TWI614034B - 經靶向之脂質體 - Google Patents
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Abstract
本發明為藥物傳遞之領域，且具體而言，為基於陽離子脂質體之藥物傳遞。在實施例中，本發明提供製備適用於將脂質體傳遞至腫瘤(包括腦腫瘤)之配位體靶向之(例如，抗體或抗體片段靶向之)脂質體的方法。在實施例中，該等脂質體傳遞替莫唑胺跨越血腦障壁以用於治療原發性或轉移性腦腫瘤。可用該等脂質體來治療之其他癌症包括：神經內分泌腫瘤、黑素瘤、前列腺癌、頭頸部癌、卵巢癌、肺癌、肝癌、乳癌、泌尿生殖系統癌、胃癌、結腸直腸癌、宮頸癌、脂肉瘤、橫紋肌肉瘤、絨毛膜癌、胰腺癌、視網膜母細胞瘤以及其他類型之癌症。在另一實施例中，該等脂質體傳遞美法侖以用於治療多發性骨髓瘤、其他血液腫瘤、或其他實體腫瘤。在其他實施例中，該等脂質體可傳遞包括阿托品之其他藥物以用於治療有機磷中毒。
Description
本發明為藥物傳遞之的領域，且具體而言，為基於陽離子脂質體之藥物傳遞。在實施例中，本發明提供製備適用於將脂質體傳遞至腫瘤(包括腦腫瘤)之配位體靶向之(例如，抗體或抗體片段靶向之)脂質體的方法。在實施例中，脂質體傳遞替莫唑胺(temozolomide)跨越血腦障壁以用於治療原發性或轉移性腦腫瘤。可用脂質體來治療之其他癌症包括：神經內分泌腫瘤、黑素瘤、前列腺癌、頭頸部癌、卵巢癌、肺癌、肝癌、乳癌、泌尿生殖系統癌、胃癌、結腸直腸癌、宮頸癌、脂肉瘤、橫紋肌肉瘤、絨毛膜癌、胰腺癌、視網膜母細胞瘤、多發性骨髓瘤以及其他類型之癌症。在另一實施例中，脂質體傳遞美法侖(melphalan)用於治療多發性骨髓瘤、其他血液腫瘤、或其他實體腫瘤。在其他實施例中，脂質體可傳遞其他藥物，如阿托品(atropine)、培美曲塞(pemetrexed)或伊立替康(irinotecan)跨越血腦障壁。
原發性腦腫瘤，且特別是神經膠質瘤，為最難治療的癌症之一。除了原發性腫瘤之外，一年會在超過150,000患者中診斷出來自多種原發性源[肺佔多數(60%)、乳房(20%)及黑素瘤(10%)]之轉移性腦癌(Newton H及Malkin M(2010)Neurologic Complications of Systemic Cancer and Antineoplastic Therapy.Informa Healthcare)。因此，迫切需要用於腦癌之改進治療，NCI已經將腦癌視為其前5項基金優先性中的
一項就印證此點。儘管最近在藥物發現及靶向治療方面有所進步，但在過去幾年裡患有腦癌之患者的預後仍缺乏改善，主要是因為治療劑不能跨越血腦障壁(BBB)(Blakeley,J.(2008)：Drug delivery to brain tumors.Current Neurology & Neuroscience Reports，8：235-241)。
用於多形性成膠質細胞瘤(GBM)之目前的標準治療為手術切除，接著用替莫唑胺(TMZ)來放射治療及化療。TMZ為一種第二代烷基化(甲基化)劑，其可引起細胞毒性DNA損傷，且亦被批准用於治療退行性星狀細胞瘤(AA)，且在臨床試驗中用於治療自其他非-CNS實體腫瘤發生的腦轉移。作用機制及藥理性質在最近已有綜述(Tentori L及Graziani G(2009)Recent Approaches to Improve the Antitumor Efficacy of Temozolomide.Current Medicinal Chemistry 16：第245-257頁；及Mrugala MM、Adair J以及Kiem H P(2010)Temozolomide：Expanding Its Role in Brain Cancer.Drugs of Today 46：第833-846頁)。TMZ為耐受相對良好的(Jiang G、Wei Z P、Pei D S、Xin Y、Liu Y Q以及Zheng J N(2011)A Novel Approach to Overcome Temozolomide Resistance in Glioma and Melanoma：Inactivation of MGMT by Gene Therapy.Biochemical and Biophysical Research Communications 406：第311-314頁)，但是骨髓抑制、嗜中性白細胞減少症及血小板減少屬於其副作用，並且治療劑量受到此等副作用之限制。還發現了長期的TMZ給藥方案可引起淋巴細胞減少及機會性感染(Tentori L及Graziani G(2009)Recent Approaches to Improve the Antitumor Efficacy of Temozolomide.Current Medicinal Chemistry 16：第245-257頁)。由經口投與之TMZ的非腫瘤特異性攝入所引起的廣泛組織分佈為此等副作用之主要原因。因此，TMZ的靶向腫瘤之傳遞可以幫助減少此等不良事件。
TMZ已被證實在一部分GBM患者中有存活益處，但是與單獨的放射比較，此種中位值增加僅為2.5個月(Chamberlain MC(2010)
Temozolomide：Therapeutic Limitations in the Treatment of Adult High-Grade Gliomas.Expert Review of Neurotherapeutics 10：第1537-1544頁)。最近的研究亦已經指出60%至75%的GBM患者及50%的AA患者不能受益於TMZ(Chamberlain MC(2010)Temozolomide：Therapeutic Limitations in the Treatment of Adult High-Grade Gliomas.Expert Review of Neurotherapeutics 10：第1537-1544頁)。可以將化療之失敗歸因於許多因素，包括：循環中之短半衰期、藥物藉由p-糖蛋白而自腫瘤中流出、腫瘤對藥物之抗性、以及無法跨越血腦障壁。抵抗TMZ的主要機制為過度表現O6-甲基鳥嘌呤-DNA-甲基轉移酶(MGMT)，此種酶藉由去除O6-鳥嘌呤加合物來修復TMZ誘導之DNA損傷(Mrugala MM、Adair J及Kiem H P(2010)Temozolomide：Expanding Its Role in Brain Cancer.Drugs of Today 46：第833-846頁)。因此，用以例如經由腫瘤特異性傳遞p53腫瘤抑制基因來下調MGMT活性之方法將增強TMZ之治療效果。
因此，急切需要開發用於治療腦癌及其他癌症之新穎治療。本發明藉由提供用於傳遞替莫唑胺的基於陽離子脂質體之藥物傳遞系統來滿足此等需要。
在實施例中，提供製備經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物的方法。此類方法適合地包括：在乙醇中製備包含一或多種陽離子脂質之脂質溶液，製備替莫唑胺之溶液，將脂質溶液與替莫唑胺之溶液混合，將脂質與替莫唑胺之混合物注射水溶液中，進而形成替莫唑胺陽離子脂質體，並且將替莫唑胺陽離子脂質體與配位體混合以形成經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體，其中配位體直接與陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
適合地，配位體為抗體、抗體片段或蛋白質，包括單鏈Fv抗體片
段，如抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)。
適合地，在二甲亞碸(DMSO)中製備替莫唑胺之溶液。適合地，在約1 mM至約200 mM、或約50 mM至約200 mM之濃度下製備替莫唑胺之溶液。
在實施例中，脂質溶液包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)。
適合地，脂質：替莫唑胺之莫耳比為約0.1：1至約5：1，更適合地約0.5：1至約2：1或約1：1。適合地，脂質體之濃度為約1 mM至約2 mM、或約2 mM至約10 mM。
在實施例中，配位體：脂質之重量比為約0.01：1至約0.5：1，更適合地約0.3：1至約0.4：1。在實施例中，TfRscFv：脂質之重量比為約0.33：1。
適合地，提供了一種製備經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物的方法。在實施例中，該方法包括：在乙醇中製備包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)之脂質溶液，製備替莫唑胺之溶液，將脂質溶液與替莫唑胺之溶液混合，將脂質與替莫唑胺之混合物注射水溶液中，進而形成替莫唑胺陽離子脂質體，將替莫唑胺陽離子脂質體與抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)混合以形成經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物，其中TfRscFv直接與陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
在另一實施例中，提供了一種製備經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物的方法。在實施例中，該方法包括：在乙醇中製備包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)之脂質溶液，製備美法侖之溶液，將脂質溶液與美法侖之溶液混合，將脂質與美法侖之混合物注射水溶液中，進而形成美法侖陽離子脂質體，將美法侖陽離子脂質體與一種配位體混合以形成經靶
向之美法侖陽離子脂質體複合物，該配位體包括例如抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)，其中配位體(例如，TfRscFv)直接與陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
在其他實施例中，提供了治療患者之癌症的方法，該方法包括對患者投與經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物。適合地，經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物包含：陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；替莫唑胺；及配位體，其與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
在其他實施例中，提供了治療患者之癌症的方法，該方法包括對患者投與經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物。適合地，經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物包含：陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；美法侖；及配位體，其與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
在實施例中，投與為靜脈內(IV)、瘤內(IT)、病灶內(IL)、經氣溶膠、經皮、經口、內窺鏡、局部、肌肉內(IM)、真皮內(ID)、眼內(IO)、腹膜內(IP)、舌下(SL)、經真皮(TD)、鼻內(IN)、腦內(IC)、器官內(例如肝內)、緩釋植入、或皮下投與、或經由使用滲透泵或機械泵的投與。
適合地，所治療之癌症為腦癌，例如神經膠質瘤或星形細胞瘤。
在其他實施例中，所治療之癌症為轉移性腦腫瘤、神經內分泌腫瘤、黑素瘤、前列腺癌、頭頸部癌、卵巢癌、肺癌、肝癌、乳癌、泌尿生殖系統癌、胃癌、結腸直腸癌、宮頸癌、脂肉瘤、橫紋肌肉瘤、絨毛膜癌、胰腺癌、視網膜母細胞瘤、多發性骨髓瘤以及其他類型之癌症。
在另一實施例中，脂質體傳遞美法侖以用於治療多發性骨髓瘤。
在其他實施例中，脂質體可以傳遞其他藥物，如阿托品、培美曲塞或伊立替康及/或其衍生物。
在實施例中，該方法進一步包括對患者投與與經靶向之替莫唑胺、美法侖、阿托品、培美曲塞或伊立替康陽離子脂質體複合物組合的另一治療。適合地，該另一治療包括投與化療劑、小分子、放射治療或基於核酸之治療。在實施例中，基於核酸之治療包括投與包含表現野生型p53之質體DNA的陽離子脂質體複合物。在實施例中，該另一治療包括在癌細胞中投與下調、改變或另外使MGMT之作用無效的任何分子。在其他實施例中，該另一治療包括投與干擾乙醯膽鹼產生或干擾乙醯膽鹼結合至其受體的任何分子。
在實施例中，提供了治療患者之腦癌的方法，該方法包括對患者投與經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物。適合地，經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物包含：陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；替莫唑胺；及抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)，其與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
亦提供治療患者之癌症的方法，其適合地包括對患者投與藉由本文描述之方法製備之經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物。
在其他實施例中，提供治療患者之多發性骨髓瘤的方法，該方法包括對患者投與經靶向之陽離子脂質體複合物。適合地，經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物包含：陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；美法侖；及抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)，其與該陽離子脂質體直接複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
在其他實施例中，提供了治療患者之任何癌症的方法，該方法包括
對患者投與經靶向之陽離子脂質體複合物。適合地，經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物包含：陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；美法侖；及抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)，其與該陽離子脂質體直接複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
亦提供治療患者之癌症的方法，其適合地包括對患者投與藉由本文描述之方法製備之經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物。
亦提供治療患者之腦癌的方法，該方法包括對患者投與陽離子脂質體複合物及替莫唑胺，該陽離子脂質體複合物包含：陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；質體DNA，其表現野生型p53；以及抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)，其與該陽離子脂質體直接複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
以下參閱附圖詳細描述其他實施例、特徵及實施例之優點、以及各種實施例之結構及操作。
第1圖示出游離的TMZ及如本文所述之包含TMZ的三種陽離子脂質體的U251細胞存活率相對TMZ濃度的關係。
第2圖示出游離的TMZ及如本文所述之包含TMZ的陽離子脂質體的U87細胞存活率相對TMZ濃度的關係。
第3A圖示出游離的TMZ及如本文所述之包含TMZ的經靶向之陽離子脂質體的T98G細胞存活率相對TMZ濃度的關係。
第3B圖示出游離的TMZ及如本文所述之包含TMZ的經靶向之陽離子脂質體的KMS-11細胞存活率相對TMZ濃度的關係。
第4A圖示出使用MaestroTM活體內螢光成像系統的腦腫瘤的螢光強度。
第4B圖示出U87MG-luc2成膠質細胞瘤腫瘤異種移植對用游離的TMZ及scL-TMZ治療的反應之磁共振成像(MRI)圖像。
第5圖示出用游離的TMZ或scL-TMZ治療之後，藉由MRI測量的腦腫瘤之尺寸。
第6圖示出用游離的TMZ及scL-TMZ治療之小鼠之生物發光成像。
第7圖示出用游離的TMZ及scL-TMZ治療之小鼠之其他生物發光成像。
第8圖示出用游離的TMZ及scL-TMZ治療之小鼠之生物發光信號強度的量化。
第9圖示出用游離的TMZ及scL-TMZ治療之小鼠之生物發光信號強度的量化。
第10圖示出用游離的TMZ及scL-TMZ治療期間及之後小鼠的體重測量值。
第11圖示出Kaplan-Meier曲線圖，其證明用游離的TMZ及scL-TMZ治療之動物的長期存活。
第12圖示出Kaplan-Meier曲線圖，其證明用游離的TMZ及不同劑量的scL-TMZ治療之動物的長期存活。
第13圖示出腦腫瘤之重量，其證明游離的TMZ及scL-TMZ之作用。
第14圖示出對細胞凋亡的水平的流式細胞檢測分析之結果，該結果是藉由自腦腫瘤中分離出的單細胞的分裂半胱天冬酶-3抗體染色來測定。
第15圖示出游離的TMZ及scL-TMZ治療之小鼠的腫瘤尺寸。
第16圖示出用游離的TMZ及scL-TMZ治療之小鼠的體重。
第17圖示出自皮下T98G異種移植腫瘤中分離出的CD133+CSC及
CD133-非CSC的TUNEL染色。
第18圖示出藉由來自皮下T98G腦腫瘤的SSEA-1+CSC的分裂半胱天冬酶-3抗體染色所評估的細胞凋亡的水平。
第19圖示出游離的TMZ、如本文所述之scL-TMZ以及scL-TMZ連同表現p53基因的經靶向之陽離子脂質體的組合的T98G細胞存活率相對TMZ濃度的關係。
第20圖示出全身性投與之scL-6FAM-ODN到U251異種移植腦腫瘤的腫瘤靶向傳遞。
第21圖示出全身性投與之後，自U251異種移植腫瘤中分離出的CD133+及CD133-非CSC細胞中攝入的scL傳遞的6FAM-ODN的流式細胞檢測分析。
