TWI438227B - 一種磁性離子交換樹脂及其製造方法 - Google Patents

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Description

一種磁性離子交換樹脂及其製造方法
本發明係關於一種磁性離子交換樹脂及其製造方法，尤其係關於將離子交換樹脂高分子微粒膨脹後吸附磁性粒子之磁性離子交換樹脂及其製造方法。
磁性粒子可以藉由外界磁場來控制粒子的運動，從而達到分離、收集生物分子的目的，如細胞、DNA、RNA、抗體、抗原、蛋白質和核酸等生物分子或細胞，可以利用化學鍵結或物理吸附的方式附著在磁性粒子上，進而輕易地從溶液中分離出來。操作時只要控制外加磁場即可有效將微量目標物質從混合物中分離，不必使用過濾、層析、離心等步驟較為繁複的分離方法，故其在生物檢測領域有廣泛的應用。另外，因磁性粒子可利用化學鍵結或物理吸附的方式抓取蛋白質，亦可使用於酵素固定化，作為生化反應之觸媒。
離子交換樹脂是指表面帶有電荷的顆粒，一般而言，將正電荷或負電荷之離子性官能基結合在樹脂(通常是有機高分子)上的材料，稱為離子交換樹脂。離子交換樹脂具有離子交換功能，在溶液中它能將本身的離子與溶液中的同電性離子進行交換。依交換基團性質的不同，離子交換樹脂可分為陽離子交換樹脂和陰離子交換樹脂兩類。樹脂表面帶有負電荷官能基如磺酸(sulfonic acid)者，稱為陽離子交換樹脂；而帶有正電荷官能基如四級胺離子的，則為陰離子交換樹脂。陽離子交換樹脂平常吸附陽離子如鈉離子或氫離子，溶液中若有比樹脂表面吸附的陽離子濃度更高或吸附力更強的其他陽離子存在，會將陽離子交換樹脂表面的陽離子置換出來，此即離子交換的原理，因此，若要將陽離子交換樹脂抓住的陽離子脫附下來，只要加高濃度鹽類(如NaCl)即可。陰離子交換樹脂工作原理與陽離子交換樹脂相同，只是離子電荷相反。
結合磁性與離子交換功能的高分子微粒，即磁性離子交換樹脂。習知的磁性離子交換樹脂製造方法如中華民國專利申請號092100312所揭示的方法是先製造一具有連續水相與分散有機相的分散液，該有機相係含有一或多種可聚合單體、磁性粒子與分散劑，聚合該一或多種可聚合單體以形成合併該磁性粒子的聚合顆粒。若該聚合顆粒帶有胺基，或聚合顆粒經與化合物反應後帶有胺基，可以與過渡金屬陽離子錯合，此聚合顆粒即磁性陽離子交換樹脂。中華民國專利申請號094108928更進一步揭示使用這種離子交換樹脂從水溶液分離過渡金屬離子和其它離子方法。
類似這種利用兩相聚合方式將磁性粒子(通常為奈米級)與單體一起聚合形成高分子(聚合)顆粒，進而得到的磁性離子交換樹脂的例子很多。傳統的水包油(oil in water)的懸浮聚合方式，其係將單體、磁性奈米金屬顆粒(三氧化四鐵)、起始劑與溶劑等均勻混合後，乳化懸浮於有機相中，之後再倒入水相中進行聚合，得到內部具有磁性顆粒均勻分布的磁性高分子顆粒，更進一步在磁性高分子顆粒化學改質鍵結正電荷或負電荷的離子性官能基，即可製得磁性離子交換樹脂。韓國專利KR20040091385揭示的方法即在氮氣環境之下分散含磁性材料(magnetite)、單體、即交聯劑的有機相於水中，加入有四級胺基的可聚合介面活性劑之後，懸浮聚合反應就可以得到陰離子交換功能的磁性離子交換樹脂。
除了傳統懸浮聚合方式也可以採用所謂的噴霧懸浮聚合，例如Yang等人用溶解有聚乙烯醇(polyvinyl alcohol，PVA)的水溶液做為水相，油相則包括甲醇異丁烯酸(methyl methacrylate)與二乙烯基苯(divinylbenzene)為單體、包覆油酸(oleic acid)的四氧化三鐵、以及過氧化苯甲醯(benzoyl peroxide)等，在氮氣之下噴霧的油滴聚合之後聚合形成磁性的高分子顆粒，再進一步表面改質導入胺基形成磁性陰離子交換樹脂[Yang et al.,Appl. Microbiol. Biotechnol. 72(2006) 616-622]。
另一類方法是為以磁性金屬物質中心核，再以具有離子交換功能的高分子包覆於其外表面形成外殼，文獻提示各種製作方法[Heeboll-Nielsen et al.,J. Bioetchnol. 113(2004) 247-262]。中國大陸專利1680469A的製作方法是先將熱塑性有機高分子加熱至融溶狀態，混入磁性微粒交攪拌成均勻漿料熔液，再將此漿料熔液通過細孔型成微滴，微滴通過漂浮有活性之離子交換樹脂，最後收集到的顆粒即磁性離子交換樹脂。
