TW201307385A - 胃腸炎症和銀屑病以及哮喘的治療 - Google Patents
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Abstract
本發明提供了減輕胃腸炎症的方法和手段。具體而言,本發明提供了治療炎性腸病(IBD)及相關狀況的方法和手段。本發明進一步提供了治療銀屑病的方法和手段。本發明進一步提供了治療哮喘的方法和手段。
Description
本申請要求2010年10月25日提交的美國臨時申請系列No. 61/455,780、2011年10月3日提交的61/626,838、以及2011年10月12日提交的61/XXX,XXX(代理人案卷號No. GNE-0364-2PR)的根據條款119(e)的優先權以及權益,所述之每一份申請的全部內容均以引用方法全部併入本文。
本申請包含序列表,其通過EFS-Web以ASCII形式提交,並在此以引用方式全部併入本文。在2011年10月14日創建的所述之ASCII拷貝命名為GNE364US.txt,大小為xxx位元組。
本發明涉及與胃腸炎症(例如炎性腸病)、和/或銀屑病和/或哮喘有關的疾病的治療。具體而言,本發明涉及通過給藥IL-17RA和/或IL-17RE受體的拮抗劑(例如抗-IL-17RA和/或IL-17RE抗體、或抗體片段)來治療胃腸炎症和/或銀屑病和/或哮喘。
哺乳動物的皮膚和粘膜上皮細胞構成了防禦入侵的病原體的第一線。免疫系統與組織上皮之間的聯通對於宿主防禦感染以及自身免疫的發展是必要的1-3。在微生物入侵的過程中,由白細胞和上皮細胞衍生的因數策劃出最佳控制病原體的不同的防禦機制。諸如白細胞介素6(IL-6)和IL-1之類的一些細胞因數可以通過白細胞和上皮細胞產生,並由多種類型的細胞激發普遍存在的炎性應答4,5。T細胞,特別是T助性細胞子集,對感染過程中由上皮細胞激發的多種類型的宿主防禦機制起到必要的調節功能6。例如,在由TH1產生的干擾素γ(IFN-γ)增強了宿主對細胞內病原體的防禦的同時,由TH2細胞產生的IL-4和IL-13參與了寄生物感染的清除。最近,TH17細胞被識別出會賦予宿主防禦細胞外細菌和酵母菌感染的必要功能。Th17細胞優選地產生IL-17A、IL-17F和IL-22,所有這些都會促進組織上皮細胞和成纖維細胞的天生防禦機制7,8。
IL-17A和IL-17F屬於細胞因數的IL-17家族,該家族還包括IL-17B、IL-17C、IL-17D和IL-17E/IL-259,10。該家族的主要特徵包括高度保守的C-末端,以及調控二聚化的5個空間保守的半胱氨酸殘基11。這些細胞因數與異源二聚化的複合物IL-17RA-IL-17RE(由IL-17受體家族構成)結合,從而激發生物學作用9,10,12。IL-17A和IL-17F可以形成同源二聚體和異源二聚體,所有這些二聚體通過由IL-17RA和IL-17RC構成的受體複合物進行信號傳達12-14。IL-17E使用了由IL-17RA和IL-17RB亞單元構成的不同受體複合物,從而促進Th2免疫應答11,12,15,16,17。此外,IL-17還被鑒定為IL-17B的受體鏈18。目前,IL-17C和IL-17D的受體還不清楚。
研究的最好的IL-17家族細胞因數為IL-17A。IL-17A在與其受體結合時,其誘導了促炎趨化因數和細胞因數、與由上皮細胞、成纖維細胞、內皮細胞、軟骨細胞和脂肪細胞產生的組織重塑和急性期應答有關的抗微生物肽和蛋白質的表達,其中所述之細胞優選地表達IL-17RA和IL-17RC9,10。此外,IL-17A與諸如TNF-α、IL-1β和IFN-γ之類的其他細胞因數發揮協同作用,從而增加由各種靶細胞產生的促炎應答的誘導。IL-17A對於宿主抗微生物應答是重要的19。IL-17A的缺乏導致易受真菌和細菌感染,並在右旋糖酐硫酸鈉(DSS)-誘導的大腸炎中使疾病惡化,其中炎症是由於面膜的動態平衡受到干擾而驅使的,從而使得共生細菌與結腸組織之間相互作用20-24。除了這些保護性功能以外,IL-17A還表現出致病性質,導致不受控的炎症。在包括銀屑病、類風濕性關節炎(RA)、多發性硬化症(MS)和炎性腸病(IBD)在內的許多人類自身免疫疾病中,觀察到IL-17A的表達增加2,25-28。在臨床前動物模型中以及人類臨床試驗中的研究已經證明抑制IL-17A途徑可以減輕疾病活性29-32。
此外,在炎症過程中IL-17C受到正調節,並且分別在肺炎支原體(M. pneumoniae)和金黃色葡萄球菌(S. aureus)感染後在肺和皮膚組織中、以及在牛皮癬皮膚損傷中檢測到26,33-35。儘管已經報導在細胞檢測中IL-17C會誘導促炎細胞因數的分泌,以及其在體內的異常表達會產生炎症,但是IL-17C的生物學功能在很大程度上仍是不明確的36-38。IL-17C的表達顯示出是受到密切調節的,其mRNA和蛋白質僅在炎症狀態(例如在粘膜組織或損傷牛皮癬皮膚的細菌感染之後)下被檢測到26,33,35,37,45。就功能而言,IL-17C在體內的異常表達會促進促炎途徑,但是靶細胞、使用的受體以及在配體結合後的分子事件是未表徵的36,38。
本發明至少部分基於試驗資料,所述之資料證明(1)IL-17C使用了IL-17RA和IL-17RE作為受體,(2)IL-17C在上皮細胞中誘導了宿主的防禦途徑,以及(3)IL-17C是在相應於細菌或細胞因數的刺激而由上皮細胞分泌的。
本發明提供了減輕胃腸炎症的方法和手段。具體而言,本發明提供了治療炎性腸病(IBD)及相關狀況的方法和手段。本發明進一步提供了治療銀屑病的方法和手段。
在一個方面中,本發明涉及減輕胃腸炎症的方法,其包括向有需要的受試者給藥IL-17RA和IL-17RE受體的至少一種拮抗劑。
優選的是,所述之胃腸炎症與炎性腸病(IBD)有關。
在一個實施方案中,所述之拮抗劑通過IL-17RA和IL-17RE受體進行信號傳遞。
在另一個實施方案中,所述之拮抗劑與IL-17RA和IL-17RE受體結合。
在另一個實施方案中,所述之治療包括給藥IL-17RA受體的第一拮抗劑和IL-17RE受體的第二拮抗劑的組合。
在另一個實施方案中,所述之第一拮抗劑通過IL-17RA受體傳遞信號,而所述之第二拮抗劑通過IL-17RE受體傳遞信號。
在另一個實施方案中,所述之第一拮抗劑與IL-17RA受體結合,而所述之第二拮抗劑與IL-17RE受體結合。
在所有的實施方案中,所述之拮抗劑可以例如為抗體或其抗原結合片段。
在所有的實施方案中,所述之拮抗劑可以例如為通過IL-17RA和IL-17RE受體進行信號傳遞或者與IL-17RA和IL-17RE受體結合的雙特異性或二價抗體、或其抗原結合片段。
在所有的實施方案中,所述之方法可以進一步包括給藥其他的治療試劑來治療炎性腸病。
在具體的實施方案中,其他的治療試劑為IFN-γ拮抗劑,例如抗-IFN-γ的抗體、IFN-γ受體的抗體或天然IFN-γ受體。
在不同的實施方案中,所述之其他治療試劑為TNF-α拮抗劑,例如抗-TNF-α的抗體、TNF-α受體的抗體或天然TNF-α受體。
在多個實施方案中,所述之抗體為嵌合的、人源化的以及人類的。
所治療的受試者優選為人類患者。
在另一個方面中,本發明涉及減輕胃腸炎症的方法,其包括向有需要的受試者給藥特異性地結合IL-17C以及其他細胞因數的雙特異性或交叉反應性抗體、或者此類抗體的抗原結合片段。在一個實施方案中,所述之其他細胞因數為促炎細胞因數。在另一個實施方案中,所述之促炎細胞因數選自TNFα、IL-1β、IL-22和IL-17A。在另一個實施方案中,所述之促炎細胞因數為TNFα或IL-1β。在另一個實施方案中,所述之胃腸炎症與炎性腸病有關。在具體的實施方案中,所述之炎性腸病為潰瘍性結腸炎。在另一個實施方案中,所述之抗體是雙特異性的。在另一個實施方案中,所述之抗體為嵌合的、人源化的活人類的,並且可以為抗體片段,例如Fab、Fab'、F(ab')2和Fv片段;雙功能抗體;線性抗體;單鏈抗體分子;以及由抗體片段形成的多特異性抗體。
所治療的受試者優選為人類患者。
在另一個方面中,本發明涉及銀屑病的治療,其包括向有需要的受試者給藥特異性地結合IL-17C以及其他細胞因數的雙特異性或交叉反應性抗體、或者此類抗體的抗原結合片段。
在一個實施方案中,所述之其他細胞因數為促炎細胞因數。
在另一個實施方案中,所述之促炎細胞因數選自TNFα、IL-1β、IL-22和IL-17A。
在另一個實施方案中,所述之促炎細胞因數為TNFα或IL-1β。
在另一個實施方案中,所述之抗體為雙特異性的。
在另一個實施方案中,所述之抗體為嵌合的、人源化的或人類的,並且可以為抗體片段,例如Fab、Fab'、F(ab')2和Fv片段;雙功能抗體;線性抗體;單鏈抗體分子;以及由抗體片段形成的多特異性抗體。
所治療的受試者優選為人類患者。
在另一個方面中,本發明涉及用於治療胃腸炎症的藥物組合物,其包含與可藥用的賦形劑預混的IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑。優選的是,所述之胃腸炎症與炎性腸病(IBD)有關。在一個方面中,所述之IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑為抗體或其片段。在另一個實施方案中,所述之抗體為單克隆抗體。在某些實施方案中,所述之抗體為嵌合的、人源化的或人類抗體。在某些其他的實施方案中,所述之抗體為雙特異性的、多特異性的或交叉反應性的抗體。
在另一個方面中,本發明涉及用於治療銀屑病的藥物組合物,其包含與可藥用的賦形劑預混的IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑。在一個實施方案中,所述之IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑為抗體或其片段。在另一個實施方案中,所述之抗體為單克隆抗體。在某些實施方案中,所述之抗體為嵌合的、人源化的或人類抗體。在某些其他的實施方案中,所述之抗體為雙特異性的、多特異性的活交叉反應性的抗體。
在另一個方面中,本發明涉及用於治療哮喘的藥物組合物,其包含與可藥用的賦形劑預混的IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑。在一個實施方案中,所述之IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑為抗體或其片段。在另一個實施方案中,所述之抗體為單克隆抗體。在某些實施方案中,所述之抗體為嵌合的、人源化的或人類抗體。在某些其他的實施方案中,所述之抗體為雙特異性的、多特異性的活交叉反應性的抗體。
在另一個方面中,本發明涉及IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑在製備用於治療胃腸炎症的藥劑中的用途。優選的是,所述之胃腸炎症與炎性腸病(IBD)有關。
在另一個方面中,本發明涉及IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑在製備用於治療銀屑病的藥劑中的用途。
在另一個方面中,本發明涉及IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑在製備用於治療哮喘的藥劑中的用途。
在另一個方面中,本發明提供了用於治療胃腸炎症的試劑盒,所述之試劑盒包含:(a)裝有IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑的容器;以及(b)用於給藥所述抗體以治療所述炎症的標籤或說明。優選的是,所述之胃腸炎症與炎性腸病(IBD)有關。
在另一個方面中,本發明提供了用於治療銀屑病的試劑盒,所述之試劑盒包含:(a)裝有IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑的容器;以及(b)用於給藥所述抗體以治療所述銀屑病的標籤或說明。
在另一個方面中,本發明提供了用於治療哮喘的試劑盒,所述之試劑盒包含:(a)裝有IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑的容器;以及(b)用於給藥所述抗體以治療所述哮喘的標籤或說明。
I. 定義
術語“IL-17”通常用於指IL-17家族的成員,包括IL-17A,IL-17,IL-17B,IL-17C,IL-17D,IL-17E,IL-17F和IL-17A/F。
“天然序列IL-17多肽”包含具有與由天然衍生的相應IL-17多肽相同氨基酸序列的多肽。此類天然序列IL-17多肽可以天然分離,或者可以通過重組或合成手段生產。術語“天然序列IL-17多肽”特定地涵蓋天然形成的截短或分泌形式的特定IL-17多肽(例如細胞外結構域序列)、所述多肽的天然形成的變體形式(例如備選地剪接形式)以及天然形成的等位基因變體。在本發明的多種實施方案中,本文所公開的天然序列IL-17多肽為成熟或全長得天然序列人類IL-17C,IL-17A,IL-17F等多肽。在本發明的多個實施方案中,本文所公開的天然序列IL-17多肽為包含SEQ ID NO: 29所提供的全長氨基酸序列的天然或全長天然序列人類IL-17C多肽。
術語“天然序列IL-17RA多肽”或“天然序列IL-17RA”是指具有與天然衍生的相應IL-17RA多肽相同氨基酸序列的多肽。此類天然序列IL-17RA多肽可以天然分離,或者可以通過重組或合成手段生產。術語“天然序列IL-17RA多肽”特定地涵蓋了天然形成的截短或分泌形式的特定IL-17RA多肽、所述多肽的天然形成的變體形式(例如備選地剪接形式)以及天然形成的等位基因變體。在本發明的多個實施方案中,本文所公開的天然序列IL-17RA多肽為包含SEQ ID NO: 30所提供的全長氨基酸的全長天然序列人類IL-17RA。
術語“天然序列IL-17RE多肽”或“天然序列IL-17RE”是指具有與天然衍生的相應IL-17RE多肽相同氨基酸序列的多肽。此類天然序列IL-17RE多肽可以天然分離,或者可以通過重組或合成手段生產。術語“天然序列IL-17RE多肽”特定地涵蓋了天然形成的截短或分泌形式的特定IL-17RE多肽、所述多肽的天然形成的變體形式(例如備選地剪接形式)以及天然形成的等位基因變體。在本發明的多個實施方案中,本文所公開的天然序列IL-17RE多肽為包含SEQ ID NO: 31所提供的全長氨基酸的全長天然序列人類IL-17RE。
當“分離的”用於描述本文所公開的各種多肽時,其是指已經由天然環境下的成分鑒定和分離和/或回收的多肽。其天然環境下的污染物成分為通常會干擾所述多肽的診斷或治療用途的材料,並且可以包括酶、激素以及其他蛋白質或非蛋白質的裂解物。在優選的實施方案中,所述之多肽可以(1)通過使用旋流杯分離器純化至足以獲得N-末端或內部氨基酸序列的至少15個殘基的程度,或者(2)純化至使用考馬斯亮藍(優選銀)染色在非還原或還原條件下通過SDS-PAGE為均質性的程度。由於IL-17多肽的天然環境的至少一個成分不存在,所以經分離的多肽在重組細胞中包含原位多肽。但是,通常通過至少一個純化步驟製備經分離的多肽。
術語“拮抗劑”以最廣泛的含義在本文中使用。IL-17RA和/或IL-17RE“拮抗劑”為部分或完全封閉、抑制、中和、防止或干擾由IL-17RA和/或IL-17RE受體所介導的生物學活性的分子。在優選的實施方案中,“拮抗劑”會部分或完全封閉、抑制、中和、防止或干擾由IL-17RA和/或IL-17RE受體所介導的IL-17C的活性,例如減少上皮細胞中的宿主防禦途徑。並非限定,拮抗劑包括拮抗劑抗體、可溶性受體、肽以及小的有機分子。
術語“激動劑”以最廣泛的含義在本文中使用。IL-17RA和/或IL-17RE激動劑為模仿了天然序列IL-17RA和/或IL-17RE受體所介導的生物學活性的任何分子。在優選的實施方案中,“激動劑”模仿了IL-17RA和/或IL-17RE受體所介導的IL-17C的活性,例如減少上皮細胞中宿主的防禦途徑。並非限定,激動劑包括激動劑抗體、可溶性受體、肽以及小的有機分子。
炎性腸病(IBD)用作“潰瘍性結腸炎(UC)”和“Crohn疾病(CD)”的總稱。儘管UC和CD通常被認為是兩種不同的實體,但是它們共同的特徵(例如表面上皮細胞的斑塊壞疽、與腺管相鄰的白細胞的集中累積以及上皮內白細胞(IEL)和某些巨噬細胞亞類的數量增加)證明它們作為單一的疾病組進行治療。
“Crohn疾病(CD)”和“潰瘍性結腸炎(UC)”為未知病因學的慢性炎性腸病。Crohn疾病與潰瘍性結腸炎不同,可以影響腸的任何部分。Crohn疾病的最主要特徵為腸壁的顆粒狀紫紅色edmatous增厚。隨著炎症的發展,這些風濕性肉芽腫通常會失去它們的周圍邊界,並與周邊的組織整合。腹瀉以及腸梗阻為主要的臨床特徵。與潰瘍性結腸炎相似,Crohn疾病可以持續或再度惡化、輕微或嚴重,但是與潰瘍性結腸炎不同的是,Crohn疾病是不能通過切除有關的腸節段而被治癒。患有Crohn疾病的多數患者需要在一些點處進行外科手術,但是最後的再度惡化是常見的,並且持續的醫學治療是普遍的。
Crohn疾病可能涉及由口至肛門的任何食道部分,但是其通常在回腸、小腸或結腸-肛門直腸區域表現。就組織病理學而言,所述之疾病通過間斷的granulomatomas、腺管膿腫、裂開及口瘡潰瘍而確診。炎症的滲透液被混合,其由白細胞(T和B細胞)、血漿細胞、巨噬細胞和嗜中性粒細胞。分泌IgM和IgG的血漿細胞、巨噬細胞和嗜中性粒細胞不成比例地增加。
抗炎藥品柳氮磺胺吡啶和5-氨基水楊酸(5-ASA)可用於治療輕微的活性結腸Crohn疾病,並且通常被指定為保持疾病的減輕。甲硝達唑和環丙沙星在效力上與柳氮磺胺吡啶相似,並且表現為可特別用於治療肛周疾病。在更加嚴重的情況下,皮質類固醇可有效地用於治療活性惡化並且甚至可以保持減輕。咪唑硫嘌呤以及6-巰基嘌呤還在需要長期給藥皮質類固醇的患者中顯示成功。此外,這些藥品在長期預防中還可以發揮作用。遺憾的是,這些作用在一些患者中起效之前,可能耽擱了很長的時間(至多6個月)。
此外,止瀉藥品還可以在一些患者中提供症狀的減輕。營養學治療或基本飲食可以改善患者的營養情況並誘導急性疾病的症狀得到改善,但是其不會誘導持續的臨床減輕。抗生素用於治療繼發性小腸細菌生長過度,以及治療化膿併發症。
