UA106751C2

UA106751C2 - Упаковка для виявлення мікроорганізмів

Info

Publication number: UA106751C2
Application number: UAA201114460A
Authority: UA
Inventors: де ла Пуерта М. С. Крістіна Нерін; Бартоломе Лаура Гутіеррез; Джарабо Крістіна Санчез
Original assignee: Універсідад Де Зарагоза
Priority date: 2009-05-07
Filing date: 2010-04-21
Publication date: 2014-10-10
Also published as: ES2534838T3; CO6470867A2; CL2011002788A1; CN102439166A; WO2010128178A1; NZ596884A; US20120135455A1; BRPI1011297B1; SG175942A1; PE20120641A1; SG10201402029WA; ES2354677B1; US8741596B2; EP2428580A4; ZA201108628B; EP2428580B1; PL2428580T3; AU2010244344A1; JP5804279B2; KR20120024724A

Abstract

Винахід належить до упаковки, яка виготовлена з прозорого і безбарвного матеріалу, та містить датчик у формі частково полярної адсорбуючої твердої підкладинки, здатної всмоктувати рідину, з поверхневим шаром, який вміщує ванілін, при цьому вказаний датчик прикріплений до внутрішньої сторони упаковки з можливістю виявлення росту вказаних мікроорганізмів без безпосереднього контакту з зазначеними продуктами через газоподібне середовище, тобто парову фазу, усередині упаковки і є видимим ззовні упаковки для відображення присутності мікроорганізмів у запакованих харчових продуктах, фармацевтичних продуктах або косметичних засобах шляхом зміни кольору датчика.

Description

разей асіїме рарег расКадіпа адаїпві АпПігорив5іоопітег той зройаде." Чоштпаї! ої Адгісийита! апа Роса

Спетівігу 56 (15)), Горе, Р., Запспе7 С, Ваше, К, апа Мегіп, С. (20075). "ОемеІюортепі ої Пехіріе апіїтістобіа! їІтв ивіпу еззепіа! ої а5 асіїме адепів." дошгпаї ої Адгісипига! апа Роса Спетівігу 55 (21): 8814-8824) Сшіеггел, І, Запспе» С, Ваше, К.; Мегіп, С. (2009). "Мем/ апійпісгобіа! асіїме раскаде ог ракегу ргодисів." Тгепавз іп Роса Зсіепсе 5 Тесппоіоду 20 (2): 92-99.

Щодо розумної упаковки, то цілі такої упаковки відмінні, що виправдовує їх розмежування з огляду на спеціальне призначення. Їх дія робить мрію у світі сучасних споживчих вимог реальністю, так як упаковка сама говорить про якість продукту, який вона містить, або про те, що сталось з продуктом в ході переробки, а отже вона виступає інформатором стосовно можливого псування або розкладу, а також неадекватного зберігання, транспортування або умов реалізації продукту. Відповідно до

Директиви 1935/2004 розумна упаковка визначається як матеріали, які контролюють стан упакованих харчових продуктів або їх середовища.

Як "розумні упаковки" розцінюються ті упаковки, в яких використовуються або властивості, або компоненти харчового продукту, або певного пакувального матеріалу в якості індикаторів якості продукту та його історії; до цього часу, по суті, такі індикатори включали індикатори терміну- температури, індикатори мікробіологічної якості, індикатори кисню або діоксиду вуглецю.

Таким чином, розумна упаковка визначається як упаковка, яка моніторить стан упакованого харчового продукту шляхом надання інформації про якість продукту в упаковці під час транспортування та зберігання, при цьому під станом харчового продукту маються на увазі: - фізіологічні процеси (процес дихання фруктів та свіжих овочів) - хімічні процеси (ліпідне окиснення) - фізичні процеси (затвердіння хліба, зневоднення) - мікробіологічні аспекти (пошкодження мікроорганізмами), і - зараження (комахами)

Такі упаковки представляють великий інтерес для харчової промисловості, а доказом цього служить той факт, що на сьогодні докладаються значні зусилля до розробки і дослідження цього типу упаковки.

До цієї групи належать упаковки, які містять етикетки, барвники або емалі, що застосовуються як індикатори якості, безпеки або обробки упакованого продукту. В їх основі лежать фізико-хімічні, ензимні реакції або інше, що призводить до зміни кольору у пристрої, таким чином вказуючи на ушкодження або зміни, які мали місце у харчовому продукті.

Таким чином, можливість використання взаємодії між продуктом та упаковкою в позитивному аспекті починає знаходити застосування, а саме завдяки блокуванню або інгібуванню факторів, що зумовлюють псування харчових продуктів.

Багато з існуючих смарт-індикаторів знаходять активне застосування у пакувальній промисловості, а саме індикатори часу-температури, індикатори цілісності упаковки, мікробного росту, автентичності упаковки і т.д. Деякі з цих упаковок представляють собою спеціалізовані патентовані системи, але лише деякі з них знайшли комерційне застосування, найпоширенішими з яких є індикатори часу- температури.