反過來，也有人以離子交換樹脂為主顆粒，外面再附著磁性材料，形成有磁性之離子交換樹脂，如美國專利第5595666A號與第5652190A號揭示弱陰離子交換樹脂(聚胺氯環氧丙烷樹脂，polyamine-epichlorohydrin resin)表面附著磁性材料(磁性鐵，M2 O2 )，其中一個M是鐵，另一個M可以是鐵、鋇、鎂、鈣或相似的元素。文獻[Nixon,et al.,Chem. Mater.,4(1992) 117-121]也顯示交聯之瓊脂醣顆粒做成的離子交換樹脂也可以吸附磁性奈米微粒，製造成磁性離子交換樹脂。另有學者[Zhang et al.,J. Chromatogr. B,877(2009) 127-133]先製備大小約1 μm的交聯性高分子顆粒(單體與交聯劑分別為甲基丙烯酸環氧丙酯與二乙烯苯)，再與乙二胺反應形成帶正電荷之陰離子交換樹脂，最後浸泡在二價鐵與三價鐵(FeCl3 與FeSO4 )的溶液中，在鹼性條件下析出氧化鐵沉積在陰離子交換樹脂表面，最終得到可吸附DNA的磁性陰離子交換樹脂。
另外，比較複雜的方法例如美國專利第5855790號，揭示以磁性材料為核心，外圍是纖維狀的纖維素分子(cellulose fibre)，加上固定黏結劑(binder)之後形成高分子塊狀物，磨成粉末經功能化反應改質可得到磁性離子交換樹脂；或者將核心磁性材料及外圍纖維狀的纖維素置於含單體的油相之內，聚合之後再功能化反應改質也可得到磁性離子交換樹脂。
還有一種複合型(composite)的磁性離子交換樹脂，通常是奈米級的磁性材料如磁鐵礦(magnetite)、離子交換樹脂、以及高分子基材分別製作完畢，以適當溶劑將三者混在一起之後，噴霧乾燥製作成磁性離子交換樹脂的複合顆粒，這裡高分子基材扮演黏結磁性材料與離子交換樹脂的角色[Hickstein and Peuker,Biotechnol Prog. 24(2008) 409-416;Kappler et al.,J. Biosci. Bioeng. 105(2008) 579-58]。
簡單一點的方法有美國專利第6718742號，將5 μm以下的磁性粒子(四氧化三鐵)與多孔性帶負電荷的高分子離子交換樹脂聚甲基丙烯酸的羧基(polymethacylate carboxyl)顆粒浸泡，形成可以磁性分離DNA的磁性離子交換樹脂。這種磁性離子交換樹脂應該是利用高分子顆粒的孔洞特性，將磁性粒子卡陷在其中，故此種磁性離子交換樹脂在應用時，磁性粒子容易從孔洞中流出來。
日本專利JP2001272395曾揭示將磁性離子交換樹脂應用在分離血液中的組織胺(histamine)，被磁性離子交換樹脂吸附的組織胺經脫附後定量，即可得知血液中組織胺的含量。世界專利WO 2006/059655則敘述混合使用離子交換樹脂及磁性顆粒可以分離樣品中的特定微生物或細胞，以及從微生物或細胞中分離出核酸。複合型的磁性離子交換樹脂(magnetic ion-exchange composites)的典型如基材、磁性材料、及離子交換樹脂三者以一定比率混在一起，形成不定型的顆粒，曾被用來分離蛋白質[Kappler et al.,J. Biosci. Bioeng. 105(2008) 579-585]。
奈米級的磁性離子交換樹脂製作方式，通常是以奈米磁性材料為核心，經化學改質反應導入具離子交換功能的官能團，即得奈米級的磁性離子交換樹脂。中國大陸專利CN1699447A揭示在四氧化三鐵，在碳化二聯胺的活化之下與聚丙烯酸形成共價鍵結，即得有陽離子交換功能之磁性離子交換樹脂。四氧化三鐵共價鍵結羧甲基幾丁聚醣(carboxymethylated chitosan)亦可形成帶負電荷之奈米級的磁性離子交換樹脂，可應用於蛋白質的分離[Yang et al.,Ind. Eng. Chem. Res. 48(2009) 944-950]。但是前述文獻之磁性離子交換樹脂的顆粒大小會影響收集的時間，且樹脂顆粒越小收集時間越長，習知奈米級的磁性離子交換樹脂收集時間較長，在生物磁性的分離應用上較不實用，故發展一新穎可快速分離、純化生物分子之磁性離子交換樹脂，在產業發展上實有其必要性。
如前所述，習知製造磁性離子交換樹脂的方法較為繁雜、磁性粒子容易脫離、粒徑過小使收集效率低等等缺點，本發明提供一種磁性離子交換樹脂之製備方法，步驟包含：
a.　取一預先製備之離子交換樹脂高分子微粒，將其以一溶液浸泡，以使該離子交換樹脂高分子微粒膨脹，該離子交換樹脂高分子微粒係為聚苯乙烯或苯乙烯與至少一個單體所共聚合的共聚物，其中該苯乙烯或苯乙烯與至少一個單體聚合時添加一交聯劑而形成一高分子鏈(polymer chains)的網狀結構，該溶液能使該高分子鏈的網狀結構膨脹撐開；
b.　於該溶液中加入一磁性奈米粒子的膠體溶液，並調整pH值至8~12，使該磁性奈米粒子進入該高分子鏈的網狀結構中；以及
c.　使該離子交換樹脂高分子微粒與該溶液分離，其中，該離子交換樹脂高分子微粒因除去溶液而收縮，該高分子鏈的網狀結構恢復緊緻因而將該磁性奈米粒子包埋其中。
本發明亦提供一種以前述方式製備之磁性離子交換樹脂。
