SU805146A1 - Method of quantitative analysis of protein in bio-liquid - Google Patents
Method of quantitative analysis of protein in bio-liquid Download PDFInfo
- Publication number
- SU805146A1 SU805146A1 SU782617277A SU2617277A SU805146A1 SU 805146 A1 SU805146 A1 SU 805146A1 SU 782617277 A SU782617277 A SU 782617277A SU 2617277 A SU2617277 A SU 2617277A SU 805146 A1 SU805146 A1 SU 805146A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- protein
- reagent
- cheokolte
- bio
- liquid
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Description
(54) СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ БЕЛКА В БИОЛОГИЧЕСКОЙ ТКИДКОСТИ тельно-восстановительный потенаиал находитс в пределах рН 6,,7. В процессе восстановлени гетерополикислоты происходит постепенна нейт рапизаци шепочных компонентов гидроли зукидей смеси кислыми компонентами реактива Фолнна-Чеоколте. При этом в Состав гидролизукхцей смеси вход т инградиенты с различным рК- от рК Ю (ед кий натрий) и (рК вход сщего в состав реактива карбоната натри ) до 10 ( рК карбоната натри ) и, следовательно, в ходе реакции в зависимости от сротношени количеств щелочной гидролизирующай смеси и кислого реактива Фо 0на Чеоколте рН среды может стабил,взйровать с в широких пределах 13-7-10,2. Это, в свою очередь, может обеспечить неадекватность процесса восстановлени фосфомолибдатво ьфрамовой гетерополикиспоты с преимущественным вовлечением в процесс, восстановлени фосфомолибдеиовой или фосфовольфрамовой поликислот с соот ветствующим изменением спектральных ха рактеристик получаемых гетерополисиней и, в конечном итоге, к искажению результатов определени количества восстановител (белка). Следовательно, дл того, чтобы обеспечить восстановление только одной из поликислот, вход щих в состав реактива- Фоли1ш-Чеоколте, и стабильность спектральных характеристик, peaKJuaio необходимо -вести с таким расчетом, чтобы к концу проведени анализа киспотно щелочное состо ние ее стабилизировалось в .определенном пределе это.обеспечит посто нство вовлечени и реакцию одной из.смеси поликислот и устойчивость образующейс гетерополисини. ото достигаетс эквимол раой нейтрализацией щелочных.и кислотных компонен .гов гидролизуюшего реактива (смесь карбоната натри и едкого натри (1), и раствора Фолина-Чеоко те; диссоциацией в.этих услови х иона НСО j- имекшего рК2 10 рН 10,2, 0,5 мл реактива Фолина-Чеокопте, разведенного до кислотности , в 2,24 раза превышающей щелочность реактива 1), попностыр нейтрализуют едкий натрий с рК iO , вход щий в состав 2 мл реактива 1), и карбонат натри с , В этих услови х рН смеси стабилизируетс в пределах 1010 ,5 за счет диссоциации иона HCOj, что обеспечивает избирательность восстановлени фосфомолибдатвольфрамовой геерополикислоты , стабильность спектральых характеристик и оптической плотности образующейс гетерополисини, возможность проведени реакции при eiicoKofi температуре, ускор кадей процесс восстановлени . В этих услови х достигаетс избирательность восстанозпени гетерополикислоты циклическими аминокислотами: цистнн цистеин, в концентраци х 100 мг на 10О млг раствора белка, аскорбинова кислота и сахароза, в концентраци х 5ОО мг на 100 мл белка замен ют процессу восстановлени . В этих услюви х также исключаетс необходимость св зывани белка в биуретановый комплекс, что позвол ет исключить из анализа этот этап, а следовательно, упростить проведение реакции. Пример 1.;Реактив Фопина-Чеоколте: 100 г вольфрамовокислого натри и 25 г молибденовокислого натри раствор ют в 700 мл дистиллированной воды, добавл ют 50 мл 8S% фосфорной кислоты и Мл концентрированной сол ной кислоты . Смесь кип т т в круглодонной колбе снабженнойм обратным холодильником, течение 10 ч. Полученный реактив оттитровывают по фенолфталеину или под контролем рН- метра реактивом 1. Рабочий раствор готов т путем разведени реактива 2 дистиллированной водой до киспотности , в 2,24 раза превышающей щелочность реактива 1. И солздуемый раствор белка (сыворотка , плазма экстракты органов и тканей, растворы белковых препаратов - разведенные до содержани не более 10 мг бел-, -ка ла 1 мл раствора). Пример 2. ,О,2 м.