第22圖示出全身性投與之後，藉由scL傳遞的ODN而在IC GBM中腫瘤特異性靶向CSC。
第23圖示出TMZ添加至細胞之後的XTT分析及IC50值。
第24圖示出使用Xenogen的U87 IC腫瘤之生物發光成像，其展示出SGT-53+TMZ的組合之協同效應。
第25圖示出SGT-53加TMZ對IC U87 GBM之協同效應。
第26圖示出全身性投與之scL-p53加TMZ的組合之協同效應。
第27圖示出Kaplan-Meier曲線圖，其證明在GBM的IC U87模型中，對TMZ治療的SGT-53敏化作用明顯提高存活率。
第28圖示出Kaplan-Meier曲線圖，其證明在GBM(T98G細胞)的IC抗TMZ的模型中，對TMZ治療的SGT-53敏化作用明顯提高存活率。
第29圖示出如所指出的治療後細胞凋亡中的腫瘤細胞的百分比。
第30圖示出T98G抗TMZ的腦腫瘤細胞及SQ異種移植腫瘤中的
MGMT表現藉由全身性複合物p53基因治療而下調。
第31圖示出T98G抗TMZ的顱內腦腫瘤中之MGMT表現藉由全身性複合物p53基因治療而下調。
第32圖示出對於scL-p53的建議給藥時間計劃。
第33圖示出游離的美法侖(MEL)及如本文所述之包含美法侖的經靶向之陽離子脂質體的KMS-11細胞存活率相對美法侖濃度關係。
第34圖示出未囊封之美法侖與沒有經靶向部分的脂質/美法侖及與完全的scL/美法侖複合物、以及與僅為脂質體的比較。
第35圖示出未囊封之美法侖與新鮮的及凍乾的scL/美法侖複合物的比較。
第36圖示出靶向p53治療對KMS-11細胞之作用。
第37圖示出單獨的游離的(未囊封之)美法侖、單獨的scL/美法侖、或游離的(未囊封之)或scL囊封的美法侖加scL-p53的組合對KMS-11細胞之作用。
應瞭解的是，本文示出且描述之具體實施方式為實施例，並且不意圖以任何方式來另外限制本申請之範圍。
本文引用的公開之專利、專利申請、網站、公司名以及科學文獻之全部內容在此以引用之方式併入，以達到如同其各自被確切地及單獨地指出以引用之方式併入一樣。本文引用之任何參考文件與本申請文件之特定教義之間的任何衝突應當以有利於本申請文件之方式來解決。同樣，本領域理解之詞語或短語的定義與如在本申請文件中所確切教授之詞語或短語的定義之間的任何衝突應當以有利於本申請文件之方式來解決。
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形式。本文使用術語「大約」意謂大致地、在...範圍內、粗略地或在...左右。當結合數值範圍來使用術語「大約」時，其藉由擴展到在所列舉數值以上及以下之界限來改變該範圍。通常，本文使用術語「大約」來使一個數值改變到所指出之值以上及以下的20%偏差值。
除非另外定義，否則本文使用之技術及科學術語具有本申請所屬領域之技術人員通常所理解之含義。本文引用了對於熟習此項技術者來說已知的各種方法及材料。
在實施例中，提供了製備經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物的方法。適合地，該方法包括在乙醇中製備包含一或多種陽離子脂質之脂質溶液。製備替莫唑胺之溶液。將脂質溶液與替莫唑胺之溶液混合。將陽離子脂質與替莫唑胺之混合物注射水溶液中，進而形成替莫唑胺陽離子脂質體。然後將替莫唑胺陽離子脂質體與配位體混合以形成經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物。適合地，配位體直接與陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
在實施例中，提供了製備經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物的方法。適合地，該方法包括在乙醇中製備包含一或多種陽離子脂質之脂質溶液。適合地，在含有足量鹽酸以促進溶解美法侖的無水乙醇中製備美法侖之溶液。將脂質溶液與美法侖之溶液混合。將陽離子脂質與美法侖之混合物注射水溶液中，進而形成美法侖陽離子脂質體。然後將美法侖陽離子脂質體與配位體混合以形成經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物。適合地，配位體直接與陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
在實施例中，提供了製備經靶向之阿托品、伊立替康或培美曲塞陽離子脂質體複合物的方法。適合地，該方法包括在乙醇中製備包含一或多種陽離子脂質之脂質溶液。在適當之溶劑如無水乙醇、DMSO、水或緩衝溶液(如磷酸鹽緩衝液或HEPES緩衝液或TRIS緩衝液)中製備
阿托品、伊立替康或培美曲塞之溶液。將脂質溶液與阿托品、伊立替康或培美曲塞之溶液混合。將陽離子脂質與阿托品、伊立替康或培美曲塞之混合物注射水溶液中，進而形成陽離子的阿托品、伊立替康或培美曲塞脂質體。然後將阿托品、伊立替康或培美曲塞陽離子脂質體與配位體混合以形成經靶向之阿托品、伊立替康或培美曲塞陽離子脂質體複合物。適合地，配位體直接與陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
全文可互換地使用術語「複合物」、「奈米複合物」、「脂質體複合物」以及「陽離子脂質體複合物」來指本發明之陽離子脂質體。
如本文所述，替莫唑胺為引起細胞毒性DNA損傷之第二代烷基化(甲基化)劑，並且亦經批准用於治療退行性星狀細胞瘤(AA)。以下示出之替莫唑胺之結構具有實驗式：C6H6N6O2。
替莫唑胺，MW=194.15
在實施例中，替莫唑胺的鹽(例如HCl鹽)亦可以在本文描述之方法中使用。
適合地，在二甲亞碸(DMSO)或其他適當之溶劑中製備替莫唑胺(TMZ)之溶液。可以製備在任何所需濃度下的TMZ之溶液。在實施例中，溶液中的TMZ之濃度為約0.1 mM至約500 mM、更適合地約1 mM至約200 mM、約50 mM至約200 mM、約50 mM至約100 mM、或約50
mM、約60 mM、約70 mM、約80 mM、約90 mM、約100 mM、約110 mM、約120 mM、約130 mM、約140 mM、約150 mM、約160 mM、約170 mM、約180 mM、或約200 mM。
美法侖為屬於氮芥烷基化劑類之抗腫瘤劑。烷基化劑將烷基(CnH2n+1)添加至DNA。在咪唑環的第7號氮原子上，其將烷基連接至DNA的鳥嘌呤鹼基。以下示出之美法侖之結構具有實驗式：C13H18C12N2O2。
美法侖，MW=305.20
適合地，在含有足量鹽酸以促進溶解美法侖的無水乙醇或其他適當之溶劑中，製備美法侖之溶液。可以製備在任何所需濃度下的美法侖之溶液。在實施例中，溶液中的美法侖之濃度為約0.1 mM至約500 mM、更適合地約1 mM至約200 mM、約50 mM至約200 mM、約50 mM至約100 mM、或約50 mM、約60 mM、約70 mM、約80 mM、約90 mM、約100 mM、約110 mM、約120 mM、約130 mM、約140 mM、約150 mM、約160 mM、約170 mM、約180 mM、或約200 mM。
適合地，在適當之溶劑如無水乙醇、DMSO、水或緩衝溶液(如磷酸鹽緩衝液或HEPES緩衝液或TRIS緩衝液)中製備阿托品、伊立替康或培美曲塞之溶液。可以製備在任何所需之濃度下的阿托品、伊立
替康或培美曲塞之溶液。在實施例中，溶液中的阿托品、伊立替康或培美曲塞之濃度為約0.1 mM至約500 mM、更適合地約1 mM至約200 mM、約50 mM至約200 mM、約50 mM至約100 mM、或約50 mM、約60 mM、約70 mM、約80 mM、約90 mM、約100 mM、約110 mM、約120 mM、約130 mM、約140 mM、約150 mM、約160 mM、約170 mM、約180 mM、或約200 mM。
多種脂質適用於本文描述之方法。公開之PCT申請WO 99/25320描述了幾種陽離子脂質體之製備。適合的脂質之實例包括：磷脂醯膽鹼(PC)、磷脂醯胺酸絲胺酸(PS)、以及二油醯三甲基銨丙烷(DOTAP)與二油醯磷脂醯乙醇胺(DOPE)及/或膽固醇(chol)之混合物；二甲基二(十八烷基)溴化銨(DDAB)與DOPE及/或chol之混合物。可以改變脂質之比例，以便最佳化在特異性靶細胞類型中負載TMZ、美法侖、阿托品、培美曲塞或伊立替康及攝入的效率。脂質體可以包含一或多種陽離子脂質與一或多種中性或輔助性脂質之混合物。陽離子脂質對中性或輔助性脂質之所要比例為約1：(0.5至3)、較佳1：(1至2)(莫耳比)。用於在製備本文描述之陽離子脂質體中使用之示範性脂質為本領域中眾所周知的，並且包括，例如1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)。
適用於實踐本文描述之方法的各種脂質之比例之實例包括但不限於：
LipH DDAB/DOPE/Chol 2：1：1莫耳比
(DOTAP=1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷、DDAB=二甲基二(十八烷基)溴化銨；DOPE=二油醯磷脂醯乙醇胺；chol=膽固醇)。
如本文所述，適合地，在製備本文描述之複合物之前，在乙醇(例如，無水乙醇)中製備脂質。
在乙醇中使複合物之脂質組分溶解之後，將溶解在DMSO或其他適合溶劑中的適當量的TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞添加至脂質混合物。適合地，在添加TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞之前及期間，將脂質混合物維持在約50℃至60℃的溫度下。為了製備脂質體，將脂質與TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞之溶液注射水溶液中以形成脂質體。如本文所使用「注射」意謂迫使或驅動脂質及TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞之溶液進入水溶液中。適合地，水溶液為水，但是其他緩衝液及鹽可以存在於水溶液中。在實施例中，水溶液為不含內毒素之LAL試劑水(適合地具有<0.005 EU/ml之內毒素含量)(BioWhittaker)。適合地，使用注射器或類似之裝置進行注射以產生脂質體。在實施例中，在添加脂質/TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞溶液期間，快速攪拌水溶液以便促進脂質體形成。
出乎意料地發現，根據本文描述之方法，不需要擠壓或超聲處理來形成具有所需之尺寸及ζ電勢特徵之脂質體。在實施例中，超聲處理及/或擠壓脂質體確切地自所揭示之方法中排除。在其他實施例中，製備全文描述之經靶向之陽離子脂質體的方法適合地包括或實質上包括列舉之要素。在此類實施例中，認為增加如擠壓之步驟為對此類方法之實質改變，並且因此被確切地自實質上包括列舉之要素的此類方法中排除。
藉由將脂質(在氯仿中)混合在一起，蒸發至乾燥，並且用溶液中
含有藥物的水重構而進行之脂質體製備(用於藥物之脂質體囊封之常見步驟)，不能產生均質群體。藉由光散射的測量得到較差結果，同時品質報告指出累積之擬合誤差高，因此資料品質太差而不能用於累積量分析，並且樣品對於累計量分析來說過於多分散。此種製備之Z-平均數(d-nm)為743.9 nm(數均值)。
然後將根據本文描述之注射方法而形成之替莫唑胺、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞陽離子脂質體與配位體混合，以便形成經靶向之替莫唑胺、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞陽離子脂質體。如全文所述，配位體直接與陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。在其他實施例中，配位體可以被化學偶聯至陽離子脂質體。
如本文所使用，術語「配位體」為指任何適合之經靶向部分，其可以化學偶聯至陽離子脂質體，或直接與該陽離子脂質體締合/複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。在配位體直接與陽離子脂質體締合/複合之實施例中，不使用連接物、間隔物或其他橋聯分子將配位體複合至脂質體。用於在本發明之實踐中的示範性配位體包括但不限於：蛋白質(例如，轉鐵蛋白或葉酸酯)、肽(例如，L-37pA)、抗體、抗體片段(包括Fab'片段及單鏈Fv片段(scFv))及糖(例如，半乳糖)、以及其他靶向分子。
在示範性實施例中，可以使用整個抗體或抗體片段作為配位體來製備本發明之複合物。在適合之實施例中，可以使用抗體片段，包括抗體之Fab片段及單鏈Fv片段(scFv)。一種適合的抗體為抗轉鐵蛋白受體(抗TfR)單克隆抗體，並且適合的抗體片段為基於抗TfR單克隆抗體之scFv(TfRscFv)。scFv含有用於TfR的抗原決定基之完整抗體結合位點，該抗原決定基由此MAb識別為近似分子量26,000之單多肽鏈。藉由將分別來自重鏈及輕鏈之組分VH及VL可變區與適當指定之
肽相連接形成scFv，該肽橋聯第一可變區的C端及第二可變區的N端，順序為VH-肽-VL或VL-肽-VH。亦可在本發明之實踐中使用其他配位體，如全文描述之彼等配位體。
在一實施例中，將半胱胺酸部分添加至scFv的C端。雖然不希望受理論約束，但咸信在化學偶聯及非化學偶聯之實施例中，提供游離巰基之半胱胺酸可增強抗體與脂質體之間的複合物形成。有或沒有半胱胺酸之蛋白質可以在大腸桿菌(E.coli)包含體中表現，然後被重新折疊以產生活性形式之抗體片段。
適合的配位體，例如蛋白質/肽、抗體或抗體片段，為將結合至靶細胞之表面並且較佳結合至在靶細胞上差異表現之受體的彼等配位體。在室溫下，在配位體(例如，蛋白質、抗體或抗體片段)：脂質比例(重量：重量)在約1：10(0.01：1)至約1：50、適合地約1：20至約1：40(w：w)之範圍內時，將配位體與陽離子脂質體混合。適合地，配位體：脂質之重量比為約0.01：1至約0.5：1、約0.3：1至約0.4：1、或約0.33：1，包括此等範圍內的任何比例。允許配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)及脂質體在室溫下孵育短期的時間，通常約10至15分鐘。
如藉由使用Malvern ZETASIZER® 3000或Malvern ZETASIZER® NANO-ZS的動態光散射所測量，脂質體複合物之尺寸通常在約5 nm至約1000 nm之範圍內。參見美國公開專利申請案第2003/0044407號及美國專利申請案第11/520,796號，該申請案之全部揭示內容以引用之方式併入本文。藉由代表均質尺寸群體之單峰來證明脂質體之尺寸。更適合地，添加配位體之前脂質體複合物之尺寸為約5 nm至約500 nm、約5 nm至約300 nm、約5 nm至約200 nm、約5 nm至約100 nm、約10 nm至約70 nm、或約20 nm至約60 nm之範圍內。添加配位體之後脂質體複合物之尺寸適合在約5 nm至約800 nm、約10 nm至約500 nm、約20 nm至約400 nm、約20 nm至約200 nm、或約30 nm至約
200 nm之範圍內。適合地，本文描述之脂質體具有正ζ電勢。適合地，添加配位體之前脂質體的ζ電勢為約1 mV至約200 mV、約1 mV至約100 mV、約10 mV至約100 mV、約20 mV至約60 mV、或約30 mV至約50 mV。添加配位體之後脂質體的適合ζ電勢為約1 mV至約200 mV、約1 mV至約100 mV、約10 mV至約80 mV、約10 mV至約60 mV、或約25 mV至約50 mV。
在實施例中，用於形成如本文所述之複合物之脂質體為空間上穩定之脂質體。空間上穩定之脂質體為親水聚合物(如PEG、聚(2-乙基丙烯酸)、或聚(n-異丙基乙醯胺(PNIPAM)))已被整合進入其中之脂質體。此類修飾之脂質體可以為特別有用的，因為其通常不會如沒有如此修飾之比較脂質體一般，藉由網狀內皮系統很快地自血流中清除。為了製備本發明之空間上穩定的脂質體複合物，如上製備包含替莫唑胺、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞之陽離子脂質體。在約0.1：100(PEG的nmol數：脂質體的nmol數)、適合地約0.5：50、例如約1：40(PEG的nmol數：脂質體的nmol數)之比例下，將生理學上可接受之緩衝液中的PEG聚合物之溶液添加至此種脂質體。所得到之溶液在室溫下孵育一段時間，此段時間足以允許聚合物整合進入脂質體複合物中。然後在室溫下，並且在配位體(例如，蛋白質)：脂質比例在約1：5至約1：40(w：w)之範圍內，將配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)與穩定之脂質體複合物混合。
如本文所述，配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)經由配位體與脂質體之間的相互作用(例如，靜電的、范德華(van der Walls)或其他非化學偶聯的相互作用)適合地直接與脂質體締合(複合)。通常，當非化學偶聯時，不使用連接體或間隔物分子(例如，聚合物或其他分子)來連接配位體及脂質體。
如本文所述，在其他實施例中，例如經由含有馬來醯亞胺基或
其他巰基反應基團之陽離子脂質體與配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)上之硫原子之間的化學相互作用使配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)化學偶聯至陽離子脂質體。直接化學偶聯之此類方法被揭示於2001年10月1日提交的美國專利申請案第09/914,046號中，該申請案之全部揭示內容以引用之方式併入本文。
全文描述了用於在方法及脂質體中使用之脂質：替莫唑胺的適合比例。在示範性實施例中，脂質：替莫唑胺之莫耳比為約0.1：1至約1：100、約0.05：1至約1：50、約1：1至約1：20、約2：1至約10：0.1、約0.5：1至約2：1或約1：1。
全文描述了用於在方法及脂質體中使用之脂質：美法侖的適合比例。在示範性實施例中，脂質：美法侖之莫耳比為約0.1：1至約1：100、約0.05：1至約1：50、約1：1至約1：20、約2：1至約10：0.1、約0.5：1至約2：1或約1：1。全文描述了用於在方法及脂質體中使用之脂質：阿托品、伊立替康或培美曲塞的適合比例。在示範性實施例中，脂質：阿托品、伊立替康或培美曲塞之莫耳比為約0.1：1至約1：100、約0.05：1至約1：50、約1：1至約1：20、約2：1至約10：0.1、約0.5：1至約2：1或約1：1。
