SU593439A1 - Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем - Google Patents

Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем Download PDF

Info

Publication number
SU593439A1
SU593439A1 SU752163635A SU2163635A SU593439A1 SU 593439 A1 SU593439 A1 SU 593439A1 SU 752163635 A SU752163635 A SU 752163635A SU 2163635 A SU2163635 A SU 2163635A SU 593439 A1 SU593439 A1 SU 593439A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
oxidized
solution
electrically conductive
enzyme
graphite
Prior art date
Application number
SU752163635A
Other languages
English (en)
Inventor
П.П. Гладышев
М.И. Горяев
Ю.А. Шаповалов
Original Assignee
Ордена Трудового Красного Знамени Институт Химических Наук Ан Казахской Сср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ордена Трудового Красного Знамени Институт Химических Наук Ан Казахской Сср filed Critical Ордена Трудового Красного Знамени Институт Химических Наук Ан Казахской Сср
Priority to SU752163635A priority Critical patent/SU593439A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU593439A1 publication Critical patent/SU593439A1/ru

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Изобретение относитс  к способу получени  электропроводных фермент-ко- факторных систем, которые могут найти применение в ферментативных электро химических реакторах, ТОПЛИВНЬЕХ элементах и индикаторных электродах. Известен р д способов получени  иммобилизованных коферментов. Такие системы используютс  в основном дл  целей аминной хроматографии. Известен, в частности способ получени  кофермекта никотинамидадениндшуклеотида (HA/f) ковалентно св занного с полиэтиленом С Это водорастворимое производное, обладающее коферментной активностью со сво бодной и св занной с матрицей дегидрогеназой (кофермент может быть восстановлен до НАДИ). Ковалентно св занное восстановленное производное НАДН) в свою очередь может быть окислено с участием лактатдегидрогеназы . Однако полученные до последнего времени продукты иммобилизации коферментов на нерастворимых и растворимых неэлектропровоцнь1х полимерах и продуктах неорганической природы непригодны дл  использовани  их в ферментативных электрохимических реакторах, топливных элементах и индикаторных электродах, вследствие их неспособности обеспечить электропроводность иммобилизованной системы . С целью получени  ферменткофакторных систем, обладающих проводниковыми свойствами и способных обеспечить перенос зар да с иммобилизованных кофакторов на электропроводный материал матрицы, а также с целью разработки способа удалени  с электропроводной основы отработанных неактивных веществ и нанесени  на нее новых активных компонентов в предлагаемом способе сорбцию кофактора производ т на различные электропроводные материалы (графит, окисленный графит, металлы, карбохромы ). Замена инактивированных в процессе длительной работы кофактора и фермента на новые осуществл етс  посредстBOM десорбции в услови х, отличных от тех, в которых работает система - ферментиммобилизованный кофермент.
Предлагают способ получени  электропроводных ферменткофакторных систем путем адсорбции кофакторов - никотинамидадениндинуклеотиаа в окисленной (НАД) или восстановленной (НАДН) форме , никотинамидапениндннуклеотидфосфат в окисленной (НАДФ) или восстановленной (НАДФН) формах или флавинаденин .динуклеотида в окисленной (ФАД) или восстановленной (ФАДН) формах - на различные электропроводные материалы - графит, окисленный графит,- металлы , карбохромы, с последующим контактированием полученной системы с раствором , содержащим соответствук цие субстраты и ферменты.