п исследуемого раствора белка внос т в 2 мл реактива 1, пробы выдерживают 10 мин в кип щей вод ной бане, охлаждают и внос т 0,5 МП рабочего раствЬра 2. Лополнительпо выдерживают в кип щей вод ной бане 40 с, ох аждают и фотометрируют при 640-74О н в кюветах 3 мм. Найденную оптическую плотность проб , сопоставл ют со стандартным графиком зависимости оптической плотности от конпентрашш белка. При проведении анализа данным методом окрашенный комплекс сохран етс в течение 48 ч, разрешающие способности метода- 2 микрограмма бепка в 0,2 мл раствора.(54) METHOD FOR QUANTITATIVE DETERMINATION OF PROTEIN IN THE BIOLOGICAL TEKIDOSTY, the reduction and reduction potential is in the range of pH 6,, 7. In the process of recovery of the heteropoly acid, gradual neutralization of the spiky components of the mixture hydrolys by the acid components of the Farnna-Cheokolte reagent occurs. At the same time, the composition of the hydrolizuccine mixture includes ingredients with various pK-from pK S (sodium) and (pK input of soda carbonate reagent) to 10 (pK sodium carbonate) and, therefore, during the reaction, depending on the quantities of alkaline hydrolyzing mixture and acidic reagent Fo 0 on Cheokolte, the pH of the medium can be stabilized, taken from within wide limits 13-7-10,2. This, in turn, can ensure the inadequacy of the process of phospho-molybdate framing hetero-polypotting with the predominant involvement in the process, the restoration of phospho-molybdeic or phopholoframe polyacids with a corresponding change in the spectral characteristics obtained by heteropoly lines and, ultimately, distorting the amount of quantities. Therefore, in order to ensure the restoration of only one of the polyacids that make up the Foil-Cheocolte reagent, and the stability of the spectral characteristics, the peaKJuaio must be brought in such a way that by the end of the analysis its alkaline state will stabilize. This limit will ensure the constant involvement and reaction of one of the polyacid mixtures and the stability of the resulting heteropolysini. This is achieved by equimolar neutralization of the alkaline and acidic components of the hydrolyzing reagent (a mixture of sodium carbonate and sodium hydroxide (1), and the Folin-Chekoko solution; dissociation of these conditions of the HCO ion with 10 pK2 pH 10.2, 0.5 ml of Folin-Cheokopte reagent diluted to an acidity 2.24 times the alkalinity of the reagent 1), popstory neutralize sodium hydroxide with pK iO, which is part of 2 ml of reagent 1), and sodium carbonate with, Under these conditions x the pH of the mixture is stabilized within 1010, 5 due to the dissociation of the HCOj ion, which ensures the selectivity of the restoration of the phosphomolybdate-tungsten geopolyacid; the stability of the spectral characteristics and the optical density of the heteropolisini formed; the possibility of carrying out the reaction at eiicoKofi temperature; the acceleration of the recovery process. Under these conditions, the selectivity of the heteropolyacid reduction by cyclic amino acids is achieved: cystine cysteine, in concentrations of 100 mg per 10O ml of protein solution, ascorbic acid and sucrose, in concentrations of 5OOm per 100 ml of protein are replaced by the reduction process. In these cases, the need for protein binding to the biurethane complex is also eliminated, which eliminates this step from the analysis and, therefore, simplifies the reaction. Example 1.; The Fopin-Cheokolte reagent: 100 g of sodium tungstate and 25 g of sodium molybdate are dissolved in 700 ml of distilled water, 50 ml of 8S% phosphoric acid and ml of concentrated hydrochloric acid are added. The mixture is boiled in a round-bottomed flask equipped with a reflux condenser for 10 hours. The resulting reagent is titrated with phenolphthalein or with reagent 1 controlled by a pH meter. The working solution is prepared by diluting reagent 2 with distilled water to a pH of 2.24 times that of the reagent. 