對於TMZ脂質體之囊封效率適合在約20%至約100%、約20%至約80%、約20%至約60%、或約20%至約55%囊封的TMZ之範圍內。此為用於使TMZ囊封於脂質體中之乙醇注射方法的令人驚訝、出人意料之結果。
對於美法侖脂質體之囊封效率適合在約20%至約100%、約20%至約80%、約20%至約60%、或約20%至約40%囊封的美法侖之範圍內。此為用於使美法侖囊封於脂質體中之乙醇注射方法的令人驚訝、出人意料之結果。
對於阿托品、伊立替康或培美曲塞脂質體之囊封效率適合在約20%至約100%、約20%至約80%、約20%至約60%、或約20%至約40%
囊封的阿托品、伊立替康或培美曲塞之範圍內。此為用於使阿托品、伊立替康或培美曲塞囊封於脂質體中之乙醇注射方法的令人驚訝、出人意料之結果。
在其他實施例中，脂質體亦可包含胞內干擾肽(endosomal disrupting peptides)，如Sigma-Genosys(The Woodlands,TX)製造的、與脂質體締合的K[K(H)KKK]5-K(H)KKC(HoKC)(HK)(SEQ ID NO：1)肽。胞內干擾肽HoKC可幫助細胞的細胞質中TMZ、美法侖、阿托品、培美曲塞或伊立替康的釋放。在此類實施例中，脂質體亦適合包含5莫耳百分比的總脂質下的MPB-DOPE。因為HoKC肽(K[K(H)KKK]5-K(H)KKC)帶有末端之半胱胺酸，所以包括MPB-DOPE為了允許肽偶聯至脂質體。使用帶有馬來醯亞胺基團之陽離子脂質體(脂質-MPB)與肽之間的偶聯反應來製備脂質-HoKC脂質體。將0.1 mmol的在半胱胺酸上具有游離巰基的肽等分試樣添加至2 mmol的、在10 mM HEPES中之脂質-MPB溶液(pH 7.4)，並且在室溫下旋轉(20至30 r.p.m.)2 h。
根據本發明製備之脂質體複合物可以被配製成藥理學上可接受之製劑用於活體內投與。可以將複合物與藥理學上可相容之媒劑或載體組合。例如，可以將組合物配製用於對哺乳動物靜脈投與，該哺乳動物例如藉由投與複合物中之TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞而受益的人類患者。按適當地尺寸製備複合物，以使得在靜脈注射投與之後，其分佈於整個身體。或者，可以經由投與之其他路線：如瘤內(IT)、病灶內(IL)、經氣溶膠、經皮、經口、內窺鏡、局部、肌肉內(IM)、真皮內(ID)、眼內(IO)、腹膜內(IP)、舌下(SL)、經真皮(TD)、鼻內(IN)、腦內(IC)、器官內(例如肝內)、緩釋植入、或皮下投與、或經由使用滲透泵或機械泵的投與來傳遞複合物。經由此類方法來製備製劑以用於傳遞及使用此類方法的傳遞是本領域眾所周
知的。
可以由以下各項針對靶細胞類型來最佳化複合物：脂質之選擇及比例、配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)與脂質體之比例、配位體及脂質體與TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞之比例，以及配位體的選擇。
根據本發明之方法製備之複合物可以呈套組的形式被提供來用於傳遞TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞。適合的套組可以單獨地包括：適合之容器、經靶向之TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞陽離子脂質體複合物(適合地乾燥、凍乾的粉末)以及適合之緩衝液。可以在無菌條件下，按適當之順序混合組分，並且在製備之後，在合理時間段內對患者投與，通常約30分鐘至約24小時。適合地，在無菌注射用水連同適當的緩衝液、滲透性控制劑等中製備脂質體。適合地，將全部的複合物配製成乾燥粉末(凍乾的)(例如，參見美國公開專利申請案第2005/0002998號，該申請案之全部揭示內容以引用之方式併入本文)。
本發明之陽離子脂質體複合物適合地在其表面上包含抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體分子(TfRscFv)。已經測定到此種靶向分子增強了跨越血腦障壁之傳遞及向腦癌細胞之靶向傳遞。經靶向之脂質體亦用於在活體內治療其他癌症及用於傳遞其他藥物。
亦提供根據全文描述之方法而製備之陽離子脂質體複合物。舉例來說，提供了配位體靶向之(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段靶向之)陽離子脂質體複合物，該等複合物包含陽離子脂質體、配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)以及TMZ、美法侖、阿托品、培美曲塞或伊立替康，其中配位體直接與陽離子脂質體複合/締合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞可以被囊封於陽
離子脂質活體內(即，在脂質體的親水、含水的內部)、包含於陽離子脂質體之烴鏈區內、與陽離子脂質體的內或外單層(例如，頭基區)締合、或其任何之組合。適合地，雖然亦可使用包含幾個同心雙分子層之多層脂質體，但本發明之陽離子脂質體為單層脂質體(即，單個雙分子層)。本發明之單個雙分子層陽離子脂質體包括內部含水體積，其中可以囊封TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞。其還包括具有烴鏈區(即，脂質之脂質鏈區)之單個雙分子層，在該烴鏈區可以含有TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞。另外，TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞可以與脂質體膜的內部單層及/或外部單層(即，脂質的頭基區)兩者之一或兩者複合或締合。在其他實施例中，TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞可以被囊封/締合/複合在本發明之陽離子脂質體複合物之此等區的任何區或所有區中。
在其他實施例中，提供了包含全文描述之配位體靶向之陽離子脂質體複合物的藥物組合物。在適合的實施例中，藥物組合物進一步包含選自由以下組成之群的一或多種賦形劑：一或多種抗菌劑(例如，兩性黴素B、金黴素、慶大黴素、新黴素)、一或多種防腐劑(苄索氯銨、EDTA、甲醛、2-苯氧乙醇)、一或多種緩衝液(例如，磷酸鹽緩衝液、硼酸鈉、氯化鈉)、一或多種表面活性劑(聚山梨醇20、80)、一或多種蛋白質穩定劑(例如，白蛋白、乳糖、谷胺酸鉀)、糖(蔗糖或右旋糖)、以及佐劑(例如，氫氧化鋁、磷酸鋁)。其他賦形劑是本領域中眾所周知的，並且可以易於在本發明之實踐中使用。
亦提供包含第一配位體靶向之陽離子脂質體複合物的藥物組合物，該複合物包含陽離子脂質體、配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)以及TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞，其中配位體直接與陽離子脂質體複合/締合，但並非與該陽離子脂質體化
學偶聯。在其他實施例中，配位體可以化學偶聯至陽離子脂質體。藥物組合物還適當地包含第二配位體靶向之陽離子脂質體複合物，該複合物包含陽離子脂質體、配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)以及一或多種核酸分子(包括質體DNA、siRNA或反義核酸)，其中配位體直接與陽離子脂質體複合/締合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。(參見美國專利第7,780,822號及美國公開專利申請案第2007/0065449號，該申請案之全部揭示內容以引用之方式併入本文)。在其他實施例中，組合物亦可包含配位體靶向之陽離子脂質體複合物，該複合物包含配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)及一或多種小分子(參見美國公開專利申請案第2007/0231378號，該申請案之全部揭示內容以引用之方式併入本文)、或一或多種顯影劑(參見美國公開專利申請案第2007/0134154號，該申請案之全部揭示內容以引用之方式併入本文)，其中配位體直接與陽離子脂質體複合/締合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。在其他實施例中，在此類組合物中配位體可以化學偶聯至陽離子脂質體。
亦提供包含第一配位體靶向之陽離子脂質體複合物的藥物組合物，該複合物包含陽離子脂質體、配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)以及TMZ、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞，其中配位體直接與陽離子脂質體複合/締合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。在其他實施例中，配位體可以化學偶聯至陽離子脂質體。藥物組合物亦適合包含第二配位體靶向之陽離子脂質體複合物，該複合物包含陽離子脂質體、配位體(例如，蛋白質/肽、抗體或抗體片段)、以及一或多種核酸分子(包括質體DNA、siRNA或反義核酸)、一或多種小分子、或一或多種顯影劑(包括超順磁性氧化鐵、或釓)，其中核酸分子、小分子或顯影劑在癌細胞中下調、改變或另外使MGMT之作用失效。
在其他實施例中，提供了治療患者之癌症的方法。適合地，此類方法包括對患者投與如本文所述之經靶向之陽離子脂質體複合物。適合地，根據全文描述之方法來製備複合物。
在實施例中，治療之方法包括對患者投與經靶向之替莫唑胺或美法侖陽離子脂質體複合物，其中陽離子脂質體複合物包含：陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；替莫唑胺或美法侖；及配位體，其與陽離子脂質體複合、但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
如全文所述，配位體適合地為抗體、抗體部分或蛋白質，包括單鏈Fv抗體片段。在示範性實施例中，單鏈Fv抗體片段為抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)。
亦提供治療患者之有機磷中毒(即，神經毒氣中毒)的方法，該方法包括對患者投與經靶向之阿托品陽離子脂質體複合物，其中經靶向之阿托品陽離子脂質體複合物包含：陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；阿托品；及配位體，其與陽離子脂質體直接複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。本文描述了示範性配位體。
適合地，使用本文描述之方法，以約1 mg/m2至約1000 mg/m2劑量，更適合地以約10 mg/m2至約500 mg/m2、或約50 mg/m2至約400 mg/m2、約80 mg/m2至約300 mg/m2、約50 mg/m2至約250 mg/m2、約50 mg/m2至約250 mg/m2、或約50 mg/m2、約60 mg/m2、約70 mg/m2、約80 mg/m2、約90 mg/m2、約100 mg/m2、約110 mg/m2、約120 mg/m2、約130 mg/m2、約140 mg/m2、約150 mg/m2、約160 mg/m2、約170 mg/m2、約180 mg/m2、約190 mg/m2、約200 mg/m2、約210 mg/m2、約220 mg/m2、約230 mg/m2、約240 mg/m2、約250 mg/m2、約260 mg/m2、約270 mg/m2、約280 mg/m2、約290 mg/m2、或約300
mg/m2之劑量對患者投與替莫唑胺。
適合地，使用本文描述之方法，以約1 mg/m2至約500 mg/m2之劑量，更適合地以約1 mg/m2至約100 mg/m2、或約1 mg/m2至約50 mg/m2、約1 mg/m2至約30 mg/m2、約5 mg/m2至約20 mg/m2、約6 mg/m2至約16 mg/m2、或約1 mg/m2、約2 mg/m2、約3 mg/m2、約4 mg/m2、約5 mg/m2、約6 mg/m2、約7 mg/m2、約8 mg/m2、約9 mg/m2、約10 mg/m2、約11 mg/m2、約12 mg/m2、約13 mg/m2、約14 mg/m2、約15 mg/m2、約16 mg/m2、約17 mg/m2、約18 mg/m2、約19 mg/m2、約20 mg/m2、約21 mg/m2、約22 mg/m2、約23 mg/m2、約24 mg/m2、或約25 mg/m2之劑量對患者投與美法侖。
適合地，使用本文描述之方法，以約1 mg/m2至約1000 mg/m2之劑量，更適合地以約10 mg/m2至約500 mg/m2、或約50 mg/m2至約400 mg/m2、約80 mg/m2至約300 mg/m2、約100 mg/m2至約250 mg/m2、或約50 mg/m2、約60 mg/m2、約70 mg/m2、約80 mg/m2、約90 mg/m2、約100 mg/m2、約110 mg/m2、約120 mg/m2、約130 mg/m2、約140 mg/m2、約150 mg/m2、約160 mg/m2、約170 mg/m2、約180 mg/m2、約190 mg/m2、約200 mg/m2、約210 mg/m2、約220 mg/m2、約230 mg/m2、約240 mg/m2、約250 mg/m2、約260 mg/m2、約270 mg/m2、約280 mg/m2、約290 mg/m2、或約300 mg/m2之劑量對患者投與阿托品、伊立替康或培美曲塞。
在實施例中，使用本文描述之方法，以約0.01至約100 mg之劑量，更適合地以約0.1 mg至約50 mg、或約1 mg至約40 mg、約1 mg至約30 mg、約1 mg至約20 mg、約1 mg至約10 mg、約2 mg至約6 mg、或約1 mg、約2 mg、約3 mg、約4 mg、約5 mg、約6 mg、約7 mg、約8 mg、約9 mg、約10 mg、約11 mg、約12 mg、約13 mg、約14 mg、約15 mg、約16 mg、約17 mg、約18 mg、約19 mg或約20 mg之
劑量對患者投與阿托品(適合地肌肉內投與)。
如本文所述，在實施例中，用於在本文描述之方法中使用的陽離子脂質體中之脂質：替莫唑胺、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞之莫耳比為約0.1：1至約5：1。更適合地，在陽離子脂質體中之脂質：替莫唑胺、美法侖、阿托品、伊立替康或培美曲塞之莫耳比為：約0.1：1至約1：100、約0.05：1至約1：50、約1：1至約1：20、約2：1至約10：0.1、約0.5：1至約2：1、或約1：1。
用於本文描述之方法中的陽離子脂質體中配位體：脂質之重量比適合地為約0.01：1至約0.5：1。適合地，陽離子脂質體中配位體：脂質之重量比為約0.01：1至約0.5：1、約0.3：1至約0.4：1、或約0.33：1，包括此等範圍內的任何比例。
適合的投與方法包括但不限於：靜脈內(IV)、瘤內(IT)、病灶內(IL)、經氣溶膠、經皮、經口、內窺鏡、局部、肌肉內(IM)、真皮內(ID)、眼內(IO)、腹膜內(IP)、舌下(SL)、經真皮(TD)、鼻內(IN)、腦內(IC)、器官內(例如肝內)、緩釋植入、或皮下投與、或經由使用滲透泵或機械泵的投與。其可以呈大丸劑或呈浸劑被投與。在其他實施例中，可以使用本文描述之或另外在本領域中已知的各種方法，將配位體化學偶聯至陽離子脂質體。
可以使用本發明描述之方法來治療的示範性癌症包括但不限於：頭頸部癌、乳癌、前列腺癌、胰腺癌、腦癌(包括成膠質細胞瘤及星形細胞瘤)、神經內分泌癌、宮頸癌、肺癌、肝癌、脂肉瘤、橫紋肌肉瘤、絨毛膜癌、黑素瘤、視網膜母細胞瘤、卵巢癌、泌尿生殖系統癌、胃癌、結腸直腸癌、多發性骨髓瘤以及血癌。
如本文所述，令人驚訝地發現藉由所揭示之方法來製備之經靶向之陽離子脂質體能夠跨越血腦障壁。通常，此種障壁係指定來治療癌症及腦的其他疾病或病狀的治療，或被指定來傳遞藥物至腦的其他
治療之重大障礙。因此，在實施例中，在本文描述之方法適用於成功治療腦癌(包括神經膠質瘤)，並且通常用於傳遞藥物跨越血腦障壁。
在另一實施例中，本文描述之方法亦可被用作用於有機磷中毒之治療。
如本文所述，令人驚奇地發現藉由所揭示之方法來製備之經靶向之陽離子脂質體能夠有效傳遞足量的TMZ至抵抗標準的未囊封TMZ的靶腫瘤細胞，以便克服此等細胞的固有抗性，此可能為由於活化之MGMT，進而導致現在此等腫瘤細胞對TMZ反應。
如本文所述，令人驚奇地發現藉由所揭示之方法來製備之經靶向之陽離子脂質體能夠誘導腫瘤細胞中的細胞死亡(細胞凋亡)，該腫瘤細胞對沒有投與經靶向之陽離子脂質體的TMZ的殺傷作用有抗性。
如本文所述，令人驚奇地發現，不考慮此等細胞對沒有投與經靶向之陽離子脂質體的TMZ反應，藉由所揭示之方法來製備之經靶向之陽離子脂質體能夠誘導腫瘤中癌幹細胞(CSC)以及分化的癌細胞(非CSC)中之細胞凋亡。
如本文所述，令人驚奇地發現在腫瘤中，在癌幹細胞(CSC)中藉由所揭示之方法來製備之經靶向之陽離子脂質體誘導的細胞凋亡的水平成比例地高於分化癌細胞(非CSC)中的水平。
如本文所述，令人驚奇地發現用藉由所揭示之方法來製備之經靶向之陽離子脂質體來治療腫瘤，不僅誘導腫瘤生長抑制，還導致腫瘤消退，並且甚至在已經結束治療之後，亦可維持所述之此種反應。
如本文所述，令人驚奇地發現用藉由所揭示之方法來製備之經靶向之陽離子脂質體來治療腫瘤細胞，不僅誘導腫瘤生長抑制，還導致腫瘤消退，並且甚至在已經結束治療之後，亦可維持所述之此種反應。
在適合的實施例中，該方法進一步包括對患者投與與經靶向之