Возможность получени  фермент-ко- . факторных систем на различных электропроводных материалах проверена на системе; окисленный графит - НАД алкогольдегидрогеназа . Дл  этого кофермент НАД сорбируют из водного 0,015 М буферного раство15а фосфора . кали  с рН 7,7 на гранулированный графит , который предварительно обрабатывают кип щей концентрированной азотной кислотой в течение 6 ч. Получен-. на  таким образом ферменткофермент- на  система прочно удерживаетс  на электропроводном метериале - окисленном графите. Система работает в течение 250 ч в услови х работы системы фермент-кофактор, при этом не наблюдаетс  заметной инакт1тации активных компонентов, В случае потери активности системы, например, во времени , осуществл ют ее десорбцию водноспиртовой смесью (3:1) при рН Ю с последующей иммобилизацией активных компонентов.
Пример I. Из исходного раствора восстановленного никотинамидадениндинуклеотида (НАДНд) с концентрацией О,005 моль/л в буферном 0,0 15 М растворе фосфата кали  с рН 7,7 берут аликвоту, содержшцую 26О 10 г -НАДН в 2 мл буферного раствора (количество вз того дл  сорбции НАДН провер ют спектрофотометрическим методом при 340 ммк в 1 см кювете, учитьта , что коэ44ициент светопоглощени  дл  НАДН, 6,2). Приготовленный раствор кофермента приливают к 0,1 г гранулиро ваннотх) гранита, преовзрительно окисленного кип щей концентрированной азотной кислотой в течение 6 ч. Сорбцию кофермента провод т при 5С в течение 1 ч и периодическом перемешивании. После сорбции графит отдел ют от раствора и последний спектрофотометрируют. По разности исходных и конечных количеств НАДНа зпредел ют величину сорбции. Дл  окисленного графита она соответствует 62%. Слабо св занный с сорбентом НАДН отмывают буферным раствором.
Количественное опрецеление иммобилизированного на графите НАДН осуществл ют по цингиарин-сериокислотной методике C2j. Дл  этого готов т раствор , содержащий следующие компоненты: Oj 15 ммоль/мп буфера фосфата кали  и рН 7,7, 5О мкмоль/мл этанола, 17 мкмоль/мл лактальдегица и 0,16 мг/ мл алкоголь дегидро ген азы (все компоненты реакционной смеси смешивают
при О С). 0,2 мл полученной смеси приливают в пробирки: со стандартными растворами, содержащими известное количество , , и с 0,1 г графита с сорбированным НАДН2 . Реакционные смеси инкубируют в термостате при 37 С в течение 45 мин, после чего графит отдел ют от раствора, ферментативную реакцию останавливают добавлением I мл концентрированной серной кислоты
в выделенный и стандартные растворы. Растворы пцательно перемешивают и снова инкубируют при 70 С в течение 10 мин. Затем реакционную смесь охлаждают до комнатной температуры и
при тщательном перемешивании добавл ют 40 мкл свежеприготовленного раствора нингидрина (3% нингидрина и 5% бисульфита натри ). Раствор оставл ют сто ть при комнатной темпе-ратуре в течение вО мин, затем в
смесь приливают еще 1 мл концейтри- .рованной серной кислоты и оставл ют сто ть при комнатной температуре в течение 5 мин. Оптическую плотность
раствора замер ют при 595 ммк. Количество сорбированного кофермента определ ют по калибровочной кривой в зависимости от величины оптической плотности. Получают количественное
значение сорбированного НАДН , про вл ющего физиологическую активность ь иммобилизованном состо нии. Оно равно 74% от общего количества кофермента , сорбированного на графит. 55 Многократные опыты по определению активности иммобилизованного на окисленную поверхность графита кофермента аают стабильное дают стабильные результаты. При м е р 2. К 100 мг карбохром прилршают 2,5 мл 0,002 М раствора КАДФН, соцержащего 0,015 М буферный раствор фосфата кали  с рН . Количественную оценку содержани  НАДФН осуществл ют спектрофотомётрическим методом при 340 ммк в 1 см кварцевой кювете. Коэффициент светопоглощени  дл  НАДФН равен Ез4о 6,3- 10 . Сорбцию провод т в течение 2,5 ч при 5 С , раствор затем отдел ют центрифугированием и спектрофотометрируют, По разности исходных и конечных количеств НАДФН определ ют величину сорбции . На карбохроме сорбци  НАДФН составл ет 4,8 мг на 1 г сорбента Много кратное промывание сорбента 0,0 15 М буферным раствором с рН 7,8и последую щее спектрофотометрирование промывных вод свидетельствует о стабильности иммобилизованной системы. Сорбцию коферментов НАДН И ФАД н карбохроме провод т аналогичным путем Разница лишь в том, что дл  ФАД в качестве буферного раствора используют 0,1 М раствор фосфата кали  с рН 7,0, Коэффициент светопоглощени  дл  ФАД 25,3 - 10 , Сорбци  ФАД на карбохроме составл ла-1,2 мг/г, НАДН3 ,1 .