“潰瘍性結腸炎(UC)”會折磨大腸。該疾病的過程可以是持續的或再度惡化的,輕微的或嚴重的。最早的損傷為炎症浸潤以及在Lieberkhn腺管的基底上形成膿腫。這些腫脹和破裂的腺管的結合往往會由其供入的血液中分離出過度的粘膜。所述疾病的症狀包括痙攣、下腹疼痛、直腸出血以及頻發性地排放主要由血液、膿和粘液以及少量的排泄物顆粒構成的排放物。對於急性、嚴重或慢性的持續性潰瘍性結腸炎需要全結腸切除。
UC的臨床特徵是高度變化的,並且其發作可以是潛在的或突發的,而且可以包括腹瀉、裏急後重以及再度惡化的直腸出血。由於爆發性的涉及整個結腸,可以發生威脅生命的緊急的毒性巨結腸症。腸外表現包括關節炎、壞疽性膿皮病、葡萄膜炎以及結節性紅斑。
UC的治療包括用於輕微情況的柳氮磺胺吡啶以及相關的包含水楊酸鹽的藥品以及用於嚴重情況的皮質類固醇藥品。局部給藥水楊酸鹽或皮質類固醇有時是有效的,特別是當疾病限於腸末端時更是如此,並且所述之給藥與系統性使用相比會降低副作用。有時會指示諸如給藥鐵及止瀉劑之類的支持性的措施。咪唑硫嘌呤、6-巰基嘌呤以及甲氨蝶呤有時還被指定用於頑固性皮質類固醇依賴的情況。
就治療目的而言,術語“哺乳動物”是指屬於哺乳動物的任何動物,包括但不限於人類、齧齒動物、運動動物、動物園動物、寵物和馴養動物或者農場動物(例如狗、貓、牛、羊、豬、馬)、以及非人類的靈長動物(例如猴)。優選的是,齧齒動物為小鼠或大鼠。優選的是,哺乳動物為人類,在本文中還稱為患者。
如本文所用,“治療”描述了為了與根據本發明所靶向的任何疾病或狀況(包括但不限於炎性腸病或相關狀況)作鬥爭而管理及護理哺乳動物,並且包括給藥以防止症狀或併發症的發作、減輕靶向疾病或狀況的症狀或併發症或者消除靶向疾病或狀況。
就本發明的目的而言,用於減輕炎性腸病(IBD)的有益或所需的臨床“治療”結果包括但不限於減輕與IBD有關的症狀、減弱IBD狀況的程度以及穩定(即,不惡化)IBD的症狀。
術語“抗體”以最廣泛的含義使用,並且特定地涵蓋單克隆抗體(包括拮抗劑,例如中和抗體和激動劑抗體)、多克隆抗體、多特異性抗體(例如雙特異性抗體)以及抗體片段。單克隆抗體特定地包括“嵌合”抗體以及此類抗體的片段,只要它們表現出所需的生物學活性即可,其中所述抗體的部分重鏈和/或輕鏈與由特定種類或屬於特定抗體種類或亞類所衍生的抗體的相應序列一致或同源,而其餘部分的鏈與由另一種或屬於另一種抗體種類或亞類所衍生的抗體的相應序列一致或同源(美國專利No. 4,816,567;Morrison et al.,Proc. Natl. Acad. Sci. USA,81:6851-6855[1984])。多克隆抗體進一步包括“人源化的”抗體或其片段(例如Fv,Fab,Fab',F(ab')2或抗體的其他抗原結合字序列),其包含由非人類免疫球蛋白衍生的最少的序列。就大部分而言,人源化的抗體為人類免疫球蛋白(受體抗體),其中得自所述受體的CDR的殘基被得自非人類種類(例如具有所需特異性、親和性以及能力的小鼠、大鼠或兔)的CDR(供體抗體)的殘基替代。在一些情況下,人類免疫球蛋白的FvFR殘基被相應的非人類殘基替代。此外,人源化的抗體可以包含可以在受體抗體或在引入的CDR或構架序列中找到的殘基。可以進行這些改性以便進一步精煉及最大化抗體的性能。通常,人源化的抗體包含至少一個、通常為兩個可變結構域的基本全部的序列,其中全部或基本全部的CDR區與非人類免疫球蛋白相應,而全部或基本全部的FR區為人類免疫球蛋白序列的那些。人源化的抗體還可以可任選地包含免疫球蛋白恒定區(Fc)的至少一部分,通常為人類免疫球蛋白的恒定區。進一步的詳情,參見Jones et al.,Nature,321:522-525(1986);和Reichmann et al.,Nature,332:323-329(1988)。人源化的抗體包括PRIMATIZED抗體,其中抗體的抗原結合區衍生自通過使用所關注的抗原免疫恒河猴而產生的抗體。
“抗體片段”包括完整抗體的一部分,優選為完整抗體的抗原結合或可變區。抗體片段的實例包括Fab,Fab',F(ab')2和Fv片段;雙功能抗體;線性抗體(Zapata et al.,Protein Eng. 8(10):1057-1062(1995));單鏈抗體分子;以及由抗體片段形成的多特異性抗體。
木瓜蛋白酶消化抗體會產生兩條一致的抗原結合片段,稱為“Fab”片段;以及殘餘的“Fc”片段,該名稱反應了其容易結晶的能力。Fab片段由完整的L鏈及H鏈的可變區結構域(VH)、以及一條重聯的第一恒定結構域(CH1)構成。各Fab片段對於抗原結合而言都是單價的,即,其具有單一的抗原結合位點。胃蛋白酶處理抗體會產生單一的F(ab')2大片段,其完全與具有二價抗原結合活性的兩個二硫鍵鏈結Fab片段相應,並且還能夠與抗原交聯。Fab'片段通過在CH1結構域的羧基末端具有額外的幾個殘基而不同於Fab片段,包括得自抗體鉸鏈區的一個或多個半胱氨酸。Fab'-SH為本文用於Fab'的名稱,其中恒定結構域的半胱氨酸殘基帶有游離的巰基。F(ab')2抗體片段最初是作為一對Fab'片段產生的,在所述之片段之間具有鉸鏈半胱氨酸。抗體片段的其他化學偶聯也是已知的。
Fc片段包含通過二硫鍵保持在一起的兩條H鏈的羧基末端部分。抗體的效應器功能可以通過Fc區的序列確定,所述之區域還可以為通過在某種類型的細胞上發現的Fc受體(FcR)所識別的部分。
“Fv”為包含完整的抗原識別和結合位點的最小抗體片段。該片段由一個重鏈和一個輕鏈可變區結構域通過緊密的非共價結合而形成的二聚體構成。通過這兩個結構域的折疊產生了6個超變環(H鏈和L鏈各3個環),這些超變環有助於氨基酸殘基與抗原的結合,並且賦予抗體以抗原結合的特異性。但是,儘管單個可變結構域(或者僅包含對抗原具有特異性的3個CDR的Fv的一半)具有識別和結合抗原的能力,但是比完整的結合位點的親和性要低。
還可以簡稱為“sFv”或“scFv”的“單鏈Fv”為包含與單一多肽鏈鏈結的VH和VL抗體結構域的抗體片段。優選的是,sFv多肽進一步包含位於VH和VL結構域之間的多肽連接體,該連接體使得sFv能夠形成用於抗原結合的所需結構。對於sFv的綜述,參見Pluckthun in The Pharmacology of Monoclonal Antibodies,vol. 113,Rosenburg and Moore eds.,Springer-Verlag,New York,pp. 269-315(1994);Borrebaeck 1995,下文。
術語“雙功能抗體”是指通過以下方式製備的小抗體片段,所述之方式為在VH和VL結構域之間構建具有短的連接體(大約5-10個殘基)的sFv片段(參見之前的段落),得以取得V結構域的連間而非鏈內配對,從而得到二價片段,即,具有兩個抗原結合位點的片段。雙特異性雙功能抗體為兩個“轉向”sFv片段的異源二聚體,其中兩個抗體的VH和VL結構域存在於不同的多肽鏈上。雙功能抗體在例如EP 404,097;WO 93/11161;和Hollinger et al.,Proc. Natl. Acad. Sci. USA,90:6444-6448(1993)中有更全面的描述。
術語“多特異性抗體”以最廣泛的含義使用,並且特定地涵蓋了具有重鏈可變結構域(VH)和輕鏈可變結構域(VL)的抗體,其中VHVL單元具有多抗原決定部位的特異性(即,能夠與一個生物學分子上的兩個不同的抗原決定部位或者不同生物學分子上的各個抗原決定部位結合)。這種多特異性抗體包括但不限於全長抗體、具有兩個或多個VL和VH結構域的抗體、抗體片段(例如Fab,Fv,dsFv,scFv)、雙功能抗體、雙特異性雙功能抗體和三功能抗體、共價或非共價鏈結的抗體片段。
“交叉反應性抗體”為識別多於一個抗原上的一致的或相似的抗原決定部位的抗體。因此,本發明的交叉反應性抗體識別IL-17RA和IL-17RE上存在的一致的或相似的抗原決定部位。在具體的實施方案中,交叉反應性抗體使用了與IL-17RA和IL-17RE結合的相同的或基本相同的抗體對位。優選的是,本文所述之交叉反應性抗體還會阻斷IL-17RA和IL-17RE的功能(活性)。
自身免疫疾病包括但不限於獲得性免疫缺陷綜合征(AIDS,其為具有自身免疫成分的病毒疾病),斑禿,強直性脊柱炎,抗磷脂綜合征,自身免疫Addison疾病,自身免疫性溶血性貧血,自身免疫性肝炎,自身免疫性內耳疾病(AIED),自身免疫性淋巴增生綜合征(ALPS),自身免疫性血小板減少性紫癜(ATP),Behcet疾病,心肌病,celiac sprue-dermatitis hepetiformis;慢性疲勞免疫功能紊亂綜合征(CFIDS),慢性脫髓鞘多發性神經炎(CIPD),cicatricial pemphigold,慢性冷凝集素病,crest綜合征,Crohn疾病,Degos疾病,幼年型皮肌炎,盤狀狼瘡,原發性混合型冷球蛋白血症,纖維肌痛-纖維肌炎,Graves疾病,Guillain-Barr綜合征,Hashimoto甲狀腺炎,特發性肺纖維化,特發性血小板減少性紫癜(ITP),IgA腎病,胰島素依賴性糖尿病,幼年型類風濕病(Still疾病),幼年型類風濕性關節炎,Mnire疾病,混合性結締組織病,多發性硬化症,重症肌無力,pernacious anemia,結節性多動脈炎,多軟骨炎,多腺體綜合征,風濕性多肌痛,多發性肌炎和皮肌炎,原發性免疫缺陷病,原發性膽汁性肝硬化,銀屑病,銀屑病關節炎,Raynaud現象,Reiter綜合征,風濕熱,類風濕性關節炎,肉狀瘤病,硬皮病(進行性系統性硬化症(PSS),也稱為系統性硬化症(SS)),Sjgren綜合征,僵人綜合征,系統性紅斑狼瘡,Takayasu動脈炎,顳動脈炎/巨細胞動脈炎,潰瘍性結腸炎,葡萄膜炎,白癜風以及Wegener肉芽腫。
炎症紊亂包括例如慢性和急性炎症紊亂。炎症紊亂的實例包括Alzheimer疾病,哮喘,遺傳性過敏症,過敏症,動脈粥樣硬化,支氣管哮喘,濕疹,血管球性腎炎,移植物抗宿主病,溶血性貧血,骨關節炎,膿毒疾,中風,組織和器官的移植,脈管炎,糖尿病性視網膜病變and通氣相關肺損傷。
“慢性”給藥是指與急性模式相反以連續的方式給藥試劑、以便保持延長時期的所需作用。
“間歇性”給藥為在不間斷的條件下並非連續性地而實際上是週期性的實施的治療。
與一種或多種其他治療試劑“結合”給藥包括同時(並行)以及以任何次序連續給藥。
II. 詳細描述
哺乳動物的皮膚和粘膜上皮細胞直接與環境微生物有機體接觸,從而形成對抗潛在的入侵病原體的一線防禦51。免疫系統,特別是組織包埋樹突狀細胞(DC),通過多種模式識別受體(PRR)(例如Toll樣受體(TLR))感知這些微生物,並誘導合適的免疫應答(包括增加上皮固有的免疫)以控制感染43。另一方面,儘管上皮細胞還表達TLR,但是TLR在上皮細胞上的活化是否會直接促進上皮固有的防禦機制還是未知的52-54。
如本文所示,IL-17C為IL-17家族的成員,其通過感知細菌攻擊以及炎症刺激而在上皮細胞中被選擇性地誘導。本文所顯示的資料提供了第一證據,即,IL-17C為上皮細胞衍生的細胞因數,其通過Toll樣受體(TLR)激動劑調節以促進宿主的防禦應答。此外,本文所示的結果證明IL-17C與由IL-17RA和IL-17RE亞單元構成的獨特且新的異源二聚體受體複合物結合,其中所述之複合物主要在上皮細胞上表達。本文所示的結果進一步表明IL-17C採用了新的自分泌機制來誘導上皮細胞中的固有免疫途徑。具體而言,結果顯示IL-17C刺激上皮炎症的應答,包括表達促炎細胞因數、趨化因數以及抗微生物肽,與IL-17A和IL-17F誘導的那些相似。有趣的是,這些途徑與IL-17A介導的應答相似,表明所述之兩種細胞因數在宿主防禦機制中的功能重疊。但是,於IL-17A相反(其主要由白細胞產生,特別是TH17細胞),IL-17C是由不同的細胞來源(例如上皮細胞)產生的。此外,本文所示的結果證明與IL-17A和IL-22相似,IL-17C具有保護和致病性質。IL-17C信號傳遞的喪失在DSS大腸炎模型中會增強疾病,而在銀屑病的小鼠模型中會減弱疾病,表明IL-17C在上皮組織中調控了不同的應答,根據結果的類型,IL-17C可以對宿主有利或有害。因此,IL-17C為調節固有上皮免疫應答的必不可少的自分泌細胞因數。
本發明至少部分基於試驗發現,其證明(1)IL-17C使用IL-17RA和IL-17RE;(2)IL-17C在上皮細胞中誘導了宿主的防禦途徑;以及(3)IL-17C通過回應於細菌或細胞因數的刺激而由上皮細胞分泌。
由於炎性腸病及相關狀況的複雜性,根據所述疾病或狀況的階段和性質以及給藥的時機,在某些實施方案中,IL-17RA和/或IL-17RE激動劑還可以用於本發明的方法中。
1. 治療用途
與IL-17C信號傳遞有關的疾病或紊亂包括自身免疫疾病或炎性疾病或紊亂,包括但不限於炎性腸病(IBD)、銀屑病和哮喘。
本發明的抗-IL-17RA和/或抗-IL-17RE抗體或IL-17C雙特異性或交叉反應性抗體可以用於管理炎症狀況,例如胃腸炎症、炎性腸病、Crohn疾病、潰瘍性結腸炎以及銀屑病。本發明的抗-IL-17RA和/或抗-IL-17RE抗體或IL-17C雙特異性或交叉反應性抗體還可以用於治療哮喘和其他與氣道超反應性有關的紊亂,其中所述之紊亂通常表徵為發作性咳嗽、喘息、胸脘痞悶和/或呼吸問題。
本發明涉及通過給藥IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑或IL-17C拮抗劑來治療胃腸炎症、銀屑病和哮喘。IL-17C拮抗劑可以為根據治療跡象以任何方式干擾IL-17C的功能、或者阻斷或中和IL-17C的相關活性的任何分子。可以防止IL-17C與IL。17RA和/或IL-17RE之間的相互作用。例如,可以阻斷IL-17C與IL-17RA和/或IL-17RE的結合和/或通過IL-17RA和/或IL-17RE的信號傳遞。此類試劑以多種方式完成該作用。例如,中和IL-17C活性的種類的拮抗劑將與IL-17C或者IL-17C,IL-17RA和/或IL-17RE的受體以干擾IL-17C的充足的親和性和特異性結合。
2. 給藥和配製物
可以通過任何合適的途徑給藥IL-17RA和/或IL-17RE或IL-17C拮抗劑,包括腸胃外給藥途徑,例如但不限於靜脈內(IV)、肌肉內(IM)、皮下(SC)和腹膜內(IP)、以及經皮、口腔、舌下、直腸內、鼻內以及吸入途徑。IV,IM,SC和IP給藥可以為團注或輸注方式,並且在SC的情況下,還可以通過緩釋植入裝置,包括但不限於泵、緩釋配製物以及機械裝置。優選的是,給藥是系統性的。
IL-17RA和/或IL-17RE或IL-17C的一種特別優選的給藥方法為通過皮下輸注,具體為使用計量的輸注裝置,例如泵。此類泵可以是可重複使用的或者是一次性的,並且為可植入的或外部固定的。可以用於本發明的目的的藥劑輸注泵包括例如在美國專利No. 5,637,095;5,569,186;和5,527,307中公開的泵。所述之組合物可以由所述之裝置連續給藥、或者間歇性給藥。
適用於儲存的IL-17RA和/或IL-17RE或IL-17C拮抗劑的治療配製物包括具有所需純度的拮抗劑與可藥用的載體、賦形劑或穩定劑構成的、凍幹配製物或水性溶液形式的混合物(Remington's Pharmaceutical Sciences 16th edition,Osol,A. Ed.(1980))。可接受的載體、賦形劑或穩定劑在使用劑量和濃度下對受體是無毒性的,並且包括緩衝劑,例如磷酸鹽、檸檬酸鹽和其他有機酸;抗氧化劑,包括抗壞血酸和蛋氨酸;防腐劑(例如十八烷基二甲基苄基氯化銨;六甲銨氯化物;苄烷銨氯化物、苯乙胺氯化物;苯酚、丁基或苄基醇;烷基對羥基苯甲酸酯,例如甲基或丙基對羥基苯甲酸酯;兒茶酚;間苯二酚;環己醇;3-戊醇;以及間甲酚);低分子量(少於大約10個殘基)多肽;蛋白質,例如血清白蛋白、凝膠或免疫球蛋白;親水性聚合物,例如聚乙烯吡咯烷酮;氨基酸,例如甘氨酸、谷氨酸、天冬氨酸、組氨酸、精氨酸或賴氨酸;單糖、二糖和其他碳水化合物,包括葡萄糖、甘露糖或糊精;螯合劑,例如EDTA;糖,例如蔗糖、甘露醇、海藻糖或山梨醇;成鹽反離子,例如鈉;金屬複合物(例如Zn-蛋白質複合物);和/或非離子表面活性劑,例如TWEENTTM、PLURONICSTM聚乙二醇(PEG)。
活性組分還可以陷入到例如通過凝聚技術或者通過面間聚合(例如分別為羥甲基纖維素或凝膠-微囊和聚(甲基甲基丙酸酯)微囊)而在膠狀藥品傳遞系統(例如脂質體、白蛋白微球體、微乳液、納米顆粒和納米囊)或者在巨乳液中製備的微囊中。此類技術在Remington's Pharmaceutical Sciences,supra中有所公開。
IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑(例如本文所公開的抗-IL-17RA和/或抗-IL-17RE抗體)還可以配製為免疫脂質體。包含抗體的脂質體可以通過本領域已知的方法製備,例如在Epstein et al.,Proc. Natl. Acad. Sci. USA,82: 3688(1985);Hwang et al.,Proc. Natl Acad. Sci. USA,77: 4030(1980);美國專利No. 4,485,045和4,544,545;以及1997年10月23日公開的WO97/38731中所述。迴圈時間增長的脂質體在美國專利No. 5,013,556中有所公開。
可以使用包含卵磷脂、膽固醇和PEG衍生的磷脂醯乙醇胺(PEG-PE)的脂質組合物通過逆相蒸發方法來生產特別有用的脂質體。將脂質體擠出通過精細孔徑的篩檢程式從而生成具有所需直徑的脂質體。本發明的抗體的Fab'片段可以通過二硫鍵交替反應與Martin et al.,J. Biol. Chem.,257: 286-288(1982)中所述之脂質體綴合。
可以製備持釋製備物。持釋製備物的合適的實例包括含有抗體的固態疏水性聚合物的半滲透性母體,所述之母體為有形製品,例如薄膜或微囊。持釋母體的實例包括聚酯、水凝膠(例如聚(2-羥乙基-甲基丙烯酸酯)或聚(乙烯醇))、聚交酯(美國專利No. 3,773,919)、L-谷氨酸與y乙基-L-穀氨醯胺的共聚物、不可降解的乙烯-乙烯基乙酸酯、可降解的乳酸-乙醇酸的共聚物(例如LUPRON DEPOTTM(由乳酸-乙醇酸共聚物和醋酸亮氨構成的可輸注的微球體))以及聚-D-(-)-3-羥基丁酸。