另外，本發明之磁性離子交換樹脂可以很有效率的分離生化分子，例如從細胞萃取液中分離純化DNA，也可以應用在酵素與蛋白質的固定化，進行酵素轉化等生物用途。故本發明另提供一種前述磁性離子交換樹脂用於吸附生物分子或細胞之用途，該生物分子包括DNA、RNA、抗體、抗原、蛋白質和核酸。
先前雖有專利(中華民國專利第I277632號與美國專利7754278B2)揭露一種磁性高分子微粒及其製造方法，亦使用與本案相同高分子微粒膨脹後滲透吸入(swelling and penetration)磁性奈米粒子的方法得到磁性高分子微粒，而該磁性高分子微粒可進一步在表面化學改質導入帶電荷官能基使成為磁性離子交換樹脂，但這些表面化學改質步驟常需要使用強酸、強鹼、或溶劑，磁性奈米粒子會滲漏出來或被溶解出來，例如磺酸化改質製作成陽離子交換樹脂需要使用強硫酸及硝酸，會造成高分子微粒內的磁性奈米粒子流失，微粒磁性大幅降低，是一大缺失。再者，此篇專利因使用高分子微粒(聚苯乙烯或含有聚苯乙烯的共聚物)，在膨脹後滲透吸入磁性奈米粒子時使用中性溶液即可，且溶液中的pH值影響不大；本發明使用離子交換樹脂進行膨脹後滲透吸入磁性奈米粒子時，因高分子微粒內表面帶有電荷官能基，故pH的影響甚大，因此本發明可藉由調整適當的pH值，而使離子交換樹脂吸入較多的磁性奈米粒子。
另外，美國專利第6718742號雖亦為磁性粒子與有孔洞的離子交換樹脂浸泡，但該篇專利之磁性粒子是陷在孔洞中，很容易掉露出來；而本發明則使用中度極性之溶劑將離子交換樹脂膨脹撐開高分子鏈，磁性奈米粒子滲進來再移除溶劑之後，磁性奈米粒子被牢牢套在交聯的高分子鏈當中，不會有漏出的現象產生。
以下將配合圖式進一步說明本發明的實施方式，下述所列舉的實施例係用以闡明本發明，並非用以限定本發明之範圍，任何熟習此技藝者，在不脫離本發明之精神和範圍內，當可做些許更動與潤飾，因此本發明之保護範圍當視後附之申請專利範圍所界定者為準。
請參閱第一圖，該圖為本發明磁性離子交換樹脂之製備方法的流程示意圖。於製備本發明磁性離子交換樹脂時，首先取一預先製備或購買之離子交換樹脂微粒將其與一溶液混合，使離子交換樹脂浸泡於該溶液中。當離子交換樹脂浸泡於溶液中時，此離子交換樹脂之高分子鏈(polymer chains)形成的網狀結構會因吸入溶液而使其膨脹。該離子交換樹脂也會此整體體積膨脹。接著，將一磁性奈米粒子加入上述含有該離子交換樹脂的溶液中，並使其均勻分散。此時會有部分的磁性奈米粒子進入該離子交換樹脂之高分子鏈形成的網狀結構中。
最後，去除溶液使離子交換樹脂與溶液分離，洗去未被離子交換樹脂吸收的磁性奈米粒子，並進一步將覆在離子交換樹脂上的溶液去除，其可藉由風乾或真空乾燥法來達成，或習知可用於去除溶液之方法皆可應用於此。此時離子交換樹脂會因少了溶液的膨潤而縮小，使得離子交換樹脂的孔洞縮小。原先進入離子交換樹脂高分子網狀結構或孔洞中的磁性奈米粒子，會因該高分子網狀結構收縮以及孔洞縮小而卡陷在其中，而使得磁性奈米粒子包埋於離子交換樹脂中，如此即可製得本發明的磁性離子交換樹脂。
上述可應用於本發明中的離子交換樹脂粒徑大小，只要是其粒徑大於磁性奈米粒子的粒徑即可，於本發明中並沒有特別的限制，但粒徑大小較佳在次微米到毫米級之間，即0.1 μm-1 mm之間。而可應用於本發明中的離子交換樹脂其高分子基材的種類，於本發明中亦無特別的限制，各種來源的高分子微粒皆可被應用於本發明中，但較佳係為聚苯乙烯或苯乙烯與至少一種高分子聚合用的單體所共聚合的共聚物(copolymer)，其中該單體較佳係為含有至少一個官能基的乙烯基(vinyl)單體，該共聚物內高分子鏈形成的網狀結構可以是交聯的，較佳的交聯劑是二乙烯苯(divinylbenzene,DVB)。
本發明中的離子交換樹脂其高分子基材上鍵結的帶電荷官能基，於本發明中亦無特別的限制，可為帶正電荷(陰離子交換樹脂)，或帶負電荷(陽離子交換樹脂)。
應用於本發明中的離子交換樹脂較佳為無孔性或是其上之孔洞直徑小於磁性奈米粒子粒徑者，但根據本發明所指出之方法所製得的磁性離子交換樹脂中所包埋的磁性奈米粒子主要是陷在離子交換樹脂高分子鏈形成的網狀結構中，因此不致於流失。熟習本技術領域之技藝者可根據本發明內容之敘述而了解到，應用於本發明之離子交換樹脂上的孔洞直徑可大於所使用之磁性奈米粒子的直徑。
另外，可應用於本發明中之磁性奈米粒子，於本發明中並沒有特別的限制，習知各種來源的磁性奈米粒子皆可被應用於本發明中。但使用磁性愈大的磁性奈米粒子，愈易製得高磁性的磁性離子交換樹脂。此外，若於製備時溶液中所含有的磁性奈米粒子濃度愈高，則可使吸收進入離子交換樹脂中的磁性奈米粒子愈多，即離子交換樹脂單位體積內會包埋愈多的磁性奈米粒子，最後所得的磁性離子交換樹脂的磁性也愈大。再者，當離子交換樹脂中所包埋的磁性奈米粒子為超順磁性(superparamagnetic)時，會使得最後所獲得之磁性離子交換樹脂也會具有超順磁性。此外，可應用於本發明中之磁性奈米粒子的材料，亦無特別的限制，例如氧化鐵粒子、具鐵磁性(ferromagnetic)的氧化物、鐵磁性鎳、鐵磁性鈷、鐵-鈷-鎳合金、碳化鐵(FeC)，以及鐵白金(FePt)合金等磁性物質。上述的氧化鐵在此可舉出的例子包含四氧化三鐵(Fe3 O4 )與三氧化二鐵(Fe2 O3 )等。上述含鐵磁性氧化物在此可舉出的例子包含MnZnFe2 O4 與NiZnFe2 O4 等。