мг/г. Пример 3, К 10О мг окисленного графита приливают 2,5 мл О,ОО32 М раствора ФАД, содержащего 0,1 М буферный раствор фосфата кали  с рН 7, Количество ФАД определ ют спектрофото метрически по максимуму поглощени  в области 260 ммк. Анализ выполн ют в 1 см кварцевой кювете, 25,3 -10 . Сорбцию провод т в течение 2,5 ч при 5 С, затем раствор фильтруют :центрифугированием. По количеству ФАД до и после сорбции суд т о ее величине. На 1 г окисленного графита сорбируегс  2,1 мг ФАД, Промывание сорбента 0,1 М буферным раствором с рН 7,0 и последующий анализ промывных эоц свидетельствует о стабильности полученной системы. Аналогично провод т сорбцию НАДФН на окисленном графите. Дл  этого исполь зуют О,О15 Мфосфатный буферный раствор с рН 7,8, Количественную оценку сорбции осуществл ют спектрофотометрич 9 ки по максимуму поглощени  при 340 ммк. Esf4o- 10 . Найдено, чтосорбци  НАДФН на окисленном г рафите составл ет 7,8 мг на I г сорбента. П р и м е р 4. 2,5 мл О,, раствора НАДФН Б 0,015 М раствора фосфата кали  с рН 7,8 приливают к 1ОО мг платиновой черни. Сорбцию провод т fe течение 2,5 ч при С. Затем лорошок отдел ют от раствора дентриф ггнрованием Раствор спектрофотометрирутот и определ ют количество сорбированного НАДФН, На платиновой черни сор- . бируютс  4,4 мг НАДФН на 1 г сорбента . Многократное промывание буфернымраствором сорбента с иммобилизованным НАДФН показывает стабильность системы , Аналогично провод т сорбцию коферментов НАДН и ФАД на платиновой черни. Величина сорбции НАДН 3,6 мг/г, ФАД 2,6 мг/г. Сорбци  рассматриваемых коферментов на графите незначительна ( в пределах 0,1-О,5 мг на I г),- Восстановленные и окисленные формы коферментов сорбируютс  одинаково, П р и м е р 5. С целью доказательства способности фермент-кофакторной системы обеспечивать перенос зар да на электропроводный материал матрицы использован биологический топливный элемент, в котором ЭДС возникает за счет сопр женной ферментативной окислительно-восстановительной реакции. Перенос зар да в элементе достигаетс  за счет того, что в качестве катализатора используетс  иммобилизованный на электропроводной основе ферк ент-кофа торный комплекс. В этом случае фермент и его кофактор  вл5иотс  частью электрода, на котором происходит непосредственный перенос зар да с материала электрода в активные центры ферментов, На фиг, I приведена схема реконструированной НАД-вависимой ферментатиЬнрй системы, где Е и иммобилизованные ферменты, АН и В - продукты окис, лени  и восставовлениЯ5-на фиг. 2 - механизм работы двухэлектродной системы, построенной по указанному принципу на фиг. 3 - схема топливного элемента. Чтобы исключить возможность протекаи  побочных процессов, используетс  симетрична  система из эквивалентных пс уэлементов с одним и тем же НАД-зависимым ферментом и фоновым электролитом . В качестве модельной ферментативной системы выбрана алкогольцегицрогеназа (АДГ) в сочетании с никотинамидадениндинуклеотидом (НАД). Ферменткофакторна  система получена иммобилизацией на электропроводной матрице. В качестве электролита используют О,О15 М фосфатный буфер с рН 7,7 на фоне 0,5 М раствора хлорида натри . Электро химические исследовани  провод т в .микро чейках, изготовленных из полиметилметакрилата и фторопласта. В одном из полуэлементов проходит окислетаге спирта цо ацетальцегида, в другом восстановление лактальдегида до 1,2 пропандиола . В результате электрохимического сопр жени  указанных процессов в системе возникает ЭДС. При замыкании полуэлементов через нагрузку в системе генерируетс  устойчивый ток. Биологический топливный элемент, работающий по предлагаемому способу, в котором используетс  иммобилизованна  на электропроводном носителе фермент-кофакторна  система, имеет р д преимуществ; исключаетс  стади  диффузии компонентов в объем.