Існує досить мало джерел, що описують розробку розумних упаковох, які здатні швидко та ефективно виявляти присутність мікроорганізмів у харчових продуктах на момент придбання або споживання таких продуктів. Беручи до уваги, що споживання зіпсованих з мікробіологічної точки зору харчових продуктів є однією з основних причин проблем зі здоров'ям (харчового отруєння), важливо вивляти заздлегідь, тобто до споживання, заражені упаковані продукти. Так, продавець зможе своєчасно вилучати їх, а споживач уникне споживання таких продуктів, не піддаючи ризику власне здоров'я.

Розробки, описані стосовно цього типу розумної упаковки, вимагають прямого контакту мікроорганізму із датчиком, який виконує функції розумної упаковки, як описано у патентах

ЕРІЗ26653, Му003093784, МО2008026119, (Кітрепу-Сіатк Умогідул/де, ІМС), в якій використовується хромогенний детектор, або М/О0013009, (опйпзоп Майпеу Рибіїс І ітйей Сотрапу), в якій в якості реагуючих підкладинок застосовуються комплекси металів. Відповідно до публікації ЮОезброгаев, «5:

СОМІМЕ, І Ргемої.А. АппаІе5 Егапсаіїзе5 Рпаптасецідневз 1972, 30 (7-8), 507-518 реакцію ваніліну у забарвленому середовищі сірчаної і фосфорної кислоти застосовують для виявлення присутності ліпідів у бактеріальних дослідженнях, і, зрештою, для виявлення жирних кислот з допомогою тонкошарової та газової хроматографії. Знову таки, відповідно до цієї розробки з метою ініціювання реакції потрібен прямий контакт бактерії та реагенту. Крім того, з виробничої точки зору цей різновид датчиків є досить складним, що ускладнює їх виробництво у комерційному масштабі. Крім того, складним є механізм ініціювання реакції, який спочатку вимагає отримання забарвленої сполуки, забарвлення якої зникне після контакту з мікроорганізмами. Крім того, сполуки, що використовуються як хромогени, є хімічними сполуками, які у деяких випадках вимагають спеціальних умов, таких як підкислення або присутність складних хімічних сполук, необхідних для того, щоб реакція відбулась, причому деякі з таких сполук на сьогодні не допускаються до контакту з харчовими продуктами або мають ряд обмежень щодо їх концентрацій. У будь-якому випадку, природні сполуки використовуються як основні хромогенні сполуки, меншою мірою використовуються сполуки, які є прийнятними харчовими добавками, у зв'язку з технологічними перевагами та безпечністю для здоров'я.

З огляду на недоліки описаних упаковок автори цього винаходу в результаті глибокого дослідження розробили новий матеріал, який містить тверду підкладинку із частково полярного адсорбенту, просочену розчином ваніліну, який може використовуватись в якості колориметричного датчика для виявлення мікроорганізмів в упакованих продуктах різної природи.

Перевагою такого рішення є те, що ванілін (З-метокси-4-гідроксибензальдегід), який є дозволеною харчовою добавкою, здатен виявляти ріст мікроорганізмів завдяки простій та легко ідентифікованій хромогенній реакції. Він також діє на датчик, не взаємодіючи напряму із харчовим продуктом або упакованим продуктом, проте для того, щоб така реакція відбулась, необхідна невисока концентрація вологи у паровій фазі.

Ванілін є природною сполукою, яка входить до складу багатьох рослин, зокрема до складу ванільної палички. У промисловості цю сполуку отримують з евгенолу, який є основним складником гвоздичного олії. Його також отримують шляхом окиснення лігніну, комплексного полімеру, який міститься у деревині.

Ванілін широко застосовують як смакову добавку в харчових продуктах, зокрема в кондитерських виробах. Він також використовується у фармацевтичній промисловості в якості стимулятора шлункової діяльності та у парфумерній промисловості.

Рівень техніки включає деякі

Джерела інформації, в яких також згадується застосування ваніліну в якості прекурсору для інших реагентів, але вказується на те, що його синтез займає багато часу, а сам він має змішуватись із розчинниками, такими як етанол, і реагентами, такими як концентрована соляна кислота, піперидин, йодистий метил або інші. Наприклад, відповідно до М/О2008026119 ванілін не є основним складником матеріалу згідно з винаходом, але він вимагає присутності іншої сполуки в реакційній суміші для досягнення зміни кольору.

Відповідно до інших способів, застосування ваніліну як засобу виявлення присутності мікроорганізмів вимагає сильного підкислення середовища з допомогою НС, із недоліками, які з цим пов'язані, і, крім того, такі способи роблять можливим виявлення присутності тих мікроорганізмів, які здатні виробляти індол. Так, у документі Регіїп, Н.). апі Кагабріпег (9У.М. Еисіїде5 1954, 14, 345-353) описане середовище, яке містить триптофан як джерело для виділення Е. сої та Р. миЇдагі5 із сумішей на основі відмінностей у виробленні індолу з триптофану. Разом з тим, авторами також було отримано реагент для проведення індольного тесту. У таких умовах ними використовувався 0.25 95 розчин ванілі у концентрованій соляній кислоті із одержанням фіолетового кольору з індолом за рахунок прямого контакту у рідкій фазі. Тобто у такому розчині мали бути виявлені мікроорганізми, які виробляють індол, так як вироблення індолу запускає хромогенну реакцію.