1. And a curable solution of protein (serum, plasma extracts of organs and tissues, solutions of protein preparations - diluted to a content of no more than 10 mg of protein, 1 ml of solution). Example 2. About 2 mp of the protein solution to be tested is added to 2 ml of reagent 1, the samples are incubated for 10 minutes in a boiling water bath, cooled and 0.5 MP of the working solution 2 are added. The refill is maintained in boiling water 40 s, cool and photomet at 640-74 O n in cuvettes of 3 mm. The obtained optical density of the samples is compared with a standard graph of absorbance versus protein concentration. When conducting an analysis using this method, the colored complex is maintained for 48 hours, the resolution of the method is 2 micrograms in 0.2 ml of solution.
5805146458051464
Мешаюцие вли ни различных аобавок при опреаеленин.концентрации белка сравниваемыми метоаамиDisturbance of the effects of various additives on protein concentration by the compared methods
ТаблицаTable
ЦистеинCysteine
ЦистинCystine
ТриптофанTryptophan
Аскорбинова кислотаAscorbic acid
СахарозаSucrose
Вода (контрольные показатели белка) - статистически достоверные отличи от Показатели оптической ппотности проб при опредепении концентрации белка ttatfrным методом выше, чем при определении методом Лоури, что позвол ет уменьшить ширкну колориметрируемого сло с 1О до 3 мм. Закон Ламберта-Бера сохран етс как в предлагаемом методе, так и в ме тоде Лоури до концентрации белка 1%. Растворы с большей концентрацией необходимо перед определением разводить. Бы ,ли приготовлены растворы человеческого альбумина с содержанием 2О, 4О, 6О 8О, 10О, 2ОО, 600 и 8ОО микрограмм белка в пробе. В каждом из разведений в 6 параллел х определ ют содержание белка данным методом и способом Лоури. 20 4,5 0,252 0,101 5,6 6,7 40 6,25 0,188 0,075 3,0 8,5 Water (protein benchmarks) are statistically significant differences from the optical density of samples when determining the protein concentration by the ttatfir method is higher than that determined by the Lowry method, which allows reducing the width of the colorimetric layer from 1O to 3 mm. The Lambert-Bera law is preserved both in the proposed method and in the Lowry method to a protein concentration of 1%. Solutions with greater concentration must be diluted before determination. Whether or not human albumin solutions have been prepared with a content of 2O, 4O, 6O, 8O, 10O, 2OO, 600, and 8OO micrograms of protein in the sample. At each of the dilutions in 6 parallels, the protein content is determined by this method and the Lowry method. 20 4.5 0.252 0.101 5.6 6.7 40 6.25 0.188 0.075 3.0 8.5
200+ 3,8 200+ 3.8
252 i 4,1 24Oi-3,9 2О2 ± 2,7252 i 4,1 24Oi-3,9 2О2 ± 2,7
286 ±4,3 286 ± 4,3
222 ±2,4 12О±6.,О 222 ± 2.4 12О ± 6., О
201t 4,2 2 lot 4,4 20О±3,6201t 4.2 2 lot 4.4 20O ± 3.6