替莫唑胺陽離子脂質體複合物組合的另一治療。可以使用的示範性治療包括投與化療劑、小分子、放射治療或基於核酸之治療。示範性化療劑包括多西他賽(docetaxel)、米托蒽醌(mitoxantrone)、阿黴素以及吉西他濱(gemcitabine)。示範性小分子包括但不限於：甲磺酸伊馬替尼(GLEEVECTM)、鹽酸厄洛替尼(TARCEVATM)、蘋果酸舒尼替尼(SU11248,SUTENTTM)以及吉非替尼(IRESSATM)。示範性基於核酸-酸之治療(包括腫瘤抑制基因、反義寡核苷酸或siRNA)包括揭示於美國公開專利申請案第2007/0065499號及美國專利第7,780,882中號的彼等核酸-酸，每個該申請案之全部揭示內容以引用之方式併入本文。在適合的實施例中，如在美國專利第7,780,882號中所述，基於核酸之治療包括投與陽離子脂質體複合物，該陽離子脂質體複合物包含編碼wtp53基因並且經由TfRscFv(scL-p53)經靶向之質體DNA。
亦提供治療患者之腦癌的方法，該方法包括對患者投與如在美國專利第7,780,882號中所述之陽離子脂質體複合物。適合地，該複合物包含：陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；質體DNA，其表現野生型p53；及抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)，其與陽離子脂質體直接複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。該方法進一步包括適合地在與陽離子脂質體複合物同一時間或在投與陽離子脂質體複合物之後，投與替莫唑胺。
對於相關領域一般技術人員來說容易顯而易見的是，對本文描述之方法及應用的其他適合的修改及調整可以在不脫離本發明或其任何實施例之範圍之情況下做出。現已詳細描述了本發明，藉由參考以下實例將更清楚地理解本發明，本發明所包括的此等實例僅為了說明本發明，而不意圖限制本發明。
實例1
製備包含替莫唑胺之陽離子脂質體
材料：DOTAP(1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷，鹽酸鹽)
自Avanti Polar Lipids,Inc.獲得，目錄號(#)890890E，MW 698.55
濃度：25 mg/mL乙醇溶液
在使用之前，用無水乙醇稀釋脂質至20 mg/ml
DOPE(1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺)
自Avanti Polar Lipids,Inc.獲得，目錄號(#)850725E，MW 744.04
濃度：25 mg/mL乙醇溶液。
在使用之前，用無水乙醇稀釋脂質至20 mg/ml
替莫唑胺(TMZ，M.W.194.15)，粉末
自Sigma獲得，目錄號(#)T2577-100 mg
將TMZ溶解於純DMSO中至所需之濃度。舉例來說，19.415 mg/ml=100 mM的TMZ；28 mg/ml=144.218 mM的TMZ
超純、無內毒素的LAL試劑水(例如BioWhittaker，目錄號(#)W50-500，內毒素<0.005 EU/ml)
注射器：漢密爾頓(Hamilton)氣密注射器，具有22號針頭，部件#81365)的1 ml(漢密爾頓#81230)
程序：
1)藉由將TMZ溶解在DMSO中至所需之濃度，並藉由高速渦旋5 min至10 min來製備新鮮的TMZ溶液(必須為澄清的)。在室溫下保持該溶液，直至用於與脂質混合。
2)在37℃下將脂質溶液置放10 min至15 min。然後將脂質溶液置放於65℃水浴中，並偶爾搖動5 min。
3)製備脂質-TMZ：將具有攪拌棒的棕色玻璃瓶置放於被設置在50℃至60℃的熱板上。當在無飛濺的高速下攪拌時，按以下順序將脂質及TMZ添加至瓶中。應注意的是，如本文所述之其他組分比例及濃度可以使用如下所示的相同方案來製備。
對於0.5：1(脂質：TMZ)莫耳比(2 mM TMZ在製劑中)
DOTAP 87.5 μl(的20 mg/ml)=2.5 μmol或1.75 mg
DOPE 93.75 μl(的20 mg/ml)=2.5 μmol或1.875 mg
添加TMZ-HCl溶液，100 μl(的19.41 mg/ml)=10 μmol，在添加所有3種組分之後，連續攪拌3 min。
對於1：1(脂質：TMZ)莫耳比(2 mM TMZ在製劑中)
DOTAP 175 μl(的20 mg/ml)=5 μmol或3.5 mg
DOPE 187.5 μl(的20 mg/ml)=5 μmol或3.75 mg
添加TMZ-HCl溶液，100 μl(的19.41 mg/ml)=10 μmol，在添加所有3種組分之後，連續地攪拌3 min。
對於1：1(脂質：TMZ)莫耳比(8 mM TMZ在製劑中)
DOTAP 560 μl(的25 mg/ml)=20 μmol或14 mg
DOPE 600 μl(的25 mg/ml)=20 μmol或15 mg
添加TMZ溶液，277.36 μl(的28 mg/ml)=40 μmol，在添加所有3種組分之後，連續地攪拌3 min。
對於2：1(脂質：TMZ)莫耳比(2 mM TMZ在製劑中)
DOTAP 350 μl(的20 mg/ml)=10 μmol或7 mg
DOPE 375 μl(的20 mg/ml)=10 μmol或7.5 mg
添加TMZ-HCl溶液，100 μl(的19.41 mg/ml)=10 μmol，在添加所有3種組分之後，連續地攪拌3 min。
4)在水浴中，在具有攪拌棒之棕色玻璃瓶中，將4 mL LAL水溫熱至65℃。在添加脂質-TMZ溶液之前，立即將瓶移至熱板(50℃至60℃)。在無飛濺之高速下攪拌水，攪拌幾秒，以便自攪拌棒上去除氣泡。
5)將該水保持在熱板上。在脂質添加期間，在高速(無飛濺)下連續攪拌水。如上混合脂質與TMZ之後，立即並且盡可能快地使用漢密爾頓注射器用於注射，將混合物注射熱板(50℃至60℃)上的熱水中直接進入渦旋之中心。在添加脂質混合物同時寬鬆地遮蓋之後，在高速(無飛濺)下繼續攪拌1 min。
6)將玻璃瓶移至室溫攪拌板，並且繼續緩慢地攪拌直至寬鬆遮蓋之溶液冷卻至20℃至25℃(室溫)。
7)用室溫LAL水將體積調至5 ml。
8)若需要，則使用0.22 μm孔的Milex GV過濾器過濾溶液。
9)若需要，則測量粒徑及ζ電勢。
此等製備方法之結果證明了大致至少30%至40%、適合地至少50%至55%的TMZ及脂質體之負載量，該TMZ及脂質體具有約20 nm至約60 nm的粒徑及約30 mV至約50 mV之ζ電勢。
使用根據實例1中描述之程序來製備之包含TMZ的陽離子脂質體，藉由簡單混合組分並且無化學偶聯來製備如本文所述之配位體靶向之TMZ陽離子脂質體複合物。根據以下一般程序製備該複合物：向脂質體-水(或緩衝液)，添加適當量的經靶向部分以給予所需之比例，並且藉由輕輕倒置來混合5至10秒。經靶向部分可以為配位體，其包括但不限於轉鐵蛋白或葉酸酯或其他蛋白質。經靶向部分亦
可為經靶向之細胞表面受體之抗體或抗體片段，其包括但不限於轉鐵蛋白或HER-2受體(例如，TfRscFv)。將此種混合物在室溫下保持10至15分鐘(在大致5分鐘之後，再次輕輕倒置5至10秒)。為產生所需的最終體積，將經靶向部分-脂質-TMZ摻合物與得到所需的體積需要的任何體積(包括零體積)的水(適合地去離子水)或任何pH的緩衝液(包括但不限於Tris緩衝液、HEPES緩衝液或磷酸鹽緩衝鹽水)混合，並且輕輕倒置5至10秒來混合。將此種混合物在室溫下保持10至15分鐘(在大致5分鐘之後，再次輕輕倒置5至10秒)。
通常，用於活體外分析時，希望的是最終複合物中TMZ之量為每個孔約1 μM至300 μM之範圍內；用於活體內用途時，希望每次注射提供約1 mg/kg至約50 mg/kg的TMZ。用於活體內時，最後添加右旋糖或蔗糖至約1%至50%(V：V)最終濃度的右旋糖或蔗糖，適合地5%右旋糖或10%蔗糖，並且藉由輕輕倒置來混合5至10秒。將此種混合物在室溫下保持10至15分鐘(在大致5分鐘之後，再次輕輕倒置5至10秒)。
在1：30(抗體片段：脂質體，w：w)的適合比例及1：1脂質體：TMZ(莫耳比)下的具體實例如下：對於大致700 μL之最終體積，在每次注射25 mg/kg之TMZ濃度下，將319 μL之脂質：TMZ(8 mM原料)與305 μL的抗體片段(在0.2 mg/mL的抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段[TfRscFv]濃度下)混合。添加6 μL之水或緩衝液，並且作為最後一步，添加70 μL的50%右旋糖或無水或緩衝液，以及140 μL的50%蔗糖。
在1：30(抗體片段：脂質體，w：w)之較佳比例及1：1脂質體：TMZ(莫耳比)下的第二種具體實例如下：對於大致1.8 mL的最終體積，在每次注射25 mg/kg的TMZ濃度下，將1276 μL之脂質：TMZ(2 mM原料)與305 μL的抗體片段(在0.2 mg/mL的抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段
[TfRscFv]濃度下)混合。添加39 μL的水或緩衝液，並且作為最後一步添加180 μL的50%右旋糖。
在1：30(抗體片段：脂質體，w：w)的較佳比例及1：1脂質體：TMZ(莫耳比)下的另一具體實例如下：對於大致400 μL的最終體積，在每次注射5 mg/kg的TMZ濃度下，將280 μL之脂質：TMZ(2 mM原料)與64 μL的抗體片段(在0.2 mg/mL的抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段[TfRscFv]濃度下)混合。添加16.5 μL的水或緩衝液，並且作為最後一步添加40 μL的50%右旋糖。
如藉由使用Malvern電位儀ZS動態光散射所測定，藉由該方法來製備之最終複合物之尺寸(數均值)為約10至800 nm之間、適合地約20至400 nm、最適合地約25至200 nm，並具有介於約1與100 mV之間、更適合地10至60 mV、並且最適合地25至50 mV的ζ電勢。此種尺寸足夠小，可以有效地藉由腫瘤毛細血管床或跨越血腦障壁，並且到達腫瘤細胞。
自ATCC(Manassas，VA)中獲得人類多形性成膠質細胞瘤(GBM)細胞系U87MG及T98G。U87自IV級成膠質細胞瘤中得到，並且帶有wtp53(Van Meir EG、Kikuchi T、Tada M、Li H、Diserens A C、Wojcik B E、Huang H J S、Friedmann T、Detribolet N以及Cavenee W K(1994)Analysis of the P53 Gene and Its Expression in Human Glioblastoma Cells.Cancer Research 54：第649-652頁)。穩定表現螢光素酶基因的U87MG的一種型式已經自Caliper Life Sciences獲得以用於活體內研究中，其中腫瘤生長及反應將藉由IVIS®成像系統，Xenogen來監視。自Frederick(Frederick，MD)之美國癌症研究所的癌
症治療及診斷部門腫瘤存庫中獲得人類GBM細胞系U251。在用10%熱滅活的胎牛血清(Omega Scientific,Tarzana,CA)、2 mmol/L L-麩胺醯胺(Mediatech,Manassas,VA)及各為50 μg/mL的青黴素、鏈黴素及新黴素(PSN)補充的改進IMEM(Gibco，Grand Island，NY；U87及U87MG-luc2細胞)、MEM(Mediatech Manassas，VA；T98G細胞)、或RPMI 1640培養基(Gibco；U251細胞)中，將細胞維持在37℃下5% CO2環境中。在藉由使用TrypLE Express(Gibco)的胰酶消化的下一段或進一步實驗之前，使細胞生長至70%至80%融合。3'-[1-(苯胺基-羰基)-3,4-四唑]-雙(4-甲氧基-6-硝基)苯磺酸鈉(XTT)購自Polysciences(Warrington,PA)。
在用10%熱滅活的胎牛血清、2 mmol/L L-麩胺醯胺及各為50 μg/mL之各青黴素、鏈黴素及新黴素(PSN)補充的RPMI 1640培養基中，將人類多發性骨髓瘤細胞系KMS-11維持在37℃下5% CO2環境中。在下一段或進一步實驗之前，使細胞生長至70%至80%融合。此等細胞在懸浮液中生長，並且不呈單層。
U87MG被分類為對TMZ敏感(Patil R、Portilla-Arias J、Ding H、Inoue S、Konda B、Hu J W、Wawrowsky K A、Shin P K、Black K L、Holler E以及Ljubimova J Y(2010)Temozolomide Delivery to Tumor Cells by a Multifunctional Nano Vehicle Based on Poly(Beta-L-Malic Acid).Pharmaceutical Research 27：第2317-2329頁)。建立了良好的GBM的正位小鼠模型(Liu Y、Lang F、Xie X、Prabhu S、Xu J、Sampath D、Aldape K、Fuller G以及Puduvalli V K(2011)Efficacy of Adenovirally Expressed Soluble TRAIL in Human Glioma Organotypic Slice Culture and Glioma Xenografts.Cell Death & Disease 2)。當在無胸腺裸鼠中顱內注射5×105細胞時，在10天內U87MG細胞再生地發育成腫瘤。小鼠在30至40天內死於腫瘤負擔。亦自人類成膠質細胞瘤中
分離出T98G。然而，已知此種細胞系為抗TMZ的(Patil R、Portilla-Arias J、Ding H、Inoue S、Konda B、Hu J W、Wawrowsky K A、Shin P K、Black K L、Holler E以及Ljubimova J Y(2010)Temozolomide Delivery to Tumor Cells by a Multifunctional Nano Vehicle Based on Poly(Beta-L-Malic Acid).Pharmaceutical Research 27：第2317-2329頁)，並且帶有p53基因的突變形式(Van Meir EG、Kikuchi T、Tada M、Li H、Diserens A C、Wojcik B E、Huang H J S、Friedmann T、Detribolet N以及Cavenee W K(1994)Analysis of the P53 Gene and Its Expression in Human Glioblastoma Cells.Cancer Research 54：第649-652頁)。經由在MatrigelTM中皮下接種5-10×106個細胞來誘導T98G異種移植腫瘤(Torres S、Lorente M、Rodriguez-Fornes F、Hernandez-Tiedra S、Salazar M、Garcia-Taboada E、Barcia J、Guzman M以及Velasco G(2011)A Combined Preclinical Therapy of Cannabinoids and Temozolomide Against Glioma.Molecular Cancer Therapeutics 10：第90-103頁)。兩種細胞系均可提升TfR表現(Sang H、Kelley P Y、Hatton J D以及Shew J Y(1989)Proto-Oncogene Abnormalities and Their Relationship to Tumorigenicity in Some Human Glioblastomas.Journal of Neurosurgery 71：第83-90頁)。
進行研究來比較標準游離的(未囊封之)TMZ及未配位之含有TMZ之脂質體(脂質-TMZ)之療效；脂質-TMZ如上在實例1中所述，使用2 mM濃度之脂質體來製備。脂質-TMZ分子的ζ電勢在35.6 mV至40.1 mV範圍。使用的TMZ濃度為1 μM至約250 μM變化。脂質體對TMZ之比例為0.5：1、1：1或2：1(莫耳比)。
將人類腦腫瘤衍生之U251細胞按每個孔2×103個一式三份接種在96孔板中。在孵育過夜之後，用無血清培養基代替該培養基，並用100 μL的規定濃度之脂質-TMZ或無TMZ覆蓋，孵育5 h，然後用胎牛
血清補充。在另外孵育91 h之後，藉由如先前所述之XTT分析來測定細胞活力(Rait A、Pirollo KF、Rait V等Inhibitory effects of the combination of HER-2 antisense oligonucleotide and chemotherapeutic agents used for the treatment of human breast cancer.Cancer Gene Ther 2001；8：728-39.)。在450 nm處使用酶標儀(Bio-Rad,Hercules,CA)來測定與細胞活力相關的甲臢(formazan)吸收。自藥物濃度對數相對存活細胞分數的關係之圖形中內插IC50值(導致50%細胞死亡之藥物濃度)。
第1圖證明在人類腦腫瘤(GBM)細胞系U251中，與游離的TMZ之作用相比，用如本文所述之脂質體囊封的TMZ之活體外治療導致人類GMB細胞中IC50值的明顯減小。然而，在用以治療細胞的TMZ之濃度下，未囊封之TMZ幾乎不具有細胞殺傷作用，當囊封於脂質體中時，50%的細胞分別在僅46.3 μM、28.8 μM及16 μM的TMZ濃度下，在0.5：1、1：1及2：1之脂質/TMZ莫耳比下被殺死。脂質與TMZ之比例越高，細胞殺傷作用增加越多，進而產生較低的IC50值。熟習此項技術者所眾所周知的是，游離的未囊封之TMZ為最常用於治療患者之腫瘤的藥物形式。
第2圖中示出使用人類GBM腫瘤細胞系U87時的類似結果，其中比較了游離的TMZ以及脂質體與TMZ之莫耳比為1：1及2：1之脂質-TMZ。又，未囊封之TMZ幾乎對此等腦腫瘤細胞不具有細胞殺傷作用。相比之下，當使用本發明之方法以1：1或2：1(脂質：TMZ)之莫耳比囊封於脂質體中時，分別僅11.4及21.5 μM的TMZ濃度就導致明顯的腫瘤細胞死亡。
如上在實例1至2中所述，使用抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段(TfRscFv)作為經靶向部分、1：1之脂質：TMZ莫耳比(尺寸=46.2 nm；ζ電勢=42.5 mV)(脂質體濃度=2 mM)，以及1：30(w：w)的TfRscFv與脂質體比例來製備scL-TMZ複合物。scL-TMZ複合物之尺寸為約27.5 nm。使用XTT分析，在抗TMZ的人類腦腫瘤細胞系T98G中，將scL-TMZ的活體外細胞殺傷能力與游離的、未囊封之TMZ進行比較。