З огляду на ці недоліки, однією з основних переваг даного винаходу є застосування нешкідливої природної сполуки, харчової добавки, такої як ванілін, та здатність виявляти присутність мікроорганізмів без потреби у прямій взаємодії мікроорганізмів і пакувального матеріалу.

Застосування такого винаходу покликане вирішити проблему, з якою пов'язані значні ризики для суспільства, а саме присутність патогенних мікроорганізмів у харчових продуктах, косметичних і лікарських засобах та в упакованих продуктах.

Матеріал згідно з винаходом входить до складу пакувального матеріалу для харчових продуктів або будь-яких інших продуктів, чутливих до забруднення мікроорганізмами, завдяки чому внаслідок легко пізнаваної зміни кольору (від безбарвного до пурпурового) споживач має змогу відмовитись від продукту і уникнути споживання або застосування продукту, інфікованого та забрудненого мікроорганізмами, шкідливими для здоров'я.

З іншого боку, він представляє собою систему, яка має виконувати функції контролю якості упакованих товарів за рахунок своєчасного вилучення забруднених упаковок, запобігаючи доступу до них кінцевого споживача та проблемам і витратам, пов'язаним із можливим поверненням таких неякісних продуктів. Сектори економіки, які будуть задіяні у комерціалізації такого нового пристрою, з одного боку, включають пакувальну промисловість, яка відповідальна за виготовлення та введення в оборот матеріалу, що входить до складу упаковки, і, з іншого боку, харчову, косметичну та фармацевтичну промисловість. Ця галузь має вирішити питання щодо оптимізації розміщення заявленого матеріалу всередині упаковки, враховуючи особливості промислового процесу пакування, з метою забезпечення місцезнаходження, яке б було добре помітним для кінцевого користувача, і яке б забезпечувало уникнення взаємодії із продуктом та створення перешкод для технологічного процесу пакування.

Головною перевагою застосування датчика, такого як датчик згідно з винаходом, є можливість повідомити споживачу про те, що продукт, який він збирається спожити або застосувати, містить мікроорганізми на момент придбання та споживання продукту, внаслідок чого споживач може утриматись від його споживання та відхилити продукт.

Короткий опис креслень

Фігура 1. Застосування сенсорного матеріалу у поліпропіленовій плівці. Е. соїї сикКиге.

Фігура 2. Застосування сенсорного матеріалу у паперових фільтрах за відсутності мікроорганізмів (порожнє поле), із середовищем культури (ліва колонка) та без середовища культури (права колонка).

Фігура 3. Застосування сенсорного матеріалу в адгезивній паперовій етикетці. Культура Е. соїї.

Фігура 4. Застосування сенсорного матеріалу у паперових фільтрах в присутності мікроорганізмів (Е. соїї) або за відсутності мікроорганізмів (порожнє поле). Середовище культури - середовище

Мюллера-Хінтона.

Фігура 5. Діаграма днів, необхідних для досягнення забарвлення у іншому середовищі (Мюллер-

Хінтон, Т5А, ; М.Е.А.) для інших мікроорганізмів.

Фігура 6. Нанесення сенсорного матеріалу на паперовий фільтр при різних значеннях рН у культурі без мікроорганізмів, середовище Мюллера-Хінтона.

Фігура 7. Діаграма зміни концентрації ваніліну залежно від часу за а) відсутності мікроорганізмів (порожнє поле); р) Сапайда аїіБрісап5; с) іарпуіососсиз ашгеицз і а) ЗаІтопеїйа споїегазців.

Задача винаходу

Перш за все, в основу винаходу поставлена задача створення матеріалу, який містить тверду підкладинку на основі частково полярного адсорбенту, просочену розчином, який містить ванілін.

Ще однією задачею винаходу є застосування такого матеріалу в якості колориметричного датчика для візуального виявлення росту мікроорганізмів, де такий датчик не потребує прямої взаємодії з мікроорганізмами або із середовищем, яке їх містить, для того, аби досягти зміни кольору.

Зрештою, ще однією задачею винаходу є застосування ваніліну в якості колориметричного реагенту для візуального виявлення росту мікроорганізмів.

Опис винаходу

Цей винахід стосується нової розумної упаковки, виготовленої на основі нового матеріалу, який робить можливим візуальне виявлення росту мікроорганізмів у продуктах різної природи без прямої взаємодії із такими мікроорганізмами або середовищем, що їх містить.

Таким чином, відповідно до основного аспекту винаходу заявлено матеріал, який містить тверду підкладинку на основі частково полярного адсорбенту, просочену розчином, який містить ванілін.

Вміст ваніліну у композиції такого матеріалу дозволяє виявити ріст мікроорганізмів завдяки простій та легко ідентифікованій хромогенній реакції. Зміна кольору (від безбарвного до пурпурового) в тестових умовах чітко вказує на присутність мікроорганізмів, як в чистих культурах у чашечках Петрі, так і в зразках їжі, таких як, наприклад майонез домашнього приготування, що не містить консервантів, у ліках та косметичних засобах.