任何特定的拮抗劑都可以與載體蛋白質連接從而增加治療拮抗劑的血清半衰期。例如,如美國專利No. 5,116,964所述,可以針對各種特定的IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑或其拮抗部分獲得諸如本文所述之可溶性免疫球蛋白嵌合體。所述之免疫球蛋白嵌合體可以容易地通過IgG結合蛋白質A-瓊脂糖色譜過濾。所述之嵌合體具有形成免疫球蛋白樣二聚體的能力,其中所述之二聚體具有伴生的較高的親和力和血清半衰期。
用於體內給藥的配製物必須是無菌的。這可以通過過濾通過無菌過濾膜而容易地完成。
所述之配製物還可以包含針對待治療的具體跡象所需的多於一種的活性化合物,優選的是,不會不利地彼此影響的互補活性的那些。備選地或此外,所述之組合物包含增強其功能的試劑,例如細胞毒性試劑、細胞因數、化療試劑、或生長抑制試劑。此類分子以有效地用於預期目的的量而合適地組合存在。
在一個實施方案中,所述之活性化合物以結合療法的方式給藥,即,與其他試劑結合,例如可以用於治療病理學狀況或紊亂(例如自身免疫紊亂和炎症疾病)的治療試劑。本文中,術語“結合”是指所述之試劑基本同期、同時或依次給予。如果依次給予,在給藥的第二化合物起效時,優選的是在治療位點仍可檢測到有效濃度的第一次給藥的兩種化合物。
例如,結合療法可以包括與抑制或多種其他的治療試劑共同配製的和/或共同給藥的本發明的一種或多種拮抗劑,所述之其他試劑例如為一種或多種細胞因數和生長因數抑制劑、免疫抑制劑、抗炎症試劑、代謝抑制劑、酶抑制劑和/或細胞毒性或細胞生長抑制劑,如下文更加詳細描述的那些。此外,本文所述之一種或多種抗體可以與本文所述之兩種或多種治療試劑結合使用。此類結合療法可以有利地使用較低劑量的給藥治療試劑,由此避免與多種單一療法有關的可能的毒性或併發症。
與本發明的拮抗劑結合使用的優選的治療試劑為在不同階段干擾炎症應答的那些試劑。在一個實施方案中,本文所述之一種或多種拮抗劑可以與一種或多種其他試劑共同配製和/或共同給藥,所述之其他試劑例如為其他細胞因數或生長因數拮抗劑(例如可溶性受體、肽抑制劑、小分子、配體融合物);或與其他靶物結合的抗體或其抗原結合片段(例如與其他細胞因數或生長因數、它們的受體、或者其他細胞表面分子結合的抗體);以及抗炎症細胞因數或它們的激動劑。可以與本文所述之抗體結合使用的試劑的非限定性實例包括但不限於一種或多種白細胞介素(IL)或其受體的拮抗劑,例如IL-1,IL-2,IL-6,IL-7,IL-8,IL-12,IL-13,IL-15,IL-16,IL-17A,IL-18,IL-21和IL-22的拮抗劑;細胞因數或生長因數或者它們的受體的拮抗劑,例如腫瘤壞疽因數(TNF),IFN-γ,LT,EMAP-II,GM-CSF,FGF和PDGF。本發明的抗體還可以與(例如)針對細胞表面分子的抗體的抑制劑結合,其中所述之分子例如為CD2,CD3,CD4,CD8,CD20(例如CD20抑制劑利妥昔單抗(RITUXAN)),CD25,CD28,CD30,CD40,CD45,CD69,CD80(B7.1),CD86(B7.2),CD90,或者它們的配體,包括CD154(gp39或CD4OL)、或者LFA-1/ICAM-1和VLA-4/VCAM-1(Yusuf-Makagiansar et al.(2002) Med. Res. Rev. 22:146-67)。可以與本文所述之拮抗劑結合使用的優選的拮抗劑包括IFN-γ,IL-1β,TNFα,IL-17A和IL-22的拮抗劑。
TNF拮抗劑的實例包括針對TNF(例如人類TNFα)的嵌合的、人源化的、人類的或體外生成的抗體(或其抗原結合片段),例如(HUMIRATM,D2E7,人類TNFα抗體),CDP-571/CDP-870/BAY-10-3356(人源化的抗-TNFα抗體;Celltech/Pharmacia),cA2(嵌合抗-TNFα抗體;REMICADE,Centocor);抗-TNF抗體片段(例如CPD870);TNF受體的可溶性片段,例如p55或p75人類TNF受體或其衍生物,例如75 kdTNFR-IgG(75 kD TNF受體-IgG融合蛋白質,ENBRELTM;Immunex),p55 kdTNFR-IgG(55 kD TNF受體-IgG融合蛋白質(LENERCEPT));酶拮抗劑,例如TNFα轉化酶(TACE)抑制劑(例如α磺醯基異羥肟酸衍生物以及N-羥甲醯胺TACE抑制劑GW 3333,-005或-022);以及TNF-bp/s-TNFR(可溶性TNF結合蛋白質)。優選的TNF拮抗劑為TNF受體的可溶性片段,例如p55或p75人類TNF受體或其衍生物,例如75 kdTNFR-IgG和TNFα轉化酶(TACE)抑制劑。
本文所述之配製物還可以包含針對待治療的具體跡象所需的多於一種的活性化合物,優選的是,不會不利地彼此影響的互補活性的那些。此外,此類活性化合物可以分開向待治療的哺乳動物給藥。
用於治療或防止炎性腸病(例如Crohn疾病,潰瘍性結腸炎)的、本發明的抗體可以結合的試劑的非限定性實例包括如下:budenoside;表皮生長因數;皮質類固醇;環孢黴素;柳氮磺胺吡啶;氨基水楊酸酯;6-巰基嘌呤;咪唑硫嘌呤;甲硝噠唑;脂氧化酶抑制劑;馬沙拉嗪;偶氮水楊酸;巴柳氮;抗氧化劑;凝血惡烷抑制劑;IFN-γ拮抗劑,例如抗-IFN-γ抗體,IFN-γ受體抗體或天然IFN。γ受體;IL-1受體拮抗劑;抗-IL-1單克隆抗體;抗-IL-6單克隆抗體;生長因數;彈性蛋白酶抑制劑;吡啶基-咪唑化合物;TNF-α拮抗劑,例如抗-TNF-α抗體,TNF-α受體抗體或天然TNF-α受體;IL-4,IL-10,IL-13和/或TGFβ細胞因數或其激動劑(例如激動劑抗體);IL-11;脫氫皮質醇、地塞米松或布地縮松與葡糖苷酸-或右旋糖酐-綴合的藥物前體;ICAM-1反義磷硫醯寡去氧核苷酸(ISIS 2302;Isis Pharmaceuticals,Inc.);可溶性的補體受體1(TP10;T Cell Sciences,Inc.);緩釋5-氨基水楊酸;甲氨蝶呤;血小板活化因數(PAF)的拮抗劑;環丙沙星;以及力諾卡因。對於Crohn疾病的治療而言,本發明的拮抗劑可以與用於治療這些狀況的其他治療方案結合給藥。例如,本文所述之IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑可以與Remicade(Infliximab,Centocor)或Enbrel(Etanercept,Wyeth-Ayerst)結合給藥。本發明還包含靶向這些疾病的雙特異性抗體。例如,雙特異性抗體可以包括與本文所述抗體的IL-17RA-或IL-17RE-結合能力組合的抗-TNF特異性。
用於治療或防止銀屑病的、本發明的抗體可以結合的試劑的非限定性實例包括如下:皮質類固醇;維生素D3及其類似物;retinoiods(例如soriatane);甲氨蝶呤;環孢黴素,6-硫鳥嘌呤;愛優痛;羥基脲;羥脲;柳氮磺胺吡啶;麥考酚酸酯;咪唑硫嘌呤;他克莫司;富馬酸酯;生物製劑,例如Amevive,Enbrel,Humira,Raptiva and Remicade,Ustekinmab和XP-828L;光線療法;以及光化學療法(例如補骨脂素與紫外光線療法相結合)。
對於哮喘的治療而言,將本文所述之拮抗劑與抗-IgE抗體(特別是rhuMAb-E25(XolairTM))或者與繼發抗體分子rhuMAb-E26(Genentech,Inc.)結合使用是特別有利的。rhuMAb-E25抗體為被研發用於早期干擾過敏進程的重組人源化抗-IgE單克隆抗體。結合使用還包括(例如)可以在單一的藥物配製物中給藥兩種抗體,或者使用具有抗-IL-17RA或抗-IL-17RE和抗-IgE特異性的雙特異性抗體。在另一個優選的是實施方案中,本文所述之IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑與吸入的皮脂類固醇結合給藥,例如氯地米松二丙酸酯(BDP)治療。用於哮喘的、本發明的拮抗劑可以結合的治療試劑的其他非限定性實例包括如下:舒喘靈,沙美特羅/氟地松,孟魯司特鈉,氟地松丙酸酯,布地縮松,潑尼松,沙美特羅昔萘酸酯,鹽酸左旋沙丁胺醇,舒喘靈硫酸酯/異丙托銨,潑尼松龍磷酸鈉,曲安奈德,氯地米松二丙酸酯,異丙托銨溴化物,阿奇黴素,醋酸吡布特羅,脫氫皮質醇,無水茶鹼,甲基脫氫皮質醇琥珀酸鈉,克拉仙黴素,紮魯司特,富馬酸福莫特羅,流感病毒疫苗,甲基脫氫皮質醇,阿莫西林三水合物,氟尼縮松,過敏症輸注液,色甘酸鈉,非索非那定鹽酸鹽,氟尼縮松/薄荷醇,羥氨苄青黴素/克拉維酸鉀,左氧氟沙星,吸入輔助裝置,愈創甘油醚,地塞米松磷酸鈉,鹽酸莫西沙星,鹽酸強力黴素,愈創甘油醚/d-甲嗎喃,p-麻黃堿/cod/chlorphenir,加替沙星,鹽酸西替立嗪,糠酸莫米他松,沙美特羅昔萘酸酯,苯佐那酯,頭孢氨苄,pe/氫可酮/chlorphenir,鹽酸西替利嗪/pseudoephed,苯腎上腺素/cod/普魯米近,可待因/普魯米近,頭孢羅齊,氟美松,愈創甘油醚/偽麻黃堿,氯屈米/氫可酮,奈多羅米鈉,硫酸特布他林,腎上腺素,甲基脫氫皮質醇,硫酸奧西那林。
此類額外的分子合適的是以有效用於預期目的的量存在或結合給藥,通常少於不具有IL-17RA和/或IL-17RE的拮抗劑的它們的單獨使用量。如果將它們配製在一起,則根據(例如)跡象的類型、受試者、受試者的年紀和體重、目前的臨床情況、給藥時間、劑型、給藥方法等而確定的量來配製它們。例如,優選的是,以相對于本文所述之IL-17C,IL-17RA和/或IL-17RE的拮抗劑的一重量份大約0.0001至10000重量份的比例使用伴隨的藥品。
對於疾病的防止或治療而言,IL-17RA和/或IL-17RE的拮抗劑的合適劑量取決於所使用的IL-17RA和/或IL-17RE的拮抗劑拮抗劑、待治療的疾病的類型、疾病的嚴重程度和進程、為了防止或治療是否給予抗體、之前的療法、患者的臨床史以及對抗體的應答、以及主治醫生的判斷。通常,臨床醫生給藥IL-17RA和/或IL-17RE的拮抗劑直到達到取得所需結果的劑量。
IL-17RA和/或IL-17RE的拮抗劑合適的是一次或在一系列的治療中給予患者。本文所示的劑量範圍無意於以任何方式限定本發明的範圍。用於本文目的的“治療有效”量取決於疾病的類型和嚴重程度,並通過上述因素確定,但是通常為大約0.01至100mg/kg體重/天。優選的單次劑量為大約0.1-50mg/kg體重/天,更優選為大約0.1至25mg/kg/天。還要更有選的是,當每天給藥IL-17RA和/或IL-17RE的拮抗劑時,用於人類的靜脈內或肌肉內為大約0.3至10mg/kg體重/天,更優選為大約0.5至5mg/kg。對於皮下給藥而言,單次劑量優選高於靜脈內或肌肉內給予的治療當量的單次劑量。優選的是,對於所述之兩種跡象而言,用於人類的日皮下單次劑量為大約0.3至20mg/kg,更優選為大約0.5至5mg/kg。這種治療進程可以通過傳統的技術和測試容易地監測。
3. 製造製品和試劑盒
本發明還提供了用於減輕胃腸炎症、治療炎性腸病、潰瘍性結腸炎、銀屑病以及哮喘的試劑盒。本發明的試劑盒包含IL-17RA和/或IL-17RE的至少一種拮抗劑(優選抗體)的一個或多個容器以及與減輕胃腸炎症、治療銀屑病或治療哮喘的IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑的使用及劑量有關的一組說明書(通常為書面說明書)。試劑盒所包含的說明書通常包括關於用於治療目標疾病(例如炎性腸病、銀屑病或哮喘)的劑量、定量給藥時間表和給藥途徑的資訊。IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑的容器可以為單位劑量、大包裝(例如多劑量包裝)或者亞單位劑量。
製造製品包含容器以及在該容器上或與該容器有關的標籤或包裝插入物。合適的容器包括例如瓶子、小瓶、注射器等。容器可以由多種材料(例如玻璃或塑膠)形成。容器裝有可有效治療所述狀況的組合物,並且可以具有無菌入口(例如所述之容器可以為進入經脈的溶液袋或者具有可通過皮下注射器的注射針刺穿的阻塞物的小瓶)。組合物中的至少一種活性試劑為本發明的IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑。標籤或包裝插入物進一步包含用於向患者給藥抗體組合物的說明書。包含本文所述之結合療法的製造製品和試劑盒也被考慮。
包裝插入物是指通常包含在治療產品的商業包裝中的說明書,該說明書包含關於跡象、用途、劑量、給藥、與使用此類治療產品有關的禁忌症候和/或告誡的資訊。
此外,製造製品可以進一步包含裝有可藥用的緩衝劑(輸注用抑菌水(BWFI)、磷酸緩衝的鹽水、Ringer溶液以及右旋葡萄糖溶液)的第二容器。其可以進一步包含商業及用戶立場所需的其他材料,包括其他緩衝劑、稀釋劑、篩檢程式、針頭及注射器。
4. 抗體的製備
單克隆抗體
可以按照首先Kohler et al.,Nature,256:495(1975)所述使用雜交瘤方法制得單克隆抗體,或者可以通過重組DNA方法(美國專利No. 4,816,567)制得單克隆抗體。在雜交瘤方法中,按照上文所述免疫小鼠或其他合適的宿主動物,例如倉鼠或恒河猴,以激發產生或能夠產生特異性地結合用於免疫的蛋白質的抗體的淋巴細胞。或者,可以在體外免疫淋巴細胞。然後,使用合適的融合試劑(例如聚乙二醇)將淋巴細胞與骨髓瘤細胞融合,從而形成雜交瘤細胞(Goding,Monoclonal Antibodies: Principles and Practice,pp.59-103(Academic Press,1986))。
將如此製備的雜交瘤細胞接種或生長於合適的培養基中,該培養基優選包含抑制未融合的親代骨髓瘤細胞的生長或存活的抑制或多種物質。例如,如果親代骨髓瘤細胞缺少次黃嘌呤鳥嘌呤磷酸核糖基轉移酶(HGPRT或HPRT),用於雜交瘤的培養基通常包含次黃嘌呤、氨喋呤和胸苷(HAT培養基),這些物質會防止HGPRT缺陷型細胞的生長。
優選的骨髓瘤細胞為這樣的細胞,其會有效地融合,通過產生所選抗體的細胞穩定地生產高水準的抗體、以及對諸如HAT培養基之類的培養基具有敏感性。其中,優選的骨髓瘤細胞系為鼠源骨髓瘤細胞系,例如由得自Salk Institute Cell Distribution Center,San Diego,Calif. USA的SMOPC-21和MPC-11小鼠腫瘤衍生的那些、以及得自美國典型培養物保藏中心,Rockville,Md. USA的SP-2或X63-Ag8-653細胞。此外,對於人類單克隆抗體的生產,還描述了人類骨髓瘤和小鼠-人類雜交骨髓瘤細胞系(Kozbor,J. Immunol.,133:3001(1984);Brodeur et al,Monoclonal Antibody Production Techniques and Applications,pp. 51-63(Marcel Dekker,Inc.,New York,1987))。
針對定向于抗原的單克隆抗體的生產,測試其中生長有雜交瘤細胞的培養基。優選的是,通過免疫沉澱或者通過體外結合測試(例如放射性免疫測試(RIA)或酶聯免疫吸附測試(ELISA))確定由雜交瘤細胞生產的單克隆抗體的結合特異性。
在鑒定能夠生產具有所需的特異性、親和性和/或活性的抗體的雜交瘤細胞之後,可以通過限制稀釋過程將所述之克隆子亞克隆,並通過標準的方法使其生長(Goding,MonoclonalAntibodies: Principles and Practice,pp.59-103(Academic Press,1986))。用於上述目的的合適的培養基包括例如D-MEM或RPMI-1640培養基。此外,如同動物中的腹水細胞,雜交瘤細胞可以在體內生長。
通過傳統的免疫球蛋白純化工序(例如蛋白質A-Sepharose、羥基磷灰石色譜、凝膠電泳、透析或親和層析),由培養基中適當地分離由亞克隆子分泌的單克隆抗體。
使用傳統的工序(例如通過使用能夠與編碼單克隆抗體的重鏈和輕鏈的基因特異性地結合的寡核苷酸探針),容易地分離並測序編碼單克隆抗體的DNA。雜交瘤細胞成為此類DNA的優選來源。該DNA一經分離,便可以將其置於表達載體中,然後將該載體轉染到諸如E. coli細胞、類人猿COS細胞、中國倉鼠卵(CHO)細胞或骨髓瘤細胞之類的其他方法不能生產免疫球蛋白蛋白質的宿主細胞中,從而在重組宿主細胞中合成單克隆抗體。抗體的重組生產將在下文中更詳細地描述。
在其他實施方案中,可以使用在McCafferty et al.,Nature,348:552-554(1990)中所述之技術,由所生成的抗體噬菌體文庫中分離抗體或抗體片段。
Clackson et al.,Nature,352:624-628(1991)和Marks etal.,J. Mol. Biol.,222:581-597(1991)分別描述了使用噬菌體文庫描述了鼠源及人類抗體的分離。之後的出版物描述了通過鏈改組(Marks et al.,Bio/Technology,10:779-783(1992))、以及組合感染及體內重組作為構建極大噬菌體文庫的策略來生產高親和性(nM範圍)的人類抗體(Waterhouse et al.,Nuc. Acids. Res.,21:2265-2266(1993))。因此,這些技術為用於分離單克隆抗體的傳統單克隆抗體雜交瘤技術的可行的備選技術。
此外,例如通過使用人類重鏈和輕鏈恒定結構域替代同源的鼠源序列(美國專利No. 4,816,567;Morrison,et al.,Proc. Natl. Acad. Sci. USA,81:6851(1984)),或者通過將免疫球蛋白編碼序列與非免疫球蛋白多肽的所有或部分編碼序列共價鏈結來修飾DNA。
通常,此類非免疫球蛋白多肽被抗體的恒定結構域取代,或者被抗體的一個抗原結合位元點的可變結構域取代,從而創建出包含一個具有抗原特異性的抗原結合位點以及另一個對不同抗原具有特異性的抗原結合位點的嵌合二價抗體。
人源化的及人類抗體