- раствора, а также перенос кофактора между электродом и ферментом, лимитирующие окислительно-восстановительную реак-. цию;обеспечиваете  эффективный перенос зар аа с кофермента на матрицу электрода; по вл етс  возможность распространени  этого принципа на многие ферменткофакторные системы, что позвол ет использовать в топливных элементах самые разнообразные субстраты в качестве топлива и окислител .
Топливный элемент состоит из симметричных эквивалентных камер А и Б. Графитовый электропроводный корпус I каме заполн етс  гранулированным окисленным гра4итом 2 с сорбированной ферменткофакторной системой. В цел х эффектнаной подачи продуктов в зону реакции и удалени  отработанных веществ провод т рециркул5щию растворов в камерах А и Б. Рециркул цию субстратов осуществл ю с помощью перестальтического насоса 3.
Электрическа  схема топливного эле мента состоит из электролитического мотика 4, заполненного сефадексом в 0,0 15 М буферном растворе фосфата кали  с рН 7,7 и содержащим 0,5 М
раствор хлорида натриа Дл  эффективного сн ти  зар да к омедненной снаружи поверхности 5 графитового корпуса I топливного элемента лрипа н контакт 6.
Дл  контрол  тока .и напр жени , возникающего в результате ферментативных окислительно-восстановительных .процессов, используютс  микроамперметр
7и милливольтметр 8.
В качестве модели выбрана НАД-зависима  фермент-кофакторна  система. Она создаетс  сорбцией НАДНд на окисленном графите в растворе 0,О15 М буферного раствора фосфата кали  с рН 7,7 и последующей иммобилизацией ферментаалкогольдегидрогеназы (АДГ),
8предлагаемой системе фермент АДГ участвует как в окислении этилового спита до аце та льде гида, так и в восстановлении лактальдегида в 1,2-пропанциол. Камера А биологического топливного элемента , в которой идет окисление спирта по схеме
СН5 СН 2.
CHj СНО + 2Н , содержит 1 М раствор этилового спирта в О,015 М фосфатном буферном растворе с рН 7,7 на фоне 0,5 М раствора хлорида натри . Спирт, окисл  сь , отдает .два электрона, которые посредством фермента по сопр женной
иммобиЛИЗированной алектропроводной цепи включающей кофактор, перенос тс  камеру Б4.
НАДН-2еНАД + Н , (камера А - генераци  восстановленной формы кофактора)
ie
НАД + Н
.-НАДН, (камера Б - генераци  окисленной формы кофактора) и затем принимают участие в восстановлении лактальцегида в 1,2пропандиол СН, СН (ОН) СН +
. CHgCH (ОН) СНдО
В камере Б используетс  0,03 М раствор лактальдегида в фосфатном буферном растворе на фоне 0,5 М хлорида натри .
Опыты показьтают, что реконструированна  ферментативна .система может эксплуатироватьс  в течение длительного времени без потери каталитической %ктивности . Увеличение скорости рециркул ции субстратов приводит к значительному воэростанию тока, что обусловлено интенсификацией транспорта субстрата к ферментативной системе.
Фор .мул а изобретени 
1, Способ получени  электропроводных фер мент-кофакторных систем, о т л и ч аю .щ и и с   тем, что производ т адсорбvjfao кофакторов икотинамидааенинаинуклеотида в окисленной или восстановленной 959 1юрмё, никотинамицацекинаинуклеотйафосфата в окисленной или восстановленной форме или фпавинадениндикухлеотнда в окисленной или восстановленной форме на электропроводный материал - матрицу, с последующим контактированием полученной системы с раствором, содержащим соответствующие субстраты и ферменты. 2. Способ по п. I, о т л и ч а ющ и и с   тем, что в качестве электропроводных материалов используют графкт , окисленный грабит, металлы, кар- бохромы. Источи (ОС и информации, прин тые во внимание при экспертизе t.I.R., P.D MnitE,M.DEiEe j, B ochiw.biOpfiss.AStOi,1972, 286, 260268 . ,2..c.L.WeocEBev, N.K.GUPtoi, AnatficaE Biochemists 1971. 43, 343.
Фаг. 2