第3A圖示出與游離的TMZ比較，腫瘤經靶向之scL-TMZ複合物的抗癌療效明顯提高。游離的TMZ具有>1000 μM的IC50值。相比之下，當根據本文描述之方法製備，並且藉助腫瘤靶向複合物傳遞至腫瘤細胞時，至少不到20倍的TMZ有效地殺死了癌症細胞。此為尤其重要的，因為此種GBM細胞系在本領域中眾所周知是對TMZ的殺傷作用有抗性的。抗性的此種反轉為由於藉助將靶向配位體(蛋白質、抗體或抗體片段)結合至其在細胞上的配位體並且經由被動方式或藉由像受體介導的胞吞作用的主動運輸機制來觸發攝入，進而將TMZ有效負載有效的傳遞及攝入到腫瘤細胞中。此種方法用藥物來「淹沒」細胞，進而克服了腫瘤細胞在位修復由TMZ引起的DNA損壞的機制(如上調MGMT)，及/或將TMZ泵出細胞的機制。因此，細胞會死亡。
有許多分支結果為歸結於TMZ經由本文描述之經靶向之陽離子脂質體的腫瘤靶向傳遞。
1)療效增加意謂被傳遞至患者以便觀察到抗腫瘤效果改善所需要得藥物較少。
2)腫瘤特異性傳遞(腫瘤特異性)將減少目前與TMZ相關的有害副作用，因為藥物將不會被非靶向細胞所吸收。
3)有效傳遞TMZ至腫瘤細胞克服了在大多數腦腫瘤(GBM及星形細胞瘤)及其他癌症類型中固有的對TMZ的抗性，該癌症類型包括但不限於：前列腺癌、多發性骨髓瘤、肺癌、肝癌、卵巢癌、胰腺癌、
頭頸部癌、腎癌、胃癌以及黑素瘤。抗性的此種反轉擴展了TMZ作為抗癌治療的使用範圍。
第3B圖證明了本發明之方法不限於腦腫瘤細胞對TMZ的敏化作用。在多發性骨髓瘤細胞系KMS-11中，將scL-TMZ的殺傷作用與游離的(未囊封之)TMZ的殺傷作用比較。如上所述，使用抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段(TfRscFv)作為經靶向部分、1：1之脂質：TMZ莫耳比(脂質體濃度=8mM)以及1：30(w：w)的TfRscFv與脂質體比例，用不同遞增劑量的TMZ(0 μM至100 μM TMZ)來製備scL-TMZ複合物。scL-TMZ複合物之尺寸為約143 nm。在多發性骨髓瘤細胞系KMS-11中，將scL-TMZ的活體外細胞殺傷能力與游離的、未囊封之TMZ的活體外細胞殺傷能力比較。進行了轉染並且評估了轉染後48小時KMS-11的活力。先前TMZ未被用於治療多發性骨髓瘤，因此，令人驚奇的是，藉由在scL複合物中的囊封將TMZ傳遞至此等細胞，將導致明顯細胞死亡，甚至在非常低的TMZ濃度(25 μM)下亦如此。
使用以上描述之相同方法及程序來製備脂質-TMZ及scL-TMZ，並且所得到的scL-TMZ奈米複合物亦用於轉染前列腺(DU145)細胞、肺(A549)細胞、卵巢(Hey-A8)細胞、胰腺(PANC-1)細胞以及肝細胞癌(HEP-G2)細胞。在所有情況下，當囊封於scL奈米複合物中，當與游離的(未囊封之)TMZ(目前標準的傳遞方法)比較時，腫瘤細胞對TMZ的反應明顯增加。
進行研究以測定在靜脈內(i.v)注射之後，TfRscFV經靶向之脂質體(scL)複合物(scL)是否可以跨越血腦障壁(BBB)及靶腫瘤。藉由顱內接種5×105個U87細胞，在裸鼠中誘導腦腫瘤。三週之後，給小鼠靜脈
內注射未複合的游離Cy5-ODN、scL-Cy5-ODN、或未配位之脂質-Cy5-ODN(無經靶向部分；unL-Cy5-ODN)(25 μg/小鼠)(2只小鼠/組)。注射後二十四小時，使小鼠安樂死，並且使用MaestroTM活體內螢光成像系統使攜帶腫瘤的腦成像。使用MaestroTM軟件比較腦腫瘤的螢光強度。靜脈注射scL-Cy5-ODN明確地在腦腫瘤中產生強的螢光信號(第4A圖)。相比之下，在注射游離的Cy5-ODN或unL-Cy5-ODN之後，在腫瘤中僅觀察到低水平的螢光。此種結果證明了scL跨越BBB及有效傳遞有效負載至腦腫瘤之能力。實例6
藉由立體定位接種穩定帶有螢光素酶基因的U87MG-luc2細胞，在5至6週齡無胸腺雌性裸鼠中誘導顱內GBM腫瘤。接種後七至十天，藉由使用Xenogen IVIS活體內成像系統(Caliper Life Sciences)之生物發光來評價腫瘤，並且將小鼠平均分成治療組。治療始於隨機化當天(第0天)。經由尾靜脈給動物靜脈內(i.v.)注射5 mg/kg(每只小鼠每次注射)的單獨TMZ或TfRscFv經靶向之TMZ陽離子脂質體複合物(scL-TMZ)。如上在實例1至2中所述，使用抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段(TfRscFv)作為經靶向部分、1：1之脂質：TMZ莫耳比(脂質體濃度=2 mM)以及1：30(w：w)的TfRscFv與脂質體比例來製備scL-TMZ複合物。每週兩次給小鼠注射每種試劑持續5週。對照動物(媒劑)僅接受脂質體(無TMZ、無TfRscFv)。在該項研究期間，發現靜脈內注射小鼠的scL-TMZ複合物之尺寸為平均約100.5+14.7 nm(數均)(平均值+均方差)。
評估活體內療效：基於腫瘤生長的變化、體重變化及總存活率評價對治療的活體內反應。在指定日期的治療之前、期間及之後，藉
由使用Xenogen IVIS活體內成像系統之生物發光成像(BLI)來監視腫瘤生長。當用基質螢光素治療時，將U87MG-luc2細胞基因改造以表現導致生物發光信號發射的螢光素酶基因。測量腦腫瘤之生物發光強度，該生物發光強度為腫瘤尺寸/生長的一種量度，並且在治療組之間進行比較。治療至一半時(小鼠接受用每種試劑的治療3週之後)，所有動物用磁共振成像(MRI)掃描以評價腦腫瘤。動物成像係利用7 T Bruker Biopsin(Billerica,MA)，使用呼吸門控的(BioPac生理學資料監視器)T1-加權的二維渦輪多層多回波成像序列來進行。根據MRI計算出腫瘤體積，並且在治療組之間進行比較。每週監視體重變化。藉由Kaplan-Meier方法記錄及繪出總存活率。
第4B圖示出scL-TMZ與游離的未囊封之TMZ對顱內U87MG-luc2成膠質細胞瘤腫瘤異種移植的活體內抗腫瘤療效的比較。在治療開始之前及再次在小鼠接受3週的治療(6次注射)之後，使用MRI使腦腫瘤成像。勾勒出輪廓的區域指示成膠質細胞瘤腫瘤。如所預料的，經過此3週的時間，對照小鼠的腫瘤明顯地生長得更大。因為已知此種細胞系對TMZ反應，所以預料了一些腫瘤生長抑制並且在接受游離的TMZ的小鼠中明顯可見一些腫瘤生長抑制。然而，在接受scL-TMZ的動物中，不僅明顯可見腫瘤生長抑制，而且還出現腫瘤消退，甚至經過此種短期的治療亦是如此，進而暗示出scL-TMZ作為治療劑的效果增加。此為出人意料之結果。
在第5圖中用圖形示出所有三組動物的腫瘤尺寸的比較，並且示出用scL-TMZ治療之小鼠的一致的顯著反應及小的腫瘤尺寸。
第6圖示出自治療前起歷經治療時間再到治療後，經由來自每組的代表性動物的Xenogen的BLI成像。與腫瘤尺寸相關之生物發光信號的強度在彩色圖中示出：紅色=較強的信號，紫色=較弱的信號。游離的TMZ(用於腦腫瘤的目前投與方法)能夠控制腫瘤生長約2.5週。然
而，一旦在5週之後結束治療，就會出現明顯的腫瘤生長。事實上，甚至在治療的第31天就會復發。相比之下，在用scL-TMZ治療之動物中，不僅在整個治療中及治療後維持了腫瘤生長抑制，而且在治療結束之後至少2週仍持續觀察到腫瘤消退的意外結果(見第51天)。第7圖示出結果的其他比較。來自第6圖中小鼠的BLI信號強度的圖形表示在第8圖中示出(在圖形底部之條柱指出治療之持續時間)。對於每個組中所有小鼠的信號強度隨時間變化的類似曲線圖在第9圖中給出。又，在scL-TMZ治療的組中，在治療結束之後，腫瘤沒有復發的意外結果是明顯可見的。此為出人意料的，因為腫瘤復發為所有類型的癌症(包括腦癌)中常見的問題。
在治療期間及治療後，藉由體重測量來示出scL-TMZ治療沒有毒性(第10圖)。在媒劑(第21天)組及游離的TMZ(第51天)組中動物之重量急劇減輕係由晚期的疾病狀態引起的。與此等其他組比較，在實驗過程期間，用scL-TMZ治療之動物沒有顯示體重的減輕，並且甚至在治療結束時體重增加了。此證明了此種方法沒有毒性。
在本實驗中動物之長期存活率在Kaplan-Meier曲線圖中示出(第11圖)。第30天，媒劑組中的所有小鼠均死亡。雖然與對照組比較，游離的TMZ延長了此等小鼠的壽命，但用scL-TMZ治療之後，與游離的TMZ組比較，長期存活率明顯增加。
在第二個實驗中，比較了如本文所述來製備之scL-TMZ每週注射的不同劑量/次數。在以下條件下，給攜帶U87MG-luc2成膠質細胞瘤顱內異種移植腫瘤的小鼠組靜脈內尾靜脈注射scL-TMZ 5週：2.5 mg/kg，每週注射一次；5 mg/kg，每週注射一次；或5 mg/kg，每週注射兩次，並且測定存活率。第12圖中的Kaplan-Meier曲線圖示出劑量依賴反應，並且甚至在5 mg/kg之劑量下進行單次注射就可以延長攜帶顱內腦腫瘤的小鼠的壽命。此外，如果每週的注射次數增加，那
麼以較低劑量的TMZ來注射亦可以是有效的。
結果概述：與用游離的TMZ治療比較，用scL囊封的TMZ之靜脈內治療對藉由MRI或BLI監視的腫瘤生長產生可靠的抑制，並且延長了顱內U87MG-luc2 GBM腫瘤異種移植模型中的存活。然而，與游離TMZ治療之動物的彼等結果比較，在scL-TMZ治療之動物中，沒有觀察到藉由體重變化而評估出的毒性的明顯增加。此外，出人意料之結果為：在治療已經結束之後，維持了腫瘤反應(包括腫瘤退化)至少2週。
如上所述，在5至6週齡無胸腺雌性裸鼠中誘導顱內U87MG-luc2腫瘤。在孵育之後三週，隨機地將攜帶腫瘤的小鼠分組，並且開始治療。經由尾靜脈給動物靜脈內注射5 mg/kg(每只小鼠每次注射)的單獨TMZ或囊封於靶向腫瘤之脂質體複合物中的TMZ。如上所述，使用抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段(TfRscFv)作為經靶向部分、1：1之脂質：TMZ莫耳比(脂質體濃度=2 mM)以及1：30(w：w)的TfRscFv與脂質體比例來製備scL-TMZ複合物。對照動物(媒劑)僅接受脂質體(無TMZ、無TfRscFv)。在此種研究期間，發現靜脈內注射小鼠的、如上所述來製備之scL-TMZ脂質體之尺寸為平均85.5+4.96 nm(數均值)(平均值+均方差)。
每週治療小鼠兩次。在接受3次注射之後，使所有動物安樂死，並且收穫腦。自正常腦組織中小心地將腦腫瘤剖切下來，並且稱重。藉由評估細胞凋亡的水平來評價活體內抗腫瘤療效。在稱重腫瘤之後，藉由在37℃下，在含有1 mg/mL膠原酶(Roche)及2 mmol/L DNA
酶I(Sigma)的Hank’s平衡溶液中膠原酶消化1 h，自腫瘤中獲得單細胞懸浮液。將分級的細胞藉由70 μm的細胞濾器(Fisher Scientific,Pittsburgh,PA)，並且用PBS洗滌。為了測定細胞凋亡的水平，用針對分裂半胱天冬酶-3(Cell Signaling Technology,Danvers,MA)及人類CD133(Miltenyi Biotec)的抗體來染色單細胞。標記的細胞藉由在BD FACS Aria流式細胞儀(BD Biosciences,San Jose,CA)上的流式活化細胞分選(FACS)來分析。
評估活體內療效：藉由評價顱內U87MG-luc2腦腫瘤中細胞凋亡的誘導來評估抗腫瘤療效。在3次靜脈內注射媒劑(僅脂質體、無TMZ、無TfRscFv)、游離的未囊封之TMZ或scL-TMZ之後的腦腫瘤之重量在第13圖中示出。出人意料地，甚至在僅注射三次之後，游離的TMZ與scL-TMZ之間的腫瘤尺寸就有明顯的差異。
癌幹細胞(CSC)常常為腫瘤復發及抗化療的原因。由於以上描述之出人意料的發現，其中在用scL-TMZ(而不為用游離的TMZ)治療結束之後，觀察到腫瘤生長抑制及甚至消退，在此等腫瘤中的癌幹細胞以及在分化的癌細胞(非CSC)中評估細胞凋亡的水平。第14圖示出用於細胞凋亡的水平的流式細胞檢測分析之結果，該水平係藉由自腦腫瘤中分離出的單細胞的分裂半胱天冬酶-3抗體染色來測定。CD133為一種GBM癌幹細胞(CSC)的標記物，其被用於區分CSC及分化的癌細胞。與游離的TMZ比較，CSC群體(CD133+)清楚地示出經歷細胞凋亡的細胞的百分數明顯增加。因此，scL-TMZ可靶向及有效轉染CSC，進而引起明顯的腫瘤細胞死亡。
結果概述：在顱內U87MG-luc2 GBM腫瘤異種移植模型中，與用游離的TMZ治療的彼等結果比較，用scL-TMZ之靜脈內治療產生了藉由腫瘤重量而證明的腫瘤生長的明顯抑制。另外，用scL-TMZ之靜脈內治療不僅在CD133-分化的癌細胞中，而且在CD133+ CSC中引起對
細胞凋亡誘導的明顯增加。
已知T98G GBM腫瘤細胞對用TMZ之治療有抗性。針對抗TMZ的GBM腫瘤模型，使用了皮下T98G異種移植。藉由在尾巴以上腰背部上(每只小鼠兩個部位)，皮下注射T98G細胞或懸浮在基質膠膠原基膜(BD Biosciences,San Jose,CA)中的腫瘤顆粒，在無胸腺雌性裸鼠中誘導T98G異種移植腫瘤。當皮下T98G腫瘤達到約100至300 mm3時，隨機地將小鼠分組，並且用25或66 mg/kg(每只小鼠每次注射)的游離TMZ或25 mg/kg(每只小鼠每次注射)囊封於靶向腫瘤的複合物(1：1莫耳比)中的TMZ靜脈內注射。如上所述，使用抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段(TfRscFv)作為經靶向部分、1：1之脂質：TMZ莫耳比(脂質體濃度=8 mM)以及1：30(w：w)的TfRscFv與脂質體比例來製備scL-TMZ複合物。對照動物(媒劑)僅接受脂質體(無TMZ、無TfRscFv)。在此種研究期間，發現靜脈內注射小鼠的、藉由以上描述之方法來製備之scL-TMZ複合物之尺寸為平均130.8+13.5 nm(數均值)(平均值+均方差)。連續5天，每天治療小鼠一次。在最後一次注射之後48小時，使小鼠安樂死，並且收穫腫瘤。治療在第0天開始。
評估活體內療效：基於腫瘤生長變化、體重變化及細胞凋亡的誘導來評價T98G皮下腫瘤對用游離的TMZ或scL-TMZ複合物的治療的活體內反應。測量每個腫瘤之尺寸，並且繪製以mm3計的腫瘤體積(L×W×H)相對時間的曲線圖。還在注射期間監視體重變化。藉由TUNEL分析或用流式細胞法的分裂半胱天冬酶-3染色來評估細胞凋亡的水平，進而進一步評價活體內療效。在最後一次注射之後四十八小時，使小鼠安樂死，並且收穫腫瘤。如上所述進行單細胞分離。為了
測定細胞凋亡的水平，使單細胞染色用於TUNEL分析或用針對分裂的半胱天冬酶-3、人類CD133及SSEA-1的抗體染色。已知SSEA-1為GBM腫瘤中CSC的標記物。藉由FACS來分析被標記的細胞。
第15圖中示出經過此短期時間後，腫瘤的腫瘤尺寸(以mm3計的體積數)。又，在25 mg/kg下投與時，在接受游離的TMZ及scL-TMZ複合物的彼等動物之間，此等抗TMZ腫瘤生長存在明顯差異，在所述之動物中存在明顯的腫瘤生長抑制。因為已知T98G腫瘤為抗TMZ的，所以TMZ可以控制腫瘤生長為新奇的及出人意料的。如上對於活體內使用所討論，抗性的此種反轉為由於藉助將靶向配位體(蛋白質、抗體或抗體片段)結合至其在細胞上的配位體並且經由被動方式或藉由像受體介導的胞吞作用的主動運輸機制來觸發攝入，進而將TMZ有效負載有效的傳遞及攝入到腫瘤細胞中。此種方法用藥物來「淹沒」細胞，進而克服了腫瘤細胞在位修復由TMZ引起的DNA損壞的機制(如上調MGMT)，及/或將TMZ泵出細胞的機制。因此，腫瘤細胞並且因而腫瘤會死亡。基於此種活體內資料，相同的機制在活體內起作用，並且因此證明了scL-TMZ複合物作為抗癌試用於腦或其他腫瘤(包括目前抗TMZ的彼等腫瘤)的潛在用途。經過本項短期的實驗後體重變化最小，暗示出靜脈內投與之scL-TMZ沒有毒性(第16圖)。
在注射後8小時，藉由自皮下T98G異種移植腫瘤中分離出的CD133+ CSC及CD133的TUNEL染色，評估來自已被靜脈內注射66 mg/kg(每只小鼠每次注射)的游離的TMZ或25 mg/kg(每只小鼠每次注射)囊封於靶向腫瘤的複合物中的TMZ的動物的腫瘤中細胞凋亡水平。如在第17圖中所示，與囊封於scL中的TMZ的量比較，即使用超過兩倍劑量的游離的TMZ來治療動物，藉由scL-TMZ誘導的細胞凋亡水平仍比在非CSC中的細胞凋亡水平高5倍以上，並且比在CSC中的細胞凋亡水平高8倍。
當藉由來自相同皮下T98G腦腫瘤的SSEA-1+ CSC的分裂半胱天冬酶-3抗體染色來評估細胞凋亡的水平時，獲得類似之結果(第18圖)。SSEA-1為CSC的另一種標記物，其用於區分CSC及分化的癌細胞。在此，即使投與超過兩倍量的游離的TMZ，scL-TMZ誘導的細胞凋亡水平仍比游離的TMZ高5倍(SSEA-1-)及9.5倍(SSEA-1+)。
結果概述：與用游離的TMZ的治療比較，用scL-TMZ之靜脈內治療(在相同或甚至較低劑量的TMZ下)產生對抗TMZ的T98G腫瘤異種移植的生長抑制明顯增強。然而，與游離的TMZ治療之動物的彼等結果比較，在scL-TMZ治療之動物中，沒有觀察到基於體重變化而評估出毒性的明顯增加。另外，用scL-TMZ之靜脈內治療不僅在CD133-及SSEA-1-分化的癌細胞中，而且在CD133+或SSEA-1+ CSC中引起對細胞凋亡的水平明顯增加。
此等結果證明了藉由scL來傳遞TMZ可以誘導大規模的細胞凋亡，並且克服了腫瘤細胞(包括但不限於腦癌、多發性骨髓瘤、肺癌、前列腺癌、肝癌、卵巢癌、胰腺癌、頭頸部癌、腎癌、黑素瘤、胃癌)對此種藥物的固有抗性。
雖然一線化療劑替莫唑胺(TMZ)已被證實對具有腦腫瘤的患者有益，其仍具有明顯的限制治療劑量的毒性(Villano JL、Seery T E及Bressler L R(2009)Temozolomide in Malignant Gliomas：Current Use and Future Targets.Cancer Chemotherapy and Pharmacology 64：第647-655頁)，包括骨髓抑制性。因此，用以腫瘤靶向TMZ以使得其被明確地並有效地傳遞至腦中的腫瘤細胞並且被腦中的腫瘤細胞吸收，進而減少非特異性毒性的方法，將對目前適合使用此種藥物的彼等患者為相當有益的。
但是，即使被有效地傳遞至腫瘤細胞，將TMZ廣泛用於成膠質細胞瘤及其他腦癌仍有一個重要缺點，為相當百分比的腫瘤為抗TMZ的。此主要為由於O6-甲基鳥嘌呤-DNA-甲基轉移酶(MGMT)的過度表現，此種酶藉由去除O6-鳥嘌呤加合物來修復TMZ誘導的DNA損傷(Mrugala MM、Adair J及Kiem H P(2010)Temozolomide：Expanding Its Role in Brain Cancer.Drugs of Today 46：第833-846頁)，因此使TMZ的治療作用無效。因此，急需開發用以克服此種抗性的方法。
