll Hipague" (Pharmacia, SE) . On a également prélevé 400 ml de sang sur des per¬ sonnes saines. L' interphase contenant des cellules mononu¬ cléaires a été recueilli et utilisé pour l'extraction de l'ADN des cellules sanguines. La phase supérieure a été centrifugée à 2500 G pendant 15 minutes, et le surnagent a été utilisé pour l'extraction de l'ADN du plasma. De plus, quelques échantillons de moelle osseuse des mêmes patients ont été prélevés pour analyse de contrôle.
L'ADN des cellules sanguines et de la moelle a été isolé par traitement à la Protéinase K (Merck, DE) en pré¬ sence de SDS, puis extraction au phénol, précipitation à l'éthanol et gradient de CS2SO4. L'ADN du plasma a été ex¬ trait comme décrit dans l'exemple 1.
L'ADN (10-100 ng) a été amplifié dans un volume de 100μl. Les amplimers utilisés (Oncogene Science, NY, USA) étaient 5'-GACTGAGTACAAACTGGTGG-3' et
5' -CTCTATGGTGGGATCATATT-3' pour le premier exon du gène N- ras. Les amplifications ont été effectuées dans un "Thermo-Cycler 480" automatique (Perkin-Elmer Cetus, CH) dans les mêmes conditions que celles de l'Exemple 1. Chaque cycle consistait en une étape de denaturation à 94°C pendant 1 minute, une renaturation (à 51 °C pourN-ras) pendant 1,5 minutes et une extension d'une minute à 72°C avec un troisième segment d'extension de 5 secondes par cycle. Le dernier cycle a été suivi par une extension de 7 minutes à 72°C. Les produits de l'amplification (109 np) ont été analysés par électrophorèse dans du gel polyacry- lamide 0,8%.
Les deux mêmes méthodes de détection des mutations que dans l'Exemple 1 ont été employées. Dans la seconde tech¬ nique (b), on a utilisé comme amplimers pour N-ras 5'-CTGGTGGTGGTTGGAGCAGA-3' pour le mutant ASP 12, 5'-GGTGGTGGTTGGAGCAGGTT-3' pour le mutant CYS 13, et 5'-CTCTATGGTGGGATCATATT-3' comme amplimer "antisense".
Les résultats des analyses obtenus permettent de confirmer que l'ADN des patients malades présentait une ou plusieurs mutations du codon 12 (GLY en CYS ou en ASP) ou du codon 13 (GLY en CYS) du gène N-ras, alors que toutes ces mutations n'ont pas pu être identifiées dans l'ADN des cellules sanguines, ni même dans celui de la moelle os¬ seuse.
Ainsi, il ressort des deux exemples illustratifs ci- dessus que l'analyse de l'ADN du plasma sanguin peut constituer une méthode de diagnostic et du suivi de l'évo¬ lution d'une maladie cancéreuse qui est plus pratique, moins traumatisante (simple prélèvement de sang chez le patient) et parfois même plus fiable que les méthodes connues impliquant le prélèvement d'une biopsie.

Claims

REVENDICATIONS
1. Méthode pour le diagnostic et/ou le suivi de l'évolu¬ tion de cancers comprenant l'analyse de l'acide désoxyri- bonucléique (ADN) présent dans le plasma sanguin.
2. Méthode selon la revendication 1 comprenant l'extrac¬ tion de l'ADN présent dans le plasma sanguin, la purifica¬ tion et l'amplification de l'ADN, et la détection de muta¬ tions géniques dans cet ADN.
3. Méthode selon la revendication 2, dans laquelle on dé¬ tecte les mutations ou délétions d'oncogènes, ou bien les mutations ou délétions de gènes suppresseurs de tumeurs ou encore les modifications géniques propres à l'ADN de cel¬ lules cancéreuses.
4. Méthode selon la revendication 3, dans laquelle la dé¬ tection est appliquée à tout oncogene ou antioncogène ou gène de suppression de tumeurs, par exemple aux gènes APC, ras, DCC ou P53, ou encore aux modifications de microsa¬ tellites.
5. Méthode selon l'une des revendications 2 à 4, dans la¬ quelle l'ADN est amplifié par réaction de la polymérase en chaîne (ci-après "PCR").
6. Méthode selon l'une des revendications 2 à 5, dans la¬ quelle la détection des mutations géniques est effectuée par hybridisation des produits par PCR avec des sondes oligonucléotiques spécifiques aux mutations.
7. Méthode selon l'une des revendications 2 à 5, dans la¬ quelle la détection des mutations géniques est effectuée par amplification par PRC avec des amplimers spécifiques aux mutations ponctuelles.
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