此外，可應用於本發明中的溶液，需選用能使離子交換樹脂吸濕膨脹但不會使其溶解，且能使磁性奈米粒子均勻分散。該溶液包含具有中度極性的溶劑，且該溶劑係可與水及大部分的有機溶劑互溶。作為本發明中溶液的例子，可為單一種溶劑、數種溶劑之混合液或溶劑與水的混合液。此外，該溶劑較佳為具備低生物毒性者，且該溶劑的韓森(Hansen)溶解參數之極性參數(polar parameter)值較佳介於2至12(cal/cm3 )1/2 之間，更佳為介於5至9(cal/cm3 )1/2 之間，且氫鍵參數(hydrogen bonding parameter)值較佳介於2至8(cal/cm3 )1/2 之間，更佳為介於3至6(cal/cm3 )1/2 之間。其中，所述的溶劑較佳為偶極非質子性溶劑(dipolar aprotic solvents)，在此可舉出的例子，包含二甲基亞碸(dimethylsulfoxide,DMSO)(極性參數值為8.0(cal/cm3 )1/2 ，氫鍵參數值為5.0(cal/cm3 )1/2 )、甲基吡咯烷酮(N-methyl-2-pyrrolidone,NMP)(極性參數值為6.0(cal/cm3 )1/2 ，氫鍵參數值為3.5(cal/cm3 )1/2 )、二甲基甲醯胺(dimethylformamide,DMF)(極性參數值為6.7(cal/cm3 )1/2 ，氫鍵參數值為5.5(cal/cm3 )1/2 )與二甲基乙醯胺(dimethylacetamide,DMAC)(極性參數值為5.6(cal/cm3 )1/2 ，氫鍵參數值為5.0(cal/cm3 )1/2 )等。
以下將由實施例一、二闡釋本發明磁性離子交換樹脂之製作方法，實施例四為比較不同的磁性粒子初始濃度對成品粒徑及分離吸附物質時間之影響，另外，為闡釋本發明的磁性離子交換樹脂有廣泛的用途，於實施例三、五及六說明其在DNA分離純化，酵素蛋白質的固定化的結果。
實施例一 本發明磁性離子交換樹脂之製備以及pH值對擴散量的影響
取0.25 g的陰離子交換樹脂(MonoPlus M500或MonoPlus MP64)浸泡於甲基吡咯烷酮(NMP，極性參數值為6.0(cal/cm3 )1/2 ，氫鍵參數值為3.5(cal/cm3 )1/2 )與水的混合液於錐形瓶中，NMP：H2 O的體積比(v/v)為3:4，亦即15毫升NMP以及20毫升H2 O，利用超音波震盪均勻。置於恆溫震盪水槽於200 rpm、25℃條件下24小時，使其膨脹。
本實施例中，兩種陰離子交換樹脂MonoPlus M500與MonoPlus MP64的基材都是聚苯乙烯且有二乙烯苯交聯，MonoPlus M500的表面官能基是-[Ph-(CH2 )-N(CH3 )3 ]+ ，粒徑大小0.62 mm；MonoPlus MP64為弱鹼性陰離子交換樹脂，表面官能基為四級胺，粒徑大小0.59 mm。
另外，以化學法共沉法製備磁性奈米粒子，首先將二價及三價鐵離子以莫耳比1：2之比例混合，以300 rpm之轉速進行攪拌，並以1 M氫氧化鈉(NaOH)溶液調整反應物之pH值至12，之後於60℃下使其反應1小時後，使其冰浴降溫。再以3,000 rpm(約為2,500 g)之轉速離心後取其黑色沉澱物，並將此沉澱物置於1N氯化氫(HCl)溶液中浸泡1.5小時。最後，經離心取其沉澱物，並加入去離子水使其分散，藉此即可獲得具有磁性的磁性奈米粒子(四氧化三鐵)，其平均大小約10奈米。
於前述含有陰離子交換樹脂的溶液中，加入上述2.5 ml含有四氧化三鐵磁性奈米粒子的磁性奈米水溶液，其濃度為10 mg/ml，調整pH值至3~12不等。置於震盪水槽於200 r.p.m、30℃條件下，浸泡2天，以使磁性奈米粒子吸入陰離子交換樹脂中。抽氣過濾清除多餘溶劑，再利用甲醇和水清洗顆粒三次。最後將顆粒風乾即得磁性陰離子交換樹脂。
請參考第二圖，該圖為陰離子交換樹脂MonoPlus M500及MonoPlus MP64經由上述方法處理前後之外觀圖。由第二圖可看出兩種陰離子交換樹脂在NMP的水溶液膨脹24小時之後，再與四氧化三鐵磁性奈米粒子浸泡2天，清洗風乾之後所得磁性離子交換樹脂顏色明顯偏黑，見第二(b)圖與第二(d)圖，證實磁性奈米粒子已進入離子交換樹脂中。因離子交換樹脂的孔洞為相通的，若磁性奈米粒子只是進入離子交換樹脂的孔洞，則容易流出，故本發明之磁性離子交換樹脂之磁性粒子是位於高分子鏈的網狀結構內，而非高分子顆粒的孔洞。