如在美國專利第7,780,822號中所述(該專利之全部內容以引用之方式併入本文)，已經成功地開發了帶有編碼wtp53基因的質體DNA的並經由TfRscFv(scL-p53)來經靶向之傳遞系統。亦已經開發了與化療/放射組合使用的scL-p53，以便增加腫瘤對此等標準的治療模態的反應。
雖然TMZ為用於治療腦腫瘤的一線化療劑，但僅一部分的GBM患者對此種藥物反應。根據Stupp等的研究(Stupp R、Hegi M E、Mason W P、van den Bent M J、Taphoorn M J B、Janzer R C、Ludwin S K、Allgeier A、Fisher B、Belanger K、Hau P、Brandes A A、Gijtenbeek J、Marosi C、Vecht C J、Mokhtari K、Wesseling P、Villa S、Eisenhauer E、Gorlia T、Weller M、Lacombe D、Cairncross J G以及Mirimanoff R O(2009)Effects of Radiotherapy With Concomitant and Adjuvant Temozolomide Versus Radiotherapy Alone on Survival in Glioblastoma in a Randomised Phase III Study：5-Year Analysis of the EORTC-NCIC Trial.Lancet Oncology 10：第459-466頁)，以及Hegi等的研究(Hegi ME、Diserens A、Gorlia T、Hamou M、de Tribolet N、Weller M、Kros J M、Hainfellner J A、Mason W、Mariani L、Bromberg J E C、Hau P、Mirimanoff R O、Cairncross J G、Janzer R C
以及Stupp R(2005)MGMT Gene Silencing and Benefit From Temozolomide in Glioblastoma.New England Journal of Medicine 352：第997-1003頁)，在對TMZ治療的反應方面鑒別出兩組不同的患者：具有下調MGMT啟動子並具有更好的預後的彼等患者，及具有活性MGMT啟動子並具有較差預後的彼等患者。
因此，開發用以下調MGMT的方法可以增加對TMZ反應的患者的人數。已有許多的報道，此等報道指出增加wtp53表現可以下調DNA修復基因如MGMT的表現(Bocangel D、Sengupta S、Mitra S、Bhakat K.K(2009)P53-Mediated Down-Regulation of the Human DNA Repair Gene O6-Methylguanine-DNA Methyltransferase(MGMT)Via Interaction With Sp1 Transcription Factor.Anticancer Research；Harris LC、Remack J S、Houghton P J以及Brent T P(1996)Wild-Type P53 Suppresses Transcription of the Human O6-Methylguanine-DNA Methyltransferase Gene.Cancer Research 56：第2029-2032頁；Srivenugopal KS、Shou J、Mullapudi S R S、Lang F F、Rao J S以及Ali-Osman F(2001)Enforced Expression of Wild-Type P53 Curtails the Transcription of the O6-Methylguanine-DNA Methyltransferase Gene in Human Tumor Cells and Enhances Their Sensitivity to Alkylating Agents.Clinical Cancer Research 7：第1398-1409頁)。使用被證實有效靶向原發性及轉移性腫瘤並且跨越BBB的scL-p53奈米複合物，應該為克服在相當百分比的GMB及其他腫瘤中觀察到的MGMT誘導的抗TMZ性的有效方式，因此擴展了此種藥物用在具有原發性及轉移性腦腫瘤患者中的應用範圍，並且改善了預後。此外，因為還評價了TMZ在其他非腦的難治或晚期的惡性腫瘤中使用，此等惡性腫瘤包括胰腺癌、神經內分泌癌以及消化道癌(Tentori L及Graziani G(2009)Recent Approaches to Improve the Antitumor Efficacy of
Temozolomide.Current Medicinal Chemistry 16：第245-257頁)，所以用scL-p53的治療將增大TMZ成為用於各種癌症的有效治療劑的潛力。
本文描述的為scL-TMZ與scL-p53的組合使用。用作單一療法的scL-TMZ的開發將對目前適合TMZ治療的患者來說為有益的。然而，組合的方法將具有甚至更大的治療潛力。由於scL-p53而減少的腫瘤抗性以及由scL-TMZ的腫瘤靶向傳遞所產生的性質改進，都將引起目前對TMZ不反應的腦腫瘤(及可能其他癌症)轉變為反應性的。因此，此種方法有潛力被開發成新穎、低毒性、更有效之治療方案以便用於治療GBM及其他癌症。
設計實驗來證明用於GBM的新穎、更有效之治療方案的開發，該治療方案單獨使用scL-TMZ及將scL-TMZ與scL-p53組合使用。
以上描述了人類腦癌細胞系U87MG及T98G。穩定表現螢光素酶基因的U87MG的一種型式已經自Caliper Life Sciences獲得，將其用於活體內研究中，其中腫瘤生長及反應將藉由IVIS®成像系統Xenogen來監視。
用於腦腫瘤的MR成像將在配備有100高斯/釐米微成像梯度並藉由Paravision 4.0軟件來運行的具有20 cm孔的7T Bruker Biopsin(Billerica,MA)水平光譜儀/成像儀上進行。如先前所述，成像方案係採用快速增強三維成像序列的T1-加權渦輪快速採集法(Haggerty T、Credle J、Rodriguez O、Wills J、Oaks A W、Masliah E以及Sidhu A(2011)Hyperphosphorylated Tau in an Alpha-Synuclein-Overexpressing
Transgenic Model of Parkinson's Disease.European Journal of Neuroscience 33：第1598-1610頁)。
在此等研究中，U87-Luc正位顱內(TMZ敏感的)及T98G(抗TMZ的)皮下腫瘤模型將被用於檢驗單獨的scL-TMZ及scL-TMZ與scL-p53組合對腫瘤生長及/或消退之作用。應注意的是，雖然U87MG具有wtp53，但是當U87顱內腫瘤用scL-p53與游離的TMZ組合來治療時，觀察到活體內反應增加。小鼠組(6只小鼠/組/腫瘤模型)將以下的接受靜脈內(尾靜脈)注射：單獨游離的TMZ、單獨的scL-TMZ、單獨的scL-p53、scL-p53加上游離的TMZ或scL-TMZ。未治療之小鼠將當作對照物。p53劑量將為每次注射每只小鼠30 μg，並且將在5 mg/kg下使用TMZ。將該兩種治療每週投與兩次，持續5週。藉由T98G之尺寸及使用顱內腫瘤的Xenogen來評估腫瘤生長抑制/消退，其中將藉由MRI來測定腫瘤體積。治療前、治療期間每週一次、以及在治療已經結束之後立即進行Xenogen/MRI成像。治療至一半時，自每組中的3只小鼠中取出腫瘤及各種的正常器官及組織，並且編號。每種組織的一半將用於在目標II中描述之分析，並且剩餘部分藉由組織學來檢驗細胞凋亡的標記物(通道，半胱天冬酶)及增殖標記物Ki67。治療已經結束之後的第一天，人道地使3只小鼠安樂死，並且藉由商用的CRO(BioReliance,Rockville MD)來屍體剖檢，以便尋找與TMZ相關的骨髓毒性作用及淋巴細胞減少的差異。
為了驗證用scLp53的治療可以下調MGMT活性，並且使抗TMZ的腦腫瘤對此種藥物敏化的假設，進行了初步的XXT細胞存活率分析。將抗TMZ的T98G細胞按每個孔2×103下接種在96孔板中，並且用scL-p53與游離的TMZ或scL-TMZ組合來轉染。亦只用游離的TMZ或只用
scL-TMZ來轉染細胞。90 h後進行XTT分析，並且測定IC50值(產生50%生長抑制之濃度)。在此種已知的抗TMZ細胞系中，與單一試劑TMZ比較，用scL-p53與游離的TMZ或scL複合的TMZ組合的轉染引起反應水平之增加(Patil R、Portilla-Arias J、Ding H、Inoue S、Konda B、Hu J W、Wawrowsky K A、Shin P K、Black K L、Holler E以及Ljubimova J Y(2010)Temozolomide Delivery to Tumor Cells by a Multifunctional Nano Vehicle Based on Poly(Beta-L-Malic Acid).Pharmaceutical Research 27：第2317-2329頁)(第19圖)。此外，與單獨游離的TMZ比較，用scL-TMZ奈米複合物的轉染導致對藥物的明顯化學增敏水平。
藉由皮下接種U251細胞，在裸鼠中誘導人類腦腫瘤異種移植。三週後，給小鼠靜脈內注射以下述形式投與之6FAM-ODN(每只小鼠100 μg)：未複合的游離6FAM-ODN、scL-6FAM-ODN(scL-ODN)、或未配位之脂質-6FAM-ODN(無經靶向部分之脂質體)(脂質-ODN)。注射後24小時，使用MaestroTM活體內螢光成像系統來使腫瘤成像，以便測定腫瘤中螢光的水平。在MaestroTM成像之後，藉由酶消化自腫瘤中分離出單細胞，並且藉由FACS分析及量化在CD133+(癌幹細胞(CSC))及CD133-(非CSC)細胞中攝入的6FAM-ODN的量。全身性投與游離的6FAM-ODN及未配位之脂質-ODN在腫瘤中均產生非常少的(如果有的話)螢光。相比之下，在來自接受scL-ODN奈米複合物的小鼠的腫瘤中，明顯可見強螢光信號(第20圖)。
更重要地，此種明顯的差異還反映在CSC的轉染率中(第21圖)。然而用游離的或未配位的6FAM-ODN轉染了小於10%的CSC及非CSC
細胞，>60%的CSC及非CSC細胞群體證明了在靜脈內注射之後存在有效負載。灰色的直方圖代表未治療的對照物。此等發現確認了在全身性投與時，本文描述之scL傳遞系統可以在活體內靶向並有效傳遞有效負載至CSC。
第22圖示出在顱內U87MG-luc2多形性成膠質細胞瘤(GBM)腦腫瘤的動物模型中，藉由靶向腫瘤的複合物、非經靶向之複合物所傳遞的有效負載、以及無傳遞系統的有效負載本身的活體內傳遞效率的比較。將螢光標記的(Cy5)寡核苷酸(Cy5-ODN)囊封於腫瘤經靶向之複合物(scL-Cy5-ODN)中(如在美國專利第7,780,882號中所述來製備)或無靶向腫瘤的配位體的複合物(脂質-Cy5-ODN)中。將二十五微克的Cy5-ODN(游離的，或用或不用經靶向部分來囊封的)靜脈內注射攜帶U87MG-luc2顱內腫瘤的每個動物。在注射之後60小時，使動物安樂死，並且收穫腫瘤，以便藉由使用癌幹細胞的標記物(CD133及SSEA)的流式細胞法來評估在此等顱內腫瘤中傳遞至癌幹細胞(CSC)的效率，該兩種標記物是熟習此項技術者所知的一般標記物CSC(CD133+)及腦腫瘤中標記物CSC(SSEA-1+)。自腦腫瘤中分離出單細胞，並且在用CSC標記物抗體(CD133+或SSEA-1+)染色之後，進行FACS分析。第22圖中每個直方圖中的曲線的位移代表在癌幹細胞中的Cy5-ODN攝入。只有代表自接受scL-Cy5-ODN的小鼠中分離CSC的曲線證明了明顯的位移，此暗示出在腦腫瘤中，游離的Cy5-ODN、或脂質-Cy5-ODN(無經靶向部分)都不能有效地轉染CSC。
為了評估scL傳遞的wtp53使腦腫瘤細胞對一線化療劑TMZ敏化之能力，用單獨的TMZ或TMZ加上scL-p53的組合來治療自人類腦腫瘤獲得的U87及U251細胞(如在美國專利第7,780,882號中所述)。作為對照，還用TMZ與scL傳遞系統的組合來治療細胞，該scL傳遞系統帶有用於構建pSCMVp53質體，但無p53插入體的相同載體(scL-vec)。將細胞接種在96孔板中，並且隨後用scL-p53或scL-vec處理24小時。轉染後6小時，以遞增濃度添加TMZ。在添加TMZ至孔後144 h，進行XTT分析，並且測定IC50值(產生50%生長抑制之濃度)。因為已知該兩種細胞系為對TMZ敏感的，所以對單獨的TMZ存在一些反應並不意外。然而，如在第23圖中所示，當與用於兩種細胞系的單獨的TMZ比較時，用藉由scL傳遞系統所傳遞的wtp53轉染細胞時，對TMZ的敏化作用明顯增加。對於帶有空載體的複合物，觀察到最小至無的敏化作用(分別為U87及U251)，此證明了該作用係歸因於p53而並不是傳遞系統。
然而，因為只有一部分的腦腫瘤患者對TMZ反應，所以評估scL-p53使抗TMZ的腫瘤對此種化療劑敏化之能力更為關鍵。因此，為了評估scL傳遞的wtp53使抗TMZ腦腫瘤細胞對此種一線化療劑敏化之能力，用單獨的TMZ或TMZ加上scL-p53的組合來治療自人類腦腫瘤獲得的LN-18及T98G細胞(第23圖)。作為對照，還用TMZ與scL傳遞系統的組合來治療細胞，該scL傳遞系統帶有用於構建pSCMVp53質體，但無p53插入體的相同載體(scL-vec)。將細胞接種在96孔板中，並且隨後用scL-p53或scL-vec處理24小時。轉染後24小時，以遞增濃度添加TMZ。在添加TMZ至孔後72 h，進行XTT分析，並且測定IC50值(產生50%生長抑制之濃度)。如在第23圖中所示，對於LN-18細胞，在用scL-p53轉染之後，現在此等抗TMZ的細胞對甚至非常低劑量的TMZ都有反應。與單獨的TMZ比較，在低達約50 μM的TMZ劑量
下，超過50%的細胞被殺死，在使用單獨的TMZ時，直至約1000 μM之劑量才觀察到明顯的細胞死亡。對於T98G(第23圖)，雖然在用scL-p53治療之後，不能如同LN-18一樣對TMZ反應，但此等高抗性細胞仍對此種藥物的殺傷作用敏化。在暴露於TMZ之前，用scL-p53治療的細胞具有600 μM的IC50，而僅接受TMZ的彼等細胞直至約2000 μM的TMZ劑量才能達到IC50。如上，在用對照scL-vec轉染之後，使細胞對TMZ反應之作用最小或沒有作用，此暗示了此等抗性的細胞系中的反應係歸因於wtp53的存在。
進行實驗來檢測藉由全身性投與如在美國專利第7,780,882號中所述來製備之scL-p53而使IC腦腫瘤對TMZ敏化所誘導的腫瘤生長抑制。U87MG-Luc異種移植腦腫瘤係於裸鼠中藉由顱內接種U87MG-luc細胞來誘導。自Caliper Life Sciences獲得的此種細胞系已經被修飾來穩定表現螢光素酶基因。接種後10天，給攜帶腫瘤的動物靜脈內(尾靜脈)注射單獨的TMZ(每次注射5.0 mg/kg)、單獨的scL-p53(每只小鼠每次注射30 μg DNA)或與scL-p53組合的TMZ。作為對照，一個組接受PBS(媒劑)。每週2次投與所有的靜脈內注射直至總共注射10次。為了評估腫瘤反應，使用IVIS®成像系統的Xenogen來進行生物發光成像(BLI)。第24圖是各個組的活體內抗腫瘤療效的比較。與腫瘤尺寸相關之生物發光信號在彩色圖中示出。紅色(在標尺的頂部)：較強的信號，紫色(在標尺的底部)：較弱的信號。使用Xenogen活體成像®軟件，比較了組群之間的腦腫瘤之生物發光強度，該生物發光強度是
腫瘤尺寸/生長的一種量度，並且在第25圖中繪出隨時間變化的圖。水平條指出治療之持續時間(最後的治療=第24天)。
雖然在治療期間，單獨的TMZ及單獨的scL-p53對IC腫瘤生長具有一些最小之作用，但在治療結束之後，兩組中的腫瘤尺寸都迅速增加。相比之下，在治療期間，接受scL-p53與TMZ組合的小鼠組中的腫瘤不僅表現出腫瘤生長抑制，而且表現出腫瘤消退。更重要地，在治療已經結束之後，此種消退還持續了超過20天。
為了確認生物發光之結果，還在小鼠接受3週的治療之前及之後，藉由MRI(無造影劑)來使小鼠成像。在組合治療組中藉由生物發光觀察到的腫瘤消退亦在此觀察到。在第26圖中，輪廓指出了成膠質細胞瘤腫瘤。明顯可見的是，在單一試劑治療組中明顯可見治療後尺寸之增加，取而代之，幾乎不會在接受scL-p53及TMZ的此等動物中檢測到任何殘留腫瘤。因此，本實驗證明了存在scL傳遞的wtp53可以使GBM腫瘤對TMZ敏化，進而引起明顯的腫瘤反應(消退)，而不只是腫瘤生長抑制。
因為以上實驗證明了明顯的腫瘤反應，包括治療後的消退，接下來評估此種組合治療對存活率之作用。如上所述，在裸鼠中誘導U87MG-Luc異種移植腦腫瘤。接種後10天，給攜帶腫瘤的動物靜脈內(尾靜脈)注射單獨的TMZ(每次注射25.0 mg/kg)、單獨的scL-p53(每只小鼠每次注射30 μg DNA)(如在美國專利第7,780,882號中所述來製備)或與scL-p53組合的TMZ。作為對照，一個組接受PBS(媒劑)。每週2次投與所有的靜脈內注射直至總共注射10次。每週監視動物2至3次，並且當瀕臨死亡時，使動物安樂死。在第27圖及下表1中示出藉由Kaplan-Meier方法分析之結果。在第27圖中的灰色條柱指出治療之
持續時間。雖然單獨的TMZ能夠在此種TMZ反應的細胞系中延長存活一段時間，但所有小鼠到約第155天都死於其腫瘤，中值存活112天。然而，藉由將scL-p53添加至治療方案顯著地延長了存活時間。在此等動物中，60%的小鼠在第210天仍然存活。因此，對於接受此種組合方案的小鼠的存活率延長百分比是未所治療之小鼠的>740倍，是用單獨的scL-p53時的500倍，並且是用單獨的TMZ時的幾乎兩倍。因此，如此將scL-p53添加至用TMZ的治療引起長期存活率的明顯增加。
‧測定為未所治療之GBM異種移植的中值存活之比例