Ванілін є природною сполукою, яка вступає в реакцію у присутності мікроорганізмів. За відсутності ваніліну забарвлення в ході реакції не виникає. Така реакція є необоротною, і колір, що утворюється, стає все більш насиченим в міру продовження росту мікробів.

Відповідно до конкретного прикладу реалізації розчин ваніліну містить етанол. Мінімальна концентрація ваніліну, необхідна для візуалізації реакції забарвлення, становить 10 95, переважно від до 50 95 етанолу.

Реакція потребує водного середовища або принаймні вологи для того, щоб забарвлення було помітним, реакція тривала та мала необоротний характер, а отже могла виступати колориметричним детектором. Таким чином, тверда підкладинка має бути виготовлена із частково полярного адсорбуючого матеріалу, здатного утримувати вологу, яку виділяє сама їжа, у паровій фазі, переважно із застосуванням паперу або картону.

У випадку якщо ванілін входить до складу гідрофобного середовища, реакція буде непостійною, так як волога буде конденсуватись на гідрофобній підкладинці і, хоча вона так само буде забарвлюватись, цей стан не буде постійним через краплі роси, що падають під дією сили тяжіння.

Відповідно, це не буде необоротна та стійка підкладинка.

Як зазначалося вище, описані ознаки матеріалу згідно з винаходом роблять його придатним для візуального виявлення мікробного росту, а тому відповідно до ще одного ключового аспекту винаходу такий новий матеріал може використовуватись як колориметричний датчик для візуального виявлення присутності мікроорганізмів.

Сенсорна реакція відбувається у паровій фазі, а тому немає потреби у тому, щоб ванілін вступав у взаємодію із самими мікроорганізмами або середовищем, що їх містить. Таким чином, такий датчик і мікроорганізми можуть знаходитись на відстані один від одного, і єдиний контакт, який існуватиме між ними -- це контакт через парову фазу.

Той факт, що такий датчик не вимагає прямої взаємодії з організмом створює суттєві переваги та становить важливу відмінність від датчиків, відомих із рівня техніки, оскільки у такий спосіб сполуки, які виділяються мікроорганізмами в результаті їх метаболізму, досягають парової фази і через неї досягають датчика, де відбувається хромогенна реакція. Це робить можливим розміщення датчика на кришці або його наклеювання на упаковку або ж розміщення в якості частини упаковки, але на відстані від продукту. Він також має ті переваги, що за таких умов, а саме дія у паровій фазі, він здатен зреагувати на присутність мікроорганізмів у будь-якій частині продукту, де вони можуть знаходитись, не обмежуючись його окремою фракцією або частиною, на відміну від випадків, коли потрібна пряма взаємодія.

Крім того, той факт, що зміна кольору відбувається внаслідок переносу або дифузії сполук від мікроорганізмів у парову фазу, забезпечує високу чутливість, а це означає, що датчик реагує на появу перших колоній мікроорганізмів у середовищі.

При концентрації мікробів, яка дорівнює або більша, ніж 10 колонієутворюючих одиниць на мл або на мг (КУО/мл, КУО/мг)) їжі, що містить мікроорганізми, такий датчик необоротно змінює колір від безбарвного (або білого за рахунок паперу або твердої підкладинки) до рожево-фіолетового.

Інтенсивність забарвлення залежить від концентрації мікроорганізмів.

Такий датчик робить можливою візуальну ідентифікацію росту широкого спектру мікроорганізмів, таких як пліснява, дріжджі і/або бактерії.

Всі мікроорганізми, які виробляють індол в результаті метаболізму, реагують з ваніліном. Крім того, інші організми, які не виробляють індол в ході метаболізму, такі як ЗаІтопеїіа і Рхендотопав 5рр., також позитивні щодо реакції з ваніліном, завдяки чому реакція не носитиме специфічний характер "індол-ванілін", а буде визначатись як більш загальна реакція "азотовмісні сполуки - ванілін".

Виявлення мікроорганізмів смарт-датчиком або системою згідно з винаходом може здійснюватись в упакованих продуктах. Такий упакований продукт може мати різну природу, переважно він є харчовим продуктом, лікарським або косметичним засобом.

Таким чином, відповідно до конкретного варіанту реалізації розумна система, яка утворена матеріалом, що використовується як датчик, може використовуватись як пакувальний матеріал або наноситися у формі етикетки на паперовій основі, переважно у самоклеючому вигляді, яка розміщується на внутрішній стороні упаковки, яка може бути виготовленою із пластмаси або іншого матеріалу, внаслідок чого вона зазнає дії атмосфери, яка створюється всередині упаковки. Така упаковка має бути виготовлена із прозорого безбарвного матеріалу у цій зоні для того, щоб була видимою зміна кольору, яка має місце у присутності мікроорганізмів.

Зрештою, ще один ключовий аспект винаходу стосується застосування ваніліну в якості колориметричного реагенту для візуального виявлення росту мікроорганізмів у паровій фазі, а саме без прямої взаємодії ваніліну з мікроорганізмами.