為得知溶液pH值對於Fe3 O4 奈米粒子擴散進入離子交換樹脂顆粒的量的影響，利用原子吸收光譜儀(AAS)測量陰離子交換樹脂MonoPlus M500在不同的pH值之下，擴散進入顆粒的Fe3 O4 的量，結果如第三圖所示。由第三圖可知Fe3 O4 擴散量(進入離子交換樹脂的量)隨pH值而變化，且Fe3 O4 擴散進入離子交換樹脂內部時，pH對擴散量的影響非常大。在pH值低於7的情況下，陰離子交換樹脂所含Fe3 O4 量並沒有很明顯的上升，pH值到達8-9之間時，Fe3 O4 含量上升差不多為酸性條件的2-3倍左右，pH值10-12時，Fe3 O4 含量更提升為酸性條件的8-9倍之多。結果顯示擴散時，需要在強鹼性的條件之下。此現象的原因推測為Fe3 O4 的等電點大約在pH 6.8左右，在pH>7時，Fe3 O4 帶負電，容易和陰離子交換樹脂MonoPlus M500親近，進而使得Fe3 O4 比在酸性環境下更容易擴散進入。Fe3 O4 在pH10時，有較高的帶電荷量，因此容易進行吸附進而擴散進入陰離子交換樹脂MonoPlus M500之內部。
實施例二 磁性粒子的初始濃度對擴散量的影響
取0.25g的陰離子交換樹脂(MonoPlus M500或MonoPlus MP64)、或陽離子交換樹脂(MonoPlus S100)浸泡於甲基吡咯烷酮(NMP)與水的混合液於錐形瓶中，甲基吡咯烷酮與水的體積比(v/v)為3:4，亦即15毫升甲基吡咯烷酮以及20毫升的水，利用超音波震盪均勻。置於恆溫震盪水槽於200 rpm、25℃條件下24小時，使其膨脹。
本實施例中，陽離子交換樹脂MonoPlus S100基材為交聯性聚苯乙烯，表面官能基是磺酸根(sulfonic acid)，粒徑大小0.315~1.25 mm，外觀為透明淡咖啡色。
接著，加入2.5 ml實施例一中的四氧化三鐵磁性奈米溶液，其濃度為2.5 mg/ml、或5 mg/ml、或7.5 mg/ml、或10 mg/ml，調整pH值至12。置於震盪水槽於200 r.p.m、30℃條件下，浸泡2天，以使磁性奈米粒子吸入離子交換樹脂中。抽氣過濾清除多餘溶劑，再利用甲醇和水清洗顆粒三次。最後將顆粒風乾即得磁性離子交換樹脂。
為瞭解離子交換樹脂吸收Fe3 O4 量與所加入Fe3 O4 溶液之初始濃度的關係，利用原子吸收光譜儀(AAS)分析三種離子交換樹脂MonoPlus M500、MonoPlus MP64以及MonoPlus S100，在不同起始Fe3 O4 浸泡濃度之下，離子交換樹脂內部吸入的Fe3 O4 含量。第四圖顯示離子交換樹脂吸入的Fe3 O4 量隨浸泡時的初始Fe3 O4 濃度之變化。由第四圖可以看出離子交換樹脂含Fe3 O4 量隨初始Fe3 O4 濃度增加而上升。陽離子交換樹脂LewatitMonoPlus S100在起始濃度為10 mg/ml最終可得到的含Fe3 O4 量為6.63±0.27mg/g離子交換樹脂，而LewatitMonoPlus MP64在同條件下含Fe3 O4 量為8.12±0.38 mg/g。最終LewatitMonoPlus M500的Fe3 O4 含量最高，每克含13.9±0.17 mg的Fe3 O4 ，此時的飽和磁化量為1.68 emu/g。
本實施例顯示利用增加初始Fe3 O4 濃度可以得到磁性材料含量較高的磁性離子交換樹脂，離子交換樹脂在磁場中從溶液分離出來的時間亦相對縮短。結果顯示在初始Fe3 O4 濃度為10 mg/ml時所得到之磁性MonoPlus M500，被磁場抓住(使用Millitenyi Biotec公司的磁座MAFSiMAGTM Seperator)，自溶液中分離所需時間最短，只需約一秒鐘。
實施例三 利用本發明磁性離子交換樹脂分離質體DNA
含有質體pEGFP-C1質體的E. coli 接種於30 ml的LB培養液(含100 μg/ml康那黴素(Kanamycin))，於37℃震盪培養箱中以150 r.p.m.培養16-18小時。將此培養好的菌液加入含有250 ml LB培養基(含100 μg/ml康那黴素)的錐形瓶中，於37℃、150 rpm條件下，隔夜培養。再將此培養好的菌液加入含有3 L LB培養基(含100 μg/ml康那黴素)的錐形瓶中，於37℃、150 rpm條件下，培養5小時。以4℃，12000 rpm離心20分鐘並且去掉上清液。離心完的菌塊加入84ml的G/T/E緩衝液(成分為50 mM葡萄糖、10 mM EDTA、25 mM Tris-HCl以及144 mg的溶菌酶，pH=8.0)充分混合後並且冰浴20分鐘。之後加入144 ml新鮮配置的NaOH/SDS冷變性溶液(成分為0.2 N NaOH以及1% SDS)，混合均勻後冰浴10分鐘。加入90ml 3 M醋酸鈉(pH=5.0)，混合後冰浴20分鐘。以4℃，10000 rpm離心20分鐘，此步驟所收集之上清液為細菌粗萃液。