人源化的抗體具有一個或多個由非人類來源引入到其中的氨基酸殘基。這些非人類氨基酸殘基通常被稱為“輸入”殘基,其通常取自“輸入”的可變結構域。基本上根據Winter及其同事的方法(Jones et al.,Nature,321:522-525(1986);Riechmann et al.,Nature,332:323-327(1988);Verhoeyen et al.,Science,239:1534-1536(1988)),通過使用齧齒動物的多個CDR或一個CDR序列取代人類抗體的相應序列來進行人源化。因此,此類“人源化”的抗體為嵌合抗體(美國專利No. 4,816,567),其中基本上小於完整的人類可變結構域被得自非人類物種的相應序列取代。事實上,人源化的抗體通常為其中一些CDR殘基及可能的一些FR殘基被得自齧齒動物抗體中的類似位點的殘基取代。
在製備人源化的抗體中使用的人類可變結構域(輕鏈和重鏈)的選擇對於減輕抗原性是極為重要的。根據所謂的“最佳適應”方法,針對已知人類可變結構域序列的完整文庫篩選齧齒動物抗體的可變結構域的序列。然後,接受與齧齒動物的所述序列最為相近的人類序列作為人源化抗體的人類構架(FR)(Sims et al.,J. Immunol.,151:2296(1993);Chothia et al.,J. Mol. Biol.,196:901(1987))。另一種方法使用了由輕鏈或重鏈的特定子群的所有人類抗體的共有序列衍生的特定構架。相同的構架可以用於多種不同的人源化的抗體中(Carter et al.,Proc. Natl. Acad Sci. USA,89:4285(1992);Presta et al.,J. Immnol.,151:2623(1993))。
更重要的是,抗體被人源化,並保留有對抗原的高親和性以及其他有利的生物學性質。為了實現該目標,根據優選的方法,通過親代序列以及多種概念上得人源化產品的分析方法,使用親代序列和人源化序列的三維模型來製備人源化的抗體。三維免疫球蛋白模型是通常可得的,並且是本領域的技術人員所熟悉的。獲得電腦程式,其表明並顯示所選的候選免疫球蛋白序列的可能的三維構造結構。檢查這些展示可以分析所述殘基在候選免疫球蛋白序列的功能中的可能作用,即,分析影響候選免疫球蛋白與其抗原結合能力的殘基。按照這種方式,可以由受體和輸入序列選擇FR殘基並使它們結合,從而得到所需的抗體特徵,例如對靶向抗原的親和性增加。通常,CDR殘基基本上且最本質地涉及影響抗原的結合。
或者,目前可以生產轉基因動物(例如小鼠),其在缺乏內源免疫球蛋白生產的條件下,在免疫時能夠生產全部清單的人類抗體。例如,已經描述,在嵌合以及種系突變體小鼠中,抗體重鏈鏈結區(J. sub. H)基因的純合子刪除會使得內源抗體的生產被完全抑制。在此類種系突變體小鼠中,人類種系免疫球蛋白基因陣列的轉移會使得在受到抗原的攻擊時生產人類抗體。例如參見Jakobovits et al,Proc. Natl. Acad. Sci. USA,90:2551(1993);Jakobovits et al.,Nature,362:255-258(1993);Bruggermann et al.,Year in Immuno.,7:33(1993);and Duchosal et al. Nature 355:258(1992)。此外,人類抗體還可以由噬菌體展示文庫衍生得到(Hoogenboom et al,J. Mol. Biol.,227:381(1991);Marks et al,J. MoL Biol.,222:581-597(1991);Vaughan et al. Nature Biotech 14:309(1996))。由抗體噬菌體展示文庫生成人類抗體在WO 2010/114859中有進一步的討論。
抗體片段
已經研發多種技術來用於生產抗體片段。傳統上,通過對完整抗體的蛋白水解消化來衍生這些片段(例如參見Morimoto et al.,Journal of Biochemical and Biophysical Methods 24:107-117(1992)和Brennan et al.,Science,229:81(1985))。但是,這些片段可以通過重組宿主細胞而直接生產。例如,可以由上文所討論的抗體噬菌體文庫分離抗體片段。或者,Fab'-SH片段可以由E. coli直接回收並通過化學偶聯,從而形成F(ab')2片段(Carter et al.,Bio/Technology 10:163-167(1992))。在如以下實例中所述之另一個實施方案中,使用亮氨酸拉鏈GCN4形成F(ab')2,從而促進F(ab')2分子的組裝。根據另一種方法,可以由重組宿主細胞培養物直接分離F(ab')2片段。用於生產抗體片段的另一種技術對於技術人員是顯而易見的。在其他實施方案中,所選的抗體為單鏈Fv片段(scFv)。參見WO 93/16185。抗體片段還可以為“線性抗體”,例如如美國專利5,641,870中所述。該線性抗體片段可以為單特異性的或雙特異性的。
多特異性抗體
多特異性抗體對至少兩個不同的抗原決定部位具有結合特異性,其中抗原決定部位通常得自不同的抗原。儘管此類分子通常僅結合兩個不同的抗原決定部位(即,雙特異性抗體,BsAb),但是具有附加特異性的抗體(例如三特異性抗體)當在本文中使用時也被所述之表達所涵蓋。用於製備雙特異性抗體的方法是本領域已知的。全長雙特異性抗體的傳統生產是基於兩條免疫球蛋白重鏈-輕鏈對的共表達,其中所述之兩條鏈具有不同的特異性(Millstein et al.,Nature,305:537-539(1983))。由於免疫球蛋白重鏈和輕鏈的隨機分類,這些雜交瘤(雜交瘤細胞)生產出10個不同抗體分子的潛在混合物,其中僅有一個具有正確的雙特異性結構。正確分子的純化(其通常通過親和層析步驟來實施)是相當繁瑣的,並且產品的產率低。類似的工序在WO 93/08829和Traunecker et al.,EMBO J.,10:3655-3659(1991)中有所公開。根據不同的方法,具有所需結合特異性的抗體可變結構域(抗體-抗原結合位點)與免疫球蛋白恒定結構域序列融合。融合物優選的是具有免疫球蛋白重鏈恒定結構域,其包含鉸鏈區的至少一部分、CH2和CH3區。優選的是具有存在于至少一個融合物中的、包含輕鏈結合所需位點的第一重鏈恒定區(CH1)。編碼免疫球蛋白重鏈融合物以及免疫球蛋白輕鏈(如果需要)的DNA被插入到不同的表達載體中,並共轉染到合適的宿主有機體中。這種情況在構建過程中使用3條多肽鏈的不等比例來提供最佳產率時,為調整實施方案中3條多肽片段的突變比例提高大的靈活性。而且,當相等比例的至少2條多肽鏈的表達得到高產率時,或者當所述之比例並非特別重要時,可以將2條或所有3條多肽鏈插入到一個表達載體中。
在此類方法的優選實施方案中,雙特異性抗體由一個臂中的具有第一結合特異性的雜交免疫球蛋白重鏈、以及另一個臂中的雜交免疫球蛋白重鏈-輕鏈對(提高第二結合特異性)構成。發現,當在僅僅半個雙特異性分子中存在免疫球蛋白輕鏈會提供有利的分離方式時,所述之這種不對稱結構有利於將所述之雙特異性化合物由不需要的免疫球蛋白鏈的結合物中分離出來。該方法在WO 94/04690中有所公開。對於生產雙特異性抗體的進一步的詳情參見例如Suresh et al.,Methods in Enzymology,121:210(1986)。
根據在WO96/27011中所述之另一種方法,抗體分子對之間的介面可以經過改造,從而使由重組細胞培養物中回收的異源二聚體的百分率最大。優選的介面包含抗體恒定結構域的CH3結構域的至少一部分。在這種方法中,得自第一抗體分子的介面的一個或多個小氨基酸側鏈被較大的側鏈(例如酪氨酸或色氨酸)替代。通過使用較小的氨基酸側鏈(例如丙氨酸或蘇氨酸)替代大的氨基酸側鏈會再第二抗體分子的介面上創建於大側鏈的尺寸一致或相似的補償性“空腔”。這提供了異源二聚體的產率超過其他不需要終產物(例如同源二聚體)的產率的機制。
雙特異性抗體包含交聯的或“異源綴合物”抗體。例如,異源綴合物中的一種抗體可以與親和素偶聯,其他抗體與生物素偶聯。例如,已經提出此類抗體使免疫系統的細胞靶向不需要的細胞(美國專利No. 4,676,980),並治療HIV感染(WO 91/00360,WO 92/200373)。異源綴合物抗體可以使用任何方便的交聯方法製備。合適的交聯劑是本領域公知的,並且與大量的交聯技術在美國專利No. 4,676,980中有所公開。
此外,所述文獻中還描述了用於由抗體片段生成雙特異性抗體的技術。例如,可以使用化學連接來製備雙特異性抗體。Brennan et al.,Science 229: 81(1985)描述了這樣的工序,其中完整的抗體以蛋白水解的方式被切割從而生成F(ab')2片段。這些片段在二巰基絡合劑亞砷酸鈉存在下被還原,從而穩定臨近的二巰基並防止分子內二硫鍵的形成。然後,將所生成的Fab'片段轉化為硫代硝基苯甲酸酯(TNB)衍生物。然後,通過使用巰基乙胺還原將一種Fab'-TNB衍生物再次轉化為Fab'-巰基,並與等摩爾量的其他Fab'-TNB衍生物混合,從而形成雙特異性抗體。所生成的雙特異性抗體可以用作用於酶的選擇性固定的試劑。
此外,還可以由E. coli直接回收Fab'-SH片段,並可以化學偶聯從而形成雙特異性抗體。Shalaby et al.,J. Exp. Med.,175: 217-225(1992)描述了全人源化的雙特異性抗體F(ab')2分子的生產。由E. coli分別分泌各種Fab'片段,並將該片段在體外進行定向的化學偶聯,從而形成雙特異性抗體。
此外,還描述了用於直接由重組細胞培養物製備和分離雙特異性抗體的多種技術。例如,使用亮氨酸拉鏈生產雙特異性抗體。Kostelny et al.,J. Immunol.,148(5):1547-1553(1992)。將得自Fos和Jun蛋白質的亮氨酸拉鏈肽通過基因融合與兩個不同抗體的Fab'部分連接。還原抗體同源二聚體的鉸鏈區,從而形成單體,然後再次氧化,從而形成抗體的異源二聚體。該方法還可以用於生產抗體的同源二聚體。由Hollinger et al.,Proc. Nati. Acad. Sci. USA,90:6444-6448(1993)所述之“雙功能抗體”技術提供了用於製備雙特異性抗體片段的備選機制。該片段包含通過連接體育輕鏈可變結構域(VL)連接的重鏈可變結構域(VH),其中所述之連接體太短從而允許同一鏈上的兩個結構域配對。因此,迫使一個片段上的VH和VL結構域與另一個片段的互補性VL和VH結構域配對,從而形成兩個抗原結合位點。此外,還報導了通過使用單鏈Fv(sFv)二聚體來製備雙特異性抗體片段的另一個策略。參見Gruber et al,J.Immunol,152:5368(1994)。
超過二價的抗體也被考慮。例如,可以製備三特異性抗體。Tuft et al. J. Immunol. 147: 60(1991)。
效應器功能的改造
理想的是針對效應器功能修飾本發明的抗體,從而增強抗體的效力。例如,可以將半胱氨酸殘基引入到Fc區,由此可以在該區域形成鏈間二硫鍵。如此生成的同源二聚體抗體可以具有改善的內化能力和/或增強的補體介導的細胞殺滅以及抗體依賴的細胞毒性(ADCC)。參見Caron et al.,J. Exp Med. 176:1191-1195(1992)和Shopes,B. J. Immunol. 148:2918-2922(1992)。按照Wolff et al. Cancer Research 53:2560-2565(1993)所述,還可以使用異源雙功能交聯劑製備抗腫瘤活性增強的同源二聚體抗體。或者,可以改造抗體,使其具有雙重Fc區,並且由此可以具有增強的補體溶解和ADCC能力。參見Stevenson et al Anti-Cancer Drug Design 3:219-230(1989)。
抗體-清道夫受體結合抗原決定部位的融合
在本發明的某些實施方案中,理想的是使用抗體片段而非完整的抗體。在這種情況下,理想的是修飾抗體片段以便增加其血清半衰期。這可以通過例如將清道夫受體結合抗原決定部位引入到抗體片段中來實現(例如通過抗體片段中合適區域的突變或者通過將抗原決定部位引入到肽標籤中,然後將該標籤例如通過DNA或肽合成在末端或中部與抗體片段融合)。
清道夫受體結合抗原決定部位優選的是構成了這樣的區域,其中得自Fc結構域的一個或兩個環的任何一個或多個氨基酸殘基被轉移到抗體片段的類似位置上。甚至更優選的是,轉移得自Fc結構域的一個或兩個環的三個或多個殘基。還要更優選的是,抗原決定部位取自(例如IgG的)Fc區的CH2結構域,並轉移到CH1、CH3或V. sub. H區中,或者抗體的多於一個的此類區域中。或者,抗原決定部位取自Fc區的CH2結構域,並轉移到抗體片段的CL區和/或VL區。
抗體的其他共價修飾
抗體的共價修飾被包含在本發明的範圍內。如果合適,可以通過化學合成或者通過抗體的酶活化學切割來進行共價修飾。可以通過使抗體的靶向氨基酸殘基與所選的側鏈或N-或C-末端殘基反應的有機衍生試劑發生反應將抗體的其他類型的共價修飾引入到所述之分子中。共價修飾的實例在美國專利No. 5,534,615中有所描述,所述文獻以引用方式特定地併入本文。優選類型的抗體的共價修飾包括按照美國專利No. 4,640,835;4,496,689;4,301,144;4,670,417;4,791,192或4,179,337中所述之方式使抗體與多種非蛋白質聚合物(例如聚乙二醇、聚丙二醇或聚氧化烯)中的一者連接。
5. 其他療法的設計和形成
根據本發明以及基於本文所生產及表徵的抗體對IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物的活性,抗體部分以外的其他治療形態的設計是容易的。此類形態包括但不限於改進的抗體療法,例如雙特異性抗體、免疫毒素以及放射性標記療法;肽療法的形成;基因療法;尤其是內抗體;反義療法以及小分子。
就免疫毒素而言,可以使用本領域公知的技術修飾抗體,從而用作免疫毒素。例如參見Vitetta Immunol Today 14:252(1993)。此外參見美國專利No. 5,194,594。就放射性標記抗體的製備而言,還可以使用本領域公知的技術容易滴製備此類經修飾的抗體。例如參見Junghans et al. in Cancer Chemotherapy and Biotherapy 655-686(2d edition,Chafner and Longo,eds.,Lippincott Raven(1996))。此外,參見美國專利No. 4,681,581,4,735,210,5,101,827,5,102,990(RE 35,500),5,648,471和5,697,902。各種免疫毒素和放射性標記的分子可能殺滅表達IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物的細胞。
就治療肽的生成而言,通過使用與IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17E複合物及其抗體(例如本發明的抗體)相關的結構資訊或者肽文庫的篩選,可以生成定向針對IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物的治療肽。肽療法的設計和篩選在Houghten et al. Biotechniques 13:412-421(1992),Houghten PNAS USA 82:5131-5135(1985),Pinalla et al. Biotechniques 13:901-905(1992),Blake and Litzi-Davis BioConjugate Chem. 3:510-513(1992)中有所討論。按照上文針對抗體的討論,還可以按照與肽部分相似的方式製備免疫毒素和放射性標記的分子。假設IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物(或其諸如剪接變體之類的形式或備選形式)在疾病的進程中是具有功能活性的,還可以通過傳統技術設計基因及其反義療法。此類形態可以用於調整IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物的功能。參照本發明的抗體有利於與其相關的功能測試的設計和用途。反義療法的設計和策略在國際專利申請No. WO 94/29444中詳細地討論。基因療法的設計和策略是公知的。而且,特別是,使用與內抗體有關的基因療法技術證明是特別有利的。例如參見Chen et al. Human Gene Therapy 5:595-601(1994)和Marasco Gene Therapy 4:11-15(1997)。此外,與基因療法有關的一般設計和考慮還在國際專利申請No. WO 97/38137中有所討論。
IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物分子的結構及其與根據本發明的其他分子(例如本發明的抗體)的相互作用所收集的知識等可以用於合理地設計其他的治療形態。就這一點而言,諸如X-射線結晶學、電腦輔助(或幫助)的分子建模(CAMM)、定量或定性的結構-活性關係(QSAR)以及類似的技術之類的合理的藥品設計技術可以用於致力於努力發現藥品。合理的設計可以預測能夠與所述分子或其特定形式相互作用的蛋白質或合成結構,其中所述之分子或其形式可以用於修飾或調整IL-17C,和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物的活性。此類結構可以在生物學系統中化學合成或表達。在Capsey et al. Genetically Engineered Human Therapeutic Drugs(Stockton Press,NY(1988))中對這種方法進行了綜述。此外,在篩選程式(例如努力進行高產量的篩選)中可以設計、合成及使用組合文庫。
6. 篩選測試