Приклади

Була досліджена активність датчика на основі різних підкладинкових матеріалів та в різних експериментальних умовах. Це забезпечило чітке уявлення про роботу датчика на мікроскопічному рівні.

На Фігурі 1 показане застосування поліпропіленової (ПП) плівки, просоченої розчином ваніліну у культурі Е.соїї. Хоча застосовувана композиція була придатною для такого датчика, зміни кольору не спостерігалось. Причиною відсутності реакції (зміни кольору) є те, що матеріал не абсорбував вологу або сполуки, або ж так само реакція із композицією, що містить ванілін, не підтримувалась на підкладинці, так як проходила вона у неполярному середовищі, яким був просочений поліпропілен (ПП). Насправді, мав місце забарвлений ореол, що покривав ПП, але поступово він конденсувався і відпав від плівки, тому неполярна або адсорбуюча підкладинка є непридатною для використання в якості підкладинки для датчика.

На Фігурі 2 показано, що порожні тести (відсутні мікроорганізми) проводили із використанням декількох паперових підкладинкових фільтрів, просочених розчином ваніліну у присутності середовища культури (ліва колонка) та за відсутності середовища культури (права колонка). Було показано, що за відсутності мікроорганізмів наявність середовища культури не є достатньою умовою для реакції.

На Фігурі З показане нанесення сенсорного матеріалу згідно з винаходом на етикетку, яка самостійно приклеюється, для виявлення присутності мікроорганізмів у культурі Е. соїї, внаслідок чого спостерігалась зміна кольору датчика.

На Фігурі 4 показане нанесення сенсорного матеріалу на декілька паперових фільтрів у різних культурах Е. соїї і у порожній культурі, тобто без мікроорганізмів. У якості середовища культури використовували середовище Мюллера-Хінтона. Спостерігалось, що забарвлення мало місце в усіх культурах Е. соїї, тоді як забарвлення було відсутнє лише у порожній культурі.

З метою розширення дослідження оцінювали поведінку матеріалу згідно з винаходом відносно широкого спектру мікроорганізмів для визначення мінімальної концентрації, необхідної для належної роботи датчика.

Тести проводили з метою оцінки ефективності датчика щодо наступних мікроорганізмів:

ПЛІСНЯВА

- А5регодіи5 Памиз (Іспанська колекція типових культур, СЕСТ, 2687) - Репісіййшт годиеїогії (Культуральна колекція грибів, ІВТ, 21319) - Ешоїйшт герепз (ІВТ 1800)

- Репісіїййшт івіапдіснт (СЕСТ 2762) - Репісійшт аттипе (ІВТ 21314) - Репісійшт ехрапзит - Репісіїййшт паЇдіомепвів

ДРІЖДЖІ

- Сапаїда аірісап5 (Американська колекція типових культур, АТСС, 64550) - Рерагуотусез Ппапзепії (СЕСТ 10353) - /удозасспаготусез гоихії (СЕСТ 11928) - Воїгуїї5 сіпетєа

БАКТЕРІЇ

- Епіеєгтососсиз Таесаїї5 (АТОС 29212) - РПеїепа топосуїодепез (АТС 7644) - Васйи5 сегєивз (СЕСТ 495) - ЗХарпуіососсив айгеивз (АТО 29213) - ЗаітопеїІа споіегтаєзиів (СЕСТ 4000) - Мегзіпіа епіегосоїйіса (СЕСТ 4315) - ЕвсНетісніа соїї (АТОС 29252) - Рзенидотопах аєгидіпоза (АТОСС 27853)

Позитивні реакції спостерігались як серед бактерій, так і серед плісняви та дріжджів. Серед досліджуваних мікроорганізмів, які дали позитивну реакцію, у нижченаведеній таблиці (Таблиця 1) вказані ті мікроорганізми, в яких може бути чітко виражене значення концентрації залежно від концентрації інокульованих мікроорганізмів та часу, необхідного для зміни кольору в датчику.

Таблиця 1

Зміна кольору залежно від концентрації

Бактерія Число днів інкубації | МСС (КУО на мг/мл) | МСО (КУО на мг/мл)

Васіегт МСС (сти рег тад/ті) МОО (сти рег тад/ті)

Р. аегидіпова 1 10 107 2 10 107

З 10 10

Е. сої 1 10 107 2 10 107

З 10 10

Е. ївесаїїв 1 10 109 2 10 107

З 10 107 4 10 10

В. сегеив 1 10 106 2 10 107

З 10 107 4 10 102 5. ашецв 1 10 »107 2 10 105

З 10 107 4 10 107

У. епісгосоїШса 1 10 10! 2 10 5107

З 10 107 4 10 109

МСС: Мінімальна концентрація інокуляту:

Мор: Мінімальна виявлювана концентрація

Дослідження проводили на основі вивчення впливу різного середовища культури на зміну кольору адсорбуючої підкладинки, що містить датчик. Внаслідок потреби в значних ресурсах нами були вибрані два мікроорганізми як представники кожної групи і три генеричних середовища культури, які забезпечують ріст всіх мікроорганізмів, але із різним вмістом протеїнового джерела в якості диференціальної ознаки. Вибрані середовища включали середовище Мюллера-Хінтона (М. Н), солодово-пептонний агар (М.Е.А.) і Т.5.А. (трипсом-соєвий агар). Час дослідження був продовжений до року. У нижченаведених таблицях (2 і 3) узагальнений перелік вибраних мікроорганізмів та середовищ культури. Відмінності у складі середовища культури становлять різні концентрації поживних речовин, що імітує ситуацію з харчовими продуктами, у випадку яких поживність середовища для мікроорганізмів завжди буде різною.