取10 mg實施例一中所製得之磁性離子交換樹脂(離子交換樹脂為MonoPlus M500，膨脹後與濃度為10 mg/ml之磁性奈米水溶液浸泡，調整pH值為12，最終所得之磁性陰離子交換樹脂)，與1 ml細菌粗萃液，以及1 ml黏合緩衝液(binding buffer)(10 mM Tris-HCl,1 M NaCl,1 mM EDTA,pH=6.5)，三者均勻混合5分鐘，進行選擇性吸附，再利用Millitenyi Biotec公司的磁座MAFSiMAGTM Seperator分離磁性奈米粒子顆粒，去除上清液，再加入2 ml清洗緩衝液(10 mM Tris-HCl以及1 mM EDTA,pH=8)清洗三次，去除上清液，加入1 ml脫附緩衝液(1.5 M NaCl,0.01 M Tris-HCl,1 mM EDTA,pH=9.0)脫附兩次，即可得純化質體DNA溶液。表一顯示純化前(細胞粗萃液之上清液)、吸附殘餘液、一至三次沖洗之上清液、以及兩次脫附液中的DNA濃度、RNA濃度、蛋白質濃度、及Abs260 /Abs280 比值，其中Abs260 是測DNA含量，Abs280 是測蛋白質含量，故Abs260 /Abs280 比值越高，代表DNA純度越高。
另取10 mg離子交換樹脂MonoPlus M500做為控制組，以上述方法從細菌粗萃液中分離純化質體DNA，各階段的結果如表二。
利用分光光度計NanoDrop 1000量測出Abs260 /Abs280 比值以及DNA含量，再利用Qubit fluorometer測量RNA含量，以及利用Bradford Protein Assay的方法測量蛋白質含量。結果由表一可以看出，在原本在細菌粗萃液中Abs260 /Abs280 比值為2.17至最後純化之後為1st脫附液和2nd脫附液之Abs260 /Abs280 比值可降至1.80左右。而利用非磁性的MonoPlus M500純化DNA的結果純化DNA的結果如表二所示，最終Abs260 /Abs280 比值為1.94，而RNA含量使用磁性MonoPlus M500時，可降至1 μg/ml以下，非磁性只能降至6 μg/ml以下、蛋白質含量可以降至2 μg/ml以下和MonoPlus M500比較，非磁性只能降至5 μg/ml，顯示出使用磁性離子交換樹脂純化效果甚至比使用非磁性離子交換樹脂的高。由第五圖可以看出RNA和小分子碎裂的DNA藉由一系列的純化步驟可以從細菌粗萃液中加以分離。從第一次脫附液和第二次脫附液的總合量可以計算每克磁性離子交換樹脂選擇性吸附質體DNA的量為4.68 mg，非磁性離子交換樹脂每克則吸附3.93 mg DNA，顯示磁性離子交換樹脂較佳，這是因為磁性離子交換樹脂回收較完全所導致的結果。
本實施例闡釋本發明之磁性離子交換樹脂之效用優越，其離子交換功能並沒有受到磁性奈米吸入後的影響，而有效利用表面官能基進行DNA之選擇性吸附，達到分離與純化的目的。同時磁性交換樹脂產品性質穩定，應用時不會流失磁性材料。
表一、磁性陰離子交換樹脂(製備自MonoPlus M500)分離純化DNA的結果(用量10 mg)
表二、非磁性陰離子交換樹脂MonoPlus M500分離純化DNA的結果(用量10 mg)
實施例四 不同的磁性粒子濃度對成品粒徑及分離吸附物質時間之影響
同實施例一之操作，取0.25g鍵結有二異丙胺(diisopropylamine)的聚苯乙烯-二乙苯微粒(Sigma 538736-5G、100-200目(mesh)、1%二乙烯苯(divinylbenzene)交聯)，此為陰離子交換樹脂，粒徑大小75-150μm。把前述陰離子交換樹脂浸泡於甲基吡咯烷酮(NMP)與水的混合液於錐形瓶中，NMP：H2 O的體積比(v/v)為3:4，亦即15 ml甲基吡咯烷酮以及20 ml水，利用超音波震盪均勻。置於恆溫震盪水槽於200 rpm、25℃條件下24小時，使其膨脹。
接著，加入2.5 ml實施例一中的四氧化三鐵磁性奈米溶液，其濃度為5 mg/ml或10 mg/ml，調整pH值至12。置於震盪水槽於200 rpm、30℃條件下，浸泡2天，以使磁性奈米粒子吸入離子交換樹脂中。抽氣過濾清除多餘溶劑，再利用甲醇和水清洗顆粒三次。最後將顆粒風乾即得磁性陰離子交換樹脂。