此外,本發明還提供了用於鑒定調控劑(即,候選物或測試化合物或試劑(例如肽、肽模擬物、小分子或其他藥品))的方法(在本文中也稱為“篩選測試”),其中所述之候選物或測試化合物或試劑調控、阻斷、抑制、減少、拮抗、中和或採用其他方式干擾IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物與其固有受體結合,或者所述之候選物或測試化合物或試劑調控、阻斷、抑制、減少、拮抗、中和或採用其他方式干擾IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物的信號傳遞功能。此外,還提供了鑒定用於治療與IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17E複合物信號傳遞有關的紊亂的化合物的方法。本發明還包括在本文所述之篩選測試中鑒定的化合物。
例如,在一個方面中,用於本發明的抗體為通過與IL-17RA和/或IL-17RE結合或者通過IL-17RA和/或IL-17RE進行信號傳遞而中和IL-17C的活性的抗體。在另一個方面中,用於本發明的抗體為與IL-17C以及其他細胞因數特異性地結合的雙特異性或交叉反應性抗體。因此,例如,中和IL-17RA和/或IL-17RE的抗體或者抗-IL-17C的雙特異性或交叉反應性抗體可以通過將候選抗體與IL-17RA和/或IL-17RE或IL-17C溫育、並檢測結合情況以及IL-17C的生物學活性的中和來鑒定。可以使用純化的IL-17RA和/或IL-17RE或IL-17C多肽、或者使用天然表達或者轉染後表達IL-17RA和/或IL-17RE或IL-17C多肽的細胞來進行結合測試。在一個實施方案中,結合測試為競爭性結合測試,其中評價候選抗體與已知的IL-17RA和/或IL-17RE或抗-IL-17C抗體競爭IL-17C的結合的能力。所述測試可以以多種方式進行,包括ELISA方式。
為了篩選抗體(其與所關注抗體所結合的IL-17RA和/或IL-17RE或IL-17C上的抗原決定部位結合),可以實例如在Antibodies,A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory,Ed Harlow and David Lane(1988)中所述之常規的交叉封閉測試。備選地或此外,可以通過本領域已知的方法繪製抗原決定部位的圖譜。例如,可以通過在Fendly et al. Cancer Research 50:1550-1558(1990)中所述之競爭性結合測試來測定本發明的單克隆抗體所結合的IL-17RA和/或IL-17RE抗原決定部位活IL。17C抗原決定部位。使用定量螢光的PANDEXTM Screen Machine,通過完整細胞上的直接螢光來實施交叉封閉研究。在該方法中,使用已經建立的工序使單克隆抗體與異硫氰酸螢光素(FITC)綴合(Wofsy et al. Selected Methods in Cellular Immunology,p. 287,Mishel and Schiigi(eds.) San Francisco: W.J. Freeman Co.(1980))。將懸浮液中表達IL-17RA和/或IL-17RE或IL-17C的細胞以及經純化的單克隆抗體加入到平板的孔中並溫育,再通過PANDEXTM定量螢光。如果與不相關的單克隆抗體對照相比,各種抗體封閉了其他抗體的結合達50%或更高,則認為單克隆抗體共有抗原決定部位。
此外,還可以使用結合文庫鑒定用於本發明的抗-IL-17RA和/或IL-17RE或抗-IL-17C抗體,從而篩選具有所需的一種或多種活性的合成抗體克隆子。此類方法是本領域公知的。簡言之,通過篩選噬菌體文庫來選擇合成的抗體克隆子,其中所述之噬菌體文庫包含展示出於噬菌體衣殼蛋白質融合的抗體可變區(Fv)的多種片段(例如Fab,F(ab')2等)。通過針對所需抗原的親和層析而展示(pan)該噬菌體文庫。表達能夠與所需抗原結合的Fv片段的克隆子與抗原吸附,並由此與文庫中未結合的克隆子分離。然後,由抗原上洗脫結合的克隆子,並通過抗原吸附/洗脫的再次迴圈而進一步富集。可以通過以下過程獲得用於本發明的合適的抗-IL-17RA和/或IL-17RE抗體或抗-IL-17C抗體:設計合適的抗原篩選工序以選擇所關注的噬菌體克隆子,然後通過使用得自所關注的噬菌體克隆子的Fv序列以及合適的恒定區(Fc)序列構建全長抗-IL-17RA和/或IL-17RE或抗-IL-17C抗體克隆子。
在一個實施方案中,本發明提供了用於篩選候選物或測試化合物的測試方法,其中所述之候選物或化合物調控了IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物的信號傳遞功能。在本領域已知的結合文庫方法中,可以使用大量方法中的任何方法來獲得本發明的測試化合物,包括:生物學文庫;可空間定址的並行固相或液相文庫;需要去卷積的合成文庫方法;“一珠一化合物”文庫方法;以及使用親和層析選擇的合成文庫方法。所述之生物學文庫方法局限于肽文庫,而其他的4種方法適用於肽、非肽寡聚體以及化合物的小分子文庫(例如參見Lam,1997. Anticancer Drug Design 12: 145)。
如本文所用,“小分子”是指分子量小於大約5kD、最優選小於大約4kD的組合物。小分子可以為例如核酸、肽、多肽、肽模擬物、碳水化合物、脂質或其他有機或無機分子。化學和/或生物學混合物文庫(例如真菌、細菌或海藻提取物)是本領域已知的,並且可以使用任何本發明的測試方法篩選。
用於合成分子文庫的方法的實例可以在本領域中找到,例如:DeWitt,et al.,1993. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90: 6909;Erb,et al.,1994. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 91: 11422;Zuckermann,et al.,1994. J. Med. Chem. 37: 2678;Cho,et al.,1993. Science 261: 1303;Carrell,et al.,1994. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33: 2059;Carell,et al.,1994. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33: 2061;和Gallop,et al.,1994. J. Med. Chem. 37: 1233。
化合物文庫可以呈現在溶液中(例如參見Houghten,1992. Biotechniques 13: 412-421)、或珠上(參見Lam,1991. Nature 354: 82-84)、晶片上(參見Fodor,1993. Nature 364: 555-556)、細菌(參見美國專利No. 5,223,409)、孢子(參見美國專利5,233,409)、質粒(參見Cull,et al.,1992. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 1865-1869)、或噬菌體上(參見Scott and Smith,1990. Science 249: 386-390;Devlin,1990. Science 249: 404-406;Cwirla,et al.,1990. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 87: 6378-6382;Felici,1991. J. Mol. Biol. 222: 301-310;以及美國專利No. 5,233,409)。
在一個實施方案中,將候選化合物引入到抗體-抗原複合物中,並確定候選化合物是否會擾亂抗體-抗原複合物,其中這些複合物的擾亂表明候選化合物調控了IL-17C和/或異源二聚體IL-17RA/IL-17RE複合物的信號傳遞功能。
在另一個實施方案中,提供了IL-17C同源二聚體,並將其暴露于至少一種中和單克隆抗體。檢測抗體-抗原複合物的形成情況,並將一種或多種候選化合物引入到複合物中。如果在引入一種或多種候選化合物之後會擾亂抗體-抗原複合物,則候選化合物可以用於治療與IL-17C信號傳遞有關的紊亂。
在另一個實施方案中,提供了IL-17C的可溶性蛋白質,並將其暴露于至少一種中和單克隆抗體。檢測抗體-抗原複合物的形成情況,並將一種或多種候選化合物引入到複合物中。如果在引入一種或多種候選化合物之後會擾亂抗體-抗原複合物,則候選化合物可以用於治療與IL-17C信號傳遞有關的紊亂。
例如,通過使測試化合物與放射性同位素或酶標記物偶聯,使得可以通過檢測複合物中標記的化合物來測試化合物與抗原或其生物活性部分的結合,從而可以完成對測試化合物干擾或擾亂抗體-抗原複合物的能力的測定。例如,可以使用125I、35S、14C或3H直接或間接標記測試化合物,並通過直接計數射電輻射或通過閃爍計數來檢測放射性同位素。或者,例如可以使用辣根過氧化物酶、鹼性磷酸酶或螢光素酶對測試化合物進行沒標記,並且通過測定合適底物向產物的轉化來檢測酶標記物。
在多於一個的實施方案中,理想的是固定抗體或抗原,從而有利於在引入候選化合物之後由一種或兩種非複合形式中分離複合物,以及適應測試的自動化。可以在適合裝有反應物的任何容器中在候選化合物存在及缺乏的條件下完成對抗體-抗原複合物的觀察。此類容器的實例包括微量滴定板、試管以及微離心管。在一個實施方案中,可以提供融合蛋白質,該蛋白質加入了允許一種或兩種蛋白質與基質結合的結構域。例如,GST-抗體融合蛋白質或GST-抗原融合蛋白質可以吸附到谷胱甘肽瓊脂糖珠(Sigma Chemical,St. Louis,MO)上,或者谷胱甘肽衍生的微量滴定板上,隨後所述之蛋白質與測試化合物結合,並且將混合物在有助於形成複合物的條件下溫育(例如對於鹽和pH而言在生理學條件下)。在溫育後,洗滌珠或微量滴定板的孔,從而除去任何未結合的成分,在直接或間接測定的珠複合物的情況下基質固定。或者,可以使複合物由基質上解離,並可以使用標準的技術測定所形成的抗體-抗原複合物的水準。
在篩選測試(例如基於細胞的生物學測試)中獲得結果之後,可以在動物中檢測(例如鼠源、模型以及人類臨床試驗)。如果需要,可以通過本領域公知的技術(包括“基因轉化突變形成”策略)將經鑒定具有所需性質的鼠源單克隆抗體轉化為嵌合抗體或人源化的抗體,如美國專利No. 5,821,337所述。可以使用公知的受體結合測試和/或例如本文所述IBD的動物模型選擇適用于治療本文所述之炎性腸病的試劑。
IBD的體外模型
IBD的體外模型由MacDonald,T.及其同事研發,並由Braegger,C. P. and MacDonald,T. in Chapter 8 of "Immunology of Gastrointestinal Disease"描述,而且由MacDonald,T. and Spencer,J.,J. Exp. Med. 167,1341-1349(1988)在早期報導。在這種模型中,培養懷孕15-20周的、包含T淋巴細胞的人類胎兒內臟組織(小腸或大腸)的小型外植體(橫向1-2mm)。在保持形態學、上皮細胞更新以及腸上皮細胞功能下,人類胎兒內臟可以在器官培養物中保持幾周。可以通過在商陸促分裂原或單克隆抗-CD3抗體存在下進行培養來活化外植體中的所有T細胞。T細胞活化的結果為該外植體的總體外觀顯示較大的變化。作為T細胞活化的結果,小腸外植體中的變化使人想起在Crohn疾病的早期階段觀察到的粘膜變化,並且在結腸外植體見到的環狀細胞枯竭也為潰瘍性結腸炎的特徵。該模型可以用於研究T細胞與內臟上皮細胞的相互作用,以及特定地觀察對T細胞活化的應答。
IBD的動物模型
第一組IBD動物模型包括自然發展出使人在一些IBD形式中想起的疾病的動物。自發性動物模型包括C3H/HeJ小鼠,日本華爾滋小鼠,由梭菌和棉冠狨猴引起的豬痢疾和馬大腸炎。近來,這些動物患有的疾病被細分為5種類型,其中的2種類似於UC。在這些模型中,棉冠狨猴是優選的,大比例的此類動物具有一些形式的內臟紊亂,並且它們中的一些動物還發展成如患有UC的患者中的腸癌。
在另一種方法中,多種刺激(例如乙醇、乙酸、甲醛、免疫複合物、三硝基苯磺酸(TNBS)、細菌產物或角叉菜膠)可以用於形成急性或慢性炎症。Wallace,J.及其同事已經研發出這種模型[Morris et al. Gastroenterology 96,795(1989)]。
根據第三種方法,轉基因動物用於建模IBD。患有強制性脊柱炎的多數人類患者還帶有HLA-B27基因。已經觀察到,此類患者處於發展成IBD的較高風險中。試圖建模脊柱關節病的HLA-B27轉基因大鼠除了關節疾病以外,還顯示出腸的慢性炎症的症狀,儘管其與CD不一致但是有許多相似。因此,HL-B27可以用於建模IBD。
另一種合適的動物模型如以下實例中所述。
本發明進一步涉及通過任何上文所述之篩選測試鑒定的新型試劑及其在本文所述之治療中的用途。
提供以下實例僅為了示例性的目的,並且無意於以任何方式限定本發明的範圍。
本說明書中引用的所有專利和參考文獻均在此以引用方式全文明確地併入本文。
IL-C為調節上皮細胞的固有免疫功能的自分泌細胞因數
材料和方法
小鼠. C57BL/6小鼠購自Charles River Laboratories。Rag2-/-:Il2rg-/-小鼠購自Taconic Farms Inc。如圖11所示,將I117re-/-和I117c-/-小鼠與C57BL/6株系(N=10)回交。按照圖39所示,形成Myd88-/-小鼠。通過使各種雜合子動物互交而形成I117re-/-,I117c-/-和Myd88-/-純合子裸鼠。在所期望的孟德爾頻率下形成I117re-/-,I117c-/-和Myd88-/-小鼠的基因型。所有3種株系都是多產的,並且在不具有特定病原體的條件下是健康的。所有動物試驗都經the Genentech Institutional Animal Care and Use Committee(IACUC)批准。
重組蛋白質和抗體. 重組細胞因數TNFα,IL-1β,IL-17A和IL-22以及抗-人類IL-17RA封閉抗體(MAB177)購自R&D Systems。按照以下方法形成成熟的人類和小鼠IL-17C。
重組hIL-17C和mIL-17C的形成. 將成熟的人類IL-17C(His-19至Val-197)和成熟的小鼠IL-17C(Asp-17至Gln-194)克隆到表達載體pRK5中作為N-末端Flag融合物。為了除去內部切割位點並改善hIL-17C的蛋白質純化,使殘基Gly-77和Arg-78分別取代相應的鼠源殘基Arg和Thr。經修飾的hIL-17C二聚化,並與部分截短的未經修飾的hIL-17C的製備物以及購自R&D Systems and eBioscience的重組hIL-17C具有基本一致的功能和受體結合活性。通過瞬間轉染中國倉鼠卵(CHO)細胞生產Flag-融合物蛋白質。在4℃下,使2周短暫條件培養基分批吸附到M2抗-FLAG樹脂(Sigma)上,用溶於PBS中的冰冷的0.1%Triton X-114洗滌,然後將PBS洗滌至基線,再用0.1M的醋酸洗脫,其中所述之醋酸立即用4%體積1.5M Tris pH8.6中和。將洗脫池在Superdex 200凝膠過濾住(GE)上在包含0.15M NaCl的PBS中分離;將所述之蛋白質峰合併,濃縮,透析到PBS中並進行無菌過濾。
熱滅活的E. coli原液.在37℃洗,將DH5α細胞(Invitrogen)在LB肉湯中過夜培養;將懸浮液離心,並以密度1 x1010 CFU/ml懸浮在水中,然後在沸水中熱滅活30分鐘。
體外細胞培養的生長條件.就刺激試驗而言,使上皮細胞在24孔板中生長至匯合。將HCT-15細胞在補充有10%FBS(Hyclone),2 mM谷氨酸鹽以及100 μg/ml青黴素/鏈黴素的DMEM中培養。在使用Coating Matrix(Invitrogen)處理的平板中,在補充有人類角化細胞生長補體(HKGS)的Epilife培養基中培養HEKn細胞。在支氣管/氣管上皮生長培養基(Cell Applications)中培養原代人類氣管上皮細胞(HTEpC,Cell Applications)。在補充有低血清生長補體(LSGS,Invitrogen)的培養基106中培養HDFn細胞。
體外細胞培養的刺激.就刺激試驗而言,使上皮細胞在24孔板中生長至匯合,並在1 x 108 CFU熱滅活的E. coli、1 μg/ml不含內毒素的TLR配體肽聚糖(PGN-SA)、Pam2CSK4、Pam3CSK4、Poly(I:C)、鞭毛蛋白(FLA-ST Ultrapure)、CpG寡核苷酸(ODN2006)(均得自Invivogen)、10 ng/ml TNFα、IL-1β、100 ng/ml IL-17A、IL-22存在或缺乏下刺激24小時。為了進行RNA表達分析,將1 x 106 HCT-15人類結腸上皮細胞(ATCC)平板接種在6孔平板上,並在刺激前過夜培養。就hIL-17C功能分析而言,將1 x 104原代人類表皮角化細胞(HEKn,Invitrogen)或人類真皮成纖維細胞(HDFn,Invitrogen)平板接種于96孔板中,並過夜培養,然後使用重組人類IL-17C刺激48小時。就抗體封閉試驗而言,將HEKn細胞在37℃下與抗人類IL-17RA抗體預溫育15分鐘,然後使用hIL-17C刺激48小時。就小鼠IL-17C功能分析而言,將1 x 104原代小鼠表皮角化細胞(MPEK,Cellntec)平板接種于96孔板中,並過夜培養,然後使用小鼠IL-17C或小鼠IL-17A刺激48小時。
抗體阻斷研究.使HCT-15細胞在12孔板中生長至匯合,然後在同種型對照抗體以及10 μg/ml抗-IL-1β(R&D Systems)、1 μg/ml TNFR2-Fc(如之前所述50)、10 μg/ml抗-TLR2(Invivogen)或10 μg/ml抗-TLR5(Invivogen)存在下使用1 μg/ml PGN-SA、1 μg/ml FLA-ST、10 ng/ml TNFα或10 ng/ml IL-1β刺激24小時。24h之後,收集上清液並通過ELISA針對IL-17C進行分析。