Таблиця 2

Мікроорганізми

ГРУПА МІКРООРГАНІЗМИ СЕРЕДОВИЩЕ КУЛЬТУРИ

ГРАМ-ПОЗИТИВНІ В. сегеиз і Е. Таесаїї5 М.Н, М.Е.А. і Т.5.А.

ГРАМ-НЕГАТИВНІ Р. аєгидіпоза і 5. споІегавзиів М.Н, М.Е.А. і Т.5.А.

ДРІЖДЖІ М.Н, М.Е.А. і Т.5.А.

ПЛІСНЯВА А. Памиз і Р. годиєїопі М.Н, М.Е.А. і Т.5.А.

Таблиця З

Склад різних середовищ культури, що використовувались у дослідженні орні яко | енЦжко декстрозою

Соолфееннниях 0 розвнанннювх рвсююннох ТЕМНІ екстракт 13 г

С Деовеятюкнннатроннтнтоть ренинни о іднртовт

ШИ ні СЕ оойанй ето

Соєвий пептон 5 г. пептон 10 г. пептон 5 г. 11111111 ФАгтарі5г //// |АгарїгЗ ////// |Агарі5г

КнцевийрНн| -( 72 2 | 7302 | | 55

На діаграмах, наведених на Фігурі 5, показані дні, потрібні для того, щоб фільтр набув кінцевого по суті чорного кольору (пурпуровий або дуже насичений фіолетовий) для різних мікроорганізмів у різних досліджуваних середовищах культури. Поглиблення інтенсивності забарвлення спостерігається залежно від концентрації мікроорганізмів.

На основі цього дослідження було зроблено висновок про те, що середовище культури, в якому відбувається ріст мікроорганізмів, сильно впливає на зміну кольору. Така зміна була більш швидкою у середовищі Мюллера-Хінтона, яке має більш високий вміст азотовмісних сполук. Наступні позиції посідають агарові середовища Т.5.А. та М.Е.А., в яких така зміна відбувалась значно повільніше.

Основна відмінність між цими середовищами полягає у вмісті азотовмісних сполук. У випадку середовища Мюллера-Хінтона яловичина та казеїн є постачальниками азотовмісних сполук, вітамінів, вуглецю, сірки та амінокислот. У випадку Т.5.А. ферментативне перетравлювання сої забезпечує азот, вітаміни і мінерали, тоді як М.Е.А. характеризується високим вмістом полісахаридів і в якості єдиного джерела азоту містить пептон у менших кількостях, ніж в інших середовищах. Це позначається на інтенсивності реакції з ваніліном, а отже і на зміні кольору, так як у випадках, коли мікроорганізми ростуть швидко, бо мають більше поживних речовин, реакція відбувається раніше, викликаючи більш ранню і більш інтенсивну зміну кольору в датчику, ніж в інших випадках.

Нами був досліджений механізм реакції, яка мала місце у цьому випадку, і доведено, що мікроорганізми, які виробляють індол в ході їх метаболізму, забезпечували позитивну реакцію, а отже можна було зробити висновок, що сполука забарвлювалась внаслідок хімічної реакції індолу з ваніліном. Проте, мікроорганізми, які не виробляють індол, такі як ЗаіІтопеїїа і Роендотопав 5рр, також забезпечували позитивну реакцію з ваніліном.

З метою доведення ефективності ваніліну у виявленні мікроорганізмів та виключення припущення, що зміна кольору може бути наслідком зміни рівня рН або внаслідок присутності СО», що є продуктом метаболізму мікроорганізмів, проводили додаткові дослідження. У цих дослідженнях нами було вибране середовище Мюллера-Хінтона, оскільки саме воно викликало більш швидку реакцію зміни кольору для всіх випадків.

Вплив СО»:

Мікроорганізми в процесі росту та дихання виділяють СО». Враховуючи кількість та летку природу цієї сполуки, нами вивчався її вплив на колір, якого набували етикетки, просочені ваніліном.

Це досягалось завдяки підготовці планшетів із середовищем культури та етикеток, просочених розчином ваніліну, до аналізу, але за відсутності мікроорганізмів. Інкубацію здійснювали в анаеробних посудинах в анаеробних та мікроаерофільних умовах, використовуючи саше, що генерують таку атмосферу. Планшети засівали поза посудинами, внаслідок чого до них міг проникнути СО».

Тест повторювали тричі, і він показав, що через 50 днів при температурі 37 "С на планшетах з середовищем Мюллера-хХінтона та на фільтрі, що містить ванілін, зміни кольору не спостерігалось.