第六圖與第七圖分別為使用5 mg/ml與10 mg/ml的四氧化三鐵磁性奈米溶液時，所得的磁性離子交換樹脂之掃描式電子顯微鏡照相圖，顯示本發明磁性離子交換樹脂外觀為球型，粒徑大小分佈均勻。原本離子交換樹脂外觀為球型，粒徑大小平均為144±23μm；使用5 mg/ml的四氧化三鐵磁性奈米溶液所得的磁性離子交換樹脂，粒徑大小平均為176±14μm；使用10 mg/ml的四氧化三鐵磁性奈米溶液所得的磁性離子交換樹脂，粒徑大小平均為194±16 μm。顯示隨著四氧化三鐵磁性奈米粒子被吸入離子交換樹脂的吸入量增加，所得磁性離子交換樹脂之粒徑大小有增加的趨勢。
使用10 mg/ml的四氧化三鐵磁性奈米溶液時，所得的磁性離子交換樹脂之飽和磁化量為3.60±0.16 emu/g。與非磁性離子交換樹脂比較，磁性離子交換樹脂的懸浮溶液，使用Millitenyi Biotec公司的磁座MAFSiMAGTM Seperator，很快就可以從溶液分離出來使得溶液澄清。結果顯示在初始Fe3 O4 濃度為10 mg/ml時所得到之磁性離子交換樹脂，被磁座抓住使溶液澄清的時間只需四秒鐘；在初始Fe3 O4 濃度為5 mg/ml時所得到之磁性離子交換樹脂，因磁性較小所需時間較長，平均約九秒鐘。但都遠短於非磁性離子交換樹脂懸浮液澄清的時間(平均42秒)，這是非磁性離子交換樹脂只能靠重力沉降到試管底部，不只所需時間長，部分樹脂顆粒還會聚集貼附在試管壁上而未能全部在底部以便收集。本實施例充分顯示磁性離子交換樹脂之優點，容易利用磁場收集，快速與溶液分離。
實施例五 利用實施例四所製得之磁性陰離子交換樹脂分離質體DNA
取10 mg實施例四中所製得之磁性陰離子交換樹脂，與實施例三所製備之1 ml細菌粗萃液，以及1ml黏合緩衝液(binding buffer)(10 mM Tris-HCl、1 M NaCl、1 mM EDTA、pH=6.5)，三者均勻混合5分鐘，再利用磁座分離顆粒，去除上清液，再加入2 ml清洗緩衝液(10 mM Tris-HCl以及1 mM EDTA，pH=8)清洗三次，去除上清液，加入1 ml脫附緩衝液(1.5 M NaCl、0.01 M Tris-HCl、1 mM EDTA，pH=9.0)脫附兩次，即可得純化質體DNA溶液。表三顯示純化前(細胞粗萃液之上清液)、吸附殘餘液、第一次至第三次沖洗上清液、以及兩次脫附液(elution)中的DNA濃度、RNA濃度、蛋白質濃度、及Abs260 /Abs280 比值。
本實施例再度驗證本發明之磁性離子交換樹脂可以選擇性吸附DNA，純化後蛋白質與RNA含量大幅下降。從第一次脫附液和第二次脫附液的DNA數量的總合，可以計算每克磁性離子交換樹脂選擇性吸附質體DNA的量為8.76 mg，比實施例三的磁性離子交換樹脂的吸附量高很多，這是因為本實施例之磁性離子交換樹脂粒徑較小，所以單位質量的DNA吸附量較高所致。
表三、磁性陰離子交換樹脂(實施例四中所製得之磁性陰離子交換樹脂)分離純化DNA的結果(用量10 mg)
實施例六 以實施例二製得之磁性離子交換樹脂固定酵素
培養耐鹼性芽孢桿菌Bacillus halodurans 於含2%玉米芯的愛默生培養基(Emerson medium)，其內含0.55%酵母萃取物、0.5%消化蛋白質、0.02%硫酸鎂、及0.1%磷酸氫二鉀，將pH值調整至10。在37℃的培養箱震盪(170 rpm)培養4~5天。之後將菌液於13,000 rpm在4℃離心30分鐘，其上清液以硫酸銨在90%飽和度之下沉澱，13,000 rpm離心後之沉澱物以0.1 mM三(羥甲基)氨基甲烷鹽酸鹽緩衝溶液(pH 7.0)回溶，再透析後即得一內含45 kDa聚木糖酶(xylanase)的酵素溶液，其pI值為4.5。
取實施例二中所製得之磁性離子交換樹脂(離子交換樹脂為MonoPlus MP64，膨脹後與濃度為10 mg/ml之磁性奈米水溶液浸泡，調整pH值為12，最終所得之磁性陰離子交換樹脂)，與上述酵素溶液(127.8 U/ml)浸泡，pH調整為8，於4℃浸泡24 h，使酵素固定在磁性離子交換樹脂上。
酵素反應於50℃之下進行，每單位毫升的基質溶液添加50 mg固定有聚木糖酶的磁性離子交換樹脂(總活性0.255U)，基質溶液是2.0%(w/v)的聚木糖(xylan)溶於100 mM Tris-HCl緩衝液(pH 8.0)。基質是鹼萃取之玉米芯，其製法是將玉米芯磨粉後以固液比1:20(w/v)的15%氫氧化鈉在90℃之下反應90分鐘，所得上清液以醋酸(acetic acid)中和至pH 5.0，之後加上3倍體積之95%乙醇浸泡60分鐘，得到之沉澱物即為聚木糖(xylan)，可作為前述之基質溶液。
酵素反應係用磁性離子交換樹脂上固定的聚木糖酶將基質聚木糖轉化為木寡糖，包括木二糖、木三糖、及聚合度大於等於4的可溶性木寡糖。反應24小時之後的轉化率為74.4%，所得產物中木二糖與木三糖所佔比例為24.6%(w/w)。本實施例顯示本發明的磁性離子交換樹脂可應於固定酵素，做為生化反應之觸媒。