原代角化細胞的培養.按照之前所述55,對得自新生小鼠的小鼠原代表皮角化細胞進行分離和培養。通過根據上文所述之方案,對衍生自成年小鼠的鼠尾皮膚的表皮角化細胞進行分離和培養。使用衍生自原代表皮角化細胞的新生或成年鼠尾皮膚得到相似的結果。
體內鞭毛蛋白的刺激.向C57BL/6或Rag2-/-:I12rg-/-小鼠腹膜內注射處於500 μl體積(10 μg/ml)或鹽水(PBS)中的5 μg或3、3 μg鞭毛蛋白(Rec FLA-ST,Invivogen)。在處理2小時後由結腸組織分離RNA。
骨髓嵌合體.就骨髓(BM)嵌合體而言,使用1100rads照射受體小鼠,並在4小時後使用BM細胞(5 x 106細胞,靜脈內)重建。按照上文所述,在移植後7周,將這些小鼠用於鞭毛蛋白腹膜內注射試驗。
微陣列分析. 使用低RNA輸入的螢光線性擴增方案擴增總量為1 μg的RNA(Agilent Technologies,Palo Alto,CA)。使用RNeasy Mini Kit(Qiagen)純化cRNA。將標記有青色素-3的750ng Universal Human Reference(Stratagene) cRNA以及標記有青色素-5的750 ng測試樣品cRNA在60℃下在30分鐘內製成碎片,然後載入到Agilent Whole Human Genome陣列上(Agilent Technologies)。在60℃下以穩定的輪轉將樣品雜交18小時。根據製造商的方案(Agilent Technologies),在Agilent掃描器上洗滌、乾燥和掃描陣列。使用9.5版本的Agilent’s Feature Extraction軟體分析微陣列的成像檔。使用得自R-project(http://r-project.org)和Bioconductor project(http://bioconductor.org)的軟體進行微陣列的統計分析。在陣列之間對背景消除的微陣列進行分位數歸一化。然後將歸一化的資料轉化為log2,並過濾探針,使得僅僅繪製Entrez基因的探針被保留。然後,使用除去50%的最少的可變探針的非特異性篩檢程式56。為了鑒別差異性表達的基因,我們使用limma包57來計算衰減的t-統計。使用Benjamini-Hochberg方法計算錯誤發現率(FDR)。在FDR為0.1的差異性表達下鑒定基因。
ELISA. 使用DuoSet ELISA Kit,根據製造商的方案(R&D Systems),測量人類IL-17C和人類G-CSF的分泌水準。相似地,按照在人類BD-2 ELISA Development Kit(PeproTech)中的指示,測量人類BD-2D的分泌水準。通過使用處於PBS中的抗-小鼠IL-17C抗體(R&D Systems,MAB2306)塗敷平板,並在4℃下過夜來形成小鼠IL-17C ELISA。將平板洗滌3次,並使用封閉緩衝劑(PBS,1% BSA)在室溫下溫育1小時。在3次洗滌後,將小鼠IL-17C蛋白質標準品與樣品在室溫下溫育2小時。為了測試小鼠IL-17C的水,將平板與1 μg/ml生物素標記的抗-IL-17C MAb(克隆子IL17C:7516,內部形成,在圖31b中的Ab特徵)溫育1小時,然後再洗滌3次,並與鏈黴素-辣根過氧化物酶(R&D Systems)溫育20分鐘。
腺病毒感染. 對8周齡的野生型C57BL/6或Il17re-/-小鼠靜脈內注射1 x 1010 PFU腺病毒。在感染7天后,小鼠的眼球後經脈出血,從而測量血清IL-17C的水準。在感染後的第21天收集組織以用於組織病理學和RNA分析。
逆轉錄病毒的轉導. 將人類IL17RA,IL17RB,IL17RC,IL17RD和IL17RE的cDNA克隆到表達GFP的雙順反子的逆轉錄病毒載體(pMSCV-IRES-GFP)中,並用於轉染Phoenix Ecotropic細胞(ATCC)。將包含聚凝胺的逆轉錄病毒的上清液用於感染293細胞和人類真皮成纖維細胞HDFn。通過流式細胞計數儀純化GFP+細胞。通過FACS分析免疫染色和/或蛋白質印跡來證明受體的表達。
放射性配體的細胞結合測試. 使用非水性碘化試驗方法將hIL-17C碘化,並且放射性標記的hIL-17C具有72.5 μCI/μg的特異活性。將表達IL-17受體的293細胞與固定濃度的碘化hIL-17C以及濃度增加的未標記的hIL-17C(包含僅僅緩衝劑的濃度由0開始增加的樣品)在室溫下溫育2小時。在溫育2小時後,將競爭性反應物轉移至Millipore Multiscreen篩檢程式平板上,並用結合緩衝劑洗滌4次,從而由結合的碘化hIL-17C上分離游離的hIL-17C。在Wallac Wizard 1470 γ計數器上計數篩檢程式並使用NewLigand軟體(Genentech)評價結合資料,其中所述之軟體使用了Munson和Rodbard的擬合運算以確定IL-17C的結合親和性。
IL-17C-IL-17R結合的FACS分析.將1 x 105 293細胞、表達GFP或hIL-17受體(RA,RE)的293細胞在FACS緩衝劑(PBS,0.5% BSA,0.2%疊氮化鈉)中與50 ng FLAG-靶向的hIL-17C在室溫下溫育30分鐘。然後洗滌細胞,並與生物素標記的抗-FLAG抗體溫育。使用鏈黴素-APC(BD)觀察生物素標記的抗體。以正向-散射面積對寬度脈衝來排除偶極子,並且4,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)用於排除死亡細胞。
耳部經皮注射.野生型C57BL/6小鼠每天接受0.5 μg重組小鼠IL-17C或當量PBS的經皮注射,持續10天。在試驗之前以及試驗所指示的天數測量耳的厚度。
DSS-誘導的大腸炎.在引用水中隨意給藥1.5-2% DSS(w/v,分子量36-50 kDa;MP Biomedicals)來誘導急性大腸炎。在總共5天內給予DSS(第0至5天),其後在第6至15天給予動物以規則的飲用水。在給予DSS的第4天開始每天對動物稱重,直到第15天。在第15天,通過吸入二氧化碳對動物實施安樂死,移出結腸和腸系膜淋巴結並進行分析。為了評價大腸炎,使用冷的無菌PBS沖洗結腸,評分並稱重。在0-4的評分上進行目測評分來評估結腸(0=無炎症,1=25%的結腸紅腫和/或增厚,2=50%的結腸紅腫和/或增厚,3=75%的結腸紅腫和/或增厚,4=100%的結腸紅腫和/或增厚)。使用標準的實驗室級別記錄結腸重量。為了進行臨時的分析,按照上文所述進行試驗,但是在第9天終止。結腸用於組織學和RNA分析。就結腸器官培養而言,使用補充有100 μg/ml的青黴素/鏈黴素的冷的RPM1 1640沖洗得自DSS處理的或未經處理的C57BL/6小鼠的結腸。縱向切割結腸,並在37℃下在裝有補充了100 μg/ml的青黴素/鏈黴素的1 ml RPMI 1640的12孔板紅培養24小時。收集上清液,並在4℃下在14000rpm下離心5分鐘。
皮膚炎症的咪喹莫特模型.每天向10-12周齡的BALB/c、I117c+/+或I117c-/-、或者I117re+/+或I117re-/-小鼠的剃毛後背以及右耳上給藥50mg Aldara乳膏(5%咪喹莫特乳膏,得自Graceway,3M),並持續5天。每天都進行臨床評分以及耳厚度的測量。根據牛皮癬症狀的表現(例如紅斑、剝落和厚度)進行評分:0,未患疾病。1,極輕的紅斑、極輕的厚度以及小面積的剝落。2,輕微的紅斑、輕微的厚度以及小面積的剝落。3,中等的紅斑、中等的厚度以及小面積(<25%)的剝落(不規則的且斑駁的)。4,嚴重的紅斑以及中等面積(25-50%)的明顯的增厚和剝落(不規則的且斑駁的)。5,嚴重的紅斑以及大面積(>50%)的明顯的增厚和剝落(不規則的且斑駁的)。在第5天收穫耳和背部組織以用於組織學評價。
腺病毒原液的形成.將成熟小鼠IL-17C(Asp-17至Gln-194)克隆到pShuttle載體(Clontech)中作為N-末端Flag融合物。隨後,使用AdenoX Expression System(Clontech)形成Ad5載體。在Baylor College of Medicine,Houston,TX,通過ector Development Labortatory進行病毒的生產、滴定和擴展。
組織學. 在固定於載玻片上的4 μm厚‧甲醛固定的石蠟包埋(FFPE)組織部分進行免疫組織化學和染色。為了進行咪喹莫特試驗,在第5天收集右耳廓,固定在10%中性緩衝甲醛中,並進行縱向加工和包埋,從而使用蘇木精和曙紅(H&E),1 μg/ml兔抗-Ki-67(Clone SP6;Thermo Scientific)以及10 μg/ml大鼠抗-Ly6G/C(克隆子Gr-1;Pharmingen)染色的部分。為了進行腺病毒過表達試驗,收穫膽囊和胰腺並固定在甲醛中。固定後,使用低溫切片機(X,Y)製備所述之部分,並用H&E和抗-Ly6G染色以用於組織學分析。為了進行DSS誘導的大腸炎試驗,通過內臟滾卷技術來製備結腸、並用H&E、Alcian藍(AB)、10 μg/ml兔抗-F4/80(Clone C1:A3-1;Serotec)以及抗-Ly6G/C染色以用於組織學。
腺病毒原液的形成.將成熟小鼠IL-17C(Asp-17至Gln-194)克隆到pShuttle載體(Clontech)中作為N-末端Flag融合物。隨後,使用AdenoX Expression System(Clontech)形成Ad5載體。在Baylor College of Medicine,Houston,TX,通過ector Development Labortatory進行病毒的生產、滴定和擴展。
即時RT-PCR引物和探針.使用引物和探針(見下文)、以及Taqman一步RT-PCR母體混合物(Applied Biosystems)在ABI 7500 Real-Time PCR系統(Applied Biosystems)上進行即時RT-PCR。將樣品向對照管家基因RPL19歸一化,並通過ΔΔCT方法計算相對的表達情況。常規製備的引物和探針序列SEQ ID NO 1-28分別以表觀順序示於表1中。
統計分析. 在JMP 8.0.2版本的軟體(SAS Institute)中進行統計學分析。Dunnett測試用於比較所有測試組與參照組之間的組平均值。P值<0.05被認為有意義。
結果與討論
IL-17C與IL-17RA和IL-17RE亞單元結合
為了瞭解IL-17C的生物學功能,首先致力於通過表徵IL-17C受體複合物來鑒定IL-17C的應答細胞。直接篩選與HEK293(293)細胞系結合的IL-17C,其中所述之細胞系以逆轉錄病毒過表達所有已知的IL-17受體家族成員,包括IL-17RA至IL-17RE鏈10-12。通過使用抗-FLAG抗體的免疫螢光證明細胞表面上受體的表達(資料未示出)。IL-17C特異性地與表達IL-17RA或IL-17RE的293細胞結合(圖1),但是不與表達IL-17RB、IL-17RC或IL-17RD的細胞結合(資料未示出)。此外,表達IL-17RE的細胞與IL-17A,IL-17B,IL-17E和IL-17F之間的相互作用未檢測(資料未示出)。與細胞篩選的結果一致,特異性地檢測在IL-17C與IL-17RA和IL-17RE之間的生物化學相互作用。與放射性標記的IL-17C的競爭性結合試驗表明IL-17C與IL-RE之間具有高的親和性相互作用(KD=0.35nM),與IL-17RA之間具有低的親和性相互作用(KD=1.4mM)(圖2)。共免疫沉澱研究表明當293細胞過表達兩條鏈時細胞表面上的IL-17RA和IL-17RE亞單元的結合(圖3)。這些資料表明IL-17C還通過異源二聚體受體複合物進行信號傳遞,其中所述之複合物與IL-17、IL-17F和IL-17E共有通常的IL-17RA鏈,並且還是用其獨特的IL-17RE受體以用於其選擇性及高親和性的識別。
需要IL-17RE和IL-17RA以用於IL-17C的信號傳遞
為了堅定IL-17C應答組織和細胞,篩選IL-17RA和IL-17RE的共表達。與之前的研究一致,IL-17RA被廣泛表達(圖4a、b)39。但是,多個組織的基因表達概況表明IL-17RE在粘膜器官(包括氣管、肺、皮膚和結腸(圖5a)40)中表達最多,表明該組織可能是IL-17C的靶向器官。在這些粘膜組織中對特定類型的細胞進行進一步的檢測表明IL-17RA和IL-17RE在上皮器官的細胞(包括原代人類角化細胞和人類結腸上皮細胞(圖5b))上共表達。有趣的是,儘管在原代人類成纖維細胞和人類外周血單核細胞(PBMC)上檢測到IL-17RA,但是這些細胞中IL-17RE的表達極低,並且在T細胞中具有一些可檢測的表達(資料未示出)。這些結果表明粘膜上皮細胞(但並非為PBMC或成纖維細胞)能夠起到IL-17C的原代靶向細胞。
IL-17A和IL-17F靶向組織上皮細胞和成纖維細胞52。考慮到IL-17C與IL-17A和IL-17F的序列同源性以及它們共有的IL-17RA鏈,假設IL-17C可以如同IL-17A和IL-17F那樣在上皮細胞中誘導相似的信號傳遞應答。如ELISA的評估,使用不同單次劑量的IL-17C處理人類原代角化細胞會以單次劑量依賴性的方式誘導粒細胞集落刺激因數(G-CSF)和β-防禦素2蛋白質(其為IL-17A的兩種已知的靶物)的表達,證明角化細胞對IL-17C產生應答(圖6)。使用其他類型的原代上皮細胞檢測到相似的結果(資料未示出)。
以下證明在IL-17C的信號傳遞中需要IL-17RA和IL-17RE。為了進一步證明在這些細胞中通過IL-17C使用IL-17RA和IL-17RE,在抗-IL-17RA封閉抗體存在下使用IL-17C刺激角化細胞可以以單次劑量依賴性的方式抑制IL-17C介導的G-CSF,以及對β-防禦素2的誘導,由此證明對IL-17RA的功能需要(圖7)。考慮到缺少IL-17RE的封閉抗體,使用兩種補體系統(獲得及失去功能),從而證實IL-17C的信號傳遞功能需要IL-17RE。人類原代真皮成纖維細胞表達最少的IL-17RE,可不用於誘導響應於IL-17C的G-CSF(圖8a)。顯而易見,這些細胞會回應於IL-17A的刺激而誘導G-CSF(圖8b)。由於人類原代真皮成纖維細胞表達IL-17RA,測試IL-17RE的異常表達會賦予IL-17C以響應性。這些細胞中IL-17RE的表達可以以IL-17C-依賴性的方式誘導G-CSF,從而提供IL-17C應答性和功能需要IL-17RE的證據(圖8a)。此外,IL-17C應答性在衍生自Il17re-/-小鼠的角化細胞中喪失,而IL-17A的作用保持完整(圖9)。這些結果強調了IL-17C與IL-17A之間不同受體的用途。
為了證明IL-17RE在IL-17C在體內的信號傳遞功能中的作用,腺病毒系統用於在小鼠中系統性地過表達IL-17C。該系統誘導了IL-17C的快速系統表達(圖10a)。根據之前的報導,野生型小鼠中IL-17C的過表達促進了嗜中性粒細胞流入到組織中36。膽囊粘膜及胰腺管的組織學檢查表明嗜中性粒細胞的失控的壁性及上皮內浸潤(圖10b)。為了解決在IL-17C的生物學中對IL-17RE的功能需求,形成了i117re-/-小鼠(圖11)。儘管IL-17C的過表達會促進野生型小鼠中嗜中性粒細胞流入到膽囊和胰腺中,但是在i117re-/-小鼠中未檢測到浸潤(圖12a,b)。總之,該資料證明需要IL-17RA和IL-17RE進行信號傳遞,並涉及它們作為新型異源二聚體IL-17家族受體的亞單元。
IL-17C具有與IL-17A相似的生物學功能
為了全面地瞭解上皮細胞上IL-17C的生物學功能以及特定的下游活性,在經IL-17C處理的人類原代角化細胞上進行微陣列分析。與IL-17A相似,IL-17C誘導了編碼蛋白質的基因的表達,其中所述之蛋白質與固有免疫力(包括細胞因數和趨化因數)、炎症調控劑以及得自角化細胞的抗微生物肽有關(圖13)。IL-17C或IL-17A對這些基因的子集的誘導可通過定量PCR進一步證明(圖14)。有趣的是,與IL-17A的生物學活性類似,IL-17C誘導了與嗜中性粒細胞功能有關的大量的基因,包括CCL20,G-CSF以及抗微生物肽(例如防禦素和S100蛋白質)42,59。此外,與IL-17A相似,IL-17C在誘導β-防禦素2中與TNFα和IL-1γ協同作用(圖15)60-62。由兩種細胞因數上調節的基因中的相似性表明,就功能而言,它們在上皮細胞上是富足的。
通過與諸如TNFα之類的促炎細胞因數協同作用而使得免疫應答增強是IL-17A的生物學特點。IL-17A和IL-17C應答的相似性促進了檢測IL-17C是否還會與其他細胞因數協同作用。類似於IL-17A,IL-17C在誘導得自角化細胞的β-防禦素2中與TNFα和IL-1β在功能上協同作用(圖15)41。這些結果表明這兩個IL-17家族成員之間的功能相似性。
通過細菌和炎症刺激誘導IL-17C
通過IL-17C誘導上皮細胞的抗微生物應答得到這樣的推測,即,可以通過細菌病原體調節IL-17C的表達。因此,在使用熱滅活的E. coli進行處理之後,在人類真皮成纖維細胞(PBMC)以及3種類型的上皮細胞中檢測IL-17C的誘導。引人注意的是,儘管在結腸上皮細胞、氣管上皮細胞以及角化細胞(圖16)中細菌的刺激會誘導IL-17C,但是在成纖維細胞以及PBMC培養物中未檢測到IL-17C蛋白質(圖17)。此外,動力學分析表明,回應於細菌的刺激而誘導IL-17C mRNA的表達是快速的(圖18)。動力學分析表明,誘導IL-17C mRNA的表達是對細菌的刺激進行快速的應答(圖18)。隨著IL-17C受體系統及其選擇性的表達方式的闡明,所述之這些資料支援了這樣的前提,即,IL-17C為上皮細胞在它們感受到微生物(例如遇到細菌)攻擊時生成的細胞因數,以及以自分泌的方式其作用以誘導上皮細胞中快速的固有免疫應答。