Внаслідок цього було зроблено висновок, що зміна кольору не викликається присутністю СО».

Вплив рн:

Рівень рН середовища змінювали на поверхні. До трьох планшетів додавали оцтову кислоту, а до інших трьох - Маон, і спостерігали за впливом, який можуть мати ці кислотні або основні сполуки на датчик за відсутності мікроорганізмів. Спостерігалось, що через три місяці зміни кольору не відбулось.

При цьому прямий контакт між фільтрами та окиснюючими або лужними агентами був відсутній.

У наступному аналізі кислоту та основу безпосередньо вносили на фільтр, на який попередньо вносили ванілін. В іншому підготовка планшетів була однаковою для всіх випадків без висівання мікроорганізмів. Змін у кольорі також не спостерігалось.

На доповнення до цих аналізів кислоту та основу безпосередньо додавали до етанол-ванільної суміші, а фільтр просочували такою сумішшю і розміщували на планшетах подібно до попередніх тестів.

Через місяць було виявлено, що у жодному з фільтрів не відбулась зміна кольору. Відповідно, ми дійшли висновку, що зміна кольору датчика не є результатом зміни рівня рН. Через три місяці все ще не спостерігалось змін у кольорі.

Проте, коли рН середовища культури змінилось природним шляхом через 5 днів, у зразках, які знаходились у паровій фазі із рН середовищем на рівні 12 і 10, мала місце зміна кольору (Фігура 6).

Ріст мікроорганізмів також викликав зміни у кінцевому рівні рН середовища, при цьому базовий рн становив приблизно 10.

Аналіз сполук, які відповідають за зміну кольору

Зміни у ваніліні та нові сполуки, які утворилися в результаті реакції, аналізували з допомогою хроматографії.

З метою аналізу змін у ваніліні проводили мікроекстрагування у твердій фазі (ЗРМЕ) та газову хроматографію мас-спектрометрію.

Як видно з Фігури 7, в усіх випадках спостерігалось зниження концентрації ваніліну. Таке зниження було більш сильно виражене відносно 5. аигеи5 і 5. споЇегазціб5, які також є мікроорганізмами, які викликають більш швидку та більш сильно виражену зміну кольору. З допомогою цієї методики не було виявлено нових сполук, які відповідають за зміну кольору, що, ймовірно, є наслідком того, що такі сполуки не є леткими. Проте, концентрація ваніліну знижувалась, і це вказувало на те, що реакція ваніліну із сполукою, яку виділять мікроорганізми в ході росту, відбулась, внаслідок чого утворилась сполука, що викликає зміну кольору. ни ие й пон нн ! о и !

Ши я З

Бе о вн 5 АЕН

ШЕ Ох ВН о

Ше кВ НН вх пів ле ЕН

ШЕ: п НА ПЕВ ТМ КО

НК З НК НН с УБІК

ОК и я пе В ї сь шо НН НИ

Б ен оч шо М Но я В ВВ ОВО

ЕЕ В ог ж ОВ Є

МИ і Кк Ще п ово н НН ше ЩЕ

Ух Ко ОВО КАНАВ САККААНИНИ К: Я звана м ;

З их ОТ шк КОКО хоЕВ Й

В. | ОА Бо :

ОКО НН охо, ВШ

ВК Ше Ті М С

КІ: : Б п ЕМ с а ль.