Claims (2)

  1. Формула изобретения
    1. Способ получения электропроводных фер мент-кофак торных систем, отличающийся тем, что производят адсорбцию кофакторов-никотинамидаденинцинуклеотида в окисленной или восстановленной форме, никотин ами дадениндинуклеотй цфосфата в окисленной или восстановленной форме или флавинадениндинуклеотида в окисленной или восстановленной форме на электропроводный материал — матрицу, с последующим контактированием полученной системы с раствором, содержащим соответствующие субстраты и ферменты.
  2. 2. Способ поп. 1, о т д и ч a tout и й с я тем, что в качестве электро проводных материалов используют грабит, окисленный грабит, металлы, кар— бохромы.
SU752163635A 1975-08-04 1975-08-04 Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем SU593439A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU752163635A SU593439A1 (ru) 1975-08-04 1975-08-04 Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU752163635A SU593439A1 (ru) 1975-08-04 1975-08-04 Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU593439A1 true SU593439A1 (ru) 1980-10-07

Family

ID=20628918

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU752163635A SU593439A1 (ru) 1975-08-04 1975-08-04 Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU593439A1 (ru)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2495843A1 (fr) * 1980-12-10 1982-06-11 Nat Res Dev Procede et electrode de bioelectrocatalyse
EP0172504A2 (de) * 1984-08-18 1986-02-26 BASF Aktiengesellschaft Biologischer Reaktor
US5122456A (en) * 1987-05-01 1992-06-16 Cambridge Life Science Plc Amperometric method for the quantitative determination of 1,4-dihydronicotinamide adenine dinucleotide (nadh) in solution
WO1997045720A1 (en) * 1996-05-27 1997-12-04 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Electrochemical and photochemical electrodes and their use

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2495843A1 (fr) * 1980-12-10 1982-06-11 Nat Res Dev Procede et electrode de bioelectrocatalyse
EP0172504A2 (de) * 1984-08-18 1986-02-26 BASF Aktiengesellschaft Biologischer Reaktor
US5122456A (en) * 1987-05-01 1992-06-16 Cambridge Life Science Plc Amperometric method for the quantitative determination of 1,4-dihydronicotinamide adenine dinucleotide (nadh) in solution
WO1997045720A1 (en) * 1996-05-27 1997-12-04 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Electrochemical and photochemical electrodes and their use

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7459223B2 (en) Electrochemical methods for generation of a biological proton motive force
Cass et al. Ferricinium ion as an electron acceptor for oxido-reductases
US6495023B1 (en) Electrochemical methods for generation of a biological proton motive force and pyridine nucleotide cofactor regeneration
JP5207576B2 (ja) 燃料電池、ポータブル電源及び電子機器
US7544438B2 (en) Electron mediator, electron mediator immobilized electrode, and biofuel cell using the electrode
WO2012115278A1 (ja) 微生物燃料電池、該電池の燃料と微生物、およびバイオリアクタとバイオセンサ
JPS5912135B2 (ja) 酵素電極
US20050067303A1 (en) Electrochemical detection of nadh or naph
JP4300743B2 (ja) 燃料電池
JP2012151130A (ja) 燃料電池
JPS5816696B2 (ja) 酵素電極
SU593439A1 (ru) Способ получени электропроводных фермент-ковакторных систем
Laurinavicius et al. Amperometric glyceride biosensor
US7410709B2 (en) Bio-battery
JP2006049215A (ja) 燃料電池
RU2229515C1 (ru) Водород-кислородный топливный элемент на основе иммобилизованных ферментов
Chen et al. Evaluation of in situ electroenzymatic regeneration of coenzyme NADH in packed bed membrane reactors: biosynthesis of lactate
CN115326900A (zh) 一种生物传感器电极及其制备方法和在电化学检测alt的生物传感器中的应用
JP4000708B2 (ja) 酵素固定化電極を用いる物質の測定方法
Treu et al. Bioelectrocatalysis of pyruvate with PQQ-dependent pyruvate dehydrogenase
Sonawat et al. Covalent immobilization of FAD and glucose oxidase on carbon electrodes
Park et al. Bioelectrocatalysts: engineered oxidoreductase system for utilization of fumarate reductase in chemical synthesis, detection, and fuel cells
JPH029303B2 (ru)
Kajiya et al. Electron transfer between an electron mediator-adsorbed glucose oxidase and an electrode
JPS6346377B2 (ru)