由於Toll樣受體或TLR有利於細胞的識別以及對細菌產物的應答,檢測TLR刺激本身是否足以誘導IL-17C43。實施TLR基因表達譜,以確定哪個受體為上皮細胞上細菌刺激的生理學靶物。與TLR2和TLR5在所檢驗的所有3種類型的上皮細胞中的表達一致(圖19b),僅僅使用TLR2和TLR5的激動劑配體(其分別識別細菌脂肽和鞭毛蛋白)進行刺激,會誘導結腸上皮細胞(圖19a)以及原代氣管上皮細胞和角化細胞(資料未示出)生產IL-17C。重要的是,上皮細胞中TLR2和TLR5信號傳遞的刺激不會誘導其他IL-17家族的成員(圖20a),表明IL-17C為上皮細胞在感受到細菌時所表達的獨特的家族成員。具體而言,定量RT-PCR表明細胞外受體TLR2和TLR5(其分別識別細菌脂肽和鞭毛蛋白)、以及細胞內受體TLR3(其結合病毒dsRNA)和TLR9(其為在病毒和細菌DNA中發現的未甲基化的CpG寡核苷酸的受體)的表達(圖19b)。使用這些TLR中的各TLR的激動劑進行刺激表明IL-17C的誘導受限於細胞外受體TLR2和TLR5的活化,其中所述之兩種TLR都對細菌產物具有特異性(圖19a)。根據細胞研究,使用鞭毛蛋白進行體內刺激還會誘導IL-17C在結腸組織中表達(圖20b)。相反,在這些條件下未檢測到其他IL-17家族成員(圖20a),表明IL-17C為上皮細胞生成的獨特的家族成員。在使用這些激動劑進行刺激時,未檢測到IL-17RA或IL-17RE的表達發生變化(圖21)。
其次,由於細菌侵犯所引起的宿主防禦途徑包括促炎細胞因數TNFα,IL-1β,IL-22和IL-17A的分泌,測試這些細胞因數是否能調節IL-17C4,8,44。在使用TNFα或IL-1β刺激的結腸上皮細胞培養物種檢測到IL-17C,但是在使用IL-22或IL-17A刺激的培養物未檢測到IL-17C(圖22)。這符合調節IL-17C表達的TNFα的其他報導43。與TLR刺激相似,在這些培養物種未檢測到其他IL-17家族成員的表達(圖23),或者在使用這些細胞因數進行刺激時未檢測到IL-17RA和IL-17RE表達的變化(資料未示出)。
此外,評價在調節IL-17C的表達中不同刺激之間對色度亮度干擾的需求。考慮到在TLR2,TLR5和IL-1β介導的應答中對MyD88的專性需求,在TLR2,TLR5和IL-1β刺激後,在Myd88-/-角化細胞中未檢測到IL-17C的誘導(圖24和圖25)43。相反,在Myd88-/-衍生的角化細胞中,TNFα-介導的IL-17C的誘導保持完好(圖24)。同樣,儘管TNFRII-Fc可抗-IL-1β分別阻斷了TNFα和IL-1β由人類結腸上皮細胞對IL-17C的誘導,但是這些處理未干擾E. coli介導的IL-17C的分泌(圖26)。在其中TLR2和TLR5被封閉抗體所抑制的試驗中,觀察到相似的結果。這些受體的風阻不會影響TNFα和IL-1β刺激後IL-17C的誘導,表明TLR和細胞因數途徑彼此獨立地調節了IL-17C的表達(圖27)。總之,所述之結果表明,IL-17C為上皮細胞衍生的細胞因數,其作為對細菌產物的直接應答而被分泌,或者通過促炎細胞因數TNFα和IL-1β分泌。
白細胞並非為體內IL-17C的主要來源
為了進一步排除淋巴細胞作為體內IL-17C的主要細胞來源,將鞭毛蛋白給予Rag2-/-:Il2rg-/-小鼠。儘管在這些小鼠中實現了通過鞭毛蛋白由結腸誘導IL-22,但是這種IL-17C的誘導與由WT小鼠的誘導相當,表明淋巴細胞並非IL-17C的主要來源(圖28)。為了進一步排除白細胞在IL-17C誘導中的作用,形成骨髓嵌合小鼠,在該小鼠中,將得自WT小鼠或Il17c-/-小鼠的骨髓轉移至致命輻射的WT或Il17c-/-小鼠中。在使用鞭毛蛋白進行刺激時,不管WT受體小鼠或Il17c-/-小鼠是否接受了骨髓,僅僅得自WT受體小鼠的結腸會表達IL-17C,而得自Il17c-/-受體的小鼠則未表達(圖29)。總之,這些結果支持了之前的體外觀察結果,即,白細胞並未IL-17C的主要來源,其在細菌攻擊時反而通過活化TLR途徑而由上皮細胞生產。這與IL-22的表達相反,其在白細胞缺乏時喪失。
IL-17C在DSS大腸炎模型中起到保護性作用
腸上皮細胞會持續地與伴生微生物菌群相互作用。考慮到上皮細胞生產IL-17C以及上皮細胞的自分泌功能,假設IL-17C在保持腸上皮層的動態平衡中可能發揮重要作用。與IL-17C相似,IL-17A和IL-22還可以靶向組織上皮細胞。之前的研究表明,這兩種細胞因數會產生針對入侵的病原體以必要的宿主防禦應答10,20。在DSS處理時,在結腸中檢測IL-17C的表達,其中所述之DSS為干擾結腸上皮細胞以及擾亂伴生內臟菌群和免疫系統的動態平衡的化學品,使得免疫細胞活化及細胞因數分泌、炎症及組織損傷、其後為消退期,其中免疫動態平衡被重建。在DSS誘導的大腸炎模型中,IL-17A或IL-22的缺陷小鼠會部分由於缺乏上皮細胞對腸微菌群的控制而發展成惡化的疾病24,46。由此,我們推斷出於IL-17C相似的作用。分析受到DSS攻擊的野生型小鼠的結腸組織中IL-17C的表達表明在處理後的第2天開始誘導mRNA,並在第6-8天達到峰值(圖30)。在DSS處理後快速誘導IL-17C與細胞研究一致,但是與IL-17A,IL-17F和IL-22的表達相反,他們在DSS攻擊後的第6天仍不可檢測(圖32)。結腸培養物證明,在第8天IL-17C蛋白質的表達升高,這與該模型中大腸炎的峰值相應(圖31)。這些結果強調了IL-17C可誘導表達的動力學與體內IL-17A和IL-17F的動力學之間的差異。
為了瞭解IL-17C在這種模型中的功能,使用處於飲用水中的2%DSS處理野生型和I117re-/-小鼠,並持續5天,其後使得它們恢復9天。每天稱重以用於疾病的總體評價。與同窩出生的仔畜對照相比,I117re-/-小鼠的重量恢復明顯延遲(圖33)。此外,在I117re-/-小鼠中,末端結腸得分(其反應了DSS處理所導致的炎症的程度以及延遲的恢復)明顯較高(圖34a)。此外,還趨向於末端結腸的重量較高,再次反應缺乏上皮細胞的恢復(圖34b)。結腸組織的顯微鏡分析還表明炎症未得到充分的解決,其表徵為與對照相比,在Il17re-/-小鼠中,持續存在細胞浸潤(包括F4/80+巨噬細胞和Ly6G+嗜中性粒細胞),固有膜膨脹以及大腸幹上皮細胞增生(圖35)。如還原的Alcian藍(AB)染色所示,經DSS處理的Il17re-/-小鼠顯示為較大的環狀細胞損失(圖35b)。在第9天對結腸組織的短暫分析還表明,在Il17re-/-小鼠中炎症和大腸幹損失較大,促炎細胞因數和趨化因數表達較高(圖36-38)。經DSS處理的Il17re-/-小鼠在疾病的解決中具有相似的缺陷(圖39和41)。這些資料反應了控制由DSS處理導致的初始細菌驅使的炎症的、IL-17C介導的宿主防禦途徑的需求。缺乏這種早期的應答導致伴生的介導的細胞因數和趨化因數的分泌,從而導致白細胞浸潤和組織損傷。總之,這些資料支援了IL-17C的必不可少的作用,其與IL-17A和IL-22相似,會儲存和/或保持在炎症攻擊時腸上皮的動態平衡以及腸微生物。
IL-17C促進了炎症皮膚表現型
儘管保護性細胞因數(例如IL-17A和IL-22)的過表達在宿主防禦過程中是有利的,但是其在某些條件下可以引起組織炎症和損傷2,10,20。IL-17A和IL-22的這些促炎功能在臨床前牛皮鮮模型中被舉例證明,其中兩種細胞因數都顯示出起到病原體的功能32,47,48。考慮到與IL-17A相似,IL-17C誘導了極其相似的下游生物學功能,假設IL-17C在皮膚炎症中能夠激發病原體功能。事實上,觀察到經皮注射IL-17C會刺激白細胞浸潤以及組織的表皮增厚(圖42和43)。與在G-CSF誘導作用一致,嗜中性粒細胞在注射IL-17C的耳部中為主要的細胞浸潤。
為了進一步分析IL-17C在皮膚中的促炎功能,檢測該途徑在銀屑病小鼠模型中的作用。採用非感染的皮膚炎症模型,其中施加局部TLR7-8激動劑咪喹莫特來誘導取決於致病Th17細胞因數的牛皮鮮樣皮膚損傷,其表徵為表皮增殖以及白細胞浸潤48。而且,在淋巴細胞缺乏下疾病被減輕但未喪失,表明非淋巴細胞衍生的因數還有助於炎症48。RNA分析表明,在咪喹莫特處理野生型小鼠後誘導出IL-17C,這最有可能是由於在TLR7-8刺激(其包括TNFα和IL-1β的表達)後或者通過TLR7(其在鼠源角化細胞中以極低的水準表達)的下游作用(圖44,資料未示出)49。咪喹莫特處理的Il17c-/-小鼠表現出於對照相比,明顯減輕的炎症以及表皮增厚(圖45-47)。組織學分析表明,如通過Ki67染色所測定的角化細胞增殖減少,以及在得自咪喹莫特處理的Il17c-/-的耳廓真皮和表皮膿包中Ly6/G+嗜中性粒細胞浸潤較少(圖46)。在Il17c-/-中,促炎細胞因數的表達減少,反映了在這些動物中疾病的總體減輕(圖48和49)。在Il17c-/-種系中檢測到相似的結果(圖50)。這些資料再次強調了IL-17C與IL-17A和IL-22在非感染的炎症中調控促炎功能中的功能相似性。
如上文所示,測定IL-17細胞因數家族成員IL-17C的細胞來源、受體以及生物學功能。在粘膜和皮膚上皮細胞中,IL-17C回應於細菌刺激或者促炎細胞因數IL-1β和TNFα而被快速誘導。儘管多個途徑誘導了IL-17C,但是這些途徑彼此獨立地發揮作用。相反,在相同條件下刺激的其他類型的細胞(包括PBMC)中未檢測到IL-17C。體內研究證明白細胞在TLR誘導的IL-17C表達中的非專性作用。
此外,上文資料證明,IL-17C使用了由IL-17RA和IL-17RE亞單元構成的獨特的異源二聚體複合物,其優選在上皮細胞中表達。儘管IL-17C以高親和性與IL-17RE結合、以低親和性與IL-17RA結合,但是其兩條鏈對於IL-17C的功能而言是必需的。與IL-17RE亞單元相反(其被認為是孤兒受體),對於IL-17A、IL-17F和IL-17E的功能而言,已經顯示需要IL-17RA亞單元。上述資料證明了該受體在IL-17C的生物學中的專性作用,並且進一步鞏固了在所有IL-17細胞因數家族成員中IL-17RA為共有受體的假設12。此外,這些結果表明,對各家族成員的特異性在於異源二聚體複合物的第二亞單元。IL-17C與所述之受體複合物結合會誘導促炎趨化因數、細胞因數、抗微生物肽以及其他宿主防禦途徑的表達。
在體內,IL-17C顯示出保護性和致病性功能。IL-17C途徑的喪失會惡化疾病並在DSS大腸炎模型中延遲恢復。在這種模型中,DSS處理會擾亂結腸中的免疫動態平衡,從而將宿主組織暴露於伴生細菌,這會引發免疫應答。與細胞資料一致,動力學分析表明,在開始DSS處理後IL-17C會很快表達。這種快速誘導可以啟發宿主的防禦途徑,例如抗微生物肽的分泌,從而控制由DSS誘導的上皮屏障破壞所導致的細菌負擔。因此,在所述途徑缺乏的條件下,這種上皮固有的初始防禦應答喪失,從而導致結腸暴露于大量的殘餘細菌。這轉而會促使白細胞的免疫應答增加(如在嗜中性粒細胞和巨噬細胞浸潤、以及促炎細胞因數和趨化因數所示),從而導致疾病更重以及不充分的解決。因此,IL-17C作為上皮細胞的即刻應答的一部分,在控制內臟粘膜的動態平衡中起到獨特的作用。
與DSS模型相反,上述結果顯示IL-17C在皮膚中會促進致病應答。這些差異有可能反應了各種模型中皮膚與內臟粘膜的上皮屏障以及上皮損傷的性質的不同環境。與DSS不同,咪喹莫特誘導的炎症具有最少的細菌成分,並且由皮膚(其與內臟而言相比為相對無菌的環境)中的樹突狀細胞以及可能的角化細胞的TLR7-TLR8的激動所引發48。咪喹莫特誘導了相當大量的炎症應答,但是由於炎症並未被細菌產物所擴大,所以細胞因數(例如IL-17C)的表達不再是有利的,並相反會增加炎症並導致顯著的組織病理學。事實上,在咪喹莫特處理的I117c-/-和I117re-/-小鼠中,誘導了嗜中性粒細胞浸潤、表皮增生以及水腫。同樣,IL-17C在耳部的過表達會產生炎症,從而進一步強調了這種細胞因數在非感染狀態下的致病潛力。
儘管細胞研究顯示IL-17C與IL-17A共有許多功能性質,例如誘導宿主防禦及組織建模途徑、以及與促炎細胞因數的協同作用,但是這些蛋白質在體內顯示是不富足的。IL-17C與IL-17A之間的差異通過它們的調節以及細胞靶物的差異所表明。儘管上皮細胞對IL-17C的誘導受到固有信號的調控,但是固有以及適應性的免疫刺激會促進白細胞分泌IL-17A9,10。此外,IL-17A和IL-17C使用了不同的受體,這些受體在細胞分佈中不同。由於IL-17RA被廣泛表達,但是其靶物細胞特異性由異源二聚體受體複合物的第二亞單元所表明。儘管大量的細胞表達IL-17RC,但是主要在上皮細胞上檢測到IL-17RE9,10。因此,上皮細胞上IL-17C和IL-17RE的受限表達限制了這些類型的細胞的活性。相反,分泌IL-17A的、與受體的遷移潛力及廣泛分佈偶聯的多種類型的細胞使得IL-17A在多種細胞系統中發揮作用9,10。這些差異在其中證明了IL-17C的獨特功能的體內研究中被舉例說明。發現,與IL-17A相似,IL-17C具有保護性及致病性功能,但是這些細胞因數是不富足的。動力學研究表明在DSS大腸炎模型中,IL-17C的誘導在IL-17A以及其他TH17細胞因數的誘導之前發生,因此排除了對IL-17C的損失的補償。同樣,在IL-17C的缺乏下會減輕咪喹莫特介導的皮膚炎症,再次表明這種細胞因數在上皮細胞中起到非重疊的作用。
免疫系統與上皮細胞之間的交流會幫助增強上皮細胞對抗潛在危險環境的微生物有機體的防禦功能。病原體識別受體(例如TLR)的表達使得上皮細胞檢查潛在感染的微環境。在治病引發劑出現時,這些TLR介導的信號使白細胞警覺,從而引發宿主的防禦應答。這些上皮細胞衍生的信號的意義通過大量的上皮屏障功能紊亂的人類疾病來示例說明。諸如IBD、哮喘以及銀屑病之類的疾病都具有潛在的上皮細胞成分,並且瞭解上皮細胞如何有助於疾病發病機理會提供治療益處1-3。
總之,上文描述了IL-17C生物學作為粘膜和皮膚上皮細胞對固有免疫應答的獨特貢獻。以自分泌方式發揮作用從而在屏障被破壞以及遭遇細菌時在上皮細胞中引發固有免疫應答,IL-17C代表了新的機制,通過該機制上皮細胞參與到宿主的防禦中。考慮到這種作用方式,我們提出IL-17C提供了必要的局部刺激從而增強上皮免疫應答,並且可以在許多感染和自身免疫疾病中發揮重要功能。
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圖1. 通過IL-17RA和IL-17RE異源二聚體受體複合物調控IL-17C的生物學作用。與293細胞或表達GFP、hIL-17RA或hIL-17RE的293細胞結合的人類hIL-17C的流式細胞計數檢測。將細胞與FLAG-靶向的hIL-17C溫育30分鐘,然後使用抗-FLAG的抗體染色,以評估細胞因數的結合(黑線)。陰影的柱顯示了在缺乏hIL-17C的條件下使用抗-FLAG的抗體的染色。資料代表了3個不同的試驗。資料代表了3個不同的試驗。
圖2. hIL-17C與hIL-17RA或hIL-17RE的競爭性結合。曲線顯示通過增加未標記的hIL-17C的劑量來替代與表達hIL-17RA或hIL-17RE的293細胞結合的125I-hIL-17C。資料代表了3個不同的試驗。資料代表了3個不同的試驗。
圖3. 得自異源二聚體複合物的IL-17RA和IL-17RE受體鏈。293細胞與Flag抗原決定部位標記的IL-17RA(IL-17RA-標記)、Myc抗原決定部位標記的IL-17RE(IL-17RE-Myc)或它們的組合轉染。使用抗-FLAG(右側面板)或抗-Myc(左側面板)實施共免疫沉澱(IP),然後使用所示的抗-Myc或抗。FLAG抗體進行免疫印跡(WB)。使用使用所示的抗-Myc或抗-FLAG抗體對細胞裂解物進行印跡(底部的面板)。
圖4. IL-17RA顯示出光譜的組織分佈。在所示的鼠源組織(頂部)和多種類型的人類細胞(底部)中進行IL17RA mRNA的qRT-PCR分析。分別相對于管家基因Rpl19和RPL19顯示表達情況;誤差棒、標準偏差(n=2)。
圖5. 在所示的鼠源組織(a)和多種類型的人類細胞(b)中進行IL17RE mRNA的定量PCR(qRT-PCR)分析。相對于管家基因RPL19顯示表達情況;誤差棒、標準偏差(n=3)。
圖6. 在經過hIL-17C刺激48小時後由人類表皮角化細胞(HEKn)分泌的人類β-抵禦素2(hBD2)和hGCSF的ELISA;誤差棒、標準偏差(n=3)。
圖7. 如在e中實施的使用劑量增加的抗-hIL-17RA封閉抗體進行刺激和蛋白質測量;平均值(n=3)。
圖8. (a)在使用hIL-17C刺激48h後並且如在e中測量,在經逆轉錄病毒轉導從而表達hIL-17RE的人類真皮成纖維細胞(HDFn)中G-CSF的產生;誤差棒、標準偏差(n=3)。(b)人類真皮成纖維細胞對IL-17A的應答。在使用hIL-17A刺激24小時後在HDFn細胞中G-CSF生產的ELISA分析;誤差棒、標準偏差(n=3)。
圖9. 由使用IL-17C或IL-17A刺激後的I117re+/+或I117re-/-新生小鼠衍生的角化細胞中G-CSF的分泌。
圖10. 異常表達的IL-17C以IL-17RE依賴性的方式在體內促進了嗜中性粒細胞的移動。使用1 x 1010 PFU的Ad5-GFP或鼠源IL-17C(Ad5-mIL-17C)腺病毒注射野生型小鼠。(a)在感染後的第7天收集的Ad5-GFP或Ad5-mIL-17C感染小鼠血清中mIL-17C的ELISA。(b)在使用Ad5-IL-17C(左側柱)或Ad5-GFP(右側柱)感染後並使用H&E(i-iv)或Ly6G/C(v-viii)染色的第21天收集的胰腺(i-iv)和膽囊(v-viii)的組織學分析。黃色箭頭指出組織中的嗜中性粒細胞簇。箭頭表示嗜中性粒細胞浸潤到組織中。結果代表了3個不同的試驗。縮寫:Isl,小島;Lu,腔;Ve,小靜脈。
圖11. I117re缺陷型小鼠的產生。(a)針對產生的I117re-/-小鼠的靶向策略。外顯子7-15被b-半乳糖苷酶-新黴素和嘌呤黴素抗性盒替代。(b)得自證明了基因型的I117re+/+和I117re-/-小鼠鼠尾DNA的基因組PCR分析。(c)由I117re+/+和I117re-/-小鼠收穫的耳組織中I117re mRNA的qRT-PCR分析。相對管家基因Rp119顯示表達情況;誤差棒、標準偏差。
圖12. 異常表達的IL-17C以IL-17RE依賴性的方式在體內促進了嗜中性粒細胞的移動。使用1 x 1010 PFU的Ad5-GFP或鼠源IL-17C(Ad5-mIL-17C)腺病毒注射I117re+/+和I117re-/-小鼠。(a)在感染後的第8天收集的感染Ad5-GFP或Ad5-mIL-17C的I117re+/+(黑色柱)和I117re-/-(白色柱)小鼠血清中mIL-17C的ELISA。柱表示平均值±s.e.m的平均值。(b)在使用Ad5-GFP或Ad5-IL-17C感染後並使用H&E染色的I117re+/+和I117re-/-小鼠胰腺和膽囊組織的組織學分析。黃色箭頭指出組織中的嗜中性粒細胞簇。箭頭表示嗜中性粒細胞浸潤到組織中。結果代表了3個不同的試驗。縮寫:IsI,小島;Lu,腔;Ve,小靜脈。