以上描述之活體外研究暗示出藉由scL-p53的轉染，可以使抗TMZ的腦腫瘤細胞的轉染對TMZ敏化。因此，進行實驗來評估攜帶由抗TMZ的人類GBM細胞系T98G得到的顱內腫瘤的小鼠的存活率。給無胸腺裸鼠顱內接種T98G人類成膠質細胞瘤細胞系。在接種之後十天，藉由MRI使動物成像，並且平均分成3組。在成像之後立即開始治療。連續14天，每天用100 mg/m2的TMZ靜脈內治療動物一次，每週靜脈內投與scL-p53(每次注射30 μg DNA)(如在美國專利第7,780,882號中所述來製備)兩次，投與2週，或兩種治療的組合。監視
存活率。在第28圖中示出藉由Kaplan-Meier方法分析之結果。指出了每個組的在第14天的每組小鼠存活數目。經過此2週時間的治療，在接受作為單一試劑的TMZ或scL-p53的兩個組中，大量的動物死於其疾病。相比之下，接受組合治療之小鼠有五分之四仍然存活。因此，此種小療效實驗確認了活體外資料，並且暗示出用scL-p53的治療可以使先前有抗性的GBM腫瘤對TMZ敏化。
已知腫瘤抑制基因p53在細胞凋亡路徑中起作用。為了開始評價在使用scL-p53與TMZ的組合時觀察到的引起腫瘤細胞反應增加及動物存活率增加的機制，使用膜聯蛋白V-FITC及流式細胞計來測定各種治療之後，在顱內U87MG-luc2腦腫瘤中誘導的細胞凋亡的水平。如上所述誘導U87MG-luc2腦腫瘤。接種細胞後10天，用單獨的TMZ(每只小鼠每次注射5 mg/kg，每週注射2次)、單獨的scL-p53(每只小鼠每次注射30 μg DNA，每週注射2次)(如在美國專利第7,780,882號中所述來製備)或scL-p53與游離的TMZ的組合來治療小鼠。在每個動物接受了總共3次注射之後，使動物安樂死，自腫瘤中分離出單細胞群體，並且進行膜聯蛋白V分析。
如在第29圖中所示，在用scL-p53與TMZ之組合治療之後，與任一種單獨的治療比較，細胞凋亡中腫瘤細胞的百分比明顯增加。因此，此等結果暗示出藉由IC腫瘤攝入全身性投與之scL-p53引起對化療劑TMZ的細胞凋亡反應的增強。
抵抗TMZ的主要機制是O6-甲基鳥嘌呤-DNA-甲基轉移酶(MGMT)
的過度表現，此種酶藉由去除O6-鳥嘌呤加合物來修復TMZ誘導的DNA損傷。因此，下調MGMT活性的方法將增強TMZ的治療效果。許多報道已經指出增加wtp53表現可以下調DNA修復基因(如MGMT)的表現，並且增加腫瘤細胞對烷基化劑(如TMZ)的敏感度。在以上實例中描述之活體外及活體內的資料暗示出，用scL-p53的治療可以在腦腫瘤細胞中反轉對TMZ的抗性。此種敏化作用的一個可能機制是MGMT的p53依賴性下調。檢測了scL傳遞的wtp53的攝入，以便測定它是否對活體外抗TMZ的T98G人類成膠質細胞瘤細胞中的MGMT表現水平及在活體內皮下異種移植腫瘤中的MGMT表現水平有作用。用scL-p53(如在美國專利第7,780,882號中所述來製備)轉染T98G細胞。轉染後16及24小時，收穫細胞，分離蛋白質，並且使用Nu-PAGE預製4%至12%梯度凝膠對40 μg(微克)總蛋白進行電泳分級，轉移至硝化纖維素膜，並且藉由蛋白質印跡分析探測MGMT及GAPDH的表現。藉由ECL試劑來檢測信號(第30圖)。
對於在第30圖中示出的活體內實驗，在24小時期間靜脈內注射scL-p53(每只小鼠每次注射30 μg DNA)三次。在最後的scL-p53治療後16及24小時，使小鼠安樂死，收穫腫瘤，並且提取蛋白質。在每個時間點對四隻小鼠進行收穫。作為對照的一個組不接受SGT-53。使用Nu-PAGE預製4%至12%梯度凝膠對40 μg(微克)總蛋白進行電泳分級，轉移至硝化纖維素膜，並且藉由蛋白質印跡分析探測MGMT及GAPDH的表現。藉由ECL試劑來檢測信號。
活體外，到16小時時，完全下調了MGMT表現，此在轉染後持續了長達24小時。類似地，在活體內研究中，在16小時明顯可見MGMT的表現明顯減少，並實際上消除了此等動物中的兩隻動物中之蛋白質。到最後注射後的24小時時，在用SGT-53治療的所有小鼠中都明顯可見MGMT的實際上完全下調。GAPDH蛋白的一致表現證明
了相等之蛋白質負載量。在此等腫瘤中缺乏MGMT來修復由TMZ所誘導的DNA損壞，連同異源SGT傳遞的wtp53對細胞凋亡路徑的積極作用，都可能對克服T98G對TMZ的殺傷作用的抗性。
更重要地，在具有T98G的顱內腫瘤模型中觀察到類似之結果(圖31)。在本項實驗中，僅靜脈內注射scL-p53(以每只小鼠30 μg DNA)一次。在scL-p53注射之後的16與72小時之間的各個時間點，使小鼠安樂死，收穫腫瘤，並且提取蛋白質。作為對照的一個組(UT)不接受SGT-53。使用Nu-PAGE預製4%至12%梯度凝膠對40 μg(微克)總蛋白進行電泳分級，轉移至硝化纖維素膜，並且藉由蛋白質印跡分析探測p53、MGMT及GAPDH的表現。藉由ECL試劑來檢測信號。
在靜脈內注射單一scL-p53之後的16及24小時，與UT動物比較，明顯可見p53蛋白質的水平明顯增加，此暗示出存在異源p53。到43及72小時時，此種信號減回至類似於UT對照的水平。更重要地，如對於皮下腫瘤所觀察，在用scL-p53治療之後的43及72小時，在此等顱內腫瘤中均觀察到MGMT的表現明顯減少。對於在MGMT信號中觀察到減小的此時機與p53藉由干擾DNA修復機制來使在細胞對TMZ敏化之作用機制一致。
替莫唑胺的標準投與需要將日劑量的替莫唑胺投與21天。為了最佳化scL-p53的潛在化學增敏作用的效率，在較佳的實例中，將在替莫唑胺治療前1天開始scL-p53治療。臨床前研究已經證實：藉由scL-p53複合物所傳遞的wtp53腫瘤抑制基因起到使腫瘤對化療劑敏化之作用，進而使其對藥物具有更多的反應。因此，當投與替莫唑胺時，為了獲得scL-p53的益處，p53表現是關鍵。使用在圖中示出的建
議時間計劃，scL-p53在替莫唑胺治療開始時就被表現。
在一個替代實例中，在替莫唑胺治療開始之前，將投與兩種scL-p53治療。在此，scL-p53將根據第33圖的表中指出的相同時間計劃在第1天開始投與。然而，第一種TMZ治療將直至第6天才開始。每天(包括週末)以100至250 mg/m2口服投與替莫唑胺，投與21天(第6天至第26天)。
材料：DOTAP(1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷，鹽酸鹽)
-自Avanti Polar Lipids,Inc.獲得，目錄號(#)890890E MW 698.55
-濃度：25 mg/mL乙醇溶液
在使用之前，用無水乙醇稀釋脂質至20mg/ml
DOPE(1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺)
-自Avanti Polar Lipids,Inc.獲得，目錄號(#)850725E MW 744.04
-濃度：25 mg/mL乙醇溶液。
在使用之前，用無水乙醇稀釋脂質至20mg/ml
美法侖鹽酸鹽(Mel)，粉末(M Wt=341.7)
-自Sigma獲得，M2011-100 mg，
-溶解在無水乙醇中至50 mg/ml之濃度，具有10 μL至15 μL的6N HCl以幫助溶解。
超純、無內毒素的LAL試劑水(例如BioWhittaker，目錄號(#)W50-500，內毒素<0.005 EU/ml)
注射器：漢密爾頓(Hamilton)氣密注射器，具有22號針頭，部件#81365)的1 ml(漢密爾頓#81230)
程序：
1.每次藉由將美法侖溶解在無水乙醇中至50 mg/ml(146.3mM)之濃度，並添加6N HCl(約10 μL至15 μL)，藉由高速渦旋直至溶解(必須為澄清的)來製備新鮮的美法侖溶液。在室溫下保持直至用於與脂質混合(以下步驟3)。
2.在37℃下將脂質溶液置放10 min至15 min，接著將脂質溶液置放於65℃水浴中，並偶爾搖動5 min。
3.為了製備脂質-美法侖：將具有攪拌棒的棕色玻璃瓶置放於被設置在50℃至60℃的熱板上。當在無飛濺的高速下攪拌時，按以下順序(重要的)將脂質及美法侖添加至瓶中：對於1：1(脂質：美法侖)莫耳比
DOTAP 175 μl(的20 mg/ml)=5 μmol或3.5 mg
DOPE 187.5 μl(的20 mg/ml)=5 μmol或3.75 mg
添加美法侖溶液，68.3 μl(的50 mg/ml)=10 μmol，在已經添加了所有3種組分之後，繼續攪拌3 min。
4.同時，在具有攪拌棒的棕色玻璃瓶中，在水浴中將4,569 μL LAL水溫熱至65℃。在添加脂質-美法侖溶液之前，立即將瓶移至熱板(50℃至60℃)。在無飛濺的高速下攪拌水，攪拌幾秒，以便自攪拌棒上去除氣泡。
5.將該水保持在熱板上。在脂質添加期間，在高速(無飛濺)下連續攪拌水。如上(步驟2)混合脂質與美法侖之後，立即並且盡可能快地使用用於注射的漢密爾頓注射器，將混合物注射熱板(50℃至60℃)上的熱水中直接進入渦旋的中心。在添加脂質混合物同時寬鬆地遮蓋之後，在高速(無飛濺)下繼續攪拌1 min。
6.將玻璃瓶移至室溫攪拌板，並且繼續緩慢地攪拌直至寬鬆遮蓋之溶液冷卻至20℃至25℃(室溫)。
7.用室溫LAL水將體積調至5 ml。
8.使用0.22 μm孔的Milex GV過濾器過濾溶液。
9.若需要，則測量粒徑及ζ電勢。
此等製備方法之結果證明了脂質體具有約20 nm至60 nm的粒徑及約10 mV至50 mV的ζ電勢。
使用根據上述程序來製備之包含美法侖的陽離子脂質體，藉由簡單混合組分並且沒有化學偶聯來製備如本文所述之配位體靶向之美法侖陽離子脂質體複合物。根據以下一般程序製備該複合物：向對於脂質體-水(或緩衝液)，添加適當量的經靶向部分以給予所需之比例，並且藉由輕輕倒置混合5至10秒。經靶向部分可以是配位體，其包括但不限於轉鐵蛋白或葉酸酯、或其他蛋白質。經靶向部分亦可是經靶向之細胞表面受體的抗體或抗體片段，其包括但不限於轉鐵蛋白或HER-2受體(例如，TfRscFv)。將此種混合物在室溫下保持10至15分鐘(在大致5分鐘之後，再次輕輕倒置5至10秒)。為產生所需的最終體積，將經靶向部分-脂質-美法侖摻合物與得到所需的體積需要的任何體積(包括零體積)的水(適合地去離子水)或任何pH的緩衝液(包括但不限於Tris緩衝液、HEPES緩衝液或磷酸鹽緩衝鹽水)混合，並且輕輕倒置5至10秒來混合。將此種混合物在室溫下保持10至15分鐘(在大致5分鐘之後，再次輕輕倒置5至10秒)。
通常，用於活體外分析時，希望的是最終複合物中美法侖的量在每個孔約1 μM至30 μM之範圍內；用於活體內用途時，希望每次注射提供約1 mg/kg至約50 mg/kg的美法侖。用於活體內時，最後添加右旋糖或蔗糖至約1%至50%(V：V)最終濃度的右旋糖或蔗糖，適合地5%右旋糖或10%蔗糖，並且藉由輕輕倒置來混合5至10秒。將此種混
合物在室溫下保持10至15分鐘(在大致5分鐘之後，再次輕輕倒置5至10秒)。
在1：30(抗體片段：脂質體，w：w)的適合比例及1：1脂質體：美法侖(莫耳比)下，針對活體外轉染的具體實例如下：對於大致600 μL的最終體積，將250 μL之脂質：TMZ(2 mM原料)與56.7 μL的抗體片段(在0.21 mg/mL的抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段[TfRscFv]濃度下)混合。添加293.3 μL的水或緩衝液。
藉由該方法來製備之最終複合物之尺寸(數均值)為約10 nm至800 nm之間、適合地約15 nm至400 nm、最適合地約20 nm至200 nm，並具有如藉由使用Malvern電位儀ZS的動態光散射所測定的介於約1 mV與100 mV之間、更適合地5 mV至60 mV，並且最適合地10 mV至50 mV的ζ電勢。此種尺寸足夠小，可以有效地藉由腫瘤毛細血管床或跨越血腦障壁，並且到達腫瘤細胞。
如上述來製備之、含有右旋糖或蔗糖(1%至50%，體積比體積)的複合物亦可被凍乾至乾燥，並且在室溫、2℃至8℃、或-20℃至-80℃下存放。在使用前，用水重構樣品。重構後的最終凍乾複合物之尺寸(數均值)為約10 nm與800 nm之間、適合地約15 nm至400 nm、更適合地約20 nm至200 nm，並且最適合地50 nm至150 nm，並具有如藉由使用Malvern電位儀ZS的動態光散射所測定的約1 mV至100 mV之間、更適合地5 mV至60 mV、並且最適合地10 mV至50 mV的ζ電勢。此等複合物保留了至少80%的原始生物活性。
如上所述，使用抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段(TfRscFv)作為經靶向部分、1：1及0.75：1(尺寸分別=30 nm及25 nm)之脂質：美法侖莫耳
比(脂質體濃度=2 mM)以及1：30(w：w)的TfRscFv與脂質體比例來製備scL/美法侖複合物。scL/美法侖奈米複合物之尺寸分別為45及57 nm。在KMS-11細胞中，將scL/美法侖的活體外細胞殺傷能力與游離的、未囊封之美法侖比較。
對於此等活體外細胞存活率研究，使用了人類多發性骨髓瘤細胞系KMS-11。此等是非黏附細胞，並且在懸浮液中生長。使2.6 ml的無血清培養基中的4×105個細胞在具有400 μl的scL/美法侖(在任一比例下)或未囊封之美法侖的無菌50 ml離心管中孵育一小時。此種孵育後，用胎牛血清補充該培養基至10%的最終濃度(每管0.3 ml)。另外孵育47 h之後，藉由細胞的台盼藍(Trypan Blue)計數來測定細胞活力。為完成此操作，在2 mL微量離心管(eppendorf tube)中將一份台盼藍溶液與一份細胞懸浮液混合(1：1稀釋)混合(例如200 μL台盼藍與200 μL細胞懸浮液混合)。使用血細胞計數器及顯微鏡，計數活細胞(未染色的)及死細胞(染色的)的數目。計算每0.1 mm3的細胞的平均數目，並且測定每mL的細胞的數目。如下計算活細胞的百分比：活細胞%=(活細胞的數目/細胞的數目)*100
將結果繪圖，並且自藥物濃度相對活細胞的百分比的圖形中內插IC50及IC30值(分別為導致50%及30%細胞殺死的藥物濃度)。
第33圖示出與未囊封之美法侖比較，美法侖被囊封於脂質體中的靶向腫瘤的scL/美法侖奈米複合物具有明顯提高的抗癌療效。未囊封之美法侖具有17.6 μM的IC50值。相比之下，當經由本發明之方法，在脂質體與美法侖的1：1莫耳比下囊封於脂質體中，並且藉助本發明之靶向腫瘤的奈米複合物傳遞至腫瘤細胞時，在大致不到2倍的美法侖下，將有效地殺死癌細胞(9.6 μM的IC50)。雖然不是顯著的，但當在0.75：1(莫耳比)之脂質體：美法侖比例下製備脂質/美法侖時，未囊封之美法侖與scL/美法侖之間的IC50值仍存在30%的減少。用單
獨脂質體來轉染不能引起任何明顯的細胞殺死(IC50>33 μM)，此暗示出對於scL/美法侖觀測到的敏化作用不是藉由脂質體的非特異性細胞殺死之結果。因此，當在本發明之方法中使用時，各種不同之脂質體與美法侖之莫耳比將產生一種化合物，當使用本發明之方法，藉由簡單混合並無化學偶聯來使該化合物複合至經靶向部分時，將產生一種對多發性骨髓瘤細胞有出人意料的增強療效的複合物。
類似之結果在第34圖中示出，將未囊封之美法侖與如本文所述之、無經靶向部分之脂質/美法侖及完全的scL/美法侖奈米複合物，以及與單獨之脂質體相比較。如在實例1及2中所述，在1：1之脂質體與美法侖之莫耳比(脂質體濃度=2 mM)下，製備脂質/美法侖及scL/美法侖。抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段(TfRscFv)被用作經靶向部分，TfRscFv與脂質體比例為1：30(w：w)的。又，只有脂質體對此等多發性骨髓瘤細胞實際上沒有細胞殺傷作用。相比之下，即使無經靶向部分，當使用本文描述之方法以1：1(脂質：美法侖)之莫耳比來囊封於脂質體中時，與游離的(未囊封之)美法侖比較仍存在IC50值明顯減小。當使用完全的scL/美法侖複合物時，此種敏化作用的水平甚至更高(幾乎2倍)。在經由本發明之方法囊封於脂質體中後，此種多發性骨髓瘤細胞的敏化作用水平是出人意料的。
如上所述，使用抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段(TfRscFv)作為經靶向部分、1：1之脂質：美法侖莫耳比(尺寸=21 nm)(脂質體濃度=2 mM)以及1：30(w：w)的TfRscFv與脂質體比例來製備含有蔗糖(最終濃度=10%)的scL/美法侖複合物。隨後將此種複合物凍乾，並且在2℃至8℃下，將樣品存放在乾燥器中。存放一週之後，用不含內毒素的水重構凍乾的scL/美法侖複合物，並且用於轉染如上所述之KMS-11細
胞。重構的scL/美法侖之尺寸是56 nm(數均值)，此尺寸係於新鮮製備時，藉由本發明之方法來製備之複合物的較佳尺寸範圍內。因此，凍乾不能明顯地改變複合物之尺寸。將凍乾的/重構的scL/美法侖的細胞殺傷能力與新鮮製備之scL/美法侖及游離的(未囊封之)美法侖相比較。結果在第35圖中示出。對於新鮮製備及凍乾的scL/美法侖奈米複合物來說，IC50及IC20值實際上是相同的。因此，此種凍乾的複合物還能夠維持其生物活性的至少80%。
已經證實在多發性骨髓瘤細胞中，恢復或活化腫瘤抑制基因p53路徑誘導了細胞凋亡(程序性的細胞死亡)(Ludwig H、Beksac M、Blade J、Boccadoro M、Cavenagh J、Cavo M等Current MM treatment strategies with novel agents：a European perspective.Oncologist 2010；15(1)：6-25；Hurt EM、Thomas SB、Peng B、Farrar WL.Reversal of p53 epigenetic silencing in multiple myeloma permits apoptosis by a p53 activator.Cancer Biology & Therapy 2006；5：1154-60)。此外，調查多發性骨髓瘤疾病的分子病因的研究已經證實，骨髓瘤細胞通常具有健康的(即，未突變的)p53基因，但具有非常少的p53蛋白質。恢復p53水平會減慢多發性骨髓瘤細胞的生長，並且引起其死亡。因此，p53基因治療是針對多發性骨髓瘤的合理治療策略。
如在美國專利第7,780,822號中所述(該專利的全部揭示內容以引用之方式併入本文)，已經成功地開發了帶有編碼wtp53基因的質體DNA的並經由TfRscFv(scL-p53)來經靶向之傳遞系統。在許多不同腫瘤類型中，全身性投與scL-p53產生高水平的wtp53表現。亦已經開發
了與化療/放射組合使用的scL-p53，以便藉由誘導細胞凋亡來增加腫瘤對此等標準治療模態的反應。
使用被證實是有效靶向並有效傳遞wtp53至原發性及轉移性腫瘤的scL-p53，應該是增加多發性骨髓瘤細胞中p53蛋白質水平的有效方式。