Е в а и аОДЯ шо ВК ! Я 5 - ВВА ше Ов

Фіг. 2

Коен я нов НОВИМ ол В ти о спе Я

Он Ми і я ий ст дух Пп ПЕ

ЗБ нн ПВ В п п АН Р

Пе шй Нр н КИ Золя т ча кА НН Пе п І мит нн о и У МАК

КН Я - п и ко . пом ООН

ГЕС пу тк о Ну АН

ММиЇ І утрені НК. шийки Ко МАК

Ко ВНИСЕК ее Не НЯ она НН НН нн НН ОН ООП

В шт «КІСТ, шин она

Ме нн ви

ІЕС нь САМ у НВО

НН сосни ВН ОН МОМ мий

СОН В не п в В 55

Ві, НАНУ НА нн ХЕ УК

ШСЗ Кк МОМ А, ЗВ ОІВ ИН

ОНИ СЛУ ЗЕ и ВХ КАК

ВЕСНИ Ж сю А ТУ КК КУН БИ поз ом нн не НН ЗМЕН іа Ко З

ВИ КН : МО СК ЕХ ОО паї

Ма нн ПЕОМ ан ТОК нн НИ НН КН ДЕ

КІМ хи ОХ ЗВ, оо НН Є

КЕ м й КВ

КВ ЕЙ под Де ННИ ПИКОкя ККУ а СХ. нн о АН НН КО КОН

БАШИБУИХ». Пд ню ме ПОМ У Я се

ВЕН МОЗ КИ о СИКІ КЕ МК ТО ОТ КВ,

ЖІ Мр пн ин и Ме МИ М

ВИТІК г им ОК или ши НН

Ге ПЛУТОН МК

МКК шт КП І КІ ПА КД НЕ МК

КЕ ВЕЖ СН МІЛА ДУТИ ЗМК В ВК дини вет, МИ ПАННО ТИ ПК МІНА НА

Ки й мі М ТИ ПАМ лювИ м І ТЕТ

БЖ о и о МОНО їе о АК и ІВ НИК МОМ

ОКО пі у А ВИ а я ї КВ сен и нн Ні

ОБ Я МУ ТЕ Мі т НЕ ПУЕ МІМЛЛИ В МА ех

В КО А а З НК НН ОМ А Я

УК В ЕН НК І ТМ я ЗЕ КМ а в НН о Коя піл нти НО в п х

ОК и ПО и хх

ОО в АК ОВ КОД КН "

А А ЯНА т й преса. В г зх. рого ск; Ме що їх іх ще ек аа й

ЩЕ. плен: ВИКОН ДАХ. ой Е іх і ку а МАН. ЩО оейчих зн т

Кк ен Же еся Е ій па КН шо : ре ле: М ин Од й еще Же ча бкен й "В Е м я а еВ о й я ВК З пи СНИ дак, . "з АС Ж, ан З у БМ сова . кан. ШИ с: піки 7

ВН ше ШВИ ри М - із Шк я МА я ко домі З Р

ВІ До оо Е ЦЕ и спав ТИ

Не Вк вхо 14-х в : й й БАК НЕ ША с р; і -Бй ке ЧК У Як те пику ЕЕ

Не кА ЧЕ» ни чо Я Е

МЕ о - Е Ш- ее НАУ не ШИ НК Й ся де Ди и. еНЩЕ: з Гой в схов в на Ше

ІЗ с -Е шли хну и я ее ще й а ди БИ С

НЕ. чн ві ЩІ ше ;З ж Ей з

КЕ і Я ЕЕ Іа ер Е

Не. ї і - Є а т й 4, -- У о й ще : Ко п. ; ЕК: 1-Й Б.Я й й у т с т -, т їх о й ї

НЕ: та нн о

ШЕ асом Як З

У ти дя ше хг, пт а о п ше 7 СУБ вх " с - шо п

Н : : е Ко «, " « шу 7 К: и не Н лк Ки кет шиАННА "

І У

! -к 3

МоШесНітоп і

ЗЗ до ші ; -- Б Спідетнія р і ї ї ; . Н ре в ди ут ее Рава х є й і й З ян Е Баесайе 5 х 4 Й (реессесов фени таж В, Овгемв і

ТЕ » ок Е -ж-сАрістерин й тен А, Ви і і ФОН нн пня і

Я яв одовіот З

КІ К 2 у - - - ! ою то ум. ірік ! і Н п й З : і

Т5А ! І і 12 ря і : фін - В фдров Хриннно й Кавове совно о авікн і

НК 19 Е й т, ) ння В СіОбегевців ! М в ! А-ж Я 77 -- Р дегордіпова їж ; К ж Є - її -- в т ра ; В у . жа Е-4 / пестеетттеттттнттття 0 -- В ОВОВОВ т і ТЕ і р 2 і / й і: / заалиллалянкя Он С ВНС па, -е-КНеке : 0 - ЕХ се ко» - З

Н " і : - вай в Ти В Водченті ! т т в й місі1рік новм

Н !

Ессен нн навів він інн нина і М.ЕА ; ЯР ротою ! ; 10 шу вишк: НИ й

Н л . -- 8 Спюіегавів : г і б 8. пана "Й -- ВР Аепкіпова і Е жов т Ж 0 сей Бевсдіїв І у В, ! Х 4 птн Мннн-к- В Овгеив ! і г: С Н оф / / ї -ж-САвка

ОБ о сни Я

Ж // и А Вами : з 0 Орендна нн нн нн ее і - ве

Е . о--ово ек ки мк. 1 рік ! 00000000 тт ' нерест 00000 вБиОКдоюняв ве і з нь: пис ее: Ши

Ї КК СУ о КЕ

Ї КК КВ. я о ! НН с КВ і і ча ас А НН ! ОНИ п Б ск оо ! Нео ! рее1о і ВН 12 і пра и А их фо Ку са

ВЛ ВЕН іеног| нилнед й ! | (еноє) нипнед .

ШИП ЕЕ ІТ, р рр ру нини шишишн нини пиши шини шшшше ш ! нини : ще | ' ши : 53. Н і Н г нини шени нини шшки г шини шини шишишшшшие ре. ! фор. і ши шини - : -е | Н кі -ої т Н : Ї | Й р

СЕ ві 11.2 ше Енн шшшшшши шин ж | Та

І рт г Я рі і | щі ! : з ши! ! і ше щі ша рр ншмшшшк Її ники нишишшши панни и о ше Мини ше не М с єна Е 00 ЕВ . шов Ж ож о їі ЗУ й Я ОБО Ой і і Б КБ БЕ й нен : р и жи их В УА : Гео: ШИ ШК о М о о ВИ : (еногє) нрлнея ! г : іеногі нішінеЯ !