圖13. IL-17C誘導的上皮細胞的宿主防禦途徑。由使用hIL-17C刺激3h和24h的HEKn細胞得到的RNA的微陣列分析。對照表示不具有細胞因數的模仿刺激。
圖14. 在使用hIL-17C(a)或hIL-17A(b)處理3和24h後由HEKn細胞得到的所示的趨化因數、IL-1家族細胞因數和抗微生物肽的mRNA的qRT-PCR分析。資料顯示為相對於模仿處理(對照)的樣品;誤差棒、s.e.m.(n=5)*=p<0.05(Dunnett測試)。
圖15. 由使用hIL-17C、hTNFα、8hIL-1β或它們的組合刺激48小時的HEKn細胞分泌的hBD2的ELISA分析;誤差棒、標準偏差(n=3)。
圖16. IL-17C是由粘膜上皮細胞響應於炎症而表達的。由使用熱滅活的E. coli刺激24h的人類上皮細胞(HCT-15結腸上皮細胞、原代氣管上皮細胞或HEKn角化細胞)分泌的hIL-17C的ELISA;誤差棒、標準偏差(n=3)。
圖17. TLR和細胞因數的刺激特異性地誘導了得自上皮細胞的IL-17C。由使用熱滅活的E. coli刺激24h的HDFn細胞或外周血單核細胞(PBMC)分泌的hG-CSF(黑色柱)或hIL-17C(空心柱)的ELISA;n.d.=不可檢測。
圖18. 由使用熱滅活的E. coli刺激的HCT-15細胞得到的IL17C mRNA動力學qRT-PCR分析。
圖19. (a)由使用所示的TLR激動劑刺激24h的HCT-15細胞分泌的hIL-17C的ELISA;誤差棒、標準偏差(n=3)。資料代表了3個不同的試驗。(b)在HCT-15細胞中表達的TLR mRNA的qRT-PCR分析。
圖20. (a)在使用TLR2(PGN)或TLR5(FLA)的激動劑刺激2h後的HCT-15細胞中IL17家族或TNF mRNA的qRT-PCR分析。(b)白細胞並非為體內IL-17C的主要來源。由使用PBS或鞭毛蛋白(FLA)腹膜內注射2h的C57BL/6小鼠收穫的結腸組織中Il17c mRNA的qRT-PCR分析。
圖21. 在使用TNFa或IL-1b刺激2h的HCT-15細胞中IL17家族或TNF mRNA的qRT-PCR分析。相對于管家基因RPL19顯示表達情況;誤差棒、標準偏差(n=3)。
圖22. 由使用所述之細胞因數刺激24h的HCT-15細胞分泌的hIL-17C的ELISA;誤差棒、標準偏差(n=3)。資料代表了3個不同的試驗。
圖23. 由使用所示的TLR激動劑刺激2h的HCT-15細胞得到的IL17RA(頂部)或IL17RE(底部) mRNA的qRT-PCR分析。
圖24. 多個因數獨立地調節IL-17C的表達。由使用TLR2或TLR5的激動劑、或者細胞因數IL-1β或TNFα刺激2小時的Myd88+/+或Myd88-/-新生小鼠衍生的表皮角化細胞中I117cmRNA的qRT-PCR分析。所示的表達情況是相對于管家基因Rp119的。
圖25. Myd88缺陷型小鼠的產生。(a)針對產生的Myd88-/-小鼠設計的靶向構建體的簡圖。通過使雜合小鼠與ROSA-CRE轉基因小鼠交配來完成對外顯子2至5的CRE重組酶切割。在微注射之前切割新黴素抗性盒。(b)由Myd88+/+或Myd88-/-衍生的原代表皮角化細胞表達的qRT-PCR的分析。所示的表達情況是相對于管家基因Rp119的;誤差棒、標準偏差;n.d.=不可檢測。
圖26. 在TNFRII-Fc(a)或抗-IL-1β(b)存在下使用熱滅活的E.coli、TLR激動劑或細胞因數刺激24h的HCT-15細胞分泌的hIL-17C的ELISA。所示的資料表示±標準偏差。以3個重複進行刺激。*=p<0.05(針對同種型對照組的Dunnett測試)。
圖27. 在抗-TLR2(a)或抗-TLR5(b)存在下,使用熱滅活的E.coli、TLR激動劑或細胞因數刺激24h的HCT-15細胞分泌的hIL-17C的ELISA。所示的資料表示±標準偏差。以3個重複進行刺激。*=p<0.05(針對同種型對照組的Dunnett測試)。
圖28. 白細胞並非為體內IL-17C的主要來源。在如圖20(b)所示處理的野生型或Rag2-/-:I12rg-/-小鼠收穫的結腸組織中I117c或I122 mRNA的qRT-PCR分析。*=p<0.05(針對野生型小鼠的Dunnett測試)。在(a-c)中各個資料列表示5只動物的平均值±s.e.m.。表達情況相對于管家基因Rp119。n.d.=不可檢測。資料代表2個不同的試驗。
圖29. 白細胞並非為體內IL-17C的主要來源。在如圖20(b)所示處理的I117c-/- BM→I117c+/+和I117c+/+ BM→I117c-/-嵌合體的qRT-PCR分析;*=p<0.05(針對野生型小鼠的Dunnett測試)。各個資料列表示5只動物的平均值±s.e.m.。表達情況相對于管家基因Rp119。n.d.=不可檢測。資料代表2個不同的試驗。
圖30. IL-17C在DSS大腸炎期間表達。在使用2%DSS治療後在所示的天數由小鼠收穫的結腸(方塊)或mLN(圓圈)所得到的I117c mRNA的qRT-PCR測量。
圖31. (a)由過夜結腸培養物產生的mIL-17C的ELISA。在第8天在如(b)所示處理的C57BL/6小鼠收穫結腸;*=p<0.05(針對非DSS組的Dunnett測試)。(b)小鼠抗小鼠IL-17C單克隆抗體的表徵。濃度增加的生物素標記的抗-IL-17C單克隆抗體(IL-17C:7516)與平板結合小鼠IL-17C的反應性的直接ELISA測量。
圖32. 如I117a、I117f和I122 mRNA的圖20(b)所示進行qRT-PCR分析。相對于管家基因Rp119顯示表達情況。各時間點表示由5只動物得到的平均值,並實施3個重複;誤差棒、s.e.m。
圖33. 在DSS誘導的大腸炎模型中,IL-17RE途徑在上皮細胞的恢復中發揮作用。如圖30所示對8-10周齡的I117re+/+或I117re-/-進行處理。(a)將第4至15天的體重相對于研究起始時體重的百分率繪圖。(b)針對第7-12天計算的在(a)中體重百分率的各動物的AUC。資料表示各個動物(對於非DSS對照每組n=4,對於DSS處理動物每組n=8)。資料表示2個不同的試驗。*=p<0.05(針對非DSS組的Dunnett測試)。
圖34. 在第15天測量結腸重量(a)和結腸得分(b)。
圖35. 在DSS誘導的大腸炎模型中,IL-17RE途徑在上皮細胞的恢復中發揮作用。如圖30所示對8-10周齡的I117re+/+或I117re-/-進行處理。結腸組織學得分示於(a)中。(b)結腸部分的H&E、F4/80、Alcian Blue(AB)和Ly6G/C染色。箭頭表示F4/80+巨噬細胞(褐色染色)、AB+環狀細胞和粘液素、以及Ly6G/C+嗜中性粒細胞滲透液(褐色染色)。資料表示各個動物(對於非DSS對照每組n=4,對於DSS處理動物每組n=8)。資料表示2個不同的試驗。*=p<0.05(針對I117re+/+小鼠的Dunnett測試)。
圖36. 在急性DSS誘導的大腸炎中,IL-17C途徑的損失會惡化疾病並增強炎症。如圖30所示,使用1.5%DSS處理8-10周齡的I117re+/+和I117re-/-小鼠。(a)在第4-9天的體重相對于研究起始時體重的百分率。(b)在(a)中針對體重百分率的各動物的AUC。資料表示各個動物(對於非DSS對照每組n=5,對於DSS處理動物每組n=16)。資料表示2個不同的試驗。*=p<0.05(針對I117re+/+小鼠的Dunnett測試)。
圖37. 在第9天收集結腸以用於組織學分析。結腸組織學得分示於(a)中。(b)結腸部分的H&E、F4/80、AB和Ly6G/C染色。箭頭表示F4/80+巨噬細胞(褐色染色)、AB+環狀細胞和粘液素、以及Ly6G/C+嗜中性粒細胞滲透液(褐色染色)。資料表示各個動物(對於非DSS對照每組n=5,對於DSS處理動物每組n=16)。資料表示2個不同的試驗。*=p<0.05(針對I117re+/+小鼠的Dunnett測試)。
圖38. 針對結腸組織中所示的細胞因數的mRNA的qRT-PCR分析。資料表示各個動物(對於非DSS對照每組n=5,對於DSS處理動物每組n=16)。資料表示2個不同的試驗。*=p<0.05(針對I117re+/+小鼠的Dunnett測試)。
圖39. I117c缺陷型小鼠的產生。(a)針對產生的I117c-/-小鼠的靶向策略。外顯子2和3被新黴素抗性盒替代。(b)由腹膜注射2小時鞭毛蛋白的I117c+/+或I117c-/-小鼠得到的結腸中的I117c mRNA的qRT-PCR分析。所示的資料表示平均值±s.e.m.。n.d=不可檢測。資料代表3個不同的試驗。
圖40. 在DSS誘導的大腸炎模型中,IL-17C在上皮細胞的恢復中發揮作用。如圖30所示使用1.5%DSS對8-10周齡的I117c+/+和I117c-/-小鼠進行處理。(a)在第4-15天的體重相對于研究起始時體重的百分率。(b)在(a)中針對體重百分率的各動物的AUC。資料表示各個動物(對於非DSS對照每組n=3,對於DSS處理動物每組n=10)。資料表示2個不同的試驗。
圖41. 在DSS誘導的大腸炎模型中,IL-17C在上皮細胞的恢復中發揮作用。如圖30所示使用1.5%DSS對8-10周齡的I117c+/+和I117c-/-小鼠進行處理。在第9天收集結腸以用於組織學分析。結腸組織學分析示於(a)中。(b)結腸部分的H&E染色。資料表示各個動物(對於非DSS對照每組n=3,對於DSS處理動物每組n=10)。資料表示2個不同的試驗。
圖42. IL-17C在皮膚中誘導炎症。使用重組的mIL-17C(菱形)或PBS(三角形)注射到C57BL/6小鼠的耳中。(a)使用卡鉗測量耳的厚度,*=p<0.05(針對使用PBS處理的小鼠的Dunnett測試)。(b)在第4-10天之間計算AUC,*=p<0.004。耳組織的組織學得分示於(c)中。資料代表3個不同的試驗。*=p<0.05(針對使用PBS處理的小鼠的Dunnett測試)。
圖43. IL-17C在皮膚中誘導炎症。使用重組的mIL-17C或PBS注射到C57BL/6小鼠的耳中。耳組織的組織學分析。耳組織的H&E染色。黃色箭頭突出了真皮(De)和表皮(Ep)的厚度。資料代表3個不同的試驗。*=p<0.05(針對使用PBS處理的小鼠的Dunnett測試)。
圖44. 在銀屑病的小鼠模型中,IL-17C途徑發揮促炎作用。(a)在由使用5%局部咪喹莫特處理5天的BALB/c小鼠得到的背部皮膚中Il17c mRNA動力學的qRT-PCR分析。各時間點表示5只動物的平均值,並實施3個重複。資料代表2個不同的試驗。*=p<0.05(針對Il17c+/+小鼠的Dunnett測試)。
圖45. 在銀屑病的小鼠模型中,IL-17C途徑發揮促炎作用。如圖44所示處理Il17c+/+或Il17c-/-小鼠。每天測量耳厚度,並在一段時間內繪圖平均值±s.e.m.(a)或第0至5天的AUC(b)。資料點表示各動物,線表示各組的平均值。資料代表2個不同的試驗。*=p<0.05(針對Il17c+/+小鼠的Dunnett測試)。
圖46. 在銀屑病的小鼠模型中,IL-17C途徑發揮促炎作用。在第5天收集經咪喹莫特處理的Il17c+/+或Il17c-/-小鼠的耳廓進行H&E、Ki67和Ly6G/C染色。雙箭頭反應真皮和表皮增生,(P)表示表皮膿包。資料代表2個不同的試驗。*=p<0.05(針對Il17c+/+小鼠的Dunnett測試)。
圖47. 在銀屑病的小鼠模型中,IL-17C途徑發揮促炎作用。(a)耳廓組織學得分。(b)通過Ki67染色測定的角化細胞的增殖活性。資料代表2個不同的試驗。*=p<0.05(針對Il17c+/+小鼠的Dunnett測試)。
圖48. 在銀屑病的小鼠模型中,IL-17C缺陷誘導炎症。如圖44所示處理Il17c+/+和Il17c-/-小鼠。在第0-2天顯示耳厚度(a)和背部臨床得分(b)。數據點代表8只動物的平均值±s.e.m.。*=p<0.05(針對I117c+/+小鼠的Dunnett測試)。n.d=不可檢測。
圖49. 在銀屑病的小鼠模型中,IL-17C缺陷誘導炎症。如圖44所示處理I117c+/+和I117c-/-小鼠。在由處理第2天收穫的I117c+/+(黑色柱)和I117c-/-(空心柱)小鼠得到的背部皮膚中,針對所示的細胞因數的mRNA進行qRT-PCR分析。相對于管家基因Rp119顯示表達情況。數據點代表8只動物的平均值±s.e.m.。*=p<0.05(針對I117c+/+小鼠的Dunnett測試)。n.d=不可檢測。
圖50. 在銀屑病的小鼠模型中,疾病需要IL-17C途徑。如圖44所示處理I117re+/+和I117re-/-小鼠。在5天時間內(a)、在第5天(b)以及如AUC(c)測量耳厚度。資料點代表8只動物的每一隻,並且平均值顯示為線形。*=p<0.05(針對I117c+/+小鼠的Dunnett測試)。
(無元件符號說明)
Claims (40)
- 一種減輕胃腸炎症的方法,其包括向有需要的受試者給藥IL-17RA和IL-17RE受體的至少一種拮抗劑。
- 請求項1所述之方法,其中所述之胃腸炎症與炎性腸病有關。
- 請求項1所述之方法,其中所述之拮抗劑通過IL-17RA和IL-17RE受體傳遞信號。
- 請求項1所述之方法,其中所述之拮抗劑與所述之IL17RA和所述之IL-17RE結合。
- 請求項1所述之方法,其中所述之治療包括給藥所述之IL-17RA受體的第一拮抗劑以及所述之IL-17RE受體的第二拮抗劑的組合。
- 請求項5所述之方法,其中所述之第一拮抗劑通過所述之IL-17RA受體傳遞信號,並且所述之第二拮抗劑通過所述之IL-17RE受體傳遞信號。
- 請求項5所述之方法,其中所述之第一拮抗劑與所述之IL-17RA受體結合,並且所述之第二拮抗劑與所述之IL-17RE受體結合。
- 請求項1所述之方法,其中所述之拮抗劑為抗體或其抗原結合片段。
- 請求項3所述之方法,其中所述之拮抗劑為通過所述之IL-17RA和IL-17RE受體傳遞信號的雙特異性或交叉反應性抗體或其抗原結合片段、或者與所述之IL-17RA和IL-17RE受體結合的雙特異性或交叉反應性抗體或其抗原結合片段。
- 請求項1所述之方法,進一步包括給藥其他的治療試劑以治療炎性腸病。
- 請求項10所述之方法,其中所述之其他治療試劑為IFN-γ拮抗劑。
- 請求項11所述之方法,其中所述之IFN-γ拮抗劑包括抗-IFN-γ抗體、IFN-γ受體抗體或天然的IFN-γ受體。
- 請求項10所述之方法,其中所述之其他治療試劑為TNF-α拮抗劑。
- 請求項13所述之方法,其中所述之TNF-α拮抗劑包括抗-TNF-α抗體、TNF-α受體抗體或天然的TNF-α受體。
- 一種減輕胃腸炎症的方法,其包括向有需要的受試者給藥特異性結合IL-17C及其他細胞因數的雙特異性或交叉反應性抗體、或者所述抗體的抗原結合片段。
- 請求項15所述之方法,其中所述之其他細胞因數為促炎細胞因數。
- 請求項16所述之方法,其中所述之促炎細胞因數選自TNFα,IL-1β,IL-22和IL-17A。
- 請求項17所述之方法,其中所述之促炎細胞因數為TNFα或IL-1β。
- 請求項15所述之方法,其中所述之胃腸炎症與炎性腸病有關。
- 請求項19所述之方法,其中所述之受試者為人類患者。
- 請求項20所述之方法,其中所述之炎性腸病為潰瘍性結腸炎。
- 請求項15所述之方法,其中所述之抗體為雙特異性的。
- 請求項15所述之方法,其中所述之抗體為嵌合的、人源化的或人類的。
- 請求項23所述之方法,其中所述之抗體為抗體片段。
- 請求項24所述之方法,其中所述之抗體片段選自Fab、Fab'、F(ab')2和Fv片段;雙功能抗體;線性抗體;單鏈抗體分子;以及由抗體片段形成的多特異性抗體。
- 一種治療銀屑病的方法,包括向有需要的受試者給藥特異性結合IL-17C及其他細胞因數的雙特異性或交叉反應性抗體、或者所述抗體的抗原結合片段。
- 請求項16所述之方法,其中所述之其他細胞因數為促炎細胞因數。
- 請求項27所述之方法,其中所述之促炎細胞因數選自TNFα,IL-1β,IL-22和IL-17A。
- 請求項28所述之方法,其中所述之促炎細胞因數為TNFα或IL-1β。
- 請求項26所述之方法,其中所述之抗體為雙特異性的。
- 請求項26所述之方法,其中所述之抗體為嵌合的、人源化的或人類的。
- 請求項26所述之方法,其中所述之抗體片段選自Fab、Fab'、F(ab')2和Fv片段;雙功能抗體;線性抗體;單鏈抗體分子;以及由抗體片段形成的多特異性抗體。
- 請求項26所述之方法,其中所述之受試者為人類患者。
- 一種用於治療胃腸炎症的藥物組合物,包含與可藥用的賦形劑混合的IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑。
- 請求項34所述之藥物組合物,其中所述之IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑為抗體或其片段。
- 請求項35所述之藥物組合物,其中所述之抗體為單克隆抗體。
- 請求項36所述之藥物組合物,其中所述之抗體為嵌合的、人源化的或人類的抗體。
- 請求項37所述之藥物組合物,其中所述之抗體為雙特性的、多特異性的或交叉反應性的抗體。
- IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑在製備用於治療胃腸炎症的藥物中的用途。
- 一種用於治療胃腸炎症的試劑盒,所述之試劑盒包括:(a)裝有IL-17RA和/或IL-17RE拮抗劑的容器;以及(b)用於給藥所述抗體以治療所述炎症的標籤或說明書。
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