由實施例一至六可知，本發明磁性離子交換樹脂之製作方法簡單，且因為所製得的磁性離子交換樹脂中所包埋的磁性奈米粒子主要是陷在離子交換樹脂高分子鏈形成的網狀結構中，故磁性奈米粒子不容易流失，並且本發明磁性離子交換樹脂經證實可用於分離DNA或是固定酵素等用途。
第一圖係為本發明磁性離子交換樹脂之製備方法的流程示意圖。
第二圖係為(a)陰離子交換樹脂MonoPlus M500；(b)陰離子交換樹脂MonoPlus M500經實施例一方法製成之磁性陰離子交換樹脂；(c)陰離子交換樹脂MonoPlus MP64；(d)陰離子交換樹脂MonoPlus MP64經實施例一方法製成之磁性陰離子交換樹脂　之外觀圖。
第三圖係為溶液pH值對於MonoPlus M500製成磁性離子交換樹脂之Fe3 O4 磁性奈米粒子含量的影響。
第四圖係為離子交換樹脂吸收Fe3 O4 量與所加入Fe3 O4 溶液之初始濃度的關係。
第五圖係為利用磁性離子交換樹脂(原離子交換樹脂為MonoPlus M500)作質體DNA吸附分離之各階段所得DNA樣品之瓊脂電泳膠圖。M1：標記(200-14000bp)，M2：標記(100-3000bp)，L1：細菌粗萃液，L2：吸附殘餘液，L3：第一次沖洗液，L4：第二次沖洗液，L5：第三次沖洗液，L6：第一次脫附液，L7：第二次脫附液，M3：純質體pEGFP-C1，M4：DNA標記(200-14000bp)。
第六圖係為使用5 mg/ml的四氧化三鐵磁性奈米溶液時，所得磁性離子交換樹脂之掃描式電子顯微鏡照相圖。
第七圖係為使用10 mg/ml的四氧化三鐵磁性奈米溶液時，所得磁性離子交換樹脂之掃描式電子顯微鏡照相圖。

Claims (15)

  1. 一種磁性離子交換樹脂之製造方法，步驟包含：a.取一預先製備之離子交換樹脂高分子微粒，係具帶有電荷之官能基，將其以一溶液浸泡，以使該離子交換樹脂高分子微粒膨脹，該離子交換樹脂高分子微粒係為聚苯乙烯或苯乙烯與至少一個單體所共聚合的共聚物，其中該苯乙烯或苯乙烯與至少一個單體聚合時添加一交聯劑而形成一高分子鏈(polymer chains)的網狀結構，該溶液能使該高分子鏈的網狀結構膨脹撐開；b.於該溶液中加入一磁性奈米粒子的膠體溶液，並調整pH值至8~12，使該磁性奈米粒子進入該高分子鏈的網狀結構中，其中該磁性奈米粒子進入該高分子鏈的網狀結構中的量取決於該溶液之pH值；以及c.使該離子交換樹脂高分子微粒與該溶液分離，其中，該離子交換樹脂高分子微粒因除去溶液而收縮，該高分子鏈的網狀結構恢復緊緻因而將該磁性奈米粒子包埋其中。
  2. 如申請專利範圍第1項所述之製造方法，其中該離子交換樹脂高分子微粒係為鍵結有一正電荷官能基或一負電荷官能基之聚苯乙烯或苯乙烯與至少一個單體所共聚合的共聚物。
  3. 如申請專利範圍第2項所述之製造方法，其中該單體係為含有至少一個官能基的乙烯基(vinyl)單體。
  4. 如申請專利範圍第1項所述之製造方法，其中該交聯劑係二乙烯苯。
  5. 如申請專利範圍第1項所述之製造方法，其中該離子交換樹脂高分子微粒之粒徑為0.1μm~1mm。
  6. 如申請專利範圍第1項所述之製造方法，其中該溶液之韓森(Hansen)溶解參數的極性參數值為介於2至12(cal/cm3 )1/2 之間，且氫鍵參數值介於2至8(cal/cm3 )1/2 之間。
  7. 如申請專利範圍第6項所述之製造方法，其中該溶液之韓森(Hansen)溶解參數的極性參數值為介於5至9(cal/cm3 )1/2 之間，且氫鍵參數值介於3至6(cal/cm3 )1/2 之間。
  8. 如申請專利範圍第1項所述之製造方法，其中該溶液為偶極非質子性溶劑。
  9. 如申請專利範圍第1項所述之製造方法，其中該磁性奈米粒子係選自由氧化鐵、含鐵磁性氧化物、鐵磁性鎳、鐵磁性鈷、鐵-鈷-鎳合金、碳化鐵(FeC)以及鐵白金(FePt)合金所組成之群組。
  10. 如申請專利範圍第9項所述之製造方法，其中該氧化鐵係選自四氧化三鐵(Fe3 O4 )與三氧化二鐵(Fe2 O3 )所組成之族群。
  11. 如申請專利範圍第9項所述之製造方法，其中該含鐵磁性氧化物係選自MnZnFe2 O4 與NiZnFe2 O4 所組成之族群。
  12. 如申請專利範圍第1項所述之製造方法，其中步驟(b)之pH值為10~12。
  13. 如申請專利範圍第1項所述之製造方法，其中步驟(c)之後進一步包含以甲醇及/或蒸餾水沖洗該磁性離子交換樹脂之步驟。
  14. 一種如申請專利範圍第1至12項中任一項所述之製造方法所製造之磁性離子交換樹脂。
  15. 一種如申請專利範圍第14項所述之磁性離子交換樹脂用於純化生物 分子或細胞之用途，其中該生物分子係選自由DNA、RNA、抗體、抗原、蛋白質及核酸所組成之群組。
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