2OOt5,620О±2,В контрольных показателей. В цел х стандартизации yciiOBiitft . фотометрнровани в обоих методах применены кюветьт 3 мм, а дл : удобства расчетов единши 1 светопоглощени выражали в целых числах . Результаты определени оптической плотности растворов белка в каждом из разве.дений подвергали статистической офаботке, расчитыва среднеарифметический показатель (М), квадратическое отклонение единичного определени (G) среднюю ошибку {т}, и коэффициент вариации ( V %). Полученные данные привод тс в табтаов 2. Таблица 2 0,32 0,128 4,8 ,0,544 0,217 6,42OOt5,620О ± 2, В benchmarks. In order to standardize yciiOBiitft. Photometric measurements in both methods used a cuvette of 3 mm, and for: ease of calculation, only 1 absorption was expressed in whole numbers. The results of determining the optical density of protein solutions in each of the dilutions were subjected to statistical processing, calculating the arithmetic mean (M), the standard deviation of a single determination (G), the mean error {t}, and the variation coefficient (V%). The data obtained are given in Table 2. Table 2 0.32 0.1228 4.8, 0.544 0.217 6.4
805146 8805146 8
Продолжение табл. 2Continued table. 2
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU782617277A SU805146A1 (en) | 1978-03-22 | 1978-03-22 | Method of quantitative analysis of protein in bio-liquid |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU782617277A SU805146A1 (en) | 1978-03-22 | 1978-03-22 | Method of quantitative analysis of protein in bio-liquid |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU805146A1 true SU805146A1 (en) | 1981-02-15 |
Family
ID=20765324
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU782617277A SU805146A1 (en) | 1978-03-22 | 1978-03-22 | Method of quantitative analysis of protein in bio-liquid |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU805146A1 (en) |
-
1978
- 1978-03-22 SU SU782617277A patent/SU805146A1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Snow | Proteins in Fish Muscle.: II. Colorimetric Estimation of Fish Muscle Protein | |
Jones et al. | Complexometric titration of calcium and magnesium by a semiautomated procedure | |
SU805146A1 (en) | Method of quantitative analysis of protein in bio-liquid | |
Goldenberg et al. | Direct photometric determination of globulin in serum | |
Postmes | A SENSITIVE SIMPLE QUANTITATIVE REACTION FOR IODINATED AMINO ACIDS OF HUMAN SERUM ON PAPERCHROMATOGRAMS | |
US3894843A (en) | Determination of serum creatinine | |
Dong et al. | Simultaneous spectrophotometric determination of aluminum (III), Iron (III) and beryllium (III) in rainwater by a matrix method | |
SU1141318A1 (en) | Method of photometric determination of water-soluble lignin derivative content | |
Clark et al. | Spectrophotometric study of a direct determination of serum calcium | |
SU1163221A1 (en) | Method of quantitative determining of novocain | |
SU1415159A1 (en) | Method of quantitative determination of novocaine | |
SU927755A1 (en) | Method for photometrically detecting iron in solution | |
SU636534A1 (en) | Method of determining common protein in solution | |
SU1254386A1 (en) | Method of determining protein in solution | |
Siltanen et al. | Determination of protein by the biuret reaction using cupric hydroxide suspension reagent | |
SU877412A1 (en) | Method of determination of methionine content in feeds | |
SU1201739A1 (en) | Method of determining ureaformaldehyde resin | |
SU1755134A1 (en) | Method of quantitative determination of cation-type surfactants | |
SU1012111A1 (en) | N-aminobenzolsulphonylacetamide determination method | |
SU1456881A1 (en) | Method of quantitative analysis of ferrotartrate complex in cellulose solvent | |
SU1456851A1 (en) | Method of analyzing temisal | |
SU1239566A1 (en) | Method of determining hydrolized acrylate copolimer in waste water | |
SU1043534A1 (en) | Naphtalene 1-amino-4,8-disulphoacid mono-sodium salt determination method | |
Samotus et al. | Determination of tyrosine by a modified Millon's reaction and its application to potato tuber extracts | |
SU958931A1 (en) | Etonium determination method |