本文描述的為scL/美法侖與scL-p53的組合使用。用作單一療法的scL/美法侖的開發將對患者來說是有益的，原因在於我們已經證實與未囊封之美法侖(目前用於治療的形式)比較，在用scL/美法侖治療之後，多發性骨髓瘤細胞死亡出人意料地增高。然而，因為多發性骨髓瘤細胞中p53表現之增加還具有治療潛力，所以組合方法將甚至具有更大的治療潛力。
設計實驗來證明用於多發性骨髓瘤的新穎、更有效之治療方案的開發，該治療方案在與scL-p53組合使用時使用scL/美法侖。
為了驗證用scL-p53治療可以導致多發性骨髓瘤細胞死亡的假設，如上所述進行了初步的細胞活力分析。用單獨的scL-p53轉染上述的人類多發性骨髓瘤細胞系KMS-11。藉由以如在美國專利第7,780,822號中所述之限定順序，藉由簡單混合組分來製備scL-p53。用遞增劑量的編碼正常人類wtp53基因的質體製備複合物。質體DNA劑量在0 μg至1.3 μg DNA範圍。使用上述相同的程序轉染KMS-11細胞。在轉染後24 h測定活細胞的百分比，並且測定IC50及IC20值。用scL-p53的轉染導致劑量依賴性水平的細胞死亡，暗示出多發性骨髓瘤細胞中的wtp53藉由自身來增加表現可以導致明顯水平的細胞死亡(第36圖)。此為出人意料的，因為本領域中關於調節多發性骨髓瘤中
p53表現的報道都採用了其他活化劑或藉由阻斷其他蛋白質的表現來間接、不為直接地影響p53。
同時轉染scL/美法侖與scL-p53的組合以便評估KMS-11細胞對此種組合治療的反應，該scL/美法侖與scL-p53兩者都被證實自身可增加細胞死亡水平。使用上述的程序來轉染KMS-11細胞。如上所述，使用抗轉鐵蛋白受體單鏈抗體片段(TfRscFv)作為經靶向部分、1：1之脂質：美法侖莫耳比(脂質體濃度=2 mM)以及1：30(w：w)的TfRscFv與脂質體比例來製備scL/美法侖複合物。用含有遞增劑量的美法侖的不同scL/美法侖複合物來轉染細胞(每管4×105)。如先前所述(美國專利第7,780,822號)製備scL-p53。用於所有轉染的DNA劑量為0.2 μg/4×105個細胞。此種劑量基於來自第36圖的資料，其中發現IC20為大致0.2 μg之劑量。使用IC20來允許檢測兩種治療的加合效應或協同效應。用單獨游離的(未囊封之)美法侖、單獨scL/美法侖、或游離的(未囊封之)或scL囊封的美法侖加scL-p53的組合來轉染KMS-11細胞(圖37)。
當與單獨游離的美法侖比較時，用scL/美法侖複合物的轉染產生明顯的對藥物的化學敏化作用。此外，當與游離的或scL複合的美法侖組合使用時，添加scL-p53能夠明顯增強KMS-11細胞對此種化療劑的反應，與scL/美法侖與scL-p53的組合時最有效。與未囊封之美法侖--用作治療劑的標準形式(IC50=10.9)的IC50比較，scL/美法侖加scL-p53的IC50為4.57，細胞死亡增加大於2倍。
雖然在活體外已經進行了此等研究，但完全可預料的是，當scL/美法侖與scL-p53以組合全身性地投與到人類患者時，亦將出現類似之結果(多發性骨髓瘤細胞死亡增加)。scL-p53之劑量預計在每次輸注2.4與3.6 mg之間，同時每週輸注兩次，輸注5週。將以單次靜脈內輸注6 mg/m2與16 mg/m2之間之劑量，以兩週間隔，輸注四個劑量來投與scL/美法侖。
在此觀察到的該組合的出人意料的增強水平暗示出此種組合方法作為新穎治療模態以用於治療人類患者的多發性骨髓瘤的潛力。
材料：DOTAP(1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷，鹽酸鹽)
-自Avanti Polar Lipids,Inc.獲得，目錄號(#)890890E MW 698.55
-濃度：25 mg/mL乙醇溶液
在使用之前，用無水乙醇稀釋脂質至20 mg/ml
DOPE(1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺)
-自Avanti Polar Lipids,Inc.獲得，目錄號(#)850725E MW 744.04
-濃度：25 mg/mL乙醇溶液。
在使用之前，用無水乙醇稀釋脂質至20 mg/ml阿托品，粉末(M Wt=289.37)
-自Sigma獲得
-溶解在無水乙醇中至100 mM之濃度。
超純、無內毒素的LAL試劑水(例如BioWhittaker，目錄號(#)W50-500，內毒素<0.005 EU/ml)
注射器：漢密爾頓(Hamilton)氣密注射器，具有22號針頭，部件#81365)的1 ml(漢密爾頓#81230)
程序：
1.每次藉由將阿托品溶解在無水乙醇中至100 mM之濃度，藉由高速渦旋直至溶解(必須為澄清的)來製備新鮮的阿托品溶液。在室溫下保持直至用於與脂質混合(以下步驟3)。
2.在37℃下將脂質溶液置放10 min至15 min，接著將脂質溶液置放於65℃水浴中，並偶爾搖動5 min。
3.為了製備脂質-阿托品：將具有攪拌棒的棕色玻璃瓶置放於被設置在50℃至60℃的熱板上。當在無飛濺的高速下攪拌時，按以下順序(重要的)將脂質及阿托品添加至瓶中：對於1：1(脂質：阿托品)莫耳比
DOTAP 175 μl(的20 mg/ml)=5 μmol或3.5 mg
DOPE 187.5 μl(的20 mg/ml)=5 μmol或3.75 mg
添加阿托品溶液，100 μl(的100 mg/ml)=10 μmol，在已經添加了所有3種組分之後，繼續地攪拌3 min。
4.同時，在具有攪拌棒的棕色玻璃瓶中，在水浴中將4,569 μL LAL水溫熱至65℃。在添加脂質-阿托品溶液之前，立即將瓶移至熱板(50℃至60℃)。在無飛濺的高速下攪拌水，攪拌幾秒，以便自攪拌棒上去除氣泡。
5.將該水保持在熱板上。在脂質添加期間，在高速(無飛濺)下連續攪拌水。如上(步驟2)混合脂質與阿托品之後，立即並且盡可能快地使用用於注射的漢密爾頓注射器，將混合物注射熱板(50℃至60℃)上的熱水中直接進入渦旋的中心。在添加脂質混合物同時寬鬆地遮蓋之後，在高速(無飛濺)下繼續攪拌1 min。
6.將玻璃瓶移至室溫攪拌板，並且繼續緩慢地攪拌直至寬鬆遮蓋之溶液冷卻至20℃至25℃(室溫)。
7.用室溫LAL水將體積調至5 ml。
8.使用0.22 μm孔的Milex GV過濾器過濾溶液。
9.若需要，則測量粒徑及ζ電勢。
此等製備方法之結果證明了脂質體具有約20 nm至100 nm的粒徑及約10 mV至50 mV的ζ電勢。
使用根據上述程序來製備之包含阿托品的陽離子脂質體，藉由簡單混合組分並且沒有化學偶聯來製備如本文所述之配位體靶向之阿托品陽離子脂質體複合物。根據以下一般程序製備該複合物。
向對於脂質體-水(或緩衝液)，添加適當量的經靶向部分以給予所需之比例，並且藉由輕輕倒置混合5至10秒。經靶向部分可以為配位體，其包括但不限於轉鐵蛋白或葉酸酯、或其他蛋白質。經靶向部分亦可為經靶向之細胞表面受體的抗體或抗體片段，其包括但不限於轉鐵蛋白或HER-2受體(例如，TfRscFv)。將此種混合物在室溫下保持10至15分鐘(在大致5分鐘之後，再次輕輕倒置5至10秒)。為產生所需的最終體積，將經靶向部分-脂質-阿托品摻合物與得到所需的體積需要的任何體積(包括零體積)的水(適合地去離子水)或任何pH的緩衝液(包括但不限於Tris緩衝液、HEPES緩衝液或磷酸鹽緩衝鹽水)混合，並且輕輕倒置5至10秒來混合。將此種混合物在室溫下保持10至15分鐘(在大致5分鐘之後，再次輕輕倒置5至10秒)。
用於活體外時，最後添加右旋糖或蔗糖至約1%至50%(V：V)右旋糖或蔗糖的最終濃度，適合地5%右旋糖或10%蔗糖，並且藉由輕輕倒置來混合5至10秒。將此種混合物在室溫下保持10至15分鐘(在大致5分鐘之後，再次輕輕倒置5至10秒)。
藉由該方法來製備之最終複合物之尺寸(數均值)為約10 nm至800 nm之間、適合地約15 nm至400 nm、最適合地約20 nm至200 nm，並具有如藉由使用Malvern電位儀ZS的動態光散射所測定的介於約1 mV與100 mV之間、更適合地5 mV至60 mV、並且最適合地10 mV至50 mV的ζ電勢。此種尺寸足夠小，可以有效地跨越腫瘤毛細血管床或跨越血腦障壁。
對於相關領域一般技術人員而言容易顯而易見的是，對本文描
述之方法及應用的其他適合的修改及調整可以在不脫離實例中的任一個之範圍之情況下做出。
應當理解的是，雖然本文已經說明及描述了某些實施例，但申請專利範圍不限於描述及示出的部分的特定形式或安排。在說明書中，已經揭示了說明性的實施例，並且雖然採用了特定術語，但其僅為在一般性及描述性的意義上使用，並不為了限制。鑒於以上教授的內容而修改及變化實施例是可能的。因此，應當理解的是，可實踐除了如確切該之外的實施例。
在本說明書中提到的所有公開、專利及專利申請以引用之方式併入本文，以達到如同每個單獨的公開、專利或專利申請係確切地及單獨地指出以引用之方式併入一樣。
Claims (26)
- 一種製備經靶向之替莫唑胺(temozolomide)陽離子脂質體複合物的方法，該方法包括：(a)在乙醇中製備包含一或多種陽離子脂質之脂質溶液；(b)製備替莫唑胺之溶液；(c)將該脂質溶液與該替莫唑胺之溶液混合；(d)將脂質與替莫唑胺的該混合物注射至水溶液中，進而形成替莫唑胺陽離子脂質體；(e)將該替莫唑胺陽離子脂質體與經靶向部分(targeting moiety)混合以形成該經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體，其中該經靶向部分直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
- 如請求項1之方法，其中該經靶向部分為抗體、抗體片段或蛋白質。
- 一種製備經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物的方法，該方法包括：(a)在乙醇中製備包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)之脂質溶液；(b)製備替莫唑胺之溶液；(c)將該脂質溶液與該替莫唑胺之溶液混合；(d)將脂質與替莫唑胺的該混合物注射至水溶液中，進而形成替莫唑胺陽離子脂質體；(e)將該替莫唑胺陽離子脂質體與抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)混合以形成該經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複 合物，其中該TfRscFv直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
- 如請求項1或3之方法，其中該替莫唑胺之溶液係在1mM至200mM之濃度下之二甲亞碸(DMSO)中製備，且其中脂質：替莫唑胺之該莫耳比為0.1：1至5：1。
- 一種用於治療癌症患者之經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物，其中該經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物包含：(a)陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；(b)替莫唑胺；以及(c)經靶向部分，其直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
- 一種用於治療患者之腦癌之經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物，其中該經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物包含：(a)陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；(b)替莫唑胺；以及(c)抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)，其直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
- 如請求項5或6之經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物，其中該替莫唑胺係以10mg/m2至500mg/m2之劑量對該癌症患者投與。
- 如請求項5或6之經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物，其中脂質：替莫唑胺之該莫耳比為0.1：1至5：1。
- 一種藉由如請求項1之方法製備的經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物，其係用於治療具有癌症之患者。
- 一種製備經靶向之美法侖(melphalan)陽離子脂質體複合物的方法，該方法包括：(a)在乙醇中製備包含一或多種陽離子脂質之脂質溶液；(b)製備美法侖之溶液；(c)將該脂質溶液與該美法侖之溶液混合；(d)將脂質與美法侖的該混合物注射至水溶液中，進而形成美法侖陽離子脂質體；(e)將該美法侖陽離子脂質體與經靶向部分混合以形成該經靶向之美法侖陽離子脂質體，其中該經靶向部分直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
- 如請求項10之方法，其中該經靶向部分為抗體、抗體片段或蛋白質。
- 如請求項11之方法，其中該經靶向部分為單鏈Fv抗體片段。
- 一種製備經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物的方法，該方法包括：(a)在乙醇中製備包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)之脂質溶液；(b)製備美法侖之溶液；(c)將該脂質溶液與該美法侖之溶液混合；(d)將脂質與美法侖的該混合物注射至水溶液中，進而形成美法侖陽離子脂質體；(e)將該美法侖陽離子脂質體與抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv (TfRscFv)混合以形成該經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物，其中該TfRscFv直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
- 如請求項13之方法，其中該美法侖之溶液係在無水乙醇加鹽酸中製備。
- 如請求項10或13之方法，其中該美法侖係以1mM至200mM之濃度下，於無水乙醇加鹽酸中製備，其中脂質：美法侖之該莫耳比為0.1：1至5：1。
- 一種用於治療具有癌症之患者之經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物，其中該經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物包含：(a)陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；(b)美法侖；以及(c)經靶向部分，其直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
- 一種用於治療具有癌症之患者之經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物，其中該經靶向之美法侖陽離子脂質體複合物包含：(a)陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；(b)美法侖；以及(c)抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)，其直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
- 如請求項16或17之複合物，其中該美法侖係以5mg/m2至20 mg/m2之劑量對該癌症患者投與。
- 一種用於治療患者之腦癌之醫藥組合物，其包含：(a)陽離子脂質體複合物，其包含：(1)陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；(2)質體DNA，其表現野生型p53；以及(3)抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)，其直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯；及(b)由請求項1之方法製得之陽離子脂質體複合物，且其包含：(1)陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；(2)囊封於該陽離子脂質體中之替莫唑胺；及(3)抗轉鐵蛋白受體單鏈Fv(TfRscFv)，其直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
- 一種治療患者之有機磷中毒之經靶向之阿托品(atropine)陽離子脂質體複合物，其中該經靶向之阿托品陽離子脂質體複合物包含：(a)陽離子脂質體，其包含1,2-二油醯基-3-三甲基銨丙烷(DOTAP)及1,2-二油醯基-sn-甘油基-3-磷醯乙醇胺(DOPE)；(b)阿托品；以及(c)經靶向部分，其直接與該陽離子脂質體複合，但並非與該陽離子脂質體化學偶聯。
- 如請求項1或3之方法，其中該替莫唑胺之溶液係在50mM至200mM之濃度下之二甲亞碸(DMSO)中製備，且其中脂質：替 莫唑胺之該莫耳比為0.5：1至2：1。
- 如請求項1或3之方法，其中該替莫唑胺之溶液係在50mM至200mM之濃度下之二甲亞碸(DMSO)中製備，且其中脂質：替莫唑胺之該莫耳比為1：1。
- 如請求項5或6之經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物，其中脂質：替莫唑胺之該莫耳比為0.5：1至2：1。
- 如請求項5或6之經靶向之替莫唑胺陽離子脂質體複合物，其中脂質：替莫唑胺之該莫耳比為1：1。
- 如請求項10或13之方法，其中該美法侖係以50mM至200mM之濃度下，於無水乙醇加鹽酸中製備，其中脂質：美法侖之該莫耳比為0.5：1至2：1。
- 如請求項10或13之方法，其中該美法侖係以145mM至150mM之濃度下，於無水乙醇加鹽酸中製備，其中脂質：美法侖之該莫耳比為1：1。
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